CN104946638A - 一种向日葵白锈病菌和黑茎病菌的多重dpo-pcr检测试剂盒及其应用 - Google Patents
一种向日葵白锈病菌和黑茎病菌的多重dpo-pcr检测试剂盒及其应用 Download PDFInfo
- Publication number
- CN104946638A CN104946638A CN201510380097.8A CN201510380097A CN104946638A CN 104946638 A CN104946638 A CN 104946638A CN 201510380097 A CN201510380097 A CN 201510380097A CN 104946638 A CN104946638 A CN 104946638A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- primer
- bacterium
- pcr
- black stem
- sunflower receptacle
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明公开了一种向日葵白锈病菌和向日葵黑茎病菌的多重DPO-PCR检测试剂盒及其应用。本发明的多重DPO-PCR检测试剂盒包括一种检测或辅助检测待测菌株是向日葵白锈病菌还是向日葵黑茎病菌的引物组,所述引物组由引物1、引物2、引物3和引物4组成。通过试验证明:本发明的DPO引物和检测试剂盒具有特异性好、准确性高和灵敏度高的特点,可用于向日葵白锈病菌和向日葵黑茎病菌的检测、区分以及鉴定。
Description
技术领域
本发明属于生物技术领域,具体涉及一种向日葵白锈病菌和黑茎病菌的多重DPO-PCR检测试剂盒及其应用。
背景技术
向日葵白锈病菌(Albugo tragopogonis(Pers.)Gray)是引起向日葵白锈病的病原菌,该病菌在国外少数国家和地区严重发生、经济影响大、传入风险高,成为国际上关注的检疫性有害生物。向日葵黑茎病菌(Leptosphaeria lindquistii Frezzi)是引起向日葵黑茎病的病菌,严重的病田发病率达100%,对向日葵生产造成毁灭性危害,是一种重要的检疫性病原菌。因此,对这两种病原菌进行准确的检疫鉴定非常重要,而传统形态学方法鉴定周期长、时效性差。利用血清学和分子生物学技术鉴定这两种菌的方法已有建立,包括PCR、RFLP等,但这些方法有些需要酶切,检测过程复杂;有些特异性不强或依赖较昂贵的仪器设备,难以在实验室之间推广。因此,建立一种特异性强、且能同时快速检测这两种菌的检测方法显得非常重要。
DPO(Dual priming oligonucleotide)引物技术的主要原理为其引物包含两个各自独立的特异性引物区域,5′端序列由18-25个碱基组成并与靶基因序列配对,3′端序列由6-12个碱基用来引导PCR反应的特异性延伸,这两段独立的特异性区域利用寡聚次黄嘌呤(Inosine,I)进行连接,由于次黄嘌呤比一般碱基的退火温度低,在退火时寡聚次黄嘌呤形成类似泡状的结构,从而使5′和3′区域形两个独立功能的双特异性引物结构,并且研究表明5′和3′引物区域中任何有3个及以上碱基的错配,PCR反应将不能进行,而且由于其特殊的结构,引物自身以及引物之间很少形成二级结构且对退火温度不敏感。该技术的优点主要在于它对退火温度、镁离子浓度等影响普通多重PCR的关键因素不敏感,适用范围广,而且该技术特异性强,扩增效率高,为多重PCR技术的应用提供了新的前景。
发明内容
本发明要解决的技术问题是如何检测待测菌株是向日葵白锈病菌和向日葵黑茎病菌。
为解决上述技术问题,本发明提供了一种检测或辅助检测待测菌株是向日葵白锈病菌还是向日葵黑茎病菌的引物组。
本发明提供的检测或辅助检测待测菌株是向日葵白锈病菌还是向日葵黑茎病菌的引物组由引物1、引物2、引物3和引物4组成:
所述引物1为SEQ ID No.1所示的单链DNA分子;
所述引物2为SEQ ID No.2所示的单链DNA分子;
所述引物3为SEQ ID No.3所示的单链DNA分子;
所述引物4为SEQ ID No.4所示的单链DNA分子。
