CN102464716B - 一种用于猪、人和蚊子中乙型脑炎病毒抗原检测的elisa试剂盒及应用 - Google Patents
一种用于猪、人和蚊子中乙型脑炎病毒抗原检测的elisa试剂盒及应用 Download PDFInfo
- Publication number
- CN102464716B CN102464716B CN 201010549519 CN201010549519A CN102464716B CN 102464716 B CN102464716 B CN 102464716B CN 201010549519 CN201010549519 CN 201010549519 CN 201010549519 A CN201010549519 A CN 201010549519A CN 102464716 B CN102464716 B CN 102464716B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- encephalitis
- antibody
- virus
- double
- kit
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Fee Related
Links
Images
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明属于动物病毒学与免疫学技术领域,具体涉及一种用于猪、人和蚊子中乙型脑炎病毒抗原检测的双抗体夹心ELISA试剂盒。该试剂盒的核心试剂包括乙型脑炎病毒E蛋白单克隆抗体作为一抗,兔源多克隆抗体作为二抗。本发明公开了乙型脑炎病毒E蛋白单克隆抗体和兔源多克隆抗体的制备及纯化方法。还公开了乙型脑炎抗原的双抗体夹心ELISA检测方法。分泌该单克隆抗体的杂交瘤细胞株保藏在中国典型培养物保藏中心,其保藏编号为CCTCC NO:C2010114。
Description
技术领域
本发明涉及动物病毒学与免疫学技术领域。具体涉及一种利用乙型脑炎病毒鼠源单克隆抗体和兔源多克隆抗体建立的检测乙型脑炎抗原的双抗体夹心ELISA试剂盒及应用,该试剂盒可用于快速检测猪、人、蚊子等多种临床样品中乙型脑炎病毒抗原。本发明提供了乙型脑炎病毒E蛋白单克隆抗体和兔源多克隆抗体的制备及纯化,以及用该单克隆抗体和多克隆抗体建立的可以检测乙型脑炎抗原的双抗体夹心ELISA检测方法。
背景技术
乙型脑炎(Japanese encephalitis,JE,下文称之为JE)是由乙型脑炎病毒(Japanese encephalitisvirus,JEV,下文称之为JEV)引起的一种严重的人畜共患的虫媒病毒性疾病,近年来其在东南亚的流行分布范围正在不断扩大。该病毒主要经过蚊子进行传播,猪是该病毒的主要自然宿主和传染源,感染后可引起母猪流产、死胎、木乃伊胎及公猪发生睾丸炎,对公众健康及畜牧业的发展都造成了严重的影响。
JEV属于黄病毒科(Flaviridae),黄病毒属,病毒基因组为单股正链RNA,长约11kb,病毒RNA只含有一个长的开放阅读框架,该框架可分为二个区段:近5’末端1/4区段编码病毒的三个结构蛋白基因,主要包括C,M(PrM)以及E蛋白基因;近3’末端3/4区段编码7个非结构蛋白基因,主要包括NS1、NS2A、NS2B、NS3、NS4A、NS4B和NS5。其中,E蛋白是乙型脑炎病毒的主要结构蛋白,是病毒表面最重要的成分,它与病毒粒子的吸附、穿入、致病和诱导宿主的免疫应答等密切相关,同时E蛋白是体外中和作用的主要靶位点和特异性抗体的作用位点,可激发中和抗体和保护性免疫,针对E蛋白的特异性单克隆抗体具有很高的中和活性,对乙型脑炎的感染有很强的保护作用。
我国是乙型脑炎病的高发国家,历来重视对乙型脑炎的检测及防治。迄今,国内用于乙型脑炎检测的方法可以分为抗原检测和抗体检测两大类。对抗原的检测主要包括病毒的分离鉴定、分子生物学方法如RT-PCR等,该类方法检测周期长、操作繁琐、对实验条件要求严格,不适用于临床大规模检测。针对抗体的诊断方法主要指血清学检测方法,如空斑减数中和试验(Plaque reduction neutralization test)、补体结合试验(Complement Fixation Test,CFT)、血凝抑制试验(Hemagglutination inhibition test,HIT)等,但这些传统的抗体检测方法也仅能用于疫苗免疫效果的评价,不能用于对病毒感染情况的监测。因而建立一种快速、简便、特异、灵敏的病原检测方法,并能够同时应用于临床患者及感染动物的诊断,就成为了乙型脑炎防治技术研究中的一项重要课题。
