CN109929800A - 一种干细胞分泌因子的获取与纯化方法 - Google Patents

一种干细胞分泌因子的获取与纯化方法 Download PDF

Info

Publication number
CN109929800A
CN109929800A CN201910177635.1A CN201910177635A CN109929800A CN 109929800 A CN109929800 A CN 109929800A CN 201910177635 A CN201910177635 A CN 201910177635A CN 109929800 A CN109929800 A CN 109929800A
Authority
CN
China
Prior art keywords
umbilical cord
stem cell
source
mesenchymal stem
people
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN201910177635.1A
Other languages
English (en)
Inventor
赵进军
谷广其
杨桂花
赵宇飞
李张鹏
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Hecai Science And Technology (beijing) Co Ltd
Original Assignee
Hecai Science And Technology (beijing) Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Hecai Science And Technology (beijing) Co Ltd filed Critical Hecai Science And Technology (beijing) Co Ltd
Priority to CN201910177635.1A priority Critical patent/CN109929800A/zh
Publication of CN109929800A publication Critical patent/CN109929800A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

本发明涉及一种干细胞分泌因子的获取与纯化方法,其特征在于,包括脐带组织块的获取步骤、干细胞的原代培养步骤、干细胞的传代培养步骤和干细胞分泌因子的获取与纯化步骤;所述干细胞分泌因子的获取与纯化步骤包括待Pe代人源脐带间充质干细胞达80‑90%时,轻轻倾倒培养基,用无菌PBS清洗3次,吸除残留的PBS洗液,加入无血清培养基,放置于37℃体积分数为5%的CO2培养箱中培养3天,收集上清,用0.22um的过滤器过滤,得干细胞分泌因子。本发明制得的干细胞分泌因子与人原代真皮成纤维细胞共培养,刺激培养人原代真皮成纤维细胞,从而使人原代真皮成纤维细胞对Ⅰ型胶原纤维的表达增加,有助于皮肤创面伤口的修复。

