CN101726596A - 检测乙肝五项的荧光微球免疫层析检测卡及其制备方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了检测乙肝五项的荧光微球免疫层析检测卡及其制备方法,包括乙肝表面抗原检测试纸条,乙肝e抗原检测试纸条,乙肝表面抗体检测试纸条,乙肝e抗体检测试纸条、乙肝核心抗体检测试纸条。每张试纸条的构成是在底板上依次搭接地粘贴滤纸、样本垫、喷涂有荧光微球的玻璃纤维膜、硝酸纤维素膜和吸水纸,硝酸纤维素膜上包被有抗原作为检测区和包被有抗兔抗体作为质控区;检测过程中,发射出的荧光经滤光片后,用CCD扫描技术,将发射光谱收集、聚集和倍增后,转换成数值信号,乘以校正系数,校正后的荧光强度代入荧光分析仪中的标准曲线,可自动计算出样本中乙肝五项的浓度。本发明对乙肝病毒的检测具有特异、灵敏、简便和定量准确的特性。
Description
技术领域
本发明涉及医学检测领域,具体是涉及定量检测乙肝五项的荧光微球免疫层析检测卡及其制备方法。
背景技术
作为传染性疾病的一种,乙型肝炎已成为大家谈之色变的一种传染病。由于我国医疗诊断条件简陋、饮食习惯不卫生和预防意识薄弱等原因,造成我国现有1.2亿多乙肝病毒携带者,约占人口的10%,每年死于肝癌的人数高达11万。因此,我国的乙肝防治工作任重而道远,而进行乙肝检测是做好乙肝防治工作的一个关键环节。在生物和医学检测中,经常用到免疫分析法,它包括放射免疫分析、酶联免疫分析及免疫层析等方法。放射免疫分析和酶联免疫分析法需要昂贵的设备、专业的操作人员和复杂的操作步骤,难以快速得到检测结果。免疫层析法因操作简单、快速和成本底,而常用于快速定性或半定量检测,如盐酸克伦特罗、黄曲霉毒素和促黄体激素等胶体金试纸条。基于免疫层析技术的产品因操作简便、快速和只需肉眼观察或简单仪器就能显示结果等优点,被广泛用于生物医学和食品安全等快速检测领域。
免疫层析技术出现于80年代初,它通常以条状纤维层析材料为固相,通过毛细作用使样品溶液在层析条上泳动,并同时使样品中的待测物与层析材料上针对待测物的受体(如抗体或抗原)发生高特异、高亲和性的免疫反应。层析过程中免疫复合物被富集或截留在层析材料的一定区域(检测区),通过酶反应或可目测标记物(如胶体金)或荧光激发而获得测定结果。而游离标记物(即未与待测物结合的标记物)则越过检测区,达到与结合标记物自动分离之目的。免疫层析技术常见的示踪粒子有胶体金、乳胶、胶体硒、明胶等,其中运用最成功的标记物为胶体金。由于胶体金标记利用静电吸附,在液相中稳定性较差,已标记上的蛋白分子容易脱落;不同的材料基质效应明显,背景干扰大;只有当金颗粒达到一定量时,肉眼才能分辨出检测条带与背景差异,因而检测灵敏度不高,在实际检测中只能对检测测物定性或半定量,无法准确定量。目前,通过免疫层析技术来检测乙肝五项或其中几项的公开的专利多采用胶体金或胶体硒等标记技术。如公开号为CN101246171A的专利公开了一种便携式乙肝两对半快速联检装置,此装置可一次通过肉眼观察联检乙肝五项指标,在避免病原物散播、医源性感染、和环保处理废弃物方面存在创新,但却不能进行定量。而以荧光纳米微粒为标记物进行免疫层析检测的相关专利也有报道,如公开号为CN1645146A的专利公开了一种用荧光稀土纳米颗粒作为标记物的免疫层析方法及其检测试纸条的制备,与胶体金相比,它提高了免疫层析检测的灵敏度,还可以进行定量。但此荧光纳米颗粒也存在一定的缺陷,如染料易泄露、抗溶液干扰能力差等,在很大程度上限制了其应用的范围。
发明内容
针对现有技术的缺陷,本发明的目的是提供一种能够灵敏、特异、简便和快速的检测乙肝五项指标的荧光微球免疫层析检测卡,并提供此检测卡的制备方法。
为实现上述目的,本发明采用的技术方案是:
提供检测乙肝五项的荧光微球免疫层析检测卡,包括用于检测HBsAg的试纸条A、用于检测HBeAg的试纸条B、用于检测抗-HBs的试纸条C、用于检测抗-HBe的试纸条D和用于检测抗-HBc的试纸条E;
所述试纸条A、试纸条B、试纸条C、试纸条D和试纸条E均包括在底板上依次搭接地粘贴的滤纸、样本垫、玻璃纤维膜、硝酸纤维素膜和吸水纸,所述的玻璃纤维膜上喷涂有荧光微球垫,所述的硝酸纤维素膜上固定有检测区和质控区;
所述试纸条A的玻璃纤维膜上喷涂的荧光微球垫为荧光微球标记抗-HBs单抗和兔抗,硝酸纤维素膜上检测区喷涂另一种抗-HBs单抗,硝酸纤维素膜上质控区喷涂鼠抗兔IgG或羊抗兔IgG;
所述试纸条B的玻璃纤维膜上喷涂的荧光微球垫为荧光微球标记抗-HBe单抗和兔抗,硝酸纤维素膜上的检测区喷涂另一种抗-HBe单抗,硝酸纤维素膜上质控区喷涂鼠抗兔IgG或羊抗兔IgG;
所述试纸条C的玻璃纤维膜上喷涂的荧光微球垫为荧光微球标记HBsAg和兔抗,硝酸纤维素膜上检测区喷涂HBsAg,硝酸纤维素膜上质控区喷涂鼠抗兔IgG或羊抗兔IgG;
所述试纸条D的玻璃纤维膜上喷涂的荧光微球垫为荧光微球标记HBeAg和兔抗,硝酸纤维素膜上检测区喷涂抗-HBe单抗,硝酸纤维素膜上质控区喷涂鼠抗兔IgG或羊抗兔IgG;
所述试纸条E的玻璃纤维膜上喷涂的荧光微球垫为荧光微球标记HBcAg和兔抗,硝酸纤维素膜上检测区喷涂抗-HBc单抗,硝酸纤维素膜上质控区喷涂鼠抗兔IgG或羊抗兔IgG。
