CN101870971B - 使用实时pcr检测hbv的方法 - Google Patents

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Abstract

本发明涉及乙肝病毒(HBV)基因的检测。更具体地，本发明涉及与HBV基因互补的引物对，包含与HBV基因互补的引物对和探针的HBV检测用组合物，包括所述组合物的HBV检测试剂盒，以及用于检测HBV基因的方法。

Description

使用实时PCR检测HBV的方法
技术领域
本发明涉及乙肝病毒基因的检测。更具体地，本发明涉及与HBV基因互补的引物对，包含与HBV基因互补的引物对和探针的HBV检测用组合物，包含所述组合物的HBV检测试剂盒，以及用于检测HBV基因的方法。
背景技术
已知乙肝病毒(下文称为HBV)是病毒性肝炎的主要原因，据估计在世界范围内有20亿人感染HBV。在这些感染人群中，约3.5亿人是慢性携带者，且大多数人有逐渐发展为肝硬化和肝细胞癌的风险。HBV包膜基因由preS区(包含preS1和preS2)以及S区组成。在全部包膜基因转录后，分别通过在三个区中每一个的可变翻译来合成三个包膜蛋白(L蛋白、M蛋白和S蛋白)。翻译起始于preS1区的L蛋白由约400个氨基酸组成，所述氨基酸包含全部的preS1域、preS2域和S域。翻译起始于preS2区的M蛋白由约281个氨基酸组成，所述氨基酸包含preS2域和S域。S蛋白由约226个氨基酸组成，所述氨基酸仅包含S域，其表达量最大，从而成为病毒颗粒的主要组分。包膜蛋白的S域彼此结合以形成作为S抗原的颗粒。M蛋白和L蛋白中包含的preS1和preS2域位于所述颗粒的外侧，且起到诱导高免疫应答的preS抗原的作用。
HBV感染的诊断可通过检测样品中存在的抗HBV抗体，检测HBV抗原或检测HBV基因来进行。
HBV抗原的检测方法通常使用HBV表面抗原(HBsAg)或HBV e抗原(HBeAg)作为诊断标记物来检测其是否存在于血液中。然而，病毒的生命周期会妨碍HBV感染的早期诊断。在治疗期间，HBV感染患者血液中HBsAg或HBeAg的减少或缺失也会妨碍对患者体内HBV的正确诊断。
HBV基因检测可通过核酸扩增技术(NPT)或DNA探针法进行。目前，这些方法广泛地用在临床实践中。特别地，PCR是选择性地将少量靶基因扩增到可检测水平的方法，因此得到广泛的应用。然而，问题在于DNA提取方法不可避免地导致DNA损失。例如，即使样品包含足量的靶DNA以作为扩增模板，但由于提取过程中的损失，无法回收到适合用于扩增的量的DNA，导致模板扩增效率降低。因此，难以充分扩增并检测样品中的靶DNA。因此，此技术产生假阴性结果，且由此而难以保证结果的正确性。即使使用相同的样品，提取过程中DNA产量的变化也会产生不同的结果，导致缺乏重复性。也就是说，DNA扩增技术的问题在于其要求DNA提取过程引起样品中痕量靶DNA损失，从而使检测灵敏度降低。此外，当样品液体中包含扩增抑制剂(如肝素、表面活性剂、蛋白变性剂、有机溶剂等)时，扩增效率也降低，从而使检测灵敏度减小。
此外，遗传变异极低的区，如S蛋白区、前核心区(pre-Core region)或包膜蛋白可用于通过PCR的HBV检测。然而，这些区也具有低概率的变异，如突变。如果在碱基序列中发生遗传变异，使用PCR引物和/或探针的扩增步骤失败。因此，由于扩增效率的降低导致获得假阴性的结果或降低检测灵敏度。因此，难以保证准确的定量。
发明内容
技术问题
本发明的发明人已进行了许多努力来解决这些问题。本发明的发明人已经开发出使用样品中包含的痕量靶HBV基因来准确且快速地检测并定量HBV基因的方法，以及同时检测并定量具有极小遗传变异(如突变)的HBV基因两个区的方法。根据这些方法，即使在基因的一个区中发生通过突变的遗传变异，也能够检测此基因的其它区，从而高灵敏度和特异性地完成疑似感染HBV患者的正确诊断，从而完成本发明。
技术方案
本发明的目的是提供与HBV基因互补的引物对，其碱基序列如SEQ IDNO.1和2，或SEQ ID NO.3和4所示。
本发明的另一个目的是提供用于检测HBV基因的组合物，其包含具有碱基序列SEQ ID NO.1和2的引物对、具有碱基序列SEQ ID NO.3和4的引物对和具有SEQ ID NO.7和8所示碱基序列的探针。
