CN103193855A - 一种金樱子皂苷单体的制备方法 - Google Patents

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Abstract

一种金樱子皂苷单体的制备方法,涉及一种天然药物的制备方法,主要步骤包括:制备金樱子提取液,将中药金樱子干燥果皮粉碎后按常规用4-50倍体积量的30%-85%乙醇水溶液浸泡,冷浸、渗辘、超声、提取;制备金樱子皂苷A粗品,提取液经减压浓缩。制备金樱子皂苷A,使用有机溶剂对金樱子总皂苷进行重结晶处理,收集不同批次结晶后母液浓缩至近饱和后用1-5倍量硅胶拌样,干燥后采用大型减压硅胶柱色谱对其进行纯化处理,洗脱、蒸干,即得到金樱子皂苷A纯品。本方法通过精制去除溶剂残留,产品安全性得到保证,同时简化了制备流程,节省了溶媒溶剂用量,适合用于工业化大生产。

Description

一种金樱子皂苷单体的制备方法
技术领域
 本发明涉及一种天然药物的制备方法,一特别是涉及一种金樱子皂苷单体的制备方法。
背景技术
金樱子的药用价值:中药金樱子Rosa laevigata Michx.为蔷薇科蔷薇属植物在我国分布非常广泛。始载于《蜀本草》,其果实,根和叶均可入药。《本草纲目》中记载金樱子:性酸、涩、平、无毒;主治脾泻下痢、止小便利、涩精气。金樱子果实中含有丰富的三萜皂苷、黄酮及多糖类化合物,药理学研究表明其具有保肝、抗炎、抗应激、抗肿瘤、抑菌,以及降血糖、降血脂、抗心率失常等多种生物活性。尤其近年来为国内外学者研究的热点。
金樱子的保健功用:民间历来有金樱子泡酒的治疗风湿炎症的做法。2002年在《卫生部关于进一步规范保健食品原料管理的通知》(卫法监发[2002]51号)一文中正式将“金樱子”列入保健食品的行列。2010年经国家食品药品监督管理局批准认证的“过江龙牌金樱杜仲酒”(广东过江龙酒业有限公司 国食健字G20100185)也成为目前以金樱子为主要成分的国食健字成品。
金樱子皂苷A,又名19α-羟基亚细亚酸-28-O-β-D-吡喃葡萄糖苷,为金樱子果实中的主要三萜皂苷,其含量可达10mg/g,即每1kg金樱子药材中含有10g金樱子皂苷A。研究表明金樱子中的三萜类成分(包括金樱子皂苷A)能显著抑制脂多糖(LPS)引起的293-nfkb细胞中荧光素酶表达,且呈现剂量依赖关系,表明具有明显的保肝、抗炎活性。所以金樱子皂苷A作为天然植物来源的药用原料或者中间体,具有重要的应用价值。
以往该化合物的分离主要经过以下步骤:金樱子果实粉碎,用工业甲醇热回流,甲醇液浓缩。浸膏趁热全部分散在水中,依次用氯仿、乙酸乙酯、正丁醇萃取,萃取物浓缩得到三部分。乙酸乙酯和正丁醇部分经硅胶柱反复层析,氯仿-甲醇梯度洗脱得到金樱子皂苷A。传统做法获得该化合物的方式是用体积分数70%乙醇回流提取5次,减压浓缩后,得到水液和不溶物。不溶物用水混悬,依次用石油醚、乙酸乙酯和正丁醇萃取。选择了乙酸乙酯部分进行分离。经过反复硅胶柱色谱、ODS、Sephadex LH 20和重结晶得到金樱子皂苷A。
上述制备方法步骤繁琐,操作费时,产品收率低,成本高,有机溶剂用量较大,对环境易造成污染,产品易残留有机溶剂而不能充分保证产品的安全性,不适合工业化制备生产。
发明内容
本发明的目的在于提供一种金樱子皂苷单体的制备方法。本方法通过精制去除溶剂残留,产品安全性得到保证,同时简化了制备流程,节省了溶媒溶剂用量,适合用于工业化大生产。
本发明的目的是通过以下技术方案实现的:
一种金樱子皂苷单体的制备方法,所述方法包括以下步骤:
将粉碎后干燥的金樱子果皮用有机溶剂进行提取,提取液减压浓缩,浓缩液低温下放置,高速离心或过滤,滤液上大孔吸附树脂,收集30-60%乙醇水洗脱液,减压回收溶剂,沉淀物干燥即得金樱子皂苷A粗品,粗品经过2-3次重结晶,精制后即得金樱子皂苷A纯品:
所述的一种金樱子皂苷单体的制备方法,所述提取液经减压浓缩,浓缩液放置,高速离心或过滤,滤液上大孔树脂,洗脱,干燥后得到的金樱子皂苷A粗品,再次上大孔树脂精制1次。
所述的一种金樱子皂苷单体的制备方法,所述重结晶为使用有机溶剂对金樱子总皂苷进行重结晶处理,利用减压柱色谱纯化结晶后的母液。
所述的一种金樱子皂苷单体的制备方法,所述精制包括经活性炭脱色精制。
本发明的优点与效果是:
本发明的制备方法简单,适合用于工业化大生产。
产品纯度达85-99%,收率1%以上。
3. 本发明提高操作效率,省时,产品收率高,节省溶媒溶剂用量,可以进行工业化生产。
4. 本发明精制去除溶剂残留,产品安全性得到保证。
附图说明
图1是金樱子皂苷A的HPLC图谱;
图2是金樱子皂苷A的ESI-MS图谱;
图3是金樱子皂苷A的1H NMR图谱;
图4是金樱子皂苷A的13C NMR图谱。
注:本发明的图1图4为产物状态的分析示意图或照片(仅供参考),图中文字或影像不清晰并不影响对本发明技术方案的理解。
具体实施例
下面结合实施例对本发明进行详细说明。
本发明制备金樱子皂苷A的方法如下:
1、制备金樱子提取液
将中药金樱子干燥果皮粉碎后按常规用4-50倍体积量的30%-85%乙醇水溶液浸泡5-12小时,冷浸、渗辘、超声、微波或加热回流提取2-4次,每次0.1-3小时,合并提取液,减压浓缩至无醇味,得提取液;
2、制备金樱子皂苷A粗品
提取液经减压浓缩后,浓缩液低温下放置,高速离心或过滤,滤液上大孔树脂吸附后,依次用水、10-20%、30-60%,70-95%乙醇液洗脱至流出液无色,收集30-60%乙醇洗脱液,减压回收溶剂,沉淀物干燥即得,本发明中的百分比均为重量百分比。
上述得到的金樱子皂苷A粗品优选再次上大孔树脂精制1次。
3、制备金樱子皂苷A
结晶:使用有机溶剂对金樱子总皂苷进行重结晶处理,即得到金樱子皂苷A纯品。
母液:收集不同批次结晶后母液浓缩至近饱和后用1-5倍量硅胶(100-400目)拌样,干燥后采用大型减压硅胶柱色谱对其进行纯化处理,洗脱顺序为:先用二氯甲烷:乙醇90:10洗脱5-10个柱体积后,用二氯甲烷:乙醇75:15洗脱柱体积,收集二氯甲烷:乙醇75:15洗脱液,蒸干,即得。
有机溶剂选自甲醇、丙酮、二氯甲烷、乙酸乙酯、乙醇、石油醚、正己烷中的一种或几种。
上述制备方法得到的样品优选还包括精制,精制方法优选下列几种:
1、将得到的金樱子皂苷A经活性炭脱色精制。
2、将得到的金樱子皂苷A用截留分子量为1500Da以上的超滤膜超滤。
3、将得到的金樱子皂苷A用水醇溶解后上反相色谱柱(C18柱或C8柱),先用5-20%的乙醇洗脱3-4倍柱体积后,用40-60%的乙醇洗脱10-15倍柱体积后用乙醇洗脱,收集40-60%的乙醇洗脱液,蒸干。
上述三种方法中,可以只选一种方法精制,还可任选其中的两种或三种。
其中高速离心的转速优选8000转/分钟以上。
大孔树脂优选D-101、HPD-100、HPD-600、HPD-900,HP-20,CHp20,AB-8或ADS-7。
实施例1:
取金樱子药材10kg,其药材来源为蔷薇科蔷薇属植物金樱子Rosa laevigata Michx.的干燥果皮,以5倍量75%乙醇回流提取3次,每次2小时,提取液减压浓缩至无醇味,经12000转/分高速离心,上清液用乙酸乙酯等体积萃取3次,水液上AB-8型大孔树脂柱吸附后,依次用水、10-20%乙醇液、30-60%,70-90%乙醇液洗脱至流出液无色,收集40-60%乙醇洗脱液,减压蒸干,即得金樱子皂苷A粗品,金樱子皂苷A粗品再经HP-20柱,用水、10-20%乙醇液、30-60%,70-90%乙醇液洗脱至流出液无色,收集40-60%乙醇洗脱液,减压蒸干,该提取物进一步,用乙醇:三氯甲烷:石油醚(6:1:3)混合溶液重结晶2次得到针状结晶,为金樱子皂苷A纯品,干燥后即得金樱子皂苷A 56g。