Description

一种干细胞分泌因子的获取与纯化方法
技术领域
本发明涉及生物医药技术领域,更具体的说,它涉及一种干细胞分泌因子的获取与纯化方法。
背景技术
创面愈合是一个错综复杂的生物学过程,该过程通过细胞因子的高度协调介导细胞与细胞间或细胞与基质间的相互作用来修复受损组织。细胞因子的协调不良或功能障碍均可导致创面愈合“失控”,在临床上表现为创面难愈。难愈性创面常见于深度烧伤等疾病。
造成创面难愈的主要原因可分为两大类:一类是由病菌感染引起的创面难愈。这类创面难愈通常伴随免疫细胞的异常激活。由于树突状细胞、自然杀伤细胞等免疫细胞的持续激活,释放大量炎性因子、活性氧簇和蛋白水解酶,使创面局部处于长期过度的炎症反应阶段,从而导致肉芽组织和表皮组织长期无法形成。另一类是由局部缺血缺氧导致的创面难愈。创面局部血供不足引起营养成分及氧气供给的减少,造成胶原蛋白无法有效合成,同时基质金属蛋白酶的异常激活进一步导致大量细胞生长因子的降解,影响了创面局部成纤维细胞、表皮细胞和角质细胞的增殖和迁移能力,导致创面长期不愈合。
现阶段难愈性创面的治疗原则首先是局部治疗服从全身治疗;其次创面的外科处理是局部治疗的前提和基础,如局部清创和抗感染等;最后采用某些措施和方法来促进难愈性创面愈合。近年来促进难愈性创面愈合的方法很多,经典的方法主要包括新型敷料类、基因工程药物(生长因子)类、传统医药类以及组织工程类。存在的主要问题是抗感染差、血管化延迟、制备技术复杂、生产周期长,价格昂贵以及组织工程皮肤存在生理缺陷等。
干细胞疗法作为新型的治疗方式,其应用已涉及生长发育、创面愈合和组织工程等多个方面,其可能的作用机制如下:a.分化作用:干细胞作为新兴的种子细胞是一种具有多向分化潜能的细胞,移植干细胞能自我更新并可分化成多种细胞,对组织进行修复;b.旁分泌作用:干细胞能够分泌大量细胞因子,以间充质干细胞为例,其分泌因子在功能上主要可分为免疫调节、抗细胞凋亡、血管发生、支持干/祖细胞的增殖与分化、化学趋化、抗瘢痕六大类。它们通过自分泌或旁分泌的方式,改善机体局部微环境,促进内源性干细胞向伤口部位的迁移和分化,挽救濒临凋亡的细胞,从而达到修复组织的目的。
随着对干细胞研究的不断深入,研究者发现移植干细胞分化成组织细胞的几率很低且移植后存活时间很短。由于移植到患者体内的干细胞存活时间短暂的问题影响了其旁分泌作用的发挥。
发明内容
针对现有技术存在的不足,本发明的目的在于提供一种干细胞分泌因子的获取与纯化方法,其制得的干细胞分泌因子与人原代真皮成纤维细胞共培养,刺激培养人原代真皮成纤维细胞,从而使人原代真皮成纤维细胞对Ⅰ型胶原纤维的表达增加,有助于皮肤创面伤口的修复。
本发明的上述技术目的是通过以下技术方案得以实现的:
一种干细胞分泌因子的获取与纯化方法,其特征在于,包括脐带组织块的获取步骤、干细胞的原代培养步骤、干细胞的传代培养步骤和干细胞分泌因子的获取与纯化步骤;所述干细胞分泌因子的获取与纯化步骤包括待Pe代人源脐带间充质干细胞达80-90%时,轻轻倾倒培养基,用无菌PBS清洗3次,吸除残留的PBS洗液,加入无血清培养基,放置于37℃体积分数为5%的CO2培养箱中培养3天,收集上清,用0.22um的过滤器过滤,得干细胞分泌因子;其中,e=3、4、5、6、7、8、9、10。
进一步,所述脐带组织块的获取步骤包括两端结扎的脐带经消毒后,置于内含1wt%双抗的生理盐水中;去除脐带两结扎端,脐带中间段剪成0.8-1.2cm长的脐带组织段,采用内含1wt%双抗的生理盐水对脐带组织段反复漂洗去除血迹;剖开脐带组织段,去除血管及表皮组织,获得华通氏胶组织,采用内含1wt%双抗的生理盐水对华通氏胶组织反复漂洗,剪碎得1mm×1mm×1mm的脐带组织块。
进一步,所述干细胞的原代培养步骤包括将脐带组织块贴壁接种至培养皿中,温度为37℃、体积分数为5%的CO2培养箱中静置1-2h,向培养皿中加入完全培养液培养,每隔3天半量更换完全培养液,静置培养14天后,弃掉培养液及脐带组织块,采用生理盐水清洗细胞,加入0.5wt%的Tryple-Express消化液,温度为37℃静置2-3分钟,待伪足完全回缩,细胞变圆,加入完全培养液终止消化,吹打得到P1代人源脐带间充质干细胞悬液。
进一步,所述干细胞的传代培养步骤包括待Pn代人源脐带间充质干细胞达80-90%汇合度时,弃去上清液,加入0.5wt%的Tryple-Express消化液,待消化完全后,加入完全培养液终止消化,离心并弃去上清液,用生理盐水对Pn代人源脐带间充质干细胞清洗,并在无血清培养基中重悬得Pn代人源脐带间充质干细胞悬液,将Pn代人源脐带间充质干细胞悬液接种于细胞培养瓶,并将细胞培养瓶置于温度为37℃、体积分数为5%的CO2培养箱中培养,得Pn+1代人源脐带间充质干细胞。
进一步,还包括干细胞的冻存步骤和干细胞的复苏与培养步骤;所述干细胞的冻存步骤包括待Pm代人源脐带间充质干细胞达80-90%汇合度时,弃去上清液,加入0.5wt%的Tryple-Express消化液,待消化完全后,加入完全培养液终止消化,离心并弃去上清液,用生理盐水对Pm代人源脐带间充质干细胞清洗,并在无血清间充质干细胞冻存液中重悬,将Pm代人源脐带间充质干细胞悬液分装于冻存管中并封口,立即将冻存管放置于程序降温盒后并立即将程序降温盒放置于-80℃的冰箱中冻存12-24小时,之后将冻存管取出并立即放置于液氮中冻存。
