CN103586009A - 高密度聚乙烯亚胺修饰介质提高蛋白质吸附容量和吸附速率的方法 - Google Patents

高密度聚乙烯亚胺修饰介质提高蛋白质吸附容量和吸附速率的方法 Download PDF

Info

Publication number
CN103586009A
CN103586009A CN201310547177.9A CN201310547177A CN103586009A CN 103586009 A CN103586009 A CN 103586009A CN 201310547177 A CN201310547177 A CN 201310547177A CN 103586009 A CN103586009 A CN 103586009A
Authority
CN
China
Prior art keywords
medium
pei
protein
volume
adsorption
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN201310547177.9A
Other languages
English (en)
Inventor
孙彦
余林玲
史清洪
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Tianjin University
Original Assignee
Tianjin University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Tianjin University filed Critical Tianjin University
Priority to CN201310547177.9A priority Critical patent/CN103586009A/zh
Publication of CN103586009A publication Critical patent/CN103586009A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Solid-Sorbent Or Filter-Aiding Compositions (AREA)

Abstract

本发明公开了一种高密度聚乙烯亚胺修饰介质提高蛋白质吸附容量和吸附速率的方法;该介质为平均粒径50-170μm的琼脂糖凝胶颗粒表面通过环氧基间隔臂修饰高密度聚乙烯亚胺(PEI)的介质。其制备方法为采取环氧氯丙烷活化色谱基质,活化介质与PEI中氨基反应完成配基的偶联。该色谱介质在离子强度从0.01–1mol/L的范围内对蛋白质具有较强的吸附能力,表现出了较高的吸附容量和吸附速率;同时,蛋白质的吸附表现出较好的盐浓度耐受性,保证了料液无需预处理而直接与色谱介质接触快速捕获的目标蛋白质。该介质在蛋白质高效快速分离纯化中将有广阔的应用前景。

