CN104293778A - 兰属微卫星标记的建立方法、核心指纹标记库与试剂盒 - Google Patents

兰属微卫星标记的建立方法、核心指纹标记库与试剂盒 Download PDF

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CN104293778A CN201410311115.2A CN201410311115A CN104293778A CN 104293778 A CN104293778 A CN 104293778A CN 201410311115 A CN201410311115 A CN 201410311115A CN 104293778 A CN104293778 A CN 104293778A
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Abstract

本发明公开了一种兰属微卫星标记的建立方法、核心指纹标记库与试剂盒。基于建兰转录组信息开发SSR引物,对这些标记进行了通用性和多态性分析,得到了49个兰属多态性标记,这些标记多态性高、重复性好,非常适用于兰属植物的遗传学研究。另外,根据标记在兰属物种中的分辨能力构建了核心指纹标记库。获得的SSR指纹标记库不但标记稳定可靠,而且具有数量较少、物种分辨能力强的特点,能最大限度反映兰属物种间差异(不是种内差异)且便于统计,可用于兰属主要物种的鉴定。

Description

兰属微卫星标记的建立方法、核心指纹标记库与试剂盒
技术领域
本发明属于分子遗传领域,涉及利用建兰的基因内部SSR的制备和生物统计的方法开发一个数量少、分辨率高的兰属主要物种指纹标记库。
技术背景
中国兰花通称国兰,属兰科(Oehidaeeae)兰属(Cymbidium),主要包括春兰、蕙兰、寒兰、建兰和墨兰等。由于其具有很高的观赏价值和经济价值,所以目前国兰爱好者往往通过属内种间和甚至属间杂交,以便创造出更多的种质资源(所谓的科技草),但同时也造成了兰属物种界限的模糊,在没有开花的时候,很难区分这些物种,这就给国兰的收藏爱好者造成了一定的困扰,而一个没有标准的行业和市场是不健康的。
而分子标记是一种鉴定物种的高效并稳定的方法。微卫星标记(microsatellite,SSR)共显性、重复性好,操作简单和易检测,是目前主流的分子标记之一。
目前,兰属植物的基因组比较大且整体信息未明,如果将基因组的SSR位点对供试种质一一进行分析鉴定,需耗费大量的人力和物力,是不现实的。因此,迫切需要一个数量少而精的指纹库。
发明内容
为了克服现有技术的不足,本发明的目的是提供一种兰属微卫星标记的建立方法、兰属植物核心指纹标记库与试剂盒。
在于从建兰转录组中开发适用于整个兰属植物的SSR标记,以用于后续兰属植物的遗传多样性、亲缘性以及遗传作图等多方面的研究,并从中筛选出若干高物种区分度的SSR标记构建兰属植物的指纹标记库。
一种兰属微卫星标记的建立方法,步骤是:
1)、建兰转录组序列的获得:
选取建兰的花苞,提取总RNA,得到转录组序列片段(Reads),去除干扰信息后,完成序列拼接,获得建兰的转录组非冗余序列(Unigene);
2)、建兰转录组非冗余序列中微卫星标记(SSR)位点的鉴定:
采用SSR检索软件对Unigene进行SSR位点查找,从而获得一系列SSR位点,同时,分析Unigene的开放阅读框,然后根据这些开放阅读框来进一步确认SSR的位置;
3)、建兰SSR引物的设计:
选取进化选择压力小的SSR位点,进行引物设计,从而获得一系列SSR引物;
4)、建兰SSR引物的扩增与筛选:
利用步骤3)得到的建兰SSR引物对多个建兰品种的基因组进行PCR扩增;供试样的基因组采取CTAB法进行提取,然后PCR扩增,最后制备聚丙烯酰胺凝胶进行电泳分离,恒压电泳直至指示剂到达底部,对凝胶进行银染显影,并用扫描仪器进行拍照、记录结果,最后用DNA ladder估算扩增产物的分子量;
5)建兰SSR引物通用性检测:
检验建兰中成功扩增的SSR引物的转移性(通用性),以其他兰属植物的基因组为模板,检测所述引物在其他兰属植物中的扩增情况,根据扩增结果,筛选多态的SSR引物。
所述的步骤1)以及步骤2)采用Trinity进行序列拼接和开发阅读框分析,步骤2)中采用MSATCOMMANDER进行SSR检索。