进一步,所述无血清间充质干细胞冻存液包括以质量份数计的无血清培养基80份、二甲基亚砜10份、L-薄荷基吡喃糖苷5份、甘油4份、N-乙酰葡萄糖胺1份。
进一步,所述干细胞的复苏与培养步骤包括从液氮中取出待复苏的Pm代人源脐带间充质干细胞冻存管,放入温度为37℃水浴中,待Pm代人源脐带间充质干细胞融化后转移至生理盐水中,离心并弃去上清液,并在无血清培养基中重悬得Pm代人源脐带间充质干细胞悬液,将Pm代人源脐带间充质干细胞悬液接种于细胞培养瓶,并将细胞培养瓶置于温度为37℃、体积分数为5%的CO2培养箱中培养得Pm+1代人源脐带间充质干细胞。
进一步,所述无血清培养基为HY STEMCELL人间充质干细胞无血清培养基。
进一步,所述人源脐带间充质干细胞悬液的浓度为1×107个/mL。
进一步,所述细胞培养瓶为T-175细胞培养瓶。
综上所述,本发明具有以下有益效果:
第一、本发明制得的干细胞分泌因子与人原代真皮成纤维细胞共培养,刺激培养人原代真皮成纤维细胞,从而使人原代真皮成纤维细胞对Ⅰ型胶原纤维的表达增加,有助于皮肤创面伤口的修复。
第二、经过采用本发明提供的无血清间充质干细胞冻存液结合本发明提供干细胞的冻存步骤后再经过传代培养的人源脐带间充质干细胞仍然具有良好的增殖能力,从其培养基中所获取和纯化的干细胞分泌因子中的蛋白质浓度以及细胞因子VEGF、IL-8、MCP-1仍然具有较高的浓度,进而仍然可以增高人原代真皮成纤维细胞的Ⅰ型胶原蛋白表达量。
具体实施方式
以下结合实施例对本发明作进一步详细说明。
实施例1
一种干细胞分泌因子的获取与纯化方法,包括脐带组织块的获取步骤、干细胞的原代培养步骤、干细胞的传代培养步骤和干细胞分泌因子的获取与纯化步骤。
脐带组织块的获取步骤包括两端结扎的脐带经消毒后,置于内含1wt%双抗的生理盐水中;去除脐带两结扎端,脐带中间段剪成0.8-1.2cm长的脐带组织段,采用内含1wt%双抗的生理盐水对脐带组织段反复漂洗去除血迹;剖开脐带组织段,去除血管及表皮组织,获得华通氏胶组织,采用内含1wt%双抗的生理盐水对华通氏胶组织反复漂洗,剪碎得1mm×1mm×1mm的脐带组织块。
干细胞的原代培养步骤包括将脐带组织块贴壁接种至培养皿中,温度为37℃、体积分数为5%的CO2培养箱中静置1-2h,向培养皿中加入完全培养液培养,每隔3天半量更换完全培养液,静置培养14天后,弃掉培养液及脐带组织块,采用生理盐水清洗细胞,加入0.5wt%的Tryple-Express消化液,温度为37℃静置2-3分钟,待伪足完全回缩,细胞变圆,加入完全培养液终止消化,吹打得到P1代人源脐带间充质干细胞悬液,调整P1代人源脐带间充质干细胞悬液浓度为1×107个/mL。
干细胞的传代培养步骤包括待Pn代人源脐带间充质干细胞达80-90%汇合度时,弃去上清液,加入0.5wt%的Tryple-Express消化液,待消化完全后,加入完全培养液终止消化,离心并弃去上清液,用生理盐水对Pn代人源脐带间充质干细胞清洗,并在HYSTEMCELL人间充质干细胞无血清培养基中重悬得Pn代人源脐带间充质干细胞悬液,调整Pn代人源脐带间充质干细胞悬液浓度为1×107个/mL,将Pn代人源脐带间充质干细胞悬液接种于T-175细胞培养瓶,并将T-175细胞培养瓶置于温度为37℃、体积分数为5%的CO2培养箱中培养,得Pn+1代人源脐带间充质干细胞;其中,n=1、2。
干细胞分泌因子的获取与纯化步骤包括待P3代人源脐带间充质干细胞达80-90%时,轻轻倾倒培养基,用无菌PBS清洗3次,吸除残留的PBS洗液,加入HY STEMCELL人间充质干细胞无血清培养基,放置于37℃体积分数为5%的CO2培养箱中培养3天,收集上清,用0.22um的过滤器过滤,得干细胞分泌因子。
实施例2
一种干细胞分泌因子的获取与纯化方法,包括脐带组织块的获取步骤、干细胞的原代培养步骤、干细胞的传代培养步骤和干细胞分泌因子的获取与纯化步骤。
脐带组织块的获取步骤包括两端结扎的脐带经消毒后,置于内含1wt%双抗的生理盐水中;去除脐带两结扎端,脐带中间段剪成0.8-1.2cm长的脐带组织段,采用内含1wt%双抗的生理盐水对脐带组织段反复漂洗去除血迹;剖开脐带组织段,去除血管及表皮组织,获得华通氏胶组织,采用内含1wt%双抗的生理盐水对华通氏胶组织反复漂洗,剪碎得1mm×1mm×1mm的脐带组织块。
干细胞的原代培养步骤包括将脐带组织块贴壁接种至培养皿中,温度为37℃、体积分数为5%的CO2培养箱中静置1-2h,向培养皿中加入完全培养液培养,每隔3天半量更换完全培养液,静置培养14天后,弃掉培养液及脐带组织块,采用生理盐水清洗细胞,加入0.5wt%的Tryple-Express消化液,温度为37℃静置2-3分钟,待伪足完全回缩,细胞变圆,加入完全培养液终止消化,吹打得到P1代人源脐带间充质干细胞悬液,调整P1代人源脐带间充质干细胞悬液浓度为1×107个/mL。
干细胞的传代培养步骤包括待Pn代人源脐带间充质干细胞达80-90%汇合度时,弃去上清液,加入0.5wt%的Tryple-Express消化液,待消化完全后,加入完全培养液终止消化,离心并弃去上清液,用生理盐水对Pn代人源脐带间充质干细胞清洗,并在HYSTEMCELL人间充质干细胞无血清培养基中重悬得Pn代人源脐带间充质干细胞悬液,调整Pn代人源脐带间充质干细胞悬液浓度为1×107个/mL,将Pn代人源脐带间充质干细胞悬液接种于T-175细胞培养瓶,并将T-175细胞培养瓶置于温度为37℃、体积分数为5%的CO2培养箱中培养,得Pn+1代人源脐带间充质干细胞;其中,n=1、2、3、4、5。
