CN102758016B - 一种简便快速检测绵羊多胎基因bmpr-ib的试剂盒 - Google Patents
一种简便快速检测绵羊多胎基因bmpr-ib的试剂盒 Download PDFInfo
- Publication number
- CN102758016B CN102758016B CN 201210236216 CN201210236216A CN102758016B CN 102758016 B CN102758016 B CN 102758016B CN 201210236216 CN201210236216 CN 201210236216 CN 201210236216 A CN201210236216 A CN 201210236216A CN 102758016 B CN102758016 B CN 102758016B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- dna
- gene
- pcr
- bmpr
- ddh
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Fee Related
Links
Images
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明提供的一种简便快速检测绵羊多胎基因BMPR-IB的试剂盒,包括:(1)毛样DNA提取液A为175mM的NaOH溶液;(2)毛样DNA提取液B为175mM的HC l16.7μl,100mM的Tris-HCl、pH8.5、500μl,ddH2O483.3μl;(3)PCR扩增液为2×Taq PCR MasterMix10.0μl,ddH2O 7.7μl,10mM的上下游引物各0.4μl,其中BMPR-IB基因的上游引物序列:5'GTCGCTATGGGGAAGTTTGGATG3';下游引物序列:5'CAAGATGTTTTCATGCCTCATCAACACGGTC3';(4)限制性内切酶Ava II为10U/μl;(5)10×Buffer R为100mM Tris-HCl,100mM MgCl2,1M KCl,1mg/ml BSA;(6)染料为6×RNA/DNA Loading buffer;(7)ddH2O;(8)说明书。
Description
技术领域
本发明涉及分子生物技术领域,尤其适用于从绵羊羊毛毛囊中简便快速提取基因组DNA,继而用于检测绵羊BMPR-I B多胎基因A746G位点的试剂盒及方法。
背景技术
FecB基因是在绵羊中识别出的高繁殖力的第一个主效基因,后被证明该基因实际为BMPR-IB基因,现已发现在澳大利亚Booroola Merino绵羊、印度Garole绵羊、印度尼西亚Javanese绵羊、中国的湖羊、小尾寒羊、中国美利奴羊(军垦型)、中国美利奴羊(新疆型)、滩羊、策勒黑羊中存在BMPR-IB基因A746G突变位点,该基因对绵羊的排卵数与产羔数有显著影响,是控制绵羊产羔数的主效基因之一。
文献检索披露:①2010年11月由新疆农垦科学院的管峰等申请了专利“一种快速检测绵羊多胎FecB基因的方法”,该发明所提供的利用四条单链扩增引物进行FecB基因分型的方法,是由特异性上游引物F1、下游引物R1和对照上游引物F2、下游引物R2共同对待测绵羊基因组DNA扩增,然后对PCR扩增产物进行电泳分析,确定序列扩增产物中条带大小和数目,产物有三种情况:包含220bp和120bp;220bp和160bp;220bp、160bp和120bp。②2011年5月,新疆农垦科学院的杨华等申请了专利“绵羊BMPR-IB基因A746G多态性检测试剂盒及检测方法”,公开的绵羊BMPR-IB基因A746G多态性检测试剂盒,主要包含扩增液、至少1张基因芯片、杂交缓冲液I和II、预杂交液、Taq酶、杂交显色试剂;另外公开了利用该试剂盒进行检测的方法步骤:制备多个绵羊的染色体DNA备用;试剂盒组装;用PCR方法扩增;变性处理;预杂交及杂交;杂交信号检测。
目前,关于检测BMPR-IB基因A746G突变位点的试剂盒及方法的相关发明较少,针对BMPR-IB基因检测的发明及方法,获取DNA的手段基本上都是通过酚仿抽提法提取试验动物血液中的DNA来实现的,但常规的酚仿抽提法操作过程较为繁琐,需要用蛋白酶K进行较长时间的消化,在多步操作中会有基因组DNA损失,整个检测过程较长,且所用酚仿等试剂对操作者身体健康不利。
高质量基因组DNA的提取是后续分子生物学研究的重要基础,较容易获得而且最常用的材料有动物的血液、耳组织、尾组织或趾尖等样品,采集这些组织虽不至于导致动物死亡,但对动物均会或多或少地造成身体伤害,易产生应激,尤其是对于经济价值高或濒临灭绝的珍稀保护动物更不适用,提取动物毛发则相对简便,并且对动物几乎不会造成伤害,另外,毛发更便于长期保存和长途运输,不需要冷藏,也不需要特殊处理。
