CN104974255A - 噻虫啉单克隆抗体的制备及elisa检测方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种噻虫啉单克隆抗体的制备,该制备方法包括合成噻虫啉半抗原,将噻虫啉半抗原与牛血清蛋白偶联制备免疫抗原免疫BALB/c小鼠,再用免疫鼠的脾细胞与Sp2/0骨髓瘤细胞融合,经筛选克隆获得持续稳定分泌噻虫啉单克隆抗体的杂交瘤株。本发明的噻虫啉单克隆抗体对对噻虫啉有高亲和力,且该抗体特异性强,与啶虫脒、吡虫啉等结构类似烟碱类杀虫剂无交叉反应。
Description
技术领域:
本发明属于免疫学的技术领域,更具体地是涉及噻虫啉单克隆抗体的制备及其检测方法。
背景技术:
噻虫啉是一种新型氯代烟碱类杀虫剂,由德国拜耳农化公司和日本拜耳农化公司合作开发的,对刺吸式和咀嚼式口器害虫有特效。作用机理与其它传统杀虫剂有所不同,它主要作用于昆虫神经接合后膜,通过与烟碱乙酰胆碱受体结合,干扰昆虫神经系统正常传导,引起神经通道的阻塞,造成乙酰胆碱的大量积累,从而使昆虫异常兴奋,全身痉挛、麻痹而死。具有较强的触杀、胃毒和内吸作用,噻虫啉与常规杀虫剂没有交互抗性,因而可用于抗性治理,广泛应用于那些对有机磷类、氨基甲酸酯类、除虫菊酯类已产生抗性的农林业害虫的防治。作为新型仿生物农药,噻虫啉具有高效低毒,安全环保,对环境、林木和果实的影响很小等特点。主要用于水稻、水果、蔬菜、棉花防除大多数害虫。
目前,有关噻虫啉残留检测方法主要是高效液相色谱法(HPLC),刘丽丹等人建立土壤和稻谷中噻虫啉的分析方法,研究噻虫啉在土壤和稻谷中的残留情况;韩振泰等建立了反相高效液相色谱法,用来测定土壤及树干中噻虫啉残留量。由于常规仪器分析方法样品制备繁琐,检测费用较高并且耗时,不适合大量样品快速检测的需求。酶联免疫分析技术完全能满足上述要求。目前,已有很多烟碱类杀虫剂的酶联免疫分析报道,但是对噻虫啉的免疫分析方法尚未见报道。
发明内容:
本发明的目的之一在于通过对噻虫啉分子进行修饰,合成噻虫啉半抗原,制备出了对噻虫啉有高亲和力的抗体。
一种噻虫啉单克隆抗体的制备,所述方法包括合成噻虫啉半抗原,将噻虫啉半抗原与牛血清蛋白偶联制备免疫抗原免疫BALB/c小鼠,再用免疫鼠的脾细胞与Sp2/0骨髓瘤细胞融合,经筛选克隆获得持续稳定分泌噻虫啉单克隆抗体的杂交瘤株,得到所需的产物。
作为该技术方案的更进一步,所述噻虫啉半抗原的合成方法为:
(1)将噻虫啉、β-巯基丙酸和KOH以摩尔比为1:1:2,溶解于DMSO中,同时将温度缓慢升到90-100℃,保持此温度搅拌反应;
(2)待反应结束后,加入水使反应混合物冷却到室温,用2M的盐酸调节pH为3.0,并用二氯甲烷萃取,有机相水洗,无水硫酸钠干燥和减压浓缩后,再经硅胶柱层析,获得白色粉末。
作为该技术方案的更进一步,所述免疫抗原的制备方法为:
(1)将噻虫啉半抗原与N-羟基琥珀酰亚胺(NHS)以摩尔比为1:3溶解在N,N-二甲基甲酰胺(DMF)中,在室温下搅拌反应;
(2)反应完后,向上述反应液中加入N,N-二甲基甲酰胺(DMF)摩尔量的1/2的二环已基碳二亚胺(DCC),室温下反应过夜,离心后取上清液,缓慢加入到牛血清蛋白(BSA)的CBS(0.1M,pH9.6)中,半个小时加完,磁力搅拌下反应4h;
(3)待反应完成后,装入透析袋,先用蒸馏水透析2次(间隔2-3h),然后用PBS(0.01M,pH7.4)溶液透析3天,每天换液3-5次,透析完成后即得免疫抗原,将免疫抗原分装保存于-20℃的冰箱中。
作为本发明的另一目的,一种噻虫啉单克隆抗体的间接非竞争ELISA检测方法,将噻虫啉半抗原与卵清蛋白(OVA)偶联物为包被抗原。