干细胞分泌因子的获取与纯化步骤包括待P6代人源脐带间充质干细胞达80-90%时,轻轻倾倒培养基,用无菌PBS清洗3次,吸除残留的PBS洗液,加入HY STEMCELL人间充质干细胞无血清培养基,放置于37℃体积分数为5%的CO2培养箱中培养3天,收集上清,用0.22um的过滤器过滤,得干细胞分泌因子。
实施例3
一种促进人源脐带间充质干细胞向成骨细胞分化的诱导方法,包括如下步骤:包括脐带组织块的获取步骤、干细胞的原代培养步骤、干细胞的传代培养步骤、干细胞的冻存步骤、干细胞的复苏与培养步骤和干细胞分泌因子的获取与纯化步骤。
脐带组织块的获取步骤包括两端结扎的脐带经消毒后,置于内含1wt%双抗的生理盐水中;去除脐带两结扎端,脐带中间段剪成0.8-1.2cm长的脐带组织段,采用内含1wt%双抗的生理盐水对脐带组织段反复漂洗去除血迹;剖开脐带组织段,去除血管及表皮组织,获得华通氏胶组织,采用内含1wt%双抗的生理盐水对华通氏胶组织反复漂洗,剪碎得1mm×1mm×1mm的脐带组织块。
干细胞的原代培养步骤包括将脐带组织块贴壁接种至培养皿中,温度为37℃、体积分数为5%的CO2培养箱中静置1-2h,向培养皿中加入完全培养液培养,每隔3天半量更换完全培养液,静置培养14天后,弃掉培养液及脐带组织块,采用生理盐水清洗细胞,加入0.5wt%的Tryple-Express消化液,温度为37℃静置2-3分钟,待伪足完全回缩,细胞变圆,加入完全培养液终止消化,吹打得到P1代人源脐带间充质干细胞悬液,调整P1代人源脐带间充质干细胞悬液浓度为1×107个/mL。
干细胞的传代培养步骤包括待Pn代人源脐带间充质干细胞达80-90%汇合度时,弃去上清液,加入0.5wt%的Tryple-Express消化液,待消化完全后,加入完全培养液终止消化,离心并弃去上清液,用生理盐水对Pn代人源脐带间充质干细胞清洗,并在HYSTEMCELL人间充质干细胞无血清培养基中重悬得Pn代人源脐带间充质干细胞悬液,调整Pn代人源脐带间充质干细胞悬液浓度为1×107个/mL,将Pn代人源脐带间充质干细胞悬液接种于T-175细胞培养瓶,并将T-175细胞培养瓶置于温度为37℃、体积分数为5%的CO2培养箱中培养,得Pn+1代人源脐带间充质干细胞;其中,n=1、2、3、4。
干细胞的冻存步骤包括待P5代人源脐带间充质干细胞达80-90%汇合度时,弃去上清液,加入0.5wt%的Tryple-Express消化液,待消化完全后,加入完全培养液终止消化,离心并弃去上清液,用生理盐水对P5代人源脐带间充质干细胞清洗,并在无血清间充质干细胞冻存液中重悬,调整P5代人源脐带间充质干细胞浓度为1×107个/mL,将P5代人源脐带间充质干细胞悬液分装于冻存管中并封口,立即将冻存管放置于程序降温盒后并立即将程序降温盒放置于-80℃的冰箱中冻存12-24小时,之后将冻存管取出并立即放置于液氮中冻存。无血清间充质干细胞冻存液包括以质量份数计的HY STEMCELL人间充质干细胞无血清培养基80份、二甲基亚砜10份、L-薄荷基吡喃糖苷5份、甘油4份、N-乙酰葡萄糖胺1份。
干细胞的复苏与培养步骤包括从液氮中取出待复苏的P5代人源脐带间充质干细胞冻存管,放入温度为37℃水浴中,待P5代人源脐带间充质干细胞融化后转移至生理盐水中,离心并弃去上清液,并在HY STEMCELL人间充质干细胞无血清培养基中重悬得P5代人源脐带间充质干细胞悬液,将P5代人源脐带间充质干细胞悬液接种于T-175细胞培养瓶,并将T-175细胞培养瓶置于温度为37℃、体积分数为5%的CO2培养箱中培养得P6代人源脐带间充质干细胞。
干细胞分泌因子的获取与纯化步骤包括待P6代人源脐带间充质干细胞达80-90%时,轻轻倾倒培养基,用无菌PBS清洗3次,吸除残留的PBS洗液,加入HY STEMCELL人间充质干细胞无血清培养基,放置于37℃体积分数为5%的CO2培养箱中培养3天,收集上清,用0.22um的过滤器过滤,得干细胞分泌因子。
实施例4
一种促进人源脐带间充质干细胞向成骨细胞分化的诱导方法,包括如下步骤:包括脐带组织块的获取步骤、干细胞的原代培养步骤、干细胞的传代培养步骤、干细胞的冻存步骤、干细胞的复苏与培养步骤和干细胞分泌因子的获取与纯化步骤。
脐带组织块的获取步骤包括两端结扎的脐带经消毒后,置于内含1wt%双抗的生理盐水中;去除脐带两结扎端,脐带中间段剪成0.8-1.2cm长的脐带组织段,采用内含1wt%双抗的生理盐水对脐带组织段反复漂洗去除血迹;剖开脐带组织段,去除血管及表皮组织,获得华通氏胶组织,采用内含1wt%双抗的生理盐水对华通氏胶组织反复漂洗,剪碎得1mm×1mm×1mm的脐带组织块。
干细胞的原代培养步骤包括将脐带组织块贴壁接种至培养皿中,温度为37℃、体积分数为5%的CO2培养箱中静置1-2h,向培养皿中加入完全培养液培养,每隔3天半量更换完全培养液,静置培养14天后,弃掉培养液及脐带组织块,采用生理盐水清洗细胞,加入0.5wt%的Tryple-Express消化液,温度为37℃静置2-3分钟,待伪足完全回缩,细胞变圆,加入完全培养液终止消化,吹打得到P1代人源脐带间充质干细胞悬液,调整P1代人源脐带间充质干细胞悬液浓度为1×107个/mL。
