CN102626246A - 一种花色素苷新型功能饮料 - Google Patents
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Abstract
一种保健功能饮料，具体涉及一种以黑米花色素苷为主要功能成分的保健饮品，它的主要配方成分是花色素苷，蔗糖、柠檬酸等按一定比例混合配制而成的一种新型功能饮料，其营养价值较高，能满足机体增强抗氧化能力和促进免疫功能的需要。同时还有调节血脂和降低胆固醇等功效，它是适合各种人群饮用的具有保健功能的饮料。
Description
技术领域
一种保健功能饮料，具体涉及一种以黑米花色素苷为主要成分的功能饮料。
背景技术
我国人民很早就利用黑米丰富的营养价值和特有的生理功能，加工成黑米粥，黑米粉和黑米酒等产品。我国市场上有利用黑米为主要原料或加入其他保健食品成分，生产发酵无醇或低醇黑米饮料、发酵黑米酸乳、保健黑米粥等保健品。如：上海泰康食品厂与上海农学院联合以香糯、黑糯、黑釉、赤豆、莲心、红枣、核桃仁、葡萄干、惹米仁、白木耳、砂糖等为原料，开发出黑米八宝粥系列产品。广东省农科院生物技术研究所采用传统工艺与生化工程等新的科学方法研制成功了健身黑米酒。华南理工大学以黑粘米为原料以乳酸杆菌A为发酵菌种，制成三种类型的黑米乳酸发酵饮料。郑州粮食学院以黑糯米为原料，选用保加利亚乳酸杆菌和嗜热链球菌为发酵菌种，生产出黑糯米乳酸饮料。广东省农科院生物技术研究所与有关单位合作，研制了含有多种氨基酸、维生素、微量元素，且风味独特，酸甜可口，不含糖精及人工色素的黑米可乐饮料。申请号：93120961.7“黑米稠酒及黑米稠酒的生产工艺”，以汉中黑糯米为原料，辅以西洋参、灵芝、何首乌等中药材、制成了黑米口服液。浙江省嘉兴市农业科学研究所采用血糯米与麦芽做原料，通过一系列加工工艺流程制做出了营养爽口的血糯营养碳酸饮料。西安臻康饮品有限公司生产的“臻康牌”紫米露饮料是黑米为主，人参、黄芭、构祀子、何首乌、五味子、山药、熟地、山植等药材为辅料，经提取过滤配制、精滤、灌装、灭菌具保健功能的天然健康饮品。但以上产品尚未充分利用或在加工过程中破坏了黑米花色素苷这一天然的保健功能因子。
纵观上述，有关黑米或花色素苷饮料的研究现状，我们发现，尽管有许多研究人员从事研究，但大都沿袭大米、玉米等传统乳饮料的制作工艺，并没有真正的考虑到在饮料制作过程中将功能性成分——花色素苷最大程度的转移到饮料中去。
本发明的目的在于克服以上产品的不足，充分利用原料的基础上最大程度的将花色素苷转移到饮料中，开发出了一种能体现花色素苷的抗氧化、降血脂、促免疫等作用的新型功能饮料。
发明内容
本发明目的是研制一种以花色素苷为主要活性成分的功能饮料，具有抗氧化、降血脂和促免疫的保健功效。
本发明按下列各组分配制所述花色素苷新型功能饮料，其配比如下：
本发明制备花色素苷新型功能饮料的方法：
1、黑米皮浸提液制备：①准确称取黑米在精米机上过40目筛精碾1.5min，分别收集第一次的精米和第一次的米皮(称黑米皮I)；再将第一次的精米重新放回精米机中继续精碾1.5min，同时分别收集精米和第二次的米皮(称黑米皮II)。②取一定量的黑米皮，加入石油醚，料液比1∶5，60℃水浴，浸提60min，超声50KHz辅助，沥去石油醚部分；③再用90％的乙醇(高浓度的乙醇)，料液比1∶5，60℃水浴，浸提60min，超声50KHz辅助，沥去乙醇部分；④然后用蒸馏水，料液比1∶5，60℃水浴，浸提60min，超声50KHz辅助，沥去水部分；⑤最后加浸提液(含1.0％柠檬酸，60％乙醇)，料液比1∶5，60℃水浴，浸提60min，超声50KHz辅助，重复2次，合并提取液，真空抽滤去杂即得黑米花色素苷浸提液。
