CN102210450A - 益生菌微胶囊及其制备方法 - Google Patents
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Abstract
本发明提供了益生菌微胶囊及其制备方法。首先制备乳酸乳球菌乳脂亚种、植物乳杆菌、嗜酸乳杆菌、嗜热链球菌4株益生菌发酵液,然后在5000转/分钟后弃掉上清液,分别取每种益生菌菌泥10克,添加细度为200目的香菇粉末4克,与含有3%海藻酸钠与1%果胶的混合胶体50g混合,200r/min进行第一次搅拌20min,将混合物倒入盛有1.5倍体积食用油的三角瓶中,400r/min进行第二次搅拌20min,加入1.5%CaCl2溶液钙化3h,用灭菌生理盐水洗涤凝胶球三次,将胶球置于0.6%,pH=5.5的壳聚糖溶液中成膜反应15min后取出,用灭菌生理盐水冲洗后置于55mM的柠檬酸溶液中液化30min,灭菌生理盐水冲洗后得湿的微胶囊,150r/min离心10min收集微胶囊,预冷,最后冷冻干燥获得微胶囊。
Description
(一)技术领域
本发明涉及一种益生菌微胶囊及其制备方法,属生物工程领域。
(二)背景技术
人类食用益生菌后,首先经过胃液的消化,然后才能进入肠道中。在胃液的消化过程中大部分益生菌的活性被胃酸抑制甚至杀灭,导致益生菌无法在肠道中繁殖,从而失去了益生菌在肠道中定植的可能。微胶囊技术早已广泛应用于医药、化工、食品等领域,随着益生菌微胶囊化技术的不断发展与完善,益生菌微胶囊的耐酸性、耐胆盐性、耐储性和肠溶性均有所增强。
本发明以食用菌粉作为益生素成分被添加到微胶囊中,果胶作为壁材应用到益生菌包埋技术当中,使食用菌中的多糖成分充分作用于益生菌,使益生菌快速在肠道中定植下来,同时食用菌被粉碎至200目,增大反应表面积,以求达到增加合生元微生态制剂的营养性、功能性及益生菌与益生素的协同作用等目的。
(三)发明内容
本发明目的在于提供益生菌微胶囊及其制备方法。
本发明的目的是这样实现的:本发明中所涉及的百分比除另有注明之外为质量比,本发明的产品采用这样的方法来制备的:
1.益生菌的选择及培养基的制备
A菌——乳酸乳球菌乳脂亚种CICC20408(Lactobacillus lactis subsp.cremoris),培养基为:酵母浸膏7.5克,蛋白胨7.5克,葡萄糖10克,磷酸二氢钾2克,番茄汁100毫升,吐温800.5毫升,水900毫升,pH7.0。
B菌——植物乳杆菌CICC 22211(Lactobacillus plantarum)酪蛋白胨10.0g,牛肉膏10.0g,酵母粉5.0g,葡萄糖5.0g,乙酸钠5.0g,柠檬酸二胺2.0g,Tween 801.0g,K2HPO42.0g,MgSO4.7H2O 0.2g,MnSO4.H2O 0.05g,CaCO320.0g,蒸馏水1.0L,pH6.8。
C菌——嗜酸乳杆菌CICC 21723(Lactobacillus acidophilus)蛋白胨5.0g,牛肉膏5.0g,胰蛋白胨10.0g,酵母粉5.0g,葡萄糖10.0g,吐温801.0g,K2HPO42.0g,乙酸钠5.0g,柠檬酸氢二铵2.0g,ZnSO4?7H2O 0.25g,MgSO4·7H2O 0.1g,蒸馏水定容至1L,pH 6.2-6.4。
D菌——嗜热链球菌CICC 21729(Strep tococcus thermophilus)酪蛋白胨20g,酵母浸出粉5.0g,葡萄糖5g,蔗糖5g,乳糖5g,吐温801.0ml,NaCl 4.0g,乙酸钠1.5g,抗坏血酸0.5g,加蒸馏水至1.0L,调酸度至pH6.8,0.1MPa灭菌20min。
