CN102617810B - 用两端带羧基的直链亲水聚合物包被纳米磁芯制备微纳米磁性材料的方法及其应用 - Google Patents

Abstract

一种用两端带羧基的直链亲水聚合物包被磁流体制备微纳米磁性材料的方法及其应用；具体涉及将两端为羟基或氨基的聚乙二醇或寡聚甘氨酸链与马来酸酐、琥珀酸酐反应得两端有羧基但仅有一个或两个碳碳双键的单体；用化学共沉淀法制备纳米磁芯并用带双键的短链单体分散成磁流体；在水/二辛基琥珀酸酯磺酸/正庚烷或类似微乳体系，用有两个双键的短链单体加上仅一个双键的长链单体或类似混合物、交联剂、催化剂和引发剂，自由基共聚合包被磁流体，获得表面有大量羧基的亲水微纳米磁珠；常用蛋白包括但不限于药物靶蛋白或链亲和素或免疫分析用捕获多抗、小分子配体、核酸，都可直接固定化在此磁珠上用于基于磁力生物亲和分离或靶向运送。

Description

用两端带羧基的直链亲水聚合物包被纳米磁芯制备微纳米磁性材料的方法及其应用

技术领域

本发明属于生物医用材料领域，为自由基聚合制备高分子核壳型复合材料的技术，所得材料可用于生物亲和磁力分离、磁标记检测及磁力输送，具体如磁标记免疫层析、磁分离免疫检测、磁分离筛选混合物组合库、磁分离筛选混合物中相互作用蛋白、磁靶向给药等。 

发明的技术背景 

基于磁芯包被技术制备的微纳米超顺磁性颗粒表面连接可反应基团后可固定化生物大分子、配体或半抗原等物质，包括酶、核酸片段、抗体、抗原、半抗原等，用于痕量或微量物质的磁力分离富集实现超高灵敏度分析、磁力分离复合物筛选配体混合物、磁力pull-down筛选相互作用蛋白、磁标记免疫分析和磁共振增强显影等。用于生物领域的亚微米磁性颗粒要求表面亲水且非特异性结合低、含通过长链连接臂伸向外表面的足够多可反应基团用于固定化生物分子并有效发生生物亲和作用、悬浮稳定性好且超顺磁性强而易于磁分离、基本不含会被有机溶剂提取的杂质、耐酸碱浸蚀能力强，且不同应用可能还有特殊要求。 

制备满足上述生物医药应用要求的磁性微纳米颗粒即Magnetic submicron particles(以下缩写为MSP)，目前最常用的策略是先制备含Fe₄O₃的磁流体，然后用亲水物质包被以降低非特异性结合，最后再添加带有所需连接臂的可反应基团用于固定化生物分子。 

磁流体指吸附有分散剂的磁性微粒且在液体中高度分散而形成稳定的胶体体系。磁流体的制备方法有物理法和化学法，例如研磨法、微乳液法、超声波法、气相沉积法、水热合成法、溶胶凝胶法、溶剂蒸发法、热分解法及化学沉淀法等。其中，化学沉淀法制备条件温和而广泛应用。用三价铁和二价铁溶液在剧烈搅拌下滴加碱的过程中生成四氧化三铁，在一定分散剂作用下搅拌析出，并经陈化可得磁流体。通过优化碱滴加速度、机械搅拌速度、分散剂量和陈化时间，所得纳米或亚微米磁流体可具备超顺磁性和可控的沉降速度。 

MSP主要制备方法为磁流体物理吸附包埋法和单体共价聚合包被法。物理吸附包埋法是将磁流体分散在高分子溶液中，通过雾化、絮凝、沉积、蒸发、乳化等复合过程制得MSP；其MSP粒径分布宽且不易控制、壳层中混有很多杂质。单体共价聚合包被法是指在磁流体和可共价聚合单体存在下，加入引发剂、催化剂等通过聚合反应而成的核/壳式MSP。共价包被磁流体外壳为高分子聚合物并分成疏水性和亲水性两类，其中亲水聚合物主要是聚丙烯酰胺、聚乳酸、聚乙烯醇、聚乙二醇等合成聚合物，及葡聚糖、壳聚糖等天然聚合物。这些聚合物的单体通过共价聚合包被磁流体、聚合包被时诱发磁芯共沉淀、与磁芯配位等方式可制备核/壳型MSP(Horak，D.，et al.J.Sep.Sci.2007；30，1751-1772；Lu A H，et al，Angew Chem Int Ed2007；46：1222-1244；Dresco P.A.，et al.Langmuir 1999；15：1945-1951)。 

最常用且所得MSP化学组成稳定的是单体共价聚合包被磁流体的方法。据共价聚合包被磁流体所用单体的性质，制备MSP的方法又分成两类：(1)用疏水单体在水包油微乳体系自由基聚合包被磁流体，通过亲水材料进行表面修饰提高生物相容性，再经复杂过程生成带有连接臂的可反应基团以固定化生物分子；(2)用生物相容性亲水聚合物在油包水微乳体系包被磁流体，经表面修饰生成带所需连接臂的可反应基团以固定化生物分子。显然，此两类MSP制备工艺都繁杂，容易带来杂质，且伴随较高的成本和很长的制备时间。 

将用生物相容性好的亲水性单体共价聚合包被磁流体和添加带长链连接臂的可反应基团合二为一，通过一步聚合反应制备基本满足所有要求的MSP是更理想的制备方法(Lin，P.C.，et al.Anal Chem 2007；79：3401-3408；Khng H P，et al.Biotech Bioeng，1998；60：419-424.)。聚乙二醇(PEG)是理化性质稳定且亲水的非离子型聚合物，用其单甲醚的马来酸单酯为单体聚合包被磁流体可制备生物相容性好的磁性微球[Gupta A K，et al.IEEE Trans NanoBioSci 2004；3：66-73.]，但其表面没有可反应基团无法固定化生物分子；通常认为这种条件下来自马来酸的羧基被包埋在亲水外壳中不能暴露在表面。所以，需特殊的设计策略才能实现通过一步聚合反应制备基本满足所有要求的MSP，从而用于生物医药领域的磁标记、磁力分离与输送。 

理论上，一步法制备表面亲水、有带连接臂可反应基团的MSP可采用如下策略： 

(1)用短链聚乙二醇单甲醚不饱和酸酯为单体，一端为羟基长链聚乙二醇马来酸单酯作为带连接臂和可反应基团的单体，通过油包水反相微乳法一步自由基共聚反应包被磁流体，用有机溶剂等反复洗涤去除小分子杂质，活化连接臂末端羟基或转变成羧基、氨基等可在温和条件下固定化常见生物分子。但此法所得MSP尽管亲水性、非特异性结合、悬浮稳定性、顺磁性、粒径等满足要求，但表面可反应基团太少，不能固定化足够多的生物分子。 

(2)用不同长度PEG与马来酸酐反应获得以聚乙二醇为骨架、马来酸为碳碳双键和羧基 来源的两端都含有羧基和碳碳双键的亲水单体；同时以长链PEG与马来酸酐及琥珀酸酐分别反应获得两端含羧基但仅一端含有碳碳双键的长链亲水单体；两种单体恰当比例混合后，油包水反相微乳体系一步自由基共聚反应包被磁流体制备表面带大量羧基的亲水性MSP。 

亚微米乳液由表面活性剂、助表面活性剂及水组成各面同性的热力学体系，其大小可控在几十至几百纳米之间。在此特殊的微环境中，可进行多种化学沉淀反应或聚合包被磁流体制得包被颗粒，其大小决定于反应微环境的大小，故调节油水比例和表面活性剂的量可控制粒径。为保证有足够多的羧基伸向MSP表面用于固定化生物分子，需优选水包油乳液体系和长短链单体及其比例；同时，控制微水相的pH让足够比例的羧基电离增大相互之间的排斥，驱动部分羧基分布到MSP表面而使得其表面亲水且抗聚集；但此微水相pH不能过高，否则太多羧基电离后会降低单体的聚合反应速度而降低MSP收率，同时MSP的外壳抗外部酸碱浸蚀的能力下降而组成不稳定；为了降低表面可反应羧基周围的空间位阻以便于固定化生物分子后参与生物亲和作用，需优化生成连接臂单体的长度，其长度要比生成外壳单体足够长，伸向表面羧基的空间位阻才能足够小。获得满足基本要求的表面有丰富羧基的MSP后，此羧基可活化成活泼酯或进一步转化成氨基，以固定化带有氨基或羧基的常见生物分子。 

