CN101959518B - 促进营养素被吸收的医药组合物及茯苓萃取物 - Google Patents

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Abstract

本发明是有关一种使用具下列化学式(I)的羊毛甾烷或其医药可接受的盐来促进营养素被吸收的新用途,式中R1为H或CH3;R2为OCOCH3,=O或OH;R3为H或OH;R4为-C(=CH2)-C(CH3)2Ra,其中Ra为H或OH,或-CH=C(CH3)-Rb,其中Rb为CH3或CH2OH;R5为H或OH;及R6为CH3或CH2OH。

Description

促进营养素被吸收的医药组合物及茯苓萃取物
技术领域
本发明是有关一种使用羊毛甾烷类化合物来促进营养素被吸收的新用途,尤其有关一种含有羊毛甾烷类化合物作为促进营养素被吸收的有效成分的医药组合物。 
背景技术
本申请申请人在台湾发明专利申请案第92113393号(公开号200425900,2004年12月1日公开)揭示了一种用以提升人体免疫力的医药组合物,此组合物含羊毛甾烷(lanostane)类化合物作为有效成分。该发明也提供一种提升人体免疫力的茯苓萃取物,包含5-60重量%的羊毛甾烷类化合物且实质上不含开环羊毛甾烷(secolanostane)类化合物。该萃取物是萃取自多孔菌科植物茯苓菌(Porea cocos(Schw)Wolf)的代谢产物或发酵产物或茯苓菌菌丝。 
一般来说,要使人体更健康、有活力,对营养素的吸收是非常重要的。如肠胃道细胞对营养素的吸收状况良好,这些营养素能被人体细胞利用,就是健康身体的基础。例如葡萄糖被细胞转化为高能物质(ATP),人体细胞利用ATP,可执行组织器官功能,如心脏跳动、神经传导、骨骼肌的运动。因此促进营养素被吸收的物质或方法,不仅是相关领域研究者、也是所有人所关切的课题。 
发明内容
本发明的一主要目的是提供一种使用羊毛甾烷类化合物作为有效成分来促进营养素被吸收的新用途。 
本发明的另一目的是将羊毛甾烷类化合物作为食品或饮料添加物来促进营养素被吸收。 
本发明的又一个目的是提供一种含有羊毛甾烷类化合物作为促进营养素被吸收的有效成分的医药组合物。本发明所指的“医药组合物”一词除了其字面意义外,进一步包括营养补充品组合物,该营养补充品组合物 除了营养素外还包含作为促进营养素吸收的有效成分的羊毛甾烷类化合物。 
本发明所提供的一种促进营养素为一哺乳类动物(例如人类)吸收的医药组合物,包含一促进营养素吸收有效量作为有效成分的具下列化学式(I)的羊毛甾烷或其医药可接受的盐: 
Figure GPA00001058953600021
其中R1为H或CH3;R2为OCOCH3,=O或OH;R3为H或OH;R4为-C(=CH2)-C(CH3)2Ra,其中Ra为H或OH,或-CH=C(CH3)-Rb,其中Rb为CH3或CH2OH;R5为H或OH;及R6为CH3或CH2OH。 
本发明也提供一种使用具上述化学式(I)的羊毛甾烷或其医药可接受的盐作为活性成分在制备促进营养素被一哺乳类动物吸收药物或医药组合物中的用途。 
较佳的,该羊毛甾烷(I)具有具下列化学式: 
Figure DEST_PATH_GSB00000791623800012
Figure DEST_PATH_GSB00000791623800021
较佳的,本发明的组合物其含有0.1-20重量%的羊毛甾烷(I)或其医药可接受的盐。 
较佳的,本发明的组合物为口服的。 