所述的荧光微球是一种二氧化硅与荧光物质复合的核壳双结构发光纳米粒子,作为荧光物质的有机染料位于内核,所述的荧光微球直径为30-150nm。
所述的荧光微球的制备方法为:将60ml无水乙醇、2~15ml氨水、3~12ml正硅酸乙酯、1~4ml超纯水、0.1~20mg荧光物质混合在一起,20~80℃恒温水浴反应6~24小时后,加入Na2SiO3封闭微球,Na2SiO3的终浓度为2%~10%,通过加入盐酸调节溶液pH值来控制荧光微球大小,再用表面活性基团修饰荧光微球。
所述的活性基团为-CHO、-COOH、-OH、-NH2或-SH;所述的荧光物质为菲咯啉联钌有机染料、异硫氰根荧光素、异硫氰根罗丹明、6-羧基荧光素酰胺酯、1,8-萘二酰亚胺、7-羟基香豆素有机荧光染料或其掺杂物以及量子点。
本发明采取的另一个技术方案是提供一种上述检测卡的制备方法,具体包括以下步骤:
免疫层析试纸条制备步骤包括:
(a)HBsAg检测试纸条A的制备:
用荧光微球标记抗-HBs单抗和兔抗并将其喷涂在玻璃纤维膜上,即为制备好的HBsAg检测试纸条的荧光微球垫;将另一种抗-HBs单抗包被到硝酸纤维素膜上制成检测区,将鼠抗兔IgG或羊抗兔IgG包被到硝酸纤维素膜上制成质控区;
(b)HBeAg检测试纸条B的制备:
用荧光微球标记抗-HBe单抗和兔抗并将其喷涂在玻璃纤维膜上,即为制备好的HBeAg检测试纸条的荧光微球垫;将另一种抗-HBe单抗包被到硝酸纤维素膜上制成检测区,将鼠抗兔IgG或羊抗兔IgG包被到硝酸纤维素膜上制成质控区;
(c)抗-HBs检测试纸条C的制备:
用荧光微球标记HBsAg和兔抗,并将其喷涂在玻璃纤维膜上,即为制备好的抗-HBs检测试纸条的荧光微球垫;将HBsAg包被到硝酸纤维素膜上制成检测区,将鼠抗兔IgG或羊抗兔IgG包被硝酸纤维素膜上制成质控区;
(d)抗-HBe检测试纸条D的制备:
用荧光微球标记HBeAg和兔抗并将其喷涂在玻璃纤维膜上,即为制备好的抗-HBe检测试纸条的荧光微球垫;将抗-HBe单抗包被到硝酸纤维素膜上制成检测区,将鼠抗兔IgG或羊抗兔IgG包被到硝酸纤维素膜上制成质控区;
(e)抗-HBc检测试纸条E的制备:
用荧光微球标记HBcAg和兔抗并将其喷涂在玻璃纤维膜上,即为制备好的抗-HBc检测试纸条的荧光微球垫;将抗-HBc单抗包被到硝酸纤维素膜上制成检测区,将鼠抗兔IgG或羊抗兔IgG包被到硝酸纤维素膜上制成质控区;
组装和剪切:分别在粘性底板上依次搭接地粘贴:滤纸、样本垫、荧光微球垫、硝酸纤维素膜以及吸水纸,并剪切成适当宽度即成为5张免疫层析试纸条。
所述检测区和质控区的制备方法如下:
用喷膜仪将抗原或抗体包被到硝酸纤维素膜上:分别用0.01~0.1M pH 7.2的磷酸盐缓冲液调节包被物浓度为0.5~8.0mg/mL,喷膜量为0.5~1.0μL/cm,检测区喷涂抗原或抗体,质控区喷涂抗体,两区相隔4~8mm,37℃烘干过夜后,室温干燥环境下保存备用。
所述检测卡的制备方法:
分别将5张免疫层析试纸条固定在5张底卡上,或将5张试纸条并排固定在同一张底卡上,然后在试纸条表面用面卡压紧,即为检测乙肝五项的5个试纸检测卡或5张试纸条固定在一个底卡上的一个试纸检测卡,底卡和面卡一般都选用塑料卡,底卡能使试纸条上的样本垫、荧光微球垫、硝酸纤维素膜和吸水纸紧密结合,面卡可保护试纸,使其不受损坏。面卡上预留加样孔和观察窗,加样孔的位置与试纸条的样本垫对应,观察窗的位置与试纸条的硝酸纤维素膜(NC)膜对应。
本发明还提供了用检测乙肝五项的荧光微球免疫层析检测卡定量检测乙肝五项指标的方法,包括以下步骤:
(1)绘制标准曲线:分别配制一系列不同浓度的HBsAg、抗-HBs、HBeAg、抗-HBe和抗-HBc标准品溶液,每种溶液配置6个以上不同的浓度,分别用数张同一批次的检测卡检测标准品溶液,分别得到各试纸条的检测区荧光强度以及标准质控线荧光强度Co,以各标准品溶液的浓度或浓度的对数x为横坐标,检测区荧光强度y为纵坐标,分别绘制五条标准曲线y=ax+b(其中a为曲线的斜率,b为曲线的截距,即标准品溶液的浓度为零时的检测区荧光强度),在荧光分析仪中分别保存五条标准曲线和各自对应的标准质控线荧光强度Co。
(2)将待检样本加入荧光微球免疫层析检测卡的加样孔中,反应5~20min后,将检测卡放入检测窗口;
(3)截留在检测区和质控区的荧光微球在最佳激发光源激发下,发出稳定特定波长的荧光;
(4)发射的荧光经滤光片滤除杂光后,通过聚焦系统将采集的光学信号,送入光电倍增管,使光信号得到增强,再经过信号转换元件的转换,获得检测区与质控线的荧光强度;
(5)将获得的质控线荧光强度与荧光分析仪中内置的质控线荧光强度进行校正,得到本次待检样本测定时的校正系数;
(6)将获得的检测区荧光数值乘以校正系数,并将所得数值代入已设置在荧光分析仪中的标准曲线,即得到样本中乙肝五项中各项的浓度,以上过程都通过荧光分析仪及其内置分析软件来处理。
本发明中所述的检测乙肝五项的荧光微球免疫层析检测卡上的免疫反应包括两种模式:夹心模式和竞争模式。HBsAg和HBeAg的检测采用双抗体夹心法检测,抗-HBs的检测采用双抗原夹心法检测,抗-HBe和抗-HBc的检测采用竞争法检测。
(a)夹心模式:可用于检测样品中存在的病原体、微生物以及大分子抗体、抗原等;包括双抗体夹心和双抗原夹心,两者原理相同,现以双抗体夹心为例进行说明。