各种水溶性蛋白质、带有可反应基团的核酸、多糖、各类小分子配体或半抗原等，都可经恰当反应直接固定化在本发明技术所制备的MSP上，用于磁力分离分析或磁力输送。 

链亲和素或亲和素可以固定化在所得MSP上作为通用生物亲和分离材料，其它蛋白质也可直接固定化在此类MSP表面用于发生生物亲和作用。使用此类MSP时不必预先包被蛋白质提高亲水性再间接固定化目标蛋白质，即不依赖于生物素修饰后与MSP表面的链亲和素或亲和素结合间接固定化或分离，这可显著降低磁分离和磁标记的成本。 

用针对靶蛋白融合表达标签谷胱甘肽-S转硫酶(GST)、麦芽糖结合蛋白(MBP)或组氨酸标签的亲和标记试剂固定化在此类MSP上，还可位点选择性地共价固定化融合表达的靶蛋白，用于混合物组合库的筛选(Yang XL，et al，BMC Biotechnology，2011；11：44；Yang XL，et al.Microchim Acta，2012，176：243-249)。磁共振成像已广泛用于影像诊断[Qiao R R，et al.J MaterChem，2009，19(35)：6274-6293]。本发明所制备的MSP生物相容性好，在恰当大小的此类MSP上固定化特定识别成分，可实现靶向分子成像[Lee J H，et al.Nat Med，2007，13(1)：95-99]。 

具体而言，本发明所制备的MSP主要可用于但不限用于如下领域： 

(1)固定化通用性生物活性大分子用于分离对应大分子及其复合物，如固定化链亲和素或亲和素用于间接固定化或分离各类生物素修饰物质，固定化羊抗鼠IgG多克隆抗体用于鼠IgG参与的免疫分析或微量蛋白分离过程、磁力细胞分类和筛选过程等。 

(2)固定化通用性生物活性小分子成分，用于从溶液中分离可相互作用的大分子成分及其复合物，包括固定化针对GST的高亲和力配体用于GST-Pulldown技术、固定化MBP的高亲和力配体用于分离带有MBP标签的融合蛋白及其复合物。 

(3)固定化特定的药物靶蛋白用于定性和定量筛选混合物组合库。 

(4)固定化免疫分析技术所需各类捕获抗原或捕获抗体实现磁分离免疫分析，包括化学发光免疫分析技术；此类固定化方法尤其有利于低成本实现自动化免疫分析。 

(5)固定化各类核酸链，用于快速磁分离带有互补链的各种成分及其复合物。 

(6)固定化多糖，用于分离与其有相互作用的各种大分子成分或小分子成分。 

(7)固定化特定的小分子，从溶液中分离相互作用的大分子成分，包括筛选靶蛋白。 

(8)将MSP与特定免疫分析识别成分连接，用于磁标记免疫分析。 

(9)将特殊的识别疾病标志物的生物大分子或小分子固定化在MSP上，用于在存在对应可识别分子的部位富集MSP从而进行磁共振成像显影。 

(10)将特殊的可分裂释放的药物固定化在此亚微米磁珠表面，实现磁靶向运送给药。 

发明内容概述 

本发明的核心内容是用带至少一个碳碳双键且至少一个羧基的PEG或聚甘氨酸衍生物为单体在反相微乳体系自由基共聚包被磁流体，一步聚合生成亲水共价外壳且带连接臂的大量羧基；优化单体亲水链长度、单个碳碳双键单体与有多个碳碳双键单体比例、聚合时水相pH等，借助羧基之间的排斥促进部分羧基经长链连接臂伸展到MSP表面；将表面的羧基转变成活泼酯，直接与生物分子中的氨基反应，或与乙二胺等反应后转变成带有氨基的形式再与生物分子中的羧基反应，从而固定化生物分子用于磁分离和磁力运送。本发明主要内容包括： 

1.亲水聚合物单体制备：用聚乙二醇与过量马来酸酐反应制备两端含碳碳双键和羧基的亲水单体；或分别与马来酸酐和琥珀酸酐反应生成两端含羧基但仅一端含碳碳双键的亲水单体；或分别与马来酸酐和丙烯酸反应生成一端有羧基但两端有碳碳双键的亲水单体；或用聚乙二醇单甲醚与马来酸酐反应制备单端为碳碳双键和羧基的单体；或用寡聚甘氨酸链与丙烯酰氯或马来酸酐反应制备仅一端有碳碳双键的亲水单体；或用乙醇胺和丙烯酸反应连上碳碳双键再与丁二酸酐反应获得羧基，循环添加乙醇胺和丁二酸获得一端有碳碳双键而另一端有羧基的亲水单体；制备此类单体只需在二氯甲烷、氯仿、四氢呋喃即THF、二甲基甲酰胺或二甲亚砜等溶剂中，用相应酸酐或酰氯和PEG或聚甘氨酸在室温下或回流反应，减压除去溶剂，用乙醚沉淀并用乙醚洗涤单体，将此过程重复数次就获得可用的单体(图1)。 

2.化学共沉淀法或其它恰当方法制备磁流体：由氯化铁(FeCl₃·6H₂O)、氯化亚铁(FeCl₂·4H₂O)的一定比例混合液，在搅拌条件下滴加氨水(25％～28％)制备的纳米磁芯，用制备的聚合物单体进行分散，获得控制粒径、悬浮稳定性好的磁流体。 

3.反相微乳中一步自由基聚合包被磁流体获得表面亲水且含有带长链连接臂羧基的MSP：以含至少一个羧基和至少一个碳碳双键的亲水聚合物为单体和磁流体的水悬液，分散在正庚烷/AOT中组成微乳体系，添加交联剂、自由基引发剂和催化剂，在40度左右自由基聚合反应8小时左右，制备表面有大量带长链连接臂可反应羧基的表面亲水性MSP(图2)；优化水相pH、单体长度、不同单体含量比例、水相体积、交联剂用量等参数，可调节颗粒大小和表面的羧基含量；借助磁分离用甲醇/丙酮、水、THF多次洗涤至基本无小分子或单体杂质，可在磷酸缓冲液中或恰当有机溶剂保存备用。 

4.将所得MSP表面的羧基用N-羟基琥珀酰亚胺和二环己基碳二亚胺(DCC)转变成活泼酯在THF中保存备用、将活泼酯与过量乙二胺反应转变成氨基再储存在THF中备用。 

5.将此MSP的活泼酯形式，在中性到pH 9.0的硼酸盐、磷酸盐等无机盐缓冲液中，与需要固定化的蛋白质反应，磁分离MSP并用缓冲液洗涤就获得固定化各类功能蛋白的MSP；或者用该MSP的氨基形式、羧基形式，与蛋白质直接在无机缓冲液中用1-乙基-(3-二甲氨基丙基)-碳酰二亚胺(EDC)脱水将蛋白质固定化，用于各种分离分析或磁信号检测 

5.将此MSP的活泼酯形式或氨基形式，在有机溶剂或恰当缓冲液中，与需要固定化的恰当小分子反应，辅助以DCC或EDC脱水，可制备带有特殊功能化小分子的MSP。 

本发明制备MSP过程中，所用单体的长度、水相的pH、各种长度单体的比例、所用单体的总量、所用单体中含有两个碳碳双键单体的长度和含量，对所得MSP的粒径、饱和磁化率、可反应羧基含量、固定化生物分子的生物亲和作用能力都有显著影响。 

本发明所制备MSP经有机溶剂反复洗涤，可有效清除用常见有机溶剂可提取的小分子杂质，使得该MSP用于固定化靶蛋白筛选混合物组合库有明确优势；在此MSP表面固定化高亲和力的GST配体，如双-(N-衣他尼酰乙胺基)-亚胺通过中间的仲胺与该MSP表面的活泼酯相连后，可用于分离各类带有GST标签的融合蛋白及其复合物或分离GST本身，包括用于蛋白质相互作用网络的Pull-down技术；类似地将N-单生物素化乙二胺固定化在此MSP上，可分离各类带有链亲和素或亲和素的蛋白加合物或核酸加合物等。 

