CN106434371B - 一株拟盘多毛孢属真菌及其用于艳山姜叶病害的鉴定方法 - Google Patents
一株拟盘多毛孢属真菌及其用于艳山姜叶病害的鉴定方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN106434371B CN106434371B CN201610859193.5A CN201610859193A CN106434371B CN 106434371 B CN106434371 B CN 106434371B CN 201610859193 A CN201610859193 A CN 201610859193A CN 106434371 B CN106434371 B CN 106434371B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- shellflower
- pestalotia
- fungi
- quasi
- disease
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/14—Fungi; Culture media therefor
- C12N1/145—Fungal isolates
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
- C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
- C12R2001/645—Fungi ; Processes using fungi
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/02—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
- C12Q1/04—Determining presence or kind of microorganism; Use of selective media for testing antibiotics or bacteriocides; Compositions containing a chemical indicator therefor
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6876—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
- C12Q1/6888—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms
- C12Q1/6895—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms for plants, fungi or algae
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Mycology (AREA)
- Immunology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Botany (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Toxicology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
- Virology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
Abstract
本发明提供公开了一株拟盘多毛孢属真菌及其用于艳山姜叶病害的鉴定方法,其特征在于该菌株的名称为拟盘多毛孢属真菌Neopestalotiopsis zerumbet,已保藏于“中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心”,保藏号保藏号12776。鉴定方法包括以下措施:(1)病株采集:(2)病原菌分离纯化:(3)病原菌回接实验:(4)形态学鉴定:(5)DNA提取:(6)PCR扩增:(7)测DNA序列:(8)结果分析。本发明更进一步公开了拟盘多毛孢属真菌作为对照品在用于鉴定艳山姜叶病害方面的应用。