干细胞的传代培养步骤包括待Pn代人源脐带间充质干细胞达80-90%汇合度时,弃去上清液,加入0.5wt%的Tryple-Express消化液,待消化完全后,加入完全培养液终止消化,离心并弃去上清液,用生理盐水对Pn代人源脐带间充质干细胞清洗,并在HYSTEMCELL人间充质干细胞无血清培养基中重悬得Pn代人源脐带间充质干细胞悬液,调整Pn代人源脐带间充质干细胞悬液浓度为1×107个/mL,将Pn代人源脐带间充质干细胞悬液接种于T-175细胞培养瓶,并将T-175细胞培养瓶置于温度为37℃、体积分数为5%的CO2培养箱中培养,得Pn+1代人源脐带间充质干细胞;其中,n=1、2、3、4、5、6、7、8。
干细胞的冻存步骤包括待P9代人源脐带间充质干细胞达80-90%汇合度时,弃去上清液,加入0.5wt%的Tryple-Express消化液,待消化完全后,加入完全培养液终止消化,离心并弃去上清液,用生理盐水对P9代人源脐带间充质干细胞清洗,并在无血清间充质干细胞冻存液中重悬,调整P9代人源脐带间充质干细胞浓度为1×107个/mL,将P9代人源脐带间充质干细胞悬液分装于冻存管中并封口,立即将冻存管放置于程序降温盒后并立即将程序降温盒放置于-80℃的冰箱中冻存12-24小时,之后将冻存管取出并立即放置于液氮中冻存。无血清间充质干细胞冻存液包括以质量份数计的HY STEMCELL人间充质干细胞无血清培养基80份、二甲基亚砜10份、L-薄荷基吡喃糖苷5份、甘油4份、N-乙酰葡萄糖胺1份。
干细胞的复苏与培养步骤包括从液氮中取出待复苏的P9代人源脐带间充质干细胞冻存管,放入温度为37℃水浴中,待P9代人源脐带间充质干细胞融化后转移至生理盐水中,离心并弃去上清液,并在HY STEMCELL人间充质干细胞无血清培养基中重悬得P9代人源脐带间充质干细胞悬液,将P9代人源脐带间充质干细胞悬液接种于T-175细胞培养瓶,并将T-175细胞培养瓶置于温度为37℃、体积分数为5%的CO2培养箱中培养得P10代人源脐带间充质干细胞。
干细胞分泌因子的获取与纯化步骤包括待P10代人源脐带间充质干细胞达80-90%时,轻轻倾倒培养基,用无菌PBS清洗3次,吸除残留的PBS洗液,加入HY STEMCELL人间充质干细胞无血清培养基,放置于37℃体积分数为5%的CO2培养箱中培养3天,收集上清,用0.22um的过滤器过滤,得干细胞分泌因子。
测定实施例1-4所得到的干细胞分泌因子中的蛋白质浓度以及细胞因子的浓度,测定结果见表1。
利用BCA法对干细胞分泌因子中的蛋白进行测定。将其稀释5倍后,取25uL测定其吸光度,根据测得的标准曲线得出公式算出相应的蛋白量,经计算得出干细胞分泌因子中蛋白浓度。
利用ELISA试剂盒测定干细胞分泌因子中细胞因子VEGF、IL-8、MCP-1的浓度。VEGF是一种特异性作用于血管内皮细胞的多功能因子,它能引起血管通透性增加、细胞外基质成分改变,诱导新生血管的形成和肉芽组织形成;IL-8通过增加角质形成细胞迁移和增殖促进皮肤再上皮化;MCP-1促进皮肤伤口愈合作为免疫系统特别是巨噬细胞的化学引诱物。
实施例1-4提供的干细胞分泌因子与人原代真皮成纤维细胞共培养:人原代真皮成纤维细胞以22000个/cm2的密度接种于六孔板的六孔中,六孔板为五个,五个六孔板中分别加入实施例1-4提供的干细胞分泌因子(实验组)以及不加血清的基础培养基(对照组),每隔一天更换一次实施例1-4提供的干细胞分泌因子或者不加血清的基础培养基,共培养六天后结束培养,提取总蛋白测定人原代真皮成纤维细胞的Ⅰ型胶原蛋白表达量。
人原代真皮成纤维细胞中蛋白的提取:取出培养人原代真皮成纤维细胞的六孔板进行处理,弃掉实施例1-4提供的干细胞分泌因子或者不加血清的基础培养基,并用PBS清洗2次。每孔加入100uL的RIPA裂解液和1uL的PMSF混合液,4℃裂解30min。将六孔板中的液体移入EP管中,4℃条件下12000r/min离心20分钟。吸取上清液-20℃储存备用。
测定人原代真皮成纤维细胞的Ⅰ型胶原蛋白表达量:干细胞分泌因子与人原代真皮成纤维细胞共培养后,通过western bloting实验操作技术比较其与对照组中Ⅰ型胶原纤维表达量的差别,蛋白条带图用ImageJ软件进行灰度值分析取值,数据分析有统计学差异(P<0.005),测定结果见表2。
表2
测定项目 实施例1 实施例2 实施例3 实施例4 对照组
Ⅰ型胶原蛋白表达量(GAPDH) 1.43 1.44 1.42 1.41 0.65
从表2可以看出,利用本发明提供的干细胞分泌因子刺激培养人原代真皮成纤维细胞,从而使人原代真皮成纤维细胞对Ⅰ型胶原纤维的表达增加。可知本发明提供的干细胞分泌因子有助于皮肤创面伤口的修复。
从表1和表2中还可以看出,经过采用本发明提供的无血清间充质干细胞冻存液结合本发明提供干细胞的冻存步骤后再经过传代培养的人源脐带间充质干细胞仍然具有良好的增殖能力,从其培养基中所获取和纯化的干细胞分泌因子中的蛋白质浓度以及细胞因子VEGF、IL-8、MCP-1仍然具有较高的浓度,进而仍然可以增高人原代真皮成纤维细胞的Ⅰ型胶原蛋白表达量。
应该理解的是,本发明实施例所述制备方法仅仅是用于说明本发明,而不是对本发明的限制,在本发明的构思前提下对本发明制备方法的简单改进都属于本发明要求保护的范围。