本发明的另一个目的是提供HBV检测试剂盒，其包含所述用于检测HBV基因的组合物。
本发明的另一个目的是提供使用所述用于检测HBV基因的组合物来检测HBV基因的方法。
附图说明
图1是显示能够进行阳性检测和定量而没有内标对HBV特异性引物和探针竞争性抑制的结果；
图2显示HBV定量标准的线性；
图3显示PCR结果，其中分别进行HBV S蛋白和前核心区的扩增；和
图4显示PCR结果，其中同时进行HBV S蛋白和前核心区的扩增。在该情况下，检测中同样没有竞争性抑制，且定量中无显著差异。
有益效果
如上所述，当通过本发明的实时PCR进行HBV感染的检测和定量时，能够获得等于或大于已知方法的灵敏度和特异性。
具体实施方式
因此，根据一个方面，本发明涉及与HBV基因互补的引物对。优选地，引物为具有SEQ ID NO.1和2，或SEQ ID NO.3和4所示碱基序列的引物对。
如本文所用，术语“引物”是指具有游离3’羟基的短核酸序列，其与互补的模板形成碱基对，并充当模板链复制的起点。在存在四种不同三磷酸核苷和聚合试剂的适合缓冲液时，引物能够在适合温度下启动DNA合成。根据本发明的一个方面，引物为特异性扩增HBV S蛋白或HBV前核心区的引物。因此，本发明的引物包含正向引物和反向引物的引物对，其与基因互补且具有7-50个碱基的序列，优选10-30个碱基的序列。特别地，可通过具有碱基序列SEQ ID NO.1和2的引物对来特异性扩增HBV S基因区，且可通过具有碱基序列SEQ ID NO.3和4的引物对来特异性扩增HBV前核心区。
本发明的引物可通过亚磷酰胺(phosphoramidite)固相支持法或其它公知方法来化学合成。也可使用许多本领域的公知方法修饰这些核酸序列。此类修饰的非限定性实例包括甲基化、包囊化(capsulation)、通过天然核苷酸类似物取代一个或多个天然核苷酸，和核苷酸间的修饰，例如对不带电荷的结合物(膦酸甲酯、磷酸三酯、氨基磷酸酯、氨基甲酸酯等)或带电荷的结合物(如硫代磷酸酯、二硫代磷酸酯等)的修饰。核酸可包含一个或多个其它共价结合的残基，其实例为蛋白质(如核酸酶、毒素、抗体、信号肽、聚L-赖氨酸等)、插入剂(如吖啶、proralene等)、螯合剂(如金属、放射性金属、铁、氧化性金属等)和烷基化剂。也可使用能够直接或间接提供可检测信号的标记物来改变本发明的核酸序列。标记物的实例包括放射性同位素、荧光分子和生物素。
当使用本发明提供的具有碱基序列SEQ ID NO.1和2以及SEQ ID NO.3和4的引物进行PCR时，可以高特异性且高灵敏度检测各个HBV基因型。在本文中，术语“灵敏度”是指患病者中经测试为阳性的比例，即识别患者中存在特定疾病的测试能力。术语“特异性”是指无病个体中经测试为阴性的比例，即识别健康个体的测试能力。
因此，所述引物可用于诊断HBV感染、分析感染型HBV基因型、HBV的流行病学分析，以及评估HBV疫苗的功效和安全性。
根据另一个实施方式，本发明涉及用于检测HBV基因的组合物，其包含具有碱基序列SEQ ID NO.1和2的引物对、具有碱基序列SEQ ID NO.3和4的引物对和具有碱基序列SEQ ID NO.7和8的探针。
具体地，本发明提供了用于HBV检测的组合物，其包含特异于HBV S蛋白区的新型引物和具有碱基序列SEQ ID NO.7的探针，所述新型引物由具有碱基序列SEQ ID NO.1的正向引物和/或具有碱基序列SEQ ID NO.2的反向引物组成。此外，本发明提供了用于HBV检测的组合物，其包含特异于HBV前核心区的新型引物和具有碱基序列SEQ ID NO.8的探针，所述新型引物由具有碱基序列SEQ ID NO.3的正向引物和/或具有碱基序列SEQ IDNO.4的反向引物组成。
此外，本发明提供了用于检测内标的组合物，其包含特异于不存在于人和HBV基因中且作为内标以检测假阴性反应的新型引物和具有碱基序列SEQ ID NO.9的探针组成，其中所述新型引物由具有碱基序列SEQ ID NO.5的正向引物和/或具有碱基序列SEQ ID NO.6的反向引物组成。
与使用特异于单个基因碱基序列的引物和探针的技术相比，在本发明中优选通过使用S蛋白特异性引物和探针以及前核心蛋白特异性引物和探针来实现较高灵敏度和特异性地检测血液中的HBV。引物的具体序列描述在下表1中。
[表1]
  名称   引物碱基序列   长度   SEQ ID No.
