CN101985631B - 一种棒状杆菌启动子探测载体及其构建方法和应用 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种棒状杆菌启动子探测载体及其构建方法和应用,属于基因工程技术领域。本发明的棒状杆菌启动子探测载体pDXW-11,可用于筛选能在棒状杆菌中高效表达的启动子,通过质粒的探测,筛选到一种棒状杆菌强启动子tac-M,在棒状杆菌中能高效表达,尤其适用于棒状杆菌代谢产物的研究和生产。
Description
技术领域
本发明涉及一种启动子探测载体及其构建方法和应用,特别是一种棒状杆菌启动子探测载体以及应用该载体筛选到的强启动子,属于微生物基因工程领域。
背景技术
棒状杆菌是一类革兰氏阳性菌,属于具有中度到高GC含量的放线菌。自人们首次分离谷氨酸棒状杆菌生产L-谷氨酸以来(Kinoshita等,1957年),棒状杆菌的三个主要代表:谷氨酸棒状杆菌,黄色短杆菌,和乳糖发酵短杆菌,已经被广泛用于生产氨基酸。这里特别指出,通过DNA-DNA杂交实验发现,这三个不同物种之间只有很小的差别(Liebl等,1991)。
由于已累计了大量的关于谷氨酸棒状杆菌生理学,生物化学和遗传学知识(Eggeling andBott,2005;Burkovski,2008),代谢工程已经取代经典的随机突变,成为棒状杆菌菌种改良的主要策略。应用表达载体对氨基酸生物合成途径中的限速酶编码基因的过表达,是代谢工程最常用的策略之一。目前几乎所有的现存棒状杆菌表达载体都使用大肠杆菌启动子如lacUV5、trp、tac、λPRPL和araBAD启动子来表达外源基因(Srivastava and Deb,2005);然而,在棒状杆菌中,这些启动子的活性较弱,外源基因在他们的控制下的表达水平通常不高,这会限制氨基酸的产量。因此,应用探测载体寻找用于棒状杆菌代谢工程改造的强启动子,具有重要的意义。
在本发明中,我们首先构建了一个新的棒状杆菌启动子探测载体pDXW-11,应用该载体探测了四种已知的启动子PilvA,Pkan,PF104,tac以及两种我们设计tac衍生物,即tac-M1,tac-M启动子在黄色短杆菌中的活性。我们发现tac-M启动子在黄色短杆菌中能高水平表达报告基因cat编码的氯霉素酰基转移酶CAT。tac-M启动子是一个适用于棒状杆菌代谢工程研究的强启动子,它的发现具有如下的重要意义:目前棒状杆菌中存在的使用tac启动子控制外源基因表达的弱表达载体,可以通过定点突变技术,转变成使用tac-M启动子的强表达载体。
发明内容
本发明提供了一种棒状杆菌启动子探测载体及其构建方案,通过此探测载体筛选到一个强启动子。
一种本发明所要解决的技术问题是提供一种棒状杆菌启动子探测载体pDXW-11。
本发明所述的探测载体包括筛选标记、复制子片段及多克隆位点,其特征在于含有用于检测外源DNA片段启动子活性的氯霉素酰基转移酶基因(cat);用于控制报告基因上游启动子转录通读的rrnBT1T2终止子序列。
探测载体pDXW-11含有使质粒能在棒状杆菌宿主中复制并稳定存在的rep片段,从4786位到2010位。
探测载体pDXW-11含有用于棒状杆菌转化子选择的抗性标记卡那霉素标记抗性基因kan,从5789位到6604位。
探测载体pDXW-11含有用于检测外源DNA片段启动子活性报告基因cat,从823位到164位。
探测载体pDXW-11含有用于控制报告基因上游启动子转录通读的rrnBT1T2终止子序列,其中rrnBT1从1121位到1080位,rrnBT2从947位到940位。
本发明提供的表达载体pDXW-11,{Escherichia coli DH5α(pDXW-11)}已保藏于中国典型培养物保藏中心,简称CCTCC,保藏编号CCTCC NO:M 2010006保藏日期:2010-1-13。
本发明所要解决的另一个技术问题是提供表达载体pDXW-11的构建方法。
为解决上述问题,所采用的技术方案是:
第一步:用限制酶XbaI和BglI双酶切载体pET28a,去除含lacI基因及T7启动子的DNA片段,将大片段自身环化,构建成的重组质粒命名为pDXW-1;
第二步:以质粒大肠杆菌-棒状杆菌穿梭质粒pC2为模板,rep-F和rep-R为引物,通过PCR扩增2686bp的棒状杆菌复制子片段rep,PCR产物用SmaI酶切,并连接到用BstZ17I酶切,且用CIAP去磷酸化后的pDXW-1上,构建的穿梭载体命名为为pDXW-2;
第三步:以含有cat基因的载体为模板,cat-F和cat-R为引物,通过PCR扩增686bp报告基因cat的开放阅读框,在扩增产物的5′和3′末端分别引入限制酶内切酶酶切位点,PCR产物用引入的限制性内切酶双切,并连接到用同样限制性内切酶双切后的pDXW-2上,构建的重组质粒命名为pDXW-2-cat;
第四步:以含有终止子rrnBT1T2的载体为模板,rrnBT1T2-F和rrnBT1T2-R为引物,通过PCR扩增294bp的终止子rrnBT1T2,在扩增产物的5′和3′末端分别引入限制酶内切酶酶切位点,PCR产物用引入的限制性内切酶双切,并连接到同样用同样限制性内切酶双切后的pDXW-2-cat上,构建的重组质粒命名为pDXW-11。