文献关于从毛发中提取DNA的方法也有报道:⑴余舰等在蛋白酶K(56℃)作用下,采用酚-氯仿反复抽提法从毛发中提取了微量的DNA,但缺点是提取的DNA的量较少。⑵徐艳春等和伍新尧等用Chelex-100处理毛发制备DNA,达到1根毛发提取得到的DNA即可得到较好的实验结果,但用此方法对毛囊细胞裂解不够彻底,残留的消化液对后继的PCR过程有一定的影响。而后,⑶李军林等在常规的酚-氯仿提取法的基础上加以优化,以pH8.8Tris-HCl、MgCl2溶液和蛋白酶K为裂解液消化,使其获得了较高质量的DNA,但操作繁复、耗时。(4)赵春江等在此基础上加以改进,以常用的PCR缓冲液、MgCl2溶液和蛋白酶K为裂解液,在PCR仪上设置一个单循环程序:65℃30min,95℃15min,4℃10min,而后瞬时离心PCR管,上清液即可做PCR模板,此法采用的较高消化温度(65℃),可使蛋白酶K在较短时间内高效地消化毛囊中的蛋白质,使细胞释出DNA;PCR的缓冲液中含有的Tris碱和PCR缓冲液的pH值,可在DNA提取过程中起到保护DNA、防止降解的作用;在PCR仪上,95℃15min过程可使蛋白酶K灭活,防止蛋白酶K在后续PCR过程中消化Taq酶而使PCR扩增无法进行,该方法可以用于大量标本的处理,且效果较好,但该方法中所用试剂价格相对较高且需保存在-20℃条件下。⑸杨胜林等通过从不同数量的猪毛中提取的DNA进行质量比较分析,找出了适合于做分子标记试验所需的猪毛样本数量,DiMartino等采用剪除毛干、保留毛囊的方法预处理毛发,可以减少角蛋白污染,提高DNA提取物的浓度和纯度。
本发明的试剂盒,适用于检测绵羊BMPR-IB多胎基因A746G位点,可在24小时内准确得出检测结果,为绵羊早期选种,即快速检测绵羊多胎基因,提供了一种效率高、操作简便和经济实用的可规模化实施的检测方法。
发明内容
本发明的目的在于:提供一种效率高、操作简便、可规模检测,适用于检测绵羊BMPR-IB多胎基因A746G位点的试剂盒及快速检测方法。
本发明的目的是这样实现的:一种简便快速检测绵羊多胎基因BMPR-IB的试剂盒,利用试剂盒从羊毛毛囊中快速提取基因组DNA,并运用PCR-RFLP技术检测BMPR-IB多胎基因A746G位点;
其中试剂盒包括:毛样DNA提取液A和B,PCR扩增液、限制性内切酶Ava II、10×Buffer R、染料、ddH2O、说明书;
(1)毛样DNA提取液A为175mM的NaOH溶液;
(2)毛样DNA提取液B为175mM的HCl 16.7μl,100mM的Tris-HCl、pH8.5、500μl,ddH2O 483.3μl;
(3)PCR扩增液为2×Taq PCR MasterMix10.0μl,ddH2O7.7μl,10mM的上下游引物各0.4μl,BMPR-IB基因的上下游引物由上海生物工程技术有限责任公司合成;上游引物序列:5'GTCGCTATGGGGAAGTTTGGATG3';下游引物序列:5'CAAGATGTTTTCATGCCTCATCAACACGGTC3';
(4)限制性内切酶Ava II为10U/μl;
(5)10×Buffer R为100mM Tris-HCl,100mM MgCl2,1M KCl,1mg/mlBSA;
(6)染料为6×RNA/DNA Loading buffer;
(7)ddH2O;
(8)说明书;
其中对绵羊繁殖力基因的检测:
(1)毛样DNA的提取:取15根带有毛囊的毛样,用70%乙醇清洗2次,蒸馏水清洗2次,用消毒剪,剪切0.4cm根部毛样,放入0.2ml离心管中离心,3500rpm、5-10s;加15μl毛样DNA提取液A,漩涡混合离心,3500rpm、5-10s;用热循环程序处置:75℃1min,80℃2min,85℃1min,95℃1min,97℃5min;从热循环仪上取下,加入15μl毛样DNA提取液B,漩涡混合,-20℃保存;经3500rpm、5-10s离心,取上清作为DNA模板,PCR扩增备用;
(2)PCR扩增:将1.5μl DNA模板加入对应标号的PCR管中,再加入18.5μl PCR扩增液,弹去气泡,震荡混匀,经3500rpm、5-10s离心;放入设定好程序的PCR仪中,反应程序为94℃预变性5min,94℃变性30s、60℃退火温度30s、72℃延伸30s共30个循环,72℃延伸5min,4℃保存;用1.5%的琼脂糖凝胶电泳进行PCR产物检测,电压120V、电泳30min、EB染色,凝胶成像扩增产物符合预期片段140bp;