步骤3)中所述的进化选择压力小的SSR位点是指位于非开放阅读框区的SSR位点,或者在开放阅读框的三和六核苷酸SSR位点。
步骤3)中,所述的引物设计挑选在非开放阅读框区的SSR位点,或者在开放阅读框的三和六核苷酸SSR位点,同时挑选重复基元多的SSR,采用引物设计软件Primer3.0进行引物设计。
进一步,根据步骤5)所述的多态的SSR引物和现有物种信息,模拟出兰属多个物种的群体,设定最小个体准确归入率(min%Assign to population)和分配严谨度(Assignmentstringency LOD)的基础上计算每个标记分辨分数(score或%Relative Score),即在兰属中各个物种间的分辨能力,然后进行最优组合,建立兰属植物核心指纹标记库。
所述的兰属植物分子标记包含SSR01-SSR49共49对标记,每对标记包括2个引物序列,分别如SEQ ID NO:01-SEQ ID NO:98所示。
一种兰属植物核心指纹标记库,它包含SSR02、SSR07、SSR08、SSR32和SSR49共5对标记,每对标记包括2个引物序列,分别如SEQ ID NO:03-SEQ ID NO:04、SEQ ID NO:13-SEQID NO:14、SEQ ID NO:15-SEQ ID NO:16、SEQ ID NO:63-SEQ ID NO:64、SEQ ID NO:97-SEQ ID NO:98所示,用于兰属植物的物种区分。
一种兰属植物鉴定的试剂盒,它包括扩增或测序的引物试剂,所述的引物试剂至少包括SSR02、SSR07、SSR08、SSR32、SSR49共5对标记,每对标记包括2个引物序列,分别如SEQ ID NO:03-SEQ ID NO:04、SEQ ID NO:13-SEQ ID NO:14、SEQ ID NO:15-SEQ ID NO:16、SEQ ID NO:63-SEQ ID NO:64、SEQ ID NO:97-SEQ ID NO:98所示。
所述的引物包括进行标记修饰、突变或者添附后的引物。
本发明的有益效果:
第一、信息量大。该标记的多态性不仅仅代表着标记等位基因的多态,还意味着所在基因表达或编码的多样性。
第二、通用性好。由于转录本保守性较高,故具有较好的通用性。以此开发的分子标记适用于兰属植物的遗传多样性、亲缘性以及遗传作图等多方面的研究。
第三、建立一个兰属植物核心指纹标记库,其包括两方面内容:第一、指纹库标记集合种间分辨率的保证;第二、指纹库标记数量的控制。因为高物种区分度的分子标记数量影响着兰属物种鉴定的精确性,而数量少的指纹库标记能有效提高检测效率。
附图说明
图1是标记SSR32对48兰属材料进行PCR扩增后电泳图的结果。其中1-48为表1中的供试材料,M为DNA ladder。
具体实施方式
下面结合具体实施方式对本发明作进一步的详细描述。
实施例1 兰属SSR标记的制备及筛选方法
本实施例为兰属SSR标记的制备及筛选方法,主要包括以下步骤:
1、建兰基因表达序列的获得:
选取建兰的花苞提取总RNA,采用标准的Solexa测序方法,获得转录组Reads,去除低质量、载体和非编码序列(例如rRNA、tRNA和miRNA),利用Trinity拼接软件完成序列拼接,最终获得101423建兰的非冗余Unigene序列。
2、建兰转录组序列中SSR位点的检索:
利用MSATCOMMANDER分析SSR的发生频率。最小的重复基元数分别设置为单核苷酸10次、双核苷酸6次、三核苷酸、四核苷酸、五核苷酸、六核苷酸分别为4次,一共发现了7936个SSRs。Trinity用于分析拼接以后的Unigene的开发阅读框(ORF),然后根据这些开发阅读框来确认SSR的位置。
3、建兰SSR位点的筛选和引物设计:
根据SSR的位置和重复基元数的数量,对含有SSR位点进行选择,挑选那些在编码区的三和六核苷酸重复,在非编码区选择二、四和五核苷酸重复,同时尽可能选择重复基元多的SSR,另外结合SSR侧翼区域序列,应用Primer3.0软件进行引物设计,引物设计的主要参数包括:GC含量45-65%,Tm值50-65℃,引物长度18–25bp,预期扩增产物长度100bp以上,由此随机选取80对引物进行合成。
4、建兰基因组提取以及SSR的扩增与筛选:
选取12个建兰品种用于检测建兰SSR引物的扩增性。每份材料选取幼嫩叶片约50-100mg置于2.0ml离心管中,并置入直径为0.5cm的钢珠,液氮迅速冻后,在匀浆仪上震荡35s,使组织研磨至粉末状,采用CTAB法抽提基因组。利用Nanodrop检验控制DNA质量,然后稀释至工作浓度为20ug/L。