本发明所要解决的另一个技术问题是提供一个应用棒状杆菌启动子探测载体筛选得到的强启动子tac-M,该启动子根据杂合性启动子tac进行人工改造后得到,其核苷酸序列为SEQ ID NO:2。
所述启动子通过寡核苷酸链退火法获得。
本发明的有益效果:
本发明的探测载体pDXW-11在大肠杆菌及棒状杆菌中皆能稳定存在,可用于检测DNA片段在棒状杆菌中有无启动子活性及活性的相对大小;应用本发明构建的探测载体,筛选到一种在棒状杆菌中能高效表达外源基因的强启动子tac-M,解决了目前棒状杆菌启动子普遍较弱的问题,尤其适用于棒状杆菌生产次生代谢产物的研究和生产。
附图说明
图1表达载体pDXW-11的构建。
图2表达载体pDXW-11的构建。
图3不同黄色短杆菌菌株全蛋白SDS-PAGE图。
图4不同黄色短杆菌菌株CAT活性图。
图5启动子探测载体pDXW-11的物理图谱。
具体实施方式
实施例1表达载体pDXW-11的构建
表达载体pDXW-10的构建过程如图1,2所示。
第一步,以表达载体pET28a(Novagen,USA)为基础,去除lacI基因及T7启动子,构建质粒pDXW-1(图1)。用限制酶XbaI和BglI双酶切载体pET28a,将获得的大片段纯化,用T4连接酶将大片段自身环化,构建成的重组质粒大小为3524bp,命名为pDXW-1(图1);
第二步,构建穿梭载体pDXW-2(图1).以质粒大肠杆菌-棒状杆菌穿梭质粒pC2(Goyal etal.,1996Plasmid.36:62-66)为模板,rep-F和rep-R为引物,通过PCR扩增2686bp的棒状杆菌复制子片段rep,在扩增产物的5’和3’末端引入限制酶SmaI酶切位点。PCR扩增反应体系为50μl,包括10μl5×PrimerSTAR buffer(Mg2+plus),4μl dNTP混合物(各2.5mM),1μl质粒模板pC2(100ng/μl),1μl正向引物rep-F(20μM),1μl反向引物rep-R(20μM),0.5μl PrimeSTARTM HS DNA Polymerase;反应程序:94℃预变性分钟;94℃变性30秒,60℃退火15秒,72℃延伸2分45秒,35个循环;72℃再延伸10分钟;10℃保存。PCR产物用SmaI酶切,并连接到用BstZ17I酶切,且用CIAP去磷酸化后的pDXW-1,由此产生的穿梭载体大小为6216bp,命名为为pDXW-2。
第三步,向质粒pDXW-2引入将报告基因cat,cat编码氯霉素酰基转移酶(CAT)(图2)。以质粒pDXW-10-cat(Xu et al.,2010FEMS Microbiology letters.In review)为模板,带有三个串联终止密码子和SD序列的引物cat-F和cat-R为引物,通过PCR扩增686bp报告基因cat的开放阅读框,在扩增产物的5′和3′末端分别引入限制酶NotI和XhoI酶切位点。PCR扩增反应体系为50μl,包括10μl 5×PrimerSTAR buffer(Mg2+plus),4μl dNTP混合物(各2.5mM),1μl质粒模板pDXW-10-cat(100ng/μl),1μl正向引物cat-F(20μM),1μl反向引物cat-R(20μM),0.5μl PrimeSTARTM HS DNA Polymerase;反应程序:94℃预变性分钟;94℃变性30秒,54℃退火15秒,72℃延伸45秒,35个循环;72℃再延伸10分钟;10℃保存。PCR产物用NotI和XhoI双切,并连接到同样用NotI和XhoI双切后的pDXW-2,构建的重组质粒大小为6901bp,命名为pDXW-2-cat(图2)。
第四步,为了消除报告基因上游pDXW-2自身序列对报告基因转录的干扰,在cat上游的多克隆位点前面引入转录终止子rrnBT1T2(图2)。以质粒pKK223-3(Pharmacia,Sweden)为模板,rrnBT1T2-F和rrnBT1T2-R为引物,通过PCR扩增294bp的终止子rrnBT1T2,在扩增产物的5′和3′末端分别引入限制酶NheI和BamHI酶切位点。PCR扩增反应体系为50μl,包括10μl 5×PrimerSTAR buffer(Mg2+plus),4μl dNTP混合物(各2.5mM),1μl质粒模板pKK223-3(100ng/μl),1μl正向引物rrnBT1T2-F(20μM),1μl反向引物rrnBT1T2-R(20μM),0.5μl PrimeSTARTM HS DNA Polymerase;反应程序:94℃预变性分钟;94℃变性30秒,44℃退火15秒,72℃延伸20秒,35个循环;72℃再延伸10分钟;10℃保存。PCR产物用NheI和BamHI双切,并连接到同样用NheI和BamHI双切后的pDXW-2-cat,构建的重组质粒即为最终的启动子探测载体,其大小为7163bp,命名为pDXW-11,物理图谱见图5,构建过程中使用的引物序列如下:
rep-F: agtacccgggcattgtcaacaacaag acccatca
rep-R: agtacccggggtctacgtctgatgct ttgaatcg
cat-F: aactagcggccgctaactaactaagaaaggacatgaacgatggaga
cat-R: actactcgagttacgccccgccctgccact
rrnBT1T2-F:atctagctagccgatggtagtgtggggtctc
rrnBT1T2-R:agttggatccagaaaaataaacaaaagagt
实施例2应用探测载体pDXW-11探测启动子
为了证明pDXW-11的可用性并且寻找能在棒状杆菌中高效表达的启动子,在黄色短杆菌中,我们对六个不同类型的异源启动子PilvA,Pkan,PF104,tac,,tac-M1和tac-M进行了活性检测。PilvA是谷氨酸棒杆菌染色体上苏氨酸脱氢酶基因ilvA的启动子序列;Pkan是来自转座子Tn5的启动子序列;PF104是来自谷氨酸棒杆菌噬菌体φGA1的启动子序列;tac是杂合性启动子;tac-M1和tac-M是我们自己设计的tac启动子的衍生物。
首先,设计合成启动子寡核苷酸单链序列,并且在序列中引入限制性酶切位点,应用寡核苷酸链退火法获得启动子双链DNA序列。寡核苷酸单链序列包括PilvA-F、PilvA-R,用于通过寡核苷酸链退火法获得PilvA启动子双链DNA序列;PF104-F、PF104-R,用于通过寡核苷酸链退火法获得PF104启动子双链DNA序列;Pkan-F、Pkan-R,用于通过寡核苷酸链退火法获得Pkan启动子双链DNA序列;tac-F、tac-R,用于通过寡核苷酸链退火法获得tac启动子双链DNA序列。为了能够克隆到启动子探测载体的多克隆位点,所有启动子序列的5′和3′末端都分别引入了限制性切点BamHI和HindIII。将PilvA,Pkan,PF104,tac启动子双链DNA序列用BamHI和HindIII双切,并连接到同样用BamHI和HindIII双切后的启动子探测载体pDXW-11,获得的重组质粒分别命名为pDXW-11-PilvA,pDXW-11-Pkan,pDXW-11-PF104和pDXW-11-tac。将pDXW-11-PilvA,pDXW-11-Pkan,pDXW-11-PF104和pDXW-11-tac转化黄色短杆菌B.flavumATCC14067,分别形成菌株14067/pDXW-11-PilvA,14067/pDXW-11-Pkan,14067/pDXW-11-PF104和14067/pDXW-11-tac。将1mL过夜培养的上述黄色短杆菌菌株分别接种到30mL含卡那霉素的LBG培养基中,培养物生长到在600nm光密度为1.5时,离心收获细胞并悬浮在5mL Tris-HCl缓冲液(100mM,pH7.8)中。用Constant Cell Disruption Systems(Constant Systems,Daventry,UK),在20KPSI条件下,破碎细胞,离心除去细胞碎片,粗提物用于SDS-PAGE和CAT蛋白的生物活性分析。SDS-PAGE结果显示:所有样品都没有出现与预测的分子量约为25kD特异性CAT蛋白条带(报告基因cat的编码产物)(图3),这意味着检测的启动子在黄色短杆菌中活性不是很强。为了进一步证明上述检测的启动子是否具有活性以及活性相对大小,我们应用Shaw(1975)等的方法,分别对上述4个菌株粗提物进行了CAT的生物活性检测。结果显示:14067/pDXW-11-PilvA,14067/pDXW-11-Pkan,14067/pDXW-11-PF104和14067/pDXW-11-tac样品的CAT的相对活性分别为0.086、0.785、0.128、0.467U(mg protein-1)(Fig.4)。结合SDS-PAGE图谱及CAT活性测定数值进行分析可得出结论:PilvA,Pkan,PF104,tac启动子在黄色短杆菌中都具有活性,但活性水平不高。
然后,为了发现适用于棒状杆菌代谢工程研究的强启动子,我们设计了两个tac启动子的衍生物tac-M1和tac-M。tac、tac-M1和tac-M启动子的差别仅在于其延伸的-10区序列,他们的延伸的-10区序列分别为gctcgtataa tgt、tgtgctataa tgg和tgtggtacca tgt。我们应用寡核苷酸链退火法获得tac-M1和tac-M启动子双链DNA序列,序列的5′和3′末端都分别引入了限制性切点BamHI和HindIII。寡核苷酸单链序列包括:tac-M1-F、tac-M1-R,用于通过寡核苷酸链退火法获得tac-M1启动子双链DNA序列;tac-M-F、tac-M-R,用于通过寡核苷酸链退火法获得tac-M启动子双链DNA序列。将tac-M1和tac-M启动子双链DNA序列用BamHI和HindIII双切,并连接到同样用BamHI和HindIII双切后的启动子探测载体pDXW-11,获得的重组质粒分别命名为pDXW-11-tac-M1和pDXW-11-tac-M2。