HBsAg的检测是采用双抗体夹心方法。在HBsAg检测试纸条的制备过程中,首先将荧光微球标记的抗-HBs单克隆抗体A和兔抗分别喷涂在玻璃纤维膜上制成荧光微球垫;然后将抗-HBs单克隆抗体B固定于硝酸纤维素膜上作为检测区,将鼠抗兔IgG或羊抗兔IgG固定于硝酸纤维素膜上作为质控区。
将样品加至HBsAg检测试纸条的加样孔,若样品中存在HBsAg,则HBsAg和荧光微球垫上的荧光微球-抗体A相结合,形成免疫复合物(荧光微球-抗体A-HBsAg);然后在毛细作用下,免疫复合物、荧光微球-兔抗以及游离的荧光微球-抗体A跟随样品中的液体基质一起进入NC膜;当经过检测区时,检测区上的抗-HBs抗体B将与免疫复合物中HBsAg上的B位点结合形成荧光微球-抗体A-HBsAg-抗体B复合物,截留在检测区上,而荧光微球-兔抗和游离的荧光微球-抗体A不与抗体B结合,在毛细作用下继续流动,当经过质控区时,荧光微球-兔抗与鼠抗兔IgG或羊抗兔IgG结合而被截留在质控区上。用荧光分析仪检测检测区与质控区的荧光强度,其中检测区上的荧光强度与样品中HBsAg浓度成正比。
(b)竞争模式:常用于检测样品中存在的抗体和小分子抗原,也可检测其它抗原。下面以抗-HBe的检测为例说明竞争模式。
在抗-HBe检测试纸条的制备过程中,将荧光微球与HBeAg及兔抗相结合,并喷涂在玻璃纤维膜上制成荧光微球垫;将抗-HBe单抗固定于NC膜上作为检测区,将鼠抗兔IgG或羊抗兔IgG固定于NC膜上作为质控区。
将样品加至抗-HBe检测试纸条的加样孔,若样品中存在抗-HBe,则抗-HBe可和荧光微球垫上-HBeAg结合,形成免疫复合物(荧光微球-HBeAg-抗-HBe);在毛细作用下,抗-HBe、荧光微球-兔抗、免疫复合物以及游离的荧光微球-HBeAg与样品中的液体基质一起进入NC膜;当经过检测区时,游离的荧光微球-HBeAg抗-HBe与检测区上的抗-HBe单抗竞争结合荧光微球-HBeAg。荧光微球-HBeAg与检测区上的抗-HBe单抗结合形成免疫复合物,被截留于检测区上,而荧光微球-兔抗、免疫复合物荧光微球-HBeAg-抗-HBe不与检测区上的抗-HBe单抗结合,在毛细作用下继续流动;当经过质控区时,荧光微球-兔抗与鼠抗兔IgG或羊抗兔IgG发生免疫反应,并把荧光微球-兔抗固定于质控区上。用荧光分析仪检测检测区与质控区的荧光强度,其中检测区的荧光强度与待测物样品中抗-HBe浓度成反比。
本发明的优点如下:
1.荧光物质被特定波长激发光激发后,发生斯托克斯位移效应,能在较大波长发射荧光,因此荧光不受来自激发光本底的干扰,灵敏度大大高于紫外-可见分光光度法,其灵敏度是用传统染料和有色标记物质检测方法的10~1000倍。荧光标记检测方法与这两种方法相比,还具有操作简便,检测快速,价格低廉等优点;
2.荧光微球是一种核壳双结构二氧化硅纳米粒子,有机染料位于内核,不受外界环境的影响,因而荧光稳定、强度高,为通过荧光进行定量检测提供了良好的条件,有力的克服了常规荧光微球的染料易泄露,抗溶液干扰能力差等缺点,增加了荧光稳定性和荧光寿命,扩大了可检测物的范围和种类;
3.荧光微球表面易修饰活性基团,可采用化学偶联方法标记抗体或抗原,形成抗体或抗原与微球的稳定结合;
4.通过CCD扫描技术或光纤技术将过滤后的发射光谱收集后,进行光电和模/数转换,再经过软件处理,最后以数字显示待测物浓度,从而实现乙肝五项指标的快速定量检测。
附图说明
图1是免疫层析试纸条的结构示意图;
图2是荧光微球免疫层析检测卡的结构示意图;
图3是用仪器定量检测样品中乙肝五项的流程图;
图4是检测乙肝五项的荧光微球免疫层析单个检测卡示意图;
图5是检测乙肝五项的荧光微球免疫层析五合一卡的检测卡示意图;
图6是乙肝HBsAg检测标准工作曲线图。
具体实施方式
下面结合附图和具体实施例对本发明作进一步说明,但不作为对本发明的限定。
如图1所示,该免疫层析试纸条的组成为:在粘性底板8上,依次搭接地粘贴滤纸1、样本垫2、喷涂有荧光微球标记的抗体或抗原的玻璃纤维膜3、硝酸纤维素膜4、和吸水纸7,其中在硝酸纤维素膜4上有包被抗体或抗原的检测区5和包被有另一种抗体或抗原的质控区6。
如图2所示,该免疫层析检测卡是单卡型的,由一张免疫层析试纸条固定在底卡上而形成,具体构造包括底卡9、面卡10、加样孔11、观察窗12、NC膜13、质控区14、检测区15。
如图1、2和3所示,将样品滴加到样本垫2上,样品溶液溶解玻璃纤维膜3上喷涂的荧光微球标记抗体或抗原,通过毛细作用在纤维膜上向前泳动,同时样品中的待测物质与荧光微球标记物反应;反应溶液经过检测区5时,与检测区的包被物结合,而富集于该检测区。反应3~30min后,将试纸条放入试纸卡插槽16,试纸检测卡18在最佳激发光源17激发下,发射的荧光19通过滤光片20滤过后,通过观察窗口21在检测区5能够观察到一条或两条清晰的荧光条带。同时滤过光经CCD扫描系统或光纤系统22汇聚后,经过光电聚集管23,送入光电倍增管24,光信号得到放大,再经过信号转换元件25以及软件处理26后,样品中待测物的浓度在数据输出27的显示屏上显示。
如图4所示,检测乙肝五项的5个荧光微球免疫层析试纸条分别制作5张检测卡,针对不同的检测项目,使用不同的检测卡。