(3)PCR-RFLP检测:酶切反应体系为ddH2O 2.5μl,10×Buffer R2.0μl,限制性内切酶Ava II 0.5μl,PCR扩增产物5.0μl;放入37℃恒温箱消化4h;用2.5%的琼脂糖凝胶电泳进行酶切产物检测,电压120V、电泳30min、EB染色,凝胶成像系统成像,其基因判型结果:看不到30bp条带,只见140bp、110bp条带。
本发明对毛囊DNA提取的提取液配方、毛囊样本量和DNA提取液上样量的最适配比、热循环程序进行优化,确定毛样DNA提取液A为175mM的NaOH溶液1000μl,毛样DNA提取液B为175mM的HCl 16.7μl,100mM的Tris-HCl(pH8.5)500μl,ddH2O483.3μl;15根带毛囊的毛样加15μl毛样DNA提取液提取效果最佳;最优热循环程序为75℃1min,80℃2min,85℃1min,95℃1min,97℃5min;此方法将用传统酚氯仿抽提法提取基因组DNA的时间由1-2天缩短至30min,将利用PCR-RFLP技术检测BMPR-IB多胎基因A746G位点的整个试验时间由2-3天缩短至1天,极大地提高了测定绵羊BMPR-IB多胎基因A746G位点的效率。
本发明的快速检测绵羊BMPR-IB多胎基因A746G位点的方法,主要通过优化和改进羊毛毛囊DNA的提取方法,简便快速的从羊毛毛囊中提取基因组DNA,进而进行PCR-RFLP检测得以实现,彰显技术进步。
附图说明
本发明结合实施例作进一步说明。
附图1为PCR扩增的电泳图;
如图所示:M为DL2000DNA Marker,泳道2-4为用传统酚氯仿抽提法从血样中提取基因组DNA后进行PCR扩增的产物,泳道1为该方法的空白对照;泳道6-8为用优化后的毛囊DNA提取方法从羊毛毛囊中提取基因组DNA后进行PCR扩增的产物,泳道5为该方法的空白对照。
附图2为酶切图;
如图所示:M为DL2000DNA Marker,泳道5为140bp,判定为++基因型,泳道1-4、6、8为140bp、110bp、30bp,判定为B+基因型,泳道7为110bp、30bp,判定为BB基因型;因30bp条带片段小,有可能从胶中跑出,可能看不到30bp条带,只可见140bp、110bp条带,不影响判型。
具体实施方式
本发明结合实施例作进一步说明。
实施例
本发明公开的快速检测绵羊BMPR-IB多胎基因A746G位点的试剂盒包括下列毛样DNA提取液A和B、PCR扩增液、限制性内切酶Ava I I、10×Buffer R、ddH2O、染料、说明书,具体规格如下表:
编号 | 名称 | 规格(l/管) | 数量(个) |
1 | 毛样DNA提取液A | 1000 | 2 |
2 | 毛样DNA提取液B | 1000 | 2 |
3 | PCR扩增液 | 1000 | 2 |
4 | 限制性内切酶AvaII | 1000 | 1 |
5 | 10×Buffer R | 1000 | 1 |
6 | 染料 | 1000 | 2 |
7 | ddH2O | 1000 | 2 |
8 | 说明书 | 1 |
1)毛样DNA提取液A
175mM的NaOH溶液1000μl;
2)毛样DNA提取液B
175mM的HC l16.7μl,100mM的Tris-HCl(pH8.5)500μl,ddH2O483.3μl;
3)PCR扩增液
BMPR-IB基因的上下游引物序列参照文献Wilson(2001)发表的“Highlyprolific Booroola sheep have a mutation in the intracellular kinasedoma in of bone morphogenetic protein IB receptor(ALK-6)that is expressedin both oocytes and granulosa cells”,由上海生物工程技术有限责任公司合成;上游引物序列:5'GTCGCTATGGGGAAGTTTGGATG3';下游引物序列:5'CAAGATGTTTTCATGCCTCATCAACACGGTC3';
20.0μl的PCR扩增反应体系中除DNA模板1.5μl外:2×Taq PCRMasterMix10.0μl,ddH2O 7.7μl,10mM的上下游引物各0.4μl;
4)限制性内切酶Ava II
10U/μl,限制性内切酶Ava II的酶切位点为:5’...G↓G W C C...3’3’...C C W G↑G...5’
5)10×Buffer R
100mM Tris-HCl(pH8.5),100mM MgCl2,1M KCl,1mg/ml BSA;
6)染料
6×RNA/DNA Loading buffer;
7)ddH2O
8)说明书
对运用试剂盒进行检测BMPR-IB多胎基因A746G位点试验的试剂准备、操作步骤、注意事项等进行了详细说明;
其中对绵羊繁殖力基因的检测:
1)毛样DNA的提取:
用镊子或眉夹拔取羊尾根部的的粗毛(带毛根)20根,放入自封袋中,标号,-20℃保存;