为解决上述技术问题,本发明还提供了一种检测或辅助检测待测菌株是向日葵白锈病菌还是向日葵黑茎病菌的PCR试剂。
本发明提供的检测或辅助检测待测菌株是向日葵白锈病菌还是向日葵黑茎病菌的PCR试剂包括上述引物组。
上述PCR试剂中,所述引物1、所述引物2、所述引物3和所述引物4在所述PCR试剂中的终浓度均为0.4μmol/L。
为解决上述技术问题,本发明还提供了一种检测或辅助检测待测菌株是向日葵白锈病菌还是向日葵黑茎病菌的试剂盒。
本发明提供的检测或辅助检测待测菌株是向日葵白锈病菌还是向日葵黑茎病菌的试剂盒包括上述引物组或上述PCR试剂。
上述引物组或上述PCR试剂或上述试剂盒在检测或辅助检测待测菌株是向日葵白锈病菌还是向日葵黑茎病菌中的应用也属于本发明的保护范围。
上述引物组或上述PCR试剂或上述试剂盒在区分或辅助区分向日葵白锈病菌和向日葵黑茎病菌中的应用也属于本发明的保护范围。
为解决上述技术问题,本发明最后提供了一种检测或辅助检测待测菌株是向日葵白锈病菌还是向日葵黑茎病菌的方法。
本发明提供的检测或辅助检测待测菌株是向日葵白锈病菌还是向日葵黑茎病菌的方法包括如下步骤:
(1)用上述引物组对待测菌株进行PCR扩增,得到PCR扩增产物;
(2)检测所述PCR扩增产物的大小;
若所述PCR扩增产物含有大小为307bp的片段,则待测菌株为或候选为向日葵白锈病菌;
若所述PCR扩增产物含有大小为388bp的片段,则待测菌株为或候选为向日葵黑茎病菌
上述方法中,所述PCR扩增的模板为待测菌株的基因组DNA。
上述方法中,所述PCR扩增为多重DPO-PCR。
上述方法中,所述PCR扩增的退火温度为45-65℃。
上述方法中,所述PCR扩增的退火温度为60℃。
上述方法在检测或辅助检测向日葵白锈病和/或向日葵黑茎病的病菌中的应用也属于本发明的保护范围。
本发明根据向日葵白锈病菌大亚基核糖体RNA基因序列和向日葵黑茎病菌的ITS-5.8S rRNA基因序列,设计了特异性DPO引物,并基于该引物建立了向日葵白锈病菌和向日葵黑茎病菌的多重DPO-PCR检测方法,可同时对向日葵白锈病菌和向日葵黑茎病菌进行定性检测。通过实验证明:本发明的多重DPO-PCR方法特异性好,灵敏度高,而且对退火温度不敏感,适用范围广,基于多重DPO-PCR方法对向日葵白锈病菌和向日葵黑茎病菌进行定性检测方法灵敏、准确、简便和快速,对进出口相关货物及产品检验检疫、病害防治预测具有指导意义。
附图说明
图1为多重DPO-PCR扩增产物的电泳检测结果。其中,1:向日葵黑茎病菌和向日葵白锈病菌;2:向日葵黑茎病菌;3:向日葵白锈病菌;4:阴性对照。
图2为特异性实验的电泳检测结果。其中,1:向日葵黑茎病菌和向日葵白锈病菌;2:向日葵黑茎病菌;3:向日葵白锈病菌;4:向日葵黑白轮枝菌;5:向日葵大丽轮枝菌;6:向日葵茎溃疡病菌;7:向日葵霜霉病菌;8:向日葵菌核病菌;9:向日葵褐斑病菌;10:向日葵锈病菌;11:阴性对照。
图3为退火温度敏感实验的电泳检测结果。其中,1-5:退火温度分别为45℃、50℃、55℃、60℃和65℃。
图4为灵敏度实验的电泳检测结果。其中,1-5:2种病原菌DNA模板量依次为50ng、5ng、0.5ng、0.05ng和0.005ng。
具体实施方式
下述实施例中所使用的实验方法如无特殊说明,均为常规方法。
下述实施例中所用的材料、试剂等,如无特殊说明,均可从商业途径得到。
下述实施例中的向日葵白锈病菌(Albugo tragopogonis(Pers.)Gray)在文献“向日葵白锈病菌巢式PCR检测方法的研究”中公开过,公众可从伊犁出入境检验检疫局获得。
下述实施例中的向日葵黑茎病菌(Leptosphaeria lindquistii Frezzi)在文献“向日葵黑茎病菌分离检测及其RFLP分析”中公开过,公众可从伊犁出入境检验检疫局获得。
实施例1、一种检测向日葵白锈病菌和向日葵黑茎病菌的方法
一、多重DPO-PCR引物组的设计
根据向日葵白锈病菌大亚基核糖体RNA基因序列和向日葵黑茎病菌的ITS-5.8SrRNA基因序列,设计了如下检测向日葵白锈病菌和向日葵黑茎病菌的多重DPO-PCR检测引物组(引物序列中的I为次黄嘌呤):
