发明内容
本发明所要解决的一个技术问题在于克服上述人源性胶原蛋白及其制备方法的缺点,提供一种与人胶原蛋白对应肽段氨基酸序列完全相同的基因重组人胶原蛋白融合肽段。
本发明所要解决的另一个技术问题在于提供一种快速、简便的基因重组人胶原蛋白融合肽段的制备方法。
本发明所要解决的还有一个技术问题在于为基因重组人胶原蛋白融合肽段提供一种新用途。
解决上述技术问题采用的技术方案是:基因重组人胶原蛋白融合肽段的全长为839个氨基酸,其氮端为III型人胶原蛋白908-1137位肽段共229个氨基酸,碳端为I型人胶原蛋白497-1104位肽段共608个氨基酸,两肽段之间用谷氨酸和苯丙氨酸链接;该基因重组人胶原蛋白融合肽段的氨基酸序列如下:
AGNTGAPGSP GVSGPKGDAG QPGEKGSPGA QGPPGAPGPL GIAGITGARG
LAGPPGMPGP RGSPGPQGVK GESGKPGANG LSGERGPPGP QGLPGLAGTA 100
GEPGRDGNPG SDGLPGRDGS PGGKGDRGEN GSPGAPGAPG HPGPPGPVGP
AGKSGDRGES GPAGPAGAPG PAGSRGAPGP QGPRGDKGET GERGAAGIKG 200
HRGFPGNPGA PGSPGPAGQQ GAIGSPGPAE FGADGVAGPK GPAGERGSPG
PAGPKGSPGE AGRPGEAGLP GAKGLTGSPG SPGPDGKTGP PGPAGQDGRP 300
GPPGPPGARG QAGVMGFPGP KGAAGEPGKA GERGVPGPPG AVGPAGKDGE
AGAQGPPGPA GPAGERGEQG PAGSPGFQGL PGPAGPPGEA GKPGEQGVPG 400
DLGAPGPSGA RGERGFPGER GVQGPPGPAG PRGANGAPGN DGAKGDAGAP
GAPGSQGAPG LQGMPGERGA AGLPGPKGDR GDAGPKGADG SPGKDGVRGL 500
TGPIGPPGPA GAPGDKGESG PSGPAGPTGA RGAPGDRGEP GPPGPAGFAG
PPGADGQPGA KGEPGDAGAK GDAGPPGPAG PAGPPGPIGN VGAPGAKGAR 600
GSAGPPGATG FPGAAGRVGP PGPSGNAGPP GPPGPAGKEG GKGPRGETGP
AGRPGEVGPP GPPGPAGEKG SPGADGPAGA PGTPGPQGIA GQRGVVGLPG 700
QRGERGFPGL PGPSGEPGKQ GPSGASGERG PPGPMGPPGL AGPPGESGRE
GAPGAEGSPG RDGSPGAKGD RGETGPAGPP GAPGAPGAPG PVGPAGKSGD 800
RGETGPAGPA GPVGPVGARG PAGPQGPRGD KGETGEQGD- 839
上述的基因重组人胶原蛋白融合肽段的制备方法由下述步骤组成:
1、克隆I型即COL1和III型即COL3人胶原蛋白基因的cDNA
从新鲜人胎盘组织中提取总RNA,以总RNA为模板,反转录得cDNA,设计COL1和COL3引物,COL1引物序列为:
F=CTGGCGCAGATGGTGTTG
R=CCACGGTGACCCTTTATGC
产物长度为1849bp;
COL3引物序列为:
F=GAATCTGTGAATCATGCCCTAC
R=GAAGTCATAATCTCATCGGTGTT
产物长度为3295bp;
以cDNA为模板,进行PCR扩增,提取特异性DNA扩增条带,得COL1和COL3;将COL1和COL3连接于pGM-T载体,转化感受态E.coli DH 5α,涂布平板,经蓝白斑筛选,挑选阳性pGMT-COL1和pGMT-COL3克隆,分别接种于LB培养基中,37℃振荡过夜培养,提取这两种质粒,为下一步做好准备。
2、毕赤酵母重组表达载体pPIC9K-COL3a1-COL1a1的构建
引物设计:COL3a1上游引物设计两条,引入pPIC9K自身信号肽序列GAGAAAAGAGAGGCTGAAGCT,进行两次扩增,各引物序列如下:
COL1a1引物序列为:
F=GCGAATTCGGCGCAGATGGTGTTGC,酶切位点EcoR I
R=TGGAATTCTTAGTCGCCCTGTCGCCTG,酶切位点EcoR I
产物长度1843bp。
COL3a1引物序列为:
F1=AGGCTGAAGCTGCGGGTAACACTG
F2=TCTCTCGAGAAAAGAGAGGCTGAAGCT,酶切位点Xho I
R:TTGAATTCTGCAGGTCCTGG,酶切位点EcoR I
产物长度722bp。
pPIC9k-COL1鉴定引物序列为:
F=GCTGAAGCTGTCATCGGTTACTCA
R=TCGCTCTCCAGCCTTGCCG
产物长度1155bp。