如图5所示,检测乙肝五项的5张荧光微球免疫层析试纸条并排放置在一张检测卡上,这样检测时更方便。
实施例1检测HBsAg的异硫氰酸荧光微球免疫层析试纸条A的制备和检测方法
(1)、异硫氰酸荧光素-二氧化硅壳核双结构荧光微球的制备:
将60ml无水乙醇、2.5ml氨水、4ml正硅酸乙酯、1ml超纯水、1mg异硫氰酸荧光素混合在一起,80℃恒温水浴反应6小时后,加入Na2SiO3封闭微球,Na2SiO3的终浓度为3%,通过加入盐酸调节溶液pH值来控制荧光微球大小,合成所需粒径大小的荧光微球,并在微球表面进行活性基团(-COOH)修饰。
(2)、荧光微球标记的抗-HBs单抗S1的制备(EDC法):
取1mg包裹异硫氰酸荧光素的荧光微球在1000×g离心10~15min,收集沉淀,用0.01MpH4.8的硼酸盐缓冲液调节微球浓度为OD450=0.2。然后加入90μL 50mg/mL对乙基-N,N-二甲基丙基碳二亚胺(EDC),150μL 5mg/mL氮羟基琥珀酰亚胺(NHS),振荡混匀,室温孵育10~30min后,1000×g离心5~15min,沉淀用0.01M pH4.8的硼酸盐缓冲液溶解,并调节微球浓度为OD450为0.2~1。在0.1mL的该荧光微球中加入1~10μg抗-HBs单抗S1,充分混匀后,室温搅拌反应6h,分别用超纯水洗涤离心3次后,沉淀用0.01M pH 7.2的PBS溶液(其中包含5%蔗糖和0.05%Tween-20)复溶沉淀至起始体积后,即为制备好的荧光微球标记的抗-HBs单抗S1。
(3)、荧光微球垫的制备:
用喷膜仪将荧光微球标记的抗-HBs单抗S1和兔抗按照4μL/cm的量喷涂至玻璃纤维膜(30×0.8cm)上,25℃真空干燥1~2h,放于干燥环境备用。
(4)、检测区和质控区的制备:
用0.01M pH 7.4PBS(磷酸盐缓冲液,其中包含5%蔗糖和0.05%Tween-20)调节抗-HBs单抗S2的浓度为0.5mg/mL,将所得溶液喷涂在NC膜上形成检测区;用0.01M pH 7.2PBS(磷酸盐缓冲液,其中包含5%蔗糖和0.05%Tween-20)调节羊抗兔IgG的浓度为0.5mg/mL,将所得溶液喷涂在NC膜上形成质控区。两区的喷膜量均为0.74μL/cm,两区相隔5mm,质控区距离NC膜一端2mm,37℃烘干过夜后,于室温干燥环境下保存备用。
(5)、荧光微球免疫层析检测卡的制备:
组装试纸条:在PVC底板上依次搭接地粘贴:(1)滤纸和样本垫,样本垫为一种经过5%Tween-20处理的玻璃纤维膜;(2)喷涂有荧光微球标记的抗-HBs单抗S1和兔抗的荧光微球垫;(3)喷涂有抗-HBs单抗S2作为检测区和羊抗兔IgG作为质控区的硝酸纤维素膜;(4)吸水纸,组装完成后剪切成4mm的宽度,即成为免疫层析试纸条。
把一张免疫层析试纸条固定在塑料底卡上,试纸表面用面卡压紧,面卡在对应试纸条的样本垫和NC膜的部位分别预留加样孔和观察窗。免疫层析检测卡组装好后装入铝箔袋中,加入干燥剂后封口保存,于室温干燥环境下至少可以保存一年。
(6)、荧光微球免疫层析检测卡定量检测人血清HBsAg浓度:
A、标准工作曲线的绘制:将HBsAg标准品配制成一系列浓度:0ng/ml,2ng/ml,5ng/ml,10ng/ml,20ng/ml,40ng/ml,80ng/ml,160ng/ml,320ng/ml,分别加至同一批次的数张免疫层析检测卡上,重复10次,计算出检测区和质控区的荧光强度平均值,见表1。
表1:乙肝HBsAg检测标准工作曲线
标准品浓度(ng/ml) | 0 | 2 | 5 | 10 | 20 | 40 | 80 | 160 | 320 |
T线 | 0.0186 | 0.1585 | 0.3255 | 0.58142 | 1.0826 | 1.9262 | 3.5789 | 7.5316 | 16.3456 |
C线 | 0.9952 | 1.0986 | 1.0867 | 0.9985 | 1.0526 | 1.0625 | 1.1032 | 1.0836 | 1.0802 |
以检测区的荧光强度Y为纵坐标,HBsAg标准品溶液浓度X为横坐标,绘制一条标准曲线,标准曲线的公式为Y=0.0503X-0.0515,则X=(Y+0.0515)/0.0503,见附图6。质控线的平均值为1.0623±0.0403。将标准曲线和质控线荧光值保存在荧光分析仪中,此方法的检测限可至1ng/ml。
B、样品的检测:
(a)平放检测卡,待测血清平衡至室温后,取其50μL加入加样孔中,于室温下反应20min,将检测卡放入检测卡插槽;
(b)截留在检测区和质控区的荧光微球在最佳激发光源的激发下,发出强烈的荧光;
(c)发射的荧光经滤除杂光后,通过聚集系统将采集的光学信号送入光电倍增管,使光信号得到增强,再经过信号转换元件的转换,获得检测区与质控线的荧光强度值。
(d)荧光分析仪中的内置分析软件对检测区荧光强度进行校正,并把校正值代入内置标准曲线,自动计算出待测血清中HBsAg的浓度。
取10个待检血清样本,分别用本实施例所述的荧光微球免疫层析检测卡和ELISA检测,将两种方法的检测结果进行比较,结果见表2,单位为ng/mL。
表2:ELISA和试纸检测卡检测多个血清HBsAg的结果
样本 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 |
ELISA | 2.1 | 3.3 | 5.1 | 8.5 | 9.1 | 13.6 | 22.5 | 26.8 | 31.9 | 36.8 |
免疫层析 | 2.5 | 3.5 | 6.9 | 9.2 | 9.5 | 14.8 | 20.3 | 27.5 | 35.3 | 38.1 |
两组数据的相关系数r=0.9944,表明这两种方法的检测结果显著相关。本发明所述的荧光微球免疫层析检测卡可用来进行快速定量检测HBsAg。
实施例2检测HBeAg的四甲基异硫氰酸罗丹明荧光微球免疫层析试纸条B的制备和检测方法
(1)、四甲基异硫氰酸罗丹明荧光微球的制备
将10ml环己烷,12ml正己醇和5mlTriton X-100-按2∶1.2∶1比例混合均匀,加入适量的水作为分散相,超声乳化后,加入0.5mg的四甲基异硫氰酸罗丹明,搅拌20min,加入一定量氨水至溶液澄清,加入正硅酸乙酯2.5ml搅拌2min后,加入氨乙基氨丙基聚二甲基硅氧烷(AEAPS)2ml,混合均匀,搅拌24h后,经多次洗涤、离心所得微粒即为制备好的异硫氰酸罗丹明荧光微球。
(2)、荧光微球标记的抗-HBe单抗的制备(EDC法):
取1mg包裹四甲基异硫氰酸罗丹明荧光素的荧光微球在1000×g离心10~15min,收集沉淀,用0.01M pH4.8的硼酸盐缓冲液调节微球浓度为OD450=0.2,然后加入90μL 50mg/mL的对乙基-N,N-二甲基丙基碳二亚胺(EDC),150μL 5mg/mL氮羟基琥珀酰亚胺(NHS),振荡混匀,室温孵育10~30min后,1000×g离心5~15min,沉淀用0.01MpH4.8的硼酸盐缓冲液溶解,并调节微球浓度为OD450为0.2~1。在0.1mL的该荧光微球中加入1~10μg抗-HBe单抗,充分混匀后,室温搅拌反应6h,分别用超纯水洗涤离心3次后,沉淀用0.01M pH 7.2的PBS溶液(其中包含5%蔗糖和0.05%Tween-20)复溶沉淀至起始体积后,即为制备好的荧光微球标记的抗-HBe单抗。
(3)、荧光微球标记的兔抗的制备(EDC法):
取1mg包裹四甲基异硫氰酸罗丹明荧光素的荧光微球在1000×g离心10~15min,收集沉淀,用0.01M pH4.8的硼酸盐缓冲液调节微球浓度为OD450=0.2,然后加入90μL 50mg/mL的对乙基-N,N-二甲基丙基碳二亚胺(EDC),150μL 5mg/mL氮羟基琥珀酰亚胺(NHS),振荡混匀,室温孵育10~30min后,1000×g离心5~15min,沉淀用0.01M pH4.8的硼酸盐缓冲液溶解,并调节微球浓度为OD450为0.2~1。在0.1mL的该荧光微球中加入2~10μg兔抗,充分混匀后,室温搅拌反应6h,分别用超纯水洗涤离心3次后,沉淀用0.01MpH 7.2的PBS溶液(其中包含5%蔗糖和0.05%Tween-20)复溶沉淀至起始体积后,即为制备好的荧光微球标记的兔抗。
(4)、荧光微球垫的制备:
用喷膜仪将标记抗-HBe单抗和兔抗的荧光微球按照4μL/cm的量喷涂至玻璃纤维膜(30×0.8cm)上,25℃真空干燥1~2h,放于干燥环境备用。
(5)、检测区和质控区的制备:
用0.01M pH 7.4PBS(磷酸盐缓冲液,其中包含5%蔗糖和0.05%Tween-20)调节抗-HBe单抗的浓度为0.5mg/mL,将所得溶液喷涂在NC膜上形成检测区;用0.01M pH 7.2PBS(磷酸盐缓冲液,其中包含5%蔗糖和0.05%Tween-20)调节鼠抗兔IgG的浓度为0.5mg/mL,将所得溶液喷涂在NC膜上形成质控区。两区的喷膜量均为0.74μL/cm,两区相隔5mm,质控区距离NC膜一端2mm,37℃烘干过夜后,于室温干燥环境下保存备用。
(6)、荧光微球免疫层析检测卡的制备如实施例1。
(7)、检测卡定量检测人血清HBeAg浓度的方法如实施例1:
取8个待检血清样本,分别用本实施例所述的荧光微球免疫层析检测卡和ELISA检测HBeAg,将两种方法的检测结果进行比较,结果见表3,单位为ng/mL。
表3:用ELISA和免疫层析检测卡检测8个血清HBeAg的结果
样本 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 |
ELISA | 4.5 | 6.3 | 7.2 | 8.8 | 9.5 | 15.6 | 20.5 | 27.3 |
免疫层析 | 4.0 | 5.8 | 6.9 | 7.1 | 8.3 | 16.2 | 21.3 | 26.5 |
两组数据的相关系数r=0.9954,表明这两种方法的检测结果显著相关。本发明所述的荧光微球免疫层析检测卡可用于快速定量检测HBeAg。
实施例3检测抗-HBs的异硫氰酸荧光微球免疫层析试纸条C的制备和检测方法
(1)、异硫氰酸荧光素-二氧化硅壳核双结构荧光微球的制备如实施例1。
(2)、荧光微球标记的HBsAg的制备(EDC法):
取1mg包裹异硫氰酸荧光素的荧光微球在1000×g离心10~15min,收集沉淀,用0.01MpH4.8的硼酸盐缓冲液调节微球浓度为OD450=0.2。然后加入90μL 50mg/mL对乙基-N,N-二甲基丙基碳二亚胺(EDC),150μL 5mg/mL氮羟基琥珀酰亚胺(NHS),振荡混匀,室温孵育10~30min后,1000×g离心5~15min,沉淀用0.01MpH4.8的硼酸盐缓冲液溶解,并调节微球浓度为OD450为0.2~1。在0.1mL的该荧光微球中加入1~20μg HBsAg,充分混匀后,室温搅拌反应8h,分别用超纯水洗涤离心3次后,沉淀用0.01M pH 7.2的PBS溶液(其中包含5%蔗糖和0.05%Tween-20)复溶沉淀至起始体积后,即为制备好的荧光微球标记的HBsAg。
(3)、荧光微球标记的兔抗的制备(EDC法):
取1mg包裹异硫氰酸荧光素的荧光微球在1000×g离心10~15min,收集沉淀,用0.01MpH4.8的硼酸盐缓冲液调节微球浓度为OD450=0.2。然后加入90μL 50mg/mL对乙基-N,N-二甲基丙基碳二亚胺(EDC),150μL 5mg/mL氮羟基琥珀酰亚胺(NHS),振荡混匀,室温孵育10~30min后,1000×g离心5~15min,沉淀用0.01M pH4.8的硼酸盐缓冲液溶解,并调节微球浓度为OD450为0.2~1。在0.1mL的该荧光微球中加入2~10μg兔抗,充分混匀后,室温搅拌反应8h,分别用超纯水洗涤离心3次后,沉淀用0.01M pH 7.2的PBS溶液(其中包含5%蔗糖和0.05%Tween-20)复溶沉淀至起始体积后,即为制备好的荧光微球标记的兔抗。
(4)、荧光微球垫的制备:
用喷膜仪将标记HBsAg和兔抗的荧光微球按照4μL/cm的量喷涂至玻璃纤维膜(30×0.8cm)上,25℃真空干燥1~2h,放于干燥环境备用。
(5)、检测区和质控区的制备:
用0.01M pH 7.4PBS(磷酸盐缓冲液,其中包含5%蔗糖和0.05%Tween-20)调节HBsAg的浓度为0.5mg/mL,将所得溶液喷涂在NC膜上形成检测区;用0.01M pH 7.2PBS(磷酸盐缓冲液,其中包含5%蔗糖和0.05%Tween-20)调节羊抗兔IgG的浓度为0.5mg/mL,将所得溶液喷涂在NC膜上形成质控区。两区的喷膜量均为0.74μL/cm,两区相隔5mm,质控区距离NC膜一端2mm,37℃烘干过夜后,于室温干燥环境下保存备用。
(6)、荧光微球免疫层析检测卡的制备如实施例1。
(7)、荧光微球免疫层析检测卡定量检测人血清抗-HBs浓度的方法如实施例1。
取8个待检血清样本,分别用本实施例所述的荧光微球免疫层析检测卡和ELISA检测抗-HBs,结果见表4,单位为IU/mL
表4:免疫层析检测卡和ELISA检测8个血清抗-HBs的结果
样本 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 |
ELISA | 30 | 0.21 | 51.2 | 60 | 0.2 | 45.4 | 34 | 32.2 |
抗-HBs | 26.6 | 0.01 | 43.5 | 48.6 | 0.05 | 33.5 | 28.2 | 29.5 |
两组数据的相关系数r=0.9934,两种检测方法显著相关。本发明所述的荧光微球免疫层析检测卡可用于快速定量检测抗-HBs。
实施例4检测抗-HBe的钌荧光微球免疫层析试纸条D的制备和检测方法
(1)、二氯三(1,10-邻二氮杂菲)钌荧光素-二氧化硅壳核双结构荧光微球的制备:
将50ml无水乙醇、2ml氨水、3ml正硅酸乙酯、4ml超纯水、10mg二氯三(1,10-邻二氮杂菲)钌荧光素混合在一起,50℃恒温水浴反应12小时后,加入Na2SiO3封闭微球,Na2SiO3的终浓度为6%,通过加入盐酸调节溶液pH值来控制荧光微球大小,在荧光微球表面进行活性基团(-NH2)修饰。
(2)、荧光微球标记的HBeAg的制备:
取1mg包裹二氯三(1,10-邻二氮杂菲)钌荧光素的荧光微球在1000×g离心10~15min,收集沉淀,用0.01M pH4.8的硼酸盐缓冲液调节微球浓度为OD450=0.2,然后加入90μL50mg/mL对乙基-N,N-二甲基丙基碳二亚胺(EDC),150μL 5mg/mL氮羟基琥珀酰亚胺(NHS),振荡混匀,室温孵育10~30min后,1000×g离心5~15min,沉淀用0.01MpH4.8的硼酸盐缓冲液溶解,并调节微球浓度为OD450为0.2~1。在0.1mL的该荧光微球中加入1~20μg HBeAg,充分混匀后,室温搅拌反应8h,分别用超纯水洗涤离心3次后,沉淀用0.01M pH 7.2的PBS溶液(其中包含5%蔗糖和0.05%Tween-20)复溶沉淀至起始体积后,即为制备好的荧光微球标记的HBeAg。
(3)、荧光微球标记的兔抗的制备(EDC法):
取1mg包裹二氯三(1,10-邻二氮杂菲)钌荧光素的荧光微球在1000×g离心10~15min,收集沉淀,用0.01M pH4.8的硼酸盐缓冲液调节微球浓度为OD450=0.2。然后加入90μL50mg/mL对乙基-N,N-二甲基丙基碳二亚胺(EDC),150μL 5mg/mL氮羟基琥珀酰亚胺(NHS),振荡混匀,室温孵育10~30min后,1000×g离心5~15min,沉淀用0.01M pH4.8的硼酸盐缓冲液溶解,并调节微球浓度为OD450为0.2~1。在0.1mL的该荧光微球中加入2~10μg兔抗,充分混匀后,室温搅拌反应8h,分别用超纯水洗涤离心3次后,沉淀用0.01MpH 7.2的PBS溶液(其中包含5%蔗糖和0.05%Tween-20)复溶沉淀至起始体积后,即为制备好的荧光微球标记的兔抗。