BS-DPO-F:CGAATTGTAGTCTATCGAGGCCAAGIIIIIACGCAGGATCC(序列1);
BS-DPO-R:GGAATGGACAGCGGACGCIIIIIGCTTCCCT(序列2);
HJ-DPO-F:GATGCCGGTACTCTGGGTCTTTIIIIICATGTACC(序列3);
HJ-DPO-R:ATTGTTTTGAGGCGAGTTTCCCIIIIIGGAAACAT(序列4);
其中,BS-DPO-F和BS-DPO-R为检测向日葵白锈病菌的引物,产物大小为307bp;HJ-DPO-F和HJ-DPO-R为检测向日葵黑茎病菌的引物,产物大小为388bp。
二、检测向日葵白锈病菌和向日葵黑茎病菌的方法
1、DNA的提取
参照试剂盒操作(植物基因组DNA提取试剂盒,货号为DP305-02,天根生物科技有限公司)分别提取向日葵白锈病菌和向日葵黑茎病菌的基因组DNA。
2、多重DPO-PCR扩增
采用BS-DPO-F、BS-DPO-R、HJ-DPO-F、HJ-DPO-R共4条多重DPO-PCR引物,分别以如下四组的基因组DNA为模板进行多重DPO-PCR扩增,分别得到多重DPO-PCR扩增产物:
组1以向日葵白锈病菌和向日葵黑茎病菌的基因组DNA(向日葵白锈病菌和向日葵黑茎病菌各1μL)为模板;
组2以向日葵黑茎病菌的基因组DNA为模板;
组3以向日葵白锈病菌的基因组DNA为模板;
组4以超纯水为DNA模板(阴性对照)。
多重DPO-PCR反应体系如表1所示。其中,Mix 2内含dNTPs、MgCl2、反应缓冲液;Mix 1内含DNA聚合酶,Mix 2和Mix 1均为宝生物工程(大连)有限公司,货号为RR060A。
多重DPO-PCR反应条件:94℃预变性1min;然后94℃变性30s,60℃退火90s,72℃延伸90s,在此条件下进行35个循环;最后72℃再延伸5min。
表1、多重DPO-PCR反应体系
3、多重DPO-PCR扩增产物的电泳检测
多重DPO-PCR反应结束后,取5μL的多重DPO-PCR扩增产物于2.0%琼脂糖凝胶电泳,在凝胶成像系统上观察结果并对扩增产物进行测序。
结果如图1所示:组1(向日葵白锈病菌和向日葵黑茎病菌的基因组DNA)的PCR扩增产物含有2条带,大小分别为307bp和388bp;组2(向日葵黑茎病菌的基因组DNA)的PCR扩增产物只含有1个条带,大小为388bp;组3(向日葵白锈病菌的基因组DNA)的PCR扩增产物只含有1个条带,大小为307bp;组4的阴性对照无条带。说明本发明的多重DPO-PCR引物的可以快速有效的检测向日葵白锈病菌和向日葵黑茎病菌。
实施例2、多重DPO-PCR引物的特异性检测
1、DNA的提取
参照试剂盒操作(植物基因组DNA提取试剂盒,货号为DP305-02,天根生物科技有限公司)提取表2中的感病植株或纯菌株(保存于伊犁出入境检验检疫局)的基因组DNA。具体方法如下:对不可培养的菌株(表2中编号为5、8、9)可直接采集感病植株,液氮充分研磨后提取DNA;对可培养的菌株(表2中编号为1、2、3、4、6、7)经5-7天纯培养后,挑取菌丝冷冻干燥后,用液氮充分研磨提取DNA。
表2、供试菌株
2、多重DPO-PCR扩增
采用实施例1的步骤二的检测向日葵白锈病菌和向日葵黑茎病菌的方法,分别以步骤1中提取的9种菌的基因组DNA为模板进行多重DPO-PCR扩增,得到多重DPO-PCR扩增产物,同时设置阳性对照(同时加入向日葵白锈病菌和向日葵黑茎病菌的基因组DNA)和阴性对照(超纯水作为DNA模板)。
3、多重DPO-PCR扩增产物的电泳检测
多重DPO-PCR反应结束后,分别取5μL的多重DPO-PCR扩增产物于2.0%琼脂糖凝胶电泳,在凝胶成像系统上观察结果并对扩增产物进行测序。
结果如图2所示:阳性对照的PCR扩增产物含有2条带,大小分别为307bp和388bp;阴性对照无条带;向日葵白锈病菌的基因组DNA的PCR扩增产物大小为307bp的片段,向日葵黑茎病菌的基因组DNA的PCR扩增产物大小为388bp的片段,其余菌株均无条带,证明本发明的多重DPO-PCR引物的特异性很好。
实施例3、多重DPO-PCR引物的退火温度敏感性检测