作为该技术方案的更进一步,所述包被抗原的具体制备方法为:
(1)将噻虫啉半抗原溶解在N,N-二甲基甲酰胺(DMF)中,边搅拌边在溶液中各加入正丁胺和氯甲酸异丁酯,室温下反应;
(2)取上述反应液缓慢加入到卵清蛋白(OVA)的CBS(0.1M,pH9.6)中,磁力搅拌下反应;
(3)待反应完成后,装入透析袋,先用蒸馏水透析2次(间隔2h),然后用PBS(0.01M,pH7.4)透析3天,每天换液3-5次,即得所需产品,将产品分装保存于-20℃的冰箱中。
作为该技术方案的优选,选择甲醇含量为15%、Na+浓度为0.1M且pH=7.5的PBS溶液作为缓冲液。
有益效果:本发明的噻虫啉单克隆抗体对对噻虫啉有高亲和力,且该抗体特异性强,与啶虫脒、吡虫啉等结构类似烟碱类杀虫剂无交叉反应。
附图说明:
图1为缓冲液中不同甲醇含量对ELISA的影响结果。
图2为缓冲液中不同Na+浓度对ELISA的影响结果。
图3为缓冲液的不同pH值对ELISA的影响结果。
具体实施方式:
下面结合实施例,对本发明的具体实施方式作进一步详细描述。以下实施例用于说明本发明,但不用来限制本发明的范围。
一、半抗原的合成
将1.12g(4mmol)噻虫啉,0.42g(4mmol)β-巯基丙酸和0.45g(8mmol)KOH溶解于20mlDMSO中,同时温度缓慢升到100℃,保持此温度搅拌反应2h;待反应结束后,加入50mL水使反应混合物冷却到室温,用2M的盐酸调节pH=3.0并用二氯甲烷萃取(3×30mL),有机相水洗(3×30mL),无水硫酸钠干燥和减压浓缩,经硅胶柱层析,获得白色粉末。
二、人工抗原的制备
免疫抗原的制备:
将噻虫啉半抗原采用活泼酯法与牛血清蛋白(BSA)偶联制备免疫抗原,具体操作方法:将0.2mmol噻虫啉半抗原溶解在1mL的N,N-二甲基甲酰胺(DMF)中,然后在溶液中加入0.6mmol的N-羟基琥珀酰亚胺(NHS),室温下搅拌反应15min;加入0.3mmol的二环已基碳二亚胺(DCC),室温下反应过夜,离心后取上清液0.5mL,缓慢加入到12mL浓度为10mg/mL的牛血清蛋白(BSA)的CBS(0.1M,pH9.6)中,半个小时加完,磁力搅拌下反应4h,待反应完成后,装入透析袋,先用蒸馏水透析2次(间隔2-3h),然后用PBS(0.01M,pH7.4)溶液透析3天,每天换液3-5次,分装保存于-20℃的冰箱中。
包被抗原的制备:
将噻虫啉半抗原采用混合酸酐法与卵清蛋白(OVA)偶联制备得到包被抗原,具体操作方法:将0.375mmol半抗原溶解在1mL的N,N-二甲基甲酰胺(DMF)中,边搅拌边在溶液中各加入90L正丁胺和45L氯甲酸异丁酯,室温下反应1h,取1mL缓慢加入到24mL浓度为10mg/mL的卵清蛋白(OVA)的CBS(0.1M,pH9.6)中,磁力搅拌下反应2h,待反应完成后,装入透析袋,先用蒸馏水透析2次(间隔2h),然后用PBS(0.01M,pH7.4)透析3天,每天换液3-5次,分装保存于-20℃的冰箱中。
偶联物的测试方法:
采用紫外分光光度法测定偶联物的吸光度并计算结合比。分别将半抗原、载体蛋白质和偶联物配成合适的甲醇或PBS溶液,进行紫外(200nm~400nm)扫描,观察三者吸收峰的变化,若发生明显变化,说明偶联成功。
根据三者在选定波长(280nm)的摩尔吸光系数(ε)估算半抗原与载体蛋白的结合比:
结合比=(ε偶联物-ε载体蛋白)/ε半抗原。
三、单克隆抗体的制备:
具体的操作步骤为:
1、小鼠的免疫及免疫方案