金樱子皂苷A的含量测定(HPLC-RI法)
色谱条件:色谱柱 : Venusil-XBP C18 (5μm,4.6×250mm);
柱温:25oC;
流动相:甲醇:水(45:55)
流速:0.8ml/min;
样品溶液的制备:精密称取金樱子皂苷A样品10mg至10ml量瓶中,以甲醇溶液稀释至刻度,摇匀,过微孔滤膜 (0.45μm),取续滤液20μL注入高效液相色谱仪,计算,即得,色谱图见图1。
计算方法:面积归一化法。
金樱子皂苷A的保留时间:16 min
分析结果:纯度为91.2%。
实施例2:
取金樱子药材5kg,其药材来源为蔷薇科蔷薇属植物金樱子Rosa laevigata Michx.的干燥叶,以20倍量40%乙醇冷浸提取2次,每次1.5小时,提取液减压浓缩至无醇味,经10000转/分高速离心,上清液用正己烷等体积萃取3次,水液上HPD-600型大孔树脂柱吸附后,依次用水、10-20%乙醇液、30-60%,70-90%乙醇液洗脱至流出液无色,收集40-60%乙醇洗脱液,减压蒸干,即得金樱子皂苷A粗品,金樱子皂苷A粗品再经HP-20柱,用水、10-20%乙醇液、30-60%,70-90%乙醇液洗脱至流出液无色,收集40-60%乙醇洗脱液,减压蒸干,该提取物进一步,用甲醇:二氯甲烷:正己烷(7:3:2)混合溶液重结晶3次得到针状结晶,为金樱子皂苷A纯品,干燥后即得金樱子皂苷A,白色针状结晶(甲醇),mp228~230℃。ESI- MS(m/z): 1355[2M+Na] +, 689[M+Na]+1H-NMR (600 MHz, MeOD): δppm: 5.31(2H, m), 3.79(1H, dd, J=12.0 Hz, J=2.4 Hz), 3.67(2H, m), 3.49(1H, d, J=10.8 Hz), 3.33-3.34(5H, m), 3.26(1H, d, J=10.8 Hz), 1.33(3H, s), 1.20 (3H, s), 1.02(3H, s), 0.92(3H, d, J=6.8 Hz), 0.77(3H, s), 0.69(3H, s)。13C-NMR (150 MHz, MeOD): δppm: 47.9(C-1), 69.7(C-2), 78.3(C-3), 42.9(C-4), 48.8(C-5), 19.2(C-6), 33.5(C-7), 41.2(C-8), 48.2(C-9), 39.0(C-10), 24.8(C-11), 129.5(C-12), 139.7(C-13), 41.2(C-14), 29.6(C-15), 26.5(C-16), 48.5(C-17), 54.9(C-18), 73.6(C-19), 42.8(C-20), 27.2(C-21), 38.3(C-22), 66.4(C-23), 13.8(C-24), 16.6(C-25), 17.6(C-26), 24.7(C-27), 178.5(C-28), 27.0(C-29), 17.6(C-30), 95.7(C-1′), 73.8(C-2′), 78.3(C-3′), 71.1(C-4′), 78.5(C-5′), 62.4(C-6′)。
实施例3:
取金樱子药材5kg,其药材来源为蔷薇科蔷薇属植物金樱子Rosa laevigata Michx.的干燥枝条,以7倍量60%乙醇微波提取5次,每次0.1小时,提取液减压浓缩至无醇味,经9000转/分高速离心,上清液用石油醚等体积萃取3次,水液上ADS-7型大孔树脂柱吸附后,依次用水、10-20%乙醇液、30-60%,70-90%乙醇液洗脱至流出液无色,收集40-60%乙醇洗脱液,减压蒸干,即得金樱子皂苷A粗品,金樱子皂苷A粗品再经HP-20柱,用水、10-20%乙醇液、30-60%,70-90%乙醇液洗脱至流出液无色,收集40-60%乙醇洗脱液,减压蒸干,该提取物进一步,用乙醇:丙酮:正己烷(6:2:3)混合溶液重结晶3次得到无定型粉末,为金樱子皂苷A纯品,干燥后即得金樱子皂苷A 41g,纯度为92.7%。
实施例4:
取金樱子药材10kg,其药材来源为蔷薇科蔷薇属植物金樱子Rosa laevigata Michx.的干燥根,以6倍量60%乙醇渗流提取5次,每次2小时,提取液减压浓缩至无醇味,经8000转/分高速离心,上清液用石油醚等体积萃取3次,水液上ADS-7型大孔树脂柱吸附后,依次用水、10-20%乙醇液、30-60%,70-90%乙醇液洗脱至流出液无色,收集40-60%乙醇洗脱液,减压蒸干,即得金樱子皂苷A粗品,金樱子皂苷A粗品再经HP-20柱,用水、10-20%乙醇液、30-60%,70-90%乙醇液洗脱至流出液无色,收集40-60%乙醇洗脱液,减压蒸干,该提取物进一步,用乙醇:二氯甲烷:正己烷(6:3:2)混合溶液重结晶3次得到无定型粉末,为金樱子皂苷A纯品,干燥后即得金樱子皂苷A 66g,纯度为90.7%。
实施例5:
收集不同批次结晶剩下的母液,经活性炭脱色后浓缩至近饱和,用2倍量硅胶(100-200目)拌样,干燥后采用固相萃取技术(硅胶100-400目)对其进行纯化处理,每100g样品对应500g硅胶,洗脱顺序为:先用二氯甲烷:乙醇90:10洗脱10个柱体积后,用二氯甲烷:乙醇75:15洗脱柱体积,收集二氯甲烷:乙醇75:15洗脱液,蒸干,即得金樱子皂苷A。纯度为87.2%。
实施例6:
收集不同批次结晶剩下的母液,经活性炭脱色后浓缩至近饱和,用1.5倍量硅胶(100-200目)拌样,干燥后采用大型减压硅胶柱色谱对其进行纯化处理,每100g样品对应500g硅胶,洗脱顺序为:先用二氯甲烷:甲醇90:10洗脱10个柱体积后,用二氯甲烷:甲醇80:20洗脱柱体积,收集二氯甲烷:甲醇80:20洗脱液,蒸干,即得金樱子皂苷A。纯度为89.5%。

Claims (4)

1.一种金樱子皂苷单体的制备方法,其特征在于,所述方法包括以下步骤:
将粉碎后干燥的金樱子果皮用有机溶剂进行提取,提取液减压浓缩,浓缩液低温下放置,高速离心或过滤,滤液上大孔吸附树脂,收集30-60%乙醇水洗脱液,减压回收溶剂,沉淀物干燥即得金樱子皂苷A粗品,粗品经过2-3次重结晶,精制后即得金樱子皂苷A纯品:
Figure 2013101110841100001DEST_PATH_IMAGE001
2.根据权利要求1所述的一种金樱子皂苷单体的制备方法,其特征在于,所述提取液经减压浓缩,浓缩液放置,高速离心或过滤,滤液上大孔树脂,洗脱,干燥后得到的金樱子皂苷A粗品,再次上大孔树脂精制1次。
3. 根据权利要求1所述的一种金樱子皂苷单体的制备方法,其特征在于,所述重结晶为使用有机溶剂对金樱子总皂苷进行重结晶处理,利用减压柱色谱纯化结晶后的母液。
4. 根据权利要求1所述的一种金樱子皂苷单体的制备方法,其特征在于,所述精制包括经活性炭脱色精制。
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Inventor after: Gao Pinyi

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