目前,应用酶联免疫吸附试验(ELISA)检测乙型脑炎抗体的方法已有不少报道。例如有的是采用抗体捕捉ELISA检测血清中的IgM用于乙型脑炎的早期诊断(张明杰等,快速IgM抗体捕捉ELISA的建立及其在乙型脑炎早期诊断中的初步应用.病毒学杂志.1989,3:251-154;);有的是应用间接ELISA测定乙型脑炎病人血清中的特异性IgG(顾方舟等,酶联免疫吸附法ELISA测定乙型脑炎病人血清中特异性IgG.北京医学.1981,1-4);也有应用乙型脑炎病毒的囊膜E蛋白或非结构蛋白建立的检测抗体的间接ELISA方法(张宁等,猪乙型脑炎病毒囊膜E蛋白间接ELISA诊断方法的建立与初步应用.中国畜牧兽医,2010,37(7):170-175;吴鹏等,乙型脑炎病毒非结构蛋白NS1的原核表达及重组蛋白间接ELISA方法的初步建立.畜牧与兽医.2010,42(3):5-8)。但针对乙型脑炎抗原的检测方法则少有报道,而同时能用于猪、人和蚊子样品中乙型脑炎病毒检测的ELISA方法则未见报道。
虽然针对乙型脑炎抗原及抗体的ELISA检测方法国内已开展了以上一些相关研究,但无论是在人医还是兽医领域,至今仍没有一项完善的既能用于人的乙型脑炎抗原检测,又可以用于猪、蚊子等多种动物样品中乙型脑炎抗原检测的成熟方法。因此,建立一套快速、灵敏并面向基层的乙型脑炎抗原检测方法也就成为了防控乙型脑炎课题中的重要内容。
已证实,利用乙型脑炎病毒囊膜E蛋白制备的单克隆抗体具有很高的中和活性,它可以与乙型脑炎病毒E蛋白抗原表位发生特异性的结合。而利用病毒多个抗原表位制备的多克隆抗体则具有结合力更强、反应效果更好的特性,所以利用这两种抗体构建的检测乙型脑炎抗原的双抗体夹心ELISA试剂盒,并可用于多种临床样品的检测,这将为乙型脑炎的诊断和防治提供有效的工具。
发明内容
本发明的目的在于克服现有技术的缺陷,研制一种利用乙型脑炎病毒鼠源单克隆抗体和兔源多克隆抗体建立的检测乙型脑炎抗原的双抗体夹心ELISA试剂盒及应用,该试剂盒可用于快速检测猪、人、蚊子等多种临床样品中乙型脑炎病毒抗原。本发明提供了乙型脑炎病毒E蛋白单克隆抗体和兔源多克隆抗体的制备及纯化,以及用该单克隆抗体和多克隆抗体建立的可以检测乙型脑炎抗原的双抗体夹心ELISA检测方法。
本发明的的第一个目的是制备乙型脑炎E蛋白的单克隆抗体,为乙型脑炎双抗体夹心ELISA抗原检测方法提供了包被一抗。
本发明的第二个目的是提供一种针对乙型脑炎病毒多抗原表位的多克隆抗体的制备方法,为乙型脑炎双抗体夹心ELISA抗原检测方法提供了第二抗体。
本发明的第三个目的是利用该E蛋白单克隆抗体和兔源多克隆抗体制备一种适用于猪、人、蚊子中乙型脑炎病毒检测的双抗体夹心ELISA诊断试剂盒及其在临床诊断中的应用,该试剂盒既可以检测疑似感染动物,同时也可用于感染病人的诊断。
本发明通过以下技术方案实现:
1、乙型脑炎病毒E蛋白的单克隆抗体的制备:
1)以乙型脑炎病毒感染仓鼠肾细胞(BHK21)后提取的总RNA为模板,通过RT-PCR方法扩增乙型脑炎病毒外膜蛋白E基因(基因登录号:AF315119.1),并将其重组到表达载体pGEX-KG(pKG)上,其核苷酸序列如序列表SEQ ID NO:1所示。将构建得到的原核表达载体pKG-E转化至大肠杆菌BL21感受态细胞,用氨苄青霉素抗性筛选单个重组菌,该菌株经诱导可以特异性地表达乙型脑炎病毒的E蛋白;
2)将步骤1)所述的表达的E蛋白进行纯化后作为免疫原免疫Balb/c小鼠,并采血,用间接ELISA方法检测动物产生的抗体滴度,选择抗体滴度高的Balb/c小鼠进行加强免疫,并从该小鼠体内制备得到免疫脾细胞;
3)制备骨髓瘤细胞(SP2/0)悬浮液并注射Balb/c小鼠,待小鼠长出实体瘤后制备骨髓瘤细胞,将骨髓瘤细胞与步骤2)所述的免疫脾细胞进行融合,制备出杂交瘤细胞4D1C,检测筛选出效价较高的杂交瘤细胞株并进行克隆扩大培养,该杂交瘤细胞株JEV/4D1C于2010年11月11日送交湖北省武汉市武汉大学内的中国典型培养物保藏中心(CCTCC)保藏,其保藏号为CCTCC NO:C2010114;
4)将步骤3)所述的建株后的杂交瘤细胞株4D1C扩大培养,收集上清液后腹腔注射小鼠,收集小鼠腹水,纯化后即得到乙型脑炎病毒E蛋白的单克隆抗体。
2、兔源乙型脑炎病毒多克隆抗体的制备:
将乳化好的乙型脑炎弱毒疫苗按推荐剂量免疫兔,分别免疫四次,收集第四次免疫后的血清经纯化后即可获得抗乙型脑炎病毒的多克隆抗体,并测定该纯化的多克隆抗体的蛋白浓度及其反应效价。
3、本发明的试剂盒的组装:
本发明制备的试剂盒由下列部分构成:保藏号为CCTCC NO:C2010114的单克隆抗体包被的酶标板和乙型脑炎兔源多克隆抗体构成的双夹心抗体,辣根过氧化酶标记的羊抗兔酶标抗体,标准阳性对照乙型脑炎E蛋白,标准阴性对照大肠杆菌BL-21菌体蛋白,洗涤液,样品稀释液,底物液A、底物液B和终止液,其中所述的洗涤液,样品稀释液,底物液A、底物液B和终止液的组分及配比如下:
洗涤液:NaCl 80.0g,KH2PO4 2.7g,Na2HPO4·12H2O 14.2g,KCl 2.0g,Tween20 5mL,,加双蒸水至1000mL;
样品稀释液:NaCl 0.8g,KH2PO4 0.27g,Na2HPO4·12H2O 1.42g,KCl 0.2g,BSA 10g,加双蒸水至1000mL;