Description

高密度聚乙烯亚胺修饰介质提高蛋白质吸附容量和吸附速率的方法
技术领域
本发明涉及一种高密度聚乙烯亚胺修饰介质在提高蛋白质吸附容量和吸附速率中的应用,属于生物技术领域中的蛋白质色谱分离技术。
背景技术
聚乙烯亚胺(poly(ethylenimine),PEI)是一种价格低廉、毒性低、带有支状结构的长链阳离子聚电解质。PEI聚合物分子中伯、仲、叔胺的理论比例为1:2:1,完全质子化时电荷密度可达23.3mEq/g,是目前电荷密度最高的物质。PEI在较宽的pH值范围内都带正电荷,可以可逆性吸附带负电荷的物质。PEI具有较好的生物相容性,已广泛地应用于基因转移和生物制品的分离纯化,例如提取肝素、移除细菌内毒素等。近年来,研究者发现PEI有利于保持酶的活性及增加稳定性,因此也将PEI偶联于多种基质上用于α-半乳糖苷酶、β-葡糖苷酶、乙醇脱氢酶等多种酶的固定化。另外,由于PEI的电荷密度极高,PEI修饰介质在促进同电荷溶菌酶氧化复性中也有较好的应用。这些发现均表明,PEI非常适用于活性蛋白质的分离纯化,为PEI应用于蛋白质色谱分离纯化中提供基础。
PEI分子量较大,含有大量高反应活性的伯氨基团,容易与色谱基质偶联而获得高PEI接枝密度的色谱介质。此外,PEI含有大量可用于离子交换的伯、仲、叔胺基团,因此可直接合成高离子交换容量的接枝型离子交换剂,而无需后续配基偶联反应。因此,PEI十分适用于色谱基质的接枝修饰。
然而,目前对PEI修饰介质在蛋白质吸附中的应用主要集中于通过PEI改性羟基磷灰石以改变蛋白质在色谱柱上的保留行为、修饰色谱基质通过固相萃取捕获蛋白质。此外,目前用于蛋白质捕获的PEI修饰介质,其蛋白质捕获量均较低,且PEI修饰量未知。尚未有研究涉及在色谱基质上接枝修饰PEI以改变蛋白质在离子交换剂上的吸附容量和吸附速率。
虽然,研究者们也已经开发了一系列的聚合物接枝修饰介质应用于提高蛋白质的吸附容量和传质速率。然而,这些接枝型介质多是通过先在基础介质上连接不带电的葡聚糖、聚甲基丙烯酸酯等中性长链聚合物,再偶联较短的离子交换配基而得到的。这类介质修饰方法需要两步偶联反应,合成工艺较为复杂。同时,葡聚糖价格昂贵,介质合成成本较高,而聚甲基丙烯酸酯的单体毒性较大,合成危险性较大。此外,这些接枝型介质的操作范围较窄,通常只能在较低盐浓度的环境中使用。
本专利即为将高密度聚乙烯基亚胺修饰的色谱介质应用于蛋白质的快速高效吸附中,该介质同时具有高吸附容量和高传质速率,应用范围宽,合成工艺简单,成本低廉,生物相容性好,安全低毒。因此,高密度聚乙烯基亚胺修饰介质非常适用于蛋白质的快速高效吸附中。
发明内容
本发明的目的在于克服现有技术的不足,进而提供一种高密度聚乙烯亚胺修饰介质提高蛋白质吸附性能。上述介质不但具有较高的吸附容量,同时具有较快的传质速率,而且也可在较宽的盐浓度范围内使用。
本发明的技术方案概述如下:
一种用高密度聚乙烯亚胺修饰介质提高蛋白质吸附容量和吸附速率的方法,该介质为平均粒径50-170μm的琼脂糖凝胶颗粒,表面通过环氧基间隔臂修饰高密度聚乙烯亚胺(PEI)的介质。
上述高密度PEI修饰色谱介质的结构表达如下:
Figure BDA0000409468050000021
上述PEI的分子量(MW)为1200–750000Da,结构式如下。
本发明的高密度聚乙烯亚胺修饰方法,其步骤如下:
1)介质的环氧化反应
将平均粒径为50-170μm的琼脂糖凝胶的介质,加入到二甲基亚砜中,制备介质悬浮液,二甲基亚砜体积用量为介质体积量的2倍。再向上述介质悬浮液中加入环氧氯丙烷,环氧氯丙烷体积与介质体积相等,混合均匀,制得混合悬浮液。最后向混合悬浮液中加入浓度为1.0mol/L的氢氧化钠溶液,氢氧化钠溶液体积为介质体积的2倍,置于20-35℃的恒温水浴,120-200rpm活化1-4h,之后用去离子水冲洗介质至无游离环氧氯丙烷,制得活化介质。
2)活化介质的PEI偶联
将上述活化介质加入到PEI水溶液中,PEI水溶液浓度1–25%(w/w)、体积与介质体积相等。介质悬浮液置于20-35℃的恒温水浴,在120-200rpm下混合1–12h,确保PEI充分扩散到介质孔道内。上述PEI充分扩散的介质悬浮液中加入体积为介质体积的0.1–2倍、浓度为0.1–2mol/L的氢氧化钠溶液后,置于20-35℃和120-200rpm下反应2–60h。反应产物经去离子水反复冲洗至中性后,加入0.5g/L硼氢化钠溶液中,在室温反应12h还原介质表面残留环氧基,还原后的介质再经离子水反复冲洗后,制得高PEI接枝密度的离子交换剂。
本发明的关键技术有四点:首先,接枝用PEI分子量的选择,分子量较高的PEI有利于获得较高PEI接枝密度的介质;其次,PEI水溶液浓度的控制,从而获得较好的PEI接枝形态和较高PEI接枝量;再次,偶联PEI前的扩散时间的确定,以保证PEI大分子充分进入介质孔道,有利于偶联反应。最后,偶联PEI反应时间、温度和偶联用氢氧化钠浓度、体积的确定,从而得到高PEI接枝密度的介质。
本发明的优点:
经实验证明,高密度PEI修饰的离子交换色谱介质在离子强度从0.01–1mol/L的范围内对蛋白质均具有较强的吸附特性,表现出了较高的吸附容量和吸附速率,而且对盐浓度具有较好的耐受性。从而保证了介质可在高盐或低盐浓度下直接用于料液中蛋白质的快速捕获而不需要预处理。高PEI密度的介质同时具有较高的吸附容量和吸附速率,提高了分离效率。该介质具有温和的吸附和洗脱条件,且偶联的PEI有利于保持蛋白质的活性和增加稳定性,为保持蛋白质活性提供了良好的环境。介质清洗、除菌方便,易于再生,生物相容性好,制备方法简单、低毒、价格低廉,在蛋白质高效快速分离纯化中将有广阔的应用前景。