2、将12g白砂糖用适量水溶解过滤，得糖浆备用。
3、将黑米皮浸提液1mL(约含花色素苷40mg)加入上述步骤2糖浆中，加饮用水至100mL(水温不超过40℃)。
4、将0.3g柠檬酸和0.05g柠檬酸钠溶解，加入上述步骤3溶液中，充分混合。
5、利用高温短时灭菌法对饮料进行灭菌。
6、灌装、包装，成品。
由于花色素苷在酸性条件下较稳定，所以该饮料口感呈酸性。
花色素苷(Anthocyanin)是类黄酮——以黄酮核为基础的一类物质，基本结构为3，5，7-三羟基-2-苯基苯并呋喃。
质量控制：
1、感官指标
色泽：呈深紫红色、均匀一致
香味：具有黑米特有的香味
口感：清爽、酸甜可口
组织形态：汁液呈半透明状、无沉淀、无杂质、流动性较好
2、理化指标
花色苷含量≥0.33g/L
总黄酮含量≥0.52g/L
蛋白质含量≥1.5g/L
维生素含量＞0.05g/L
碳水化合物＞13％
3、卫生指标
细菌总数(CFU/mL)：≤100
大肠菌群(CFU/100mL)：≤3
致病菌未检出
本发明具有以下有益效果：
1、清除自由基、延缓衰老、改善肝脏、血清脂质，防止身体过氧化。
2、有效降低胆固醇和低密度脂蛋白水平，预防血栓形成，对冠心病、高血脂、高血压等心脑血管疾病的发生有很好的保健作用。
3、提高自身抵抗力，增强免疫力。
4、能减轻炎症、关节炎、痛风等疾病所造成的疼痛。
5、对肿瘤有较好的功效，能溶解癌细胞，抑制肿瘤细胞的侵入和转移，对癌症患者的康复有明显的作用，延长患者寿命。
6、减轻眼部疲劳、提高夜间视力和改善视觉瞬间适应性。
7、本饮料是不含任何对人体有害化学成份的无醇饮料，除了富含花色素苷之外，还含有其他多种营养成分如蛋白质、维生素、矿物质等，适合各种人群饮用，具有广阔的市场前景。
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明作进一步说明，但所举实施例不作为对本发明的限定。若未特别指明，实施例中所用的技术手段为本领域技术人员所熟知的常规手段。
实施例1花色素苷新型功能饮料制备
本发明按下列各组分配制所述花色素苷新型功能饮料，其配比如下：
本发明制备花色素苷新型功能饮料的方法：
1、黑米皮浸提液制备。①准确称取黑米在精米机上过40目筛精碾1.5min，分别收集第一次的精米和第一次的米皮(称黑米皮I)；再将第一次的精米重新放回精米机中继续精碾1.5min，同时分别收集精米和第二次的米皮(称黑米皮II)。②取一定量的黑米皮，加入石油醚，料液比1∶5，60℃水浴，浸提60min，超声50KHz辅助，沥去石油醚部分；③再用90％的乙醇(高浓度的乙醇)，料液比1∶5，60℃水浴，浸提60min，超声50KHz辅助，沥去乙醇部分；④然后用蒸馏水，料液比1∶5，60℃水浴，浸提60min，超声50KHz辅助，沥去水部分；⑤最后加浸提液(含1.0％柠檬酸，60％乙醇)，料液比1∶5，60℃水浴，浸提60min，超声50KHz辅助，重复2次，合并提取液，真空抽滤去杂即得黑米花色素苷浸提液。
