一种地不容组培繁殖方法
技术领域
本发明涉及中药材组培领域,尤其涉及一种地不容组培繁殖方法。
背景技术
地不容(Stephania epigaea H.S.Lo)为防己科千金藤属草质藤本属植物,以块根入药,有祛风除湿,清热解毒,止痛的功效,主要用于胃痛,风湿痹痛,咽喉不利,痈肿疮毒。其内含罗通定具解热镇痛作用,临床上主要用于治疗胃溃疡、十二指肠溃疡的疼痛以及月经痛、分娩后宫缩痛、紧张性失眠以及痉挛性咳嗽等;其内含青藤碱具镇痛抗炎作用,主要用于治疗风湿性关节炎和神经痛。同时,地不容由于其块根性状多异奇特,茎叶亮绿可艺术性人工缠绕,还常做一种价值较高的观赏性盆景。
地不容主要分布于云南除东北部、西南部和西双版纳尚未发现分布外,几乎各地都有,四川南部和西部亦有分布,常生于石山。近年来,随着药用价值的开发以及观赏性价值的推广,地不容需求突飞猛增,而有限的野生资源不能满足市场需求,其价格亦随之迅猛上涨,不少科研机构、企业纷纷开展地不容的种植技术研究,但由于地不容雌雄异株,且雌株在种群中分布量少,使得种子量较少,同时由于种子发芽率低、发芽周期长。同时也因其为雌雄异株,种子繁殖杂交性强,作为观赏性植物其变异性大,母本遗传性状不稳定。近年来,部分单位开展了广西地不容、小叶地不容等的组培技术研究,但是在增殖率、生根情况方面效果都不甚理想。
发明内容
本发明针对现有技术的不足,发明了一种操作简便、培养周期短、增殖率高的地不容组培快繁技术,能有效降低生产成本,可为规模化种植短期内快速提供优质种苗的繁育方法。
本发明是通过以下技术方案实现的:
一种地不容组培繁殖方法,其特征在于,包含以下步骤:(1)外植体选择、(2)外植体消毒、(3)丛生芽诱导、(4)增殖培养、(5)生根培养;
优选地,步骤(1)所述的外植体选择包含以下步骤:待新茎叶发出后,选取顶端10-20cm幼嫩带芽茎段;
优选地,步骤(2)所述的外植体消毒包含以下步骤:将选取的外植体剪成带芽小段后用饱和肥皂水溶液涮洗后冲淋,用75%酒精消毒10-25s,再用饱和漂白粉溶液消毒20-30min,最后用0.05%升汞溶液消毒10-15min;
优选地,步骤(3)所述的丛生芽诱导包含以下步骤:将消毒好的外植体,去掉两端,切至0.5-1.0cm带芽茎段,接种在诱导培养基上,在人工控制的环境下培养;更加优选地,所述的诱导培养基为:MS+NAA 0-0.05mg/L+TIBA 1.0-3.0mg/L+KT 2.0-4.0mg/L+活性炭0.2-0.5g/L;所述的在人工控制的环境下培养包含以下步骤:培养温度为24-30℃,光照强度1000-2000lux,前15天在单日光照时间6h的条件下培养,15天后在单日光照时间12h的条件下培养;
优选地,步骤(4)所述的增殖培养包含以下步骤:将丛生芽接种在增殖培养基上,在人工控制的环境下培养;更加优选地,所述的增殖培养基为:MS+IBA 0-0.1mg/L+TIBA2.0-4.0mg/L+KT2.0-4.0mg/L+硝酸银1.0-5.0μg/L+活性炭0.2-0.5g/L;所述的在人工控制的环境下培养包含以下步骤:培养温度为24-30℃,光照强度为1000-2000lux,单日光照时间为12h;
优选地,步骤(5)所述的生根培养包含以下步骤:将增殖的丛生芽接种在生根培养基上,在人工控制的环境下培养;更加优选地,所述的生根培养基为:1/2MS+NAA 0.5-2.0mg/L+IBA 0-2.0mg/L+多效唑0.01-0.1mg/L活性炭0.5-1.0g/L;所述的在人工控制的环境下培养包含以下步骤:培养温度为24±2℃,光照强度为3000-4000lux,单日光照时间为12h。
本发明的有益效果在于:
(1)本发明地不容组培繁殖方法,外植体的采集时间为3月至11月,可采集周期长,经采集后可继续生长,到收获季节亦可同其他未采集的植株同时收获且不影响产量及品质;
(2)本发明所述的一种地不容组培繁殖方法,组分简单,操作简便,成本低廉,繁育过程不受地域及季节限制;
(3)本发明所述的一种地不容组培繁殖方法,增殖系和生根率显著优于现有技术。培养周期短,比现有技术繁殖速度更快,生产成本更低。一株植株一年可采集30-40个带芽茎段,经初代诱导,增殖与生根培养,约7-8个月,即可获得生根苗约150万株。
