CN102108395A - 花椰菜杂交种dna指纹图谱的建立方法及应用 - Google Patents
花椰菜杂交种dna指纹图谱的建立方法及应用 Download PDFInfo
- Publication number
- CN102108395A CN102108395A CN2009102008312A CN200910200831A CN102108395A CN 102108395 A CN102108395 A CN 102108395A CN 2009102008312 A CN2009102008312 A CN 2009102008312A CN 200910200831 A CN200910200831 A CN 200910200831A CN 102108395 A CN102108395 A CN 102108395A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- dna
- cauliflower
- seed
- fingerprint spectrum
- primer
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Images
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明公开了一种花椰菜杂交种及其亲本DNA指纹图谱的建立方法和应用。建立方法包括:1、花椰菜DNA的提取及纯化;2、用获得的高纯度花椰菜DNA为模板进行RAPD、SRAP分析;3、选择有代表性的多态性扩增条带构建供试材料DNA指纹图谱;在DNA指纹图谱中花椰菜杂交种及其亲本都有特异的DNA指纹,可以相互区分开来。由于本发明DNA指纹图谱是用图的形式表示,看起来比较直观、易懂;并将其转换成数码表示形式,便于计算机识读和分析。本发明可应用于花椰菜杂交种的种子纯度鉴定,结果准确、可靠,检测迅速。
Description
技术领域
本发明涉及花椰菜种子鉴定技术,具体地说是花椰菜杂交种DNA指纹图谱的建立方法和应用。
背景技术
目前,我国生产中推广应用的花椰菜(Brassica oleracea L.var.botrytisL)品种许多为杂种一代。杂种一代能综合亲本的许多优良性状,经济效益较好。
但是在制种过程中会由于管理措施不当和自交不亲和性本身的缺陷而常常产生自交种子,即假杂种,导致种子纯度下降。因此,提高杂交种纯度是杂种优势利用研究领域的重要课题。目前,品种鉴定和种子纯度分析方法大致有三种,即大田形态、生化标记和DNA指纹图谱鉴定法。传统的大田鉴定法以种子、幼苗、叶、花、果实、花粉等组织器官的颜色、形态等农艺性状作为鉴定的观测指标,在生产实践中虽然是一种较为可行的方法,但大田鉴定需要额外占用土地,周期长、花费大,不仅受季节限制,而且很多性状的表现受栽培措施及环境因子的影响,鉴定者的观察经验也制约着鉴定的准确性。大田鉴定最大的缺陷是不能及时提供种子纯度信息,不能在种子大量交易前提供有关种子的质量信息,对种子质量不能起到预先监督的作用。生化鉴定方法包括蛋白质电泳和同工酶电泳,已得到日益广泛的应用,但不能完全显示品种间的多态性,难以对亲缘关系较近的品种进行有效的区分。
发明内容
本发明的目的是提供一种花椰菜杂交种DNA指纹图谱的建立方法和应用,以克服现有技术存在的不足。
本发明的技术构思是这样的:
DNA指纹图谱鉴定法是以DNA的多态性为基础的分子标记方法,可以弥补和克服在种子纯度的形态学鉴定及同工酶、种子蛋白电泳鉴定中的许多缺陷和难题。本发明利用RAPD、SRAP技术构建了花椰菜杂交种与其亲本的DNA指纹图谱,可以为花椰菜杂交种的鉴定和纯度检测提供科学依据,进而保护生产者和使用者的合法权益。
本发明的花椰菜杂交种及其亲本的DNA指纹图谱,是由“1”和“0”组成的数据。使用引物S140,花椰菜杂交种母本、F1和父本的扩增数据分别为001110111111、001111111111和110111111111。使用引物M1-E18,数据分别为11111111110111、11111111111111和11111111100111。使用引物M8-E18,数据分别为111111111111110011001、111111111111111111111和111011111101110110110。其中所述数字“1”表示图谱中某个位置上有扩增带存在,数字“0”表示在某个位置上没有扩增条带存在。
所说的花椰菜杂交种和亲本可以采用上海市农业科学院园艺研究所公开销售的产品;
花椰菜DNA指纹图谱的建立方法,包括如下步骤:
1)提取及纯化花椰菜基因组的DNA;
2)用获得的花椰菜DNA为模板进行RAPD、SRAP分析;
3)选择有代表性的多态性扩增条带,根据所选择条带的有、无构建供试材料DNA指纹图谱。
其中所述花椰菜杂交种及其亲本都有其特异的DNA指纹,可以相互区分开来。所述RAPD、SRAP扩增中采用的引物是由上海生工生物工程有限公司合成的寡核苷酸引物。RAPD扩增采用的引物为S140:GGTCTAGAGG。SRAP扩增采用的引物为M1:TGAGTCCAAACCGGATA,M8:TGAGTCCTTTCCGGTGC,E18:GACTGCGTACGAATTCCT。
本发明的DNA指纹图谱可以应用于花椰菜杂交种种子纯度的鉴定。
本发明具有如下优点:
1、本发明创建了花椰菜杂交种及其亲本的DNA指纹图谱,公开了用DNA指纹分析技术对花椰菜种子鉴定的研究结果,其建立方法能从遗传本质上对花椰菜种子进行鉴定,因此准确、可靠。
2、采用本发明,在对花椰菜种子样品进行真实检测时,用目前广泛应用的快速、微量DNA提取法提取待测样品的DNA,用提取的DNA作为模板,进行RAPD、SRAP分析,在几个小时内就可以知道该样品的DNA指纹,因此,就能迅速判断出它的真实性。
3、由于本发明DNA指纹图谱是用图的形式表示,看起来比较直观、易懂;并由于转换成了数码形式,便于计算机识读和分析。
附图说明:
附图为本发明建立的RAPD、SRAP指纹图谱,其中:M为DGL 2000DNA标识;1为花椰菜杂交种母本;2为花椰菜杂交种;3为花椰菜杂交种父本;箭头标出的为互补型特征片段。A、B、C依次为引物M8-E18、M1-E18、和S140的扩增电泳图。
具体实施方式:
实施例1
本实施例采用SDS法提取花椰菜品种“早花60”及其亲本的基因组DNA,通过RAPD、SRAP分子标记方法构建其DNA指纹图谱用于种子纯度鉴定。具体操作如下:
1、选用的试验材料:
材料为花椰菜杂交种“早花60”及其亲本。
2、花椰菜DNA的提取及纯化:
按如下程序提取各个花椰菜材料的基因组DNA:
取新鲜组织2g,在液氮中研磨成粉,置于50ml离心管,加入8ml提取液(100mM Tris pH 8.0,50mM EDTA,500mM NaCl,1.5%SDS),65℃情况下30分钟,不时颠倒混匀,加2.5ml 5M乙酸钾冰浴10分钟,加.5ml氯仿,颠倒混匀,10000rmp离心8分钟,取上清移入新管,加2/3体积预冷异丙醇,颠倒混匀,-20℃置1-2小时,挑出絮状白色DNA,70%乙醇洗1-2次,吹干,溶于100ul(或适量)TE中,并在1%琼脂糖凝胶上电泳,用标准λDNA作对照,估算花椰菜DNA样品的浓度,获得高纯度花椰菜DNA。
3、用获得的高纯度花椰菜DNA为模板进行分子标记分析:
RAPD扩增反应采用20μL的反应体系,其中25mmol/L MgCl2 2.0μl,10×PCR Buffer 2.0μl,10mmol/L dNTP 0.5μl,5U/μl Taq E 0.2μl,0.1μmol/L引物3μl,10ng/μl模板DNA 3μl,灭菌双蒸水9.3μl。扩增程序为:94℃预变性5min;94℃变性1min,37℃退火1min,72℃延伸1.5min,40个循环;72℃延伸10min后4℃保存。PCR产物在1.5%琼脂糖凝胶中电泳1.5h,EB染色,Gel DocTM EQ 170-8060凝胶成像仪进行观察并拍照分析。
SRAP扩增反应采用20μL的反应体系,其中25mmol/L MgCl2 2.0μL,10×PCR Buffer 2.0μL,10mmol/L dNTP 0.4μL,5U/μL Taq DNA聚合酶0.2μL,0.1μmol/L引物各3.0μL,10ng/μL模板DNA 3.0μL,灭菌双蒸水6.4μL,加盖一滴矿物油进行扩增。扩增程序为94℃预变性5min;94℃变性1min,35℃退火1min,72℃延伸1.5min,5个循环;94℃变性1min,50℃退火1min,72℃延伸1.5min,35个循环;72℃延伸10min后4℃保存。扩增产物用1.5%琼脂糖凝胶上进行电泳分析。反应结束后,PCR产物使用6%聚丙烯酰胺胶电泳1.5小时,采用快速银染法染色定影后拍照。
4、引物筛选:
使用150个RAPD引物和30对SRAP引物对样品DNA进行PCR扩增,其中有118个RAPD引物和全部的30对SRAP引物能扩增出清晰的条带,但大多数引物的扩增结果在双亲及杂交种之间是一致的,不能起到鉴别的作用。最终筛选出2对SRAP引物(M8-E18和M1-E18)可将双亲和F1区分出来,另外还有1个RAPD引物(S140)可以将“早花60”的双亲和F1区分开(见图)。其中引物组合M1-E8在约650bp、250bp、200bp、190bp、170bp和150bp处扩增出6条双亲的互补特征带,在约400bp处只在F1扩增出特异条带;引物组合E18-M1在约500bp处扩增出F1的特异带。由此可见,3个(对)引物均能对“早花60”的双亲和F1进行有效鉴别。
5、数字指纹的建立:
根据上述两种分子标记指纹图谱,以1和0分别代表某个等位基因位点扩增DNA条带的有无,按照从上到下即由大片段向小片段的读带方向,将分子标记指纹图谱转换为由1和0组成的字符串,即构成数字指纹。使用引物S140,“早花60”花椰菜的母本、杂交种和父本的扩增数据分别为001110111111、001111111111和110111111111。使用引物M1-E18,数据分别为11111111110111、11111111111111和11111111100111。使用引物M8-E18,数据分别为111111111111110011001、111111111111111111111和111011111101110110110。
实施例2
本发明的DNA指纹图谱用于“早花60”种子纯度的鉴定:
从制种基地生产的“早花60”杂交种中随机抽取50-80个单株,用微量DNA提取法提取各单株样品的DNA,用提取的DNA作为模板,用相应的引物对其进行PCR扩增和电泳分析。如利用S 140引物分析查出的单株DNA指纹是“001111111111”即为“早花60”真杂种株,DNA指纹是“001110111111”或“110111111111”即为“早花60”亲本自交株,也就是假杂种株。再如利用M8-E18引物分析查出的单株DNA指纹是“111111111111111111111”即为“早花60”真杂种株,DNA 指纹是“111111111111110011001”或“111011111101110110110”即为“早花60”亲本自交株,也就是假杂种株。然后用假杂种株数除以总分析的株数,即可获得制种基地生产的花椰菜杂交种的纯度,较大田种植调查纯度既省时又便捷,可以为花椰菜杂交种子的销售及时提供纯度信息。如果鉴定的纯度低于85%,就不能够作为种子进行销售,以避免假种子伤农事件的发生。如果鉴定的种子纯度高于95%以上,就可以作为精品种子销售,优质优价,使农民和种子经销商均获得好的经济效益。
Claims (4)
1.花椰菜DNA指纹图谱的建立方法,其特征在于,包括如下步骤:
1)提取及纯化花椰菜基因组的DNA;
2)用获得的花椰菜DNA为模板进行RAPD、SRAP分析;
3)选择有代表性的多态性扩增条带,根据所选择条带的有、无构建供试材料DNA指纹图谱。
2.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,花椰菜杂交种及其亲本的DNA指纹图谱,是由“1”和“0”组成的数据,使用引物S140,花椰菜杂交种母本、杂交种和父本的扩增数据分别为001110111111、001111111111和110111111111。使用引物M1-E18,数据分别为11111111110111、11111111111111和11111111100111。使用引物M8-E18,数据分别为111111111111110011001、111111111111111111111和111011111101110110110。其中所述数字“1”表示图谱中某个位置上有扩增带存在,数字“0”表示在某个位置上没有扩增条带存在。
3.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述RAPD扩增采用的引物为S 140:GGTCTAGAGG。SRAP扩增采用的引物为M1:TGAGTCCAAACCGGATA,M8:TGAGTCCTTTCCGGTGC和E18:GACTGCGTACGAATTCCT。
4.权利要求2所述的方法建立的DNA指纹图谱的应用,其特征在于,用于花椰菜杂交种种子纯度的鉴定。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN2009102008312A CN102108395A (zh) | 2009-12-25 | 2009-12-25 | 花椰菜杂交种dna指纹图谱的建立方法及应用 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN2009102008312A CN102108395A (zh) | 2009-12-25 | 2009-12-25 | 花椰菜杂交种dna指纹图谱的建立方法及应用 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN102108395A true CN102108395A (zh) | 2011-06-29 |
Family
ID=44172680
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN2009102008312A Pending CN102108395A (zh) | 2009-12-25 | 2009-12-25 | 花椰菜杂交种dna指纹图谱的建立方法及应用 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN102108395A (zh) |
Cited By (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102643913A (zh) * | 2012-04-16 | 2012-08-22 | 温州市农业科学研究院 | 一种基于pcr技术的花椰菜遗传纯度快速检测方法 |
CN104419762A (zh) * | 2013-09-09 | 2015-03-18 | 天津市农业质量标准与检测技术研究所 | 采用est-ssr标记进行花椰菜品种鉴定的方法 |
CN111733274A (zh) * | 2020-07-01 | 2020-10-02 | 浙江省农业科学院 | 用于鉴定花椰菜“浙农松花80天”品种的snp位点及引物组和方法 |
CN112391488A (zh) * | 2020-10-21 | 2021-02-23 | 浙江省农业科学院 | 一种用于鉴定青花菜品种浙青80的snp标记 |
CN112746124A (zh) * | 2021-02-02 | 2021-05-04 | 天津市农业科学院 | 一种用于花椰菜杂交种子纯度鉴定的ssr引物及方法 |
CN114231656A (zh) * | 2021-12-31 | 2022-03-25 | 云南省农业科学院粮食作物研究所 | 花菜杂交种纯度鉴定的ssr核心引物组及其筛选方法和应用 |
-
2009
- 2009-12-25 CN CN2009102008312A patent/CN102108395A/zh active Pending
Non-Patent Citations (4)
Title |
---|
G LI等: "Gene for gene alignment between the Brassica and Arabidopsis genomes by direct transcriptome mapping", 《THEOR APPL GENET》 * |
李小艳: "花椰菜种子遗传纯度检测与品种鉴定的分子标记分析", 《中国优秀硕士学位论文全文数据库 农业科技辑》 * |
赵光伟等: "SRAP分子标记及其在蔬菜作物上的应用", 《中国农学通报》 * |
黄聪丽等: "花椰菜自交不亲和性的RAPD分析", 《福建农业学报》 * |
Cited By (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102643913A (zh) * | 2012-04-16 | 2012-08-22 | 温州市农业科学研究院 | 一种基于pcr技术的花椰菜遗传纯度快速检测方法 |
CN102643913B (zh) * | 2012-04-16 | 2013-08-07 | 温州市农业科学研究院 | 一种基于pcr技术的花椰菜遗传纯度快速检测方法 |
CN104419762A (zh) * | 2013-09-09 | 2015-03-18 | 天津市农业质量标准与检测技术研究所 | 采用est-ssr标记进行花椰菜品种鉴定的方法 |
CN111733274A (zh) * | 2020-07-01 | 2020-10-02 | 浙江省农业科学院 | 用于鉴定花椰菜“浙农松花80天”品种的snp位点及引物组和方法 |
CN112391488A (zh) * | 2020-10-21 | 2021-02-23 | 浙江省农业科学院 | 一种用于鉴定青花菜品种浙青80的snp标记 |
CN112746124A (zh) * | 2021-02-02 | 2021-05-04 | 天津市农业科学院 | 一种用于花椰菜杂交种子纯度鉴定的ssr引物及方法 |
CN114231656A (zh) * | 2021-12-31 | 2022-03-25 | 云南省农业科学院粮食作物研究所 | 花菜杂交种纯度鉴定的ssr核心引物组及其筛选方法和应用 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN106636393B (zh) | 与南瓜皮色基因连锁的snp分子标记及其应用 | |
CN103233065B (zh) | 油茶良种长林4号和32号分子特异性标记引物及鉴定方法 | |
CN102108395A (zh) | 花椰菜杂交种dna指纹图谱的建立方法及应用 | |
CN104099414B (zh) | 利用ssr分子标记鉴定杏品种的方法 | |
CN108660136A (zh) | 薄壳山核桃品种Davis的特征序列、标记引物及鉴定方法 | |
CN109337997B (zh) | 一种山茶属多态性叶绿体基因组微卫星分子标记引物及筛选和甄别近缘种的方法 | |
CN108374054A (zh) | 适用于毛细管电泳检测技术的一组水稻ssr分子标记及其应用 | |
CN104293778A (zh) | 兰属微卫星标记的建立方法、核心指纹标记库与试剂盒 | |
CN105063028B (zh) | Ssr引物组及利用该引物组构建麦芽指纹图谱的方法 | |
CN109652411B (zh) | 一种荧光ssr引物组合及其在构建白蜡新品种分子指纹图谱中的应用 | |
CN107630103A (zh) | 一种鉴定水稻品种的caps分子标记方法及应用 | |
CN105821154B (zh) | 一种用于丝瓜杂交种子纯度鉴定的ssr引物及其方法 | |
CN105624289B (zh) | 引物组及其应用、利用该引物组进行棉花种质资源遗传多样性分析的方法 | |
CN104673790B (zh) | 油茶良种长林18号的分子特异性标记引物及鉴定方法 | |
CN111808983B (zh) | 橡胶树品种标准dna指纹图谱库及其构建方法与专用引物 | |
CN102108393A (zh) | 青菜杂交种dna指纹图谱的建立方法及应用 | |
CN101525666B (zh) | 荧光标记大麻性别基因特异片段检验系统及方法 | |
CN105861652A (zh) | 一种鹿源性物种成分的检测鉴定方法 | |
CN104946641A (zh) | 油茶良种长林3号和21号的特异性标记引物及检测方法 | |
CN104073551A (zh) | 一种基于毛细管电泳和ssr标记的甘蔗种子真实性检测方法 | |
CN108165652A (zh) | 用于香榧苗期性别鉴定的特异性分子标记tgmi001 | |
CN108384884A (zh) | 一组玉米ssr分子标记及其应用 | |
CN107385052A (zh) | 用于鉴定桉树无性系的str引物及其应用 | |
CN104372096B (zh) | 一种黄麻微卫星dna标记指纹图谱及其应用 | |
CN107354222A (zh) | 用于鉴定桉树无性系的str引物、pcr试剂盒及方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
WD01 | Invention patent application deemed withdrawn after publication |
Application publication date: 20110629 |
|
WD01 | Invention patent application deemed withdrawn after publication |