(4)、荧光微球垫的制备:
用喷膜仪将标记HBeAg和兔抗的荧光微球按照4μL/cm的量喷涂至玻璃纤维膜(30×0.8cm)上,25℃真空干燥1~2h,放于干燥环境备用。
(5)、检测区和质控区的制备:
用0.01M pH 7.4PBS(磷酸盐缓冲液,其中包含5%蔗糖和0.05%Tween-20)调节抗-HBe单抗E1的浓度为0.8mg/mL,将所得溶液喷涂在NC膜上形成检测区;用0.01M pH 7.2PBS(磷酸盐缓冲液,其中包含5%蔗糖和0.05%Tween-20)调节羊抗兔IgG的浓度为0.5mg/mL,将所得溶液喷涂在NC膜上形成质控区。两区的喷膜量均为0.74μL/cm,两区相隔5mm,质控区距离NC膜一端2mm,37℃烘干过夜后,于室温干燥环境下保存备用。
(6)、荧光微球免疫层析检测卡的制备:
组装试纸条:在PVC底板上依次搭接地粘贴:(1)滤纸和样本垫,样本垫为一种经过5%Tween-20处理的玻璃纤维膜;(2)喷涂有荧光微球标记的HBeAg和兔抗的荧光微球垫;(3)有喷涂抗-HBe单抗E1作为检测区和羊抗兔IgG作为质控区的硝酸纤维素膜;(4)吸水纸,组装完成后剪切成4mm的宽度,即成为免疫层析试纸条。
把一张免疫层析试纸条固定在塑料底卡上,试纸表面用面卡压紧,面卡在对应试纸条的样本垫和NC膜的部位分别预留加样孔和观察窗。免疫层析检测卡组装好后装入铝箔袋中,加入干燥剂后封口保存,于室温干燥环境下至少可以保存一年。
(7)、荧光微球免疫层析试纸条定量检测人血清抗-HBe浓度:
A、标准曲线的绘制:将抗-HBe标准品配制成一系列浓度0ng/ml,1ng/ml,5ng/ml,10ng/ml,20ng/ml,40ng/ml,80ng/ml,160ng/ml,320ng/ml,用同一批次的数张免疫层析检测卡检测各浓度的标准品溶液。以检测区的荧光强度Y为纵坐标,抗-HBe标准品溶液浓度的对数X为横坐标,绘制一条标准曲线。将标准曲线和对应的标准质控线荧光强度保存在荧光分析仪中。
B、样品的检测:
(1)平放检测卡,待测血清平衡至室温后,取其50μL加入加样孔中,于室温下反应20min,将检测卡放入检测卡插槽;
(2)截留在检测区和质控区的荧光微球在最佳激发光源的激发下,发出强烈的荧光;
(3)发射的荧光经滤除杂光后,通过聚集系统将采集的光学信号,送入光电倍增管,光信号得到增强,再经过信号转换元件的转换,获得检测区与质控线的荧光数值;
(4)荧光分析仪中的内置分析软件对检测区荧光强度进行校正,并把校正值代入内置标准曲线,自动计算出待测血清中抗-HBe的浓度。
取10个待检血清样本,分别用本实施例所述的荧光微球免疫层析检测卡和ELISA检测,将两种方法的检测结果进行比较,结果见表5,单位为IU/mL
表5:ELISA和试纸检测卡检测多个血清抗-HBe的结果
样本 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 |
ELISA | 5.6 | 6.0 | 7.5 | 8.6 | 10.6 | 13.5 | 21.2 | 28.5 | 30.6 | 35.6 |
样本 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 |
免疫层析 | 4.8 | 5.6 | 7.7 | 9.6 | 10.8 | 13.8 | 19.3 | 25.5 | 33.6 | 38.1 |
两组数据的相关系数r=0.9889,表明这两种方法的检测结果显著相关。本实施例所述的荧光微球免疫层析检测卡可用来进行快速定量检测抗-HBe。
实施例5检测抗-HBc的异硫氰酸荧光微球免疫层析试纸条E的制备和检测方法
(1)、异硫氰酸荧光素-二氧化硅壳核双结构荧光微球的制备如实施例1。
(2)、荧光微球标记的HBcAg的制备(EDC法):
取1mg包裹异硫氰酸荧光素的荧光微球在1000×g离心10~15min,收集沉淀,用0.01MpH4.8的硼酸盐缓冲液调节微球浓度为OD450=0.2。然后加入90μL 50mg/mL的对乙基-N,N-二甲基丙基碳二亚胺(EDC),150μL 5mg/mL氮羟基琥珀酰亚胺(NHS),振荡混匀,室温孵育10~30min后,1000×g离心5~15min,沉淀用0.01M pH4.8的硼酸盐缓冲液溶解,并调节微球浓度为OD450为0.2~1。在0.1mL的该荧光微球中加入1~20μg HBcAg,充分混匀后,室温搅拌反应8h,分别用超纯水洗涤离心3次后,沉淀用0.01M pH 7.2的PBS溶液(其中包含5%蔗糖和0.05%Tween-20)复溶沉淀至起始体积后,即为制备好的荧光微球标记的HBcAg。
(3)、荧光微球标记的兔抗的制备(EDC法):