本实例中,对各材料基因组DNA进行PCR扩增时,采用下述扩增体系:20u1扩增体系中含有:l0u12×Taq PCR MasterMix(硕盟生物),0.5ul的10nmol/L引物(上海英骏),50ng基因组模板DNA。在Eppendorf热循环仪上(Germany)进行扩增,PCR扩增程序为:
a,94℃预变性4min;
b,94℃变性30s,因引物的具体退火温度退火30s,72℃延伸45s;
c,72℃延伸6min;
d,l6℃保温
PCR扩增反应完成后,加入4u1的6×loading buffer到PCR产物中混匀,8%聚丙烯酰胺凝胶检测,电泳参数为恒压100v,直至溴酚蓝指示剂至电泳池末端,凝胶采用银染方法显色,利用扫描仪记录结果。依据扩增结果,筛选出可以稳定扩增61对SSR引物。并用100bp间隔的DNA ladder估算扩增产物的分子量。结果如图1所示。
实施例2:兰属标记的通用性检验
1、实验材料:
选取兰属五个种(春兰、蕙兰、建兰、墨兰和寒兰)共48份材料,用于检测建兰SSR标记在兰属植物中通用性,具体材料信息,详见表1。
表1本发明中用于进行引物筛选及遗传分析的48份供试材料信息
2、基因组提取以及SSR引物扩增和筛选
每份材料选取幼嫩叶片约200mg置于2.0ml离心管中,并放入直径为0.5cm的钢珠,液氮迅速冷冻后,在匀浆仪上震荡35s,使组织研磨至粉末状,基因组采取CTAB法进行提取。在DYCZ-30型电泳槽(北京六一仪器厂)中制备8%聚丙烯酰胺凝胶进行电泳分离,电极缓冲液为1×TBE,在100V恒压下电泳直至指示剂到达底部,对凝胶银染法显影,并用扫描仪器进行拍照、记录结果。
利用实施例1中筛选的SSR引物,扩增兰属植物。采用扩增体系如下:20u1扩增体系中含有:l0u12×Taq PCR MasterMix,0.5ul的10nmol/L引物,50ng基因组模板DNA。在Eppendorf热循环仪上(Germany)进行扩增,PCR扩增程序为:
a,94℃预变性4min;
b,94℃变性30s,因引物的具体退火温度退火30s,72℃延伸45s;
c,72℃延伸6min;
d,l6℃保温
PCR扩增反应完成后,加入4u1的6X loading buffer到PCR产物中混匀,8%聚丙烯酞胺凝胶检测,电泳参数为恒压100v,直至溴酚蓝指示剂至电泳池末端,对电泳胶采用银染方法显色,利用扫描仪记录结果(图1)。
实施例3:兰属核心标记库的建立
1.SSR引物扩增结果统计及多态性分析
根据实施例2中的步骤(2)电泳结果,不同基因型标记为1、2、3等,然后将其输入Powermarker统计这些标记的多态性。在61对引物中49对存在多态性(49个标记见表2),在48份供试材料中共检测到了216个基因型,平均每对引物3.7个基因型。说明建兰SSR在兰属中具有很高的适用性,可用于分析兰属植物的遗传多样性、亲缘关系以及遗传作图。
表2本发明中49个兰属多态标记序列以及相关信息
2.SSR引物在兰属内种间分辨力分析:
对以上49个多态性分子标记数据利用convert软件转换格式输入软件whichloci。软件模拟出表4中兰属各个物种的10000个体,设定95%的最小个体准确归入率(min%Assignto population)和1的分配严谨度(Assignment stringency LOD)的基础上计算每个标记分辨分数(score或%Relative Score),即在兰属中各个物种中的分辨能力,根据计算结果,软件给出了最优的5个标记组合(分别为SSR02、SSR07、SSR08、SSR32和SSR49)(见表3)构建兰属植物指纹标记库。最后对指纹库5个标记和49个多态标记得出的物种遗传距离矩阵进行相关性分析(即Mental Test),发现两者有很高相关性(相关系数r=0.775,显著性检测p=0.008)。进一步证明指纹标记库的兰属物种分辨效率。
表3兰属指纹标记库中的5个标记
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<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
<220>
<223>  primer
 