底物液A:3,3’,5’,5-四甲基联苯二胺200mg,无水乙醇100mL,加双蒸水至1000mL;;
底物液B:Na2HPO4 14.6g,柠檬酸9.3g,0.75%浓度的过氧化氢尿素6.4mL,加双蒸水至1000mL,调节pH至5.0~5.4;
终止液:2mol/L硫酸溶液。
4、乙型脑炎病毒抗原检测的双抗体夹心ELISA方法:
该方法包括制备保藏号为CCTCC NO:C2010114的单克隆抗体包被的酶标板,乙型脑炎兔源多克隆抗体,辣根过氧化酶标记的羊抗兔酶标抗体,标准阳性对照乙型脑炎E蛋白,标准阴性对照BL-21菌体蛋白,洗涤液,样品稀释液,底物液A和底物液B和终止液,其步骤包括:
(1)以乙型脑炎E蛋白作为免疫原;
(2)用步骤(1)的免疫原制备得到保藏号为CCTCC NO:C2010114的单克隆抗体;
(3)用步骤(2)所述的单克隆抗体包被酶标板作为一抗;
(4)将待检测样品用样品稀释液按体积比为1∶10稀释得到待检测物;
(5)用乙型脑炎弱毒疫苗免疫兔获得兔源多克隆抗体作为二抗;
(6)对步骤(4)所述的待检测物进行检测,于酶标仪上读取630纳米处的吸光光度值;其中洗涤液,样品稀释液,底物液A和底物液B和终止液的组分及配比如下:
洗涤液:NaCl 80.0g,KH2PO4 2.7g,Na2HPO4·12H2O 14.2g,KCl 2.0g,Tween20 5mL,,加双蒸水至1000mL;
样品稀释液:NaCl 0.8g,KH2PO4 0.27g,Na2HPO4·12H2O 1.42g,KCl 0.2g,BSA 10g,加双蒸水至1000mL;
底物液A:3,3’,5’,5-四甲基联苯二胺200mg,无水乙醇100mL,加双蒸水至1000mL;;
底物液B:Na2HPO4 14.6g,柠檬酸9.3g,0.75%浓度的过氧化氢尿素6.4mL,加双蒸水至1000mL,调节pH至5.0~5.4;
终止液:2mol/L硫酸溶液。
更详细的技术方案如实施例所述。
本发明的有益效果是:
1、本发明的有益效果之一是构建了检测乙型脑炎抗原的双抗体夹心ELISA试剂盒,为乙型脑炎病毒的抗原检测奠定了一定的基础。目前,ELISA主要是用于乙型脑炎的早期诊断或抗体水平的监测,但由于乙型脑炎病毒感染后,病毒血症时期短,脑脊液中病毒含量少,病毒分离阳性率极低,因此临床上检测该病原一直是个难题,本发明采用双抗体夹心ELISA方法,探索影响因素,摸索实验条件,建立了有效检测乙型脑炎抗原的诊断方法。
2、本发明的有益效果之二是为临床上乙型脑炎病毒感染情况的快速检测提供了有效的工具。ELISA方法实验操作简便易行,检测快速敏感,同时不需要精密的仪器设备,是一种面向基层并适用于大批量检测的有效方法。本发明根据实际应用需要所构建的双抗体夹心ELISA乙型脑炎抗原诊断试剂盒就解决了临床 上乙型脑炎病毒难于检测的问题。
3、本发明的有益效果之三是建立的双抗体夹心ELISA方法不仅可以用于猪的样品检测,也可以同时用于蚊子和人的样品中乙型脑炎病毒的检测,为本发明提供了更加广阔的应用空间。
附图说明
序列表SEQ ID NO:1是本发明克隆的乙型脑炎病毒E基因的核苷酸序列。
图1:本发明的ELISA反应原理图。图中A为E蛋白单克隆抗体;B为待检测抗原或样品;C为兔源多克隆抗体;D为辣根过氧化物酶标记的羊抗兔酶标抗体;E为TMB底物。
图2:本发明的技术流程图。
图3:是本发明的表达乙型脑炎E蛋白重组质粒的构建图。
图4:本发明在同一块酶标板上进行的标准阳性对照及标准阴性对照显色后的效果照片。
图5:是将乙型脑炎病毒接种仓鼠肾细胞(BHK-21)后,用制备的兔源多克隆抗体进行间接免疫荧光的效果。图中:图5A是乙型脑炎病毒接毒组;图5B是正常对照组。
具体实施方式
实施例1乙型脑炎病毒E蛋白单克隆抗体及兔抗乙型脑炎多克隆抗体的制备
1)乙型脑炎病毒E基因的克隆及原核表达载体的构建
按徐高原报道的方法(徐高原等,乙型脑炎病毒SA14-14-2株E基因的克隆、测序与表达,中国人兽共患病杂志.2004,20(1):22-25),用包含乙型脑炎病毒E基因(基因登录号:AF315119.1)的重组质粒pKG-E(质粒构建图见图3)转化大肠杆菌BL21感受态细胞,涂布浓度为60ug/mL LB/氨苄青霉素(Amp)平皿,挑选多个单菌落放入LB液体培养基中于37℃下培养12小时后用异丙基硫代-β-D-半乳糖苷(IPTG)诱导表达出乙型脑炎病毒E蛋白,该蛋白的核苷酸序列如SEQ ID:1所示。
2)免疫脾细胞及骨髓瘤细胞的制备
将步骤1)表达的E蛋白纯化后免疫4-6周龄的雌性Balb/c小鼠(购自湖北省疾病预防与控制中心实验动物中心)各5只。每次免疫2周后采血用间接ELISA检测动物产生的抗体滴度;至少间隔一个月后,选择抗体滴度高的Balb/c小鼠加强免疫后眼眶放血处死,分离制备免疫脾细胞;同时用骨髓瘤细胞(SP2/0)悬浮液注射Balb/c小鼠,待9-10天实体瘤生长后,处死小鼠并分离制备出活化的骨髓瘤细胞。