本发明所制备的MSP含通过柔性长链连接臂延伸到表面的大量羧基；单用优化长度的两端有碳碳双键和羧基的单体也可得到所需可反应羧基含量高、悬浮稳定性好、饱和磁化率高的MSP；这种方式制备满足绝大多数要求的MSP在成本和效率上优势最明显(表1)。 

说明书附图说明 

图1本发明可用代表性单体的合成路线示意图 

图2本发明所制备表面亲水带羧基磁珠的结构示意图 

图3 FTIR测定比较PEG及单体、磁流体及MSP-PEG-D8 

1：Magnetofluids1540；           2：MSP-PEG-D8； 

3：PEG-1540-双-马来酸单酯；      4：PEG-1540； 

图4a用PEG-1540制备磁流体和磁珠的悬浮稳定性 

图4b用PEG-400制备磁珠和磁流体的悬浮稳定性 

图5a用PEG-1540制备磁流体和相应磁珠的饱和磁化率 

图5b用PEG-400制备磁流体和相应磁珠的饱和磁化率 

图5c用PEG-1540制备磁流体和相应磁珠对磁分离器的响应

图5d用PEG-400制备磁流体和相应磁珠对磁分离器的响应 

图6a磁珠和磁流体的热失重分析 

1：Magnetofluids1540；        2：MSP-PEG-D4；        3：MSP-PEG-D8； 

图6b磁珠和磁流体的热失重分析 

4：Magnetofluids400；         5：MSP-PEG-A；         6：MSP-PEG-B； 

图7磁珠和磁流体的在pH 4.0的耐酸碱浸蚀性 

1：Magnetofluids1540；        2：MSP-PEG-D8；        3：MSP-PEG-D4； 

4：Magnetofluids400；         5：MSP-PEG-A；         6：MSP-PEG-B； 

7：用甲叉双丙烯酰胺、丙烯酰胺、丙烯酸钠聚合生成保护性外壳加上一端为丙烯酸酯而另一端为丁二酸单酯的PEG-800共聚合所制备磁珠 

图8用激光粒度仪测定Magnetofluids1540和对应磁珠的粒径分布 

a：Magnetofluids1540；    b：MSP-PEG-D8；        c：MSP-PEG-D4； 

d：Magnetofluids400；     e：MSP-PEG-A；         f：MSP-PEG-B； 

g：用甲叉双丙烯酰胺、丙烯酰胺、丙烯酸钠聚合生成保护性外壳加上一端为丙烯酸酯而另一端为丁二酸单酯的PEG-800共聚合所制备磁珠 

图9 PEG-1540分散的磁流体和对应磁珠的X-射线粉末衍射 

a：Magnetofluids1540；           b：MSP-PEG-D8 

图10磁珠表面的羧基用NaOH滴定时的电位变化曲线和等当量点等当量点为混悬液电位由正变负的位置。 

图11固定化生物素从混合物中分离CIAP-SAV的量效关系 

1：MSP-PEG-D8；    2：MSP-PEG-B；    3：MSP-PEG-D4； 

4：用甲叉双丙烯酰胺、丙烯酰胺、丙烯酸钠聚合生成保护性外壳加上一端为丙烯酸酯而另一端为丁二酸单酯的PEG-800共聚合所制备磁珠 

5：MSP-PEG-A； 

图12两种疏水物质对生物素化-MSP-PEG-D8的非特异性结合疏水物质的浓度单位为μmol/L，取对数化的浓度。 

图13跟踪用不同磁珠固定化GST的反应过程测定其活性Nake MSP-PEG-D4为无固定化GST的裸磁珠。 

图14在MSP-PEG-D4上被固定化SAV量对固定化反应体系中SAV总量的响应和固定化SAV后对N-生物素化-N’-(1-萘替)乙二胺为探针的结合容量 

1：固定化SAV的磁珠对探针结合容量；        2：被固定化的SAV量 

图15a透射电镜观察MSP-PEG-D4形貌，放大50000倍 

图15b透射电镜观察MSP-PEG-B形貌，放大50000倍 

具体实施方式

1.具体实施方式实例部分所用主要化学试剂来源、所用特殊器械和表征方法 

1.1主要试剂和材料：四水合氯化亚铁(FeCl₂·4H₂O)、六水合氯化铁(FeCl₃·6H₂O)、马来酸酐(顺丁烯二酸酐)、N，N′-甲叉双丙烯酰胺、各种长度聚乙二醇(PEG)都为国药集团的分析纯化学试剂，浓氨水(NH₃·H₂O，质量含量约28％)为重庆川东化工有限公司分析纯试剂，N，N’-二环己基碳二亚胺(DCC)、N-羟基琥珀酰亚胺(NHS)、过硫酸钾为上海晶纯实业有限公司分析纯试剂，PEG单甲醚350和4-硝基苯基磷酸二钠盐(PNPP)来自Sigma，对甲苯磺酸为天津光复精细化工研究所分析纯试剂，碱性磷酸酶标记链亲和素(CIAP-SAV)来自Promega，二辛基琥珀酸磺酸钠(AOT)、4-硝基苯甲酸甲酯、4-硝基-1-萘酚来自Alfa Aesar。大肠杆菌裂解液为常规培养BL21细胞压积后加10mmol/L pH 7.0的HEPES缓冲液，超声裂解后离心上清稀释到蛋白浓度为0.20g/L。如未另作说明，用pH 7.0的20mmol/L磷酸钠缓冲液表征磁流体和磁珠的性质。 

1.2磁分离器：在本说明书中所用磁分离器都是Promega System 1000磁架。 

1.3悬浮稳定性和对磁分离器的响应：将待测材料悬浮在中性磷酸钠中且稀释到在570nm透过率为10％，将2.2ml样品转移到4.0ml容量1cm光径的比色杯中，在新茂UV7504上测定570nm透过率变化。测定对磁分离器响应时，将上述比色杯置于单个磁分离架上固定，再置于光路测定透过率；用磁分离器2.0min内可将95％以上MSP和磁流体吸附到试管壁(图5a和b)。 

1.4羧基含量测定：测定羧基含量时将有机溶剂洗涤后在70度真空干燥的材料称重约15mg，转移到25ml的小烧瓶中，加15ml重蒸水悬浮摇匀，每次滴加20μl浓度为5.0mmol/L NaOH溶液，用PHSS 003型pH计测定pH；等当量点为电位由正变负所用NaOH溶液体积。 

1.5耐酸浸蚀性：将0.10ml压积样品悬浮于5.0ml乙酸缓冲液(0.2mol/L，pH4.0)，到指定时间磁分离3分钟，取上清50μl和50μl含量10％的盐酸羟胺混合在25℃恒温30分钟；加入250μl质量浓度10％醋酸钠和100μl质量含量0.15％ 1，10-邻菲罗琳反应15，测510nm吸收表示铁量。 

实施例1.聚合物单体制备实例1 

聚乙二醇-1540-双-不饱和酸单酯：将PEG-1540(平均分子量1540 Dalton)共50.0g加入250ml三颈烧瓶，水浴至摄氏55度融化，机械搅拌加入马来酸酐6.9g(按每个PEG有两个羟基计算，过量10％)，对甲苯磺酸1.7g；再升温到80℃熔融反应6h后；降温到摄氏55度，加四氢呋喃10ml，加100ml乙醚室温沉淀产物并用乙醚洗涤；将沉淀再用四氢呋喃溶解、乙醚沉淀和洗涤3次，得白色固体即聚乙二醇-1540-双-马来酸单酯作为候选单体，收率大于70％。PEG-1540原料和产物用FTIR分析确认生成不饱和酸酯，结果见图3。制备流程图见图1。 