Claims (10)

1.一种干细胞分泌因子的获取与纯化方法,其特征在于,包括脐带组织块的获取步骤、干细胞的原代培养步骤、干细胞的传代培养步骤和干细胞分泌因子的获取与纯化步骤;所述干细胞分泌因子的获取与纯化步骤包括待Pe代人源脐带间充质干细胞达80-90%时,轻轻倾倒培养基,用无菌PBS清洗3次,吸除残留的PBS洗液,加入无血清培养基,放置于37℃体积分数为5%的CO2培养箱中培养3天,收集上清,用0.22um的过滤器过滤,得干细胞分泌因子;其中,e=3、4、5、6、7、8、9、10。
2.根据权利要求1所述的一种干细胞分泌因子的获取与纯化方法,其特征在于,所述脐带组织块的获取步骤包括两端结扎的脐带经消毒后,置于内含1wt%双抗的生理盐水中;去除脐带两结扎端,脐带中间段剪成0.8-1.2cm长的脐带组织段,采用内含1wt%双抗的生理盐水对脐带组织段反复漂洗去除血迹;剖开脐带组织段,去除血管及表皮组织,获得华通氏胶组织,采用内含1wt%双抗的生理盐水对华通氏胶组织反复漂洗,剪碎得1mm×1mm×1mm的脐带组织块。
3.根据权利要求1所述的一种干细胞分泌因子的获取与纯化方法,其特征在于,所述干细胞的原代培养步骤包括将脐带组织块贴壁接种至培养皿中,温度为37℃、体积分数为5%的CO2培养箱中静置1-2 h,向培养皿中加入完全培养液培养,每隔3天半量更换完全培养液,静置培养14天后,弃掉培养液及脐带组织块,采用生理盐水清洗细胞,加入0.5wt%的Tryple-Express消化液,温度为37℃静置2-3分钟,待伪足完全回缩,细胞变圆,加入完全培养液终止消化,吹打得到P1代人源脐带间充质干细胞悬液。
4.根据权利要求1所述的一种干细胞分泌因子的获取与纯化方法,其特征在于,所述干细胞的传代培养步骤包括待Pn代人源脐带间充质干细胞达80-90%汇合度时,弃去上清液,加入0.5wt%的Tryple-Express消化液,待消化完全后,加入完全培养液终止消化,离心并弃去上清液,用生理盐水对Pn代人源脐带间充质干细胞清洗,并在无血清培养基中重悬得Pn代人源脐带间充质干细胞悬液,将Pn代人源脐带间充质干细胞悬液接种于细胞培养瓶,并将细胞培养瓶置于温度为37℃、体积分数为5%的CO2培养箱中培养,得Pn+1代人源脐带间充质干细胞。
5.根据权利要求1所述的一种干细胞分泌因子的获取与纯化方法,其特征在于,还包括干细胞的冻存步骤和干细胞的复苏与培养步骤;所述干细胞的冻存步骤包括待Pm代人源脐带间充质干细胞达80-90%汇合度时,弃去上清液,加入0.5wt%的Tryple-Express消化液,待消化完全后,加入完全培养液终止消化,离心并弃去上清液,用生理盐水对Pm代人源脐带间充质干细胞清洗,并在无血清间充质干细胞冻存液中重悬,将Pm代人源脐带间充质干细胞悬液分装于冻存管中并封口,立即将冻存管放置于程序降温盒后并立即将程序降温盒放置于-80℃的冰箱中冻存12-24小时,之后将冻存管取出并立即放置于液氮中冻存。
6.根据权利要求5所述的一种干细胞分泌因子的获取与纯化方法,其特征在于,所述无血清间充质干细胞冻存液包括以质量份数计的无血清培养基80份、二甲基亚砜10份、L-薄荷基吡喃糖苷5份、甘油4份、N-乙酰葡萄糖胺1份。
7.根据权利要求5所述的一种干细胞分泌因子的获取与纯化方法,其特征在于,所述干细胞的复苏与培养步骤包括从液氮中取出待复苏的Pm代人源脐带间充质干细胞冻存管,放入温度为37℃水浴中,待Pm代人源脐带间充质干细胞融化后转移至生理盐水中,离心并弃去上清液,并在无血清培养基中重悬得Pm代人源脐带间充质干细胞悬液,将Pm代人源脐带间充质干细胞悬液接种于细胞培养瓶,并将细胞培养瓶置于温度为37℃、体积分数为5%的CO2培养箱中培养得Pm+1代人源脐带间充质干细胞。
8.根据权利要求1或4或6或7所述的一种干细胞分泌因子的获取与纯化方法,其特征在于,所述无血清培养基为HY STEMCELL人间充质干细胞无血清培养基。
9.根据权利要求3或4或5或7所述的一种干细胞分泌因子的获取与纯化方法,其特征在于,所述人源脐带间充质干细胞悬液的浓度为1×107个/mL。
10.根据权利要求4或7所述的一种干细胞分泌因子的获取与纯化方法,其特征在于,所述细胞培养瓶为T-175细胞培养瓶。
CN201910177635.1A 2019-03-09 2019-03-09 一种干细胞分泌因子的获取与纯化方法 Pending CN109929800A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201910177635.1A CN109929800A (zh) 2019-03-09 2019-03-09 一种干细胞分泌因子的获取与纯化方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201910177635.1A CN109929800A (zh) 2019-03-09 2019-03-09 一种干细胞分泌因子的获取与纯化方法