3)免疫脾细胞与骨髓瘤细胞的融合
将步骤2)所述的免疫脾细胞与骨髓瘤细胞进行细胞融合,制备得到杂交瘤细胞株4D1C,将获得的该杂交瘤细胞株于2010年11月11日送交武汉大学内的中国典型培养物保藏中心(CCTCC)保藏,其保藏编号为CCTCC NO:C2010114。用间接ELISA方法检测杂交瘤细胞上清:用E蛋白包被酶标板作为阳性对照,以破碎的BL-21菌体蛋白包被同一块酶标板作为阴性对照,用洗涤液洗涤三次,加封闭液封闭,于37℃温育1h,洗涤三次,然后加入杂交瘤细胞的培养上清,于37℃温育1h,洗涤液洗三次后,加入体积比为1∶5000稀释的辣根过氧化物酶标记的羊抗鼠IgG,37℃反应1h,用洗涤液洗涤三次后,分别加入底物液A和B显色10min,加终止液终止反应之后,测定OD630值。选取与抗原包备板反应阳性而阴性对照板反应阴性且细胞生长旺盛形态好的细胞生长孔,进行克隆扩大培养杂交瘤细胞。
上述包被液,封闭液,洗涤液,底物液A、B的组分及配比见附录。
4)单克隆抗体的生产、纯化及效价的测定
取8-10周龄的Balb/c小鼠,腹腔注射灭菌的液体石蜡0.5ml/只,于7-10天后腹腔注射扩大培养的 本发明制备的杂交瘤细胞4D1C,接种量为105-106/只,7-10天后抽取小鼠腹水,该腹水内即含有大量的乙型脑炎病毒E蛋白单克隆抗体。使用IgG抗体纯化试剂盒(NAbTM Protein A/G Spin Kit,购自Thermo公司)纯化获得的E蛋白单克隆抗体(简称E单抗),使用蛋白质浓度测定试剂盒(BCATM Protein Assay Kit,购自PIERCE公司)测得该抗体浓度为0.78mg/ml。
具体步骤是,用本发明制备的乙型脑炎E蛋白包被酶标板,于4℃过夜,次日取出包被的酶标板洗涤后于37℃内封闭1小时,洗涤液洗涤5次后于孔内加入倍比稀释的乙型脑炎E蛋白单克隆抗体,每个稀释度做两孔重复,37℃内孵育30min,于孔内加入稀释的辣根过氧化物酶标记的羊抗鼠IgG(Goat Anti-MouseIgG,购自博士德公司),37℃反应30min,加洗涤液洗涤后分别再加入底物液A和B避光显色10min,终止反应后于酶标仪上读取630纳米处的吸光光度值(即OD630值,下同),结果表明,本发明制备的单克隆抗体经10万倍(体积比)稀释后的OD630值仍可达到1,说明本发明制备的单克隆抗体的效价可达到1∶10万以上。测定结果见表1
表1本发明的单克隆抗体的效价的测定
2.兔抗乙型脑炎多克隆抗体的制备
按弗氏不完全佐剂∶乙型脑炎疫苗为1∶1的剂量乳化乙型脑炎弱毒疫苗(购自卫生部武汉生物制品研究所),将乳化好的疫苗分颈背部皮下多点免疫3月龄的雄性日本大耳白兔(购自湖北省疾病防控中心实验动物中心),免疫剂量为1ml/只,于第15天进行二免,第30天进行三免,第38天进行四免,并于第45天颈静脉采血,将采集的血液4℃过夜。将过夜保存的血液在4000rpm/min下离心10min,收集上层血清,该血清内即包含乙型脑炎病毒的多克隆抗体,使用IgG抗体纯化试剂盒(按照试剂盒的说明书操作)纯化获得的兔源乙型脑炎病毒多克隆抗体,经测定该多克隆抗体的蛋白浓度为10mg/ml。
使用间接ELISA测定该多抗效价,用本发明制备的乙型脑炎E蛋白包被酶标板,4℃过夜,次日取出酶标板洗涤后于37℃内封闭1小时,洗涤液洗涤5次后于孔内加入倍比稀释的上述步骤制备的兔源乙型脑炎病毒多克隆抗体,每个稀释度做两孔重复,37℃内孵育30min,洗涤后于孔内加入稀释的辣根过氧化物酶标记的羊抗兔IgG(Goat Anti-Rabbit IgG,购自博士德公司,按照试剂盒的说明书操作),37℃反应30min,洗涤后分别加入底物液A和B避光显色10min,终止反应后读取630纳米处的吸光光度值(OD630),经测定,该多抗经2万倍稀释后的OD630值仍可达到1,说明制备的兔源乙型脑炎病毒多克隆抗体效价可以达到1∶2万以上。见表2所示。
表2本发明制备的多克隆抗体效价的测定
实施例2乙型脑炎病毒双抗体夹心ELISA抗原检测方法的建立
1、乙型脑炎双抗体夹心ELISA抗原检测试剂盒最佳反应条件的确定
以本发明制备的单克隆抗体包被酶标板作为第一抗体,兔源多克隆抗体作为第二抗体,HRP标记羊抗兔抗体与兔源多抗结合,并催化TMB底物显色。通过方阵滴定确定单抗的最佳包被浓度为5ug/ml,多抗的最佳稀释度为1∶10000,酶标抗体的最佳稀释倍数为1∶30000。
2.乙型脑炎双抗体夹心ELISA抗原检测试剂盒阴阳界线的确定
检测经RT-PCR确定为乙型脑炎病毒感染阴性的样品,包括:46份猪脑样品、20份人脑脊液样品、38 份蚊子匀浆液样品,同时设标准阳性对照及阴性对照,经多次重复检测OD630值(OD630),最终确定本方法的阴阳性界线判定标准如下:
实验成立条件:
阳性对照平均OD值(PC):大于0.5;
阴性对照平均OD值(NC):小于0.2;
CPC计算方法:CPC=PC-NC;