分别以pGMT-COL1和pGMT-COL3质粒为模板,进行PCR扩增,提取产物,得CO3a1和CO1a1,双酶切CO3a1和pPIC9K,以T4联接酶处理,得pPIC9K-CO3a1;单酶切CO1a1和pPIC9K-CO3a1,以T4联接酶处理,得pPIC9K-CO3a1-CO1a1;转化感受态E.coli DH 5α,涂布平板,经蓝白斑筛选,挑选阳性克隆,接种于LB培养基中,37℃振荡过夜培养,提取质粒,为下一步做好准备。
3、基因重组人胶原蛋白融合肽段毕赤酵母基因工程菌SMD1168-COL3a1-COL1a1的构建
抽提pPIC9K-COL3a1-COL1a1质粒并线性化,制备毕赤酵母SMD1168感受态细胞,电击转化,以G418梯度法挑选高拷贝阳性克隆,得基因重组人胶原蛋白融合肽段毕赤酵母基因工程菌SMD1168-COL3a1-COL1a1,其目标蛋白的基因序列如下:
1 CTCGAGAAAA GAGAGGCTGA AGCTGCGGGT AACACTGGTG CTCCTGGCAG CCCTGGAGTG
61 TCTGGACCAA AAGGTGATGC TGGCCAACCA GGAGAGAAGG GATCGCCTGG TGCCCAGGGC
121 CCACCAGGAG CTCCAGGCCC ACTTGGGATT GCTGGGATCA CTGGAGCACG GGGTCTTGCA
181 GGACCACCAG GCATGCCAGG TCCTAGGGGA AGCCCTGGCC CTCAGGGTGT CAAGGGTGAA
241 AGTGGGAAAC CAGGAGCTAA CGGTCTCAGT GGAGAACGTG GTCCCCCTGG ACCCCAGGGT
301 CTTCCTGGTC TGGCTGGTAC AGCTGGTGAA CCTGGAAGAG ATGGAAACCC TGGATCAGAT
361 GGTCTTCCAG GCCGAGATGG ATCTCCTGGT GGCAAGGGTG ATCGTGGTGA AAATGGCTCT
421 CCTGGTGCCC CTGGCGCTCC TGGTCATCCA GGCCCACCTG GTCCTGTCGG TCCAGCTGGA
481 AAGAGTGGTG ACAGAGGAGA AAGTGGCCCT GCTGGCCCTG CTGGTGCTCC CGGTCCTGCT
541 GGTTCCCGAG GTGCTCCTGG TCCTCAAGGC CCACGTGGTG ACAAAGGTGA AACAGGTGAA
601 CGTGGAGCTG CTGGCATCAA AGGACATCGA GGATTCCCTG GTAATCCAGG TGCCCCAGGT
661 TCTCCAGGCC CTGCTGGTCA GCAGGGTGCA ATCGGCAGTC CAGGACCTGC AGAATTCGGC
721 GCAGATGGTG TTGCTGGTCC CAAGGGTCCC GCTGGTGAAC GTGGTTCTCC TGGCCCTGCT
781 GGCCCCAAAG GATCTCCTGG TGAAGCTGGT CGTCCCGGTG AAGCTGGTCT GCCTGGTGCC
841 AAGGGTCTGA CTGGAAGCCC TGGCAGCCCT GGTCCTGATG GCAAAACTGG CCCCCCTGGT
901 CCCGCCGGTC AAGATGGTCG CCCCGGACCC CCAGGCCCAC CTGGTGCCCG TGGTCAGGCT
961 GGTGTGATGG GATTCCCTGG ACCTAAAGGT GCTGCTGGAG AGCCCGGCAA GGCTGGAGAG
1021 CGAGGTGTTC CCGGACCCCC TGGCGCTGTC GGTCCTGCTG GCAAAGATGG AGAGGCTGGA
1081 GCTCAGGGAC CCCCTGGCCC TGCTGGTCCC GCTGGCGAGA GAGGTGAACA AGGCCCTGCT
1141 GGCTCCCCCG GATTCCAGGG TCTCCCTGGT CCTGCTGGTC CTCCAGGTGA AGCAGGCAAA
1201 CCTGGTGAAC AGGGTGTTCC TGGAGACCTT GGCGCCCCTG GCCCCTCTGG AGCAAGAGGC
1261 GAGAGAGGTT TCCCTGGCGA GCGTGGTGTG CAAGGTCCCC CTGGTCCTGC TGGTCCCCGA
1321 GGGGCCAACG GTGCTCCCGG CAACGATGGT GCTAAGGGTG ATGCTGGTGC CCCTGGAGCT
1381 CCCGGTAGCC AGGGCGCCCC TGGCCTTCAG GGAATGCCTG GTGAACGTGG TGCAGCTGGT
1441 CTTCCAGGGC CTAAGGGTGA CAGAGGTGAT GCTGGTCCCA AAGGTGCTGA TGGCTCTCCT