将pDXW-11-tac-M1和pDXW-11-tac-M2转化黄色短杆菌B.flavumATCC14067,分别形成菌株14067/pDXW-11-tac-M1和14067/pDXW-11-tac-M。将1mL过夜培养的黄色短杆菌菌株14067/pDXW-11-tac-M1和14067/pDXW-11-tac-M分别接种到30mL含卡那霉素的LBG培养基中,培养物生长到在600nm光密度为1.5时,离心收获细胞并悬浮在5mL Tris-HCl缓冲液(100mM,pH7.8)中。用Constant Cell Disruption systems(Constant Systems,Daventry,UK),在20KPSI条件下,破碎细胞,离心除去细胞碎片,粗提物用于SDS-PAGE和CAT蛋白的生物活性分析。SDS-PAGE结果显示:14067/pDXW-11-tac-M样品显示了分子量约为25kD的CAT蛋白条带(图3),说明tac-M启动子在黄色短杆菌中能高效表达活性很强。为了进一步证明tac-M1和tac-M启动子活性相对大小,我们应用Shaw(1975)等的方法,分别对上述2个菌株粗提物进行了CAT的生物活性检测。结果显示:14067/pDXW-11-tac-M1和14067/pDXW-11-tac-M样品的CAT的相对活性分别为0.602、5.526U(mg protein-1)(图4)。结合SDS-PAGE图谱及CAT活性测定数值进行分析可得出结论:tac-M启动子在黄色短杆菌中是一个强启动子。
用于获得启动子双链DNA的寡核苷酸单链序列如下:
PilvA-F:agcggatcccaaagtaggtgcaattctaggagaagattacactagtcaaccatgagtgaaaagcttagc
PilvA-R:gctaagcttttcactcatggttgactagtgtaatcttctcctagaattgcacctactttgggatccgct
PF104-F:aataggatcccagcgtatttgaccgatccggacacctgggataatgtgtggattttgtcggaagctttaat
PF104-R:attaaagcttccgacaaaatccacacattatcccaggtgtccggatcggtcaaatacgctgggatcctatt
Pkan-F: acttggatccccggaattgccagctggggcgccctctggtaaggttgggaagccctgcaaaagcttaatg
Pkan-R: cattaagcttttgcagggcttcccaaccttaccagagggcgccccagctggcaattccggggatccaagt
tac-F: atatggatcctgagctgttgacaattaatcatcggctcgtataatgtgtggaattgtgagcggataacaattaagctttaaa
tac-R: tttaaagcttaattgttatccgctcacaattccacacattatacgagccgatgattaattgtcaacagctcaggatccatat
tac-M1-F:agctggatcctgagctgttgacaattaatcatcgtgtgctataatgggtggaattgtgagcggataacaattaagcttagct
tac-M1-R:agctaagcttaattgttatccgctcacaattccacccattatagcacacgatgattaattgtcaacagctcaggatccagct
tac-M-F: agctggatcctgagctgttgacaattaatcatcgtgtggtaccatgtgtggaattgtgagcggataacaattaagcttagct
tac-M-R: agctaagcttaattgttatccgctcacaattccacacatggtaccacacgatgattaattgtcaacagctcaggatccagct
核苷酸序列表
<110>江南大学
<120>一种棒状杆菌启动子探测载体及其构建方法和应用
<160>2
<170>PatentIn version 3.3
<210>1
<211>7163
<212>DNA
<213>pDXW-11
<400>1
atccggatat agttcctcct ttcagcaaaa aacccctcaa gacccgttta gaggccccaa 60
ggggttatgc tagttattgc tcagcggtgg cagcagccaa ctcagcttcc tttcgggctt 120
tgttagcagc cggatctcag tggtggtggt ggtggtgctc gagttacgcc ccgccctgcc 180
actcatcgca gtactgttgt aattcattaa gcattctgcc gacatggaag ccatcacaga 240
