CN1031465C

CN1031465C - 编码表现有人粒细胞巨口噬细胞和嗜伊红细胞生长因子活性多之肽cDNA克隆

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Publication number: CN1031465C
Application number: CN85109132A
Authority: CN
Inventors: 横田崇; 弗兰克·唐·李; 唐娜·梅·伦尼克; 新井贤一
Original assignee: Schering Biotech Corp
Current assignee: Schering Biotech Corp
Priority date: 1984-11-20
Filing date: 1985-11-18
Publication date: 1996-04-03
Anticipated expiration: 2000-11-18
Also published as: MY101971A; IL77080A; FI862674A0; HK6096A; DK345286A; ATE82321T1; CN1045539C; IE59581B1; WO1986003225A1; LU88360I2; KR860700359A; PT81513A; ZA858833B; DE3586826T2; GR852786B; HUT40464A; MX9203397A; FI862674A; NL930120I1; JP3038348B2

Abstract

提供了质粒载体，它们携带有编码人粒性细胞/巨噬细胞集落刺激因子活性，其中包括嗜伊红细胞生长因子活性的多肽的互补DNA(cDNA)克隆。其中一种多肽长度大约为144个氨基酸，可能包括有一段前导序列。cDNA来源于由伴刀豆球蛋白A活化过的人细胞信使BNA。cDNA通过结合进入一种质粒载体而被克隆，然后载体转化进入大肠杆菌。质粒载体也含有来自SV40病毒的DNA片段，从而使得载体经过转染进入一种哺乳动物细胞例如猴COS-7细胞后，能够使cDNA得以表达。

Description

编码表现有人粒细胞巨噬细胞和嗜伊红细胞生长因子活性多肽之cDNA克隆

本发明涉及到应用重组DNA技术阐明哺乳类免疫反应控制机制，特别是涉及编码具有人粒细胞/巨噬细胞生长因子活性，其中包括嗜伊红细胞生长因子活性多肽的核酸克隆的分离。

重组DNA技术一般是从一种供体将遗传信息结合至载体然后再转入一种宿主内，从而使转移的遗传信息可以在新的条件下进行复制和/或表达。一般而言，遗传信息以互补DNA(cDNA)方式存在，这种cDNA来源于编码一种所需蛋白质产物的信息RNA(mRNA)。载体通常是能够与cDNA结合并在宿主中可以进行复制的质粒。在某些情况下，实际上控制了cDNA的表达，从而导致编码产物在宿主中的合成。

近年来，这种技术发展十分迅速，多种外源蛋白质已经在不同宿主中得以表达，但是仍不能肯定得到任何预期的新的cDNA克隆。例如，采用重组DNA技术已得到了某些真核蛋白质，包括有：胰岛素原(Naber，S.等，基因21：95-104〔1983〕)；干扰素(Simon，L.等，美国科学院学报，80：2059-2062〔1983〕和Dergnck，R.等，核酸研究1：1819-1837〔1983〕)；生长激素(Goeddel，D.等，自然281，544-548〔1979〕)；以及肥大细胞生长因子(Yokota，T.等，美国科学院学报，81：1070-1074〔1984〕)。(后面引用的这些已发表的文章及其他参考资料包括了有关技术的进一步详细背景技术，有些还包括了有关发明的实施。)

一些时期以来，哺乳类免疫反应被认为是由于初级的一系列复杂的细脚互反应，此反应称之为“免疫网”。但有待弄清的是，事实上许多反应都围绕着淋巴细胞、巨噬细胞、粒性细胞和其他细胞的类网状相互作用，目前免疫学家普遍认为，可溶性蛋白(即所谓淋巴细胞活素)在控制这些细胞相互作用中起了一种关键性作用。

很明显，淋巴细胞活素以多种方式调节细胞的活性。业已表明，它们能够支持各种造血细胞的生长和增殖，实际上认为，它们在多种潜在的造血干细胞转变为大量的亲本细胞系的基本分化中起着关键的作用，而这些细胞系是与免疫反应有关的。在这种反应中，重要的细胞系有两类淋巴细胞：B细胞，它可以产生和分泌免疫球蛋白(能够识别和结合于外源物质并影响其转移的蛋白质)；T细胞(有多种)，它可以通过多种机制诱导或抑制B细胞及某些形成免疫网的其他细胞(包括其他T细胞)。

其他重要的白血细胞类型是吞噬细胞，尤其是多形核和单核白细胞。这些细胞被认为专门进行清除作用，这是一种帮助清除入侵的病原体和排除死细胞及胞外废物的基本功能。

粒细胞属于这种白血细胞类型，其中包括嗜中性细胞和嗜伊红细胞。嗜中性细胞可以在外围血液中、多种组织及直接同外界接触的身体部分发现(如，口腔，支气管与气管分枝以及颈部小管)。通过有控制地释放各种抗菌剂(例如，氧离子、过氧化氢，卤离子)进入泡液首先破坏摄入的病原体，深入地研究了嗜中性细胞对于入侵病原菌的吞噬作用。(Klebanoff，S.和Clark，R.嗜中性细胞：功能和临床失调，Elsevier/北荷兰生物医学出版社，阿姆斯特丹〔1978〕)。尽管采用了十分特异的颗粒形成法进行验证，并且得到了与变态反应紊乱及某些寄生虫病，例如旋毛虫病有关的大量资料，但是，关于嗜伊红细胞了解得还是较少。

巨噬细胞和粒性细胞的不同在于它们发展了依赖于外围组织的不同特性。因此，组织巨噬细胞包括结缔组织中的组织细胞、肝中的Kupffer细胞、肺中的肺泡巨噬细胞、骨骼中的破骨细胞、在神经系统中的微生物细胞、皮肤中的朗汉氏细胞以及其他器官中的游离或固定细胞。除了吞噬能力之外，巨噬细胞能够分泌许多十分重要的生物活性物质，例如，溶菌酶、血纤维蛋白溶酶源激活因子、胶原酶、弹性蛋白酶、酸性羟化酶、补体组分、前列腺素、内热原、某些淋巴细胞活素以及氧代谢物。另外，据信，对于B和T淋巴细胞，巨噬细胞可以调节抗原的供给和导入。(Cline，M.白细胞，哈佛大学出版社，剑桥，马萨诸塞州〔1975〕)。

为了更好地了解(以及潜在的治疗处理)嗜中性白血球减少症，血中淋巴细胞减少症，单核细胞减少症，白血病或一种白血病状的反应以及其他免疫紊乱，对巨噬细胞，粒性细胞、T细胞和其他与免疫反应有关的细胞进行了研究；由于在体外保存这些细胞存在着普遍的不稳定性，因而影响了这种研究工作的进行。但是，最近已有若干免疫学家发现许多这类细胞可以被分离，在某些情况下，可以使它们在其他细胞分泌液中培养生长，例如，脾淋巴细胞在特定培养基中可以被伴刀豆球蛋白A(ConA)所激活。根据这项工作，目前已经弄清，细胞克隆的形成依赖于特定的因素，例如淋巴因子。

很明显，在成人脊椎骨髓中，通过造血母细胞染色体级系的分化和生长，几乎所有的血细胞可以连续地形成。染色体级系的顶部是多种干细胞，这些干细胞可以使以致死剂量照射的动物重新形成不同类型的血细胞(如红细胞、血小板、淋巴细胞、多种粒性细胞以及单核细胞/巨噬细胞)。多种细胞不仅能够再生成不同的干细胞层(自我更新)，而且可以按照特定谱系的途径提高母细胞的发展。一种特殊的定型干细胞子代，表明与亲代具有同样的谱系(Metcalf，D.造血群体，斯普林格出版公司，N.Y.〔1977〕)。