1、DNA的提取
采用试剂盒法(植物基因组DNA提取试剂盒,货号为DP305-02,天根生物科技有限公司)分别提取向日葵白锈病菌和向日葵黑茎病菌的基因组DNA。
2、多重DPO-PCR扩增
以步骤1获得的向日葵白锈病菌和向日葵黑茎病菌的基因组DNA为模板,采用实施例1的步骤二中的同时检测向日葵白锈病菌和向日葵黑茎病菌的方法,用不同的退火温度(45℃、50℃、55℃、60℃、65℃)分别进行PCR扩增,其余反应条件不变,分别得到多重DPO-PCR扩增产物。
3、多重DPO-PCR扩增产物的电泳检测
多重DPO-PCR反应结束后,分别取5μL的多重DPO-PCR扩增产物于2.0%琼脂糖凝胶电泳,在凝胶成像系统上观察结果并对扩增产物进行测序。
结果如图3所示:电泳检测结果显示用不同的退火温度(45℃、50℃、55℃、60℃、65℃)进行PCR扩增得到的PCR扩增产物均含有大小为307bp和388bp的片段,无非特异性扩增条带,亮度基本一致,说明本发明的多重DPO-PCR引物对退火温度不敏感。
实施例4、多重DPO-PCR引物的灵敏度检测
1、DNA的提取
采用试剂盒法(植物基因组DNA提取试剂盒,货号为DP305-02,天根生物科技有限公司)分别提取向日葵白锈病菌(从感病叶片洗涤、离心富集病原孢子提取DNA)和向日葵黑茎病菌的基因组DNA。并将得到的基因组DNA进行10倍稀释,分别制备得到浓度分别为50ng/μL、5ng/μL、0.5ng/μL、0.05ng/μL和0.005ng/μL的向日葵白锈病菌和浓度为50ng/μL、5ng/μL、0.5ng/μL、0.05ng/μL和0.005ng/μL的向日葵黑茎病菌的基因组DNA。
2、多重DPO-PCR扩增
采用实施例1的步骤二中的检测向日葵白锈病菌和向日葵黑茎病菌的方法,分别以如下5组的基因组DNA为模板进行多重DPO-PCR扩增,分别得到多重DPO-PCR扩增产物:
组1:以50ng/μL的向日葵白锈病菌基因组DNA(1μL)和50ng/μL的向日葵黑茎病菌的基因组DNA(1μL)为模板;
组2:5ng/μL的向日葵白锈病菌基因组DNA(1μL)和5ng/μL的向日葵黑茎病菌的基因组DNA(1μL)为模板;
组3:0.5ng/μL的向日葵白锈病菌基因组DNA(1μL)和0.5ng/μL的向日葵黑茎病菌的基因组DNA(1μL)为模板;
组4:0.05ng/μL的向日葵白锈病菌基因组DNA(1μL)和0.05ng/μL的向日葵黑茎病菌的基因组DNA(1μL)为模板;
组5:0.005ng/μL的向日葵白锈病菌基因组DNA(1μL)和0.005ng/μL的向日葵黑茎病菌的基因组DNA(1μL)为模板;
3、多重DPO-PCR扩增产物的电泳检测
多重DPO-PCR反应结束后,分别取5μL的多重DPO-PCR扩增产物于2.0%琼脂糖凝胶电泳,在凝胶成像系统上观察结果。
结果如图4所示:本发明多重DPO-PCR引物具有较高的灵敏度,灵敏度为0.05ng。
Claims (10)
1.一种检测或辅助检测待测菌株是向日葵白锈病菌还是向日葵黑茎病菌的引物组,由引物1、引物2、引物3和引物4组成:
所述引物1为SEQ ID No.1所示的单链DNA分子;
所述引物2为SEQ ID No.2所示的单链DNA分子;
所述引物3为SEQ ID No.3所示的单链DNA分子;
所述引物4为SEQ ID No.4所示的单链DNA分子。
2.一种检测或辅助检测待测菌株是向日葵白锈病菌还是向日葵黑茎病菌的PCR试剂,包括权利要求1所述的引物组。
3.根据权利要求2所述的PCR试剂,其特征在于:所述引物1、所述引物2、所述引物3和所述引物4在所述PCR试剂中的终浓度均为0.4μmol/L。
4.一种检测或辅助检测待测菌株是向日葵白锈病菌还是向日葵黑茎病菌的试剂盒,包括权利要求1所述的引物组或权利要求2或3所述的PCR试剂。
5.权利要求1所述的引物组或权利要求2或3所述的PCR试剂或权利要求4所述的试剂盒在检测或辅助检测待测菌株是向日葵白锈病菌还是向日葵黑茎病菌中的应用。
6.权利要求1所述的引物组或权利要求2或3所述的PCR试剂或权利要求4所述的试剂盒在区分或辅助区分向日葵白锈病菌和向日葵黑茎病菌中的应用。