cggcatgatg aacctgaatc gccagcggca tcagcacctt gtcgccttgc gtataatatt 300
tgcccatggt gaaaacgggg gcgaagaagt tgtccatatt ggccacgttt aaatcaaaac 360
tggtgaaact cacccaggga ttggctgaga cgaaaaacat attctcaata aaccctttag 420
ggaaataggc caggttttca ccgtaacacg ccacatcttg cgaatatatg tgtagaaact 480
gccggaaatc gtcgtggtat tcactccaga gcgatgaaaa cgtttcagtt tgctcatgga 540
aaacggtgta acaagggtga acactatccc atatcaccag ctcaccgtct ttcattgcca 600
tacggaattc cggatgagca ttcatcaggc gggcaagaat gtgaataaag gccggataaa 660
acttgtgctt atttttcttt acggtcttta aaaaggccgt aatatccagc tgaacggtct 720
ggttataggt acattgagca actgactgaa atgcctcaaa atgttcttta cgatgccatt 780
gggatatatc aacggtggta tatccagtga tttttttctc catcgttcat gtcctttctt 840
agttagttag cggccgcaag cttgtcgacg gagctcgaat tcggatccag aaaaataaac 900
aaaagagttt gtagaaacgc aaaaaggcca tccgtcagga tggccttctg cttaatttga 960
tgcctggcag tttatggcgg gcgtcctgcc cgccaccctc cgggccgttg cttcgcaacg 1020
ttcaaatccg ctcccggcgg atttgtccta ctcaggagag cgttcaccga caaacaacag 1080
ataaaacgaa aggcccagtc tttcgactga gcctttcgtt ttatttgatg cctggcagtt 1140
ccctactctc gcatggggag accccacact accatcggct agccatatgg ctgccgcgcg 1200
gcaccaggcc gctgctgtga tgatgatgat gatggctgct gcccatggta tatctccttc 1260
ttaaagttaa acaaaattat ttctaggcat ggcggcccca cgggtgcgca tgatcgtgct 1320
cctgtcgttg aggacccggc taggctggcg gggttgcctt actggttagc agaatgaatc 1380
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aacatgaatg gtcttcggtt tccgtgtttc gtaaagtctg gaaacgcgga agtcagcgcc 1500
ctgcaccatt atgttccgga tctgcatcgc aggatgctgc tggctaccct gtggaacacc 1560
tacatctgta ttaacgaagc gctggcattg accctgagtg atttttctct ggtcccgccg 1620
catccatacc gccagttgtt taccctcaca acgttccagt aaccgggcat gttcatcatc 1680
agtaacccgt atcgtgagca tcctctctcg tttcatcggt atcattaccc ccatgaacag 1740
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cacaaaatat cgaacggggt ttatgccgct tttagtgggt gcgaagaata gtctgctcat 2220
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ttgccagcac ctcattagcg acacgttgcg cagcggccac gtccttagcc ttatccacgc 2400
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aagcacgctt agccccacgt gaccaggacg aacgcaggtt tttagaacca acctcatact 2640
cacgccaccg agccaccaaa acagcgtcca tatcctcgcc ggcgtcgctt tgatcggcca 2700