1501 GGCAAAGATG GCGTCCGTGG TCTGACTGGC CCCATTGGTC CTCCTGGCCC TGCTGGTGCC
1561 CCTGGTGACA AGGGTGAAAG TGGTCCCAGC GGCCCTGCTG GTCCCACTGG AGCTCGTGGT
1621 GCCCCCGGAG ACCGTGGTGA GCCTGGTCCC CCCGGCCCTG CTGGCTTTGC TGGCCCCCCT
1681 GGTGCTGACG GCCAACCTGG TGCTAAAGGC GAACCTGGTG ATGCTGGTGC TAAAGGCGAT
1741 GCTGGTCCCC CTGGCCCTGC CGGACCCGCT GGACCCCCTG GCCCCATTGG TAATGTTGGT
1801 GCTCCTGGAG CCAAAGGTGC TCGCGGCAGC GCTGGTCCCC CTGGTGCTAC TGGTTTCCCT
1861 GGTGCTGCTG GCCGAGTCGG TCCTCCTGGC CCCTCTGGAA ATGCTGGACC CCCTGGCCCT
1921 CCTGGTCCTG CTGGCAAAGA AGGCGGCAAA GGTCCCCGTG GTGAGACTGG CCCTGCTGGA
1981 CGTCCTGGTG AAGTTGGTCC CCCTGGTCCC CCTGGCCCTG CTGGCGAGAA AGGATCCCCT
2041 GGTGCTGATG GTCCTGCTGG TGCTCCTGGT ACTCCCGGGC CTCAAGGTAT TGCTGGACAG
2101 CGTGGTGTGG TCGGCCTGCC TGGTCAGAGA GGAGAGAGAG GCTTCCCTGG TCTTCCTGGC
2161 CCCTCTGGTG AACCTGGCAA ACAAGGTCCC TCTGGAGCAA GTGGTGAACG TGGTCCCCCT
2221 GGTCCCATGG GCCCCCCTGG ATTGGCTGGA CCCCCTGGTG AATCTGGACG TGAGGGGGCT
2281 CCTGGTGCCG AAGGTTCCCC TGGACGAGAC GGTTCTCCTG GCGCCAAGGG TGACCGTGGT
2341 GAGACCGGCC CCGCTGGACC CCCTGGTGCT CCTGGTGCTC CTGGTGCCCC TGGCCCCGTT
2401 GGCCCTGCTG GCAAGAGTGG TGATCGTGGT GAGACTGGTC CTGCTGGTCC CGCCGGTCCT
2461 GTCGGCCCTG TTGGCGCCCG TGGCCCCGCC GGACCCCAAG GCCCCCGTGG TGACAAGGGT
2521 GAGACAGGCG AACAGGGCGA CTAAGAATTC
4、制备基因重组人胶原蛋白融合肽段
(1)发酵
以步骤(3)构建的基因重组人胶原蛋白融合肽段毕赤酵母基因工程菌SMD1168-COL3a1-COL1a1为原始菌种,涂布YPD平板获得单菌落,扩繁单菌落分装为甘油菌种保存;每次取甘油菌种,接种于5mL种子YPD培养基中,30℃振荡培养20~24小时,转接于400ml BMGY培养基中,30℃振荡培养至OD600达10~12,作为一级种子;将一级种子接入装有4L FBS培养基的5L发酵罐中,30℃、pH值为5.0、DO 20%~30%,培养16-20小时,作为二级种子;将二级种子转接入装有30L FBS培养基的50L发酵罐中;生长培养18~20小时,30℃、pH值为5.0、DO 20%~30%,补加甘油至发酵液内的菌体湿重达到150mg,饥饿1-2小时;驯化培养9小时,每三小时为一个驯化时间段,30℃、pH值为5.0、DO 20%~30%,第一段每5分钟补加甲醇1mL,第二段每5分钟补加甲醇2mL,第三段每5分钟补加甲醇3mL;诱导培养72小时,30℃、pH值为5.0、DO 20%~30%,视DO值提高甲醇流加速率并维持补料速度在5-10.9ml/L/h进行发酵,至DO值浮动缩小至5%~8%,发酵结束。
(2)纯化
取发酵液离心除去酵母细胞,得发酵上清液;用截留量为20000的聚砜中空纤维超滤浓缩发酵上清液至原发酵上清液体积的20%,得超滤浓缩液;用凝胶过滤法脱除超滤浓缩液中的无机盐,得脱盐液;用DAEA阴离子交换柱处理脱盐液,以0.02mol/L NaCl水溶液为平衡液,样品溶液PH为8-9,洗脱液PH5-6,NaCl 0.5mol/L;分段收集洗脱液,电泳,色谱法检测纯度,得纯度为85%以上的溶液;用截留量为20000的聚砜中空纤维超滤浓缩至质量浓度为1%~5%。
(3)制备基因重组人胶原蛋白融合肽段
冷冻干燥,得基因重组人胶原蛋白融合肽段。
基因重组人胶原蛋白融合肽段在制备化妆品中的用途。其使用方法如下:
基因重组人胶原蛋白融合肽段在制备化妆品中的用途,所制备的化妆品由下述质量配比的原料制成:
所制备的化妆品由下述最佳质量配比的原料制成:
采用本发明方法所制备的基因重组人胶原蛋白融合肽段,与动物来源的胶原蛋白相比较,其生物相容性和生物安全性均佳。基因重组人胶原蛋白融合肽段经致敏性试验,所试验的基因重组人胶原蛋白融合肽段无致敏性。以基因重组人胶原蛋白融合肽段为原料制备的化妆品,在未开封的情况下存放于4度冰箱,半年内不变质,开封后每天取适量使用,一周内不变质,具有良好的保湿作用。基因重组人胶原蛋白融合肽段可作为美容化妆品使用,根据需要配制成不同浓度的化妆品。
具体实施方式
下面结合附图和实施例对本发明进一步详细说明,但本发明不限于这些实施例。
实施例1
基因重组人胶原蛋白融合肽段的全长为839个氨基酸,其氮端为III型人胶原蛋白908-1137位肽段共229个氨基酸,碳端为I型人胶原蛋白497-1104位肽段共608个氨基酸,两肽段之间用谷氨酸和苯丙氨酸链接;该基因重组人胶原蛋白融合肽段的氨基酸序列如下:
AGNTGAPGSP GVSGPKGDAG QPGEKGSPGA QGPPGAPGPL GIAGITGARG
LAGPPGMPGP RGSPGPQGVK GESGKPGANG LSGERGPPGP QGLPGLAGTA 100
GEPGRDGNPG SDGLPGRDGS PGGKGDRGEN GSPGAPGAPG HPGPPGPVGP
AGKSGDRGES GPAGPAGAPG PAGSRGAPGP QGPRGDKGET GERGAAGIKG 200
HRGFPGNPGA PGSPGPAGQQ GAIGSPGPAE FGADGVAGPK GPAGERGSPG
PAGPKGSPGE AGRPGEAGLP GAKGLTGSPG SPGPDGKTGP PGPAGQDGRP 300
GPPGPPGARG QAGVMGFPGP KGAAGEPGKA GERGVPGPPG AVGPAGKDGE 350
AGAQGPPGPA GPAGERGEQG PAGSPGFQGL PGPAGPPGEA GKPGEQGVPG 400
DLGAPGPSGA RGERGFPGER GVQGPPGPAG PRGANGAPGN DGAKGDAGAP
GAPGSQGAPG LQGMPGERGA AGLPGPKGDR GDAGPKGADG SPGKDGVRGL 500
TGPIGPPGPA GAPGDKGESG PSGPAGPTGA RGAPGDRGEP GPPGPAGFAG
PPGADGQPGA KGEPGDAGAK GDAGPPGPAG PAGPPGPIGN VGAPGAKGAR 600
GSAGPPGATG FPGAAGRVGP PGPSGNAGPP GPPGPAGKEG GKGPRGETGP
AGRPGEVGPP GPPGPAGEKG SPGADGPAGA PGTPGPQGIA GQRGVVGLPG 700
QRGERGFPGL PGPSGEPGKQ GPSGASGERG PPGPMGPPGL AGPPGESGRE
GAPGAEGSPG RDGSPGAKGD RGETGPAGPP GAPGAPGAPG PVGPAGKSGD 800
RGETGPAGPA GPVGPVGARG PAGPQGPRGD KGETGEQGD- 839
上述的基因重组人胶原蛋白融合肽段的制备方法如下:
1、克隆I型(COL1)和III型(COL3)人胶原蛋白基因的cDNA
1.1RNA提取
(1)取新鲜人胎盘在液氮中研磨,将研碎的组织放入盛1mL Trizol的离心管中,上下振荡5min,将样品在15-30℃放置15min,使核酸蛋白复合物分离。
(2)在高速冷冻离心机中4℃10,000×g离心10min,吸取上清液。
(3)加0.2mL氯仿,盖好管盖,剧烈震荡15s,室温放置3min。
(4)4℃10,000×g离心15min。样品分为黄色有机相、中间层和无色水相三层,RNA主要在水相中,将水相转移到新管中。
(5)加入0.5mL异丙醇,混匀,室温放置10min。
(6)4℃10,000×g离心10min,弃上清,离心后在管侧和管底可见RNA胶状沉淀;
(7)加1mL体积浓度为75%乙醇(用0.1%DEPC处理水配制)洗涤沉淀。
(8)4℃7500×g离心5min,弃上清液。
(9)室温放置晾干,按RNA提取量的多少,加20-100μL无RNase的DEPC处理水,室温溶解后,-70℃保存。
(10)RNA提取完成后,于1%的琼脂糖凝胶上进行检测。
1.2cDNA的反转录
以上述所得总RNA为模板,按下述方法进行反转录,得cDNA。
取溶解于DEPC水中的总RNA 5μL,0.2μg/μL Random hexamers primer 1μL,DEPC水6μL,70℃,孵育5min,置冰上冷却后加入下列试剂:5×Buffer 4μL,10mmol/L dNTPMixture 2μL,20u/μL RNA inhibitor 1μL,25℃,孵育5min,200u/μL反转录酶1μL,总体积20μL。在PTC-100 Thermal Cycler(BIO-RAD)PCR仪中,25℃,10min,42℃反应,60min,70℃,10min终止反应,冰上冷却。