7.一种检测或辅助检测待测菌株是向日葵白锈病菌还是向日葵黑茎病菌的方法,包括如下步骤:
(1)用权利要求1所述引物组对待测菌株进行PCR扩增,得到PCR扩增产物;
(2)检测所述PCR扩增产物的大小;
若所述PCR扩增产物含有大小为307bp的片段,则待测菌株为或候选为向日葵白锈病菌;
若所述PCR扩增产物含有大小为388bp的片段,则待测菌株为或候选为向日葵黑茎病菌。
8.根据权利要求7所述的方法,其特征在于:所述PCR扩增的模板为待测菌株的基因组DNA。
9.根据权利要求7或8所述的方法,其特征在于:所述PCR扩增的退火温度为45-65℃。
10.权利要求7-9中任一所述的方法在检测或辅助检测向日葵白锈病和/或向日葵黑茎病的病菌中的应用。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201510380097.8A CN104946638B (zh) | 2015-07-01 | 2015-07-01 | 一种向日葵白锈病菌和黑茎病菌的多重dpo‑pcr检测试剂盒及其应用 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201510380097.8A CN104946638B (zh) | 2015-07-01 | 2015-07-01 | 一种向日葵白锈病菌和黑茎病菌的多重dpo‑pcr检测试剂盒及其应用 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN104946638A true CN104946638A (zh) | 2015-09-30 |
CN104946638B CN104946638B (zh) | 2018-03-02 |
Family
ID=54161702
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201510380097.8A Expired - Fee Related CN104946638B (zh) | 2015-07-01 | 2015-07-01 | 一种向日葵白锈病菌和黑茎病菌的多重dpo‑pcr检测试剂盒及其应用 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN104946638B (zh) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN111662996A (zh) * | 2020-04-30 | 2020-09-15 | 宁波检验检疫科学技术研究院 | 一种引物组及其在基于微流控芯片用于快速检测向日葵黑茎病菌的应用 |
CN112322794A (zh) * | 2020-12-04 | 2021-02-05 | 湛江海关技术中心 | 一种利用多重dpo-rt-pcr检测花生矮化病毒及番茄环斑病毒的试剂盒 |
CN114457190A (zh) * | 2022-03-15 | 2022-05-10 | 福建省农业科学院植物保护研究所 | 检测薏苡叶斑病菌的dpo-pcr引物及方法 |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102943118A (zh) * | 2012-12-06 | 2013-02-27 | 天津出入境检验检疫局动植物与食品检测中心 | 同步检测向日葵黑茎病菌和向日葵茎溃疡病菌的三重pcr引物及其扩增方法和用途 |
CN103215372A (zh) * | 2013-05-08 | 2013-07-24 | 黑龙江出入境检验检疫局检验检疫技术中心 | 基于dpo引物检测布氏杆菌的引物序列及其检测试剂盒 |
CN104404151A (zh) * | 2014-12-02 | 2015-03-11 | 宁波检验检疫科学技术研究院 | 向日葵黑茎病菌的检测试剂盒 |
CN104946637A (zh) * | 2015-07-01 | 2015-09-30 | 中华人民共和国伊犁出入境检验检疫局 | 一种向日葵黄萎病的两种轮枝病菌的多重dpo-pcr检测试剂盒及其应用 |