2.益生菌的制备过程
2.1冻干菌粉末的活化
分别量取0.9%的生理盐水10ml于4只试管内,经121℃灭菌20分钟冷却至30℃,将4株乳酸菌安瓶内的冻干菌粉末在无菌状态下全部倒入0.9%的生理盐水中,震荡使其溶解,在30℃恒温箱中静止活化30分钟,备用。
2.2益生菌扩大培养
2.2.1母发酵剂的制备
分别量取4株乳酸菌培养基各200ml于5只500ml三角瓶内,121℃灭菌20分钟冷却至30℃,按培养基体积的10%接种2.1步骤中已经活化的菌种,在30℃厌氧箱内静止培养24小时,作为母发酵剂。
2.2.2益生菌扩培
首先配置10%的脱脂奶乳浊液,121℃灭菌20分钟冷却至30℃,分别按2%体积比例接种母发酵剂,30℃厌氧培养3036小时,检测4株乳酸菌发酵液活菌数,每发酵液活菌数≥109个/ml,视同为发酵成熟,如果活菌数<109个/ml,继续培养,直至达到109个/ml,然后在无菌状态下5000转/分钟离心20分钟,弃掉上清液,留菌泥包埋待用。
2.3食用菌微胶囊的制备
分别取每种待包埋乳酸菌菌泥10克,然后称取细度为200目的香菇粉末4克,与含有3%海藻酸钠与1%果胶的混合胶体50g混合,200r/min进行第一次搅拌20min,将混合物缓慢倾倒入盛有1.5倍体积食用油的三角瓶中,400r/min进行第二次搅拌20min,加入1.5%CaCl2溶液钙化3h,用灭菌生理盐水洗涤凝胶球三次,将胶球置于0.6%,pH=5.5的壳聚糖溶液中进行成膜反应,15min后取出,用灭菌生理盐水冲洗后置于55mM的柠檬酸溶液中液化30min,灭菌生理盐水冲洗后得湿的微胶囊,150r/min离心10min收集微胶囊,预冷,最后冷冻干燥获得微胶囊。
2.4食用菌合生元微胶囊的复配
按各食用菌合生元微胶囊重量,取A菌微胶囊1-2份,B菌微胶囊4-5份,C菌微胶囊2-4份,D菌微胶囊2-3份,充分混匀后真空包装。
(四)具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明作更详细的描述:
实施例一:
本发明采用的4株益生菌均采购于中国工业微生物菌种保藏中心,分别为:乳酸乳球菌乳脂亚种CICC 20408,植物乳杆菌CICC 22211,嗜酸乳杆菌CICC 21723,嗜热链球菌CICC21729,本发明中将上述菌株简称为A菌、B菌、C菌、D菌。
1.益生菌的选择及培养基的制备
A菌——乳酸乳球菌乳脂亚种CICC 20408(Lactobacillus lactis subsp.cremoris),培养基为:酵母浸膏7.5克,蛋白胨7.5克,葡萄糖10克,磷酸二氢钾2克,番茄汁100毫升,吐温800.5毫升,水900毫升,pH7.0。
B菌——植物乳杆菌CICC 22211(Lactobacillus plantarum)酪蛋白胨10.0g,牛肉膏10.0g,酵母粉5.0g,葡萄糖5.0g,乙酸钠5.0g,柠檬酸二胺2.0g,Tween 801.0g,K2HPO42.0g,MgSO4.7H2O 0.2g,MnSO4.H2O 0.05g,CaCO320.0g,蒸馏水1.0L,pH6.8。
C菌——嗜酸乳杆菌CICC 21723(Lactobacillus acidophilus)蛋白胨5.0g,牛肉膏5.0g,胰蛋白胨10.0g,酵母粉5.0g,葡萄糖10.0g,吐温801.0g,K2HPO42.0g,乙酸钠5.0g,柠檬酸氢二铵2.0g,ZnSO4?7H2O 0.25g,MgSO4·7H2O 0.1g,蒸馏水定容至1L,pH 6.2-6.4。
D菌——嗜热链球菌CICC 21729(Streptococcus thermophilus)酪蛋白胨20g,酵母浸出粉5.0g,葡萄糖5g,蔗糖5g,乳糖5g,吐温801.0ml,NaCl 4.0g,乙酸钠1.5g,抗坏血酸0.5g,加蒸馏水至1.0L,调酸度至pH6.8,0.1MPa灭菌20min。
2.益生菌的制备过程
2.1冻干菌粉末的活化
分别量取0.9%的生理盐水10ml于4只试管内,经121℃灭菌20分钟冷却至30℃,将4株乳酸菌安瓶内的冻干菌粉末在无菌状态下全部倒入0.9%的生理盐水中,震荡使其溶解,在30℃恒温箱中静止活化30分钟,备用。
2.2益生菌扩大培养
2.2.1母发酵剂的制备
分别量取4株乳酸菌培养基各200ml于5只500ml三角瓶内,121℃灭菌20分钟冷却至30℃,按培养基体积的10%接种2.1步骤中已经活化的菌种,在30℃厌氧箱内静止培养24小时,作为母发酵剂。
2.2.2益生菌扩培
首先配置10%的脱脂奶乳浊液,121℃灭菌20分钟冷却至30℃,分别按2%体积比例接种母发酵剂,30℃厌氧培养30——36小时,检测4株乳酸菌发酵液活菌数,各发酵液活菌数≥109个/ml,视同为发酵成熟,如果活菌数<109个/ml,继续培养,直至达到109个/ml,然后在无菌状态下5000转/分钟离心20分钟,弃掉上清液,留菌泥包埋待用。
2.3食用菌微胶囊的制备
分别取每种待包埋乳酸菌菌泥10克,然后称取细度为200目的香菇粉末4克,与含有3%海藻酸钠与1%果胶的混合胶体50g混合,200r/min进行第一次搅拌20min,将混合物缓慢倾倒入盛有1.5倍体积食用油的三角瓶中,400r/min进行第二次搅拌20min,加入1.5%CaCl2溶液钙化3h,用灭菌生理盐水洗涤凝胶球三次,将胶球置于0.6%,pH=5.5的壳聚糖溶液中进行成膜反应,15min后取出,用灭菌生理盐水冲洗后置于55mM的柠檬酸溶液中液化30min,灭菌生理盐水冲洗后得湿的微胶囊,150r/min离心10min收集微胶囊,预冷,最后冷冻干燥获得微胶囊。
2.4食用菌合生元微胶囊的复配
按各食用菌合生元微胶囊重量,取A菌微胶囊1份,B菌微胶囊4份,C菌微胶囊2份,D菌微胶囊2份,充分混匀后真空包装。
实施例二:
1.益生菌的选择及培养基的制备
A菌——乳酸乳球菌乳脂亚种CICC 20408(Lactobacillus lactis subsp.cremoris),培养基为:酵母浸膏7.5克,蛋白胨7.5克,葡萄糖10克,磷酸二氢钾2克,番茄汁100毫升,吐温800.5毫升,水900毫升,pH7.0。
B菌——植物乳杆菌CICC 22211(Lactobacillus plantarum)酪蛋白胨10.0g,牛肉膏10.0g,酵母粉5.0g,葡萄糖5.0g,乙酸钠5.0g,柠檬酸二胺2.0g,Tween 801.0g,K2HPO42.0g,MgSO4.7H2O 0.2g,MnSO4.H2O 0.05g,CaCO320.0g,蒸馏水1.0L,pH6.8。
C菌——嗜酸乳杆菌CICC 21723(Lactobacillus acidophilus)蛋白胨5.0g,牛肉膏5.0g,胰蛋白胨10.0g,酵母粉5.0g,葡萄糖10.0g,吐温801.0g,K2HPO42.0g,乙酸钠5.0g,柠檬酸氢二铵2.0g,ZnSO4?7H2O 0.25g,MgSO4·7H2O 0.1g,蒸馏水定容至1L,pH 6.2-6.4。
D菌——嗜热链球菌CICC 21729(Streptococcus thermophilus)酪蛋白胨20g,酵母浸出粉5.0g,葡萄糖5g,蔗糖5g,乳糖5g,吐温801.0ml,NaCl 4.0g,乙酸钠1.5g,抗坏血酸0.5g,加蒸馏水至1.0L,调酸度至pH6.8,0.1MPa灭菌20min。
2.益生菌的制备过程
2.1冻干菌粉末的活化
分别量取0.9%的生理盐水10ml于4只试管内,经121℃灭菌20分钟冷却至30℃,将4株乳酸菌安瓶内的冻干菌粉末在无菌状态下全部倒入0.9%的生理盐水中,震荡使其溶解,在30℃恒温箱中静止活化30分钟,备用。
2.2益生菌扩大培养
2.2.1母发酵剂的制备
分别量取4株乳酸菌培养基各200ml于5只500ml三角瓶内,121℃灭菌20分钟冷却至30℃,按培养基体积的10%接种2.1步骤中已经活化的菌种,在30℃厌氧箱内静止培养24小时,作为母发酵剂。
2.2.2益生菌扩培
首先配置10%的脱脂奶乳浊液,121℃灭菌20分钟冷却至30℃,分别按2%体积比例接种母发酵剂,30℃厌氧培养30——36小时,检测4株乳酸菌发酵液活菌数,各发酵液活菌数≥109个/ml,视同为发酵成熟,如果活菌数<109个/ml,继续培养,直至达到109个/ml,然后在无菌状态下5000转/分钟离心20分钟,弃掉上清液,留菌泥包埋待用。
2.3食用菌微胶囊的制备
分别取每种待包埋乳酸菌菌泥10克,然后称取细度为200目的香菇粉末4克,与含有3%海藻酸钠与1%果胶的混合胶体50g混合,200r/min进行第一次搅拌20min,将混合物缓慢倾倒入盛有1.5倍体积食用油的三角瓶中,400r/min进行第二次搅拌20min,加入1.5%CaCl2溶液钙化3h,用灭菌生理盐水洗涤凝胶球三次,将胶球置于0.6%,pH=5.5的壳聚糖溶液中进行成膜反应,15min后取出,用灭菌生理盐水冲洗后置于55mM的柠檬酸溶液中液化30min,灭菌生理盐水冲洗后得湿的微胶囊,150r/min离心10min收集微胶囊,预冷,最后冷冻干燥获得微胶囊。
2.4食用菌合生元微胶囊的复配
按各食用菌合生元微胶囊重量,取A菌微胶囊2份,B菌微胶囊5份,C菌微胶囊4份,D菌微胶囊3份,充分混匀后真空包装。
Claims (1)
1.益生菌微胶囊及其制备方法,其特征是:乳酸乳球菌乳脂亚种、植物乳杆菌、嗜酸乳杆菌、嗜热链球菌4株益生菌发酵液,然后在5000转/分钟后弃掉上清液,分别取每种益生菌菌泥10克,添加细度为200目的香菇粉末4克,与含有3%海藻酸钠与1%果胶的混合胶体50g混合,200r/min进行第一次搅拌20min,将混合物倒入盛有1.5倍体积食用油的三角瓶中,400r/min进行第二次搅拌20min,加入1.5%CaCl2溶液钙化3h,用灭菌生理盐水洗涤凝胶球三次,将胶球置于0.6%,pH=5.5的壳聚糖溶液中成膜反应15min后取出,用灭菌生理盐水冲洗后置于55mM的柠檬酸溶液中液化30min,灭菌生理盐水冲洗后得湿的微胶囊,150r/min离心10min收集微胶囊,预冷,最后冷冻干燥获得微胶囊。
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Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C02 | Deemed withdrawal of patent application after publication (patent law 2001) | ||
WD01 | Invention patent application deemed withdrawn after publication |
Application publication date: 20111012 |