1.3引物的设计
根据GenBank已发表的人胶原蛋白I型和III型基因序列,按照引物设计原则,利用Primer Premier 5.0和DNAMAN软件,设计COL1和COL3基因PCR扩增引物。引物均由上海生物工程技术服务有限公司合成。其序列见表1。
表1COL1和COL3的PCR引物参数
1.4克隆COL1和COL3的基因
1.4.1COL1和COL3的PCR扩增
25μL反应体系中含有:13.3μL灭菌的二蒸水、2.5μL 10×PCR buffer,3.5μL2m mol/L dNTP Mix,2.5μL Mg2+,1μL 10μmol/L Primer I,1μL 10μmol/L PrimerII,0.2μL 0.5U/μL Taq酶,1μL cDNA模板。反应条件为:95℃5min,94℃30s,61℃30s,72℃2.5min,30个循环,72℃10min,4℃10min。利用PTC-100 ThermalCycler(BIO-RAD)PCR仪进行扩增。
COL1和COL3的PCR扩增结果见图1。
1.4.2COL1和COL3的扩增片段的分离和克隆
利用琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒,按产品说明书,从普通的1.5%琼脂糖凝胶上回收特异性条带,回收产物连接于pGM-T载体,转化感受态E.coli DH 5α,涂布平板,经蓝白斑筛选,挑选阳性克隆接种于10mL LB培养基中,37℃振荡过夜培养。用质粒微量提取试剂盒抽提质粒DNA(碱裂解法),得pGM-T-COL1和pGM-T-COL3两个重组质粒。两个重组质粒的PCR扩增鉴定结果见图2。
1.4.3重组质粒pGM-T-COL1和pGM-T-COL3的测序鉴定
委托测序公司对两个重组质粒进行基因测序,测序结果与GenBank中的已知人I型和III型胶原蛋白序列作同源性比较,同源性均为100%。测序结果见图3和图4。
2、毕赤酵母重组表达载体pPIC9K-COL3a1-COL1a1的构建
2.1重组表达载体的构建策略路线图见图5
2.2引物设计
根据引物设计的策略,利用DNAMAN和Primer 5.0软件设计COL1a1和COL3a1基因,同时为了后期蛋白序列的切割,COL3a1上游引物设计两条,引入pPIC9K自身信号肽序列GAGAAAAGAGAGGCTGAAGCT,进行两次扩增,为了证明基因插入的正确性,设计了特异性鉴定引物,9k-COL1。各序列见表2。
表2COL1a1和COL3a1的PCR引物参数
2.3PCR扩增COL1a1和COL3a1序列
分别以pGM-T-COL1和pGM-T-COL3质粒为模板,进行PCR扩增:
反应条件分别为:
COL1a1和COL3a1序列的PCR产物电泳结果见图6。
由图可见,分别在1843bp和722bp处有一条特异DNA条带,与预期大小一致。利用琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒,按产品说明书,从普通的1.5%琼脂糖凝胶上回收特异性条带,得COL1a1和COL3a1序列,-20℃保存待用。
2.4COL1a1和COL3a1序列的酶切及回收
上述试剂加好后,混匀,37℃水浴消化1.5h-2.0h,终止反应前先取出5μL以0.7%琼脂糖凝胶电泳检测是否酶切完全。利用琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒,按产品说明书,从普通的1.5%琼脂糖凝胶上回收特异性条带,-20℃保存待用。
2.5质粒pPIC9K的转化及提取
(1)取冷冻的DH5α感受态细胞一管,放于冰上解冻,立即加入质粒pPIC9K(≤50ng),手指轻弹使其混合,在冰中放置30分钟。
(2)42℃水浴热激恰好90秒,不要摇动试管。
(3)快速将管转移到冰浴中,使细胞冷却1-2分钟。
(4)加入800μL无抗生素的LB液体培养基,混匀,37℃温育50分钟。
(5)吸取100-200μL菌液,涂于含有卡那霉素(50ug/mL)的固体LB板上。
(6)将平板置于室温待液体被吸收后,倒置于37℃培养箱中,培养12-18小时。
(7)挑选单菌落接种于含有卡那霉素(50ug/mL)的液体LB培养基中,摇床培养,37℃过夜。
(8)利用质粒提取试剂盒操作说明提取pPIC9K质粒。
2.6pPIC9K质粒的Xho I和EcoR I双酶切及回收
利用琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒,按产品说明书,从普通的1.5%琼脂糖凝胶上回收特异性条带,-20℃保存待用。
2.7pPIC9K与COL3a1的连接
上述连接体系充分混匀后,于16℃连接2小时。得pPIC9K-COL3a1,其转化和提取方法同上述2.5项所述。