-
2015
- 2015-07-01 CN CN201510380097.8A patent/CN104946638B/zh not_active Expired - Fee Related
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102943118A (zh) * | 2012-12-06 | 2013-02-27 | 天津出入境检验检疫局动植物与食品检测中心 | 同步检测向日葵黑茎病菌和向日葵茎溃疡病菌的三重pcr引物及其扩增方法和用途 |
CN103215372A (zh) * | 2013-05-08 | 2013-07-24 | 黑龙江出入境检验检疫局检验检疫技术中心 | 基于dpo引物检测布氏杆菌的引物序列及其检测试剂盒 |
CN104404151A (zh) * | 2014-12-02 | 2015-03-11 | 宁波检验检疫科学技术研究院 | 向日葵黑茎病菌的检测试剂盒 |
CN104946637A (zh) * | 2015-07-01 | 2015-09-30 | 中华人民共和国伊犁出入境检验检疫局 | 一种向日葵黄萎病的两种轮枝病菌的多重dpo-pcr检测试剂盒及其应用 |
Non-Patent Citations (5)
Title |
---|
乾义柯 等: "向日葵黄萎病病原菌轮枝菌的多重DPO-PCR检测方法", 《植物保护学报》 * |
刘彬 等: "向日葵白锈病菌巢式PCR检测方法的研究", 《新疆农业科学》 * |
刘彬: "新疆向日葵上两种检疫性病原菌生物学特性及快速检测技术研究", 《中国优秀硕士学位论文全文数据库农业科技辑》 * |
张娜 等: "两种向日葵检疫性真菌病害的多重DPO-PCR检测方法", 《植物检疫》 * |
米瑶 等: "向日葵黑茎病双重PCR检测实用化研究", 《西南农业学报》 * |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN111662996A (zh) * | 2020-04-30 | 2020-09-15 | 宁波检验检疫科学技术研究院 | 一种引物组及其在基于微流控芯片用于快速检测向日葵黑茎病菌的应用 |
CN112322794A (zh) * | 2020-12-04 | 2021-02-05 | 湛江海关技术中心 | 一种利用多重dpo-rt-pcr检测花生矮化病毒及番茄环斑病毒的试剂盒 |
CN114457190A (zh) * | 2022-03-15 | 2022-05-10 | 福建省农业科学院植物保护研究所 | 检测薏苡叶斑病菌的dpo-pcr引物及方法 |
CN114457190B (zh) * | 2022-03-15 | 2023-11-17 | 福建省农业科学院植物保护研究所 | 检测薏苡叶斑病菌的dpo-pcr引物及方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN104946638B (zh) | 2018-03-02 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Cocolin et al. | Molecular detection and identification of Brettanomyces/Dekkera bruxellensis and Brettanomyces/Dekkera anomalus in spoiled wines | |
Dhib et al. | Multiplex PCR assay for the detection of common dermatophyte nail infections | |
Bougoure et al. | Assemblages of ericoid mycorrhizal and other root‐associated fungi from Epacris pulchella (Ericaceae) as determined by culturing and direct DNA extraction from roots | |