在体外研究造血作用表明，多种可溶性因子可以调节各种亲代及定型细胞的生长和分化。某些这类因子已经进行了部分提纯，而且可以特异地影响属于一种特殊细胞谱系的干细胞。例如，肾脏产生的促红细胞生成素可以刺激更多的红色染色体级系的分化成员(Migake，T.等，生物化学杂志，252：5558〔1977〕)，而且T细胞和巨噬细胞产生的群体刺激活性，可以选择性地刺激在骨髓细胞半固体培养基中的粒性细胞和巨噬细胞的生长(Stanleg，E.和Heard，P.生物化学杂志，252：4305〔1977〕)。其他类型生长因子似乎能够刺激由单一细胞类型和混合细胞构成的造血群体。这些细胞的范围包括，前红细胞、巨核细胞和粒性细胞、肥大细胞和单核细胞/巨噬细胞。它们显然影响到第二种类型的一种因子，称之为复合谱系细胞生长因子(Iscove，N.等，细胞生理学杂志，增刊，1：65-78〔1982〕)，这种因子表明能够影响多种定型的亲代细胞以及有多种作用的干细胞。

已知，群体刺激活性以多种分子形式存在，总体称之为群体刺激因子(CSF′s)。CSF′s是一类糖蛋白，分子量范围大约为20,000-70,000道尔顿。存在于血和尿中。被称为“GM-CSF”的这一系列因子既能够刺激粒性细胞，也能刺激巨噬细胞群体在半固体培养基中的形成(见Metcalf，D.造血群体；体外正常细胞和白血病细胞的克隆；斯普林格出版公司，纽约〔1977〕)。

小鼠和人的GM-CSF至少已经部分地被提纯，并进行了生物化学定性，无论是分子量还是种内活性谱都十分不同(Metcalf，D.，造血群体刺激因子”药理实验手册，57：343-384，斯普林格-弗拉格，纽约(1978〕)。编码一种哺乳动物GM-CSF活性的cDNA的成功克隆，应该有助于回答围绕着哺乳动物GM-CSF的不少问题，但是对于人类系统仍然存在着许多问题(Gough，N.，等，自然309：763-767〔1984〕)。至少有两组研究工作者已经报道了两种人的GM-CSF(Das，S.等，血液58：630-641〔1981〕和Nicola，N.等，血液54：614-627〔1979〕)。为了得到已报道的生物活性蛋白(Lusis，A.，等，自然298：75-77〔1982〕)，实际上，在体外甚至进行了编码人类GM-CSF的mRNA的转译(分离自T-淋巴细胞株，ATCC保藏号CRL8066；见美国专利4,438,032)；但是有关人类的CSF仍然有许多问题不能肯定(见Burgess，A.，生长因子和干细胞，第四章，93-124页，科学出版社，纽约〔1984〕)。

尽管分子量的不同大概可以用不同量的糖基化作用部分地加以解释，但是，要澄清这个问题以及一个分子所具有的活性谱，则要求更多的结构资料，即对所讨论的分子进行全长度序列分析。当然蛋白质序列分析对解决这种问题是一种可能的手段，但这是一种十分困难的实验工作，而且通常既不能提供足够的精确性，也不能得到全长度的氨基酸序列。但是，为了刺激细胞生长，采用限制所需ConA条件的培养基，可以大量得到具有人GM-CSF活性的多肽，这将大大有助于研究粒性细胞、巨噬细胞、和其他包括在免疫反应中的细胞的生物学。任何人CSF的精确和完全的序列资料，将会简化对于其他免疫因子的研究。最后，关于任何淋巴因子的进一步资料将会有助于评价不同生长因子和免疫网细胞的作用，因而可以提供对整个免疫系统及其相伴的治疗作用的认识。

因此，十分需要编码具有人GM-CSF活性蛋白质的DNA的广泛的核苷酸和氨基酸序列的资料，也非常需要用简单经济的方法制造大量及必要纯度的这类物质，本发明能够满足这些需要。

本发明提供了编码具有人GM-CSF活性的多肽的cDNA克隆。一种cDNA的核苷酸序列和一种相关多肽的推测的氨基酸序列显示在图1中。cDNA序列可以结合于多种载体，这些载体反过来又可指导相应多肽在不同宿主中的合成，包括在真核细胞例如培养的哺乳类细胞中的合成。

本发明专门提供了产生一种具有人类GM-CSF活性多肽的步骤，包括有下列几步：

a)提供一种载体，这种载体包括编码所述多肽的核苷酸序列，其

中这种核苷酸序列可以被含有载体的宿主所表达。

b)将载体掺入宿主中。

c)在适合于表达核苷酸序列成为所述多肽的条件下保存含有载体

的宿主。

cDNA序列最好来自于编码该多肽的非转化之人T细胞的mRNA，宿主则是一种生物体，例如真核细胞，即哺乳动物的由载体转染或转化的细胞。进而，载体最好也包含能够控制编码多肽核苷酸表达的第二核苷酸序列。这种第二编码序列包括有启动子序列、一个或多个内含子序列和多聚腺苷酸化作用序列，以分别使得编码多肽的核苷酸序列进行转录、裂解和多聚腺苷酸化。尤其是当宿主是一种哺乳类细胞，例如COS-7猴(肾)细胞时，载体包含猿病毒40(SV40)的早期启动子的启动子序列和SV40的晚期多聚腺苷酸化作用序列的多聚腺苷酸化序列。

图1(见下)的人cDNA序列能够和其他的DNA序列，例如编码来自cDNA或基因库的其他哺乳类生长因子的DNA进行杂交。值得注意的是所叙述的cDNA似乎包含有一个前导序列的信息。

本发明的多肽能够加强嗜中性细胞、巨噬细胞和其他细胞(例如，嗜伊红细胞)的生长，尤其在体外培养更是如此。将多肽(制品必须不含有其他人类生长因子)加至适合于治疗用的载体中，则可以制备得到合适的药物组合物。

根据下述列于本发明的附图以及举例的详尽描述，可以清楚了解到本发明的其他性质及优点。附图中：

图1描述了一种存在有人GM-CSF活性的cDNA核苷酸序列以及推测的相应氨基酸序列。

图2A阐明了一种携带具有人GM-CSF活性的cDNA克隆的质粒，pcD-人-GM-CSF。

图2B是图2A的cDNA插入段的限制性内切酶图谱。

图3显示鼠和人GM-CSF氨基酸序列的比较。

根据本发明，cDNA克隆提供了表现有人GM-CSF活性的多肽的密码。当cDNA序列结合至复制表达载体以及载体转染了适当宿主后，(例如，一种哺乳动物细胞培养物)，则表达的一种多肽或多种多肽具有可使嗜中性粒细胞、巨噬细胞和其他造血谱系细胞(例如，嗜伊红细胞)扩充的能力。

根据分离的核苷酸序列推测的氨基酸序列的实例示于图1中人GM-CSF cDNA含有一个由144个密码子组成单一开放的译读框架。推测的起始密码子下是富含疏水氨基酸的区域。因此，很有可能，分泌的人GM-CSF的成熟型是以一个丝氨基残基起始的，23种氨基酸构成了一个前导区域，这一区域易于通过蛋白水解而消除。因此，具体的一种人GM-CSF可能由大约121种氨基酸组成，经计算其分子量接近于13,500道尔顿(非糖基化的)。有两个可能的N-糖基化位置(Asn-X-Ser/Thr)，(Neuberger，A.等，糖蛋白5：450-490，伊尔舍威尔(Elsevier)出版公司，美国〔1972〕)，分别在44-46位和54-56位，根据此计算得出的分子量与文献不符。

当转染进入COS-7细胞或其他的适合表达系统时，本发明的cDNA克隆可以指导合成具有生物活性的人GM-CSF。将这种表达的克隆化基因产物加至培养的造血母细胞中，则可以使接受细胞扩展和/或使它们在培养中得以维持。表达的多肽表现有人类GM-CSF相关的活性。