实施例2.聚合物单体制备实例2 

聚乙二醇-单马来酸单酯-单琥珀酸单酯：将PEG-1540共20g加入250ml三颈烧瓶，55℃水浴融化，机械搅拌加马来酸酐1.4g，对甲苯磺酸0.3g；升温到70℃熔融反应3h；在上述产物混合物中直接加入琥珀酸酐，并补加对甲苯磺酸0.3g，再升温到80℃熔融反应3h；降到室温，加四氢呋喃10ml，再加100ml乙醚并用乙醚洗涤沉淀；将白色沉淀再用四氢呋喃溶解、乙醚沉淀和洗涤3次，得聚乙二醇1540-单顺丁烯二酸单酯-单琥珀酸单酯为候选单体(图1)。 

实施例3.聚合物单体制备实例3 

聚乙二醇单不饱和酸单酯：将PEG-350单甲醚共20g加入三颈瓶，水浴至55℃，机械搅拌下加马来酸酐1.4g，对甲苯磺酸0.3g；升温到70℃熔融反应3h；降到室温，加四氢呋喃10ml，再加100ml乙醚将产物在摄氏4度沉淀并用乙醚洗涤；将白色沉淀用四氢呋喃溶解、乙醚沉淀和洗涤3次，得白色固体为聚乙二醇350单甲醚马来酸单酯作为候选单体。制备流程图见图1。 

实施例4.聚合物单体制备实例4 

双-(聚乙二醇单丁二酸单酯)-丁烯二酸酯：将PEG-400共20g加入三颈瓶，水浴至55℃，机械搅拌下加丁二酸酐1.4g，对甲苯磺酸0.3g；再升温到70℃熔融反应3h后；降温到摄氏55度，加四氢呋喃10ml，再加100ml乙醚将产物在摄氏4度沉淀并用乙醚洗涤；将白色沉淀再用THF溶解、乙醚沉淀和洗涤3次，得白色固体为PEG-400-单丁二酸单酯；将顺丁烯二酸的两个羧基用二氯亚砜在70度回流制备成双酰氯；将此双酰氯用恒压漏斗滴加到3倍摩尔量PEG-400-单丁二酸单酯的氯仿溶液中，回流3小时；加压去溶剂和氯化氢；用乙醚沉淀和洗涤，得到碳碳双键在中间的双-(聚乙二醇单丁二酸单酯)-丁烯二酸酯作为候选单体。制备流程图见图1。 

实施例5.纳米四氧化三铁的磁流体制备实例1 

取FeCl₃·6H₂O共1.5g和FeCl₂·4H₂O共1.0g依次溶于超声脱气的100ml水中，移入三颈瓶，在N₂保护下2000rpm机械搅拌，向溶液中缓慢滴加浓氨水10ml(至pH＞9.0)；当生成棕褐色Fe₃O₄颗粒时立即加入2.0g PEG-400-双-马来酸单酯，持续机械搅拌反应20min；将混合物在70℃熟化30min；磁分离所得磁流体，用水反复洗涤备用；以磁分离所得磁流体的压积体积表示其量(此方法也用于MSP的初步计量；以下的应用实施例相同)；所得压积磁流体约5.0ml。此磁流体缩写Magnetofluids400，在pH 7.0磷酸盐的悬浮稳定性见图4、饱和磁化率和磁分离器响应见图5、热失重分析见图6、耐酸碱浸蚀性见图7、粒径分布见图8，其余见表1。 

实施例6.纳米四氧化三铁的磁流体制备实例2 

取FeCl₃·6H₂O共1.5g和FeCl₂·4H₂O共1.0g依次溶于超声脱气的100ml水中，移入三颈瓶，N₂保护下2000rpm机械搅拌，缓慢滴加浓氨水10ml(至pH＞9.0)；当棕褐色Fe₃O₄颗粒生成时立即加入2.0g PEG-1540-双-马来酸单酯，持续机械搅拌反应20min；将混合物在70℃熟化30min；用磁分离器分离磁流体，用水反复洗涤备用；所得压积磁流体约5ml。此磁流体缩写为Magnetofluids1540；其FTIR见图3、悬浮稳定性见图4、饱和磁化率和磁分离器响应见图5、热失重分析见图6、耐酸碱浸蚀性见图7、粒径分布见图8、X-射线粉末衍射图9，其余见表1。 

实施例7.聚乙二醇不饱和酸酯自由基共价聚合包被磁流体制备MSP实例1 

将PEG-1540-双-马来酸单酯分散的磁流体Magnetofluids1540共0.70ml用2.5ml水悬浮，与用5.0ml水溶解的PEG-1540-双-顺丁烯二酸单酯共4.0g混匀，再加入甲叉双丙烯酰胺饱和水溶液1.0ml，混匀作为水相共约9ml；将12g AOT溶于500ml正庚烷，超声除氧并通氮气，机械搅拌混匀为油相；将前述水相与油相混合，室温下恒速2000rpm持续机械搅拌20分钟后加入1.0ml过硫酸铵饱和水溶液，继续搅拌5分钟；将5μl催化剂N，N’-四甲基乙二胺稀释到1.0ml后加入上述体系，37℃恒速2000rpm搅拌反应8h。停止搅拌，自然冷却并使得所得亚微米磁珠沉降；用磁分离器压积和分离，甲醇∶丙酮(1∶9)每次80ml洗涤3次，四氢呋喃洗涤每次80ml洗涤3次，再用每次100ml双蒸水洗涤3次后悬浮于水中备用，用磁分离器压积后产物总体积约1.0ml。所得MSP平均粒径0.78μm，缩写为MSP-PEG-D8，其密度大于0.13g/ml(压积体积)；其FTIR分析见图3、悬浮稳定性见图4、饱和磁化率和磁分离器响应见图5、热失重分析见图6、耐酸碱浸蚀性见图7、粒径分布见图8、X-射线粉末衍射见图9、可用NaOH滴定羧基见图10、羧基活化为活泼酯连接N-单生物素化乙二胺后分离碱性磷酸酶标记链亲和素(CIAP-SAV)见图11、疏水物质非特异结合见图12，其余见表1。 

实施例8.聚乙二醇不饱和酸酯自由基共价聚合包被磁流体制备MSP实例2 

将PEG-1540-双-马来酸单酯分散的磁流体Magnetofluidsl540共0.70ml用2.5ml水悬浮，与用5.0ml水溶解的PEG 1540-双-顺丁烯二酸单酯共2.0g混匀(除此之外的其它配方及后续操作全部同实施例7)，再加入甲叉双丙烯酰胺饱和水溶液1.0ml，振荡混匀作为水相共约9ml；将12g AOT溶于500ml正庚烷，超声除氧并通氮气，机械搅拌，此体系为油相；将前述水相与油相混合，室温下恒速2000rpm持续机械搅拌20分钟后加入1.0ml过硫酸铵饱和水溶液，继续搅拌5分钟；将5μl催化剂N，N’-四甲基乙二胺稀释到1.0ml后加入上述体系， 37℃恒速2000rpm搅拌8h。自然冷却使所得亚微米磁珠沉降；用磁分离器压积和分离，甲醇∶丙酮(1∶9)每次80ml洗3次，四氢呋喃洗涤每次80ml洗3次，再用100ml双蒸水洗3次后悬浮于水中，用磁分离器压积后总体积约1.0ml。所得MSP平均粒径0.38μm，缩写为MSP-PEG-D4；其悬浮稳定性见图4、饱和磁化率和磁分离器响应见图5、热失重分析见图6、耐酸碱浸蚀性见图7、粒径分布见图8、NaOH滴定羧基见图10、羧基活化为活泼酯连接N-单生物素化乙二胺后分离CIAP-SAV图11、透射电镜观察的外貌见图15a，其余见表1。 