2、将12g白砂糖用适量水溶解过滤，得糖浆备用。
3、将黑米皮浸提液1mL(约含花色素苷40mg)加入上述步骤2糖浆中，加饮用水至100mL(水温不超过40℃)。
4、将0.3g柠檬酸和0.05g柠檬酸钠溶解，加入上述步骤3溶液中，充分混合。
5、利用高温短时灭菌法对饮料进行灭菌。
6、灌装、包装，成品上市。同时运输贮存过程中应注意避光、冷藏等措施。
实施例2饮料的稳定性研究
1、光照对花色素苷的影响
不同光照条件处理，对饮料中花色素苷含量的影响不同。室外日光条件下花色素苷的含量明显下降，而且时间越长下降越明显。室内自然光条件下，花色素苷含量也呈缓慢下降趋势，室内避光条件下花色素苷含量无明显变化，说明花色素苷对光特别敏感，在加工和贮存过程中要注意避光。
表1光照对花色素苷的影响
2、温度对花色素苷的影响
饮料在不同的温度条件下，其花色素苷含量变化很明显。20℃下，花色素苷比较稳定，但随着温度升高及时间的积累，花色素苷含量呈明显下降趋势，这说明花色素苷对热非常敏感，在生产加工和贮存过程中要注意对温度的控制。
表2温度对花色素苷的影响
3、金属离子对花色素苷的影响
随k+浓度的增大，花色素苷浓度无显著性变化，说明K+对花色素苷的稳定性无显著影响。高浓度的Na+、Ca2+、Mg2+、Zn2+和Cu2+条件下测定花色素苷含量有所增大，说明它们对花色素苷有护色作用，但对其稳定性无显著影响。
表3金属离子对花色素苷的影响
实施例3饮料的安全性评价
1、最大耐受量实验
在预实验的基础上，将体重18～22g的健康ICR小鼠16只，雌雄各半，随机分为生理盐水组(对照)和实验组，每组8只，空腹16h后以最大量0.4mL/10g灌胃，对照组以等量蒸馏水灌胃，24h内灌胃三次(每次间隔4h)，同时禁食禁水。然后，在相同条件下分笼饲养，观察14d，记录动物反应情况。
连续观察14d，结果发现，所有小鼠无死亡，外观、体征、饮食、精神状态、行为活动等均未出现异常；眼、鼻、口等也无异常分泌物；经解剖小鼠，取出脏器肉眼观察其心、肝、脾、肺、肾多个脏器与对照组比较，皆未发现明显病变和差异。表明ICR小鼠对饮料的最大耐受量＞120mL/kg(相当于人的量＞792mL/60kg)。
2、小鼠60天喂养实验
选用18～22g健康ICR小鼠24只，雌雄各半，随机分为生理盐水组(对照)和饮料组，每组12只，以0.3mL/10g每天灌胃一次，在同等条件下饲养60d，期间自由饮水取食，每天灌胃、给饲料时观察大鼠外观、体征、食欲、大小便、精神状态、行为活动等一般状况。实验最后一天禁食16h后，称重，眼球取血，作血液学和生化各项指标测定；取小鼠的脑、心、肝、脾、肺、肾进行称重并计算其脏器系数，各内脏用10％甲醛处理后，做病理切片检查。
2.1饮料对小鼠脏器系数的影响
与对照组相比，雄性实验组小鼠体重显著上升(*P＜0.05)，其他脏器系数无显著性差异。结果见表4。
表4花色素苷饮料对小鼠脏器系数的影响
注：与对照组比较，*P＜0.05；
2.2饮料对小鼠血液学指标的影响
与对照组比较，雌雄实验组小鼠各血液学指标均无显著性差异(P＞0.05)。说明以血象观察本饮料未出现毒性反应。结果见表5。
表5花色素苷饮料对小鼠血液学指标的影响
注：与对照组比较，*P＜0.05；