较佳的,本发明使用一茯苓萃取物作为该羊毛甾烷(I)的来源,该茯苓萃取物包含1-60重量%的具前述式(I)的羊毛甾烷且实质上不含开环羊毛甾烷。 
较佳的,该茯苓萃取物是由包含下列步骤的方法所制备: 
a)以一水,甲醇,乙醇或它们的混合溶剂萃取茯苓菌的代谢物,茯苓菌的发酵产物或茯苓菌菌丝; 
b)浓缩步骤a)萃取所获得的液体; 
c)将步骤a)所获得的浓缩物导入一硅胶管柱; 
d)以一低极性洗脱剂(eluent)洗脱该硅胶管柱,及收集所产生的洗出液(eluate);及 
e)浓缩步骤d)的洗出液。 
较佳的,从步骤e)所获得的洗出液的浓缩物以硅胶薄层层析法分析具有一层析值(Rf)≥0.1,其中以紫外光灯及碘作检侧,展开液为二氯甲烷∶甲醇=96∶4。 
较佳的,步骤a)的萃取所使用的溶剂为95%酒精。 
较佳的,步骤a)包含以沸水萃取茯苓菌的代谢物,茯苓菌的发酵产物或茯苓菌菌丝;加入一碱至该萃取水溶液至其pH值9-11;分离出该碱性水溶液;加入一酸至该碱性水溶液至其pH值4-7,以产生沉淀物;分离出该沉淀物;再以酒精萃取该沉淀物,并分离出萃取液体。 
较佳的,步骤b)的浓缩物被进一步以一体积比为1∶1的95%v/v甲醇水溶液及正己烷的两相溶剂萃取;分离出甲醇层;及浓缩该甲醇层,所获得的浓缩物被用作为步骤c)的硅胶管柱的进料。 
较佳的,步骤d)的低极性洗脱剂为体积比为96.5∶3.5的二氯甲烷及甲醇的混合溶剂。 
较佳的,该茯苓萃取物包含5-35重量%的羊毛甾烷(I)。 
较佳的,本发明的组合物进一步包含一营养素,例如葡萄糖、氨基酸、维生素或其组合。 
本发明以具式(I)的羊毛甾烷或其医药可接受的盐,或前述茯苓萃取物作为促进营养素吸收的有效成分可应用在下列所有状况:(1)老年人营养状况改善,老年人因老化关系其消化系统也随之衰退,常造成吸收功能也变差,营养状况因而不足,服用该有效成分显然有助于营养状况改善。(2)瘦弱小孩身体改善,小孩在成长过程中有些因体质问题,身体瘦弱无法因营养素增加供应而改善,服用该有效成分显然有助于身体瘦弱改善。(3)工作压力大的人或经常熬夜赶工作的人,此类人因压力引起的身心症而造成胃肠功能受到影响,吸收不良为病症之一,进而衍生出疲劳、精神不振 的后遗症,故此类人可借助服用该有效成分来改善。(4)运动量大的运动员或工作量大的工人/上班族常需补充营养素,因工作量大或耗体力大的人,相对应的是能量(ATP)消耗量也大,常需补充能量而能量最主要是由葡萄糖而来,因此加速补充葡萄糖有利于能量制造,因此对于寻求佳绩的运动员及工作表现工人/上班族,服用该有效成分是有效补充葡萄糖的方法。(5)手术或癌症病人(接受化疗或放射疗法)造成身体虚弱,急需要补充营养素(含氨基酸、葡萄糖、维他命)来改善,如搭配服用该有效成分显然有助于病人快速恢复健康。(6)病毒性腹泻,小孩在冬春时期,常会发生不同病毒感染引起的感冒症状及腹泻(病毒之一,如轮状病毒),严重者会因腹泻造成水、电解质及营养素流失而死亡,因此已知具有免疫增强功能(杀灭病毒)的本发明的有效成分,再加上其具有营养素吸收能力,会因协同作用引导水分随营养素吸收(改变渗透压)而进入人体,因此阻止腹泻而拯救孩童生命。综合上述6项应用,本发明的有效成分可以被添加在奶粉、饮料、食品作为营养目的,也可作成医药品,如锭剂、胶囊、颗粒剂、液剂、注射剂等形式出现,用于医疗目的。 
附图的简要说明 
图1至图3分别显示本发明羊毛甾烷化合物K2、K3及K4对葡萄糖被肠细胞(Caco-2)吸收的影响。 