有多种方法可以用于制备本发明的cDNA。例如，总mRNA可以从产生具有人GM-CSF活性多肽的细胞提取(如来源于一种未转化的人T细胞)，(如参见Berger，S.等人，生物化学18：5143-5149〔1979〕)。来自总mRNA的双链cDNA能够采用起始引物的逆转录作用首先构成(Verma，I.，生物化学与生物物理学杂志，473：1-38〔1979〕)，先形成各个mRNA序列的互补序列，然后再引导合成第二条链(Land，H.等，核酸研究，9：2251-2266〔1981〕)。继而，通过互补同聚体尾部(Efstratiadis，A.等，细胞，10：571-585〔1977〕)或通过具有适当限制性内切酶位点的接头片段创造出粘性末端(Seeburg，P.等，自然，270：486-494〔1977〕或Shine，J.等，自然，270：494-499〔1977〕)把cDNA连接到适合的质粒或细菌噬菌体载体上(Rougeon，F.等，核酸研究，2：2365-2378〔1975〕或Scherer，G.等，发展生物学，86：438-447〔1981〕)，以克隆cDNA，而后转移到适当的宿主。(主要参考Efstratiadis，A.，和Villakormaroff，L.，“双链cDNA的克隆”，Setlow，J.和Hollaender，A.(主编)遗传工程，第1卷，普勒那姆(Plenum)出版公司，纽约，美国〔1982 〕。)

要得到全长度的本发明克隆的cDNA，一种可取的方法是由H.Okagama和P.Berg所发展的(分子和细胞生物学，2：161-170〔1982〕)。这个方法的优点是，cDNA插入段置在细菌克隆载体的位置使cDNA也能够在哺乳动物细胞中直接转译和加工。简而言之，第一条cDNA链是由共价连接于线性粒载体DNA接头的一个末端上的多聚脱氧胸苷酸所引导形成的。然后，质粒载体再用一连接头DNA片段进行环化，这种连接物将质粒的一个末端与cDNA编码序列的5′末端相连接。采用一种包括有猿病毒(SV40)早期启动子的DNA片段和包括有一段改造过的SV40晚期区域内含子的接头，cDNA能够在COS-7小鼠(肾)细胞中表达，而不进一步修饰。(见Okagama，H.和Berg，P.分子和细胞生物学，3：280-289〔1983〕和Jollg，D.等，美国科学院学报，80：477-481〔1983〕)。

一旦用Okagama/Berg质粒载体完成cDNA库，则可以挑选cDNA克隆，采用杂交选择、转移和检定法可以随机检查存在的所需cDNAs(例如，测定培养细胞的人GM-CSF活性，测定存在的抗原决定基或其他生物活性)。采用这些标准得到的阳性的集合体，然后能够用一种适当减小的探针，例如，B细胞系和/或非诱导的T细胞系的cDNA来进行探针检查。而后把探针检查阳性的集合体分为单个克隆，通过转染到适合的宿主对它们进行检验，并对宿主细胞上清液进行所需活性的检定。对阳性克隆进行序列分析。

所希望的cDNA克隆也可以用适当的mRNA样品(Heindell，H.等，细胞，15：43-54〔1978〕)进行杂交筛选来检测和分离。或者，cDNA库可以采用杂交选择(Harpold，M.等，核酸研究，5：2039-2053〔1978〕或Parnes，J.等，美国科学院学报，78：2253-2257〔1981〕或用南非有爪蟾蜍卵母细胞来进行筛选(Aurdon，J.，自然，233：177-182〔1971〕)。(参见Villa-Kemaroff，L.等，美国科学院学报，75：3727-3731〔1978〕。)

在进一步阐明关于制备本发明cDNA克隆的有关步骤时，要首先考虑到细胞来源及其他细胞系，然后再一般说明分离编码一种具有人GM-CSF活性蛋白质的mRNA的步骤；构建包括有cDNA序列的cDNA库；在一种质粒载体中分离全长度的cDNA克隆以及随后在一种哺乳动物细胞中的表达，在细菌和酵母中的次级克隆和表达，纯化制造。全部实验过程的更详细的描述将在后边讨论。T细胞和其他细胞系

多种不同细胞中的任何一种都可能用作人GM-CSF活性来源并进行检测实验(例如，参考Burgess，A.，生长因子和干细胞，科学出版社第43-124页，纽约〔1984〕)。一种可选择的来源是T细胞辅助细胞系，但是人的外周血(Verma，D.等，英国血液学杂志，57：505-520〔1984〕和Hasketh，P.等，血液63：1141-1146〔1984〕)、巨噬细胞或其他产生人GM-CSF活性的细胞(Bodeker，B.等，免疫学166：12-23〔1984〕)也是可以采用的。这当中包括杂交瘤和转化细胞系(Gasson，J.等，“淋巴因子和造血作用”，正常和新生的造血作用，Alan R.Liss公司，纽约，〔1983〕)。

一种可以进行人GM-CSF活性实验的材料来自未得血液病的提供者的骨髓组织。但是脐带血和脾脏也可以作为来源，它们必须在提取后约12-48小时内进行实验。

为了确定CSF活性，将造血细胞源制备成单细胞悬浮液。单个细胞可以固相化于含有营养物质，并且通常是小牛胎血清的一种半固体(琼脂)或粘性(甲基纤维素)介质中。当存在有适当的刺激因子时，单个细胞将会增殖和分化。由于细胞一开始便被固相化，因此当细胞增生和成熟时集落即发展。7-14天后可以收集细胞集落。(Burgess，A.，生长因子和干细胞，第52-55页，科学出版社，纽约〔〔1984〕。)(专门用于粒性细胞和巨噬细胞的生长，见Bradelg，T.和Metcalf，D.，澳大利亚实验生物医学协会杂志，44：287-300〔1966〕和参考Matcalf，D.，造血集群，斯普林格，柏林〔1977〕)。正如所希望的那样，单个集群可以被提取，置于显微镜载片上固定，并用Wright/Geimsa染色(Todd-Sanford，用实验方法进行临床诊断，第15版，Davidson和Henry编，〔1974〕)。然后可确定每个单集落细胞类型的形态学。mRNA的分离和cDNA库的构建

可以利用已知的多种方法分离总细胞mRNA(例如，Przybla，A.等，生物化学杂志，254：2154-2158〔1979〕)，但最可取的是Chirgwin等人的硫氰酸鈲提取步骤(生物化学，18：5294-5299〔1979〕)。如果采用这种方法，可在寡(dT)纤维素柱层从1-2×10⁸活化的人辅助T细胞中得到将近10微克poly AmRNA 。

可按照能够大量富集mRNA转录本之全长度拷贝的步骤(例如，Okagama，H.和Berg，P.，分子细胞生物学，2：161-170〔1982〕和分子细胞生物学，3：280-289〔1983〕)，用pcDV1载体—引物和pL1接头片段(从P-L生物化学公司可以得到，Milwaukee，WI)从poly mRNA最好地构建cDNA库。设计包括有SV40早期启动子和SV40加工信号的质粒载体用于促进克隆的cDNA片段在哺乳动物细胞中的表达。

采用Okagama和Berg的方法，环化的载体-cDNA制剂可以被转化进入感受态细菌细胞，例如，用氯化钙处理过的感受态大肠杆菌MC1061细胞(Casadaban，M.和Cohen，S.，分子生物学杂志138：179-207〔1980〕)，(Cohen，S.等，美国科学院学报，69：2110-2114〔1972〕)。