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN109929800A true CN109929800A (zh) 2019-06-25

Family

ID=66986757

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201910177635.1A Pending CN109929800A (zh) 2019-03-09 2019-03-09 一种干细胞分泌因子的获取与纯化方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN109929800A (zh)

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110613680A (zh) * 2019-10-23 2019-12-27 河南创新生物科技研究院有限公司 一种用于创伤伤口的凝胶制剂的制备方法
CN112159796A (zh) * 2020-10-13 2021-01-01 上海市东方医院(同济大学附属东方医院) 一种人脐带来源的间充质干细胞原代分离的方法及应用
CN112680413A (zh) * 2021-01-26 2021-04-20 成都锦欣生殖医学与遗传学研究所 一种脐带间充质干细胞的培养方法及其应用
CN113425619A (zh) * 2021-05-18 2021-09-24 铜仁市泛特尔生物技术有限公司 一种间充质干细胞分泌因子的纯化制备方法及用途
CN113462641A (zh) * 2021-07-15 2021-10-01 广州市宙斯生物科技有限责任公司 脐带间充质干细胞提取物、应用及检测方法
CN114515296A (zh) * 2022-02-25 2022-05-20 和携科技有限公司 一种脂肪间充质干细胞分泌因子的制备方法

Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ES2312228A1 (es) * 2005-01-18 2009-02-16 Fernando Serrano Gomez Epidermis cultivada secretora de factores terapeuticos producida por celulas madre de pelo y metodo de obtencion.
CN103396990A (zh) * 2013-08-22 2013-11-20 顺昊细胞生物技术(天津)有限公司 一种制备间充质干细胞的方法
CN105794772A (zh) * 2016-05-16 2016-07-27 天津市中奥天元科技发展有限公司 一种无血清细胞冻存液
CN106282104A (zh) * 2016-07-29 2017-01-04 中卫华医(北京)生物科技有限公司 从脐带组织中高效获取间充质干细胞的方法
CN106367386A (zh) * 2016-10-14 2017-02-01 中卫华医(北京)生物科技有限公司 人脐带间充质干细胞因子冻干粉的制备方法
CN108315296A (zh) * 2018-02-23 2018-07-24 深圳至博生物科技有限公司 间充质干细胞的分离培养方法及冻存、复苏方法
CN108496957A (zh) * 2018-06-04 2018-09-07 北京中广天生物科技有限公司 脐带间充质干细胞培养上清的低温冷藏保存方法