  BSFOR   GTR TCT GCG GCG TTY TAT CA   20   1
  BSREV   GGA CAA ACG GGC AAC ATA CC   20   2
  BCFOR   AAA TGC CCC TAT CYT ATC AAC ACT   24   3
  BCREV   CCG AGA TTK AGA TCT TCT GCG A   22   4
  ICFOR   CGA TGG CCC TGT CCT TTT ACA TTT A   25   5
  ICREV   CTT TTC GTT GGG ATC TTT GAT TAA A   25   6
如本文所用，术语“HBV(乙肝病毒)”是一类病毒且导致通常通过输血传播的乙肝。其大体分为急性和慢性肝炎。急性乙肝的症状与甲肝或丙肝的症状类似。大多数人无症状，或一些人经历流感样症状但无需任何治疗即可痊愈。慢性乙肝的症状也与丙肝的症状类似，包括疲劳、发热、呕吐、肌肉和关节痛。症状持续时间较长，增加了向肝硬化和肝细胞癌发展的风险。因此，需要不断的检查。PCR通常用于乙肝的诊断，但是已知的PCR诊断方法的问题在于这些方法扩增并检测单个区，因此，此区中的突变会导致低灵敏度和特异性，从而提供假阳性和假阴性结果。在本发明的诊断方法中，将S蛋白特异性引物和探针连同前核心区特异性引物和探针一起使用，并将它们的扩增产物用在单一检测步骤中，从而提供便利、高特异性和灵敏度以及更高准确性的定量测定。
在优选实施方式中，本发明的组合物进一步包含用于检测由所述引物序列扩增的核酸的探针序列。
如本文所用，术语“探针”是指能够与另一目标寡核苷酸杂交的寡核苷酸，无论其或为天然存在或为合成制备，或为重组或为PCR扩增的寡核苷酸。探针可为单链或双链。探针可用于检测、鉴定和分离特定的基因序列。在优选实施方式中，可使用任何“报告物分子”标记用于本发明的任何探针，使其在包括荧光、放射性和发光系统在内的任何检测系统中都是可检测的。不希望本发明受限于任何特定检测系统或标记物。优选地，本发明的探针为SEQ ID NO.7或8所示的探针。在本发明的优选实施例中，发现所述引物和探针可用于高灵敏度且特异性地检测是否存在HBV，且无交叉反应性。
在一个优选实施方式中，本发明的探针可为在其5’和3’端具有荧光分子的探针。在一个优选实施方式中，所述探针包含分别位于其5’和3’端的荧光报告物和淬灭剂，其中它们可显示出相互干扰。因此，当探针与样品中存在的S蛋白或前核心区结合时，荧光信号的产生受限。在进行聚合酶链式反应时，探针被降解，5’端的荧光报告物被释放与3’端的淬灭剂分离，从而产生荧光信号。可通过荧光信号检测样品中存在的HBV。
可在5’端标记相关领域中常用的任何荧光分子，如6-羧基荧光素、六氯-6-羧基荧光素、四氯-6-羧基荧光素、FAM(5-羧基荧光素)、HEX(2’，4’，5’，7’-四氯-6-羧基-4，7-二氯荧光素)和Cy5(花菁-5)，但不限于此。
也可在3’端标记相关领域中常用的任何荧光分子，非限制性标记如6-羧基四甲基-罗丹明、TAMRA(5-羧基四甲基罗丹明)以及BHQ 1、2和3(黑洞淬灭剂(black hole quencher)1、2、3)，但不限于此。
在本发明中，探针的碱基序列SEQ ID NO.7-9描述在下表2中。
[表2]
名称 5’ 探针碱基序列(5’-＞3’) 3’ 长度   SEQID No.