2.3饮料对小鼠血液生化指标的影响
表6显示，在所测几项指标中与正常对照组小鼠比较实验组雌雄小鼠的血液生化指标均无显著性差异(P＞0.05)，均属于正常范围，该饮料未对小鼠产生毒性反应。
表6花色素苷饮料对小鼠血液生化指标的影响
注：与对照组比较，*P＜0.05；
2.4病理学检查
连续灌胃8周后，处死动物，剖取各组小鼠的脑、心、肝、脾、肺、肾主要器官首先进行肉眼尸检，主要脏器外形、体积和色泽均属正常。病理组织学检查结果显示，正常对照组和实验组各脏器均无异常。
实施例4花色素苷功能饮料的抗氧化及调节血脂的作用
1.1动物分组及处理
10-12周龄SPF级雄性SD大鼠54只，随机分为9组，每组6只，以基础饲料喂养1w后，I组(正常对照组，基础饲料+饮用水)、II组(基础饲料+蓝莓饮料)、III组(基础饲料+花色素苷饮料)、IV组(高脂血症模型组，高脂饲料+饮用水)、V组(高脂饲料+蓝莓饮料)、VI组(高脂饲料+花色素苷饮料)，每天在规定时间内，给大鼠更换饮用水和饮料，于同等条件下连续喂养6周。
1.2花色素苷饮料对大鼠血清TC、TG、HDL-C和LDL-C水平的影响
如表1.2.1所示，与正常对照I组相比，II组、III组大鼠的各项指标均无显著性差异(P＞0.05)，而IV、V、VI组大鼠各项指标均有显著差异(P＜0.01)；相比IV组，V组大鼠的TC和LDL-C水平显著降低(P＜0.01)，HDL-C水平显著升高(P＜0.01)；VI组大鼠TC、TG和LDL-C显著降低(P分别为：P＜0.01，P＜0.05，P＜0.01)，HDL-C水平显著升高(P＜0.05)，实验结果显示，花色素苷饮料喂养后正常大鼠血脂水平无显著差异，但能使高脂饲料喂养的大鼠TC、TG及LDL-C水平明显降低，HDL-C水平显著升高，说明花色素苷饮料有一定调节血脂的功能。
表1.2.1花色素苷饮料对正常和高脂血症大鼠血清TC、TG、HDL-C和LDL-C的影响
注：与正常对照I组比较，*P＜0.05，**P＜0.01；与高脂模型IV组比较，△P＜0.05，△△P＜0.01；
1.3花色素苷饮料对正常和高脂血症模型大鼠血清和肝、肾总抗氧化能力(T-AOC)的影响
如表1.3.1所示，形成高脂血症的同时，II组、III组大鼠血清和肝、肾组织T-AOC均高于I组，除II组血清，其余均无统计学差异(P＞0.05)；IV组、V组、VI组大鼠血清和肝肾T-AOC均低于I组，且差异具有显著性意义(P＜0.01)；与IV组比较，V组大鼠血清、肝、肾组织的T-AOC均显著升高(均P＜0.01)，VI组大鼠血清、肝、肾组织的T-AOC显著高于IV组(P分别为：P＜0.01，P＜0.05，P＜0.05)，这一结果表明，花色素苷饮料能使高脂血症模型大鼠的抗氧化能力增强。
表1.3.1花色素苷饮料对正常和高脂血症大鼠血清和肝、肾组织中T-AOC活力的影响
注：与正常对照I组比较，*P＜0.05，**P＜0.01；与高脂模型IV组比较，△P＜0.05，△△P＜0.01；
1.4花色素苷饮料对正常和高脂血症模型大鼠血清和肝、肾SOD活力的影响血清和肝、肾组织中，II组、III组与I组相比均显著升高(P＜0.01)；IV组、V组、VI组大鼠血清和肝、肾组织中SOD活性与I组相比均显著降低(P＜0.01)；与IV组相比，V组、VI组大鼠血清和肝、肾组织中SOD活性均显著升高(V组均P＜0.01，VI组P分别为：P＜0.01，P＜0.05，P＜0.01)，结果表明，蓝莓饮料和花色素苷饮料不仅可使正常大鼠体内SOD活性明显升高，同时对高脂血症模型大鼠SOD活力具有正调节作用，结果见表6.4。