从用伴刀豆球蛋白刺激过的T细胞得到的5微poly A RNA开始，可以得到大约1.5×10⁶独立的转化子。通常可以分别挑出10⁴个克隆，并转种于含有200微升L-培养基，50微克/毫升氨苄青霉素和7％二甲基亚砜(DMSO)的微量滴度板孔中(Flow实验公司，(McLean，弗吉尼亚)。如果比较理想，根据插入cDNA的大小可以从总cDNA库得到次级库，方法与Okagama，H.和Berg，P.所叙者相同(分子细胞生物学，3：280-289〔1983〕)。简言之，质粒DNA用SalI，ClaI和HindIII分别酶切，再进行1％琼脂糖凝胶电泳。用溴化乙锭染色后，凝胶被切成相应于插入cDNA大小的0-1,1-2,2-3,3-4,4-5,5-6以及大于6千碱基对(Kb)的7个部分，从每一部分凝胶中提取DNA，用T₄ DNA连接酶重新环化，再转化MC1061。按照Maxam，A.和Gilbert，W.的方法，(酶学方法，65：499-560〔1980〕)分析全部核苷酸序列。DNA转染进入猴细胞

在转染前一天，将近1×10⁶个COS-7猴肾细胞接种到60毫米平板上。转染作用最好用15微克质粒DNA，在1.5毫升含有50mm Tris·Hcl，pH7.4和400微克/毫升DEAE)葡聚糖(Pharmacia Fine化学公司，Uppsala，瑞典)的DME中进行。4小时后去掉该溶液，换成2毫升DME和4％胎牛血清。72小时后收集培养液，并按上述方法实验人GM-CSFIL-2活性。DNA可能在L-细胞以及多种其他来源细胞中进行转染(见下述)。相关基因的分离

本发明的cDNA克隆能够用于确定和分离编码相关基因的核酸序列。由于同源基因间同源程度通常较低，因此杂交条件必须严格，以调整至能够使仅同源70-80％的序列间可以进行交叉杂交。

为了定位相关基因，可以采用若干种实验方法。例如，利用相应的小鼠Ck基因作探针(Heiter，P.等，细胞，22：197-207〔1981〕)，可以分离出人的Ck免疫球蛋白轻链基因，通过与编码它们的人相对物的DNA克隆杂交也可以分离出小鼠的移植抗原基因(Steinnetz，F.等，细胞24：125-134〔1981〕)。

对于基因组DNA，一种可选择的方法是将来自包括有同源基因(Maniatis，F.等，分子克隆，实验室操作手册，冷泉港实验室，美国，〔1982〕)的cDNA库的噬菌体克隆，以每150mm平板2×10⁴-5×10⁴个噬斑密度植入合适的宿主菌，例如大肠杆菌LE392中。一般10至20块平板已够用。

在37℃保温10-12小时后，将平板冷藏2小时，然后将132毫米的硝酸纤维素滤膜铺在每块平板的琼脂表面上。滤膜同平板保持接触至少5分钟，在此期间利用一种灌满墨水的22号针头穿刺调整滤膜。然后从平板上剥去滤膜，首先在250毫升0.1N氢氧化钠，0.5M氯化钠，然后在250毫升0.5 M Tris.Hcl，PH7.5；1.5M氯化钠中依次保温至少2分钟。将滤纸置于纸巾上干燥，然后在80℃烘干4-8小时。

为了进行杂交，用1×SFT(0.15M氯化钠，30mMTris·Hcl，PH8.0，1mM二胺四乙酸钠)浸湿滤膜，然后在3×SET，5×Denhardt′s溶液(Denhardt，D.T.，B.B.R.C.23：641-646〔1966〕)，10％硫酸葡聚糖，0.1％十二烷基磺酸钠(SDS)以及浓度分别为50微克/毫升的poly(rA)，poly(rC)和poly(rG)的溶液中，恒定搅拌下于65℃保温2小时(1.5-2毫升/滤膜)。然后倒掉溶液，在体积为1.5-2毫升/滤膜的同样溶液中(新鲜的)，将滤膜同来自GM-CSF cDNA的0.5微克〔≥10⁸(CPM)〕缺口翻译的探针进行杂交，于65℃1小时，然后置于55℃ 12-20小时。滤膜再用3×SET，1×Denhardt′s；0.1％十二烷基磺酸钠；和1×SET，0.1％ SDS(10-15毫升/滤膜)在缓慢搅拌下，于55℃充分洗涤1小时。在纸巾上干燥滤膜，再用适当的胶片和增感屏进行放射自显影12-24小时。从琼脂板上，用消毒的巴斯德管取出杂交的噬斑，各噬斑加至1毫升0.1M氯化钠、0.01M Tris·Hcl，PH7.5、10mM氯化镁，100微克/毫升白明胶溶液中，并加入50微升氯仿，在低温条件下，至少放置4-8小时后，再利用前述步骤将每一噬斑的噬菌体在低密度下重新筛选(2000-4000噬斑/150毫米平板)。

在大肠杆菌、酵母和培养的细胞中表达

原核细胞，例如大肠杆菌，特别适用于表达本发明的多肽(如参见美国专利号4,338,397和4,411,994)，但提供的糖苷化作用不是所要求的。

为了达到高表达水平，需要利用启动子，例如，β-内酰胺酶(青霉素酶)和乳糖启动子系统(Chang，等，自然，275：615〔1978〕；Itakura，等，科学，198：1056〔〔1977〕；Goeddel，等，自然，281：544〔1979〕)或和Shine-Delgarno序列连接的色氨酸(trp)启动子系统(Goeddel，等，核酸研究，8：4057〔1980〕)。

这些技术表明，不仅原核细胞而且真核微生物，例如酵母也能用来生产蛋白质。啤酒酵母是一种可利用的真核微生物。酵母载体的适合启动序列包括了一磷酸甘油激酶(Hitzeman等，生物化学杂志，255：12073-12080〔1980〕)或其他糖酵解酶启动子(Hess等，酶调节进展，7：149-167〔1969〕；Holland等，生物化学，17：4900-4907〔1978〕)。其他受生长条件控制转录的具有额外优点的启动子也可以利用。基本上，任何包括一种酵母相容性启动子，一个复制起点和末端序列的质粒载体都是合适的。

采用本发明cDNA制造人GM-CSF的可选择方法是利用酵母接合信息素α-因子分泌途径(Julius，D.等，细胞32：839-852〔1983〕)。啤酒酵母分泌接合型特异的寡肽信息素。MAT2细胞分泌能够诱导MATα细胞在细胞G1周期生长停止的2-因子(Thorner，J.，酵母菌的分子生物学，冷泉港实验室，纽约，〔1981〕；特别参看第143-180页)。α-因子起初合成大约20种氨基酸的NH₂末端信号序列组成的大前体分子。然后加入60个氨基酸的前导序列，并以4种相同的上串联重复的成熟α-因子序列作为末端。重复部分可由6个或8个氨基酸间隔区彼此分开(赖氨酸-精氨酸-谷氨酸-丙氨酸-谷氨酸-丙氨酸和赖氨酸-精氨酸-谷氨酸-丙氨酸-谷氨酸-〔或门冬氨酸-〕-丙氨酸-丙氨酸-丙氨酸)。这种前早-α-因子可以在若干特定位点裂解。第一步加工是由KEX2产物(Julius等，细胞，37：1075-1089〔1984〕)催化间隔序列的赖氨酸-精氨酸对的羧基末端侧裂解。一种类似羧肽酶-B的酶在赖氨酸-精氨酸对的氨基末端侧裂解。最后一步是由STE13编码的二氨基肽酶去掉谷氨酸-丙氨酸或门冬氨酸-丙氨酸对。Brake，J.等(美国科学院学报，81：4642-4646〔1984〕)已经证明了编码成熟蛋白质的序列同允许这种蛋白分泌的第一加工位点发生融合。