Description
本发明得到贵州省中药现代化科技产业研究开化专项(黔科合中药字【2012】5001-5号的资助。
技术领域
本发明涉及微生物菌株及用于中药材鉴定技术领域,具体涉及一株拟盘多毛孢属真菌及其用于艳山姜叶病害的鉴定方法。
背景技术
艳山姜为姜科山姜属植物,其干燥果实艳山姜,又称土砂仁,大草蔻,具有温中燥湿,行气止痛,截疟,驱风,健胃,化瘀的功效,作为贵州民族药被广泛用于治疗心腹冷痛,胸腹胀满,消化不良,呕吐腹泻等症状,收录于《贵州省中药材、民族药材质量标准》(2003版)。现代研究表明,艳山姜药用有效成分为其挥发油,具有广泛的抗炎、镇痛及防治心血管系统疾病等多方面的生物活性。
艳山姜喜高温多湿环境,不耐寒,一般只能耐22-28℃左右的温度,不得低于5℃,怕霜雪,喜阳光又耐阴,宜在肥沃而保湿性好的土壤中生长自然分布于海拔400-650 m,我国中高海拔西南地区亦有分布。艳山姜具有温中燥湿,行气止痛,截疟,驱风,健胃,化瘀的功效,作为贵州民族药被广泛用于治疗心腹冷痛,胸腹胀满,消化不良,呕吐腹泻等症状,收录于《贵州省中药材、民族药材质量标准》。现代研究表明,艳山姜药用有效成分为其挥发油,具有广泛的抗炎、镇痛及防治心血管系统疾病等多方面的生物活性。艳山姜不同部位所含挥发油含量不一,种子团含挥发油较多,果皮最少,不同挥发油成分具有相应药理作用,其研究尚未完善,药理作用的研究对艳山姜的合理开发应用具有重要意义艳山姜是极具药用价值,食用价值,观赏价值和经济价值的一种植物,产量可达每亩1000公斤以上。近年来市场需求量不断增加,价格节节上升。
笔者在贵州省兴义市贞丰县连环乡对艳山姜病害调查研究发现,一种真菌病害主要危害艳山姜的茎叶和果实,叶片染病出呈现圆形或椭圆形褐色,中间为灰白色或暗白色,有些甚至穿孔,病健交界极为明显,后期病斑出现轮状黑色小颗粒,染病艳山姜果实由青转黄并逐渐枯萎掉落,影响了艳山姜果实的产量。查阅资料,并无相关艳山姜病害的报道,本次是首次对艳山姜叶部病害的报道。
发明内容
本发明人2015-2016年在贵州省兴义市贞丰县连环乡艳山姜种植基地发现艳山姜出现一种疑似艳山姜炭疽病的病害,这种病害导致艳山姜果实产量下降。病情严重的叶片可形成大面积病斑,后期病斑穿孔,叶片枯萎掉落,最终干萎掉落。通过对艳山姜病株进行筛选,挑选出典型病株,培养病害组织,提取病原菌,然后用健康艳山姜叶片组织进行回接试验,对病菌分离纯化鉴定,判断病原菌为拟盘多毛孢属真菌,该菌首次在艳山姜病害中报道。
本发明的发明目的在于:寻找出导致艳山姜出现病害的病因,并寻找到一株艳山姜致病菌株。名称为拟盘多毛孢属真菌,分类命名为Neopestalotiopsis zerumbet,其形态学特征为:菌落毡状,白色,边缘规整,后期正面有黑色点分生孢子团,反面从中心向外缘零星变黑。分生孢子由5个细胞组成,成纺锤状、直状或稍微弯曲, 21.5.0-26.5× 6.0-7.5 μm,5个细胞由3个有色细胞和两个无色细胞组成,4个隔膜均为真隔膜,中间为3个褐色细胞,13.0-16.0 μm,两端为两个无色细胞,顶部无色胞为三角锥形,着生1根无色附着丝,底部无色孢为三角锥形,着生3-4根无色附着丝。
本发明另一个目的在于公开了一种用于艳山姜叶病害的鉴定方法。
本发明的第三个目的是提供了该菌株拟盘多毛孢属真菌作为对照品,在用于鉴定艳山姜叶病害方面的应用。
本发明的技术方案概述如下:
本发明所提供的艳山姜致病菌株,其特征在于该菌株的名称为拟盘多毛孢属真菌Neopestalotiopsis zerumbet,已保藏于“中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心”,保藏号CGMCC 12776。于2016年7月14日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(China General Microbiological Cultuer Collection Centre)进行保藏,保藏地址:北京市朝阳区北辰西路1号院3号,中国科学院微生物研究所,邮政编码:100101。
(1)该菌株已从艳山姜病株中分离纯化得到,经基因测序,属于Neopestalotiopsis zerumbet。该菌无性态是拟盘多毛孢属真菌,生物学特性为25℃生长最好,适宜PDA培养,菌落毡状,白色,边缘规整,后期正面有黑色点分生孢子团,反面从中心向外缘零星变黑。分生孢子由5个细胞组成,成纺锤状、直状或稍微弯曲, 21.5.0-26.5×6.0-7.5 μm,5个细胞由3个有色细胞和两个无色细胞组成,4个隔膜均为真隔膜,中间为3个褐色细胞,13.0-16.0 μm,两端为两个无色细胞,顶部无色胞为三角锥形,着生1根无色附着丝,底部无色孢为三角锥形,着生3-4根无色附着丝。
菌落形态如图1(h,i)。
叶片染病出呈现圆形或椭圆形褐色,中间为灰白色或暗白色,有些甚至穿孔,病健交界极为明显,后期病斑出现轮状黑色小颗粒,染病艳山姜果实由青转黄并逐渐枯萎掉落。采集当地艳山姜病株进行病菌分离纯化,形态和症状描述,并进行艳山姜叶片组织回接试验,对比回接病斑与标本病斑一致,确定病原为拟盘多毛孢属真菌。
本发明进一步公开了一种艳山姜叶部病害的鉴定方法,其特征在于按如下的步骤进行:
(1)病株采集:在贵州省兴义市连环乡艳山姜种植基地采集典型病株,并描述病株形态(菌落毡状,白色,边缘规整,后期正面有黑色点分生孢子团,反面从中心向外缘零星变黑。分生孢子由5个细胞组成,成纺锤状、直状或稍微弯曲, 21.5.0-26.5× 6.0-7.5 μm,5个细胞由3个有色细胞和两个无色细胞组成,4个隔膜均为真隔膜,中间为3个褐色细胞,13.0-16.0 μm,两端为两个无色细胞,顶部无色胞为三角锥形,着生1根无色附着丝,底部无色孢为三角锥形,着生3-4根无色附着丝)。
(2) 病原菌分离纯化:将病变部位接种到培养基中,通过多次接种分离得到病原菌菌株;
(3)病原菌回接实验:选取健康的艳山姜叶片组织,将分离菌株接种到健康艳山姜叶片组织上,放入培养皿中用滤纸加无菌水保湿培养,之后将接种叶片与采集的病害叶片病症进行对比,筛选出致病菌,形态学鉴定:将筛选出的病原菌进行培养,待菌落产孢,挑取菌落边缘菌丝,于显微镜下观察病原菌形态特征;
(5) DNA提取:根据DNA提取试剂盒的步骤提取病原菌DNA,设立两组实验a和b;其中a指的是BIOMIGA Fungus Genomic DNA Extraction Kit (GD2416)试剂盒提取;b指的是CTAB法;
(6) PCR扩增:将提取的DNA进行PCR扩增,用凝胶成像系统显色,之后将DNA测序;测序结果见SEQ ID No.1.
(7) 测DNA序列:测序之后,构建系统发育树,判断病原菌种属为拟盘多毛孢属真菌。
本发明更进一步公开拟盘多毛孢属真菌作为对照品在用于鉴定艳山姜叶病害方面的应用。实验结果显示:拟盘多毛孢属真菌Neopestalotiopsis zerumbet是一种艳山姜叶部病害的致病菌,可以通过形态学方法进行鉴定,对该菌的鉴定以试剂盒提取方法效果较好。通过ITS 基因序列可以对该病原菌进行鉴定。
附图说明:
图1为菌落形态图;
其中a :田间病叶症状;b,c:回接结果;d-g:病原菌分生孢子形态;h,i:病原菌菌落形态;
图2为基于ITS基因的Mp系统发育树。
具体实施方式:
下面结合实施例说明本发明,这里所述实施例的方案,不限制本发明,本领域的专业人员按照本发明的精神可以对其进行改进和变化,所述的这些改进和变化都应视为在本发明的范围内,本发明的范围和实质由权利要求来限定;其中所用试剂均有市售;
实施例1
1.情况介绍
近年来引入种植的艳山姜逐渐开始出现病害并逐渐加重,其中真菌病害是导致艳山姜果实产量下降,品质降低的主要因素之一。2015-2016年笔者在贵州省兴义市贞丰县连环乡对艳山姜病害调查研究发现,一种真菌病害主要危害艳山姜的茎叶和果实,叶片染病出呈现圆形或椭圆形褐色,中间为灰白色或暗白色,有些甚至穿孔,病健交界极为明显,后期病斑出现轮状黑色小颗粒,染病艳山姜果实由青转黄并逐渐枯萎掉落。采集当地艳山姜病株进行病菌分离纯化,形态和症状描述,并进行艳山姜叶片组织回接试验,对比回接病斑与标本病斑一致,确定病原为拟盘多毛孢属真菌。然后通过进行室内化学药剂筛选,以期筛选出能够有效抑制艳山姜病害的杀菌剂,有效控制艳山姜病害,从而减少作物损失,保障农民收入。室内药剂筛选试验结果表明, 25%咪鲜胺乳油和70%甲基托布津可湿性粉剂的抑制效果最好,EC50分别为0.1503μg/ml,0.8723μg/ml,250g/L嘧菌酯次之。故25%咪鲜胺乳油可作为防治艳山姜拟盘多毛孢叶斑病的最佳化学药剂。
2.材料与方法
2.1材料
2.1.1病原菌鉴定
供试培养基:马铃薯葡萄糖琼脂培养基:39g PDA,5g琼脂粉配制成1L,(PDA上海博微生物科技有限公司生产,琼脂粉为北京鼎国昌盛生物技术有限责任公司)
供试仪器:主要仪器有Nikon光学显微镜,Nikon图像分析系统,BIO-BRI PCR热循环仪,BIO-RAD 凝胶成像系统,Biometra高速冷冻离心机
供试试剂: PCR Master Mix, PBS缓冲液,引物为ITS1,ITS4
2.1.2药效实验
表1 供试化学药剂
2.2方法
2.2.1病原菌分离纯化
笔者于2015-2016年在贵州省兴义市贞丰县连环乡艳山姜种植基地对病害进行调查,同时进行症状描述,并采集典型病株,备用。
将采集的艳山姜病害处冲洗干净、晾干,在病健交界处剪取3-5mm×3-5mm山姜病害处的组织块,先用75%酒精消毒20s左右,然后用无菌水漂洗2-3次后用灭菌滤纸吸干,置于马铃薯葡萄糖琼脂培养基(PDA)中,每个培养皿接种2-4块,置于27℃下培养2-3天。待菌落生长过后,从第一次接种生长的菌落中挑选几株生长较好,杂菌污染小的菌落,从该菌落边缘挑取菌丝,置于平板PDA培养基中进行纯化培养,每个位置接种两块平板作为对照,27℃下培养3-4天,获得分离菌株,菌落形态观察,并制作玻片在显微镜下进行分生孢子形态观察。
2.2.2柯赫氏法则
运用柯赫氏法则进行验证。挑选健康的艳山姜叶片进行回接实验,截取健康的叶片组织清洗干净,晾干,用75%乙醇对叶片组织消毒,用无菌处理的针刺叶片,并将分离的生长的菌块菌丝面贴在叶片针刺处,放在无菌处理的吸水纸上,放入培养皿中,加入无菌水保湿27℃下培养6-7天,每片叶片组织接种4个位置,同时设置对照培养皿,随时注意观察发病情况。之后对比接种叶片组织病症与采集的经典病株对比,挑选出回接试验病症与病株一致的菌落,并将该菌落接种10个培养皿作为药效实验用菌。
2.2.3形态学鉴定
挑取分离纯化的单株菌落菌丝接种到PDA培养基中,培养3-4天,观察菌落性状菌落毡状,白色,边缘规整,后期正面有黑色点分生孢子团,反面从中心向外缘零星变黑。分生孢子由5个细胞组成,成纺锤状、直状或稍微弯曲, 21.5.0-26.5× 6.0-7.5 μm,5个细胞由3个有色细胞和两个无色细胞组成,4个隔膜均为真隔膜,中间为3个褐色细胞,13.0-16.0 μm,两端为两个无色细胞,顶部无色胞为三角锥形,着生1根无色附着丝,底部无色孢为三角锥形,着生3-4根无色附着丝。利用目镜测微尺测定孢子大小,用显微镜成像系统拍照。
2.2.4分子系统学鉴定(DNA提取,PCR扩增,系统发育树构建)
DNA提取:运用改良的Gene TLETM提取方法:将待测菌株置于PDA培养基中28℃振荡培养3-5天,取1ml培养液,用无菌去离子水洗涤后,收集菌丝体;加入SolutionⅠ540μL,振荡混匀后放置10min,加入SolutionⅡ60μL,在95℃金属浴中加热10min,再加入SolutionⅢ300μL,置于冰上两分钟;12000r/min、4℃离心5min,上清液移至新管,加入异丙醇600μL,12000r/min、4℃离心震荡5min,弃去上清液,加入体积分数70%冷乙醇200μL洗涤沉淀,12000r/min、4℃离心5min,沉淀为DNA,用离心浓缩干燥仪干燥DNA;将DNA溶于50μL无菌去离子水,-20℃保存备用。
PCR扩增 用BIO-BRI PCR热循环仪对DNA扩增,用BIO-RAD 凝胶成像系统显色,按《分子克隆试实验指南》相关步骤操作,进行菌落PCR鉴定,核苷酸序列进行测序,测序结果如下:
TCTTCTTATAGCTGCTGCCGGTGGACCATTAAACTCTTGTTATTTTATGTAATCTGAGCGTCTTATTTTAATAAGTCAAAACTTTCAACAACGGATCTCTTGGTTCTGGCATCGATGAAGAACGCAGCGAAATGCGATAAGTAATGTGAATTGCAGAATTCAGTGAATCATCGAATCTTTGAACGCACATTGCGCCCATTAGTATTCTAGTGGGCATGCCTGTTCGAGCGTCATTTCAACCCTTAAGCCTAGCTTAGTGTTGGGAATCTACTTCTTTTATTAGTTGTAGTTCCTGAAATACAACGGCGGATTTGTAGTATCCTCTGAGCGTAGTAATGTTTTTCTCGCTTTTGTTAGGTGCTATAACTCCCAGCCGCTAAACCCCCAATTTTTTGTGGTTGACCTCGGATCAGGTAGGAATACCCGCTGAACTTAAGCAT
系统发育树构建。将测得的序列与用Blastn软件从GenBank搜索到的相关序列,CLUSTALW软件对位排列后再手工校正。系统发育分析采用PAUP4.0版beta10中的简约法进行最大简约性分析,对于由序列长度多态性所造成的空位,在运算处理中为缺失状态。利用bootstrap(1000次重复)检验各分支的置信度。
药效实验
药剂对菌丝的抑制效果测定,采用含药平板法:
第1步:将上述7种药剂分别配制成含有有效成分1.25、2.50、5.00、10.00、20.00、40.00 μg/ml 6种质量浓度(1)80%多菌灵:取1.250 g多菌灵(80%)稀释10000倍配制成100μg/ml浓液,依次取0.125 ml、0.250 ml、0.50 ml、1.000 ml、2.000 ml、4.000 ml配制成10ml浓液即得;同(2)75%百菌清:取1.333 g百菌清(75%)稀释10000倍配制成100 μg/ml浓液;70%甲基托布津取1.42857 g稀释10000倍配制成100 μg/ml浓液;80%代森锰锌取1.250g稀释10000倍配制成100 μg/ml浓液;57.6%冠菌清取1.736g稀释10000倍配制成100 μg/ml浓液;250 g/L嘧菌酯:取40 μl配制成100 ml则浓度为100 μg/ml;25%咪鲜胺:取0.040 g配制成100 ml即的100 μg/ml浓液。同上法依次配制成系列浓度。
第2步:在无菌操作台中,用灭菌过液枪枪头和10 ml量筒,在培养皿中加入1 ml配好的药剂,外加已灭菌并降温的PDA培养基9 ml,混匀,配成共10 ml的培养基,以加入1 ml无菌水和9 ml灭菌PDA培养基的平板作为空白对照。
第3步:待培养皿混匀冷凝后,在分离纯化培养好的病原菌菌落沿边缘用灭菌过的0.5 cm打孔器取直径0.5c m的菌块,接种到含有药剂和对照组分的培养皿中央,每个培养皿放一块菌块,并且每种药剂的各个浓度设立3个重复试验。将接种好的培养皿放在27℃恒温培养箱中培养5d后采用十字交叉发测量生长菌落直径,并计算抑制率[10]。
抑制率=(对照菌落直径—处理菌落直径)/对照菌落直径×100%
测得的数据以浓度取自然对数e的对数为横坐标(X),以抑制率对应的几率值作为纵坐标(Y),应用统计学方法,拟合出试验浓度对数-抑制率百分率几率值的回归方程和相关系数R等相关数据。并且以抑制率为50%时对应的机率值代入毒力方程求出X,再转化成抑菌中浓度EC50的值,EC50越小,说明该药剂对菌丝的抑制作用越好,最后用EC50值来衡量化学药剂对病原菌菌丝毒力的大小。
结果
3. 1病原菌分离纯化及病斑描述
第一次接种,从病株上截取的病健交界处3-5mm×3-5mm大小病害组织接种到PDA培养基中,菌落长出絮状菌丝,呈白色绒毛状,在后期生长中出现黑色分生孢子盘,生长迅速,长满整个培养皿。有些培养皿中菌落出现绿色,黑色和淡黄色菌落(如图1)。第2次接种的菌落杂菌肉眼几乎无法看到,生长初期菌落为纯白色绒毛状,出现黑色小颗粒,背面为橘黄色(如图2),共获得纯菌株6株。
病斑描述:病斑椭圆形到不规则形,生于植株叶片上表面,初期斑点小,圆,为浅红色,后期病斑扩大,病斑中央叶肉减少,显示出明显的叶脉,中央变白,边缘仍保留浅红色。
3. 2致病性测定
挑取典型纯化后的菌株,针刺接种到健康的艳山姜叶片组织6-7d后,接种部位出现轮状病斑,并出现黑色孢子盘,与病株上的病斑一致。将回接的菌落挑取上次接种位置的菌丝重新接种到新的培养基中,共10个组分,生长出来的菌落正面为白色绒毛状,有大量黑色分生孢子盘,反面呈橘黄色。
3. 3形态学鉴定
在显微镜下观察分生孢子盘和形态,观察发现,分生孢子由5个细胞组成,成纺锤状、直状或稍微弯曲,18.0-24.0×5.0-8.0 μm,5个细胞由3个有色细胞和两个无色细胞组成,4个隔膜均为真隔膜,中间为3个褐色细胞,14.0-20.0 μm两端为两个无色细胞,16.0-22.0 μm 顶部无色胞为三角锥形,着生一根无色附着丝,底部无色孢为三角锥形,着生2-4根无色附着丝。
分子系统学鉴定
系统发育树构建根据系统发育结果显示本实验菌株YSJ与Neopestalotiopsis(Pestalotiopsis)聚为一支,同时形成单独分分支,我们将其定义为新种,命名为Neopestalotiopsis zerumbet Xu Zhang, Qingde Long & Q. R. Li。
讨论
目前,关于艳山姜的研究还处在发展阶段,尤其是艳山姜病害的研究在国内还是很少。本次试验对导致艳山姜出现病害的病原菌分离纯化,回接试验,再对病原菌进行形态学和分子系统学鉴定,最终确定病原菌为拟盘多毛孢菌,之后进行化学药剂对病原菌毒力筛选试验,以期能找到有效防治艳山姜拟盘多毛孢叶斑病的化学药剂。
病原菌鉴定结果,艳山姜致病菌为拟盘多毛孢属真菌Neopestalotiopsis zerumbet, 已保藏于“中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心”,保藏号CGMCC12776。
实施例2
方法:
1、贵州省贞丰县采集多种艳山姜病叶,通过病健组织培养获得疑似病原菌,具体方法:将采集的艳山姜病害处冲洗干净、晾干,在病健交界处剪取3-5mm×3-5mm山姜病害处的组织块,先用75%酒精消毒20s左右,然后用无菌水漂洗2-3次后用灭菌滤纸吸干,置于马铃薯葡萄糖琼脂培养基(PDA)中,每个培养皿接种2-4块,置于27℃下培养2-3天。待菌落生长过后,从第一次接种生长的菌落中挑选几株生长较好,杂菌污染小的菌落,从该菌落边缘挑取菌丝,置于平板PDA培养基中进行纯化培养,每个位置接种两块平板作为对照,27℃下培养3-4天,获得分离菌株,菌落形态观察,并制作玻片在显微镜下进行分生孢子形态观察。
2、形态学鉴定
挑取分离纯化的单株菌落菌丝接种到PDA培养基中,培养3-4天,观察菌落性底形态,并挑取分生孢子观察,利用目镜测微尺测定孢子大小。
2.2.4分子系统学鉴定(DNA提取,PCR扩增,系统发育树构建)
DNA提取:运用改良的Gene TLETM提取方法:将待测菌株置于PDA培养基中28℃振荡培养3-5天,取1ml培养液,用无菌去离子水洗涤后,收集菌丝体;加入SolutionⅠ540μL,振荡混匀后放置10min,加入SolutionⅡ60μL,在95℃金属浴中加热10min,再加入SolutionⅢ300μL,置于冰上两分钟;12000r/min、4℃离心5min,上清液移至新管,加入异丙醇600μL,12000r/min、4℃离心震荡5min,弃去上清液,加入体积分数70%冷乙醇200μL洗涤沉淀,12000r/min、4℃离心5min,沉淀为DNA,用离心浓缩干燥仪干燥DNA;将DNA溶于50μL无菌去离子水,-20℃保存备用。
PCR扩增 用BIO-BRI PCR热循环仪对DNA扩增,用BIO-RAD 凝胶成像系统显色,按《分子克隆试实验指南》相关步骤操作,进行菌落PCR鉴定,测序,测序结果如下:
步骤:1、采集艳山姜病叶;2、组织分离获得疑似病原菌;3、病原菌菌落形态观察、分生孢子形态学观察、DNA提取、PCR基因扩增;4、形态学特征和分子序列特征与本专利Neopestalotiopsis zerumbet菌株比对;5、判断是否为本专利中的艳山姜叶部病害。
结果:获得的菌株中有一株与专利中的Neopestalotiopsis zerumbet菌落形态学、分生孢子形态、基因序列相同。
结论:认定分离到与Neopestalotiopsis zerumbet菌落形态学、分生孢子形态、基因序列相同的艳山姜叶部病害为本专利中提及的叶部病害。
SEQUENCE LISTING
<110> 贵州医科大学
<120> 一株拟盘多毛孢属真菌及其用于艳山姜叶病害的鉴定方法
<160> 1
<170> PatentIn version 3.5
<210> 1
<211> 440
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 1
tcttcttata gctgctgccg gtggaccatt aaactcttgt tattttatgt aatctgagcg 60
tcttatttta ataagtcaaa actttcaaca acggatctct tggttctggc atcgatgaag 120
aacgcagcga aatgcgataa gtaatgtgaa ttgcagaatt cagtgaatca tcgaatcttt 180
gaacgcacat tgcgcccatt agtattctag tgggcatgcc tgttcgagcg tcatttcaac 240
ccttaagcct agcttagtgt tgggaatcta cttcttttat tagttgtagt tcctgaaata 300
caacggcgga tttgtagtat cctctgagcg tagtaatgtt tttctcgctt ttgttaggtg 360
ctataactcc cagccgctaa acccccaatt ttttgtggtt gacctcggat caggtaggaa 420
tacccgctga acttaagcat 440
Claims (2)
1.一株艳山姜致病菌株,其特征在于该菌株的名称为拟盘多毛孢属真菌Neopestalotiopsis zerumbet,已保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏号为CGMCC No. 12776。
2.权利要求1所述艳山姜致病菌株作为对照品在用于鉴定艳山姜叶病害方面的应用。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201610859193.5A CN106434371B (zh) | 2016-09-29 | 2016-09-29 | 一株拟盘多毛孢属真菌及其用于艳山姜叶病害的鉴定方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201610859193.5A CN106434371B (zh) | 2016-09-29 | 2016-09-29 | 一株拟盘多毛孢属真菌及其用于艳山姜叶病害的鉴定方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN106434371A CN106434371A (zh) | 2017-02-22 |
CN106434371B true CN106434371B (zh) | 2019-06-21 |
Family
ID=58170993
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201610859193.5A Active CN106434371B (zh) | 2016-09-29 | 2016-09-29 | 一株拟盘多毛孢属真菌及其用于艳山姜叶病害的鉴定方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN106434371B (zh) |
Families Citing this family (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN113025502B (zh) * | 2021-04-22 | 2022-05-13 | 湖南科技大学 | 一种重金属抗性新拟盘多毛孢属微生物及其应用 |
CN114045223B (zh) * | 2021-11-23 | 2023-09-05 | 广西壮族自治区药用植物园 | 来源于黄花梨的拟盘多毛孢属菌株p6、繁育方法和用途 |
CN114600916B (zh) * | 2021-11-26 | 2023-11-03 | 湖北工程学院 | 水蓼精油在抑制Neopestalotiopsis rosae中的应用 |
CN115960724B (zh) * | 2022-08-02 | 2024-03-12 | 山西农业大学 | 一株棒孢新拟盘多毛孢真菌及其在草莓病害的鉴定中的应用 |
CN117535440A (zh) * | 2023-11-23 | 2024-02-09 | 湖北省农业科学院果树茶叶研究所 | 新拟盘多毛孢引起的柑橘叶枯病检测用引物及检测方法 |
-
2016
- 2016-09-29 CN CN201610859193.5A patent/CN106434371B/zh active Active
Non-Patent Citations (4)
Title |
---|
Fungal Endophytes of Alpinia officinarum Rhizomes:insights on diversity and variation across growth years,growth sites,and the inner active chemical concentration;Shubin Li等;《PLOS one》;20141223;第9卷(第12期);1-21 * |
Pestalotiopsis revisited;S.S.N.Maharachchikumbura等;《Studies in Mycology》;20141029;第79卷;121-186 * |
拟盘多毛孢属真菌的新种;陈育新等;《菌物系统》;20021231;第21卷(第3期);316-323 * |
栀子叶斑病及其病原的鉴定;黄学顺等;《华中农业大学学报》;20061231;第25卷(第1期);21-25 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN106434371A (zh) | 2017-02-22 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN106434371B (zh) | 一株拟盘多毛孢属真菌及其用于艳山姜叶病害的鉴定方法 | |
CN103756975B (zh) | 一种感染烟草的大豆花叶病毒的获得方法及其应用 | |
CN102839131B (zh) | 一株绿色木霉菌及其应用 | |
CN112899201A (zh) | 贝莱斯芽孢杆菌及其应用以及防治香蕉枯萎病的方法 | |
CN103937720B (zh) | 一株蜡状芽胞杆菌及其分泌的杀线虫蛋白 | |
CN105255742B (zh) | 一株拮抗四种镰孢属真菌的内生青霉菌及其应用 | |
CN106636301A (zh) | 一种防治艳山姜叶病害的化学药剂筛选方法 | |
CN110484478A (zh) | 一种枯草芽孢杆菌jz2-1-12及其应用 | |
CN105062898B (zh) | 一种在蚕蛹上产孢梗束的蝙蝠蛾拟青霉菌株及其培养方法 | |
CN110343621A (zh) | 一种棘孢木霉菌株及其应用 | |
Wan et al. | Leaf spot of Ligustrum japonicum caused by Diaporthe eres newly reported in China | |
CN112029665B (zh) | 橡胶树炭疽菌抗药性菌株HcgHNQZ1736及其在抗药性研究中的应用 | |
CN107893034B (zh) | 一种金针菇病原细菌的鉴定及抗病白色金针菇菌株的筛选方法 | |
CN111748603B (zh) | 一种玉米品种抗茎基腐病人工接种鉴定方法 | |
CN105713841B (zh) | 一种尖孢镰孢及其在苦荞麦种子萌发预处理上的应用 | |
CN106635839A (zh) | 一种从土壤中分离长喙壳菌的方法 | |
CN114214214B (zh) | 一株灵芝菌株及其杂交育种方法 | |
CN107211727B (zh) | 一种野生苇蘑人工培殖的方法及应用 | |
CN102382776B (zh) | 一株用于防治苏门白酒草的小孢茎点霉 | |
CN105462847A (zh) | 越南槐内生真菌trxy-46在防治三七根腐病中的应用 | |
CN101555456A (zh) | 一种空心苋生防镰刀菌 | |
CN105002111B (zh) | 一种防治黄瓜霜霉病的菌株tdjn1及其应用 | |
CN111187732B (zh) | 一种防治苦瓜枯萎病的生防菌株及其应用 | |
CN106222097A (zh) | 一种高丹草叶斑病病原菌的分离鉴定方法 | |
CN107488608B (zh) | 一株微白黄链霉菌z9及其在防治向日葵菌核病的应用 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
GR01 | Patent grant | ||
GR01 | Patent grant |