acatatccaa catctgaaac ggcgtgtacg accccttaga cgcggtttta gtagcggagc 2760
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cccaggtaga cacctgatca agtttgaccc cgtgctcacg cagtggcgcg tccataccgg 2880
ccttaaccac accagcagac cagcgggaaa acatggaatc ctcaaacgcc ttgagttcat 2940
cgtcagacag tggacgatcc aagaacaaca gcatgttgcg gtgcaagtgc caaccgttcg 3000
cccaagagtc tgtgacctca tagtcactat aggtgtgctc caccccgtac cgtgcacgtt 3060
ctttcttcca ctgagatgtt ttcaccatcg aagagtacgc agtcttaata cccgcttcaa 3120
cctgcgcaaa tgactgtgag cggttgtgtc gaacagtgcc cacaaacatc atgagcgcgc 3180
cacccgccgc caagtgattc ttagtagcaa tagccagctc aatgcggcgt tcgcccatga 3240
cttccaattc agccagaggt gacccccagc gagagtgaga gttttgcaga ccctcaaact 3300
gcgaagcacc gttagacgac caggacaccg caacagcttc gtccctgcgc cacctatggc 3360
accccgccag agccttacta ttggtgatct tgtacatgac gttttgccta cgccacgccc 3420
tagcgcgagt gaccttagaa ccctcattga cctgcggttc cttagaggtg ttcacttcta 3480
tttcagtgtt acctagaccc gatgttgtgc ggggttgcgc agtgcgagtt tgtgcgggtg 3540
ttgtgcccgt tgtcttagct agtgctatgg ttgtcaattg aaaccccttc gggttatgtg 3600
gcccccgtgc atatgagttg gtagctcgca cgggggtttg tcttgtctag ggactattaa 3660
tttttagtgg tgtttggtgg ccgcctagct tggctatgcg tgccagctta cccgtactca 3720
atgttaaaga tttgcatcga catgggaggg ttacgtgtcc gatacctagg gggggtatcc 3780
gcgactaggt gccccggtgc tcactgtctg taccggcggg gcaagcccca caccccgcat 3840
ggacagggtg gctccgcccc ctgcaccccc agcaatctgc atgtacatgt tttacacatt 3900
agcacgacat gactgcatgt gcatgcactg catgcagact aggtaaatat gagtatgtac 3960
gactagtaac aggagcactg cacataatga atgagttgca ggacaatgtt tgctacgcat 4020
gcgcatgaca tatcgcagga aagctactag agtcttaaag catggcaacc aaggcacagc 4080
tagaacagca actacaagaa gctcaacagg cactacaggc gcagcaagcg caggcacaag 4140
ccaccatcga agcactagaa gcgcaggcaa aggctaagcc cgtcgtggtc accgcacgcg 4200
ttcctttggc actacgtgag gacatgaagc gcgcaggcat gcagaacggt gaaaacctcc 4260
aagagttcat gatcgccgcg tttaccgagc ggctagaaaa gctcaccacc accgacaacg 4320
aggaaaacaa tgtctaaccc actagttctc tttgcccacc gtgacccggt aaatgacgtg 4380
acgttcgagt gcattgagca cgccacctac gacacacttt cacacgctaa agaccagatc 4440
accgcccaaa tgcaagccct agacgaagaa gccgccctac tgccctaatg ggtgtttcat 4500