一种包括有与其他元件结合的α因子启动子和下游前导序列的通用酵母载体(定名为PMF-α-8)已在ATCC寄存(保藏号为40140)。它可以以下列方式构建：

将带有MFα1基因(Kurjan，J.和Hershowitz，I.，细胞，30：933-943〔1982〕)1.7KbEcoRI片段克隆至M13mp8(Viera，J.和Messing，J.，基因19：259-268〔1982〕)的EcoRI限制性内切酶位点。为了将HindIII酶切点引至第一个间隔区赖氨酸密码的后面，将合成的寡核苷酸TCTTTTATCCAAAGATACCC同单链M13-MFα1 DNA和用DNA多聚酶I Klenow片段所增长的寡核苷酸引物。用S₁核酸酶处理后，用EcoRI酶切DNA，将带有MFα1启动子和前导序列的片段克隆至EcoRI酶切位点，再充填pUC8的HindIII限制性内切酶位点((Viera，J.和Messing，J.见前)。一种具有所需结构的质粒已被分离出来(定名为pMFα4Δ1)。pMFα4Δ1用HindIII裂解，在存在有脱氧三磷-酸腺苷(dATP)和脱氧三磷酸乌苷(dGTP)的条件下，可DNA多聚酶I Klenow片段部分填补。用绿豆核酸酶处理DNA，再连接寡核苷酸接头GCCTCGAGGC。得到的质粒(定名为pMFα5)在精氨酸密码子后面将有一个Stu I酶切位点，随后是XhoI限制性位点。一种啤酒酵母一大肠杆菌穿梭载体(pTRP584)可以按如下方法构建：将带有2μm质粒复制原点的PstI-XbaI片段(Broach，J.见前)克隆至pTRP56(Migajima等，分子细胞生物学，4：407-414〔1984〕)的ClaI限制性位点中并且通过PvuII接头的插入将TRP1-ARS1片段中StuI限制性内切酶位点转变成PvuII限制性内切酶位点。通过XhoI接头的插入，可以使原在pTRP56中的KpnI限制性内切酶的位点转变为XhoI位点。将PMFα5的BglII-XhoI片段插入pTRP584的BamH1-XhoI限制内切酶位点，可以得到一般的分泌载体PMFα8 。

本领域技术人员会理解到，编码人GM-CSF的cDNA克隆可能很容易快地插入pMFα8载体，然后转化至酵母中以产生人的GM-CSF。例如，将带有全部人GM-CSF cDNA的1.0千碱基对(Kb)BamH1片段克隆至M13mp8(Viera，J.和Mesing，J.，基因19：259-2268〔1982〕)的BamHI限制性内切酶位点。为了得到带有成熟蛋白质编码序列的双链片段，构建了寡核苷酸引物AGCCCCAGCACGCACAGCCCTGGGAGCAT。将这个引物同带有人GM-CSFcDNA的单链M13mp8进行杂交，并用DNA多聚酶IKlenow片段进行扩展。用BamHI切断双股DNA并有绿豆核酸酶除去单链区。然后便可分离带有人GM-CSF成熟蛋白编码序列的双链片段，并克隆至通用分泌载体pMFx8的StuI限制性内切酶位点。这种质粒DNA(带有TRPI基因)可以采用醋酸锂方法导入酵母细胞中(Ito，H.等，细菌学杂志153：163-168〔1983〕)，并在缺少色氨酸的合成培养基中选择转化体。然后使转化体生长在补充有0.5％酪蛋白水解物的普通培养基中。收集酵母，重新悬浮于含有mM PMSF的(PBS中，然后用酸洗过的玻璃球剧烈振荡而破碎之。以10,000rpm离心15分钟得到上清液。

除了微生物以外，得自多细胞生物体(特别是哺乳类细胞)的细胞培养物也可以作为宿主。这种有用宿主细胞系的例子是海拉(Hela)细胞，中国仓鼠卵细胞系以及幼仓鼠肾细胞系。如果需要的话，载体要在这种细胞中表达，一般包括一个复制起始区，一个位于待表达的基因前面的启动子、连同任何所需核糖体结合位点，RNA片段结合位点、多聚腺苷酸化位点和转录终止序列。当采用哺乳动物细胞时，表达载体经常具有病毒物质提供的控制功能。一般应用的是衍生于多形瘤、腺病毒2的启动子，更多的是SV-40的启动子(见美国专利号4,399,216和Ghegsen，D.和Fiers.W.，分子和应用遗传学1：385-394〔1982〕)。

纯化和配制

可按照标准的步骤，包括硫酸铵沉淀、分配柱层析(如离子交换、凝胶过滤，电泳，亲和层析等)以及最后的结晶法(参考“酶的提纯和有关技术”，酶学方法，22：233-577〔1977〕和Scopes，R.，蛋白质纯化：原则和实践，Springer-Verlag，纽约〔1982〕)纯化在大肠杆菌、酵母或其他细胞中表达的人GM-CSF多肽一旦部分或完全提纯，本发明的多肽即可能用于研究目的，例如，可以补充到细胞生长培养基中(例如，最低必须培养基Eagle，Iscore的改良的Dulbecco培养基或RPMI 1640；可以从Sigma化学公司购买，St.Louis，MO和GIBCO Division，ChagrinFalls，OH)，也可以在产生用作免疫检定、免疫荧光染色等的特异免疫球蛋白过程中，作为一个抗原物质(免疫学方法，卷I和卷II，Lefkovits，I.和Pernis，B.，Academic Press，纽约，N.Y.〔1979和1981〕；及实验免疫学手册，Weir，D.主编，Blackwell Scientific PublicationsMO〔1978〕)。

本发明的多肽也可能作为药物的组分，例如，可用于增强对多种新生和感染疾病的天然防御能力，或对骨髓抑制进行化疗时作为辅助药(见Gasson.J.等，“淋巴因子和造血作用”，正常和新生造血作用，第129-139页，Alan R.Liss公司，纽约〔1983〕)。

为了制备含有本发明所述多肽的药物组合物，将这些多肽与适当的无活性宜于制成药物的载体相混合形成组合物。适合的载体和它们的制备方法已为众所周知(例如，见Remington的药物科学和美国药典：国家处方集，Mack出版公司，Easton.PA〔1980〕)。不经消化道服用和采用机械传送系统给药是适合的。

药物组合物最好是单位剂量的形式。按照这种形式，制品可以再分为包括适量活性组分的单位剂量。在制品的一个单位剂量中，活性化合物的量可能是变化的或从1微克到100毫克进行调整，这可以根据特殊的应用和有效组分的效力而定。

剂量的变化取决于病人的需要，病情的严重性以及所使用的特殊化合物。对于特殊情况的合理剂量得靠熟练的技术来决定了。一般而言，治疗是从低于化合物最适剂量的较小剂量开始的。进而，剂量逐步缓慢增加，直至在这种条件下达到最适效能。为了方便起见，总的日剂量可以分成几份，全天按份次服用。

下面通过实例，提供实验资料和信息，但也不限此而已。

实验实施例A.克隆的人辅助T细胞1)按照Fathman，C.和Fitch，F.编辑，Academic

Press，纽约(1982)一书中。36章和37章所叙述的方法分

离了定名为T-7的人T细胞的克隆。在有10％热灭活胎牛血清，

5×10^-8 M2-ME，2mM谷氨酰胺，非必需氨基酸和必需维生素

的Dulbeco′s改良的Eagle(DME)培养基

中，当加入30％植物血球凝集素(PHA)刺激的人外周血

淋巴细胞上清液时，细胞系可以连续保持在大约0.5×10⁵细

胞/毫升。2)植物血球凝集素(PHA)活化T-7细胞

在加有4％热灭活胎牛血清，5×10^-5 M2-ME，2mM谷氨酰胺，非必需氨基酸，必需维生素和4微克/毫升伴刀豆球蛋白的DME培养基中将细胞培养至5×10⁵个/毫升。于10％二氧化碳中，37℃保温4-6小时后，以1500rpm离心细胞悬液10分钟。收集细胞立即于-70℃进行冷冻。过滤上清液(Nalgene-0.22微米)，于-80℃作为生长因子来源保存。测定每部分上清液的CSF活性(见F)以证实植物血球凝集素处理对细胞系的诱导作用。B.骨髓和脐带血实验法