具体实施方式
下面的实例将对本发明提供的方法予以进一步的说明。
实施例1:
取G3漏斗抽干的1g Sepharose FF(平均粒径为90μm)放入50mL锥形瓶中,依次加入2mL的二甲基亚砜,1mL的环氧氯丙烷,2mL的NaOH(1mol/L),25℃,170rpm摇床反应2.5h,用去离子水反复冲洗,直到清洗液用酚酞–Na2S2O3溶液检测不变色,制得表面带有活性环氧基的活化介质。活化介质的环氧基修饰密度为60mmol/L。
将1mL的PEI(MW1200Da)水溶液(25%w/w)加入到活化介质(1g)中,25℃,170rpm,4h,使PEI充分扩散到介质孔道内,加入0.5mL的NaOH(2mol/L),25℃,170rpm反应48h以使PEI偶联到琼脂糖上,用去离子水反复冲洗,直到清洗液用酚酞检测不变色,再将介质置于0.5g/L的硼氢化钠溶液中,室温反应12h还原介质表面残留环氧基,用去离子水反复冲洗,制得介质的离子交换容量为420mmol/L。
实施例2:
将用G3漏斗抽干的1g实施例1中的活化介质加入到1mL的PEI(MW750000Da)水溶液(6%w/w)中,25℃,170rpm,4h,使PEI充分扩散到介质孔道内,加入1mL的NaOH(1mol/L),25℃,170rpm反应48h以使PEI偶联到琼脂糖上,用去离子水反复冲洗,直到清洗液用酚酞检测不变色,再将介质置于0.5g/L的硼氢化钠溶液中,室温反应12h还原介质表面残留环氧基,用去离子水反复冲洗,制得介质的离子交换容量为520mmol/L。
实施例3:
将用G3漏斗抽干的1g实施例1中的活化介质加入到1mL的PEI(MW750000Da)水溶液(12%w/w)中,25℃,170rpm,8h,使PEI充分扩散到介质孔道内,加入1mL的NaOH(1mol/L),25℃,170rpm反应48h以使PEI偶联到琼脂糖上,用去离子水反复冲洗,直到清洗液用酚酞检测不变色,再将介质置于0.5g/L的硼氢化钠溶液中,室温反应12h还原介质表面残留环氧基,用去离子水反复冲洗,制得介质的离子交换容量为740mmol/L。
实施例4:
将用G3漏斗抽干的1g实施例1中的活化介质加入到1mL的PEI(MW750000Da)水溶液(25%w/w)中,25℃,170rpm,12h,使PEI充分扩散到介质孔道内,加入1mL的NaOH(1mol/L),25℃,170rpm反应60h以使PEI偶联到琼脂糖上,用去离子水反复冲洗,直到清洗液用酚酞检测不变色,再将介质置于0.5g/L的硼氢化钠溶液中,室温反应12h还原介质表面残留环氧基,用去离子水反复冲洗,制得介质的离子交换容量为1230mmol/L。
实施例5:
取G3漏斗抽干的1g Sepharose FF(平均粒径为90μm)放入50mL锥形瓶中,依次加入2mL的二甲基亚砜,1mL的环氧氯丙烷,2mL的NaOH(1mol/L),30℃,180rpm摇床反应1h,用去离子水反复冲洗,直到清洗液用酚酞–Na2S2O3溶液检测不变色,制得表面带有活性环氧基的活化介质。活化介质的环氧基修饰密度为65mmol/L。
将1mL的PEI(MW750000Da)水溶液(20%w/w)加入到活化介质(1g)中,30℃,180rpm,1h,加入0.5mL的NaOH(0.1mol/L),30℃,180rpm反应2h以使PEI偶联到琼脂糖上,用去离子水反复冲洗,直到清洗液用酚酞检测不变色,再将介质置于0.5g/L的硼氢化钠溶液中,室温反应12h还原介质表面残留环氧基,用去离子水反复冲洗,制得介质的离子交换容量为920mmol/L。
实施例6:
取G3漏斗抽干的1g SA-L(平均粒径为170μm)放入50mL锥形瓶中,依次加入2mL的二甲基亚砜,1mL的环氧氯丙烷,2mL的NaOH(1mol/L),35℃,120rpm摇床反应2h,用去离子水反复冲洗,直到清洗液用酚酞–Na2S2O3溶液检测不变色,制得表面带有活性环氧基的活化介质。活化介质的环氧基修饰密度为75mmol/L。
将1mL的PEI(MW60000Da)水溶液(6%w/w)加入到活化介质(1g)中,20℃,120rpm,8h,使PEI充分扩散到介质孔道内,加入2mL的NaOH(0.5mol/L),20℃,120rpm反应48h以使PEI偶联到琼脂糖上,用去离子水反复冲洗,直到清洗液用酚酞检测不变色,再将介质置于0.5g/L的硼氢化钠溶液中,室温反应12h还原介质表面残留环氧基,用去离子水反复冲洗,制得介质的离子交换容量为440mmol/L。
实施例7:
取G3漏斗抽干的1g SA-S(平均粒径为50μm)放入50mL锥形瓶中,依次加入2mL的二甲基亚砜,1mL的环氧氯丙烷,2mL的NaOH(1mol/L),20℃,200rpm摇床反应4h,用去离子水反复冲洗,直到清洗液用酚酞–Na2S2O3溶液检测不变色,制得表面带有活性环氧基的活化介质。活化介质的环氧基修饰密度为70mmol/L。