实施例9.聚乙二醇不饱和酸酯共价聚合包被磁流体制备MSP实例3 

将PEG-400-双-马来酸单酯分散的磁流体Magnetofluids400共0.70ml用2.5ml水悬浮，与用5.0ml水溶解的PEG-1540-单马来酸单酯-单琥珀酸单酯1.0g、PEG-400-双马来酸单酯0.35g混匀，再加入甲叉双丙烯酰胺饱和水溶液1.0ml，振荡混匀作为水相共约9ml；将12gAOT溶于500ml正庚烷，超声除氧并通氮气，机械搅拌，此体系为油相；将前述水相与油相混合，室温下恒速2000rpm持续机械搅拌20分钟后加入1.0ml过硫酸铵饱和水溶液，继续搅拌5分钟；将5μl催化剂N，N’-四甲基乙二胺稀释到1.0ml水中加入，37℃恒速2000rpm搅拌反应8h。停止搅拌，自然冷却使磁珠沉降；用磁分离器压积和分离，甲醇∶丙酮(1∶9)每次80ml洗涤3次，四氢呋喃洗涤每次80ml洗涤3次，再用每次100ml双蒸水洗涤3次后悬浮于水中备用，用磁分离器压积后总体积约1.0ml。所得MSP平均粒径0.32μm，缩写为MSP-PEG-B；其悬浮稳定性见图4、饱和磁化率和磁分离器响应见图5、热失重分析见图6、耐酸碱浸蚀性见图7、粒径分布见图8、NaOH滴定羧基见图10、羧基活化为活泼酯连接N-单生物素化乙二胺后分离CIAP-SAV图11、透射电镜观察的外貌见图15b，其余见表1。 

实施例10.聚乙二醇不饱和酸酯共价聚合包被磁流体制备MSP实例4 

将PEG-400-双-马来酸单酯分散的磁流体Magnetofluids400共0.70ml用2.5ml水悬浮，与用5.0ml水溶解的PEG-1540-双-马来酸单酯2.0g、PEG-400双马来酸单酯0.35g、氢氧化钠47mg混匀，再加入甲叉双丙烯酰胺饱和水溶液1.0ml，振荡混匀作为水相共约9ml；将12g AOT溶于500ml正庚烷，超声除氧并通氮气，机械搅拌，此体系为油相；将前述水相与油相混合，室温下恒速2000rpm持续机械搅拌20分钟，加入1.0ml过硫酸铵饱和水溶液，继续搅拌5分钟；将5μl催化剂N，N’-四甲基乙二胺稀释到1.0ml后加入上述体系，37℃恒速2000rpm搅拌反应8h。停止搅拌，自然冷却并使得所得亚微米磁珠沉降；用磁分离器压积和分离，甲醇∶丙酮(1∶9)每次80ml洗涤3次，四氢呋喃洗涤每次80ml共洗涤3次，再用 每次100ml双蒸水洗涤3次后悬浮于水中备用，用磁分离器压积后总体积约0.40ml。所得MSP平均粒径0.33μm，缩写为MSP-PEG-A；其悬浮稳定性见图4、饱和磁化率和磁分离器响应见图5、热失重分析见图6、耐酸碱浸蚀性见图7、粒径分布见图8、NaOH滴定羧基见图10、羧基活化为活泼酯连接N-单生物素化乙二胺后分离CIAP-SAV图11，其余见表1。 

实施例11.磁性微球表面羧基活化和生物素化修饰 

参照文献用N-羟基琥珀酰亚胺和二环己基碳二亚胺在二甲基甲酰胺中将生物素活化(Biosens Bioelectron 2009；25：112-117)，同10倍摩尔量的乙二胺室温振荡反应4小时；加乙醚沉淀并反复洗涤得到N-单生物素化乙二胺；将所得表面为羧基的MSP压积体积共0.3ml于干燥四氢呋喃中，加入N-羟基琥珀酰亚胺共1.0g，二环己基碳二亚胺DCC共1.8，30度振荡反应(250r/min)反应24h得表面为活泼酯的磁珠；磁力回收羧基活化的MSP，用四氢呋喃充分洗涤后悬浮于干燥二甲基甲酰胺中，再加入二甲基甲酰胺溶解的N-单生物素化乙二胺，室温振荡反应4h，磁力回收表面生物素化的磁珠，用四氢呋喃洗涤3次，悬浮在pH 7.0的10mmol/L磷酸钠缓冲液中，通过测定碱性磷酸酶标记的链亲和素，即CIAP-SAV，的结合容量来反映固定化在带有连接臂的羧基上的生物素周围的空间位阻，特征见表1。 

实施例12.生物素化磁性微球同碱性磷酸酶标记链亲和素的特异结合 

将大肠杆菌BL21(DE3)细胞株超声裂解，10000rpm离心15min取上清液并用pH 7.0的10mmol/L HEPES缓冲液稀释到0.2g/L蛋白；在1.5ml的EP管中，加此稀释的大肠杆菌细胞裂解液20μl，加入CIAP-SAV共2ng和pH 7.0的10mmol/LHEPES缓冲液共0.50ml混合均匀作为样品；加不同量压积体积生物素化磁珠(0.10ml压积体积用pH 7.0的10mmol/LHEPES缓冲液稀释到1.0ml)，25度摇床250rpm反应30分钟，磁力去上清液后磁珠再悬浮于上述HEPES缓冲液中为含所分离的结合CIAP-SAV样品；加入2.0mol/L二乙醇胺pH 9.8缓冲液溶解的对硝基苯基磷酸酯(1.0mg/ml)共0.10ml，温和涡旋混匀；25℃以250r/min振荡反应30min，磁分离3.0min去磁珠取上清液150μL，立即加入50μL浓度为1.0M的NaOH溶液终止反应；Botek ELX800酶标仪测定405nm吸收。根据CIAP-SAV标准曲线确定可分离出来的CIAP-SAV量，多数磁珠按干重计算结合容量＞1.0mg/g(干重)，详见表1。 

实施例13.生物素化磁性微球同疏水性物质非特异结合 

取压积的0.10ml生物素化磁珠用磷酸盐缓冲液稀释到1.0ml；再取200μL磁珠悬液于 0.5mL的EP管中，磁力去上清液；分别加入含(4-硝基-1-萘基)-苯甲酸酯(0.25～64μM，LogP～4.0)、4-硝基苯甲酸甲酯(0.25～64μM，LogP～1.6)的磷酸盐缓冲液100μL，温和混匀后在25℃以250r/min震荡反应30min；磁力回收磁珠并尽可能除去上清液(上清液残留量约10μL)；磁珠用60μL四氢呋喃在25℃以250r/min震荡30min溶解得到结合的疏水物质。在Agilent-1100 HPLC系统，用伊利特ODS2 C18柱(4.6×250mm，5μm)测定结合的疏水物质；流动相都为甲醇和水混合物，流速都是0.8ml/min；分析(4-硝基-1-萘基)苯甲酸酯流动相含90％甲醇，检测波长335nm；分析4-硝基苯甲酸甲酯流动相含70％甲醇，检测波长260nm；进样量都是20μL且柱温25℃。考虑去上清液时残留10μL和在不同测试浓度下结合率响应，可认为LogP小于4.0物质在10μmol/L以下基本没有非特异形结合(图12)，但是LogP＞5.9的物质非特异性结合在2μmol/L以上就非常明显。 

实施例14.固定化融合表达标签蛋白GST 

14.1 GST的制备：将pGST-MOLUC质粒转入Escherichia coli BL 21(DE3)感受态细胞，挑选阳性克隆菌株在LB/Amp培养基中37℃培养至平台期，以1∶1000的稀释比例接种于LB/Amp培养基在37℃扩大培养至菌液OD₆₀₀接近0.6，加入IPTG终浓度为0.1mmol/L，16℃低温诱导表达18小时，4℃下10,000r/min离心10min收集菌体。菌体用预冷到4℃的pH 7.3磷酸盐缓冲液(PBS，含140mmol/L NaCl，2.7mmol/L KCl，10mmol/L Na₂HPO₄，1.8mmol/LKH₂PO₄)洗涤，每100ml新鲜菌液所得湿菌用15ml细胞裂解液(PBS，1mmol/L EDTA，1mmol/L PMSF，1％β-巯基乙醇)重悬，用超声破碎细胞30min，4℃下1,2000r/min离心20min收集裂解上清液。裂解上清液加入已用上述PBS平衡的Glutathione Sepharose 4B(GEHelthcare)琼脂糖层析柱，控制流速约为0.5ml/min，待上清液全部流过柱床后，用相同缓冲液洗去未与琼脂糖介质结合的杂蛋白，直至在280nm吸收的基线平稳后，加入含10mmol/L还原型谷胱甘肽的50mmol/L Tris-HCL缓冲液(pH为8.0)，将结合在琼脂糖介质上的GST洗脱。收集过Glutathione Sepharose 4B柱后蛋白含量高的样品用PEG 6000浓缩至体积为2ml左右，4℃用1L透析液(10mmol/L pH 7.0磷酸钠，30％甘油，1mmol/L EDTA，1mmol/LPMSF，1％β-巯基乙醇，1mmol/L对氨基苯甲脒，0.1mmol/L DTT)透析18小时，每6小时更换一次透析液。十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(Sodium dodecyl sulfate-PAGE，SDS-PAGE)检测发现所得GST基本无杂蛋白，该GST亚基分子量接近26kDa；透析后GST样品中蛋白浓度约8.0mg/ml，按如下方法测定的比活性大于2.6U/mg蛋白质。 