从非造血疾病的病人收集得到骨髓细胞，并铺在聚蔗糖(Ficoe)(400型，Sigma化学公司，St.Louis MO)上，离心(2,000cpm，20分钟)，除去界面上的细胞。用含10％胎牛血清(FCS)的gscove′s改良的Dulbeccos′培养基洗涤细胞两次，再悬浮于同样培养基中，通过粘附于塑料Petri平皿去掉附着细胞。将10⁵细胞/ml非粘着细胞加至含有20％FCS，50μM2-巯基乙醇，0.9％甲基纤维素的gscove′s培养基中，并且保有不同的已知含有群落刺激活性的上清和实验上清液的浓度。按每份1ml将样品加至35毫米Petri平皿板上，在含6％二氧化碳潮湿的空气中37℃进行培养。培养3天以后，每个平皿加入1单位促红细胞生长素(Eaves，A.英国哥伦比亚肿瘤研究中心，温哥华B.C.)，在10-14天用倒置显微镜计数粒性细胞-巨噬细胞群落和属红眼胞之原生细胞的突然产生。2,000cpm离心6分钟，收集加有肝素的脐带血细胞。取出血浆和红血细胞之间的白细胞，加至装有0.17N氯化铵和6％胎牛血清的试管中去。在冰中放置5分钟，向上清中加入4毫升胎牛血清，2000cpm离心6分钟。细胞碎片用Dulbecco′s磷酸盐缓冲液洗涤细胞团，并按前述骨髓细胞的Ficoll和塑料粘附步骤进行处理。收集低密度的非粘附细胞，按前述方法，将10⁵个细胞/培养物加至上述半固体琼脂系统中。

实验结束时，将单个群落涂至玻片上，用瑞特-吉姆萨氏染色确定细胞组成。用Luxol Fast blue(Johnson，G.和Metcaeb，D.，实验血液学.8：549-561〔1980〕)染色可以确定嗜伊红细胞。C.从人细胞中分离mRNA1)采用Chirgwin，J.等(生物化学，18：5294-

5299〔1979〕)的异硫氰酸胍盐方法从细胞中分离总细胞

RNA。

冰冻的用伴刀豆球蛋白诱导或未诱导的人辅助细胞(刺激后4小时)悬浮于异硫氰酸胍溶胞液中。1.5×10⁸个细胞要用20毫升溶胞液。

用吸管抽吸以重新悬浮细胞团块，然后使DNA4次通过带16号针头的注射器以破碎之。将溶胞液加至装有20毫升5.7μ氯化铯、10mμ乙二胺四乙酸的40毫升同质异晶聚合物离心管顶部，用Beckman SW28离心转头(Beckman仪器公司，Palo Alto，CA)25,000rpm 15℃离心40小时。用吸管从顶部取出含有DNA的异硫氰酸胍相，直至介面。管壁及介面均用2-3毫升异硫氰酸胍溶胞液洗涤。用剪刀在低于液面部将管子切断，缓慢倒出氯化铯溶液。用冷70％乙醇洗涤RNA沉淀两次。然后将沉淀悬浮于500微升10mM Tris·Hcl pH7.4、1mM乙二胺四乙酸，0.05％十二烷基磺酸钠溶液中。加入50微升3M醋酸钠溶液，用1毫升乙醇沉淀RNA。离心可以得到大约0.30毫克总RNA，再用冷乙醇洗涤沉淀一次。2)Poly A+mRNA的分离：

将洗涤和干燥过的总RNA沉淀悬浮于900微升Tris·HclOligo-dT洗脱缓冲液中(10mM Tris·Hcl pH7.4，1mM乙二胺四乙酸，0.5％十二烷基磺酸钠)。68℃加热RNA3分钟，然后在冰中冷却。加入100微升5M氯化钠。将RNA样品加至1毫升寡Oligo-dT纤维素柱(3型，Collaborative Research，Waltham，MA)上。纤维素已用结合缓冲液(10mμ Tris·Hcl pH7.4，1mM乙二胺四乙酸，0.5M氯化钠，0.5％十二烷基磺酸钠)进行过平衡。样品流经柱子两次以上。再用20毫升结合缓冲液洗涤。用洗脱液洗涤，收集得到PolyA＋mRNA。一般而言，RNA通常收集在前2毫升洗脱液中。用0.1体积3M醋酸钠(pH6)和2倍体积乙醇沉淀RNA。离心收集RNA沉淀，用冷乙醇洗涤两次并干燥。然后将沉淀再悬浮于水中。将每等份进行稀释，并在260mm处检测吸光率。D.cDNA库的构建：1)制备载体引物和Oligo-dG尾部接头DNA：采用略加修改

的Okayama和Berg(分子和细胞生物学，2：161-170〔1982〕)方法，并利用Okayama和Berg(分子和细胞生物学，3：380-389〔1983〕)所叙述的质粒PCDV₁和PL₁。

在450微升含有6mMTris·HCl(PH7.5)，6mM氯化镁，6mM氯化钠，6mM2-ME和每毫升0.1毫克牛血清白蛋白的反应液中，80微克PCDV₁ DNA用20单位KpnI限制性内切酶在30℃酶切。16个小时后，加入40微升0.25M乙二胺四乙酸(PH8.0)和20微升10％十二烷基磺酸钠以终止反应。用水饱和的酚-氯仿(1∶1)(以下称酚一氯仿)提取DNA，再用乙醇沉淀。同一均聚尾部平均为60个，但不会多于80个脱氧胸腺嘧啶核苷酸(dT)。用小牛胸腺末端转移酶，将每一脱氧胸腺核苷酸(dT)残基末端按下列方法加到KpnI限制性内切酶所生成的末端上：38微升反应液含有卡可盐酸盐-30mM Tris·HCl PH6.8作为缓冲液，并加有1mM氯化钴，0.1mM二硫苏糖醇，0.25mM脱氧胸苷三磷酸，KpnI限制性内切酶酶切的DNA，以及68单位末端脱氧核苷酰转移酶(P-L生物化学公司，Milwaukee，WI)。37℃，30分钟后，加入20微升0.25M乙二胺四乙酸(PH8.0)和10微升10％十二烷基磺酸钠以终止反应。经过多次用酚-氯仿提取，酒精沉淀后得到DNA。在50微升含有10mM三Tris·HCl PH7.4，10mM氯化镁，1mM二硫苏糖醇和每毫升0.1毫克牛血清清蛋白的溶液中，用15单位EcoRI限制性内切酶37℃酶切DNA5小时。将包括有SV40，多聚腺苷酸化位点，PBR322复制原点和氨苄青霉素抗性基因的大片段用琼脂糖凝胶电泳(1％)提纯，采用一种修改过的玻璃粉方法(Vogelstein，B.和Gillespie，D.，美国科学院学报，76：615-619〔1979〕)从凝胶上回收DNA。按照下列方法用Oligo-dA纤维素柱层吸附，洗脱可以进一步纯化dT接尾的DNA：将DNA溶于1毫升10mMTris·HCl PH7.3，含有1mM乙二胺四乙酸和1M氯化钠的缓冲液中，冷却至0℃。过Oligo-dA纤维素柱层析分离(0.6×2.5厘米)，纤维素已用同样缓冲液在0℃进行过平衡。用同样缓冲液在0℃洗柱，室温下用水洗脱。洗脱的DNA用乙醇进行沉淀，并溶于10mM Tris·HCl. PH7.3和1mM乙二胺四乙酸溶液中。