取6-8周龄雌性BALB/c小鼠,将制备的免疫原用PBS缓冲液配置与等体积弗氏完全佐剂混合,充分乳化后,采用腹腔注射的方法进行免疫,抗原免疫用量为200μL/只(以蛋白浓度计);3周后同样剂量加强免疫,佐剂为弗氏不完全佐剂,共加强免疫四次,融合前3d对小鼠注射与首次免疫等剂量的免疫原(不含任何佐剂)。
2、融合小鼠的选择
BALB/c小鼠从第三次免疫开始,免疫后7天小鼠尾静脉采血,另取未经免疫的BALB/c小鼠作为阴性血清对照。用ELISA法测抗血清的效价,确定是否有针对噻虫啉半抗原的抗体生成。
ELISA法测抗血清的效价:
用间接非竞争ELISA法测定抗体效价,方阵滴定法确定抗体及包被抗原的最佳浓度。当OD值为1.0时,抗体抗原用量较少的浓度组合,即为抗体-抗原的工作浓度。
间接非竞争ELISA法步骤如下:
(1)包被:CBS(0.05M,pH9.6)将包被抗原倍比稀释,100μL/孔,4℃过夜包被;
(2)洗板:用洗涤液PBST洗涤5次,吸水纸拍干;
(3)封闭:每孔加1%OVA的PBS(0.01M,pH7.4)封闭液200μL,37℃温育1h;
(4)洗板:同(2);
(5)加入一抗:将抗体倍比稀释为100×2n(n=2,3,4,5,6,7)分别加到酶标板中,100μL/孔,空白对照加入100μL/孔PBS溶液,37℃孵育1h。
(6)洗板:同(2);
(7)加酶标二抗体:用PBST把辣根过氧化物酶-羊抗鼠抗体稀释20000×,100μL/孔,37℃孵育1h;
(8)洗板:同(2);
(9)显色:每孔加入100μL新鲜配制的显色液,37℃温箱孵育15min;
(10)终止:每孔加50μL2M的H2SO4溶液;
(11)吸光度测定:用酶标仪测定490nm波长处的吸光值。
当包被抗原的浓度为4mg/L时,用间接非竞争酶联免疫吸附测定法(ELISA)测定噻虫啉抗体的效价达到4.2×106。
3、杂交瘤细胞的制备
Sp2/0骨髓瘤细胞的准备:
快速取出液氮罐中的Sp2/0,放入40℃水中,不停摇动冻存管,使其尽快融化,1000rpm离心5min后弃上清,用含20%胎牛血清的DMEM培养基重悬,转入细胞瓶中,37℃、5%CO2、饱和湿度培养箱中培养。待细胞活力较好的时候,用含有8-AG的20%胎牛血清的DMEM培养基培养一周,杀死其中的突变细胞株,然后扩大培养,冻存。
融合前20d复苏Sp2/0细胞,融合当天取细胞形态均一、边界清晰、生长状态良好的Sp2/0细胞,弃去营养液,用无血清DMEM营养液洗涤后重新悬浮,细胞计数板计数,将细胞稀释为106个/mL,体积为10mL左右,放置37℃、5%CO2、饱和湿度培养箱中融合备用。
饲养细胞的准备:
融合前1d,选择未免疫的8周龄BALB/c雌性小鼠1只,颈椎脱臼处死,75%酒精浸泡消毒5min后,取出小鼠,腹部朝上,将四肢固定于解剖板上,在无菌条件下剪开腹部皮肤,充分暴露腹部;用镊子拎起腹膜,用注射器向腹腔中注入8-10mLDMEM培养液,用酒精棉球轻轻按压腹部,最后用注射器将腹腔内的培养液吸出,悬浮细胞,细胞计数板计数,用HAT液重悬调节细胞数至5×105个/mL,100μL/孔加入96孔培养板,置37℃、5%CO2、饱和湿度培养箱中过夜,观察是否污染。
脾细胞的制备:
3d后,小鼠眼球采血,将血液在37℃放置0.5h,4℃放置1h,4000rpm离心5min,分离后的血清作为阳性血清。处死小鼠,75%酒精浸泡消毒5min后,取出小鼠,将四肢固定于超净台解剖板上。在无菌的条件下,依次剪开腹部皮肤、腹膜,充分暴露腹腔,在小鼠腹腔左侧用一套无菌的剪刀和镊子取出脾脏,置于含有少量无血清DMEM的无菌玻璃培养皿中的滤网上,剪去脾脏上的筋膜,并将脾脏剪成3-5块,用玻璃针筒研磨。冲下的脾细胞用无血清DMEM培养液洗涤2次(1000rpm,10min),再次悬浮细胞后计数,以无血清DMEM培养液调整细胞浓度为1×107个/mL,获得约10mL细胞悬液。