gggtgtttcc ctagtgtttc atggtgtttt cacctaagct agggaattgc gcgagaagtc 4560
tcgcaaaaat cagcaacccc cggaaccaca cagttcacgg gggttcttct atgccagaaa 4620
tcagaaaggg gaaccagtga acgaccccga atattggatc acagcgcagc aggtcgccgc 4680
ccgcgtagct ctcaccccgg ccaccattaa aaagtgggca aacgagggaa aaatcaccgc 4740
atacaagatc ggcaagtccg tccgattcaa agcatcagac gtagacccct actggcttaa 4800
ctatgcggca tcagagcaga ttgtactgag agtgcaccat atatgcggtg tgaaataccg 4860
cacagatgcg taaggagaaa ataccgcatc aggcgctctt ccgcttcctc gctcactgac 4920
tcgctgcgct cggtcgttcg gctgcggcga gcggtatcag ctcactcaaa ggcggtaata 4980
cggttatcca cagaatcagg ggataacgca ggaaagaaca tgtgagcaaa aggccagcaa 5040
aaggccagga accgtaaaaa ggccgcgttg ctggcgtttt tccataggct ccgcccccct 5100
gacgagcatc acaaaaatcg acgctcaagt cagaggtggc gaaacccgac aggactataa 5160
agataccagg cgtttccccc tggaagctcc ctcgtgcgct ctcctgttcc gaccctgccg 5220
cttaccggat acctgtccgc ctttctccct tcgggaagcg tggcgctttc tcatagctca 5280
cgctgtaggt atctcagttc ggtgtaggtc gttcgctcca agctgggctg tgtgcacgaa 5340
ccccccgttc agcccgaccg ctgcgcctta tccggtaact atcgtcttga gtccaacccg 5400
gtaagacacg acttatcgcc actggcagca gccactggta acaggattag cagagcgagg 5460
tatgtaggcg gtgctacaga gttcttgaag tggtggccta actacggcta cactagaagg 5520
acagtatttg gtatctgcgc tctgctgaag ccagttacct tcggaaaaag agttggtagc 5580
tcttgatccg gcaaacaaac caccgctggt agcggtggtt tttttgtttg caagcagcag 5640
attacgcgca gaaaaaaagg atctcaagaa gatcctttga tcttttctac ggggtctgac 5700
gctcagtgga acgaaaactc acgttaaggg attttggtca tgaacaataa aactgtctgc 5760
ttacataaac agtaatacaa ggggtgttat gagccatatt caacgggaaa cgtcttgctc 5820
taggccgcga ttaaattcca acatggatgc tgatttatat gggtataaat gggctcgcga 5880
taatgtcggg caatcaggtg cgacaatcta tcgattgtat gggaagcccg atgcgccaga 5940
gttgtttctg aaacatggca aaggtagcgt tgccaatgat gttacagatg agatggtcag 6000
actaaactgg ctgacggaat ttatgcctct tccgaccatc aagcatttta tccgtactcc 6060
tgatgatgca tggttactca ccactgcgat ccccgggaaa acagcattcc aggtattaga 6120
agaatatcct gattcaggtg aaaatattgt tgatgcgctg gcagtgttcc tgcgccggtt 6180
gcattcgatt cctgtttgta attgtccttt taacagcgat cgcgtatttc gtctcgctca 6240
ggcgcaatca cgaatgaata acggtttggt tgatgcgagt gattttgatg acgagcgtaa 6300
tggctggcct gttgaacaag tctggaaaga aatgcataaa cttttgccat tctcaccgga 6360