在含有6mM Tris·HCl PH7.4，6mM氯化镁，6mM二

基乙醇，50mM氯化钠和每毫升含0.01毫克牛血清白蛋白的450微升溶液中，用20单位PstI限制性内切酶酶切75微克pL1 DNA以制备(Oligo)(dG)接尾的DNA。3O℃，16小时后，用酚-氯仿提取反应混合物，用乙醇沉淀DNA。除了用0.1mM：dGTP代替dTTP外，在与上述同样的反应混合物(38微升)中加入46单位末端脱氧核苷酰转移酶。然后，每个末端加入10-15个脱氧乌苷酸dG残基尾部。37℃，20分钟后，用酚-氯仿提取混合液。当乙醇沉淀DNA后，在50微升含有20mM Tris·HCl PH7.4，7mM氯化镁，60mM氯化钠和0.1毫克牛血清白蛋白的溶液中，37℃，用35单位Hind III限制性内切酶酶切4小时。用琼脂糖凝胶电泳(1.8％)纯化小的Oligo(dG)接尾的接头DNA，并按前述方法回收之。2)cDNA库的制备

步骤1：合成cDNA。反应混合物(10μl)中含有50mMTris·HCl PH8.3，8mM氯化镁，30mM氯化钾，0.3mM二硫苏糖醇，dATP，dTTP ，dGTP和dCTP每种浓度均为2mM，20μCi³² P-dCTP(3000 Ci/mMRNasin)，3微克伴刀豆球蛋白诱导T细胞的PolyA⁺，60单位RNasin(生物技术公司，Madison，WI)，2微克载体-引物DNA(15Pmol引物末端)和45单位逆转录酶。反应在42℃进行60分钟，加入1微升0.25M乙二胺四乙酸(PH8.0)和0.5微升10％十二烷基磺酸钠以终止反应；加入40微升酚-氯仿，用混合器充分混合溶液，然后离心。将40微升醋酸铵和160微升乙醇加至水相中，用干冰冷却溶液15分钟，再缓慢振荡至室温以溶解在冷却过程中沉淀出来未反应的脱氧核苷酸三磷酸，并用Eppendrf微量离心管离心10分钟。将沉淀溶于10微升10mM Tris·HCl PH7.3和1mM乙二胺四乙酸中，加入10微升4M醋酸铵，并加入40微升乙醇再沉淀。这个步骤去掉99％以上未反应的脱氧核苷酸三磷酸，再用乙醇洗最后的沉淀物。

步骤2：加入寡脱氧胞苷酸〔Oligo(dC)〕。将含有质粒-cDNA：mRNA的沉淀溶于20微升140mM卡可盐酸盐-30mM Tris·HCl PH6.8缓冲液中，其中含有1mM氯化钴，0.1mM二硫苏糖醇，0.2微克PolyA，70μMdCTP，5μCi³² P-dCTP，3000Ci/mM和60单位末端脱氧核苷酸转移酶。反应在37℃进行5分钟后，每个末端加入10-15个dCMP残基，再加入2微升0.25M乙二胺四乙酸(PH8.0)和1微升10％十二烷基磺酸钠以终止反应。用20微升酚-氯仿抽提后，水相与20微升4M醋酸铵混合，沉淀DNA，再用80微升乙醇沉淀DNA，最后得到的沉淀用乙醇冲洗之。

步骤3：HindIII限制性内切酶酶切。将沉淀物溶于含有20mM Tris·HCl PH7.4，7mM氯化镁，60mM氯化钠和每毫升0.1毫克牛血清白蛋白的30微升缓冲液中，然后用HindIII限制性内切酶酶切(37℃，2小时)。加入3微升0.25M乙二胺四乙酸(PH8.0)和1.5微升10％十二烷基磺酸钠以终止反应，用酚-氯仿抽提后，再加入30微升4M醋酸铵，用120微升乙醇沉淀DNA。用乙醇洗涤沉淀物，再溶于10微升10mMTris·HCl(PH7.3)和1mM乙二胺四乙酸的溶液中，加入3微升乙醇以防止在-20℃低温保存时冻结。

步骤4：利用Oligo-(dC)DNA接头DNA进行环化作用。在含有10mM Tris·HCl PH7.5，1mM乙二胺四乙酸，0.1M氯化钠和1.8pmol Oligo-(dG)接尾的DNA接头的反应混合物中(90微升)，将9微升HindIII限制性内切酶酶切的Oligo-(dC)-接尾的cDNA：mRNA质粒(大约为样品的90％)在65℃，保温5分钟，再改变温度至42℃，60分钟，然后冷却至0℃。将90微升反应混合物体积调节至900微升，其中含有20mM Tris·HClPH7.5，4mM氯化镁，10mM硫酸铵，0.1M氯化钾，每毫升50微克牛血清白蛋白和0.1mMβ-NAD；加入6微克大肠杆菌DNA连接酶，然后将溶液在12℃保温过夜。

步骤5：用DNA取代RNA链。为了取代插入的RNA链，调整连接混合物使其包含有四种脱氧核苷三磷酸，每种浓度为40μM，0.15mMβ-NAD，并加入4微克大肠杆菌DNA连接酶，16单位大肠杆菌DNA多聚酶I(PolI)，和9单位大肠杆菌核糖核酸酶H。这种反应混合物(960微升)在12℃保温再在室温保温1小时以充分促进每一种最适的修复合成和PolI的缺口翻译。

步骤6：转化大肠杆菌。采用略加修改的Cohen等人方法(美国科学院院报，69：2110-2114〔1972〕)进行转化。大肠杆菌K-12菌种MC1061(Casadaban，M.和Cohen，S.，分子生物学杂志，138：179-207〔1980〕)于37℃在20毫升L-培养基中生长至600mm吸收值为0.5。离心收集细胞，悬浮于含有50mM氯化钙的10毫升10mM Tris·Hcl PH7.3中，0℃离心5分钟。细胞再悬浮于2毫升上述缓冲液中，再在0℃保温5分钟，然后0.2毫升细胞悬浮同0.1毫升DNA溶液(步骤5)相混合，在0℃保温15分钟。然后将细胞保存于37℃2小时，再置于室温10分钟，加入0.5毫升L-培养基，培养液于37℃保温30分钟，在42℃同L-培养基软琼脂混合，铺在含有50微克/毫升氨苄青霉素的L-琼脂培养基上。37℃保温12-24小时，用消过毒的牙签挑出单个菌落。总共可以产生5×10⁴个单独的克隆。

E.经DNA转染作用筛选人T细胞cDNA库

从T细胞库随机挑选10⁴个单个的克隆。在加有含50微克/毫升氨苄青霉素和7％二甲亚砜的200微升L-培养基的微滴平板小孔中单个进行增殖。从微滴平板培养物中可以得到有48个cDNA克隆的库集合物。将40个这种培养于1升含有100微克/毫升氨苄青霉素的L培养基中，从每一培养液中分离质粒，采用两次氯化铯密度梯度离心进行提纯。将每个库的代表DNA按下列方法较染至COS-7猴细胞中。

较染前一天，将10⁶个COS-7猴细胞接种至加有10％胎牛血清和2M谷氨酰胺的DME培养基的单个60毫米平板上。为了进行转染，从每一平板吸出培养基，换上1.5毫升含有50m Tris·HClPH7.4、400微克/毫升DEAE-葡聚糖和15微克待实验质粒DNA的DME培养基。将平板于37℃保温4小时，然后去掉含有DNA的培养基。用2毫升没有血清的DME洗涤平板。再将含150μM氯喹的DME加至平板，于37℃保温3小时。用DME洗涤平板一次，再加入含有4％胎牛血清，2mM谷氨酰胺，青霉素和链霉素的DME。在37℃保温培养细胞72小时。收集生长培养基，按前述方法实验GM-CSF的活性。

4份集合物(组别1A，3B，7A和14A)产生人GM-CSF活性(见下列表1)。每一组再分为6份，每个含有原来集合的克隆中的8个。每一个原来库的一个次级库在转染实验中为阳性，只有7A例外，它有2个阳性的次级库。在5个次级库中的4个，每种质粒均分别地转染至COS-7细胞中。有4个单独克隆各为3-8a、7-1a，7-4a和14-1e具有产生GM-CSF的活性。限制性内切酶分析表明所有这些克隆都有本质上相同的结构。