细胞融合:
(1)将准备好的Sp2/0骨髓瘤细胞和免疫脾细胞以1:10的比例混和,置于50ml离心管内,用无血清DMEM培养液洗涤3次,1000rpm离心10min,最后一次离心后尽可能弃去上清,用手指轻击离心管底部,使细胞松散。
(2)将离心管置于37℃水浴中,用1mL吸管吸取1mLPEG加入离心管,边加边轻轻搅拌,PEG平均在45s内加完,加完后轻轻搅拌1min。
(3)缓慢加入10mL无血清DMEM,前30s,每2s一滴,后30s每1s一滴,缓慢加入其余。
(4)37℃静置10min,1000rpm离心5min,弃去上清。
(5)HAT营养液重悬融合细胞,动作轻柔,防止将刚融合上的细胞吹散,加入30mLHAT营养液,开始铺96孔板,每铺一板后,则加入10mLHAT稀释细胞悬液,可铺5-6块。
(6)将细胞板置于37℃、5%CO2、饱和湿度温箱中培养,融合后4d用HAT培养液半量换液,融合后1周更换为HT培养液。
4、杂交瘤细胞的筛选
融合后3d观察是否融合上,融合后第4d用HAT培养液半量换液,第7d左右改用HT培养液,待杂交瘤细胞长满孔底1/4时,于换液2d后即可取同一孔杂交瘤细胞培养上清液,同时将Sp2/0细胞培养上清液作为阴性对照,阳性小鼠血清做为阳性对照,取2次检测均为阳性的杂交瘤细胞株进行下一次亚克隆。
5、阳性杂交瘤细胞的单克隆化
按制备饲养细胞,用HT营养液冲洗小鼠腹腔后获得的饲养细胞铺96孔板,100μL/孔,96孔板置于37℃、5%CO2、饱和湿度培养箱中过夜培养。将已检测为阳性的杂交瘤细胞孔中的细胞吹起混匀,取10μL细胞,10倍比稀释后细胞计数,经计算从相应孔中取50个细胞加入5mLHT培养液中,接种于铺有饲养细胞的96孔细胞培养板,100μL/孔,即每孔约1个细胞。将细胞板置于37℃、5%CO2、饱和湿度培养箱中培养。3d后观察每孔克隆数,7-10d细胞长到1/4孔底时,进行ELISA检测,取2次检测均为阳性的单克隆孔进行再次亚克隆。一般需经2-3次亚克隆化,直至所有克隆化细胞孔检测阳性率为100%时,筛选及细胞亚克隆,获得1株能稳定分泌抗噻虫啉农药抗体的杂交瘤细胞株。
6、杂交瘤细胞的冻存与复苏
将获得的杂交瘤细胞株在显微镜下观察为单个克隆孔进行扩大培养,将孔内细胞吹散转入6孔板中,待6孔板中的细胞长满后将细胞转入100mL细胞瓶中生长。细胞长满后传代培养,同时冻存杂交瘤细胞株,每株冻存4-6管。取生长对数期,状态良好的细胞,吹散混匀,1000rpm离心10min,弃上清,用冻存液重悬细胞,使细胞数达到106个/mL,转入冻存管中,1mL/管,加入异丙醇放于-70℃过夜,于第二天转入液氮罐中长期保存。二月后复苏杂交瘤细胞株(复苏同SP2/0骨髓瘤细胞),并用ELISA法检测上清中的抗体。
7、小鼠腹水的制备
取10周龄Balb/c小鼠,腹腔内注入0.5mL液体石蜡。7d后,每只小鼠腹腔接种1-5×106个杂交瘤细胞。接种前,用无血清的DMEM培养液将杂交瘤细胞洗涤两次,尽量洗去杂蛋白,然后用无血清的DMEM培养液配成浓度为1×107个/mL的细胞悬液。接种时,取0.5mL细胞悬液,于无菌条件下注入腹腔,杂交瘤细胞以腹水瘤形式在小鼠腹腔内大量繁殖。1周后,小鼠腹部胀大,触之有波动感即腹腔内出现腹水,此时即可收集腹水。收集腹水时抓住小鼠颈部及尾巴,用10mL注射器针头如腹腔注射般插入小鼠腹腔,抽取腹水。一般2-3d后,小鼠腹部再胀大,可再次收集腹水。一般可收集1-3次。将收集的腹水3000rmp离心5min,取上清,注意不要吸到离心管最上层的油状物,56℃水浴30min以使补体和蛋白水解酶灭活,置室温待其冷却,冻存于-20℃。