将1mL的PEI(MW60000Da)水溶液(1%w/w)加入到活化介质(1g)中,35℃,200rpm,6h,使PEI充分扩散到介质孔道内,加入0.1mL的NaOH(1mol/L),35℃,200rpm反应4h以使PEI偶联到琼脂糖上,用去离子水反复冲洗,直到清洗液用酚酞检测不变色,再将介质置于0.5g/L的硼氢化钠溶液中,室温反应12h还原介质表面残留环氧基,用去离子水反复冲洗,制得介质的离子交换容量为100mmol/L。
实验例1:不同的介质对牛血清白蛋白的静态吸附实验
将实施实例3中介质用含有不同浓度(0、20、50、100、150mmol/L)的氯化钠的20mmol/LTris–HCl缓冲液(pH8)平衡后,再将G3漏斗抽干的0.1g平衡后介质加入到10mL含有不同牛血清白蛋白的平衡缓冲液中,上述介质悬浮液置于25℃和170rpm恒温水浴震荡24h后,离心收集上清液在280nm下测吸光值,通过物料衡算确定蛋白质在介质上的吸附量。在0–150mmol/L氯化钠浓度下,介质的静态饱和吸附容量为205–278mg/mL。
将实施实例4中介质用含有不同浓度(0、20、50、100、150mmol/L)的氯化钠的20mmol/LTris–HCl缓冲液(pH8)平衡后,再将G3漏斗抽干的0.1g平衡后介质加入到10mL含有不同牛血清白蛋白的平衡缓冲液中,上述介质悬浮液置于25℃,170rpm恒温水浴震荡24h后,离心收集上清液在280nm下测吸光值,通过物料衡算确定蛋白质在介质上的吸附量。在0–150mmol/L氯化钠浓度下,介质的静态饱和吸附容量为175–278mg/mL。
比较:将商品介质Q Sepharose FF用含有不同浓度(0、20、50、100、150mmol/L)的氯化钠的20mmol/L Tris–HCl缓冲液(pH8)平衡后,再将G3漏斗抽干的0.1g平衡后介质加入到10mL含有不同量牛血清白蛋白的平衡缓冲液中,上述介质悬浮液置于25℃和170rpm恒温水浴震荡24h后,离心收集的上清液在280nm下测吸光值,通过物料衡算确定蛋白质在介质上的吸附量。在0–150mmol/L氯化钠浓度下,介质的静态饱和吸附容量为52–137mg/mL。
由结果可知,在上述实验中的氯化钠浓度下,高密度PEI修饰介质(实施实例3中介质和实施实例4中介质)对牛血清白蛋白的静态饱和吸附容量及其对盐浓度的耐受程度均高于商品介质Q Sepharose FF。这说明高密度PEI修饰介质明显提高了蛋白质的吸附容量。
实验例2:不同的介质对牛血清白蛋白的吸附动力学实验
将实施实例3中介质用含有不同浓度(0、20、50、100、150mmol/L)的氯化钠的20mmol/LTris–HCl缓冲液(pH8)平衡后,经G3漏斗抽干后分别取0.50、0.65、0.78、0.96、1.10g(对应氯化钠浓度0、20、50、100、150mmol/L)加入100mL含有1mg/mL的牛血清白蛋白的相应平衡缓冲液中,上述介质悬浮液置于25℃恒温水浴,搅拌速度为280rpm,通过实时在线检测蛋白质溶液在280nm下的吸光值,从而确定蛋白质溶液浓度随时间变化的曲线,求得蛋白质在介质中的传质速率,用有效孔扩散系数与牛血清白蛋白在自由溶液中扩散系数的比值(De/D0)来代表。在0–150mmol/L氯化钠浓度下,介质的De/D0值为0.49–1.61。
将实施实例4中介质用含有不同浓度(0、20、50、100、150mmol/L)的氯化钠的20mmol/LTris–HCl缓冲液(pH8)平衡后,经G3漏斗抽干后称取0.50、0.65、0.78、0.96、1.10g(对应氯化钠浓度0、20、50、100、150mmol/L)加入100mL含有1mg/mL的牛血清白蛋白的相应平衡缓冲液中,上述介质悬浮液置于25℃恒温水浴,搅拌速度为280rpm,通过实时在线检测蛋白质溶液在280nm下的吸光值,从而确定蛋白质溶液浓度随时间变化的曲线,求得蛋白质在介质中的传质速率,用有效孔扩散系数与牛血清白蛋白在自由溶液中扩散系数的比值(De/D0)来代表。在0–150mmol/L氯化钠浓度下,介质的De/D0值为0.67–1.24。
比较:将商品介质Q Sepharose FF用含有不同浓度(0、20、50、100、150mmol/L)的氯化钠的20mmol/L Tris–HCl缓冲液(pH8)平衡后,经G3漏斗抽干后分别称取0.50、0.65、0.78、0.96、1.10g(对应氯化钠浓度0、20、50、100、150mmol/L)加入100mL含有1mg/mL的牛血清白蛋白的相应的平衡缓冲液中,上述介质悬浮液置于25℃恒温水浴,搅拌速度为280rpm,通过实时在线检测蛋白质溶液在280nm下的吸光值,从而确定蛋白质溶液浓度随时间变化的曲线,求得蛋白质在介质中的传质速率,用有效孔扩散系数与牛血清白蛋白在自由溶液中扩散系数的比值(De/D0)来代表。在0–150mmol/L氯化钠浓度下,介质的De/D0值为0.04–0.81。
由结果可知,在上述实验中的氯化钠浓度下,高密度PEI修饰介质(实施实例3中介质和实施实例4中介质)对牛血清白蛋白的吸附速率及其对盐浓度的耐受程度均高于商品介质Q Sepharose FF。这说明高密度PEI修饰介质明显提高了蛋白质的吸附速率。
本发明提出的高密度聚乙烯亚胺修饰介质在提高蛋白质吸附容量和吸附速率的应用,已通过现场较佳实施例子进行了描述,相关技术人员明显能在不脱离本发明内容、精神和范围内对本文所述的方法进行改动或适当变更与组合,来实现本发明技术。特别需要指出的是,所有相类似的替换和改动对本领域技术人员来说是显而易见的,他们都被视为包括在本发明精神、范围和内容中。

