CN103146584B - 一种固料培养裂殖壶菌液体发酵生产dha的方法 - Google Patents
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Abstract
一种固料培养裂殖壶菌液体发酵生产DHA的方法,涉及发酵生产DHA的方法。采用的菌种为裂殖壶菌(Schizochytrium sp.)KDW-12。菌种活化与菌悬液制备;一级种子制备;二级固料种子的制备;二级固料种子发酵罐扩大培养;发酵结束后,收集菌体细胞,提取DHA油脂。提取的DHA可作为营养强化剂,为人类和动物提供所需长链多不饱和脂肪酸。改进种子制备方式,简化扩种工艺,缩短种子培养和发酵周期,可减少投资,节约成本;同时固料培养基营养丰富,富含多种生长因子,更利于种子的生长,菌种细胞的生长活力强、同步性较好;培养固料种子阶段产生的废水、废渣少,环境污染小。
Description
技术领域
本发明涉及发酵生产DHA的方法,特别涉及一种固料培养裂殖壶菌液体发酵生产DHA的方法。
背景技术
二十二碳六烯酸(Docosahexenoic acid,22:6△4,7,10,13,16,19,简称DHA)俗称“脑黄金”,属于ω-3型多不饱和脂肪酸,具有补脑健脑,预防老年性痴呆症;提高视力,防治近视;预防高血压、动脉硬化、关节炎及治疗癌症等生理功能。因此,DHA作为新一代功能性保健因子具有广阔的市场前景。随着市场需求量的扩大,对DHA品质的要求也越来越高,DHA生产研究逐渐向利用生物技术合成方向发展,传统鱼油来源的DHA已逐渐被藻油DHA所取代。藻油DHA是指通过微生物发酵获得的含有DHA等长链多不饱和脂肪酸的油脂,其中DHA生产菌主要有裂殖壶菌、破囊壶菌、隐甲藻等。
裂殖壶菌又称裂壶藻,属于真菌门、卵菌纲、水霉目、破囊壶菌科的一类类藻的海洋真菌,单细胞、球形。细胞累积大量对人体有用的活性物质,如油脂、色素(类胡萝卜素、叶黄素、虾青素)、角鲨烯等,其中总脂肪酸中DHA含量高达35%~45%,且细胞中90%以上的油脂以人体易吸收的中性油脂——甘油三酯形式存在,是DHA的理想生产菌株。
中国专利CN101575584公开一种裂殖弧菌及利用其生产DHA油脂的方法,该方法提供一种从渗透压和元素供应角度优化菌株发酵培养基,并结合流加策略,实现裂殖壶菌高密度发酵,采用传统的发酵方法,从甘油保存种接入摇瓶活化→一级种子液→摇瓶二级种子液→一级种子罐→二级种子罐→发酵,最终细胞干重达到70g/L,油脂含量达31.5g/L,DHA占总脂肪酸含量高于35%。
中国专利CN101519676公开一种采用含微量元素的发酵培养基进行发酵生产DHA的发酵生产工艺,采用传统方法培养菌种裂殖壶菌,即斜面活化培养、然后转接入摇瓶扩大培养、再经一级扩大培养得到发酵用种子液;或菌种经斜面活化培养、然后转接入摇瓶扩大培养、再经一级扩大培养和二级扩大培养后得到发酵用种子液,10T罐发酵95h生物量为53g/L,油脂含量72%,DHA含量50%。而传统的种子培养和发酵方法涉及的发酵级数较多,工艺较繁琐,培养周期长,投资成本高。因此,改进种子制备方式,简化扩种工艺,降低生产成本,有利于DHA的工业化生产。
发明内容
本发明的目的在于提供可简化扩种工艺,缩短种子培养和发酵周期,减少投资,节约成本,固料培养基营养丰富,富含多种生长因子,更利于种子的生长,菌种细胞的生长活力强、同步性较好,培养固料种子阶段产生的废水、废渣少,环境污染小的一种固料培养裂殖壶菌液体发酵生产DHA的方法。
本发明采用的菌种为裂殖壶菌(Schizochytrium sp.)KDW-12,已于2012年11月20日保藏在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏中心登记入册编号为CGMCCNo.6843,地址为北京市朝阳区大屯路,中国科学院微生物研究所,邮编为100101。
本发明包括如下步骤:
1)菌种活化与菌悬液制备:将裂殖壶菌菌种接种于斜面培养基上培养活化,培养到期斜面加入质量百分数为0.85%的生理盐水洗涤菌体,获得菌悬液;
在步骤1)中,所述斜面培养基的配方可为:葡萄糖20~30g/L,蛋白胨10~15g/L,酵母粉3~5g/L,海水晶15~20g/L,琼脂粉20g/L,pH值6~7,121℃灭菌30min;所述培养活化的温度可为25~28℃,培养活化的时间可为2~3天;所述菌悬液的菌体浓度可为1.0~2.5×106个/mL。
2)一级种子制备:将步骤1)获得的菌悬液按质量分数为1%的接种量接种至固料培养基上培养,制成一级固料种子;或
将步骤1)获得的菌悬液按质量分数为1%的接种量接种至液体种子培养基,摇瓶培养,制成一级液体种子;
在步骤2)中,所述固料培养基包括固态组分和液体营养液组分,所述固态组分为谷物,含量为250~400g/L,所述谷物可选自米类、麦类和玉米等中的至少一种,所述米类可选自大米、小米、糙米等中的至少一种,所述麦类可选自大麦、小麦、燕麦等中的至少一种;
所述液体营养液组分包括组分1和组分2,所述组分1的组成为:葡萄糖2~5g/L,七水硫酸镁0.2~0.6g/L,磷酸氢二钾1.0~5.0g/L,海盐0.1~0.8g/L,甘氨酸0.2~0.6g/L,苏氨酸1.5~1.8g/L,蛋氨酸2~3.5g/L,苹果酸3~6g/L,加水定容,调节pH值为6~7;所述组分2的组成为:La3+10~15mg/L,Ce3+1~4mg/L,Sm3+2~6mg/L,Nd3+8~12mg/L,Mn2+0.6~1.2mg/L,Co2+0.05~0.1mg/L,生物素0.2~0.6mg/L,浅蓝菌素0.1~0.3mg/L,赤霉素GA2~5mg/L,VB120.5~1.0mg/L,叶酸0.01~0.05mg/L,余量为水;
所述固料培养基的制备方法可为:固态组分与液体营养液组分1混合均匀,将谷物蒸或煮至谷物中心无白心,且含水率为50%~65%,获得固料培养基原料;将固料培养基原料与液体营养液组分2混合均匀,装于固态发酵K瓶中,厚度0.2~1.0cm,121℃灭菌30min,制得固料培养基;
所述固态组分与液体营养液组分1按质量/体积的配比可为(5~10)g∶(2~5)mL,其中固态组分按质量计算,液体营养液组分1按体积计算;
所述固料培养基原料与液体营养液组分2按质量/体积的配比可为(10~15)g∶(3~6)mL,其中固料培养基原料按质量计算,液体营养液组分2按体积计算;
所述液体种子培养基的组成可为:葡萄糖20~25g/L,氯化钠20~25g/L,磷酸二氢钾0.2~0.5g/L,酵母粉3~5g/L,七水硫酸镁8~12g/L,海盐0.1~0.8g/L,谷氨酸0.2~0.6g/L,pH值6~7,121℃灭菌30min;
所述培养的温度可为25~28℃,培养的时间可为1天;所述摇瓶的转速可为180~220rpm;摇瓶培养的温度可为25~28℃,摇瓶培养的时间可为1天。
3)二级固料种子的制备:一级固料种子以质量百分数为0.85%的生理盐水根据1:1(W/V)比例洗涤菌体,制成菌悬液;
在无菌条件下:
按质量分数为10%~20%的接种量在固料培养基中接入一级固料种子液;或
按质量分数为8%~15%的接种量在固料培养基中接入一级液体种子,摇动K瓶混合均匀,25~28℃,培养2~3天;
制得二级固料种子;
4)二级固料种子发酵罐扩大培养:二级固料种子加入1:3~5(W/V)无菌水振荡洗下菌体,按质量分数为10%~20%的接种量接种至发酵罐扩大培养,发酵前48h温度控制在25~28℃,利用搅拌转速保持30%~50%的溶氧,48h至发酵结束温度控制在18~22℃,发酵3~5天,通过重量百分比为28%的氨水控制发酵pH6.0~6.5,整个发酵过程自动流加经118℃灭菌25min的浓度为580g/L的葡萄糖溶液控制发酵葡萄糖浓度在4~8g/L;