CN103290099B (zh) | 一种咖啡浆果炭疽病菌快速分子检测试剂盒及其应用 | |
CN103421898A (zh) | 耐甲氧西林金黄色葡萄球菌三重实时荧光pcr检测引物、探针、检测试剂盒和检测方法 | |
CN107541509B (zh) | 用于检测奶牛乳房炎6种传染性病原体的lamp引物组合及其应用 | |
CN104263813A (zh) | 用于鉴定茄病镰刀菌或/和尖孢镰刀菌的引物序列、试剂盒及其方法 | |
CN104946638A (zh) | 一种向日葵白锈病菌和黑茎病菌的多重dpo-pcr检测试剂盒及其应用 | |
CN103103258A (zh) | 一种利用多重pcr技术分析花生粕中黄曲霉毒素b1产生趋势的方法 | |
CN101586160A (zh) | 马尾松病死木中松材线虫的特异性检测引物、检测方法及其应用 | |
Shang et al. | A comparative study on the fungal communities of wheat Qu for Qingshuang‐type Chinese rice wine | |
CN112176080B (zh) | 特异性检测剑麻紫色卷叶病植原体的巢式pcr引物组、试剂盒及检测方法 | |
CN104004835A (zh) | 一种兔皮肤真菌复合pcr检测方法 | |
Chang et al. | Quantitative real time PCR assays for the enumeration of Saccharomyces cerevisiae and the Saccharomyces sensu stricto complex in human feces | |
CN105256052B (zh) | 一种用于军团菌快速检测与分型的试剂盒及其检测方法 | |
CN104762396A (zh) | 一种基于环介导等温扩增技术原理的组织胞浆菌感染分子诊断试剂盒及其应用 | |
CN104946637B (zh) | 一种向日葵黄萎病的两种轮枝病菌的多重dpo‑pcr检测试剂盒及其应用 | |
CN103614484A (zh) | 一种蝙蝠蛾拟青霉菌粉的特异pcr鉴真方法 | |
Atoui et al. | PCR-RFLP for Aspergillus species | |
CN101440402B (zh) | 鉴定亚洲镰孢菌和禾谷镰孢菌的引物序列及其方法 | |
Jung et al. | Identification of dermatophytes by polymerase chain reaction-restriction fragment length polymorphism analysis of metalloproteinase-1 | |
CN102534038A (zh) | 一种空肠弯曲菌的高灵敏快速检测试剂盒 | |
CN105483127A (zh) | 检测检疫性黄单胞菌的方法及其专用引物 | |
CN106755317B (zh) | 一种用于检测水稻橙叶病植原体的引物、方法及应用 | |
Olchawa et al. | New PCR test for detection of Candida glabrata based on the molecular target chosen by the RAPD technique |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
GR01 | Patent grant | ||
GR01 | Patent grant | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |
Granted publication date: 20180302 Termination date: 20210701 |