<400>  39
aaacgaaggg ctggaagtc                                                    19
 
 
<210>  40
<211>  19
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
<220>
<223>  primer
 
<400>  40
tttgacatcg ggaagtggc                                                    19
 
 
<210>  41
<211>  19
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
<220>
<223>  primer
 
<400>  41
ctccggcctc tggttactc                                                    19
 
 
<210>  42
<211>  19
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
<220>
<223>  primer
 
<400>  42
agtgatgagg cttggaccg                                                    19
 
 
<210>  43
<211>  19
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
<220>
<223>  primer
 
<400>  43
gagagggaat tgcagtggc                                                    19
 
 
<210>  44
<211>  19
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
<220>
<223>  primer
 
<400>  44
accgagctag cacttcatc                                                    19
 
 
<210>  45
<211>  20
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
<220>
<223>  primer
 
<400>  45
agagtgattg tccagctccg                                                   20
 
 
<210>  46
<211>  19
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
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<223>  primer
 
<400>  46
tgcctctctg gtgatgtcc                                                    19
 
 
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<211>  19
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
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<223>  primer
 
<400>  47
agtattggac cctccaggc                                                    19
 
 
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<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
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<223>  primer
 
<400>  48
agaggatcat ggtgttaggc                                                   20
 
 
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<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
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<400>  49
ggcctagcca gcccttc                                                      17
 
 
<210>  50
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<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
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<223>  primer
 
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atttggatcg cacaagcgg                                                    19
 
 
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<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
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acagactgcc acctgttcc                                                    19
 
 
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<213>  Artificial Sequence
 
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gcctgccttt gctccttg                                                     18
 
 
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gacgacatat cgcgttcgg                                                    19
 
 
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<400>  54
ctcagccaca cccaagagg                                                    19
 
 
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<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
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ggagctgcat acgcaagtg                                                    19
 
 
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<211>  19
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
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<223>  primer
 
<400>  56
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<210>  57
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<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
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<223>  primer
 
<400>  57
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<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
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<213>  Artificial Sequence
 
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<400>  59
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<213>  Artificial Sequence
 
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<223>  primer
 
<400>  60
gccaattgcc agatggacg                                                    19
 
 
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<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
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<223>  primer
 
<400>  61
aagaggcact gcaagaccc                                                    19
 
 
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<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
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<223>  primer
 
<400>  62
cgttccagca acccatagc                                                    19
 
 
<210>  63
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<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
<220>
<223>  primer
 
<400>  63
gctgaaggtt ccggtcctc                                                    19
 
 
<210>  64
<211>  19
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
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<223>  primer
 
<400>  64
tccgcctctt taagccgac                                                    19
 
 
<210>  65
<211>  19
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
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<223>  primer
 
<400>  65
atcttccctc cacatcggc                                                    19
 
 
<210>  66
<211>  19
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
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<223>  primer
 
<400>  66
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<213>  Artificial Sequence
 
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<400>  67
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<213>  Artificial Sequence
 
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<400>  68
ccactggtac cctccttgg                                                    19
 
 
<210>  69
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<213>  Artificial Sequence
 