在步骤4)中,所述扩大培养采用的液体发酵培养基的组成可为:葡萄糖30~60g/L,NaCl15~20g/L,MgSO4.7H2O4~8g/L,酵母粉3~8g/L,KH2PO40.5~1.0g/L,(NH4)2SO40.2~0.5g/L,NaHCO30.8~1.2g/L,CoCl21.0~2.0μg/L,MnSO40.5~1.0μg/L,VB10.05~0.1mg/L,VB120.001~0.01mg/L,初始pH6.0~7.0;所述发酵最好溶氧维持在8%~12%。
5)发酵结束后,收集菌体细胞,提取DHA油脂。
经测定,发酵液中细胞干重达105~160g/L,DHA含量达20~35g/L。
本发明还适用于除裂殖壶菌(Schizochytrium sp.)KDW-12以外的其它裂殖壶菌种属的生产,包括可以从美国典型培养物收集中心、日本大阪发酵工程研究所等保藏机构获得的裂殖壶菌菌种。
本发明摒弃传统的种子培养工艺流程,直接由固料发酵获得的种子液进行液体发酵培养:斜面活化→一级固料种子/摇瓶液体种子→二级固料种子液→液体发酵。本发明改进种子制备方式,简化扩种工艺,缩短种子培养和发酵周期,可减少投资,节约成本;同时固料培养基营养丰富,富含多种生长因子,更利于种子的生长,菌种细胞的生长活力强、同步性较好;培养固料种子阶段产生的废水、废渣少,环境污染小。
本发明的有益效果是:克服传统发酵方法种子扩培级数较多的缺陷,改进DHA发酵用种子液的制备,可简化DHA生产工艺过程;固料培养基营养丰富,种子饱满活力强,可缩短种子上罐后延迟期,提高DHA产量,降低生产成本,保持稳定的生产能力;培养固料种子阶段产生的废水、废渣少,环境污染小;发酵得到的DHA可作为营养强化剂,为人类和动物提供所需长链多不饱和脂肪酸。
具体实施方式
以下结合实施例对本发明作进一步的说明。
实施例中用到的菌种为:
裂殖壶菌(Schizochytrium sp.)KDW-12(CGMCCNo.6843);
裂殖壶菌(Schizochytrium sp.)S31(ATCC No.20888)
裂殖壶菌(Schizochytrium sp.)S8(ATCC No.20889)
裂殖壶菌Schizochytrium aggregatum(ATCC No.28209)
实施例1:
将裂殖壶菌(Schizochytrium sp.)KDW-12菌种接种于斜面培养基上培养活化,温度为25℃,培养2天。斜面培养基配方为(g/L):葡萄糖20,蛋白胨15,酵母粉3,海水晶15,琼脂粉20,pH值6.5,121℃灭菌30min。培养到期斜面加入质量百分数为0.85%的生理盐水洗涤菌体,获得菌悬液,控制菌体浓度为2.5×106个/mL。
获得的菌悬液按质量分数为1%的接种量直接接种至灭菌的固料培养基上,25℃培养1天,制得一级固料种子。
在无菌条件下,按质量分数为10%的接种量在固料培养基中接入一级固料种子(用于接种的一级固料种子以质量百分数为0.85%的生理盐水根据1:1(W/V)比例洗涤菌体,制成菌悬液),摇动K瓶混合均匀,25℃,培养2.5天,制得二级固料种子。
二级固料种子加入1:4(W/V)无菌水振荡洗下菌体,按质量分数为15%的接种量接种至50L发酵罐扩大培养,接后体积32L。发酵前48h温度控制在25℃,利用搅拌转速保持40%的溶氧,48h至发酵结束温度控制在22℃,溶氧维持在10%左右,发酵4天。通过重量百分比为28%的氨水控制发酵pH6.5,整个发酵过程自动流加经118℃灭菌25min的浓度为580g/L的葡萄糖溶液控制发酵葡萄糖浓度在8g/L。
固料培养基的制备方法为:由固态组分和液体营养液组分组成,其中固态组分为小米,含量为375g/L,小米与液体营养液组分1按8:3(W/V)比例混合均匀,将谷物蒸煮至谷物中心无白心,且含水率为55%,获得固料培养基原料。固料培养基原料与液体营养液组分2按10:3(W/V)比例混合均匀,装于固态发酵K瓶中,厚度0.3cm,121℃灭菌30min,制得固料培养基。