表I代表了在重复的脐带血实验中，每种较染样品刺激红细胞的群落数目。一群代表20-50个细胞，小集落有51-150个细胞，一个集落细胞数目多于150个。

表I

对来自质粒DNA库转染体之集落刺激活性实验第一次筛选48个克隆中40个库(1-20，A＋B)

Mock-感染的Cos-7：7＋12群

库1A： 29＋25群

库3B： 38＋20群

库7A 22＋19群

库14A 26＋32群

所有其他库：少于20群第二次筛选 8个克隆的次级库

Mock-感染的Cos-7：9＋15群

次级库 1-5： 56＋54群

次级库 3-8： 98＋52小群落

次级库 7-1： 29＋41小群落

次级库 7-4： 100＋93小群落

次级库 14-1：40＋73小群落

所有其他次级库：少于20群第三次筛选单个克隆

克隆3-8a： 120＋127群落

克隆7-1a： 198＋164群落

克隆7-4a： 176＋160群落

克隆14-1e： 62＋67群落

所有其他克隆：少于20群一个带有足够长度cDNA插入子的质粒(pCD-人-GM-CSF)示于图2，携带质粒的大肠杆菌(MC1061)已由美国菌种保藏中心ATCC保存(保存号39923)。在图2中，箭头指出了包含在的pCD表达载体中来自SV40早期启动子的776碱基对cDNA插入段。的转录。切接供体与受体的结合点的定位也已说明。来自SV40的多聚腺苷酸作用信号位于cDNA插入段的3′-末端。在cDNA插入段中的GM-CSF编码区是深色影部，而非编码区是浅影部。载体的其他序列来自于pB R³²²，其中包括β-内酰胺酶基因(Amp^R)和复制原点。

采用M13双脱氧链终止法(Sanger，F.等，美国科学院学报，74：5463-5467〔1977〕)或修改的Maxam/Gilbert技术(Rubin，C.和Schmid，C.，核酸研究，8：4613-4619〔1981〕)测定3-8a序列。cDNA插入段具有一个开放译读框架。第一个ATG发现于5′-末端的33-35核苷酸，在终止三联体(TGA)末端前465-467位核苷酸处接着144个密码子。

表II表明，在单个克隆3-8a，7-1a，7-4a和14-1e的影响下生长的大约60个人骨髓和脐带血集落细胞组分破坏的百分数。其中有嗜伊红细胞和其他型细胞的混合集落存在，可能是由于集落一起生长。

表II 人骨髓集落的细胞组分嗜中性巨噬嗜伊红嗜中性巨噬细胞/ 嗜中性/

细胞/ 嗜伊红巨噬/细胞细胞细胞

巨噬细胞细胞嗜伊红

细胞15％ 30％ 7％ 37％ 2％ 9％

编码小鼠GM-CSF活性的足够长cDNA已被分离出来。带有小鼠cDNA的质粒PCD存在于大肠杆菌(MC1061)中。这菌株已在美国菌种保藏中心ATCC保藏(编号39924)。³²P标记的小鼠cDNA的PStI/AlaIII片段在低严格的条件(42℃)下与本发明的人GM-CSF cDNA′进行杂交(见Maniatis，T.等。分子克隆，实验室手册，冷泉港实验室〔1982〕)。

图3是推测的小鼠和人GM-CSF蛋白质序列间的比较。同样的残基已划下线标出(排成直接后)，在人蛋白质中减少，而在小鼠蛋白中存在的残基已由星号标明，只在小鼠中存在的残基(例如57-58位丝氨酸加天门冬酰胺和65位赖氨酸-赖氨酸)已用短垂直线标出。小鼠和人GM-CSF cDNA之间的同源性是令人惊奇的。这两种GM-CSF序列间总共有70％同源性(Brutlag，D.等核酸研究，10：279-294〔1981〕)。但是本发明人GM-CSF在体外并不显著刺激小鼠造血干细胞的生长。

PCD表达载体中的克隆库能够通过在哺乳动物细胞中的直接表达来确定全部cDNA克隆。尤其是可用随机挑选的cDNA克隆转染COS-7细胞并测定分泌于呈细胞上清中的GM-CSF活性，来鉴定完整人GM-CSF cDNA克隆。这些结果可以肯定，在确定一种真核细胞功能多肽的基础上，唯一可以实现的是确定淋巴因子或激素的全长度cDNA克隆。

根据上述事实，可以认为本发明的cDNA克隆提供了关于人GM-CSF完整和精确的序列资料。本发明也为本领域技术人员提供了可以在体外产生大量改进嗜中性细胞，粒细胞，巨噬细胞以及其他造血细胞(例如嗜伊红细胞)之维持的因子(实际上没有其他造血因子)的手段。进一步，从cDNA克隆所得到的资料，可以增加对哺乳动物免疫反应的了解，加强实验研究能力。

Claims

1.制备多肽的方法，该方法是在液体培养基中培养由含有编码所述多肽的核苷酸序列的载体所转化的原核细胞或真核细胞，其特征在于该多肽为具有粒性细胞/巨噬细胞群落刺激因子活性的人GM-CSF多肽，其信号序列为以下氨基酸序列：

MET Trp Leu Gln Ser Leu Leu Leu LeuGly Thr Val Ala Cys Ser Ile Ser Ala Pro Ala Arg Ser Pro Ser Pro Ser ThrGln Pro Trp Glu His Val Asn Ala Ile Gln Glu Ala Arg Arg Leu Leu Asn LeuSer Arg Asp Thr Ala Ala Glu Met Asn Glu Thr Val Glu Val Ile Ser Glu MetPhe Asp Leu Gln Glu Pro Thr Cys Leu Glu Thr Arg Leu Glu Leu Tyr Lys GlnGly Leu Arg Gly Ser Leu Thr Lys Leu Lys Gly Pro Leu Thr Met Met Ala SerHis Tyr Lys Gln His Cys Pro Pro Thr Pro Glu Thr Ser Cys Ala Thr Gln IleIle Thr Phe Glu Ser Phe Lys Glu Asn Leu Lys Asp Phe Leu Leu Val Ile ProPhe Asp Cys Trp Glu Pro Val Gln Glu

2.制备能够表达多肽的原核宿主细胞或真核宿主细胞的方法，该方法是通过含有编码所述多肽的核苷酸序列的载体转化所述细胞，其特征在于所述核苷酸序列是编码具有粒性细胞/巨噬细胞群落刺激因子活性的多肽的核苷酸序列，其信号序列系权利要求1所述氨基酸序列。

3.按权利要求2的方法，其特征在于核苷酸序列系下述DNA序列，或是与所述序列的互补链杂交和编码所述多肽的序列，

ATG TGG CTG CAG AGC CTGGGC ACT GTG GCC TGC AGC ATC TCT GCA CCC GCC CGC TCG CCC AGCCAG CCC TGG GAG CAT GTG AAT GCC ATC CAG GAG GCC CGG CGT CTC CTG AAC CTGAGT AGA GAC ACT GCT GCT GAG ATG AAT GAA ACA GTA GAA GTC ATC TCA GAA ATGTTT GAC CTC CAG GAG CCG ACC TGC CTA CAG ACC CGC CTG GAG CTG TAC AAG CAGGGC CTG CGG GGC AGC CTC ACC AAG CTC AAG GGC CCC TTG ACC ATG ATG GCC AGCCAC TAC AAG CAG CAC TGC CCT CCA ACC CCG GAA ACT TCC TGT GCA ACC CAG ATTATC ACC TTT GAA AGT TTC AAA GAG AAC CTG AAG GAC TTT CTG CTT GTC ATC CCCTTT GAC TGC TGG GAG CCA GTC CAG GAG TGA.