取15根明显带有毛囊的毛样,用70%乙醇清洗2次,蒸馏水清洗2次,在根部用剪刀(已消毒)剪切约0.4cm,放入0.2ml离心管中离心,3500rpm,8s;
加15μl毛样DNA提取液A,漩涡混合,瞬时离心,其条件为3500rpm,7s;
用如下程序进行热循环:75℃1min,80℃2min,85℃1min,95℃1min,97℃5min;
从PCR仪上取下,加入15μl毛样DNA提取液B,漩涡混合,-20℃保存;
瞬时离心,其条件为3500rpm,9s,取上清作为DNA模板,可用于PCR扩增;
2)PCR扩增:
将1.5μl DNA模板加入对应标号的PCR管中,再加入18.5μl PCR扩增液,弹去气泡,震荡混匀,瞬时离心,其条件为3500rpm,10s;
放入设定好程序的PCR仪中,反应程序如下表:
用1.5%的琼脂糖凝胶电泳进行PCR产物检测,电压120V,电泳30min,EB染色,凝胶成像系统成像;
检测结果表明PCR扩增产物大小符合预期,条带清晰,无杂带,符合要求,-20℃保存,酶切备用;
3)PCR-RFLP检测:
酶切反应体系(10.0μl):ddH2O 2.5μl,10×Buffer R 2.0μl,限制性内切酶Ava II 0.5μl,PCR扩增产物5.0μl;
放入37℃恒温箱消化4h;
用2.5%的琼脂糖凝胶电泳进行酶切产物检测,电压120V,电泳30min,EB染色,凝胶成像系统成像;
基因判型:酶切消化产物大小为140bp时,即判定为++基因型;酶切消化产物大小为140bp、110bp、30bp时,即判定为B+基因型;酶切消化产物大小为110bp、30bp时,即判定为BB基因型,BB和B+基因型说明该个体的BMPR-IB多胎基因在A746G位点存在突变,是多胎基因的携带者,与基因型为++的个体相比在遗传基础上具有更高的繁殖力。
本试验所用三羟甲基氨基甲烷,即Tris-base,由庄盟生物(BG05S)提供;2×Taq PCR Master Mix由博迈德生物(PC0912)提供;限制性内切酶Ava II、10×Buffer R由MBI Fermentas公司(#ER0311)提供;6×RNA/DNA Loading buffer由博迈德生物(EP01)提供;ddH2O由北京鼎国昌盛生物技术有限责任公司(PER018)提供;DL2000DNA Marker由庄盟生物(ZM404-1)提供;EB由天根生化科技有限公司(#RT203)提供;3-18K高速冷冻离心机产自SIGMA公司;JY04S凝胶成像仪产自北京君意东方电泳设备有限公司。
Claims (1)
1.一种简便快速检测绵羊多胎基因BMPR-IB的试剂盒,其特征在于:利用试剂盒从羊毛毛囊中快速提取基因组DNA,并运用PCR-RFLP技术检测BMPR-IB多胎基因A746G位点;
其中试剂盒包括:毛样DNA提取液A和B,PCR扩增液、限制性内切酶Ava II、10×Buffer R、染料、ddH2O、说明书;
(1)毛样DNA提取液A为175 mM的NaOH溶液;
(2)毛样DNA提取液B为175 mM的HCl 16.7 μl,100 mM 的Tris-HCl、pH 8.5、 500 μl,ddH2O 483.3 μl;
(3)PCR扩增液为2×Taq PCR MasterMix 10.0 μl,ddH2O 7.7 μl,10 mM的上下游引物各0.4 μl,BMPR-IB基因的上下游引物由上海生物工程技术有限责任公司合成;上游引物序列:5' GTCGCTATGGGGAAGTTTGGATG 3';下游引物序列:5' CAAGATGTTTTCATGCCTCATCAACACGGTC 3';
(4)限制性内切酶Ava II为10 U/μl;
(5)10×Buffer R为100 mM Tris-HCl,100 mM MgCl2 ,1 M KCl,1 mg/ml BSA;
(6)染料为6×RNA/DNA Loading buffer;
(7)ddH2O;
(8)说明书;
其中对绵羊多胎基因BMPR-IB的检测:
(1)毛样DNA的提取:取15-30根带有毛囊的毛样,用70﹪乙醇清洗2次,蒸馏水清洗2次,用消毒剪,剪切0.4 cm根部毛样,放入0.2 ml离心管中离心, 3500rpm、5-10s;加15 μl 毛样DNA提取液A,漩涡混合离心, 3500rpm、5-10s;用热循环程序实施热循环:75℃ 1 min,80℃ 2 min,85℃ 1 min,95℃ 1 min,97℃ 5 min;从热循环仪上取下,加入15 μl 毛样DNA提取液 B,漩涡混合,-20℃保存;经3500rpm、5-10s离心,取上清作为DNA模板,PCR扩增备用;