液体营养液组分1(g/L):葡萄糖3,七水硫酸镁0.2,磷酸氢二钾3.0,海盐0.6,甘氨酸0.6,苏氨酸1.5,蛋氨酸2,苹果酸4,加水定容至所需体积,调节pH值6.5。组分2(mg/L):La3+15,Ce3+2,Sm3+3,Nd3+8,Mn2+1.0,Co2+0.08,生物素0.2,浅蓝菌素0.1,赤霉素GA5,VB121.0,叶酸0.03,余量为水。
液体发酵培养基组成:葡萄糖30g/L,NaCl20g/L,MgSO4.7H2O5g/L,酵母粉3g/L,KH2PO41.0g/L,(NH4)2SO40.4g/L,NaHCO31.2g/L,CoCl22.0μg/L,MnSO40.7μg/L,VB10.06mg/L,VB120.005mg/L,初始pH6.5。
发酵结束,收集菌体细胞,测定发酵液中细胞干重达125g/L,DHA含量达25g/L。提取的DHA可作为营养强化剂,为人类和动物提供所需长链多不饱和脂肪酸。
实施例2:
将裂殖壶菌(Schizochytrium sp.)KDW-12菌种接种于斜面培养基上培养活化,温度为28℃,培养2天。斜面培养基配方为(g/L):葡萄糖25,蛋白胨12,酵母粉3,海水晶16,琼脂粉20,pH值6.0,121℃灭菌30min。培养到期斜面加入质量百分数为0.85%的生理盐水洗涤菌体,获得菌悬液,控制菌体浓度为1.0×106个/mL。
获得的菌悬液直接接种至摇瓶液体培养基上,接种量1%,摇瓶转速220rpm,28℃培养1天,制得一级液体种子。摇瓶液体种子培养基组成(g/L):葡萄糖25,氯化钠20,磷酸二氢钾0.2,酵母粉5,七水硫酸镁10,海盐0.4,谷氨酸0.4,pH值6.0,121℃灭菌30min。
在无菌条件下,按质量分数为10%的接种量在固料培养基中接入一级液体种子,摇动K瓶混合均匀,26℃,培养3天,制得二级固料种子。
二级固料种子加入1:3(W/V)无菌水振荡洗下菌体,按质量分数为20%的接种量接种至100L发酵罐扩大培养,接后体积60L。发酵前48h温度控制在28℃,保持30%的溶氧,48h至发酵结束温度控制在18℃,溶氧维持在10%左右。发酵5天。通过重量百分比为28%的氨水控制发酵pH6.0,整个发酵过程自动流加经118℃灭菌25min的浓度为580g/L的葡萄糖溶液控制发酵葡萄糖浓度在7g/L。
固料培养基的制备方法为:由固态组分和液体营养液组分组成,其中固态组分为小米,含量为300g/L,小米与液体营养液组分1按8:3(W/V)比例混合均匀,将谷物蒸煮至谷物中心无白心,且含水率为60%,培养基原料与液体营养液组分2按10:4(W/V)比例混合均匀,装于固态发酵K瓶中,厚度0.5cm,121℃灭菌30min,制得固料培养基。
液体营养液组分1(g/L):葡萄糖5,七水硫酸镁0.4,磷酸氢二钾2.0,海盐0.5,甘氨酸0.3,苏氨酸1.5,蛋氨酸3.5,苹果酸6,加水定容至所需体积,调节pH值6.0。组分2(mg/L):La3+10,Ce3+4,Sm3+5,Nd3+9,Mn2+0.8,Co2+0.06,生物素0.2,浅蓝菌素0.1,赤霉素GA2,VB120.8,叶酸0.03,余量为水。
液体发酵培养基组成:葡萄糖40g/L,NaCl15g/L,MgSO4.7H2O4g/L,酵母粉5g/L,KH2PO40.5g/L,(NH4)2SO40.2g/L,NaHCO30.8g/L,CoCl21.5μg/L,MnSO41.0μg/L,VB10.1mg/L,VB120.01mg/L,初始pH6.0。
发酵结束,收集菌体细胞,测定发酵液中细胞干重达159g/L,DHA含量达34.5g/L。提取的DHA可作为营养强化剂,为人类和动物提供所需长链多不饱和脂肪酸。
实施例3:
将裂殖壶菌(Schizochytrium sp.)KDW-12菌种接种于斜面培养基上培养活化,温度为28℃,培养3天。斜面培养基配方为(g/L):葡萄糖30,蛋白胨12,酵母粉3,海水晶15,琼脂粉20,pH值6.5,121℃灭菌30min。培养到期斜面加入质量百分数为0.85%的生理盐水洗涤菌体,获得菌悬液,控制菌体浓度为2.0×106个/mL。