14.2 GST活性测定：反应体系为0.10mol/L磷酸钠缓冲液(pH 6.5，含0.50mmol/L二乙三 氨基五乙酸)1.20mL，2，4-二硝基氯苯(CDNB)和新鲜配制的还原型谷胱甘肽(GSH)溶液终浓度同为1.0mmol/L，加入5μL经恰当稀释的GST样品启动反应，在Mapda 1600 PC上延迟25s后每10s间隔记录340nm吸收变化，共记录5min。按照产物在340nm的差摩尔消光系数为10000mole^-1·L·cm^-1估算生成产物的速度，每分钟生成1微摩尔产物的酶量为1单位(U)。 

14.3 GST在MSP表面的固定化：取MSP-PDE-D4、MSP-PEG-D8和MSP-PEG-B的羧基活化产物各0.10ml，用冰冷的10mmol/L且pH 8.0的硼酸-硼砂缓冲液快速洗涤三次，立即重新悬浮在10mmol/L且pH 8.0的硼酸-硼砂缓冲液共2.0ml中并分成两等份转移到EP管中；在活化的MSP中，各加入10μl透析后的GST样品(含纯化后GST蛋白80μg)，在室温下振荡反应40min后磁分离分出上清液和MSP；上清液中的GST活性如上所述测定，固定化GST活性如下所述测定。设置相同条件下无磁珠的对照体系。 

14.4固定化GST活性测定：在1.50ml EP管中加入测定活性所用0.10mol/L磷酸钠缓冲液和底物溶液共1.0ml(浓度和缓冲液与连续跟踪GST反应时完全相同)；在25度恒温振荡下反应；每隔20分钟将反应体系用磁分离器分离固定化的GST和产物溶液2.5分钟，立即取上清液0.70ml测定340nm吸收，并尽快将测定后液体转移回到原来的反应体系(整个过程在3.3分钟内完成)，连续检测60分钟，得到三种MSP固定化GST反应过程曲线如图13。 

14.5结果：(1)在相同条件下无MSP的GST在40分钟内基本无热失活；分离出固定化GST的磁珠后，上清液剩余的GST活性约占所用总量的65％。(2)MSP-PEG-D4固定化GST的容量＞0.4mg/ml(压积)，相当于2.6mg/g(干重)；MSP-PEG-D8固定化GST的容量约0.35mg/ml(压积)，相当于2.0mg/g(干重)；MSP-PEG-B固定化GST的容量约0.53mg/ml(压积)，相当于3.1mg/g(干重)。(3)固定化GST的MSP悬浮于含0.02％叠氮钠的10mmol/L磷酸钠缓冲液中(pH6.5)，在摄氏4度保存90小时后活性保留率均值为(70±10)％。(4)GST可通过与MSP上活化酯反应而被固定化，用短链两端都有碳碳双键和羧基的单体加上长链两端都有羧基但仅一端有碳碳双键的单体自由基共聚包被磁流体所得MSP的结合容量更理想。 

实施例15.固定化链亲和素 

15.1链亲和素固定化：取MSP-PEG-D4的活泼酯共0.20ml，用冰冷的10mmol/L且pH 8.0的硼酸-硼砂缓冲液快速洗涤三次，立即重新悬浮在10mmol/L且pH 8.0的硼酸-硼砂缓冲液共2.0ml中并分成两等份转移到EP管中；各加入80～320μg链亲和素(SAV，Promega)，在室温下振荡反应40min后磁分离分出上清液和MSP；测定上清液中的SAV参照文献方法，用N-生物素化-N’-(1-萘基)-乙二胺(BNEDA)作为探针，在280nm激发下测定430nm发射(文献 见Biosens Bioelectron 2009；25：112-117)；所用荧光分光光度计为Agilent Cary Eclipse；如未说明，所用激发狭缝和发射狭缝都为10nm；被固定化SAV蛋白量对固定化反应体系中SAV总量的关系如图14；用如下所述方法测定固定化SAV的活性。 

15.2固定化链亲和素的结合活性测定：采用磁分离固定化SAV结合BNEDA后的剩余量确定固定化SAV结合小分子的容量。先在10mmol/L磷酸钠缓冲液(pH 7.0)中，测定BNEDA在325nm激发下在442nm发射信号强度对BNEDA量的响应曲线，结果显示可测范围在0.5nmol/L到40nmol/L以上。然后在10mmol/L磷酸钠缓冲液(pH 7.0)中加入终浓度为240nmol/L的BNEDA，并加入设定量的稀释后固定化SAV的磁珠，加缓冲液共2.0ml；室温振荡反应5.0分钟后，磁分离结合的BNEDA，取上清液用10mmol/L磷酸钠缓冲液(pH 7.0)稀释6倍，测定325nm激发下442nm发射。从标准曲线上确定上清液中的SAV量。所得被固定化SAV结合BNEDA量同固定化反应体系中所用SAV总量的关系如图14。 

15.3结果：(1)固定化在MSP上的SAV和上清液中SAV之和占到所加入SAV总量的90％～103％。(2)MSP-PEG-D4的活泼酯固定化SAV容量约6.5mg/g(干重)。(3)固定化SAV按压积体积计算，对BNEDA结合容量约70nmole/ml(压积体积)，相当于400nmole/g。 

实施例16.用丙烯酸钠、丙烯酰胺和长链单体共价聚合包被磁流体制备MSP实例5 

将PEG-400-双-马来酸单酯分散的磁流体Magnetofluids400共1.0ml用1.5ml水悬浮；再取7.0ml质量浓度为1％的甲叉双丙烯酰胺水溶液加1.0g丙烯酰胺，18mg丙烯酸钠，0.56g一端丙烯酸酯另一端为丁二酸单酯的聚乙二醇800，配制成溶液，与磁流体混匀作为水相共约9.5ml；将12g AOT溶于500ml正庚烷，超声除氧并通氮气，机械搅拌，此体系为油相；将前述水相与油相混合，室温下恒速2000rpm持续机械搅拌20分钟后加入1.0ml饱和过硫酸铵饱和水溶液，继续搅拌5分钟；将3μl催化剂N，N’-四甲基乙二胺稀释到0.50ml水中加入，37℃恒速2000rpm搅拌反应4h。然后停止搅拌自然冷却使亚微米磁珠沉降并转移到塑料杯中；用磁分离器压积和分离，甲醇∶丙酮(1∶9)每次80ml洗涤3次，四氢呋喃洗涤每次80ml洗涤3次，再用每次100ml双蒸水洗涤3次后悬浮于水中备用，用磁分离器压积后总体积约1.0ml。所得MSP平均粒径0.32μm(图8)，其在10.0mmol/L pH磷酸钠缓冲液中的悬浮稳定性与Magnetofluids400相当但低于MSP-PEG-D4；羧基活化为活泼酯连接N-单生物素化乙二胺后分离CIAP-SAV的容量约为1.4mg/g(干重)，与MSP-PEG-D4相当(表1)。 

实施例17.用中间有多碳碳双键的聚酰胺和长链单体共价聚合包被磁流体制备MSP实例6 

17.1中间有多碳碳双键的聚酰胺单体制备 

17.1.1双-(马来酸单酰)-乙二胺：在50ml丙酮中溶解49g马来酸酐，50度水浴下滴加15.2ml乙二胺(液体)；析出浅黄色沉淀用丙酮洗涤，挥干丙酮；该产物在水中溶解度约1％。 