8、单克隆抗体的纯化。
将腹水单克隆抗体用BindingBuffer平衡proteinG至基线平稳,收集流穿液,然后将流穿液再次上柱,平衡至基线平稳。加入ElutingBuffer洗脱,收集洗脱峰,即为纯化的腹水单克隆抗体。
四、标准曲线的建立
用ic-ELISA测定单克隆抗体对噻虫啉的敏感度。首先对测试条件进行优化:
(1)甲醇含量
用不同甲醇含量(5%、10%、15%、20%、25%、30%、35%、40%)的PBS缓冲溶液配制噻虫啉标准溶液,考察甲醇含量对反应体系的影响。
图1为缓冲液中不同含量的甲醇对ELISA法影响的结果。当甲醇浓度在5%和15%时有较低的IC50。为了保证噻虫啉的溶解性,选择15%甲醇作进一步研究。
(2)离子强度
用不同Na+浓度(0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8M)的PBS缓冲液稀释单克隆抗体,考察不同的离子强度对反应体系的影响。
缓冲液中不同浓度的Na+对ELISA法的影响如图2。Na+强度变化对IC50值有很大影响,Na+强度在0.1M时IC50值较低,随着离子强度的增加,灵敏度有轻微的改变,综合考虑选择IC50最低的Na+为0.1M作为优化后的条件。
(3)pH值
用不同pH值(4.5、5.5、6.5、7.4、8.5、9.5)的PBS缓冲液稀释抗体,测定pH对反应体系的影响。
pH值对ELISA的影响结果见图3。由图3知,pH在3.5-10.5之间时,IC50变化不大,对ELISA影响较小,其中PH为7.5时IC50相对较低,综合选择IC50最低的pH=7.5时作为优化后的条件。
在最优化的条件下,用ic-ELISA测定单克隆抗体对噻虫啉的敏感度,配置系列浓度的噻虫啉甲醇PBS标准溶液(0.00001、0.0001、0.001、0.01、0.1、1、10和100mg/L)。
用四参数方程拟合标准曲线为:y=(A-D)/[1+(x/C)B]+D
其中y为结合率;x为标准液或分析物的浓度,A和D分别为0标准液的吸光值和空白对照的吸光值,C为ED50点的浓度,B为ED50点处的斜率。
五、交叉反应率的测定
在上述最优化的条件下,配制系列浓度的噻虫啉和结构类似烟碱类杀虫剂的标准溶液,采用ic-ELISA测定结构类似化合物的标准曲线和抑制中浓度(IC50),计算交叉反应率CR%。
CR%=[IC50(噻虫啉)/IC50(类似化合物)]×100,交叉反应率越低,抗体反应的特异性越强,对噻虫啉的干扰就越小。
化合物名称 | IC50(mg/L) | CR(%) |
噻虫啉 | 0.005 | 100 |
啶虫脒 | 2.25 | 0.22 |
吡虫啉 | 4.86 | 0.10 |
烯啶虫胺 | 10.23 | <0.01 |
呋虫胺 | 32.81 | <0.01 |
噻虫胺 | >1000 | <0.01 |
噻虫嗪 | >1000 | <0.01 |
氯噻啉 | >1000 | <0.01 |
可见,该抗体的特异性较强,与啶虫脒、吡虫啉等结构类似烟碱类杀虫剂无交叉反应。
Claims (6)
1.一种噻虫啉单克隆抗体的制备,其特征在于,所述方法包括合成噻虫啉半抗原,将噻虫啉半抗原与牛血清蛋白偶联制备免疫抗原免疫BALB/c小鼠,再用免疫鼠的脾细胞与Sp2/0骨髓瘤细胞融合,经筛选克隆获得持续稳定分泌噻虫啉单克隆抗体的杂交瘤株,得到所需的产物。
2.根据权利要求1所述的一种噻虫啉单克隆抗体的制备,其特征在于,所述噻虫啉半抗原的合成方法为:
(1)将噻虫啉、β-巯基丙酸和KOH以摩尔比为1:1:2,溶解于DMSO中,同时将温度缓慢升到90-100℃,保持此温度搅拌反应;
(2)待反应结束后,加入水使反应混合物冷却到室温,用2M的盐酸调节pH为3.0,并用二氯甲烷萃取,有机相水洗,无水硫酸钠干燥和减压浓缩后,再经硅胶柱层析,获得白色粉末。
3.根据权利要求1所述的一种噻虫啉单克隆抗体的制备,其特征在于,所述免疫抗原的制备方法为:
(1)将噻虫啉半抗原与N-羟基琥珀酰亚胺(NHS)以摩尔比为1:3溶解在N,N-二甲基甲酰胺(DMF)中,在室温下搅拌反应;
(2)反应完后,向上述反应液中加入N,N-二甲基甲酰胺(DMF)摩尔量的1/2的二环已基碳二亚胺(DCC),室温下反应过夜,离心后取上清液,缓慢加入到牛血清蛋白(BSA)的CBS(0.1M,pH9.6)中,半个小时加完,磁力搅拌下反应4h;
(3)待反应完成后,装入透析袋,先用蒸馏水透析2次(间隔2-3h),然后用PBS(0.01M,pH7.4)溶液透析3天,每天换液3-5次,透析完成后即得免疫抗原,将免疫抗原分装保存于-20℃的冰箱中。
4.根据权利要求1-3任意一项所述的一种噻虫啉单克隆抗体的间接非竞争ELISA检测方法,其特征在于,将噻虫啉半抗原与卵清蛋白(OVA)偶联物为包被抗原。
5.根据权利要求4所述的一种噻虫啉单克隆抗体的间接非竞争ELISA检测方法,其特征在于,所述包被抗原的具体制备方法为:
(1)将噻虫啉半抗原溶解在N,N-二甲基甲酰胺(DMF)中,边搅拌边在溶液中各加入正丁胺和氯甲酸异丁酯,室温下反应;
(2)取上述反应液缓慢加入到卵清蛋白(OVA)的CBS(0.1M,pH9.6)中,磁力搅拌下反应;
(3)待反应完成后,装入透析袋,先用蒸馏水透析2次(间隔2h),然后用PBS(0.01M,pH7.4)透析3天,每天换液3-5次,即得所需产品,将产品分装保存于-20℃的冰箱中。
6.根据权利要求4所述的一种噻虫啉单克隆抗体的间接非竞争ELISA检测方法,其特征在于,PBS溶液中甲醇含量为15%、Na+浓度为0.1M、pH=7.5为最优测试条件。
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Cited By (9)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105400742A (zh) * | 2015-11-25 | 2016-03-16 | 浙江大学 | 杂交瘤细胞株imi-g12及其产生的新烟碱类农药通用单克隆抗体和应用 |
CN105754955A (zh) * | 2016-05-17 | 2016-07-13 | 江南大学 | 一株噻虫啉、啶虫脒单克隆抗体杂交瘤细胞株gw及其应用 |
CN105784994A (zh) * | 2016-03-07 | 2016-07-20 | 中国烟草总公司贵州省公司 | 一种检测农作物中吡虫啉残留的试纸及其应用、制备方法 |
CN106124752A (zh) * | 2016-06-17 | 2016-11-16 | 广州杰特伟生物科技有限公司 | 一种检测噻虫啉的ellsa试剂盒 |
CN107652365A (zh) * | 2017-09-12 | 2018-02-02 | 杨蕾 | 一种制备四种氯化烟碱类杀虫剂通用抗原的方法 |
CN109991419A (zh) * | 2019-03-18 | 2019-07-09 | 浙江大学 | 基于spr技术的烟碱类杀虫剂噻虫啉残留检测方法 |
CN112111010A (zh) * | 2020-07-28 | 2020-12-22 | 浙江大学 | 一种特异性抗噻虫啉抗体的可变区序列及其重组完整抗体 |
CN112111011A (zh) * | 2020-07-28 | 2020-12-22 | 浙江大学 | 一种特异性抗噻虫嗪抗体的可变区序列及其重组全长抗体 |
CN115109163A (zh) * | 2022-07-09 | 2022-09-27 | 上海源本食品质量检验有限公司 | 一种噻虫嗪单克隆抗体的制备方法 |
-
2014
- 2014-04-04 CN CN201410134725.XA patent/CN104974255A/zh active Pending
Cited By (12)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105400742A (zh) * | 2015-11-25 | 2016-03-16 | 浙江大学 | 杂交瘤细胞株imi-g12及其产生的新烟碱类农药通用单克隆抗体和应用 |
CN105400742B (zh) * | 2015-11-25 | 2018-08-10 | 浙江大学 | 杂交瘤细胞株imi-g12及其产生的新烟碱类农药通用单克隆抗体和应用 |
CN105784994A (zh) * | 2016-03-07 | 2016-07-20 | 中国烟草总公司贵州省公司 | 一种检测农作物中吡虫啉残留的试纸及其应用、制备方法 |
CN105754955A (zh) * | 2016-05-17 | 2016-07-13 | 江南大学 | 一株噻虫啉、啶虫脒单克隆抗体杂交瘤细胞株gw及其应用 |
CN105754955B (zh) * | 2016-05-17 | 2019-02-15 | 江南大学 | 一株噻虫啉、啶虫脒单克隆抗体杂交瘤细胞株gw及其应用 |
CN106124752A (zh) * | 2016-06-17 | 2016-11-16 | 广州杰特伟生物科技有限公司 | 一种检测噻虫啉的ellsa试剂盒 |
CN107652365A (zh) * | 2017-09-12 | 2018-02-02 | 杨蕾 | 一种制备四种氯化烟碱类杀虫剂通用抗原的方法 |
CN109991419A (zh) * | 2019-03-18 | 2019-07-09 | 浙江大学 | 基于spr技术的烟碱类杀虫剂噻虫啉残留检测方法 |
CN112111010A (zh) * | 2020-07-28 | 2020-12-22 | 浙江大学 | 一种特异性抗噻虫啉抗体的可变区序列及其重组完整抗体 |
CN112111011A (zh) * | 2020-07-28 | 2020-12-22 | 浙江大学 | 一种特异性抗噻虫嗪抗体的可变区序列及其重组全长抗体 |
CN112111010B (zh) * | 2020-07-28 | 2022-04-19 | 浙江大学 | 一种特异性抗噻虫啉抗体的可变区序列及其重组完整抗体 |
CN115109163A (zh) * | 2022-07-09 | 2022-09-27 | 上海源本食品质量检验有限公司 | 一种噻虫嗪单克隆抗体的制备方法 |
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WD01 | Invention patent application deemed withdrawn after publication |
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