获得的菌悬液按质量分数为1%的接种量直接接种至摇瓶液体培养基上,摇瓶转速220rpm,28℃培养1天,制得一级液体种子。摇瓶液体种子培养基组成(g/L):葡萄糖20,氯化钠22,磷酸二氢钾0.2,酵母粉3,七水硫酸镁10,海盐0.3,谷氨酸0.6,pH值6.5,121℃灭菌30min。
在无菌条件下,按质量分数为8%的接种量在固料培养基中接入一级液体种子,摇动K瓶混合均匀,26℃,培养3天,制得二级固料种子。
二级固料种子加入1:3(W/V)无菌水振荡洗下菌体,按质量分数为10%的接种量接种至100L发酵罐扩大培养,接后体积60L。发酵前48h温度控制在25℃,保持30%的溶氧,48h至发酵结束温度控制在20℃,溶氧维持在10%左右。发酵5天。通过重量百分比为28%的氨水控制发酵pH6.0,整个发酵过程自动流加经118℃灭菌25min的浓度为580g/L的葡萄糖溶液控制发酵葡萄糖浓度在8g/L。
固料培养基的制备方法为:由固态组分和液体营养液组分组成,其中固态组分为小麦,含量为350g/L,小麦与液体营养液组分1按10:4(W/V)比例混合均匀,将谷物蒸煮至谷物中心无白心,且含水率为55%,培养基原料与液体营养液组分2按15:4(W/V)比例混合均匀,装于固态发酵K瓶中,厚度0.7cm,121℃灭菌30min,制得固料培养基。
液体营养液组分1(g/L):葡萄糖3.5,七水硫酸镁0.3,磷酸氢二钾3.0,海盐0.4,甘氨酸0.5,苏氨酸1.6,蛋氨酸3.5,苹果酸5,加水定容至所需体积,调节pH值6.0。组分2(mg/L):La3+12,Ce3+4,Sm3+5,Nd3+8,Mn2+0.9,Co2+0.08,生物素0.4,浅蓝菌素0.1,赤霉素GA3,VB120.8,叶酸0.02,余量为水。
液体发酵培养基组成:葡萄糖40g/L,NaCl16g/L,MgSO4.7H2O6g/L,酵母粉4g/L,KH2PO41.0g/L,(NH4)2SO40.5g/L,NaHCO31.2g/L,CoCl22.0μg/L,MnSO41.0μg/L,VB10.05mg/L,VB120.005mg/L,初始pH6.0。
发酵结束,收集菌体细胞,测定发酵液中细胞干重达132g/L,DHA含量达30.5g/L。提取的DHA可作为营养强化剂,为人类和动物提供所需长链多不饱和脂肪酸。
实施例4:
将裂殖壶菌(Schizochytrium sp.S31)(ATCC No.20888)菌种接种于斜面培养基上培养活化,温度为28℃,培养2天。斜面培养基配方为(g/L):葡萄糖30,蛋白胨12,酵母粉3,海水晶15,琼脂粉20,pH值6.5,121℃灭菌30min。培养到期斜面加入质量百分数为0.85%的生理盐水洗涤菌体,获得菌悬液,控制菌体浓度为1.5×106个/mL。
获得的菌悬液按质量分数为1%的接种量直接接种至摇瓶液体培养基上,摇瓶转速200rpm,28℃培养1天,制得一级液体种子。摇瓶液体种子培养基组成(g/L):葡萄糖20,氯化钠22,磷酸二氢钾0.2,酵母粉5,七水硫酸镁12,海盐0.3,谷氨酸0.6,pH值6.5,121℃灭菌30min。
在无菌条件下,按质量分数为15%的接种量在固料培养基中接入一级液体种子,摇动K瓶混合均匀,26℃,培养2天,制得二级固料种子。
二级固料种子加入1:3(W/V)无菌水振荡洗下菌体,按质量分数为10%的接种量接种至100L发酵罐扩大培养,接后体积60L。发酵前48h温度控制在25℃,保持30%的溶氧,48h至发酵结束温度控制在20℃,溶氧维持在10%左右。发酵4.5天。通过重量百分比为28%的氨水控制发酵pH6.0,整个发酵过程自动流加经118℃灭菌25min的浓度为580g/L的葡萄糖溶液控制发酵葡萄糖浓度在6g/L。