  BSFAM   FAM   CAT CCT GCT GCTATG CCT CAT CTT C   TAMRA   25   7
  BCFAM   FAM   CCC CTA GAA GAA AGA ACT CCC TCG CC   TAMRA   26   8
  ICCy5   Cy5   ATT ACC TGT CCA CAC AAT CTG CCC TT   BHQ3   26   9
本发明的HBV特异性引物和探针能够产生长度为100bp的PCR产物，其适用于实时PCR。特别地，特异于S蛋白和前核心蛋白的探针可用于通过taqman测定或分子信标测定的PCR定量分析。
本发明的发明人已经通过碱基序列分析检验了假阳性和假阴性结果的风险。本发明的发明人发现本发明的引物和探针为能够仅扩增HBV基因的引物碱基序列，且在使用由BBI所提供的基因型套组(Genotype Panel)(PHD201(M))的测试中显示出100％的阳性预测值，表明假阳性和假阴性结果的风险很低。此外，还使用基因型套组来评估其定量结果。结果，套组间在定量结果上无显著差异(表5)。因此，使用SEQ ID NO.1和2的引物，以及SEQID NO.3和4和SEQ ID NO.7和8的探针来进行血液中HBV的高可靠性检测和定量。
在优选实施方式中，本发明可包括作为内标的其它引物和探针序列，以使假阳性和假阴性结果最小化。以内标组作为直接比较的标记物，从而防止假阳性和假阴性结果。
优选地，内标组可以为来自植物的GFP(绿色荧光蛋白)。更优选地，GFP引物序列可包含SEQ ID NO.5和6所示的引物(见表1)。
作为防止假阴性结果的内标组的引物和探针为这样的引物和探针，其特异于来自于植物的GFP(绿色荧光蛋白)基因，且不抑制HBV特异性引物和探针的实时PCR，且单独形成PCR产物。特别地，在检测低水平HBV时，HBV PCR产物的形成不受内标的PCR产物的抑制，由此能够有效地防止假阴性结果，改进定量结果的可靠性，并还可在较低的检测水平下获得定量。同时，在检测高水平HBV时，内标的PCR产物形成不受HBV基因的PCR产物的抑制，因此有效地保持测试可靠性，以降低由于内标反应抑制所导致的再次测试的可能性，从而提供了方便性和高效率，以及允许在宽泛的水平上定量测定。如表2所述，内标的探针碱基序列为SEQ ID NO.9。
在一个优选实施方式中，本发明的组合物可为用于HBV检测和定量的组合物，其进一步包含缓冲液、DNA聚合物、dNTP和蒸馏水。此外，缓冲液、DNA聚合物、dNTP和蒸馏水可为相关领域中常用的任何溶液和酶，而没有特别限制。优选地，用于HBV检测的组合物可具有表3所示的组成。
优选地，其它酶可为HS-Taq。HS-Taq为Taq DNA聚合酶的修饰形式，其通过热处理而活化。将化学部分连接到酶的活性位点，从而使得酶在室温下无活性。因此，在扩增期间，错启动的引物(misprimed primer)不延伸。与标准DNA聚合酶相比，结果具有更高的特异性和更大的产率。
本发明的引物、探针、HS-Taq和缓冲液的具体组成描述在下表3中。
[表3]
Figure GSA00000098376000081
在本发明中，靶扩增反应可优选为PCR，且PCR条件描述在下表4中。
[表4]
实时PCR的反应条件
  温度/时间   循环
  50℃/2分钟   1
  95℃/10分钟   1
  95℃/15秒57℃/60秒72℃/20秒 40
在另一实施方式中，本发明涉及用于检测HBV基因的方法，该方法包括以下步骤：从受试者中获得样品，和使用用于检测HBV的组合物检测生物样品中的HBV基因。
本文所用的术语“生物样品”包括得自于HBV感染个体、疑似感染的HBV个体或接种HBV疫苗个体的组织、细胞、全血、血清、血浆、唾液、痰液、脑脊液或尿液，但不限于此。优选得自于疑似感染HBV的个体的血液的样品。
对用于鉴定HBV存在和基因型的方法没有特别限制，只要此方法使用上述引物。此类方法的实例包括使用具有特定链的引物作为探针直接鉴定HBV DNA、Southern印迹、斑点印迹和FISH(荧光原位杂交)。其它方法包括基于使用引物对扩增HBV DNA的方法、基因型特异性聚合酶链式反应(下文称为PCR)和通用引物PCR。更优选PCR，且最优选实时PCR。
本文所用的术语“聚合酶链式反应(PCR)”是代表性的核酸扩增技术(NAT)，其在体外通过酶促扩增感兴趣的特异DNA区域。如果已知DNA分子片段的边界序列，由Mullis等在1985年开发的PCR方法可扩增DNA分子的任何片段。PCR基本上由三个主要步骤组成：变性、退火和延长。在重复这三个步骤时，特异DNA序列得到扩增。在PCR的第一步(变性)中，双链模板DNA变性为两条单链。在第二步(退火)中，引物与两类单链DNA退火，其中待扩增的序列介于引物结合区域之间。在第三步中，耐热性DNA聚合酶延长引物并合成互补链。此循环重复25-30次。
优选地，使用本发明的组合物来扩增由临床样品提取的DNA，并对产物进行实时PCR。此类实时PCR分析可通过任何商购的实时PCR反应器进行，如SLAN实时PCR检测系统(LG Life Science，韩国)、LightCyclerTM(Roche，德国)、ABI PRISMTM 7000/7700(Applied Biosystems，美国)、iCyclerTM(Bio-Rad，美国)、Rotor-GeneTM(Corbett，澳大利亚)和OpticonTM(PharmaTech，美国)，但不限于此。