(2)PCR扩增:将1.5 μl DNA模板加入对应标号的PCR管中,再加入18.5 μl PCR扩增液,弹去气泡,震荡混匀,经3500rpm、5-10s离心;放入设定好程序的PCR仪中,反应程序为94℃预变性5 min,94℃变性30 s、60℃退火温度30 s、72℃延伸30 s共30个循环,72℃延伸5 min,4℃保存;用1.5%的琼脂糖凝胶电泳进行PCR产物检测,电压120 V、电泳30 min、EB染色,凝胶成像扩增产物符合预期片段140bp;
(3)PCR-RFLP检测:酶切反应体系为ddH2O 2.5 μl,10×Buffer R 2.0 μl,限制性内切酶Ava II 0.5 μl,PCR扩增产物5.0 μl;放入37℃恒温箱消化4 h;用2.5%的琼脂糖凝胶电泳进行酶切产物检测,电压120 V、电泳30 min、EB染色,凝胶成像系统成像,其基因判型结果:酶切消化产物大小为140bp时,即判定为++基因型;酶切消化产物大小为140bp、110bp、30bp时,即判定为B+基因型;酶切消化产物大小为110bp、30bp时,即判定为BB基因型,BB和B+基因型说明该个体的BMPR-IB多胎基因在A746G位点存在突变,是多胎基因的携带者,与基因型为++的个体相比在遗传基础上具有更高的繁殖力。
2、按照权利1所述的试剂盒,其特征在于:所用三羟甲基氨基甲烷,即Tris-base,由庄盟生物提供;2×Taq PCR MasterMix由博迈德生物提供;限制性内切酶Ava II、10×Buffer R由MBI Fermentas公司提供;6×RNA/DNA Loading buffer由博迈德生物提供;ddH2O由北京鼎国昌盛生物技术有限责任公司提供;DL2000 DNA Marker由庄盟生物提供;EB由天根生化科技有限公司提供;3-18K高速冷冻离心机产自SIGMA公司;JY04S凝胶成像仪产自北京君意东方电泳设备有限公司。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN 201210236216 CN102758016B (zh) | 2012-07-09 | 2012-07-09 | 一种简便快速检测绵羊多胎基因bmpr-ib的试剂盒 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN 201210236216 CN102758016B (zh) | 2012-07-09 | 2012-07-09 | 一种简便快速检测绵羊多胎基因bmpr-ib的试剂盒 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN102758016A CN102758016A (zh) | 2012-10-31 |
CN102758016B true CN102758016B (zh) | 2013-08-07 |
Family
ID=47052665
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN 201210236216 Expired - Fee Related CN102758016B (zh) | 2012-07-09 | 2012-07-09 | 一种简便快速检测绵羊多胎基因bmpr-ib的试剂盒 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN102758016B (zh) |
Families Citing this family (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104774836A (zh) * | 2015-04-15 | 2015-07-15 | 兰州大学 | 一种提高绵羊产羔数多基因聚合早期选种的方法 |
CN104962614A (zh) * | 2015-06-04 | 2015-10-07 | 中国农业科学院北京畜牧兽医研究所 | 利用Taqman MGB探针检测绵羊FecB基因多态性的方法 |
CN104928289A (zh) * | 2015-06-04 | 2015-09-23 | 内蒙古河套农牧业技术研究院 | 利用SNaPshot技术检测绵羊FecB基因多态性的方法 |
CN107338287B (zh) * | 2017-06-13 | 2021-06-15 | 新疆农垦科学院 | Taqman-MGB探针检测绵羊BMPR-IB基因A746G突变的试剂盒和方法 |
CN108103208B (zh) * | 2018-01-04 | 2021-03-12 | 华南农业大学 | 一种影响湖羊产羔性状的snp标记及其应用 |