(4)本发明所述的一种地不容组培繁殖方法,属于用体细胞繁殖的无性繁殖范畴,能最大程度的保持亲本性状,相比传统的种子繁殖存在杂交变异的情况,更有利于药材优良性状的保存。
具体实施方式
下面结合实施例对本发明进一步的说明,但本发明并不局限于此。
实施例1
(1)将健壮无茎叶块根栽植于室内,待新茎叶发出后,每隔4天用75%多菌灵800倍液喷施2次,选取幼嫩带芽茎段;
(2)将选取的外植体剪成带芽小段后用饱和肥皂水溶液涮洗10min,自来水涮洗3-4次至无肥皂水残留,自来水冲淋60-70min;
(3)将洗净的外植体转移至超净工作台上,用75%酒精消毒10s,无菌水涮洗2-3次,饱和漂白粉溶液消毒20min,无菌水涮洗3-4次,0.05%升汞溶液+2-3滴吐温-80消毒10min,无菌水涮洗6-8次;
(4)将消毒好的外植体,用无菌滤纸吸去表面水分,并去掉两端剪成0.5-1.0cm带芽茎段,按极性斜插于MS+TIBA 2.0mg/L+KT2.0mg/L+活性炭0.2g/L的诱导培养基上,在温度为24-30℃,光照强度为1000lux,前15天在单日光照时间6h的条件下培养,15天后在单日光照时间12h的条件下培养35天。记录诱导情况。
(5)将诱导出的丛生芽剪成单芽,按极性斜插于MS+TIBA3.0mg/L+KT 2.0mg/L+硝酸银1.0μg/L+活性炭0.2g/L的增殖培养基上,在温度为24℃,光照强度为1000lux,单日光照时间为12h的条件下培养40天。记录增殖情况。
(6)将增殖的丛生芽,按极性直立插于在1/2MS+NAA 1.0mg/L+IBA 1.0mg/L+多效唑0.05mg/L+活性炭0.5g/L的生根培养基上,在温度为24℃,光照强度为3000lux,单日光照时间为12h的环境下培养34天,记录生根情况。
实施例2
(1)将健壮无茎叶块根栽植于室内,待新茎叶发出后,每隔5天用75%多菌灵800倍液喷施3次,选取幼嫩带芽茎段;
(2)将选取的外植体剪成带芽小段后用饱和肥皂水溶液涮洗10min,自来水涮洗3-4次至无肥皂水残留,自来水冲淋60min;
(3)将洗净的外植体转移至超净工作台上,用75%酒精消毒10s,无菌水涮洗2-3次,饱和漂白粉溶液消毒20min,无菌水涮洗3-4次,0.05%升汞溶液+2-3滴吐温-80消毒15min,无菌水涮洗6-8次;
(4)将消毒好的外植体,用无菌滤纸吸去表面水分,并去掉两端剪成0.5-1.0cm带芽茎段,按极性斜插于MS+NAA 0.05mg/L+TIBA3.0mg/L+KT 4.0mg/L+活性炭0.5g/L的诱导培养基上,在温度为30℃,光照强度为2000lux,前15天在单日光照时间6h的条件下培养,15天后在单日光照时间12h的条件下培养31天。记录诱导情况。
(5)将诱导出的丛生芽剪成单芽,按极性斜插于MS+IBA0.1mg/L+TIBA 4.0mg/L+KT4.0mg/L+硝酸银5.0μg/L+活性炭0.5g/L的增殖培养基上,在温度为30℃,光照强度为2000lux,单日光照时间为12h的条件下培养38天。记录增殖情况。
(6)将增殖的丛生芽按极性直立插于在1/2MS+NAA 2.0mg/L+IBA 2.0mg/L+多效唑0.01mg/L+活性炭1.0g/L的生根培养基上,在温度为26℃,光照强度为4000lux,单日光照时间为12h的环境下培养30天。记录生根情况。
对比例1按实施例1的步骤进行,不同点在于步骤(4)中的诱导培养基、步骤(5)中的增殖培养基、步骤(6)中的生根培养基不同,具体如下:
对比例1:
步骤(4)中的诱导培养基为:MS+NAA 0.1mg/L+BA 1mg/L;
步骤(5)中的增殖培养基为:MS+IBA 0.4mg/L+NAA 0.2mg/L+GA 0.5mg/L;
步骤(6)中的生根培养基为:1/2MS+IBA0.8mg/L。
对实施例1-2、对比例1各项数据进行统计分析,结果见下表。
类目 |
丛生芽诱导率 |
增值系数 |
生根率 |
实施例1 |
83.1% |
12.8 |
98.3% |
实施例2 |
83.7% |
13.1 |
98.9% |
对比例1 |
56.2% |
6.3 |
72.7% |
由此可知,本发明的地不容组培繁殖方法,丛生芽诱导率、增值系数、生根率均优于现有技术,可见本发明的组培繁殖方法具有大规模应用的价值。