固料培养基的制备方法为:由固态组分和液体营养液组分组成,其中固态组分为小米,含量为350g/L,小米与液体营养液组分1按10:4(W/V)比例混合均匀,将谷物蒸煮至谷物中心无白心,且含水率为55%,培养基原料与液体营养液组分2按10:4(W/V)比例混合均匀,装于固态发酵K瓶中,厚度0.3cm,121℃灭菌30min,制得固料培养基。
液体营养液组分1(g/L):葡萄糖3,七水硫酸镁0.5,磷酸氢二钾5.0,海盐0.8,甘氨酸0.2,苏氨酸1.6,蛋氨酸3.5,苹果酸3,加水定容至所需体积,调节pH值6.0。组分2(mg/L):La3+15,Ce3+4,Sm3+5,Nd3+10,Mn2+0.9,Co2+0.1,生物素0.4,浅蓝菌素0.2,赤霉素GA2,VB121.0,叶酸0.02,余量为水。
液体发酵培养基组成:葡萄糖40g/L,NaCl20g/L,MgSO4.7H2O6g/L,酵母粉4g/L,KH2PO41.0g/L,(NH4)2SO40.5g/L,NaHCO30.8g/L,CoCl22.0μg/L,MnSO40.5μg/L,VB10.05mg/L,VB120.005mg/L,初始pH6.0。
发酵结束,收集菌体细胞,测定发酵液中细胞干重达115g/L,DHA含量达22.7g/L。提取的DHA可作为营养强化剂,为人类和动物提供所需长链多不饱和脂肪酸。
实施例5:
将裂殖壶菌(Schizochytrium sp.S8)(ATCC20889)菌种接种于斜面培养基上培养活化,温度为28℃,培养2天。斜面培养基配方为(g/L):葡萄糖20,蛋白胨12,酵母粉3,海水晶20,琼脂粉20,pH值6.5,121℃灭菌30min。培养到期斜面加入质量百分数为0.85%的生理盐水洗涤菌体,获得菌悬液,控制菌体浓度为2.5×106个/mL。
获得的菌悬液按质量分数为1%的接种量直接接种至摇瓶液体培养基上,摇瓶转速220rpm,28℃培养1天,制得一级液体种子。摇瓶液体种子培养基组成(g/L):葡萄糖25,氯化钠22,磷酸二氢钾0.5,酵母粉5,七水硫酸镁12,海盐0.3,谷氨酸0.6,pH值6.5,121℃灭菌30min。
在无菌条件下,按质量分数为12%的接种量在固料培养基中接入一级液体种子,摇动K瓶混合均匀,28℃,培养3天,制得二级固料种子。
二级固料种子加入1:4(W/V)无菌水振荡洗下菌体,按质量分数为18%的接种量接种至1000L发酵罐扩大培养,接后体积600L。发酵前48h温度控制在28℃,保持30%的溶氧,48h至发酵结束温度控制在20℃,溶氧维持在10%左右。发酵5天。通过重量百分比为28%的氨水控制发酵pH6.5,整个发酵过程自动流加经118℃灭菌25min的浓度为580g/L的葡萄糖溶液控制发酵葡萄糖浓度在8g/L。
固料培养基的制备方法为:由固态组分和液体营养液组分组成,其中固态组分为大米,含量为300g/L,大米与液体营养液组分1按8:5(W/V)比例混合均匀,将谷物蒸煮至谷物中心无白心,且含水率为50%,培养基原料与液体营养液组分2按15:3(W/V)比例混合均匀,厚度0.5cm。
液体营养液组分1(g/L):葡萄糖3,七水硫酸镁0.5,磷酸氢二钾5.0,海盐0.8,甘氨酸0.2,苏氨酸1.6,蛋氨酸3.5,苹果酸3,加水定容至所需体积,调节pH值6.0。组分2(mg/L):La3+15,Ce3+4,Sm3+5,Nd3+10,Mn2+1.2,Co2+0.1,生物素0.4,浅蓝菌素0.2,赤霉素GA2,VB121.0,叶酸0.02,余量为水。
液体发酵培养基组成:葡萄糖40g/L,NaCl20g/L,MgSO4.7H2O6g/L,酵母粉4g/L,KH2PO41.0g/L,(NH4)2SO40.5g/L,NaHCO30.8g/L,CoCl22.0μg/L,MnSO40.5μg/L,VB10.05mg/L,VB120.005mg/L,初始pH6.5。
发酵结束,收集菌体细胞,测定发酵液中细胞干重达138g/L,DHA含量达31.6g/L。提取的DHA可作为营养强化剂,为人类和动物提供所需长链多不饱和脂肪酸。