表1.4.1花色素苷饮料对正常和高脂血症大鼠血清和肝、肾组织中SOD活力的影响
注：与正常对照I组比较，*P＜0.05，**P＜0.01；与高脂模型IV组比较，△P＜0.05，△△P＜0.01；
1.5花色素苷饮料对正常和高脂血症模型大鼠血清和肝、肾GSH-PX活力影响
血清和肝、肾组织中，II组GSH-PX活性均显著高于I组(P分别为：P＜0.05，P＜0.01，P＜0.01)，III组除血清无显著差异(P＞0.05)，肝、肾组织均显著高于I组(P分别为：P＜0.01，P＜0.05)；IV组、V组、VI组大鼠血清和肝、肾组织中GSH-Px活力均显著低于I组(P＜0.01)；与IV组相比，除VI组大鼠肝组织，其余均具有极显著差异(均P＜0.01)，见表6.5。结果表明，蓝莓饮料和花色素苷饮料均能使大鼠体内的GSH-PX活力升高，使其抗氧化能力增强。
表1.5.1花色素苷饮料对正常和高脂血症大鼠血清和肝、肾组织中GSH-PX活力的影响
注“与正常对照I组比较，*P＜0.05，**P＜0.01；与高脂模型IV组比较，△P＜0.05，△△P＜0.01；
1.6花色素苷饮料对正常和高脂血症模型大鼠血清和肝、肾GSH-PX活力的影响
II组、III组与I组相比MDA含量均显著降低(II组均P＜0.01，III组均P＜0.05)；IV组、V组、VI组大鼠血清和肝、肾组织中MDA含量均高于I组，除VI组肝与I组无显著差异，其余各组均具有显著性意义(P＜0.05或P＜0.01)；与IV组相比，V组、VI组血清和肝中MDA含量显著降低(P＜0.05或P＜0.01)，肾组织中MDA含量无显著差异(P＞0.05)。结果显示，蓝莓饮料和花色素苷饮料均能减少大鼠体内产生的MDA，增强体内抗氧化能力。
表1.6.1花色素苷饮料对正常和高脂血症大鼠血清和肝、肾组织中MDA含量的影响
注“与正常对照I组比较，*P＜0.05，**P＜0.01；与高脂模型IV组比较，△P＜0.05，△△P＜0.01；
2促免疫功能研究
2.1动物分组及处理
雄性SPF级Sprague Dauley纯系(SD)大鼠(由本院实验动物中心提供)。10-12周龄，体重(170±15)g24只，随机均分为4组，每组6只，分笼饲养。第1组(I)为正常对照组(饮用水)；第2组(II)蓝莓饮料组(约70mL/只·d)；第3组(III)为花色素苷饮料组(70mL/只·d)；第4组(IV)为环磷酰胺免疫抑制组(饮用水)；第5组(V)为蓝莓饮料组(70mL/只·d)；第6组(VI)为花色素苷饮料组(70mL/只·d)。每天在规定时间内，给大鼠更换饮用水和饮料，让其自由取食，于同等条件下连续给药6周。IV组、V组、VI组大鼠在第41、42天灌胃给药的同时腹腔注射环磷酰胺，剂量为60mg/kg，I组、II组、III组腹腔注射等体积的生理盐水。用常规方法从大鼠股动脉采血，然后放血处死，再进行下一步操作。
2.2花色素苷饮料对正常和环磷酰胺免疫抑制大鼠脾和胸腺的湿重及湿重指数的影响