图4至图7分别显示本发明羊毛甾烷化合物K1、K2、K3及K4对精氨酸被肠细胞(Caco-2)吸收的影响。 
图8至图10分别显示本发明羊毛甾烷化合物K1、K3及K4对色氨酸被肠细胞(Caco-2)吸收的影响。 
图11至图14分别显示本发明羊毛甾烷化合物K1、K2、K3及K4对叶酸被肠细胞(Caco-2)吸收的影响。 
实施本发明的最佳方式 
由现代的生物化学知道人类从饮食中获得的营养素有非常多的种类,其中能被人体利用吸收而产生能量或细胞基础代谢所必须的营养素主要有葡萄糖(glucose)、氨基酸(amino acid)和维他命(vitamin)等类。然而这些营养素并不能自由进出人体的组织或细胞,而是受到严密的机转所调控。此种情形与一般我们服食化学物质(如药物)被人体吸收情形不 同,化学物质则是利用浓度差异性以扩散方式进出人体。但是营养素在细胞间的出入则不同,必须由特定的输送蛋白质或是细胞膜上的特别的通道(channel)来负责。以下利用人体肠道对葡萄糖吸收来说明。首先,肠腔内的输送蛋白质与钠离子结合使输送蛋白质产生结构上的改变,因而打开葡萄糖结合部份。葡萄糖与钠离子共同结合输送蛋白质引起此输送蛋白质的构型改变,而让葡萄糖与钠离子能进入细胞内(面向细胞内)。钠离子先离开进入细胞内,进而引起葡萄糖与输送蛋白质的不稳定。最后,葡萄糖也离开而进入细胞内,而脱去葡萄糖与钠离子两者的输送蛋白质也重新回到原来面对肠腔的方向。当细胞内的葡萄糖累积至一定量时,便借助另一类输送蛋白质,此类蛋白质是属于促进扩散(facilitated diffusion)蛋白质,使葡萄糖利用浓度梯度的方式离开肠细胞进入血管中。 
Caco2细胞为一种由人体大肠癌衍生的细胞株,此细胞株最大的特色是能自主性地快速分化成类似人类肠道的具有极性的细胞单层膜(monolayer)。一般培养两到三星期后,Caco2细胞会分化形成具有高度水解能力的绒毛状边缘(brush border)以及细胞间的紧密连结(tight junctions),成为能阻隔及控制物质通透的细胞单层膜。Caco2细胞的单层膜具有与肠道相似的电阻值,其约300Ωcm2左右。除此之外,在Caco2细胞单层膜上也被证实具有各种营养素的输送蛋白质,包含如氨基酸、葡萄糖及维他命等的运输蛋白质。因此,Caco2细胞形成的单层膜常被用于研究药物或营养素穿透肠道细胞的实验或测试,而其测试结果用以说明人类肠道细胞对于药物或营养素的吸收作用,也为熟悉相关领域者所接受[Hidalgo IJ,al.,Gastroenterology,1989;96:736-749.;Artursson P.,J Pharm Sci,1990;79:476-482.]。 
由于中国传统医学对长得瘦小的小孩,或身体因老化变得衰弱老人,或因生病或因疾病(其中之一如癌症)而开刀,身体变成虚弱的病人,均会采用强壮性中药来改善或治疗身体,使他们变回健康的身体,但是强壮性中药如何改善身体朝向健康状态?有可能是经由强壮中药本身即为营养素的提供者,亦有可能是增强营养素吸收,也有可能是透过上述二种情形来增强人体的营养状态。如果经由增强营养素吸收机制,则那些有效成分能够影响运输蛋白,至今也未有人在此方面提出科学上的证据。故利用上述Caco2细胞吸收营养素的实验即可证明强壮性中药萃取物及/或强壮性中药纯化成分具有此种增进营养素吸收。本申请发明人在利用Caco2细胞 筛选典型强状性中药(人参、黄芪)研究时,同时对非典型的强壮性中药,茯苓也进行研究,结果意外发现茯苓萃取物及其中的羊毛甾烷具备了增强营养素通过Caco2细胞的能力事实。 