pPIC9K-co3a1质粒的酶切鉴定
以上酶切体系在37℃水浴中反应2小时后,进行琼脂糖凝胶电泳检测,确定连接正确的质粒pPIC9K-co3a1。
2.8pPIC9K-co3a1质粒的EcoR I单酶切
对双酶切鉴定为连接正解的质粒进行大量提取,并进行EcoR I单酶切。
上述试剂加好后,混匀,37℃水浴消化2h,终止反应前先取出5μL以0.7%琼脂糖凝胶电泳检测是否酶切完全,之后进行单酶切后的pPIC9K-co3a1的回收。
2.9pPIC9K-co3a1的去磷酸反应
为了防止pPIC9K-co3a1质粒单酶切后的自连,必须对其进行脱磷反应。
(1)在微量离心管中配制下列反应液,全量定容到50μL。
(2)37℃或50℃反应30分钟。
(3)苯酚/氯仿/异戊醇(25∶24∶1)抽提2次。
(4)氯仿/异戊醇(24∶1)抽提1次。
(5)添加5μl的3M NaOAC。
(6)添加125μl的(2.5倍量)冷乙醇,在-20℃下保冷30~60分钟。
(7)离心分离回收沉淀,用200μl的70%冷乙醇洗净后,减压干燥。
(8)用20μl以下的TE Buffer溶解沉淀。
2.10pPIC9K-co3a1与COL1a1的连接
上述连接体系充分混匀后,于16℃连接2小时。得pPIC9K-COL3a1-COL1a1,其转化和提取方法同上述2.5项所述。
2.11pPIC9K-COL3a1-COL1a1质粒的鉴定
2.11.1pPIC9K-COL3a1-COL1a1质粒的PCR鉴定
鉴定pPIC9K-COL3a1-COL1a1质粒构建是否正确,设计上游引物源自pPIC9K载体信号肽部分5’-GCTGAAGCTGTCATCGGTTACTCA-3’,下游引物源自COLla1序列中的一段5’-TCGCTCTCCAGCCTTGCCG-3’,如果连接正确,即可扩增出一条长约1155bp的片段。其鉴定结果见图7。
从图7可见,1、3、5、6、8、11号质粒在1155bp左右扩增出一条特异DNA条带,达到预期目的。
2.11.2pPIC9K-COL3a1-COL1a1质粒的酶切鉴定
根据pPIC9K-COL3a1-COL1a1重组质粒的酶切位点分析,对初步筛选出的重组菌落经小量提取质粒DNA后,选用EcoR I、BamH I进行酶切鉴定,如果连接正确,用EcoR I即可切出一条长度约1800bp左右的片段,而用BamH I即可切出一条2000bp左右的片段。
以上两个酶切体系在37℃水浴中反应2小时后,进行琼脂糖凝胶电泳检测,其结果见图8。由图8可见连接正确。
2.11.3pPIC9K-COL3a1-COL1a1质粒的目标基因测序鉴定
经PCR和酶切鉴定后,对确定连接正确的pPIC9K-COL3a1-COL1a1重组质粒送往上海生工生物技术有限公司进行序列测定。测序结果见图9、10。
测序结果显示,COL3a1-COL1a1基因序列插入正确,未出现移码突变。
3、基因重组人胶原蛋白融合肽段比赤酵母基因工程菌(SMD1168-COL3a1-COL1a1)的构建:
3.1pPIC9K-COL3a1-COL1a1质粒的线性化
上述试剂加好后,混匀,37℃水浴消化5h,终止反应前先取出5μL以0.7%琼脂糖凝胶电泳检测是否酶切完全。之后,用质粒提取试剂盒对线性化质粒进行质粒大提。
3.2毕赤酵母感受态细胞的制备
(1)挑取酵母单菌落,接种至含有5mL YPD培养基试管中,30℃、250-300rpm培养过夜。
(2)取50μL的培养物接种至含有50mL新鲜培养基的300mL三角瓶中,28-30℃、250-300rpm培养过夜,至OD600值达到1.1-1.3。
(3)将细胞培养物于4℃,1500g离心5min,用50mL的冰预冷的无菌水将菌体沉淀重悬。
(4)按步骤(3)离心,用25mL的冰预冷的无菌水将菌体沉淀重悬。
(5)按步骤(3)离心,用20mL的冰预冷的1mol/L的山梨醇溶液将菌体沉淀重悬。
(6)按步骤(3)离心,用0.3mL的冰预冷的1mol/L的山梨醇溶液将菌体沉淀重悬,其终体积约为0.5mL。
(7)分装为80μL一份,-70℃保存。
3.3毕赤酵母的电转化
(1)将浸泡在70%乙醇中的电转化杯取出,用无水乙醇冲洗三遍,于灭过菌的超净台中晾干残余乙醇。
(2)将电转化杯转至冰中预冷10分钟。
(3)将5-20μg的线性化DNA溶解在5-10μL灭菌双蒸水中,毕赤酵母感受态细胞混匀,转至0.2cm冰预冷的电转化杯中。
(4)电击,电压1.5kV;电容25μF;电阻200Ω;电击时间为4-10msec。
(5)电击完毕后,加入1mL冰预冷的1mol/L的山梨醇溶液将菌体混匀,转至1.5mL离心管中。
(6)将菌体悬液涂布于MD平板上,每100μL-200μL涂布一块平板。
3.4多拷贝插入SMD1168-COL3a1-COL1a1重组子的筛选
(1)在生长有转化子的MD平板表面加入2mL灭菌双蒸水,然后用无菌三角涂布器在His+转化子表面轻轻涂刮,并转移到50mL离心管中。