实施例6:
将裂殖壶菌(Schizochytrium aggregatum)(ATCC28209)菌种接种于斜面培养基上培养活化,温度为25℃,培养2天。斜面培养基配方为(g/L):葡萄糖20,蛋白胨15,酵母粉3,海水晶15,琼脂粉20,pH值6.5,121℃灭菌30min。培养到期斜面加入质量百分数为0.85%的生理盐水洗涤菌体,获得菌悬液,控制菌体浓度为2.5×106个/mL。
获得的菌悬液按质量分数为1%的接种量直接接种至灭菌的固料培养基上28℃培养1天,制得一级固料种子。
在无菌条件下,按质量分数为20%的接种量在固料培养基中接入一级固料种子(用于接种的一级固料种子以质量百分数为0.85%的生理盐水根据1:1(W/V)比例洗涤菌体,制成菌悬液),摇动K瓶混合均匀,25℃,培养3天,制得二级固料种子。
二级固料种子加入1:4(W/V)无菌水振荡洗下菌体,按质量分数为12%的接种量接种至1000L发酵罐扩大培养,接后体积600L。发酵前48h温度控制在28℃,保持40%的溶氧,48h至发酵结束温度控制在18℃,溶氧维持在10%左右。发酵5天。通过重量百分比为28%的氨水控制发酵pH6.5,整个发酵过程自动流加经118℃灭菌25min的浓度为580g/L的葡萄糖溶液控制发酵葡萄糖浓度在8g/L。
固料培养基的制备方法为:由固态组分和液体营养液组分组成,其中固态组分为大麦,含量为375g/L,大麦与液体营养液组分1按8:3(W/V)比例混合均匀,将谷物蒸煮至谷物中心无白心,且含水率为55%,培养基原料与液体营养液组分2按10:3(W/V)比例混合均匀,厚度0.5cm。
液体营养液组分1(g/L):葡萄糖5,七水硫酸镁0.2,磷酸氢二钾3.0,海盐0.6,甘氨酸0.6,苏氨酸1.5,蛋氨酸2,苹果酸4,加水定容至所需体积,调节pH值6.5。组分2(mg/L):La3+15,Ce3+2,Sm3+3,Nd3+8,Mn2+1.2,Co2+0.08,生物素0.2,浅蓝菌素0.1,赤霉素GA5,VB121.0,叶酸0.03,余量为水。
液体发酵培养基组成:葡萄糖30g/L,NaCl20g/L,MgSO4.7H2O5g/L,酵母粉3g/L,KH2PO41.0g/L,(NH4)2SO40.4g/L,NaHCO31.2g/L,CoCl22.0μg/L,MnSO40.7μg/L,VB10.06mg/L,VB120.005mg/L,初始pH6.5。
发酵结束,收集菌体细胞,测定发酵液中细胞干重达142g/L,DHA含量达32.3g/L。提取的DHA可作为营养强化剂,为人类和动物提供所需长链多不饱和脂肪酸。
Claims (3)
1.一种固料培养裂殖壶菌液体发酵生产DHA的方法,其特征在于包括如下步骤:
1)菌种活化与菌悬液制备:将裂殖壶菌(Schizochytrium sp.)KDW-12菌种接种于斜面培养基上培养活化,培养到期斜面加入质量百分数为0.85%的生理盐水洗涤菌体,获得菌悬液;所述裂殖壶菌(Schizochytrium sp.)KDW-12,已于2012年11月20日保藏在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏中心登记入册编号为CGMCC No.6843;
所述斜面培养基的配方为:葡萄糖20~30g/L,蛋白胨10~15g/L,酵母粉3~5g/L,海水晶15~20g/L,琼脂粉20g/L,pH值6~7,121℃灭菌30min;
2)一级种子制备:将步骤1)获得的菌悬液按质量分数为1%的接种量接种至固料培养基上培养,制成一级固料种子;或
将步骤1)获得的菌悬液按质量分数为1%的接种量接种至液体种子培养基,摇瓶培养,制成一级液体种子;
所述固料培养基包括固态组分和液体营养液组分,所述固态组分为谷物,含量为250~400g/L,所述谷物选自米类、麦类中的至少一种,所述米类选自大米、小米、糙米、玉米中的至少一种,所述麦类选自大麦、小麦、燕麦中的至少一种;所述液体种子培养基的组成为:葡萄糖20~25g/L,氯化钠20~25g/L,磷酸二氢钾0.2~0.5g/L,酵母粉3~5g/L,七水硫酸镁8~12g/L,海盐0.1~0.8g/L,谷氨酸0.2~0.6g/L,pH值6~7,121℃灭菌30min;所述培养的温度为25~28℃,培养的时间为1天;
所述液体营养液组分包括组分1和组分2,所述组分1的组成为:葡萄糖2~5g/L,七水硫酸镁0.2~0.6g/L,磷酸氢二钾1.0~5.0g/L,海盐0.1~0.8g/L,甘氨酸0.2~0.6g/L,苏氨酸1.5~1.8g/L,蛋氨酸2~3.5g/L,苹果酸3~6g/L,加水定容,调节pH值为6~7;所述组分2的组成为:La3+10~15mg/L,Ce3+1~4mg/L,Sm3+2~6mg/L,Nd3+8~12mg/L,Mn2+0.6~1.2mg/L,Co2+0.05~0.1mg/L,生物素0.2~0.6mg/L,浅蓝菌素0.1~0.3mg/L,赤霉素GA2~5mg/L,VB120.5~1.0mg/L,叶酸0.01~0.05mg/L,余量为水;
所述固料培养基的制备方法为:固态组分与液体营养液组分1混合均匀,将谷物蒸或煮至谷物中心无白心,且含水率为50%~65%,获得固料培养基原料;将固料培养基原料与液体营养液组分2混合均匀,装于固态发酵K瓶中,厚度0.2~1.0cm,121℃灭菌30min,制得固料培养基;
所述固态组分与液体营养液组分1按质量/体积的配比为(5~10)g∶(2~5)mL,其 中固态组分按质量计算,液体营养液组分1按体积计算;
所述固料培养基原料与液体营养液组分2按质量/体积的配比为(10~15)g∶(3~6)mL,其中固料培养基原料按质量计算,液体营养液组分2按体积计算;
3)二级固料种子的制备:一级固料种子以质量百分数为0.85%的生理盐水根据1∶1(W/V)比例洗涤菌体,制成菌悬液;
在无菌条件下:
按质量分数为10%~20%的接种量在固料培养基中接入一级固料种子液;或
按质量分数为8%~15%的接种量在固料培养基中接入一级液体种子,摇动K瓶混合均匀,25~28℃,培养2~3天;
制得二级固料种子;
4)二级固料种子发酵罐扩大培养:二级固料种子加入1:3~5(W/V)无菌水振荡洗下菌体,按质量分数为10%~20%的接种量接种至发酵罐扩大培养,发酵前48h温度控制在25~28℃,利用搅拌转速保持30%~50%的溶氧,48h至发酵结束温度控制在18~22℃,发酵3~5天,通过重量百分比为28%的氨水控制发酵pH6.0~6.5,整个发酵过程自动流加经118℃灭菌25min的浓度为580g/L的葡萄糖溶液控制发酵葡萄糖浓度在4~8g/L;
所述扩大培养采用的液体发酵培养基的组成为:葡萄糖30~60g/L,NaCl15~20g/L,MgSO4.7H2O4~8g/L,酵母粉3~8g/L,KH2PO40.5~1.0g/L,(NH4)2SO40.2~0.5g/L,NaHCO30.8~1.2g/L,CoCl21.0~2.0μg/L,MnSO40.5~1.0μg/L,VB10.05~0.1mg/L,VB120.001~0.01mg/L,初始pH6.0~7.0;所述发酵的溶氧维持在8%~12%;
5)发酵结束后,收集菌体细胞,提取DHA油脂。
2.如权利要求1所述的一种固料培养裂殖壶菌液体发酵生产DHA的方法,其特征在于在步骤1)中,所述培养活化的温度为25~28℃,培养活化的时间为2~3天;所述菌悬液的菌体浓度为1.0~2.5×106个/mL。
3.如权利要求1所述的一种固料培养裂殖壶菌液体发酵生产DHA的方法,其特征在于在步骤2)中,所述摇瓶的转速为180~220rpm;摇瓶培养的温度为25~28℃,摇瓶培养的时间为1天。
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