Claims (3)

1.一种高密度聚乙烯亚胺修饰介质,其特征是该介质为平均粒径50-170μm的琼脂糖凝胶颗粒表面通过环氧基间隔臂修饰高密度聚乙烯亚胺PEI的介质;
上述高密度PEI修饰色谱介质的结构表达如下:
Figure FDA0000409468040000011
上述PEI的重均分子量为1200–750000Da,结构式如下。
Figure FDA0000409468040000012
2.权利要求1的高密度聚乙烯亚胺修饰方法,其步骤如下:
1)介质的环氧化反应
将平均粒径为50-170μm的琼脂糖凝胶的介质,加入到二甲基亚砜中,制备介质悬浮液,二甲基亚砜体积用量为介质体积量的2倍;再向上述介质悬浮液中加入环氧氯丙烷,环氧氯丙烷体积与介质体积相等,混合制得混合悬浮液;向混合悬浮液中加入浓度为1.0mol/L的氢氧化钠溶液,氢氧化钠溶液体积为介质体积的2倍,置于20-35℃的恒温水浴,120-200rpm活化1-4h,之后用去离子水冲洗介质至无游离环氧氯丙烷,制得活化介质;
2)活化介质的PEI偶联
将上述活化介质加入到PEI水溶液中,PEI水溶液浓度1–25%、体积与介质体积相等;介质悬浮液置于20-35℃的恒温水浴,在120-200rpm下混合1–12h,向上述PEI充分扩散的介质悬浮液中加入体积为介质体积的0.1–2倍、浓度为0.1–2mol/L的氢氧化钠溶液后,置于20-35℃和120-200rpm下反应2–60h;反应产物经去离子水反复冲洗至中性后,加入0.5g/L硼氢化钠溶液中,在室温反应12h还原介质表面残留环氧基,还原后的介质再经离子水反复冲洗后,制得高PEI接枝密度的离子交换剂。
3.如权利要求2所述的方法,其特征是介质的离子交换容量为100–1230mmol/L。
CN201310547177.9A 2013-11-06 2013-11-06 高密度聚乙烯亚胺修饰介质提高蛋白质吸附容量和吸附速率的方法 Pending CN103586009A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201310547177.9A CN103586009A (zh) 2013-11-06 2013-11-06 高密度聚乙烯亚胺修饰介质提高蛋白质吸附容量和吸附速率的方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201310547177.9A CN103586009A (zh) 2013-11-06 2013-11-06 高密度聚乙烯亚胺修饰介质提高蛋白质吸附容量和吸附速率的方法

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN103586009A true CN103586009A (zh) 2014-02-19

Family

ID=50076448

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201310547177.9A Pending CN103586009A (zh) 2013-11-06 2013-11-06 高密度聚乙烯亚胺修饰介质提高蛋白质吸附容量和吸附速率的方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN103586009A (zh)

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN105001376A (zh) * 2015-06-23 2015-10-28 天津大学 原子转移自由基聚合制备高容量蛋白质层析介质的方法
CN105195115A (zh) * 2015-08-27 2015-12-30 天津大学 二乙氨乙基化葡聚糖修饰以琼脂糖凝胶为基础的色谱介质及制备方法和应用
CN106000364A (zh) * 2016-05-24 2016-10-12 天津大学 琥珀酸酐修饰聚乙烯亚胺接枝介质及制备方法与应用
CN109225177A (zh) * 2018-09-06 2019-01-18 中国海洋大学 一种聚乙烯亚胺超支化琼脂糖基硼亲和材料的制备方法及其应用
CN110075811A (zh) * 2019-04-01 2019-08-02 天津大学 二甲胺基丙基丙烯酰胺接枝琼脂糖凝胶色谱介质及制备方法和应用

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0316492A1 (en) * 1986-05-07 1989-05-24 Bioprobe International, Inc. Polymeric matrix for affinity chromatography and immobilization of ligands
US6783962B1 (en) * 1999-03-26 2004-08-31 Upfront Chromatography Particulate material for purification of bio-macromolecules
CN101036877A (zh) * 2007-01-25 2007-09-19 天津大学 从发酵清液直接捕获蛋白质的疏水电荷诱导色谱介质及制备方法

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0316492A1 (en) * 1986-05-07 1989-05-24 Bioprobe International, Inc. Polymeric matrix for affinity chromatography and immobilization of ligands
US6783962B1 (en) * 1999-03-26 2004-08-31 Upfront Chromatography Particulate material for purification of bio-macromolecules
CN101036877A (zh) * 2007-01-25 2007-09-19 天津大学 从发酵清液直接捕获蛋白质的疏水电荷诱导色谱介质及制备方法