Family Cites Families (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1706958A (zh) * | 2004-06-10 | 2005-12-14 | 李迪强 | 东北虎毛发dna的提取方法及微卫星dna标记引物序列 |
CN101818204B (zh) * | 2010-04-30 | 2013-03-27 | 中国农业科学院哈尔滨兽医研究所 | 一种检测猕猴属动物TRIMCyp基因型的PCR方法 |
-
2012
- 2012-07-09 CN CN 201210236216 patent/CN102758016B/zh not_active Expired - Fee Related
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN102758016A (zh) | 2012-10-31 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN102758016B (zh) | 一种简便快速检测绵羊多胎基因bmpr-ib的试剂盒 | |
KR20130074796A (ko) | 오이의 품종을 식별하기 위한 다형성 마커 | |
CN102134593B (zh) | 半滑舌鳎性别特异微卫星标记及其在超雌鱼鉴定中的应用 | |
AU2020104226A4 (en) | A Molecular Marker Method for Identification of Lanolin Sweat and Its Primers | |
CN104498599A (zh) | 一组微孢子虫分子通用检测引物及其试剂盒 | |
Aprea et al. | Chromosomal rearrangements occurred repeatedly and independently during species diversification in Malagasy geckos, genus Paroedura | |
CN102605092A (zh) | 柑橘黄龙病的lamp快速检测方法 | |
CN103409516B (zh) | 一种斑点叉尾鮰物种的鉴定方法 | |
CN106011276B (zh) | 用于鉴定天台蛙的物种特异性pcr鉴定引物和方法及应用 | |
CN109880893A (zh) | 用于丝尾鱯性别鉴定的特异性dna片段及应用 | |
CN102586470B (zh) | 玉米弯孢叶斑病菌pcr检测试剂盒及检测方法 | |
Shan et al. | Sex‐linked microsatellite marker detected in the female gametophytes of Undaria pinnatifida (Phaeophyta) | |
CN103146830B (zh) | 一种能同时预示和鉴定绵羊羊毛细度和卷曲度的分子标记方法 | |
CN103276098B (zh) | 一种预示和鉴定绵羊羊毛长度的分子标记方法 | |
CN108754010B (zh) | 一种快速检测总rna样本中基因组dna残留的方法 | |
CN102134600B (zh) | 一种朱鹮性别鉴定的pcr方法 | |
Ichikawa et al. | DNA types of aspermic Fasciola species in Japan | |
CN110541035A (zh) | 一种中华倒刺鲃dna条形码序列及其应用 | |
CN105861498A (zh) | 一种与橡胶树干胶产量相关的snp标记及其应用 | |
Sarma et al. | Analysis of BMP4 gene HaeIII polymorphism in Assam Hill goat | |
CN106591426B (zh) | 一种东白眉长臂猿的coi基因标准全序列及分子鉴定方法 | |
CN103421770B (zh) | Dio3基因作为猪胴体和肉质性状的遗传标记及应用 | |
CN105567827A (zh) | 一种同时检测异育银鲫多种寄生粘孢子虫的pcr方法 | |
CN110317882B (zh) | 中华鳖微卫星标记、其引物及应用 | |
KR20140004050A (ko) | 오이의 품종을 식별하기 위한 다형성 마커 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |
Granted publication date: 20130807 Termination date: 20160709 |
|
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |