CN108373488B - 梓醇6-咖啡酸酯衍生物及其制备方法与应用 - Google Patents

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Abstract

本发明提供了具有正丁氧基的梓醇6‑咖啡酸酯衍生物,如式1、2或3所示;其制备方法为:将原料梓醇6‑咖啡酸酯溶于正丁醇中,升温至60~100℃反应1~3h,之后反应液减压浓缩,所得浓缩物进行柱色谱分离,得到式1、2、3所示的化合物;所述具有正丁氧基的梓醇6‑咖啡酸酯衍生物可应用于制备抗肿瘤药物,且较原形化合物梓醇6‑咖啡酸酯具有较好的肿瘤抑制活性,同时本发明化合物的制备方法简便易行,可用于后续的继续开发;

Description

梓醇6-咖啡酸酯衍生物及其制备方法与应用
(一)技术领域
本发明涉及具有正丁氧基的梓醇6-咖啡酸酯衍生物及其制备方法与应用。
(二)背景技术
梓醇6-咖啡酸酯广泛存在于天然植物和食物中,具有抗氧化、抗炎、抑制溃疡、抗肿瘤等广泛的药理活性。但是到目前为止,对其深入研究还较少。
Figure GDA0002500361580000011
本发明所涉及的具有正丁氧基的梓醇6-咖啡酸酯衍生物及其制备方法与应用,迄今在国内外尚未见相关专利或文献报道。
(三)发明内容
本发明的目的是提供具有正丁氧基的梓醇6-咖啡酸酯衍生物及其制备方法与应用。
本发明的技术方案如下:
具有正丁氧基的梓醇6-咖啡酸酯衍生物,如式1、2或3所示:
Figure GDA0002500361580000012
本发明还提供了式1、2、3所示的具有正丁氧基的梓醇6-咖啡酸酯衍生物的制备方法,包括如下步骤:
将原料梓醇6-咖啡酸酯溶于正丁醇中,升温至60~100℃反应1~3h,之后反应液减压浓缩,所得浓缩物进行柱色谱分离,得到式1、2、3所示的化合物;
所述正丁醇的体积用量以原料梓醇6-咖啡酸酯的物质的量计为25~50mL/mmol;
所述柱色谱分离采用反相硅胶柱,以C18为填料,体积分数10%~100%的甲醇水溶液为洗脱剂进行梯度洗脱,TLC监测,收集含目标化合物的洗脱液,蒸除溶剂并干燥,得到目标产物。
进一步,所述梯度洗脱的洗脱剂可依次为:体积分数10%的甲醇水溶液、体积分数40%的甲醇水溶液、体积分数60%的甲醇水溶液、100%甲醇;
进一步,所述式1、2、3所示的化合物TLC监测的条件分别为:
式1所示化合物以氯仿:甲醇(体积比3:1)为展开剂,Rf值为0.3;
式2所示化合物以氯仿:甲醇(体积比3:1)为展开剂,Rf值为0.4;
式3所示化合物以氯仿:甲醇(体积比3:1)为展开剂,Rf值为0.65。
本发明所述式1、2、3所示的具有正丁氧基的梓醇6-咖啡酸酯衍生物可应用于制备抗肿瘤药物。
本发明的有益效果在于:通过本发明获得的新化合物,较原形化合物梓醇6-咖啡酸酯具有较好的肿瘤抑制活性,同时本发明化合物的制备方法简便易行,可用于后续的继续开发。
(四)附图说明
图1:式(1)化合物的高分辨ESI质谱;
图2:式(1)化合物的氢谱;
图3:式(1)化合物的碳谱;
图4:式(1)化合物的HSQC谱;
图5:式(1)化合物的HMBC谱;
图6:式(1)化合物的ROESY谱;
图7:式(2)化合物的高分辨ESI质谱;
图8:式(2)化合物的氢谱;
图9:式(2)化合物的碳谱;
图10:式(2)化合物的HSQC谱;
图11:式(2)化合物的HMBC谱;
图12:式(2)化合物的ROESY谱;
图13:式(3)化合物的高分辨ESI质谱;
图14:式(3)化合物的氢谱;
图15:式(3)化合物的碳谱;
图16:式(3)化合物的HSQC谱;
图17:式(3)化合物的HMBC谱;
图18:式(3)化合物的ROESY谱。
(五)具体实施方式:
下面通过具体实施例对本发明作进一步说明,但本发明的保护范围并不仅限于此。
实施例1:
将梓醇6-咖啡酸酯(104.8mg,0.2mmol)溶解于正丁醇(6ml)中,于65℃反应1.5h,反应结束后,将反应液减压旋干,用反相硅胶柱进行分离,洗脱剂为甲醇体积含量10%-100%的甲醇-水混合溶剂,收集含目标化合物的洗脱液,减压旋干得到浅黄色油状物,产物质量分别为:化合物1—55.9mg,化合物2—23.3mg,化合物3—4.7mg。
所得化合物经过系统结构鉴定,结果如下:
主要利用包括高分辨质谱、核磁共振谱(1H NMR、13C NMR、2D NMR)。
化合物1为浅黄色油状物,HRESIMS(图1)给出准分子离子峰m/z:597.2178[M-H]-,确定化合物分子式为C28H38O14
1H NMR(CD3OD,600MHz)谱(图2)给出2个反式烯氢质子信号δH 6.31(1H,d,J=15.6Hz)、δH 7.60(1H,d,J=15.6Hz),一组苯环上的ABX偶和系统质子信号δH 6.79(1H,d,J=7.8Hz)、δH 6.97(1H,dd,J=1.8,7.8Hz)、δH 7.07(1H,d,J=1.8Hz),3个半缩醛质子信号δH 4.75(1H,d,J=7.8Hz)、δH 4.80(1H,dd,J=2.4,9.0Hz)、δH 5.18(1H,d,J=7.8Hz),6个亚甲基质子信号δH 3.88(1H,m)、δH 3.52(1H,m)、δH 1.57(2H,m)、δH 1.38(2H,m),3个甲基质子信号δH 0.93(3H,t,J=7.2Hz)。
13C NMR(CD3OD,150MHz)谱、DEPT谱结合HSQC谱(图4、5、6)给出28个碳信号,包括1个羰基碳信号,3个sp2杂化季碳信号,5个sp2杂化次甲基信号,1个sp3杂化季碳信号,6个sp3杂化亚甲基碳信号,11个sp3杂化次甲基碳信号,1个甲基碳信号。(表1)