SP计算方法:SP=(样品OD值-NC)/CPC。
阴阳性界线判定标准:
阳性 可疑 阴性
SP≥0.4 0.2≤SP<0.4 SP<0.2
如果样品的检测结果落在可疑区间,则需要进行第二次检测。若第二次检测后结果仍为可疑,则要考虑重新收集样品再进行检测。结果见表3。
表3104份乙型脑炎病毒阴性样品夹心ELISA检测结果
3.乙型脑炎双抗体夹心ELISA抗原检测试剂盒特异性试验
用建立的双抗体夹心ELISA方法对已知的猪伪狂犬病病毒(PRV)、猪圆环病病毒(PCV)、猪繁殖与呼吸道综合征病毒(PRRSV,俗称猪蓝耳病病毒)、猪细小病病毒(PPV)、猪瘟病毒(CSFV)、猪流感病毒(SFV)及西尼罗河病毒(WNV)EDIII(西尼罗河病毒E蛋白结构域III的原核表达产物)蛋白进行特异性交叉试验,同时设标准阴阳性对照。结果显示除与乙型脑炎病毒同属黄病毒科的西尼罗河病毒的EDIII蛋白略有交叉反应外,其它病毒检测结果均为阴性,说明本发明的方法的特异性良好。本发明试剂盒的特异性试验结果见表4。
表4本发明的双抗体夹心ELISA乙型脑炎抗原检测试剂盒特异性试验结果
4.乙型脑炎双抗体夹心ELISA抗原检测试剂盒敏感性试验
将已测定滴度为106PFU/ml的纯化乙型脑炎病毒连续梯度稀释,用所建立的ELISA检测方法进行多次重复测定,结果显示出当病毒稀释滴度为104PFU/ml时,OD值明显处于阳性范围内,若再降低一个滴度即将病毒稀释到103PFU/ml时,OD值就有可能落在可疑检测区间内,以此说明本方法的敏感度可以达到104PFU/ml。结果见表5
表5本发明的双抗体夹心ELISA乙型脑炎抗原检测试剂盒的敏感性试验结果
5乙型脑炎双抗体夹心ELISA抗原检测试剂盒重复性试验
选取经RT-PCR检测为阳性、弱阳性、阴性的共5份猪脑脊液样品,用两批包被的酶标板各重复检测3次,在同一块酶标板上进行批内重复,不同的酶标板之间进行批间重复,并计算标准偏差及变异系数,从表6中可以看出5份检测样品的标准偏差和变异系数都较小,说明本发明的试剂盒具有良好的重复性。如表6
表6利用两批包被ELISA酶标板对5份样品的检测结果
6乙型脑炎双抗体夹心ELISA抗原检测试剂盒保存期试验和稳定性试验
本试剂盒的保存期和稳定性试验结果见表7和表8所示。由表7可知,用制备的E蛋白单克隆抗体做一抗包被酶标板在4℃、-20℃保存六个月后,其敏感性均未发生变化。同时,37℃破坏性试验表明本发明制备的E单抗包被酶标板于37℃存放4d后,其OD630值也未见明显降低,表面本发明所建立的双抗体夹心ELISA诊断试剂盒稳定性较好,其保存时间也可以达到一般ELISA诊断试剂盒所规定的保质期要求。结果见表7。
表7本发明制备的双抗体夹心ELISA乙型脑炎抗原检测试剂盒保存期试验结果
表8本发明制备的双抗体夹心ELISA乙型脑炎抗原检测试剂盒37℃稳定性试验结果
实施例3乙型脑炎双抗体夹心ELISA抗原检测试剂盒的组装
3.1ELISA试剂盒组装:
(1)96孔酶标板,包被有E蛋白单克隆抗体;
(2)标准阳性对照:乙型脑炎E蛋白;
(3)标准阴性对照:大肠杆菌BL-21菌体蛋白;
(4)兔源多克隆抗体;
(5)辣根过氧化物酶标记的羊抗兔酶标抗体;
(6)洗涤液(10×浓缩):NaCl 80.0g,KH2PO4 2.7g,Na2HPO4·12H2O 14.2g,KCl 2.0g,Tween20 5ml,加双蒸水至1000ml;
(7)样品稀释液(即封闭液):NaCl 0.8g,KH2PO4 0.27g,Na2HPO4·12H2O 1.42g,KCl 0.2g,BSA 10g,加双蒸水至1000ml;
(8)底物液A:3,3’,5’,5-四甲基联苯二胺(TMB)200mg,无水乙醇100ml,加双蒸水至1000ml;
(9)底物液B:Na2HPO4 14.6g,柠檬酸9.3g,0.75%过氧化氢尿素6.4ml,加双蒸水至1000ml,调节 pH至5.0~5.4;
(10)终止液:2mol/L硫酸溶液。
3.2酶标板的制备
用包被液将乙型脑炎E蛋白单克隆抗体稀释至5μg/ml,每孔加100ul,4℃过夜,倾去孔内液体,用洗涤液洗5次,拍干,然后用封闭液封闭,37℃孵育1小时,倾去孔内封闭液,洗涤液洗涤5次,拍干,用铝膜真空封闭保存、备用。
实施例4乙型脑炎双抗体夹心ELISA抗原检测试剂盒的测定程序
4.1试剂的配制
1)洗涤液:将实施例3的试剂盒中提供的洗涤液用三蒸水稀释10倍后使用;
2)待检样品及标准对照品的稀释:将待检测样品及试剂盒中提供的标准阳性、标准阴性对照品用样品稀释液稀释10倍后使用。
4.2测定步骤
1)加样:向酶标板微孔中加入用样品稀释液1∶10倍稀释后的待检测样品100μl,37℃恒温孵育30min;
2)洗涤:倒出孔中的液体,每孔中加入洗涤液200μl,洗涤5次并拍干;
3)加多克隆抗体:每孔中加入多克隆抗体工作液100μl,37℃恒温孵育30min;
4)洗涤:倒出孔中的液体,每孔中加入洗涤液200μl,洗涤5次并拍干;