17.1.2双-(马来酸单酰)-乙二胺活化：取前述所得浅黄色固体1.3g加热到溶于共10ml二甲基甲酰胺中，加入1.15g N-羟基琥珀酰亚胺固体，滴加2.1g二环己基碳二亚胺的二甲基甲酰胺溶液共2ml，室温反应12小时；过滤去沉淀；用200ml乙醚在4度下长时间沉淀可得未干燥的浅黄色粉末约0.8g； 

17.1.3中间有多个碳碳双键的聚酰胺单体：取前述步骤所得浅黄色粉末0.72g加热溶于5ml二甲基甲酰胺中，加牛磺酸固体0.60g，室温悬浮反应12小时，直接用60ml乙醚沉淀，用乙醚洗涤产物，得到未干燥的浅黄色粉末约0.35g； 

17.2磁珠制备：将PEG-400-双-马来酸单酯分散的磁流体Magnetofluids400共0.2ml用0.50ml水悬浮；将上述中间有多个碳碳双键的聚酰胺单体0.12g悬于2.5ml水中加NaHCO₃到pH约为5.5使其溶解，再加入甲叉双丙烯酰胺固体在25度达到饱和，加入0.44g一端为丙烯酸酯而另一端为丁二酸单酯的聚乙二醇800固体配成溶液，再与磁流体混匀共约3.0ml作为水相；将4g AOT溶于170ml正庚烷，超声除氧并通氮气，机械搅拌混匀为油相；将前述水相与油相混合，室温下2000rpm机械搅拌20分钟，加0.25ml饱和过硫酸铵水溶液，搅拌5分钟；将2μl催化剂N，N’-四甲基乙二胺稀释到0.25ml水中加入，37℃恒速2000rpm搅拌反应6小时。停止搅拌自然冷却使磁珠沉降；用磁分离器分离，甲醇∶丙酮(1∶9)每次80ml洗涤3次，四氢呋喃洗涤每次80ml洗涤3次，再用每次100ml双蒸水洗涤3次后悬浮于水中备用，用磁分离器压积后总体积约0.30ml。所得MSP平均粒径0.34μm，其在10.0mmol/LpH磷酸钠缓冲液中的悬浮稳定性与MSP-PEG-D4相当；羧基活化为活泼酯连接N-单生物素化乙二胺后分离CIAP-SAV的容量约为1.2mg/g(干重)，略低于MSP-PEG-B(表1)。 

表1参照实施例7～10所制备磁流体和表面亲水磁珠的主要性质 

样品1：Magnetofluids400； 样品2：Magnetofluids1540； 样品3：磁流体用聚乙二醇400的双马来酸单酯分散且仅用该单体聚合包被所得MSP；样品4：磁流体用聚乙二醇800的双马来酸单酯分散且仅用该单体聚合包被所得MSP；样品5：磁流体用聚乙二醇4000的双马来酸单酯分散且仅用该单体聚合包被所得MSP；样品6：磁流体用聚乙二醇6000的双马来酸单酯分散且仅用该单体聚合包被所得MSP；样品7：MSP-PEG-D4；样品8：MSP-PEG-D8；样品9：MSP-PEG-A；样品10：MSP-PEG-B；样品11：实施例16中用丙烯酸钠、丙烯酰胺和甲叉双丙烯酰胺加一端为丙烯酸酯而另一端为丁二酸单酯的聚乙二醇800作为长链单体，自由基聚合包被Magnetofluids400所得磁珠；样品12：实施例17中用双-(马来酸单酰)-乙二胺与两分子牛磺酸所得在中间有两个双键者为短链单体，加一端为丙烯酸酯而另一端为丁二酸单酯的聚乙二醇800为长链单体，自由基聚合包被Magnetofluids400共反应6小时所得磁珠。 

Claims (5)

1.一种用两端带羧基的直链亲水聚合物包被纳米磁芯制备微纳米磁性材料的方法，此微纳米磁性材料制备的特征性过程如下：

(一)单体及其制备特征包括：

(1)以平均分子量为60到10000道尔顿的聚乙二醇，与马来酸酐反应制备两端都有羧基且含碳碳双键的聚合物；或一端与马来酸酐而另一端与琥珀酸酐分别反应生成两端含羧基但仅一端含共轭碳碳双键的直链双羧酸聚合物；此类两端带羧基的直链亲水聚合物即以下所指单体；

(2)在二氯甲烷、四氢呋喃、二甲基甲酰胺、二氧六环中反应制备这些单体，除去大部分溶剂后用乙醚或其它醚类沉淀单体，再用醚洗涤后就可直接用；或用聚乙二醇与马来酸酐及琥珀酸酐分别熔融反应制备单体；

(二)用化学共沉淀法制备Fe₃O₄纳米磁芯，特征性过程包括：

(1)将二价和三价铁盐水溶液混合，惰性气体保护和机械搅拌，用浓氨水制备Fe₃O₄磁芯；所用三价铁和二价铁的摩尔比例对应从2.5∶1到1∶1；

(2)再用步骤(一)所得的单体，或其两种的混合物作为分散剂，分散步骤(二)中第(1)所得磁芯，获得粒径在10-500nm间且悬浮稳定性好的纳米磁芯即磁流体；

(三)用油包水微乳体系分散磁流体和所选单体的混合物，自由基聚合包被磁流体制备表面带大量羧基的亲水微纳米磁性材料，此过程有如下特征：

(1)选步骤(一)所得两端有羧基且至少有一个碳碳双键的一种单体，或两种或多种此类单体混合物，用于自由基聚合包被磁流体；

(2)将上述包被用单体和磁流体在水相混合得到混合物，以二辛基琥珀酸磺酸钠即AOT为表面活性剂，并机械搅拌将所得混合物分散到AOT/正庚烷中制成反相微乳体系；

(3)加甲叉双丙烯酰胺为交联剂，用过硫酸铵或过硫酸钾为引发剂，用N，N，N’，N’-四甲基乙二胺为催化剂，在20到60摄氏度和惰性气体及机械搅拌下聚合包被磁流体；来自长直链单体的长链在包被后的产物中转变成连接臂伸展到磁性微球表面而基本没有空间位阻，其末端的羧基用于与所需生物分子连接而固定化这些功能分子；

(4)所得带柔性长链连接臂和羧基官能团的表面亲水微纳米磁性材料，用四氢呋喃且以下缩写为THF、甲醇/丙酮、缓冲液反复洗涤至无可检测的小分子物质或单体；

(5)将所得表面亲水微纳米磁性材料用中性磷酸缓冲液或蒸馏水或THF保存备用。

2.如权利要求1所述一种用两端带羧基的直链亲水聚合物包被纳米磁芯制备微纳米磁性材料的方法，其所制备的微纳米磁性材料有与其应用领域和应用方式相关的如下特征：

(一)此微纳米磁性材料表面有大量羧基而亲水性很强；在用有机溶剂洗涤且在摄氏70度烘干24小时后，单位质量磁珠干重所含可滴定羧基最大达到0.43mmole/g干重；

(二)所得微纳米磁性材料对脂水分配系数即logP小于4.0且不带正电荷的有机小分子在浓度低于10μmol/L时非特异性结合可忽略，不带正电荷的蛋白质非特异性吸附也可忽略；

(三)无外加磁场时在pH6～8的中性缓冲液中或水中，所得微纳米磁性材料在室温下的悬浮稳定性很好；在常规应用所需量或浓度下在30分钟内即使不振荡也基本不生成沉淀；

(四)用水、THF和二甲基甲酰胺溶剂将所制备的微纳米磁性材料反复洗涤后再使用，常用有机溶剂或缓冲液从该微纳米磁性材料中可再提取出来的小分子杂质可忽略；

(五)此微纳米磁性材料表面羧基可用只有一个碳碳双键但两端都有羧基的长直链单体与其它短链单体共聚生成；这类羧基用长链单体的柔性链为臂固定化所需功能的生物分子：蛋白或核酸或多糖或生物素配体；被固定化的目标分子参与生物亲和作用时空间位阻很小；