引物是决定PCR结果可靠性的最重要因素。一些引物序列可引起非特异性扩增，从而导致错误的结果。在此方面，本发明提供了可靠的引物对。使用本发明引物对进行PCR能够进行HBV基因型的准确检测和极低量的灵敏定量分析。此外，当使用本发明的引物对进行PCR时，能够基于重复的PCR性能获得一致的结果。也就是说，因为本发明的引物对是高度有效和可靠的，所以使用本发明引物对获得的结果是高度可靠的。
在另一个实施方式中，本发明涉及用于HBV检测和定量的试剂盒，其包含用于检测HBV的组合物。
优选地，可通过包含具有本发明序列的引物和探针，以及内标引物和探针序列来制备所述试剂盒。所述试剂盒可包括用于HBV检测和定量的缓冲液、KCl、MgCl2和dNTP。更优选地，使用具有表3组成的试剂盒来制备用于HBV扩增和检测的试剂盒。在本发明的优选实施例中，制备具有上述组成的试剂盒，从而高灵敏性且特异性地检测和定量HBV。
实施例
以下，将参照实施例来更详细地描述本发明。然而，这些实施例仅用于说明，且不用于限制本发明的范围。
实施例1.引物和探针的构建
本发明所用的HBV特异性引物和探针为仅能够扩增HBV病毒基因的引物序列，这通过使用来自Hitachi Software的DNAsis程序分析GenBank(www.ncbi.nlm.nih.gov)(由美国国立卫生研究院(NIH)的生物技术信息国家中心(NCBI)管理)中的DNA序列，对此DNA序列进行测序，并随后使用BLAST(www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/)再次分析此DNA序列确认的。
在获得碱基序列后，使用HS-Taq来测定对HBV检测用组合物中的HBV特异性引物和探针无竞争性抑制的植物源基因的特异性引物和探针。
实施例2.引物的合成
使用例如第三版分子克隆(Molecular cloning 3rd，Sambrook and Rusell，Cold Spring Harbor Laboratory Press，New York，USA，2001)中10.42节中所述的“寡核苷酸的合成”的方法由Metabion(德国)合成实施例1中所分析的引物。
实施例3.从临床样品中提取HBV RNA
从疑似HBV感染患者的血液分离血清或EDTA-血浆，并使用基于硅胶膜的离心柱，如QIAamp MineElute病毒离心柱(Qiagen)进行提取。
实施例4.使用所述引物和探针的多重实时PCR分析
根据表3的组成制备PCR反应溶液，并在表4所示的条件下在SLAN实时PCR检测系统(LG Life Science，韩国)中进行PCR。实时测定反应产物，并在完成反应后使用SLAN 8.0程序分析结果。
在使用PCR的HBV DNA定量方法中，Cobas Amplicor HBV MonitorTM测试(Roche Diagnostics Systems，Meylan，法国)具有高灵敏度，但具有2.0×102至2.0×105拷贝/mL的窄动态范围。因此，为了在准确定量的线性范围内测定，需要将样品稀释。此外，bDNA方法是基于信号扩增的DNA定量方法，其中使用各个病毒DNA特异性探针来捕获存在于患者血清中的病毒基因，并随后使捕获的基因与探针和扩增子(amplifier)反应以定量DNA。此方法已经在病毒感染的诊断和疗效评估中使用了一些年。在本发明中，通过本发明的发明人发明的实时PCR测量韩国疑似慢性HBV感染患者的血清HBVDNA水平，并与Cobas Amplicor HBV MonitorTM测试和bDNA方法比较，以评估其正确性。
如表5和图3所示，发现在使用BBI提供的基因型套组(PHD201(M))的测试中，阳性预测值为100％，说明假阳性和假阴性结果的风险极低。此外，图1显示能够进行阳性检测和定量而无内标对HBV特异性引物和探针的竞争性抑制。
[表5]
Figure GSA00000098376000111
实施例5.本发明试剂盒的HBV检测极限的试验
使用本发明的试剂盒来测试其对HBV感染的检测极限。测试结果显示在下表6中。
[表6]
检测极限的测试
Figure GSA00000098376000122
为测定HBV检测的下限，应用HBV国际标准，NIBSC 97/746来补偿用于标准化的基质效应，随后从无药物血清(Bio-rad)稀释的6种不同浓度的HBV血清中提取DNA，用AdvanSure HBV实时PCR定量，并随后进行概率值分析和计算95％检测区间。结果，95％检测极限为2.6IU/mL。
序列表
<110>株式会社LG生命科学
<120>使用实时PCR检测HBV的方法
<130>OPA10026
<150>KR10-2009-0035638
<151>2009-04-23
<160>9
<170>KopatentIn 1.71
<210>1
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>用于扩增HBV S蛋白的正向引物