本发明所揭示的可促进营养素为一哺乳类动物(例如人类)吸收的茯苓萃取物,其制备方法与前述的台湾发明专利公开号200425900所揭示的方法相同,包括利用传统萃取法萃取茯苓得到一粗萃取物,再经由层析法,分成极性小的羊毛甾烷(lanostane)类部位(以二氯甲烷∶甲醇(96∶4)为洗脱剂)和极性大的开环羊毛甾烷(secolanostane)类部位(以二氯甲烷∶甲醇(90∶10或0∶100)为洗脱剂),其中,利用硅胶薄层层析法,显示出羊毛甾烷(lanostane)类部位的所在位置,即展开溶媒为二氯甲烷-甲醇(96∶4)时,层析值(Rf)为≥0.1;至于开环羊毛甾烷(secolanostane)类成分,则层析值小于0.1。用硅胶管柱层析法可进一步分离该羊毛甾烷类部位,其中洗脱剂使用二氯甲烷∶甲醇(97∶3至95∶5),分离出数种羊毛甾烷(lanostane)类化合物。 
下面结合实施例对本发明做进一步详细的描述,但不以此限制本发明。 
实施例1 
以云南产茯苓30公斤,磨成粉后,利用120L酒精(浓度95%)萃取24小时,及过滤分离。再重复前述萃取及固液分离三次。合并滤液,并将滤液浓缩后得干燥萃取物265.2克。再利用一两相萃取剂(己烷∶95%甲醇=1∶1)对该干燥萃取物进行分配萃取。取出甲醇层并加予浓缩后得到干燥固体246.9克。利用硅胶管柱层析对该干燥固体进行分离,该硅胶管柱填充有该干燥固体重量10-40倍的硅胶,购自Merck公司,Silica gel 60,70-230目。以二氯甲烷/甲醇混合液作为洗脱剂(eluent),依序以96∶4、90∶10、0∶100比例的混合液进行洗脱,洗出液(eluate)以硅胶薄层层析法(Thin Layer Chromatography)(紫外光灯及碘作检测,展开液为二氯甲烷∶甲醇=96∶4)检测成分,将相同成分合并。 
以二氯甲烷-甲醇(96∶4)混合液进行硅胶管柱层析,可得到属PCM部份78克,PCM部份依上述硅胶薄层层析法可明显看到6个迹点。以二氯甲烷∶甲醇(90∶10)及(0∶100)洗脱液层析合并可得到PCW部份168克。 
PCM部份进一步以二氯甲烷∶甲醇(96.5∶3.5)作为洗脱剂进行硅胶管柱 层析(同上述硅胶管柱),进一步分离可得纯化的羊毛甾烷(lanostane)类成分K1(K1-1及K1-2),K2(K2-1及K2-2),K3,K4,K4a,K4b,K5,K6a及K6b。详细分离步骤及鉴定分析数据请参见台湾发明专利公开号200425900。 
上述的K1至K6b化合物,其结构如下: 
Figure GPA00001058953600081
从PCM部份分离出来羊毛甾烷化合物K1至K6b的产量如下表所示。PCM部份含有约15重量%的羊毛甾烷化合物K1至K6b。 
  K1   K2   K3   K4   K4a   K4b   K5   K6a   K6b
  3.0g   6.2g   1.93g   0.55g   66mg   86.8mg   47.6mg   21.4mg   90.7mg
实施例2 
本发明的实施例1所制备的羊毛甾烷化合物K1,K2,K3及K4,及该PCM萃取物依下列方法来评估其促进营养素吸收的功效。 
人类Caco-2细胞的培养及营养素的吸收测试 
在本实施例的羊毛甾烷化合物或PCM萃取物促进Caco2细胞对营养物如:葡萄糖、氨基酸、维生素等的吸收测试中,Caco2细胞被种在聚碳酸酯膜 