(六)此微纳米磁性材料表面为共价聚合包裹的惰性保护外壳而使其组成成分稳定；用pH4.0到pH9.0缓冲液浸蚀1小时，其饱和磁化率基本不变且仍很容易用磁力分离；

(七)此微纳米磁性材料中Fe₃O₄含量达80％；烘干后饱和磁化率可达46emu/g；

(八)调节包被时含有两个碳碳双键单体的用量、单体混合物的组成、水相体积和表面活性剂AOT的量可调节其粒径；其粒径在均值上下60％范围内波动；

(九)此微纳米磁性材料在THF或二氯甲烷的惰性有机溶剂中，用二环己基碳二亚胺脱水，用N-羟基琥珀酰亚胺可将羧基转变成活泼酯；此表面为大量活泼酯的微纳米磁性材料可进一步与过量乙二胺反应将原来的羧基转变成氨基；

(十)此微纳米磁性材料的活泼酯形式与带氨基目标小分子物质反应，或用其羧酸形式直接在脱水剂作用下与带氨基的目标小分子物质反应，使目标小分子物质被固定化在磁珠表面；其带有氨基的形式可与带羧酸活泼酯形式的目标小分子物质反应、或与带羧基的目标小分子物质在脱水剂作用下反应将目标小分子物质固定化；固定化小分子物质可用于与来自溶液的大分子物质发生高选择性的生物亲和作用，从而选择性分离和鉴定或测量相互作用成分；

(十一)此微纳米磁性材料表面的羧基转变成活泼酯，可在中性到pH8.0的磷酸盐或硼酸盐或其它无机盐缓冲液中与带氨基的蛋白质、核酸衍生物、多糖、肽核酸这些大分子物质反应而将它们固定化在表面，或用纳米磁珠表面的羧基在脱水剂作用下直接与这些带有氨基的物质反应而将其固定化；这类固定化有特殊大分子的微纳米磁性材料可用于选择性磁分离相互作用成分；这种微纳米磁性材料的非特异性结合很低而不需要但不排斥对磁珠表面先包被链亲和素或清蛋白降低其疏水性；将链亲和素或亲和素固定化在此表面亲水微纳米磁性材料上用于借助生物素修饰间接固定化或分离活性分子；所固定化大分子为药物靶蛋白、特定序列的核酸或肽核酸、免疫分析所需通用性捕获成分或特异性免疫反应成分。

3.如权利要求1所述一种用两端带羧基的直链亲水聚合物包被纳米磁芯制备微纳米磁性材料的方法，其所得微纳米磁性材料的特性可控制且调控规律如下：

(一)用长度相差很大但两端都有羧基和碳碳双键的单体自由基聚合包被纳米磁芯所得微纳米磁性材料悬浮稳定性都很好；用两端都有羧基和碳碳双键的一种单体自由基聚合包被纳米磁芯时，所用单体越短则所得微纳米磁性材料平均粒径小、聚合物外壳耐浸蚀性强、可滴定羧基含量高、饱和磁化率高，但表面羧基位阻增加而妨碍所固定化的生物分子的活性；用含两个碳碳双键的单体聚合包被磁流体时磁珠之间易交联而使磁珠粒径分布范围宽；

(二)用两端都有碳碳双键和都有羧基的一种单体，所用表面活性剂AOT用量固定时其单体用量越少、所用水相体积越小则所得微纳米磁性材料平均粒径越小，单体用量和水相体积固定时表面活性剂AOT用量越大则所得微纳米磁性材料平均粒径越小；

(三)此微纳米磁性材料用两端都含碳碳双键且都含羧基的短链亲水单体聚合形成保护性外壳；用仅一端含碳碳双键但两端都含羧基的长链亲水单体共聚获得带直链长臂的羧基用于固定化目标分子；此共聚方案中两端都有碳碳双键的短链单体摩尔比例大于50％；仅一端含碳碳双键的长链单体比短链多12个原子以上时提供的柔性长链连接臂有利于降低表面羧基周围的空间位阻。

4.如权利要求1所述一种用两端带羧基的直链亲水聚合物包被纳米磁芯制备微纳米磁性材料的方法，其所得微纳米磁性材料有如下应用模式和应用特征：

(一)链亲和素或亲和素直接固定化在此亲水微纳米磁性材料表面，通过对特定成分生物素修饰以实现对该生物素修饰成分间接固定化或对混合物中生物素修饰成分高选择性分离；

(二)可溶性表达的人磷酸二酯酶同工酶和谷胱甘肽S-转硫酶，直接固定化在此亲水微纳米磁性材料表面，用于从溶液中分离可与靶蛋白结合的小分子配体，并用于后续对这些小分子配体的定性和定量分析；

(三)羊抗鼠IgG多克隆抗体直接固定化在此亲水微纳米磁性材料表面，用于分离鼠IgG参与形成的免疫复合物，用于鼠IgG结合微量蛋白的分离纯化或竞争性免疫分析；这类固定化多抗的微纳米磁性材料属于针对鼠源单抗的通用性亲和分离材料；针对不同抗体的其它多抗也可固定化在此表面亲水微纳米磁性材料上，用于免疫分析的通用性分离过程；

(四)用于化学发光免疫分析或时间分辨荧光免疫分析或酶标免疫分析的捕获抗原或抗体或用于竞争结合的检测单抗，直接固定化在此亲水微纳米磁性材料表面用于免疫分析，不需但不排斥借助于生物素修饰后用固定化亲和素或链亲和素的磁珠进行间接固定化或分离；

(五)有脂肪族氨基的核酸链或肽核酸链，直接固定化在此微纳米磁性材料表面，用于分离混合物中的互补核酸链，不需但不排斥借助于生物素-亲和素或链亲和素间接固定化或分离；

(六)在THF或二氯甲烷或二甲基甲酰胺中，表面为活泼酯的微纳米磁性材料将含有脂肪族氨基的有机化合物固定化：固定化双-(N-依他尼酰胺乙基)亚胺后与谷胱甘肽-S-转硫酶作用、固定化N-单生物素化乙二胺后与链亲和素或亲和素作用；固定化这类基团的表面亲水微纳米磁性材料可作为针对相应融合表达蛋白标签或相应加合物的通用分离材料；

(七)所得表面亲水微纳米磁性材料用碳酸氢钠弱碱中和为中性后，对实验用哺乳动物缓慢静脉输注时没有血管刺激性，不诱发急性炎症反应。

5.如权利要求1所述一种用两端带羧基的直链亲水聚合物包被纳米磁芯制备微纳米磁性材料的方法，此表面亲水微纳米磁性材料制备过程还有如下特征：

(一)所述表面带有羧基的亲水微纳米磁性材料制备方法在于用含碳碳双键的一种或多种两端带羧酸的直链亲水聚合物为单体，在油包水微乳体系仅通过一步自由基共聚反应，在包被磁流体生成共价聚合保护性外壳的时候，同时提供伸展到表面的可用于固定化生物分子的羧基；所用单体中羧基之间的排斥促进更多羧基伸展到磁珠表面用于固定化所需生物分子；用多种单体混合物时，表面羧基主要来自长链单体，短链单体主要形成共价聚合的保护性外壳；

(二)分散纳米磁芯和包被磁流体所用亲水单体可相同但不要求相同；

(三)化学共沉淀制备Fe₃O₄磁芯时，铁盐可为盐酸盐、硫酸盐或乙酸盐，所用浓氨水质量浓度为20％～28％；分散纳米磁芯时分散剂可用有两个羧基且至少一个碳碳双键的任一单体，且用量为Fe₃O₄磁芯理论产量的50％到200％；

(四)反相微乳中自由基聚合包被磁流体时，包被用单体为一种或两种或多种单体的混合物；聚合时直接用水为溶剂溶解单体，或将pH调节到弱碱性或碱性；中性条件下在42摄氏度聚合10小时，但弱碱性或碱性条件下聚合需较长时间；

(五)聚合包被磁流体时所需油包水反相微乳用正庚烷/AOT、环己烷/石油醚/AOT、环己烷/二氯甲烷/AOT、环己烷/二氯甲烷/磷脂酸钠为连续相。