5)加酶标二抗:每孔中加入酶标抗体工作液100μl,37℃恒温孵育30min;
6)洗涤:倒出孔中的液体,每孔中加入洗涤液200μl,洗涤5次并拍干;
7)加底物液:每孔中先加入底物液A 50μl,再加入底物液B 50μl,避光显色10min;
8)加终止液:每孔中加入终止液50μl;
9)测定:用酶标仪在630nm处测定每孔的吸光光度值(OD630值)。
4.3结果判断
以标准阳性对照孔平均OD值(PC)大于0.5,标准阴性对照孔平均OD值(NC):小于0.2判定为本次测定成立的条件。计算CPC,即CPC=PC-NC,按照公式SP=(样品OD值-NC)/CPC,以待检测样品的SP≥0.4判定为阳性;SP<0.2判定为阴性;0.2≤SP<0.4判定为可疑,如果样品的检测结果落在可疑区间,则需要进行第二次检测,若第二次检测后结果仍为可疑,则要考虑重新收集样品再进行检测。
实施例5乙型脑炎双抗体夹心ELISA抗原检测试剂盒的临床应用
用本发明制备的双抗体夹心ELISA乙型脑炎抗原检测试剂盒检测临床送检样品,包括16份人脑脊液样品、20份蚊子样品、24份猪脑样品,发现不同样品中各有一定的检出率(见表9)。同时,用RT-PCR同步检测这60份样品,以比较双抗体夹心ELISA抗原检测方法与RT-PCR方法的符合率。
结果显示本发明制备的双抗夹心ELISA检测试剂盒检测出阳性样品为35份,阳性检出率为58.3%,检测出阴性样品为25份,阴性检出率为41.7%。而用RT-PCR方法检测出阳性样品为40份,阳性检出率为66.7%,检测出阴性样品为20份,阴性检出率为33.3%。其中两种方法检测共为阳性的样品为35份,同(共) 为阴性的样品为20份,即阳性符合率为87.5%,阴性符合率为100%,总符合率为91.7%(见表10),说明本发明的双抗体夹心ELISA方法与对照RT-PCR方法具有着较高的符合率。检测结果见表9
表9双抗体夹心ELISA乙型脑炎抗原检测试剂盒对60份样品的检测结果
表10双抗体夹心ELISA乙型脑炎抗原检测试剂盒与RT-PCR方法符合率的比较
附录:
本发明试剂盒中配备的试剂及酶标板来源:
1、96孔酶标板:购自武汉科前动物生物制品有限公司;
2、包被液:1.59g NaCO3,2.93g NaHCO3,加双蒸水至1000ml;
3、洗涤液(10×浓缩):NaCl 80.0g,KH2PO4 2.7g,Na2HPO4·12H2O 14.2g,KCl 2.0g,Tween205mL,,加双蒸水至1000mL;
4、样品稀释液(又称封闭液):NaCl 0.8g,KH2PO4 0.27g,Na2HPO4·12H2O 1.42g,KCl 0.2g,BSA 10g,加双蒸水至1000mL;
5、底物液A:3,3’,5’,5-四甲基联苯二胺200mg,无水乙醇100mL,加双蒸水至1000mL;;
6、底物液B:Na2HPO4 14.6g,柠檬酸9.3g,0.75%浓度的过氧化氢尿素6.4mL,加双蒸水至1000mL,调节pH至5.0~5.4;
7、终止液:2mol/L硫酸溶液。
Claims (5)
1.一种乙型脑炎病毒E蛋白单克隆抗体,其特征在于,它是由保藏号为CCTCC NO:C2010114的杂交瘤细胞株JEV/4D1C所分泌的。
2.权利要求1所述的杂交瘤细胞株JEV/4D1C,保藏在中国典型培养物保藏中心,其保藏号为CCTCC NO:C2010114。
3.包含权利要求1所述的单克隆抗体和兔源乙型脑炎病毒多克隆抗体的乙型脑炎双抗体夹心ELISA抗原检测试剂盒。
4.一种适用于猪、人、蚊子中乙型脑炎病毒抗原检测的双抗体夹心ELISA试剂盒,其特征在于,以保藏号为CCTCC NO:C2010114的杂交瘤细胞株JEV/4D1C分泌的单克隆抗体作为第一抗体包被酶标板,以兔源乙型脑炎病毒多克隆抗体作为第二抗体,由辣根过氧化酶标记的羊抗兔抗体与兔源乙型脑炎病毒多克隆抗体结合,并催化TMB底物显色;该试剂盒还包括:标准阳性对照乙型脑炎E蛋白,标准阴性对照大肠杆菌BL-21菌体蛋白,洗涤液,样品稀释液,底物液A、底物液B和终止液;
其中:
所述洗涤液,样品稀释液,底物液A、底物液B和终止液的组分及配比如下:
10倍浓缩洗涤液:NaCl80.0g,KH2PO42.7g,Na2HPO412H2O14.2g,KCl2.0g,吐温205mL,加双蒸水至1000mL:
样品稀释液:NaCl0.8g,KH2PO40.27g,Na2HPO412H2O1.42g,KCl0.2g,BSA10g,加双蒸水至1000mL;
底物液A:3,3’,5’,5-四甲基联苯二胺200mg,无水乙醇100mL,加双蒸水至1000mL;
底物液B:Na2HPO414.6g,柠檬酸9.3g,0.75%浓度的过氧化氢尿素6.4mL,加双蒸水至1000mL,调节pH至5.0~5.4;
终止液:2mol/L硫酸溶液。