II组大鼠胸腺湿重、III组大鼠脾湿重与I组相比均显著升高(P＜0.05)；IV组大鼠脾脏湿重、胸腺湿重及脾脏系数、胸腺系数均显著低于I组(P＜0.01或P＜0.05)；V组大鼠脾脏湿重和脾脏系数均显著低于I组(P＜0.01)，胸腺湿重及胸腺系数无显著差异(P＞0.05)，同时脾脏湿重显著高于IV组(P＜0.01)；VI组大鼠脾脏湿重及脾脏系数与I组比较均显著降低(P＜0.01)，胸腺湿重及胸腺系数无显著差异(P＞0.05)，结果表明，环磷酰胺可使大鼠脾脏和胸腺重量减轻、组织萎缩，花色素苷饮料可使大鼠脾脏湿重增加，同时可遏制环磷酰胺造成的胸腺萎缩及胸腺系数的减小，从而对免疫系统起到正调节作用。如表7.1所示。
表2.2.1花色素苷饮料对正常和环磷酰胺免疫抑制大鼠的脾和胸腺湿重指数的影响
注：与正常对照I组比较，*P＜0.05，**P＜0.01；与高脂模型IV组比较，△P＜0.05，△△P＜0.01；
2.3花色素苷对正常和免疫抑制大鼠血清LDH、ACP活力的影响
血清中，II组、III组大鼠LDH活力均显著高于I组(P＜0.01)；IV组、V组、VI组大鼠LDH、ACP活力均显著低于I组(P＜0.01)；与IV组相比V组、VI组大鼠的LDH活力极显著升高(P＜0.01)，ACP活力升高但无显著差异(P＞0.05)，这一结果表明，环磷酰胺对血清LDH和ACP活力具有负调节作用，而花色素苷饮料和蓝莓饮料可对LDH活力的下降产生遏制作用，具有正调节作用。见表7.3
表2.3.1花色素苷对正常和免疫抑制大鼠血清LDH、ACP活力的影响
注：与正常对照I组比较，*P＜0.05，**P＜0.01；与高脂模型IV组比较，△P＜0.05，△△P＜0.01；
2.4花色素苷饮料对正常和免疫抑制大鼠肝、脾、肾和胸腺中LDH活力影响
表2.4.1显示，与I组比较，II组、III组大鼠肝、脾、肾和胸腺组织细胞中的LDH活力均无显著差异(P＞0.05)；IV组、V组、VI组大鼠肝、脾、肾和胸腺组织细胞中LDH活力均显著低于I组(P＜0.01)；V组、VI组大鼠的肝、脾、肾和胸腺组织细胞中的LDH均高于IV组，其中肾和胸腺组织具有显著性差异(P＜0.01或P＜0.01)；结果表明，环磷酰胺可以使大鼠组织细胞中的LDH活力降低，而花色素苷饮料和蓝莓饮料可以对其产生阻遏作用。
表2.4.1花色素苷饮料对正常和免疫抑制大鼠肝、脾、肾和胸腺中LDH活力的影响
注：与正常对照I组比较，*P＜0.05，**P＜0.01；与高脂模型IV组比较，△P＜0.05，△△P＜0.01；
2.5花色素苷饮料对正常和免疫抑制大鼠肝、脾、肾和胸腺中ACP活力影响
II组、III组大鼠肝、脾、肾和胸腺组织细胞中ACP活力均高于I组，但未表现出显著性差异(P＞0.05)；IV组、V组、VI组大鼠肝、脾、肾和胸腺组织细胞中ACP活力均显著低于I组(P＜0.01)；V组和VI组大鼠肝、脾、肾和胸腺组织细胞中ACP活力均显著高于IV组(P＜0.05或P＜0.01)，结果表明，环磷酰胺对大鼠组织细胞中ACP活力具有负调节作用，花色素苷饮料和蓝莓饮料均对其具有正调节作用。结果如表7.5。
表2.5.1花色素苷饮料对正常和免疫抑制大鼠肝、脾、肾和胸腺中ACP活力的影响
注：与正常对照I组比较，*P＜0.05，**P＜0.01；与高脂模型IV组比较，△P＜0.05，△△P＜0.01；