通过以上分析,并与原料梓醇6-咖啡酸酯的数据对照发现C-3和C-4之间的双键消失,并多出了一个正丁氧基信号。通过HMBC谱中,δH 3.88(H-1″′a)、3.52(H-1″′b)和δC 99.2(C-3)具有相关信号表明正丁氧基连在C-3位。
通过上述解析,最终确定化合物结构式如式1所示。
化合物2为浅黄色油状物,HRESIMS(图8)给出准分子离子峰m/z:597.2177[M-H]-,确定化合物分子式为C28H38O14。该化合物1H和13C数据与化合物1非常相似,同时在ROESY谱中具有H-1和H-6、H2-10、H-1”'a的相关信号,结合H-1和H-9的偶合常数(9.0Hz),最终确定化合物结构式如式2所示。
化合物3为浅黄色油状物,HRESIMS(图8)给出准分子离子峰m/z:597.2176[M-H]-,确定化合物分子式为C28H38O14。除了C-7'和C-8'的双键信号消失,该化合物1H和13C数据与梓醇6-咖啡酸酯非常相似。结合HMBC谱中δH 4.58(H-7″)与δC 172.8(C-9″)、119.5(C-6″)、114.7(C-2″)、69.6(C-1″′)、44.7(C-8″)具有相关信号,表明正丁氧基连在C-7″位。最终确定化合物结构式如式3所示。
表1梓醇6-咖啡酸酯和化合物1、2、3的1H、13C NMR数据a,b
Figure GDA0002500361580000031
Figure GDA0002500361580000041
Figure GDA0002500361580000051
aδ为化学位移,其单位为ppm,偶合常数的单位为Hz.
b该测试是在600MHZ核磁共振波谱仪上进行,氘代试剂为CD3OD.
实施例2:
将梓醇6-咖啡酸酯(104.8mg,0.2mmol)溶解于正丁醇(8.5ml)中,于85℃反应2h,反应结束后,将反应液减压旋干,用反相硅胶柱进行分离,洗脱剂为甲醇体积含量10%-100%的甲醇-水混合溶剂,收集含目标化合物的洗脱液,减压旋干得到浅黄色油状物,产物质量分别为:化合物1—59.4mg,化合物2—24.7mg,化合物3—5.0mg。
所得化合物经过薄层鉴别和核磁共振谱(1H NMR)数据最终确定结构。
实施例3:
将梓醇6-咖啡酸酯(104.8mg,0.2mmol)溶解于正丁醇(10ml)中,于100℃反应3h,反应结束后,将反应液减压旋干,用反相硅胶柱进行分离,洗脱剂为甲醇体积含量10%-100%的甲醇-水混合溶剂,收集含目标化合物的洗脱液,减压旋干得到浅黄色油状物,产物质量分别为:化合物1—63.6mg,化合物2—26.5mg,化合物3—5.3mg。
所得化合物经过薄层鉴别和核磁共振谱(1H NMR)数据最终确定结构。
实施例4:
式(1)化合物在体外对HepG2细胞的抑制作用,将HepG2细胞培养在96孔板中(1.00×105个细胞/孔,200.00μL培养基)。孵化24小时后,一系列浓度(0.00、6.25、12.50、25.00、50.00、100.00、200.00μg/mL)的化合物1添加到孔板中并继续孵化24.00h,梓醇6-咖啡酸酯用来作为一个阳性对照。每孔加入20.00μL MTT(5.00mg/mL,即0.50%MTT),继续培养4.00h,将含有MTT的培养基移除。活细胞中生成的甲瓒晶体溶解于150.00μL DMSO溶液中,低速振荡10.00min,在490nm条件下对各样品进行测定。
通过MTT法测定并计算出各化合物的IC50值,结果如表所示:
Figure GDA0002500361580000061
体外实验结果表明式(1)化合物较梓醇6-咖啡酸酯在体外对HepG2细胞有较好生长抑制作用。
实施例5:
式(2)化合物在体外对HepG2细胞的抑制作用,将HepG2细胞培养在96孔板中(1.00×105个细胞/孔,200.00μL培养基)。孵化24小时后,一系列浓度(0.00、6.25、12.50、25.00、50.00、100.00、200.00μg/mL)的化合物1添加到孔板中并继续孵化24.00h,梓醇6-咖啡酸酯用来作为一个阳性对照。每孔加入20.00μL MTT(5.00mg/mL,即0.50%MTT),继续培养4.00h,将含有MTT的培养基移除。活细胞中生成的甲瓒晶体溶解于150.00μL DMSO溶液中,低速振荡10.00min,在490nm条件下对各样品进行测定。
通过MTT法测定并计算出化合物的IC50值,结果如表所示:
Figure GDA0002500361580000062
体外实验结果表明式(2)化合物较梓醇6-咖啡酸酯在体外对HepG2细胞有较好生长抑制作用。
实施例6:
式(3)化合物在体外对HepG2细胞的抑制作用,将HepG2细胞培养在96孔板中(1.00×105个细胞/孔,200.00μL培养基)。孵化24小时后,一系列浓度(0.00、6.25、12.50、25.00、50.00、100.00、200.00μg/mL)的化合物1添加到孔板中并继续孵化24.00h,梓醇6-咖啡酸酯用来作为一个阳性对照。每孔加入20.00μL MTT(5.00mg/mL,即0.50%MTT),继续培养4.00h,将含有MTT的培养基移除。活细胞中生成的甲瓒晶体溶解于150.00μL DMSO溶液中,低速振荡10.00min,在490nm条件下对各样品进行测定。
通过MTT法测定并计算出化合物的IC50值,结果如表所示:
Figure GDA0002500361580000071
体外实验结果表明式(3)化合物较梓醇6-咖啡酸酯在体外对HepG2细胞有较好生长抑制作用。

Claims (6)

1.具有正丁氧基的梓醇6-咖啡酸酯衍生物,其特征在于,如式1、2或3所示:
Figure FDA0002500361570000011
2.如权利要求1所述式1、2、3所示的具有正丁氧基的梓醇6-咖啡酸酯衍生物的制备方法,其特征在于,所述制备方法包括如下步骤:
将原料梓醇6-咖啡酸酯溶于正丁醇中,升温至60~100℃反应1~3h,之后反应液减压浓缩,所得浓缩物进行柱色谱分离,得到式1、2、3所示的化合物;
所述正丁醇的体积用量以原料梓醇6-咖啡酸酯的物质的量计为25~50mL/mmol。
3.如权利要求2所述的制备方法,其特征在于,所述柱色谱分离采用反相硅胶柱,以C18为填料,体积分数10%~100%的甲醇水溶液为洗脱剂进行梯度洗脱,TLC监测,收集含目标化合物的洗脱液,蒸除溶剂并干燥,得到目标产物。
4.如权利要求3所述的制备方法,其特征在于,所述梯度洗脱的洗脱剂依次为:体积分数10%的甲醇水溶液、体积分数40%的甲醇水溶液、体积分数60%的甲醇水溶液、100%甲醇。
5.如权利要求3所述的制备方法,其特征在于,所述TLC监测的条件分别为:
式1所示化合物以氯仿:甲醇体积比3:1的混合液为展开剂,Rf值为0.3;
式2所示化合物以氯仿:甲醇体积比3:1的混合液为展开剂,Rf值为0.4;
式3所示化合物以氯仿:甲醇体积比3:1的混合液为展开剂,Rf值为0.65。
6.如权利要求1所述式1、2、3所示的具有正丁氧基的梓醇6-咖啡酸酯衍生物在制备抗肿瘤药物中的应用。
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