(2)加入20mL灭菌双蒸水稀释,混匀后测定其OD600值(1OD600=5×107cells/mL)。
(3)取105个细胞涂布于含有0.5mg/mL G418的YPD平板上,倒置,30℃培养72h-96h。
(4)在无菌96孔板中每孔加入200μL YPD液体培养基。
(5)用接菌牙签往步骤(4)分别接入在含有0.5mg/mL G418的YPD平板上获得的转化子,混匀,于30℃培养48h。
(6)48h后,取一块新的无菌96孔板,每孔加入190μL YPD液体培养基。在相应孔中加入10μL第一块96孔板所得的培养物,于30℃培养24h。
(7)24h后,再取一块新的无菌96孔板,每孔加入190μL YPD液体培养基。在相应孔中加入10μL第二块96孔板所得的培养物,于30℃培养24h。
(8)24h后,分别从第三块96孔板中取出1μL分别点在含有1.0mg/mL和4.0mg/mLG418的YPD平板上,于30℃继续培养96h-120h。酵母SMD1168转化子若能在含高浓度G418的培养基上生长,说明该转化子含有多拷贝的目的基因,即有多个pPIC9K-COL3a1-COL1a1片断转化进了酵母SMD1168并同源重组插入了酵母SMD1168的染色体上。经过这一步筛选得到的高拷贝的重组酵母SMD1168-COL3a1-COL1a1将更有可能实现目的蛋白的高效表达。
3.4SMD1168-COL3a1-COL1a1重组子的PCR鉴定
挑取待测酵母转化子,按下述方法进行PCR模板的预制。
(1)挑取高拷贝转化子的单菌落,置于装有200uL去离子水的1.5mL离心管中,2000g离心5min,弃上清。
(2)将装有菌体的离心管置于微波炉加热2min。
(3)转移到-80℃冰冻5min。
(4)再置于微波炉中档加热2min。
(5)重复在-80℃冰冻Smin和微波炉中档加热2min。
(6)加入30gL去离子水,于10000g离心1min,吸取上清作为PCR反应的模板。
(7)使用9k-col1鉴定引物,进行PCR扩增。
(8)PCR结束后,进行琼脂糖电泳检测,在1155bp左右出现条带的,可以初步确定为阳性转化子。其结果见图11。
经过G418不同浓度的反复筛选,最终在高浓度4mg/mL条件下筛选到9个高拷贝重组子,并对其进行菌落PCR鉴定,结果显示,9个重组子都能扩增出约1155bp左右的片段,说明重组子筛选结果正确。
3.5重组酵母SMD1168-COL3a1-COL1a1的诱导表达
(1)分别挑选单菌落,置于装有30mL BMGY培养基的150mL三角瓶中,于28-30℃、250-300rpm培养至OD600为2-6。
(2)室温下1500-3000g离心5min,收集菌体,用BMMY重悬菌体,使OD600为1.0左右。
(3)将所得的菌液置于500mL的三角瓶中,用四层纱布封口,于28-30℃、250-300rpm的摇床上继续生长。
(4)每24h向培养基中添加无水甲醇至终体积浓度为1%。
(5)按时间点分别取菌液样品,取样量为10mL,置于50mL离心管中,常温,12000rpm离心5min,收集上清,分析目的蛋白的表达量和菌液最佳收获时间。时间点一般取:12h、24h、36h、48h、60h和72h。
(6)待检测样品于-70℃保存备用。
3.6基因重组人蛋白质融合肽段的SDS-PAGE分析
(1)玻璃板清洗、晾干后安装。
(2)灌注分离胶,在一干净小烧杯中依次加入灭菌水1.1mL,1.5mol/L Tris·Cl(pH8.8)1.3mL,10%SDS 50μL,10%过硫酸铵50μL,30%丙烯酰胺溶液2.5mL,TEMED 2μL,混匀后立即灌注于玻璃板的间隙中,留出灌注浓缩胶所需的空间(梳子的齿长再加1cm),小心地在丙烯酰胺溶液上覆盖一层灭菌水。
(3)分离胶聚合完全后(30min-60min),倾出覆盖液体,用滤纸吸净残留液体。
(4)灌注5%的浓缩胶,在一干净小烧杯中依次加入灭菌水1.4mL,1.0mol/LTris·Cl(pH6.8)250μL,10%SDS 20μL,10%过硫酸铵20μL,30%丙烯酰胺溶液330μL,TEMED 2μL,混匀后立即在已聚合的分离胶上灌注浓缩胶,小心插入梳子,避免产生气泡。再加入浓缩胶以充满梳子之间的空隙,将凝胶垂直放置于室温下。
(5)样品的处理,取蛋白样品加入等体积的含DTT的2×SDS凝胶加样缓冲液,在100℃加热10min以使蛋白质变性。
(6)浓缩胶完全聚合后(30min),小心移出梳子,立即用灭菌水洗涤加样槽以除去未聚合的丙烯酰胺。必要时,用注射器针头把浓缩胶上加样槽之间的齿弄直。把凝胶固定于电泳装置上,槽内外各加入Tris-甘氨酸电泳缓冲液。
(7)按预定顺序加样,每样品加15μL-20μL。
(8)将电泳装置与电源相连,凝胶上所加电压为100V。当染料前沿进入分离胶后,把电压提高到150V,继续电泳直到嗅酚蓝到达分离胶底部,然后关闭电源。
(9)从电泳装置上卸下玻璃板,取出凝胶。