Figure GPA00001058953600092
插入件(Polycarbonate Membrane inserts)(No.3414,Corning Incorporated,NY,USA)上,每隔2~3天换一次细胞培养液,待14~21天后,Caco2细胞会形成单层膜。利用 
Figure GPA00001058953600094
(Millipore EVOM-6;World Precision Instrument,Sarasota,FL,USA)测其上下两侧形成的电阻值(trans-epithelial electrical resistance,TEER),当TEER达到300~450Ωcm2,并且Caco2细胞呈现出分化的边缘绒毛状(brush border)后,即可用以进行营养物吸收的测试。Caco2单层膜以含不同浓度的待测物的细胞培养液培养两天,其中血清均为活性炭-葡聚糖(charcoal-dextran)处理过的胎牛血清(CD-FBS)。培养两天后,用PBS洗涤一次,改换以不含特定营养物的缓冲液(如测定葡萄糖吸收时,以不含葡萄糖的缓冲液)培养1小时,接着将该缓冲液更换为含有一预定浓度的该特定营养物及放射线标定的营养物的新鲜缓冲液,以追踪该营养物分子穿过Caco2单层膜的速率。 放射线标定的营养物例如[14C]-D-葡萄糖或[14C]-D-2-脱氧葡萄糖,[3H]-L-精氨酸(arginine,[3H]-L-色氨酸(tryptophan),[3H]-叶酸(folic acid)。同时测定碳-14或氢-3标定的-D-木醇糖是用以确定Caco-2细胞单层膜的完整性[参考文献:Artursson,P.,J Pharm Sci,1990,79:476-482;Ferraris RP,et al.,Am J Physiol,1993,264:G285-G293.]。 
葡萄糖吸收的分析测定 
人类Caco-2细胞植于transwell,待分化形成完整的单层膜。测定前,细胞单层膜先以待测物处理两天,再以不含葡萄糖的缓冲液(组成成分为80mM NaCl,100mM mannitol,20mM Tris-HCl,pH 7.4,3mM K2HPO4,1mM CaCl2,1mg/ml BSA)培养1小时后,然后将膜上层的缓冲液更换为含有终浓度为10mM葡萄糖,其中含有2μCi/mL的碳-14标定的D-葡萄糖或D-脱氧葡萄糖(60mCi/mmol,American Radiolabeled Chemicals,St.Louis,MO,USA)的新鲜缓冲液,以追踪葡萄糖分子穿过Caco2单层膜的速率。在特定时间点自下层缓冲液取出10μL测定其放射强度,其数值经换算为葡萄糖浓度,代表该时间点下层缓冲液葡萄糖分子的浓度。除了测定TEER值外,此实验同时测定碳14标定的-D-木醇糖是用以确定Caco-2细胞单层膜的完整性;而碳14标定的-L-葡萄糖则用以测定不经葡萄糖运输蛋白途径吸收的非专一性背景值。放射强度数值经换算,代表该时间点通过Caco-2细胞单层膜到下层的葡萄糖分子浓度。就各时间点的下层葡萄糖浓度对时间点作图,并以数值分析方法得出一直线,其斜率代表在该浓度的待测物处理下,葡萄糖分子通过Caco-2细胞单层膜的平均速率。实验中的对照组(control)是指未以待测物处理所得的数据。以上测定方法主要参考文献如下:Kimura T.et al.,J.Pharm.Pharmacol.,2001,54,213-219. 