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<400>  69
tgcttcattg ttggaggcg                                                    19
 
 
<210>  70
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<213>  Artificial Sequence
 
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<223>  primer
 
<400>  70
agtggacgga gagtcaagc                                                    19
 
 
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<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
<220>
<223>  primer
 
<400>  71
gtttccaacg gtcagctcg                                                    19
 
 
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<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
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<400>  72
gtgatgtggt agcatcgcc                                                    19
 
 
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<213>  Artificial Sequence
 
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<400>  73
tacggtttcg accagcctc                                                    19
 
 
<210>  74
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<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
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<400>  74
ccatgcagat cgggcaaag                                                    19
 
 
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<211>  19
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
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<223>  primer
 
<400>  75
cgctcaaaga gatggcacg                                                    19
 
 
<210>  76
<211>  19
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
<220>
<223>  primer
 
<400>  76
tagtacggcg ctgcttgag                                                    19
 
 
<210>  77
<211>  19
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
<220>
<223>  primer
 
<400>  77
catcttcctt gcccgatgc                                                    19
 
 
<210>  78
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<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
<220>
<223>  primer
 
<400>  78
cccgccaaat ttcgagacc                                                    19
 
 
<210>  79
<211>  19
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
<220>
<223>  primer
 
<400>  79
ccagatcgaa tggctacgc                                                    19
 
 
<210>  80
<211>  18
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
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<400>  80
caaggagctc gtcgaagg                                                     18
 
 
<210>  81
<211>  19
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
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<223>  primer
 
<400>  81
gtttaggcta gcagtgcgg                                                    19
 
 
<210>  82
<211>  21
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
<220>
<223>  primer
 
<400>  82
tgagaacgta gtgaagttgc c                                                 21
 
 
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<213>  Artificial Sequence
 
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<223>  primer
 
<400>  83
cccaacgcag aacgatagc                                                    19
 
 
<210>  84
<211>  19
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
<220>
<223>  primer
 
<400>  84
cggtggcaca aatggaacg                                                    19
 
 
<210>  85
<211>  19
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
<220>
<223>  primer
 
<400>  85
gcatcgaaac cactgtcgc                                                    19
 
 
<210>  86
<211>  19
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
<220>
<223>  primer
 
<400>  86
ccctagccgg agtctcaac                                                    19
 
 
<210>  87
<211>  20
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
<220>
<223>  primer
 
<400>  87
ggacacaatg gagacgaagg                                                   20
 
 
<210>  88
<211>  18
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
<220>
<223>  primer
 
<400>  88
tgcatgaaac cacatggc                                                     18
 
 
<210>  89
<211>  19
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
<220>
<223>  primer
 
<400>  89
gcctttgacc attccgtgc                                                    19
 
 
<210>  90
<211>  19
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
<220>
<223>  primer
 
<400>  90
ggccgccatg agtaagaac                                                    19
 
 
<210>  91
<211>  21
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
<220>
<223>  primer
 
<400>  91
agacagagag tccctaaagg c                                                 21
 
 
<210>  92
<211>  20
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
<220>
<223>  primer
 
<400>  92
cagggatgtt aagtgggctg                                                   20
 
 
<210>  93
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<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
<220>
<223>  primer
 
<400>  93
tttgtggcag tggaaagcg                                                    19
 
 
<210>  94
<211>  19
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
<220>
<223>  primer
 
<400>  94
tgataccaat ggcaaggcg                                                    19
 
 
<210>  95
<211>  21
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
<220>
<223>  primer
 
<400>  95
aggattcatg tagccgacct c                                                 21
 
 
<210>  96
<211>  19
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
<220>
<223>  primer
 
<400>  96
tccctgaagg aggcaaacc                                                    19
 
 
<210>  97
<211>  19
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
<220>
<223>  primer
 
<400>  97
gcacccagct tgtttgagg                                                    19
 
 
<210>  98
<211>  20
<212>  DNA
<213>  Artificial Sequence
 
<220>
<223>  primer
 
<400>  98
cccatacatt acaggcaagc                                                   20
 
 

Claims (9)