5.权利要求1所述的单克隆抗体在制备乙型脑炎双抗体夹心ELISA抗原检测试剂盒中的应用。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN 201010549519 CN102464716B (zh) | 2010-11-16 | 2010-11-16 | 一种用于猪、人和蚊子中乙型脑炎病毒抗原检测的elisa试剂盒及应用 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN 201010549519 CN102464716B (zh) | 2010-11-16 | 2010-11-16 | 一种用于猪、人和蚊子中乙型脑炎病毒抗原检测的elisa试剂盒及应用 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN102464716A CN102464716A (zh) | 2012-05-23 |
CN102464716B true CN102464716B (zh) | 2013-10-30 |
Family
ID=46068872
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN 201010549519 Expired - Fee Related CN102464716B (zh) | 2010-11-16 | 2010-11-16 | 一种用于猪、人和蚊子中乙型脑炎病毒抗原检测的elisa试剂盒及应用 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN102464716B (zh) |
Families Citing this family (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103777022B (zh) * | 2012-10-18 | 2015-11-18 | 辽宁成大生物股份有限公司 | 一种用于检测乙型脑炎疫苗病毒抗原含量的方法 |
CN103616509B (zh) * | 2013-11-28 | 2015-09-30 | 华南农业大学 | 检测猪乙型脑炎病毒的eⅲ-间接elisa抗体检测试剂盒及应用 |
CN107422117B (zh) * | 2017-06-22 | 2020-04-24 | 中国农业大学 | 一种检测猪乙型脑炎病毒抗体的试剂盒 |
CN111018970B (zh) * | 2019-12-27 | 2021-09-14 | 中牧实业股份有限公司 | 一种猪乙型脑炎病毒特异性阳性血清及其制备方法 |
CN114045362B (zh) * | 2021-12-02 | 2023-05-09 | 四川农业大学 | 基于rt-raa荧光方法检测乙型脑炎病毒的试剂和试剂盒 |
CN114317414B (zh) * | 2022-01-23 | 2023-08-08 | 中牧实业股份有限公司 | 非洲绿猴肾细胞的全悬浮细胞株及其应用 |
CN115261332A (zh) * | 2022-07-28 | 2022-11-01 | 辽宁成大生物股份有限公司 | 杂交瘤细胞株、单克隆抗体及制备方法、试剂盒及应用 |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101644710A (zh) * | 2008-08-05 | 2010-02-10 | 深圳市疾病预防控制中心 | 广州管圆线虫循环抗原的检测方法及其酶联免疫试剂盒 |
CN101661042A (zh) * | 2009-09-25 | 2010-03-03 | 中国农业大学 | 猪繁殖与呼吸综合征病毒双抗体夹心elisa试剂盒 |
CN101788563A (zh) * | 2010-02-03 | 2010-07-28 | 华中农业大学 | 梅花鹿γ-干扰素双抗体夹心ELISA检测方法及试剂盒与应用 |
CN101839914A (zh) * | 2009-03-20 | 2010-09-22 | 四川远大蜀阳药业股份有限公司 | 乙型脑炎病毒抗体效价标准血清及其制备方法 |
-
2010
- 2010-11-16 CN CN 201010549519 patent/CN102464716B/zh not_active Expired - Fee Related
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101644710A (zh) * | 2008-08-05 | 2010-02-10 | 深圳市疾病预防控制中心 | 广州管圆线虫循环抗原的检测方法及其酶联免疫试剂盒 |
CN101839914A (zh) * | 2009-03-20 | 2010-09-22 | 四川远大蜀阳药业股份有限公司 | 乙型脑炎病毒抗体效价标准血清及其制备方法 |