氨基酸吸收的分析测定 
氨基酸如精氨酸及色氨酸的吸收,是以Caco2单层膜以含不同浓度的待测物的细胞培养液,培养两天后,用PBS洗涤一次,改换以不含该氨基酸的缓冲液(测精氨酸的成分为:137mM NaCl,10mM Hepes pH 7.4,0.3mMNaH2PO4,0.3mM K2HPO4,5.4mM KCl,2.8mM CaCl2,1mM MgSO4,10mM glucose;而测色氨酸吸收时的缓冲液组成为:137mM氯化胆碱(choline chloride),10mM Hepes pH 7.4,0.6mM KH2PO4,5.4mM KCl,2.8mM CaCl2,1mM MgSO4,10mM葡萄糖),培养1小时后,利用氢-3标定的氨基酸(L-3H-amino acid)来观察Caco2单层膜在不同浓度的待测物作用 下对氨基酸的吸收是否有所影响。除了测定TEER值外,此实验同时测定氢-3标定的-D-木醇糖是用以确定Caco-2细胞单层膜的完整性。放射强度数值经换算,代表该时间点通过Caco-2细胞单层膜到下层的氨基酸分子浓度。就各时间点的下层氨基酸浓度对时间点作图,并以数值分析方法得出一直线,其斜率代表在该浓度的待测物处理下,氨基酸分子通过Caco-2细胞单层膜的平均速率。实验中的对照组(control)是指未以待测物处理下所得的数据。以上测定方法主要参考文献如下:Pan M.,et al.,Am J Physiol.Gastrointest Liver Physiol 1995,268:G578-G585. 
叶酸吸收的分析测定 
将人类Caco-2细胞植于10-cm培养盘,待约二星期之后分化完成后即进行测定。测定前,细胞先以各种浓度的待测物处理两天,再以不含叶酸的缓冲液(Folate transport incubation buffer(pH6.0):Hank’s Balanced Salt Solution(HBSS),supplemented with 0.14g/L CaCl2,0.1g/L MgCl2,and 0.1g/L MgSO4)培养1小时后,然后更换为含有终浓度为5μM叶酸,其中含有2μCi/mL的氢-3标定的叶酸(3,5,7,9-3H-folic acid,25mCi/mmol,ARC,St.Louis,MO,USA)的新鲜缓冲液。在特定时间点将细胞以PBS洗过,然后以0.2mL的0.2N NaOH使细胞溶解打破,刮下集中离心。取出定量上清细胞液用以测定蛋白质浓度,并取上清细胞液20μL测定叶酸分子吸收进入并累积于Caco2细胞内的浓度。计算得数值代表该时间点Caco-2细胞中相等蛋白质量的细胞液内所含有的叶酸分子浓度。就各时间点的细胞内的叶酸浓度对时间点作图,并以数值分析方法得出一直线,其斜率代表在该浓度待测物处理下叶酸分子被吸收进入Caco-2细胞的平均速率。实验中的对照(control)是指未以待测物处理下所得的数据。以上测定方法主要参考文献如下:Dudeja PK.,et al.,Am J Physiol Gastrointest Liver Physi,2001,281(1):G54-G60. 
结果 
(1)实施例1的PCM萃取物对促进2-脱氧葡萄糖被肠细胞(Caco-2)吸收的影响被示于表一。表一显示该PCM萃取物在低剂量下(0.0033μg/cc)具有显著的促进2-脱氧葡萄糖被肠细胞(Caco-2)吸收的功效。 
表一:PCM萃取物对2-脱氧葡萄糖(2-deoxyglucose)被肠细胞(Caco-2)吸收的影响 
Figure GPA00001058953600121
*实施例1的PCM萃取物被调整成羊毛甾烷化合物浓度为0.033μg/cc(PCM1)及0.0033μg/cc(PCM2) 
(2)实施例1所制备的羊毛甾烷化合物K1,K2,K3及K4对葡萄糖营养素被肠细胞(Caco-2)吸收的影响被示于表二及图1至3。如表二所显示羊毛甾烷化合物K2,K3及K4在低剂量下(1μM-0.001μM)对葡萄糖营养素被肠细胞吸收有促进作用。如图1至图3所显示,K2-K4能促进吸收葡萄糖而且吸收呈线性关系,此种线性关系表示茯苓成分透过影响或增加运输蛋白而使葡萄糖被吸收能力增加。K1虽无作用但其为K2的前药(prodrug),易于在肠中或血中被转化成k2而成为有效物质。 
表二:羊毛甾烷化合物对葡萄糖被肠细胞(Caco-2)吸收的影响 
1.结果是以平均值±SD(n=3)表示 
(3)实施例1所制备的羊毛甾烷化合物K1,K2,K3及K4对氨基酸(精氨酸及色氨酸)营养素被肠细胞(Caco-2)吸收的影响被示于表三及表四,及图4至10。如表三所示,K1,K2,K3及K4在低剂量下(1μm-0.001μM)下对精氨酸被肠细胞(Caco-2)吸收有促进作用。如表四所示K1,K3及K4低剂量下(1μm-0.001μM)下对色氨酸被肠细胞(Caco-2)吸收有促进作用。而有意义的是肠细胞在低剂量羊毛甾烷化合物下(1μm-0.001μM)下能促进此二种氨基酸的吸收而且吸收是呈线性关系,如图4至10所示。此线性关系表示这些羊毛甾烷化合物透过影响或增加运输蛋白使此二种氨基酸被吸收能力增加。 
表三:羊毛甾烷化合物K1,K2,K3及K4对精氨酸营养素被肠细胞(Caco-2)吸收的影响 
Figure GPA00001058953600141
1.结果是以平均值±SD(n=3)表示 
表四:羊毛甾烷化合物K1,K2,K3及K4对色氨酸营养素被肠细胞(Caco-2)吸收的影响 
Figure GPA00001058953600151
1.K2对色氨酸被肠细胞(Caco-2)吸收未产生显著的影响。 
2.结果是以平均值±SD(n=3)表示 
(4)实施例1所制备的羊毛甾烷化合物K1,K2,K3及K4对维他命叶酸营养素被肠细胞(Caco-2)吸收的影响被示于表五及图11至14。如表五所示,K1,K2,K3及K4在低剂量下(0.1μM-0.001μM)对叶酸被肠细胞(Caco-2)吸收有促进作用。而有意义的是肠细胞在低剂量羊毛甾烷化合物下(1μm-0.001μM)能促进叶酸的吸收而且吸收是呈线性关系,如图11至14所示。此种线性关系表示这些羊毛甾烷化合物是透过影响或增加运输蛋白而使叶酸吸收能力增加。 
表五:羊毛甾烷化合物K1,K2,K3及K4对叶酸营养素被肠细胞(Caco-2)吸收的影响 
Figure GPA00001058953600161
1.结果是以平均值±SD(n=3)表示 
实施例3 
茯苓药材100公斤以800公斤水煮沸3小时后,静置冷却至50℃,以5N NaOH调节溶液至pH 11,再搅拌溶液3小时。接着用离心机分离液体和固体,固体用800公斤水加入,同上述方法,用NaOH调至pH 11、搅拌和离心机分离,去掉固体。合并两次液体,在50℃将液体真空浓缩至100公斤溶液,再加入3N HCl至pH 6.5,产生沉淀物。分离出该沉淀物,再以40L H2O清洗,接着用离心机分离出沉淀物,加入8L水喷雾干燥(spray dry),得到约380g粉末。再以4L酒精萃取该粉末三次,合并萃取液并浓缩可得238.9克酒精萃取物,再经过HPLC分离该萃取物,每克该萃取物可得主成分为K2 185.93mg,K3 20.34mg,K4 15.82mg及少量成分K1 4.52mg,即萃取物每克约含226.07mg羊毛甾烷(lanostanes)。 
实施例4:胶囊制备 
依下列组成制备含有实施例1所制得的PCM成份的胶囊: 
将PCM与硅铝酸钠分别以#80目(mesh)筛网过筛,马铃薯淀粉以#60目筛网过筛,硬脂酸镁以#40目筛网过筛后,置入混合机搅拌均匀,接着填充入壹号空胶囊,每颗胶囊含有约1.68mg(0.42wt%)的有效成份有效成份K1-K6。 

Claims (19)

1.一种使用具下列化学式(I)的化合物或其医药可接受的盐作为活性成分在制备促进营养素被一哺乳类动物吸收药物中的用途:
其中该化合物(I)具有具下列化学式:
Figure FDA00002729011200011
Figure FDA00002729011200021
其中该营养素为葡萄糖、氨基酸、维生素或其组合;以及
其中该氨基酸为精氨酸或色氨酸,及该维生素为叶酸。
2.如权利要求1的用途,其含有0.1-20重量%的化合物(I)或其医药可接受的盐。
3.如权利要求1的用途,其中该药物为口服的。
4.如权利要求1的用途,其中该哺乳类动物为人类。
5.如权利要求1的用途,其中包含使用一茯苓萃取物作为该活性成分,该茯苓萃取物包含1-60重量%的具权利要求1的化合物(I)且实质上不含开环羊毛甾烷。
6.如权利要求5的用途,该茯苓萃取物是由包含下列步骤的方法所制备:
a)以一水、甲醇、乙醇或它们的混合溶剂萃取茯苓菌的代谢物,茯苓菌的发酵产物或茯苓菌菌丝;
b)浓缩步骤a)萃取所获得的液体;
c)将步骤a)所获得的浓缩物导入一硅胶管柱;
d)以一低极性洗脱剂(eluent)洗脱该硅胶管柱,及收集所产生的洗出液(eluent);及
e)浓缩步骤d)的洗出液。
7.如权利要求6的用途,其中从步骤e)所获得的洗出液的浓缩物以硅胶薄层层析法分析具有一层析值(Rf)≥0.1,其中以紫外光灯及碘作检测,展开液为二氯甲烷:甲醇=96:4。
8.如权利要求6的用途,其中步骤a)的萃取所使用的溶剂为95%酒精。
9.如权利要求6的用途,其中步骤a)包含以沸水萃取茯苓菌的代谢物,茯苓菌的发酵产物或茯苓菌菌丝;加入一碱至该萃取水溶液至其pH值9-11;分离出该碱性水溶液;加入一酸至该碱性水溶液至其pH值4-6,以产生沉淀物;分离出该沉淀物;再以酒精萃取该沉淀物,并分离出萃取液体。
10.如权利要求8或9的用途,其中步骤b)的浓缩物被进一步以一体积比为1:1的95%v/v甲醇水溶液及正己烷的两相溶剂萃取;分离出甲醇层;及浓缩该甲醇层,所获得的浓缩物被用作为步骤c)的硅胶管柱的进料。
11.如权利要求6的用途,其中步骤d)的低极性洗脱剂为体积比为96.5:3.5的二氯甲烷及甲醇的混合溶剂。
12.如权利要求5的用途,其中该茯苓萃取物包含5-35重量%的化合物(I)。
13.如权利要求1或5的用途,其中该药物进一步包含所述营养素。
14.如权利要求13的用途,其中该药物被用于老年人营养状况改善。
15.如权利要求13的用途,其中该药物被用于瘦弱小孩身体改善。
16.如权利要求13的用途,其中该药物被用于促进营养素被工作压力大的人或经常熬夜赶工作的人所吸收。
17.如权利要求13的用途,其中该药物被用于促进营养素被运动量大之运动员或工作量大的人所吸收。
18.如权利要求13的用途,其中该药物被用于手术后的病人或接受化疗后的癌症病人。
19.如权利要求13的用途,其中该药物被用于患有病毒性腹泻的病人。
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