2.6花色素苷饮料对正常和免疫抑制大鼠PMΦ中LDH和ACP活力的影响如表2.6.1所示，II组、III组大鼠PMΦLDH活力均显著高于I组(P＜0.01)；IV组PMΦLDH、ACP活力均显著低于I组(P＜0.01)；V组大鼠PMΦ的LDH、ACP活力与I组相比均无显著差异(P＞0.05)，且显著高于IV组(P＜0.01)；VI组大鼠PMΦLDH活力显著高于I组(P＜0.01)，ACP活力与I组无显著差异(P＞0.05)，且LDH、ACP活力均显著高于IV组(P＜0.01)。这一结果表明，环磷酰胺可降低大鼠PMΦ中LDH、ACP活力，而花色素苷饮料和蓝莓饮料不仅能提高正常大鼠PMΦ的LDH活力，而且能抵抗环磷酰胺所制的PMΦ中ACP和LDH活力的降低。
表2.6.1不同浓度花色素苷对PMΦ中LDH活力的影响
注：与正常对照I组比较，*P＜0.05，**P＜0.01；与高脂模型IV组比较，△P＜0.05，△△P＜0.01；
2.7花色素苷饮料对大鼠PMΦ吞噬功能的影响
大鼠PMΦ的吞噬功能用摄取中性红的吸光度(A)值来表示，与I组比较结果显示，II组、III组大鼠PMΦ吞噬功能均有增强，其中II组具有极显著性意义(P＜0.01)；III组未达到显著水平(P＞0.05)；IV组大鼠PMΦ的吞噬功能显著降低(P＜0.05)；V组、VI组大鼠均无显著差异(P＞0.05)，且均显著高于IV组(P＜0.01，P＜0.05)，这一结果表明，花色素苷饮料和蓝莓饮料不仅可以使正常大鼠PMΦ的吞噬功能增强，而且可以抵抗环磷酰胺导致的免疫抑制大鼠PMΦ的吞噬功能的降低。
Claims (3)
1.一种花色素苷新型功能饮料，其特征在于以花色素苷提取物为主要功能成分，按下列各组分配制所述花色素苷新型功能饮料，其配比如下：
2.一种制备权利要求1所述花色素苷新型功能饮料的方法，其特征在于：
(1)黑米皮浸提液制备：①准确称取黑米在精米机上过40目筛精碾1.5min，分别收集第一次的精米和第一次的米皮(称黑米皮I)；再将第一次的精米重新放回精米机中继续精碾1.5min，同时分别收集精米和第二次的米皮(称黑米皮II)。②取一定量的黑米皮，加入石油醚，料液比1∶5，60℃水浴，浸提60min.超声50KHz辅助，沥去石油醚部分；③再用90％的乙醇(高浓度的乙醇)，料液比1∶5，60℃水浴，浸提60min，超声50KHz辅助，沥去乙醇部分；④然后用蒸馏水，料液比1∶5，60℃水浴，浸提60min，超声50KHz辅助，沥去水部分；⑤最后加浸提液(含1.0％柠檬酸，60％乙醇)，料液比1∶5，60℃水浴，浸提60min，超声50KHz辅助，重复2次，合并提取液，真空抽滤去杂即得黑米花色素苷浸提液。
(2)将12g白砂糖用适量水溶解过滤，得糖浆备用。
(3)将黑米皮浸提液1mL(约含花色素苷40mg)加入上述步骤2糖浆中，加饮用水至100mL(水温不超过40C)。
(4)将0.3g柠檬酸和0.05g柠檬酸钠溶解，加入上述步骤3溶液中，充分混合。
(5)利用高温短时灭菌法对饮料进行灭菌。
(6)灌装、包装，成品。
3.根据权利要求1所述，花色素苷新型功能饮料具有增强机体抗氧化、促进免疫、调节血脂和降低胆固醇等有益功效。
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