(10)用至少5倍体积的染色液浸泡凝胶,平缓摇动于室温染色1小时以上。
(11)脱色,把胶用去离子水冲洗3遍,然后置微波炉上加热5分钟。
(12)取出凝胶,使用凝胶成像仪进行图像捕捉和分析。结果见图12:
4、制备基因重组人胶原蛋白融合肽段
4.1发酵
以基因重组人胶原蛋白融合肽段毕赤酵母基因工程菌SMD1168-COL3a1-COL1a1为原始菌种,涂布YPD平板获得单菌落,扩繁单菌落分装为甘油菌种保存;每次取甘油菌种,接种于5mL种子YPD培养基中,30℃振荡培养20~24小时,转接于400ml BMGY培养基中,30℃振荡培养至ODG00达10~12,作为一级种子;将一级种子接入装有4L FBS培养基的5L发酵罐中,30℃、pH值为5.0、DO 20%~30%,培养16-20小时,作为二级种子;将二级种子转接入装有30L FBS培养基的50L发酵罐中;生长培养18~20小时,30℃、pH值为5.0、DO 20%~30%,补加甘油至发酵液内的菌体湿重达到150mg,饥饿1-2小时;驯化培养9小时,每三小时为一个驯化时间段,30℃、pH值为5.0、DO 20%~30%,第一段每5分钟补加甲醇1mL,第二段每5分钟补加甲醇2mL,第三段每5分钟补加甲醇3mL;诱导培养72小时,30℃、pH值为5.0、DO 20%~30%,视DO值提高甲醇流加速率并维持补料速度在5-10.9ml/L/h进行发酵,至DO值浮动缩小至5%~8%,发酵结束。
4.2纯化
取发酵液离心除去酵母细胞,得发酵上清液;用截留量为20000的聚砜中空纤维超滤浓缩发酵上清液至原发酵上清液体积的20%,得超滤浓缩液;用凝胶过滤法脱除超滤浓缩液中的无机盐,得脱盐液;用DAEA阴离子交换柱处理脱盐液,以0.02mol/L NaCl水溶液为平衡液,样品溶液PH为8-9,洗脱液PH5-6,NaCl 0.5mol/L;分段收集洗脱液,电泳,色谱法检测纯度,得纯度为85%以上的溶液;用截留量为20000的聚砜中空纤维超滤浓缩至质量浓度为1%~5%。电泳检测结果见图13。
4.3制备基因重组人胶原蛋白融合肽段
冷冻干燥,得基因重组人胶原蛋白融合肽段。
实施例2
采用本发明实施例1制备的基因重组人胶原蛋白融合肽段用于制备化妆品,该化妆品由下述质量配比的原料制成:
其制备方法如下:
取干粉状基因重组人胶原蛋白融合肽段,透明质酸,甘油,溶解于去离子水中,调PH值至6.5~7.5,在无菌环境下用0.22um滤膜过滤,得无色透明的液体,以无菌操作法封装于5ml的玻璃瓶或塑料瓶中,4℃冰箱储存。
实施例3
采用本发明实施例1制备的基因重组人胶原蛋白融合肽段用于制备化妆品,该化妆品由下述质量配比的原料制成:
其制备方法与实施例2相同。
实施例4
采用本发明实施例1制备的基因重组人胶原蛋白融合肽段用于制备化妆品,该化妆品由下述质量配比的原料制成:
其制备方法与实施例2相同。
为了验证本发明的有益效果,发明人采用本发明实施例1制备的基因重组人胶原蛋白融合肽段进行了致敏性试验,试验情况如下:
试样:质量分数为1%基因重组人胶原蛋白水溶液。
阳性对照:质量分数为0.1甲醛水溶液。
阴性对照:生理盐水。
实验动物:自色豚鼠30只,雌雄各半,体重260~300g,试验前24小时用电动蒯须剃须刀将动物脊柱两侧击毛,每侧的去毛面积为3×3cm2。
1、试验方法
动物分组:将豚鼠按性别、体重随机分成3组.每组10只.第一组为试验组,第二组为阳性对照组,第三组为阴性对照组。
致敏接触:取1平方厘米纱布块,在试样中侵泡5分钟,作为斑贴物,将其半封闭固定在动物背侧去毛区,持续六小时,去掉斑贴物,观察记录各组动物激发部位的皮肤有无红斑及水肿等现象,每天一次,连续六天,按标准进行评分,并算出致敏率。
结果判断与评价:试验结果以动物皮肤反应强度和致敏阳性率表示。皮肤反应强度评分按下列两种标准进行。
(1)红斑形成很淡的红斑(勉强可见)为1分;轻度边界清晰的红斑为2分;中度红斑(鲜红一深红)为3分;重度红斑(深红一紫红,且有焦痂形成)为4分。
(2)水肿形成很轻微的水肿(几乎观察不到)为1分;轻度水肿(边缘明显高出皮面)为2分;中度水肿(肿胀高出皮面约1mm)为3分;重度水肿(肿胀高出皮面1mm以上,范围超过斑贴区)为4分。
总积分等于红斑分与水肿分之和,并依此确定动物有无过敏反应。致敏阳性率是阳性动物数与合计动物数比值的百分率,根据此百分率对化学物质致敏强度进行分级。致敏强度分级见表3。
表3致敏强度分级
致敏率(%) |
等级 |
致敏强度 |
0-8 |
I |
弱致敏性 |
9-28 |
II |
轻致敏性 |
28-64 |
III |
中致敏性 |
64-80 |
IV |
强致敏性 |
81-100 |
V |
极强致敏性 |
试验结果见表4。
表4致敏性s试验结果表
注:1/3=1分/3只,即得1分者有3只
从表4可以看出,试验组未出现1例致敏反应的动物,说明所试验的基因重组人胶原蛋白融合肽段无致敏性,至于阴性组有一例出现弱致敏反应,可能因为其它原因造成,而非生理盐水有致敏性。