1.一种兰属微卫星标记的建立方法,其特征在于,步骤是:
1)、建兰转录组序列的获得:
选取建兰的花苞,提取总RNA,得到转录组序列片段(Reads),去除干扰信息后,完成序列拼接,获得建兰的转录组非冗余序列(Unigene);
 2)、建兰转录组非冗余序列中微卫星标记(SSR)位点的鉴定:
采用SSR检索软件对Unigene进行SSR位点查找,从而获得一系列SSR位点,同时,分析Unigene的开放阅读框,然后根据这些开放阅读框来进一步确认SSR的位置;
3)、建兰SSR引物的设计:
选取进化选择压力小的SSR位点,进行引物设计,从而获得一系列SSR引物;
4)、建兰SSR引物的扩增与筛选:
利用步骤3)得到的建兰SSR引物对多个建兰品种的基因组进行PCR扩增;供试样的基因组采取CTAB法进行提取,然后PCR扩增,最后制备聚丙烯酰胺凝胶进行电泳分离,恒压电泳直至指示剂到达底部,对凝胶进行银染显影,并用扫描仪器进行拍照、记录结果,最后用DNA ladder估算扩增产物的分子量;
5)建兰SSR引物通用性检测:
检验建兰中成功扩增的SSR引物的转移性(通用性),以其他兰属植物的基因组为模板,检测所述引物在其他兰属植物中的扩增情况,根据扩增结果,筛选多态的SSR引物。
2.根据权利要求1所述的兰属微卫星标记的建立方法,其特征在于,所述的步骤1)以及步骤2)采用Trinity进行序列拼接和开发阅读框分析,步骤2)中采用MSATCOMMANDER进行SSR检索。
3.根据权利要求1所述的兰属微卫星标记的建立方法,其特征在于,步骤3)中所述的进化选择压力小的SSR位点是指位于非开放阅读框区的SSR位点,或者在开放阅读框的三和六核苷酸SSR位点。
4.根据权利要求1所述的兰属微卫星标记的建立方法,其特征在于,步骤3)中,所述的引物设计挑选在非开放阅读框区的SSR位点,或者在开放阅读框的三和六核苷酸SSR位点,同时挑选重复基元多的SSR,采用引物设计软件Primer3.0进行引物设计。
5.根据权利要求1所述的兰属微卫星标记的建立方法,其特征在于,进一步,根据步骤5)所述的多态的SSR引物和现有物种信息,模拟出兰属多个物种的群体,设定最小个体准确归入率(min% Assign to population)和分配严谨度(Assignment stringency LOD)的基础上计算每个标记分辨分数(score或% Relative Score),即在兰属中各个物种间的分辨能力,然后进行最优组合,建立兰属植物核心指纹标记库。
6.根据权利要求1所述的兰属微卫星标记的建立方法,其特征在于,所述的兰属植物分子标记包含SSR01-SSR49共49对标记,每对标记包括2个引物序列,分别如SEQ ID NO:01- SEQ ID NO:98所示。
7.一种兰属植物核心指纹标记库,其特征在于,它包含SSR02、SSR07、SSR08、SSR32和SSR49共5对标记,每对标记包括2个引物序列,分别如SEQ ID NO:03-SEQ ID NO:04、SEQ ID NO:13- SEQ ID NO:14、SEQ ID NO:15- SEQ ID NO:16、SEQ ID NO:63- SEQ ID NO:64、SEQ ID NO:97- SEQ ID NO:98所示,用于兰属植物的物种区分。
8.种兰属植物鉴定的试剂盒,其特征在于,它包括扩增或测序的引物试剂,所述的引物试剂至少包括SSR02、SSR07、SSR08、SSR32、SSR49共5对标记,每对标记包括2个引物序列,分别如SEQ ID NO:03-SEQ ID NO:04、SEQ ID NO:13- SEQ ID NO:14、SEQ ID NO:15- SEQ ID NO:16、SEQ ID NO:63- SEQ ID NO:64、SEQ ID NO:97- SEQ ID NO:98所示。
9.根据权利要求8所述的兰属植物鉴定的试剂盒,其特征在于,所述的引物包括进行标记修饰、突变或者添附后的引物。
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