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
LIN-LING YU ET AL: "Ion-exchange resins facilitate like-charged protein refolding: Effects of porous solid phase properties", 《JOURNAL OF CHROMATOGRAPHY A》 *
LIN-LING YU ET AL: "Protein adsorption to poly(ethylenimine)-modified Sepharose FF: I. A critical ionic capacity for drastically enhanced capacity and uptake kinetics", 《 JOURNAL OF CHROMATOGRAPHY A》 *

Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN105001376A (zh) * 2015-06-23 2015-10-28 天津大学 原子转移自由基聚合制备高容量蛋白质层析介质的方法
CN105195115A (zh) * 2015-08-27 2015-12-30 天津大学 二乙氨乙基化葡聚糖修饰以琼脂糖凝胶为基础的色谱介质及制备方法和应用
CN106000364A (zh) * 2016-05-24 2016-10-12 天津大学 琥珀酸酐修饰聚乙烯亚胺接枝介质及制备方法与应用
CN106000364B (zh) * 2016-05-24 2019-05-14 天津大学 琥珀酸酐修饰聚乙烯亚胺接枝介质及制备方法与应用
CN109225177A (zh) * 2018-09-06 2019-01-18 中国海洋大学 一种聚乙烯亚胺超支化琼脂糖基硼亲和材料的制备方法及其应用
CN109225177B (zh) * 2018-09-06 2021-04-13 中国海洋大学 一种聚乙烯亚胺超支化琼脂糖基硼亲和材料的制备方法及其应用
CN110075811A (zh) * 2019-04-01 2019-08-02 天津大学 二甲胺基丙基丙烯酰胺接枝琼脂糖凝胶色谱介质及制备方法和应用

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN103586009A (zh) 高密度聚乙烯亚胺修饰介质提高蛋白质吸附容量和吸附速率的方法
CA2732398C (en) Graft copolymers for ion exchange chromatography
CN104258830B (zh) 一种聚乙烯亚胺修饰的壳聚糖微球介质及其制备和应用方法
CN104096544B (zh) 以氨基苯并咪唑为功能配基的层析介质及其制备方法
CN103212377B (zh) 一种琼脂糖免疫磁性微球的制备方法及其应用
CN105344331A (zh) 球形重金属捕捉吸附材料及其制备方法
CN104624178A (zh) 一种重金属离子吸附剂聚乙烯亚胺-木质素磺酸钠的制备方法
CN104275161A (zh) 一种粒状阳离子染料吸附剂及其制备方法
Kubota et al. Recovery of serum proteins using cellulosic affinity membrane modified by immobilization of Cu2+ ion
CN104475041A (zh) 制备琼脂糖磁性微球的新方法及其在分离纯化IgG抗体中的用途
CN105195115A (zh) 二乙氨乙基化葡聚糖修饰以琼脂糖凝胶为基础的色谱介质及制备方法和应用
CN102068965A (zh) 一种适于蛋白纯化的壳聚糖分离介质的制备方法
CN113426428A (zh) 一种聚苯胺-硫氮MXene/海藻酸钠复合凝胶吸附剂及其制备方法与应用
CN103111266B (zh) 去除水中抗生素的颗粒状吸附剂的制备方法、制得吸附剂及应用
CN104492391B (zh) 一种壳聚糖修饰的白蛋白纳米球重金属吸附材料的制备方法
Su et al. Preparation of a surface molecular‐imprinted adsorbent for Ni2+ based on Penicillium chrysogenum
CN105664862A (zh) 紫球藻胞外多糖吸附剂及其制备方法
CN103933942A (zh) 一种巯丙基三甲氧基硅烷改性亚麻吸附剂的制备及应用
CN103145813B (zh) 一种分离纯化重组蛋白a的方法
CN103599757B (zh) 一种磁性温敏型表面锶离子印迹吸附剂的制备方法
CN107780198A (zh) 微波辅助制备螯合纤维的方法
CN106861648A (zh) 一种硫化螯合改性秸秆纤维吸附剂的制备方法及产品
CN109207467A (zh) 一种排硫硫杆菌的细胞固定化方法
CN103252218B (zh) 混合式整体晶胶介质及其制备方法
CN102872840A (zh) 螯合吸附材料的辐射合成方法

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
RJ01 Rejection of invention patent application after publication

Application publication date: 20140219

RJ01 Rejection of invention patent application after publication