ttcagtcgtc actcatggtg atttctcact tgataacctt atttttgacg aggggaaatt 6420
aataggttgt attgatgttg gacgagtcgg aatcgcagac cgataccagg atcttgccat 6480
cctatggaac tgcctcggtg agttttctcc ttcattacag aaacggcttt ttcaaaaata 6540
tggtattgat aatcctgata tgaataaatt gcagtttcat ttgatgctcg atgagttttt 6600
ctaagaatta attcatgagc ggatacatat ttgaatgtat ttagaaaaat aaacaaatag 6660
gggttccgcg cacatttccc cgaaaagtgc cacctgaaat tgtaaacgtt aatattttgt 6720
taaaattcgc gttaaatttt tgttaaatca gctcattttt taaccaatag gccgaaatcg 6780
gcaaaatccc ttataaatca aaagaataga ccgagatagg gttgagtgtt gttccagttt 6840
ggaacaagag tccactatta aagaacgtgg actccaacgt caaagggcga aaaaccgtct 6900
atcagggcga tggcccacta cgtgaaccat caccctaatc aagttttttg gggtcgaggt 6960
gccgtaaagc actaaatcgg aaccctaaag ggagcccccg atttagagct tgacggggaa 7020
agccggcgaa cgtggcgaga aaggaaggga agaaagcgaa aggagcgggc gctagggcgc 7080
tggcaagtgt agcggtcacg ctgcgcgtaa ccaccacacc cgccgcgctt aatgcgccgc 7140
tacagggcgc gtcccattcg cca 7163
<210>2
<211>62
<212>DNA
<213>人工序列
<400>2
tgagctgttg acaattaatc atcgtgtggt accatgtgtg gaattgtgag cggataacaa 60
tt 62
Claims (2)
1.一种棒状杆菌启动子探测载体,包括筛选标记、复制子片段及多克隆位点,其特征在于含有用于检测启动子活性的氯霉素酰基转移酶报告基因(cat);多克隆位点后为用于控制报告基因上游启动子转录通读的rrnBT1T2终止子序列,其核苷酸序列如SEQ ID NO: 1所示。
2.权利要求1所述的探测载体的构建方法,其特征在于包括如下步骤:
第一步:用限制酶XbaI和BglI双酶切载体pET28a,去除含lacI基因及T7启动子的DNA片段,将大片段自身环化,构建成的重组质粒命名为pDXW-1;
第二步:以质粒大肠杆菌-棒状杆菌穿梭质粒pC2为模板,rep-F和rep-R为引物,通过PCR扩增2686bp的棒状杆菌复制子片段rep,PCR产物用SmaI酶切,并连接到用BstZ17I酶切,且用CIAP去磷酸化后的pDXW-1上,构建的穿梭载体命名为为pDXW-2;
所述rep-F序列为:agtacccgggcattgtcaacaacaag acccatca;
所述rep-R序列为:agtacccggggtctacgtctgatgct ttgaatcg;
第三步:以含有氯霉素酰基转移酶基因(cat)的载体为模板,cat-F和cat-R为引物,通过PCR扩增686 bp 报告基因cat的开放阅读框,在扩增产物的5 '和3 '末端分别引入限制酶内切酶酶切位点,PCR产物用引入的限制性内切酶双切,并连接到用同样限制性内切酶双切后的pDXW-2上,构建的重组质粒命名为pDXW-2-cat;
所述cat-F序列为:aactagcggccgctaactaactaagaaaggacatgaacgatggaga;
所述cat-R序列为:actactcgagttacgccccgccctgccact
第四步:以含有终止子rrnBT1T2的载体为模板,rrnBT1T2-F和rrnBT1T2-R为引物,通过PCR扩增294 bp 的终止子rrnBT1T2,在扩增产物的5 '和3 '末端分别引入限制酶内切酶酶切位点,PCR产物用引入的限制性内切酶双切,并连接到同样用同样限制性内切酶双切后的pDXW-2-cat上,构建的重组质粒命名为pDXW-11;
所述rrnBT1T2-F序列为:atctagctagccgatggtagtgtggggtctc;
所述rrnBT1T2-R序列为:agttggatccagaaaaataaacaaaagagt。
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