CN101661042A (zh) * | 2009-09-25 | 2010-03-03 | 中国农业大学 | 猪繁殖与呼吸综合征病毒双抗体夹心elisa试剂盒 |
CN101788563A (zh) * | 2010-02-03 | 2010-07-28 | 华中农业大学 | 梅花鹿γ-干扰素双抗体夹心ELISA检测方法及试剂盒与应用 |
Non-Patent Citations (4)
Title |
---|
"乙型脑炎病毒E蛋白抗原表位E39特异性单克隆抗体的制备";华容虹;《中国兽医科学》;20080228;第38卷(第2期);第133页-第136页 * |
"流行性乙型脑炎病毒E蛋白单克隆抗体的制备与鉴定";赵付荣;《中国兽医杂志》;20100131;第46卷(第1期);第3页-第5页 * |
华容虹."乙型脑炎病毒E蛋白抗原表位E39特异性单克隆抗体的制备".《中国兽医科学》.2008,第38卷(第2期),第133页-第136页. |
赵付荣."流行性乙型脑炎病毒E蛋白单克隆抗体的制备与鉴定".《中国兽医杂志》.2010,第46卷(第1期),第3页-第5页. |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN102464716A (zh) | 2012-05-23 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN102464716B (zh) | 一种用于猪、人和蚊子中乙型脑炎病毒抗原检测的elisa试剂盒及应用 | |
Halstead | Dengue and dengue hemorrhagic fever | |
CN102967710B (zh) | 小反刍兽疫抗体检测的竞争elisa试剂盒及其制备方法 | |
CN1360678B (zh) | 借助ns1糖蛋白对黄病毒进行早期检测的方法及其应用 | |
Li et al. | Development of a convenient immunochromatographic strip for the diagnosis of infection with Japanese encephalitis virus in swine | |
CN104407137B (zh) | 一种猪瘟病毒强毒株和弱毒株鉴别检测试纸 | |
CN104480072B (zh) | 一种分泌抗金刚烷胺单克隆抗体的杂交瘤细胞株及其应用 | |
CN102161983B (zh) | Ⅰ-iv型登革病毒ns1单克隆抗体杂交瘤细胞株及其试剂盒 | |
CN104928258B (zh) | 犬细小病毒杂交瘤细胞、及单克隆抗体和应用 | |
CN107973850A (zh) | 重组猪瘟病毒e2蛋白猪源化单克隆抗体及其制备方法和应用 | |
CN110058019A (zh) | 一种猪瘟抗体阻断检测试纸 | |
CN103266088A (zh) | 一种h7亚型禽流感病毒单克隆抗体及试剂盒 | |
CN103059132B (zh) | 抗h9亚型流感病毒血凝素蛋白的单克隆抗体及其应用 | |
CN104459144A (zh) | 一种猪伪狂犬病毒强毒株和疫苗毒株鉴别检测试纸 | |
CN110361542A (zh) | 猪德尔塔冠状病毒n蛋白的双抗体夹心elisa抗原检测试剂盒 | |
CN105348386B (zh) | 抗口蹄疫o型病毒的单克隆抗体组合及检测试剂盒 | |
CN103819565B (zh) | Hcv重组融合抗原及其表达基因和制备方法 | |
CN106119209B (zh) | 一种抗肠道病毒EV71 IgA单克隆抗体及应用 | |
CN105296435B (zh) | 杂交瘤细胞株及其分泌的抗口蹄疫o型(o/gx/09-7)病毒的特异性单克隆抗体与应用 | |
CN108752471A (zh) | 抗pcv2单克隆抗体的制备方法及其应用 | |
CN105445457B (zh) | 检测猪圆环病毒2型Cap蛋白的单克隆抗体及试剂盒 | |
CN102533664B (zh) | 分泌抗水稻黑条矮缩病毒单抗杂交瘤细胞株及其单抗应用 | |
CN101781656A (zh) | 齿兰环斑病毒外壳蛋白基因的表达及其抗体制备方法 | |
CN102559603B (zh) | 分泌抗番茄黄化曲叶病毒单抗杂交瘤细胞株及其单抗应用 | |
CN103983782A (zh) | 一种检测猪瘟病毒Erns IgM抗体的ELISA试剂盒 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |
Granted publication date: 20131030 Termination date: 20141116 |
|
EXPY | Termination of patent right or utility model |