Patent Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ES2312228A1 (es) * 2005-01-18 2009-02-16 Fernando Serrano Gomez Epidermis cultivada secretora de factores terapeuticos producida por celulas madre de pelo y metodo de obtencion.
CN103396990A (zh) * 2013-08-22 2013-11-20 顺昊细胞生物技术(天津)有限公司 一种制备间充质干细胞的方法
CN105794772A (zh) * 2016-05-16 2016-07-27 天津市中奥天元科技发展有限公司 一种无血清细胞冻存液
CN106282104A (zh) * 2016-07-29 2017-01-04 中卫华医(北京)生物科技有限公司 从脐带组织中高效获取间充质干细胞的方法
CN106367386A (zh) * 2016-10-14 2017-02-01 中卫华医(北京)生物科技有限公司 人脐带间充质干细胞因子冻干粉的制备方法
CN108315296A (zh) * 2018-02-23 2018-07-24 深圳至博生物科技有限公司 间充质干细胞的分离培养方法及冻存、复苏方法
CN108496957A (zh) * 2018-06-04 2018-09-07 北京中广天生物科技有限公司 脐带间充质干细胞培养上清的低温冷藏保存方法

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
候宗柳等: "《围产期成体干细胞基础与临床应用》", 31 October 2016, 云南科技出版社 *
刘美林: "脐带间充质干细胞分泌因子脂质体囊泡制备及对损伤组织修复作用的研究", 《中国优秀硕士学位论文全文数据库 医药卫生科技辑》 *

Cited By (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110613680A (zh) * 2019-10-23 2019-12-27 河南创新生物科技研究院有限公司 一种用于创伤伤口的凝胶制剂的制备方法
CN112159796A (zh) * 2020-10-13 2021-01-01 上海市东方医院(同济大学附属东方医院) 一种人脐带来源的间充质干细胞原代分离的方法及应用
CN112680413A (zh) * 2021-01-26 2021-04-20 成都锦欣生殖医学与遗传学研究所 一种脐带间充质干细胞的培养方法及其应用
CN112680413B (zh) * 2021-01-26 2023-09-05 成都锦欣生殖医学与遗传学研究所 一种脐带间充质干细胞的培养方法及其应用
CN113425619A (zh) * 2021-05-18 2021-09-24 铜仁市泛特尔生物技术有限公司 一种间充质干细胞分泌因子的纯化制备方法及用途
CN113425619B (zh) * 2021-05-18 2023-04-28 铜仁市泛特尔生物技术有限公司 一种间充质干细胞分泌因子的纯化制备方法及用途
CN113462641A (zh) * 2021-07-15 2021-10-01 广州市宙斯生物科技有限责任公司 脐带间充质干细胞提取物、应用及检测方法
CN114515296A (zh) * 2022-02-25 2022-05-20 和携科技有限公司 一种脂肪间充质干细胞分泌因子的制备方法
CN114515296B (zh) * 2022-02-25 2024-01-12 和携科技有限公司 一种脂肪间充质干细胞分泌因子的制备方法

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN109929800A (zh) 一种干细胞分泌因子的获取与纯化方法
CN109876010A (zh) 一种用于治疗烧烫伤术后修复皮下组织的人脐带间充质干细胞分泌因子注射液的制备方法
CN106754674B (zh) 从人胎盘羊膜制备羊膜间充质干细胞的方法及其应用
CN109172859A (zh) 人干细胞来源外泌体复合外源性透明质酸在制备皮肤创面缺损修复药物或材料中的应用
CN106434557B (zh) 由脐带间充质干细胞制备cd34阳性细胞的方法
CN112263713A (zh) 负载人脐带间充质干细胞的纤维蛋白水凝胶支架及其应用
CN113244272B (zh) 用于改善卵巢早衰的组合物及其制备方法和应用
CN105820998A (zh) 临床回输级细胞治疗用人脂肪干细胞ADSCs分离提取培养方法
CN106421920A (zh) 一种脂肪填充物及其制备方法
CN106359368A (zh) 细胞冻存液及冻存方法
CN113943699B (zh) 对抗高糖损伤的脐带间充质干细胞诱导液、方法及应用
CN108721606A (zh) 一种基于干细胞生长因子的妊娠纹修复产品及其制备方法
CN108642002A (zh) 一种无血清驯化培养人间充质干细胞的方法
CN112870445A (zh) 一种软组织修复材料的制备方法及应用
CN114164171B (zh) 一种人脐带间充质干细胞培养基、注射液、制备方法与其在制备治疗脑卒中的药物中的应用
CN110938587A (zh) 一种表皮干细胞混悬液的制备方法及其应用
CN105062953A (zh) 三维诱导间充质干细胞转化为胰岛细胞的方法
CN108066750A (zh) 干细胞及其分泌物用于治疗皮肤烧烫伤的新用途
CN107779430A (zh) 脐带间充质干细胞上清液的收集方法
CN102172337B (zh) 具有皮脂腺样结构的组织工程皮肤及其制备方法
CN109125805A (zh) 一种干细胞复合plga支架试剂盒及其应用
CN111518743A (zh) 一种人真皮成纤维细胞体外热损伤模型构建的方法及其应用
CN110904049A (zh) 一种富含vegf和fgf的干细胞上清液的制备方法及其应用
CN111363716A (zh) 去细胞羊膜载体复合自体子宫内膜干细胞的制备
CN112280735B (zh) 脐带来源的间充质干细胞及其制备方法和应用

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
RJ01 Rejection of invention patent application after publication
RJ01 Rejection of invention patent application after publication

Application publication date: 20190625