<400>1
gtrtctgcgg cgttytatca                                                 20
<210>2
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>用于扩增HBV S蛋白区的反向引物
<400>2
ggacaaacgg gcaacatacc                                                 20
<210>3
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>用于扩增HBV前核心区的正向引物
<400>3
aaatgcccct atcytatcaa cact                                            24
<210>4
<211>22
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>用于扩增HBV前核心区的反向引物
<400>4
ccgagattka gatcttctgc ga                                              22
<210>5
<211>25
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>用于扩增GFP的正向引物
<400>5
cgatggccct gtccttttac attta                                            25
<210>6
<211>25
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>用于扩增GFP的反向引物
<400>6
cttttcgttg ggatctttga ttaaa                                            25
<210>7
<211>25
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>用于HBV S蛋白区的探针
<400>7
catcctgctg ctatgcctca tcttc                                            25
<210>8
<211>26
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>用于HBV前核心区的探针
<400>8
cccctagaag aaagaactcc ctcgcc                                           26
<210>9
<211>26
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>用于GFP的探针
<400>9
attacctgtc cacacaatct gccctt                                           26

Claims (8)

1.用于通过实时PCR检测HBV基因的组合物，其包含两组引物对和探针，其中一组引物对和探针由SEQ ID NO.7所示的探针以及SEQ ID NO.1和2所示的引物对组成，另一组引物对和探针由SEQ ID NO.8所示的探针以及SEQ ID NO.3和4所示的引物对组成。
2.如权利要求1所述的组合物，其中所述组合物还包含作为内标且没有显示出竞争性抑制的SEQ ID NO.5和6所示的引物对和SEQ ID NO.9所示的探针。
3.如权利要求1所述的组合物，其还包含HS-Taq、缓冲液、dNTP或蒸馏水。
4.如权利要求3所述的组合物，其包含各为100μM的SEQ ID NO.1-4的引物、各为100μM的SEQ ID NO.7和8的探针、2.5U HS-Taq和2mMdUTP。
5.如权利要求1所述的组合物，其中所述探针包含在5’和3’端的荧光分子。
6.如权利要求5所述的组合物，其中所述在5’端的荧光分子为选自由6-羧基荧光素、六氯-6-羧基荧光素、四氯-6-羧基荧光素、5-羧基荧光素、2’，4’，5’，7’-四氯-6-羧基-4，7-二氯荧光素和花菁-5组成的组中的任意一种。
7.如权利要求5所述的组合物，其中所述在3’端的荧光分子为选自由6-羧基四甲基-罗丹明、5-羧基四甲基罗丹明以及黑洞淬灭剂1、2和3组成的组中的任意一种。
8.用于检测HBV的试剂盒，其包含权利要求1-7中任一项所述的组合物。
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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102181584B (zh) * 2011-05-09 2012-12-19 中国人民解放军第二军医大学 一种基于基因测序法的乙型肝炎病毒基因分型试剂盒
KR101377824B1 (ko) * 2012-11-19 2014-04-01 가톨릭대학교 산학협력단 수인성 바이러스 검출용 프라이머 및 이를 포함하는 검출 키트
CN103468829B (zh) * 2013-09-25 2016-05-25 北京普利耐特生物科技有限公司 一种检测乙肝病毒核酸试剂盒
CN104450963B (zh) * 2014-12-08 2017-10-20 上海五色石医学研究有限公司 一种hbv dna数字pcr定量检测试剂盒及其应用
CN108342507A (zh) * 2017-03-05 2018-07-31 北京天健惠康生物科技有限公司 基于微液滴数字pcr技术的hbv核酸定量检测系统
CN107841793A (zh) * 2017-08-02 2018-03-27 重庆市肿瘤研究所 肺癌多基因突变文库的构建方法
CN108950082A (zh) * 2018-08-13 2018-12-07 郑州安图生物工程股份有限公司 一种乙型肝炎病毒核酸定量检测试剂盒
CN109837356B (zh) * 2019-03-14 2019-10-25 中山大学肿瘤防治中心（中山大学附属肿瘤医院、中山大学肿瘤研究所） 基于CRISPR-Cas12a和G四链体-血红素的HBV的检测方法及应用
CN109852731A (zh) * 2019-04-02 2019-06-07 重庆医科大学附属儿童医院 引物探针组合及其试剂盒在hbv检测中的应用

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2003093797A2 (en) * 2002-05-02 2003-11-13 Abbott Laboratories Polynucleotides for the detection and quantification of hepatitis b virus nucleic acids
WO2003106714A1 (en) * 2002-06-14 2003-12-24 Gen-Probe Incorporated Compositions and methods for detecting hepatitis b virus
CN1626677A (zh) * 2003-08-14 2005-06-15 三星电子株式会社 检测乙型肝炎病毒的pcr引物组，使用该引物组检测乙型肝炎的方法以及包含该引物组的乙肝病毒检测试剂盒
WO2008044129A2 (en) * 2006-10-12 2008-04-17 Bio-Rad Pasteur Double-stranded probes for the fluorescent detection of nucleic acids

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2003093797A2 (en) * 2002-05-02 2003-11-13 Abbott Laboratories Polynucleotides for the detection and quantification of hepatitis b virus nucleic acids
WO2003106714A1 (en) * 2002-06-14 2003-12-24 Gen-Probe Incorporated Compositions and methods for detecting hepatitis b virus
CN1626677A (zh) * 2003-08-14 2005-06-15 三星电子株式会社 检测乙型肝炎病毒的pcr引物组，使用该引物组检测乙型肝炎的方法以及包含该引物组的乙肝病毒检测试剂盒
WO2008044129A2 (en) * 2006-10-12 2008-04-17 Bio-Rad Pasteur Double-stranded probes for the fluorescent detection of nucleic acids

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Jin—Rong Zhao et al..Detection of hepatitis B virus DNA by real-time PCR using Taqman-MGB probe technology.《World Journal Of Gastroenterology》.2005,第11卷(第4期),508-512. *
Qingrun Zhang et al..Universal primers for HBV genome DNA amplification across subtypes: a case study for designing more effective viral primers.《Virology Journal》.2007,第4卷(第1期),92. *

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