取1mg包裹异硫氰酸荧光素的荧光微球在1000×g离心10~15min,收集沉淀,用0.01MpH4.8的硼酸盐缓冲液调节微球浓度为OD450=0.2。然后加入90μL 50mg/mL对乙基-N,N-二甲基丙基碳二亚胺(EDC),150μL 5mg/mL氮羟基琥珀酰亚胺(NHS),振荡混匀,室温孵育10~30min后,1000×g离心5~15min,沉淀用0.01MpH4.8的硼酸盐缓冲液溶解,并调节微球浓度为OD450为0.2~1。在0.1mL的该荧光微球中加入2~10μg兔抗,充分混匀后,室温搅拌反应8h,分别用超纯水洗涤离心3次后,沉淀用0.01M pH 7.2的PBS溶液(其中包含5%蔗糖和0.05%Tween-20)复溶沉淀至起始体积后,即为制备好的荧光微球标记的兔抗。
(3)、荧光微球垫的制备:
用喷膜仪将荧光微球标记的HBcAg和兔抗按照4μL/cm的量喷涂至玻璃纤维膜(30×0.8cm)上,25℃真空干燥1~2h,放于干燥环境备用。
(4)、检测区和质控区的制备:
用0.01M pH 7.4PBS(磷酸盐缓冲液,其中包含5%蔗糖和0.05%Tween-20)调节抗-HBc单抗的浓度为0.5mg/mL,将所得溶液喷涂在NC膜上形成检测区;用0.01M pH 7.2PBS(磷酸盐缓冲液,其中包含5%蔗糖和0.05%Tween-20)调节羊抗兔IgG的浓度为0.5mg/mL,将所得溶液喷涂在NC膜上形成质控区。两区的喷膜量均为0.74μL/cm,两区相隔5mm,质控区距离NC膜一端2mm,37℃烘干过夜后,于室温干燥环境下保存备用。
(5)、荧光微球免疫层析检测卡的制备如实施例1。
(6)、荧光微球免疫层析检测卡定量检测人血清抗-HBs浓度的方法如实施例1。
取8个待检血清样本,分别用本实施例所述的荧光微球免疫层析检测卡和ELISA检测抗-HBc,结果见表6,单位为IU/mL
表6:ELISA和免疫层析检测卡检测8个血清抗-HBc的结果
样本 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 |
ELISA | 2.8 | 39 | 0.08 | 0.2 | 28 | 0.4 | 55 | 0.5 |
抗-HBc | 3.8 | 35.6 | 0.02 | 0.05 | 30.8 | 0.1 | 45 | 0.06 |
两种检测方法相关系数r=0.9903,两种检测方法显著相关。此免疫层析检测卡可用于抗-HBc的定量分析。
Claims (8)
1.检测乙肝五项的荧光微球免疫层析检测卡,其特征在于:包括用于检测HBsAg的试纸条A、用于检测HBeAg的试纸条B、用于检测抗-HBs的试纸条C、用于检测抗-HBe的试纸条D和用于检测抗-HBc的试纸条E;
所述试纸条A、试纸条B、试纸条C、试纸条D和试纸条E均包括在底板上依次搭接地粘贴的滤纸、样本垫、玻璃纤维膜、硝酸纤维素膜和吸水纸,所述的玻璃纤维膜上喷涂有荧光微球垫,所述的硝酸纤维素膜上固定有检测区和质控区;
所述试纸条A的玻璃纤维膜上喷涂的荧光微球垫为荧光微球标记抗-HBs单抗和兔抗,硝酸纤维素膜上检测区喷涂另一种抗-HBs单抗,硝酸纤维素膜上质控区喷涂鼠抗兔IgG或羊抗兔IgG;
所述试纸条B的玻璃纤维膜上喷涂的荧光微球垫为荧光微球标记抗-HBe单抗和兔抗,硝酸纤维素膜上的检测区喷涂另一种抗-HBe单抗,硝酸纤维素膜上质控区喷涂鼠抗兔IgG或羊抗兔IgG;
所述试纸条C的玻璃纤维膜上喷涂的荧光微球垫为荧光微球标记HBsAg和兔抗,硝酸纤维素膜上检测区喷涂HBsAg,硝酸纤维素膜上质控区喷涂鼠抗兔IgG或羊抗兔IgG;
所述试纸条D的玻璃纤维膜上喷涂的荧光微球垫为荧光微球标记HBeAg和兔抗,硝酸纤维素膜上检测区喷涂抗-HBe单抗,硝酸纤维素膜上质控区喷涂鼠抗兔IgG或羊抗兔IgG;
所述试纸条E的玻璃纤维膜上喷涂的荧光微球垫为荧光微球标记HBcAg和兔抗,硝酸纤维素膜上检测区喷涂抗-HBc单抗,硝酸纤维素膜上质控区喷涂鼠抗兔IgG或羊抗兔IgG。
2.根据权利要求1所述的检测乙肝五项的荧光微球免疫层析检测卡,其特征在于:所述的荧光微球是一种二氧化硅与荧光物质复合的核壳双结构发光纳米粒子,作为荧光物质的有机染料位于内核,所述的荧光微球直径为30-150nm。
3.根据权利要求2所述的检测乙肝五项的荧光微球免疫层析检测卡,其特征在于:所述的荧光微球的制备方法为:将60ml无水乙醇、2~15ml氨水、3~12ml正硅酸乙酯、1~4ml超纯水、0.1~20mg荧光物质混合在一起,30~80℃恒温水浴反应6~24小时后,加入Na2SiO3封闭微球,Na2SiO3的终浓度为2%~10%,通过加入盐酸调节溶液pH值来控制荧光微球大小,再用表面活性基团修饰荧光微球。
4.根据权利要求3所述的检测乙肝五项的荧光微球免疫层析检测卡,其特征在于:所述的活性基团为-CHO、-COOH、-OH、-NH2或-SH;所述的荧光物质为菲咯啉联钌有机染料、异硫氰根荧光素、异硫氰根罗丹明、6-羧基荧光素酰胺酯、1,8-萘二酰亚胺、7-羟基香豆素有机荧光染料或其掺杂物以及量子点。
5.根据权利要求1所述的检测乙肝五项的荧光微球免疫层析检测卡的制备方法,其特征在于,免疫层析试纸条制备步骤包括:
(a)HBsAg检测试纸条A的制备:
用荧光微球标记抗-HBs单抗和兔抗,并将其喷涂在玻璃纤维膜上,即为制备好的HBsAg检测试纸条的荧光微球垫;将另一种抗-HBs单抗包被到硝酸纤维素膜上制成检测区,将鼠抗兔IgG或羊抗兔IgG包被到硝酸纤维素膜上制成质控区;
(b)HBeAg检测试纸条B的制备:
用荧光微球标记抗-HBe单抗和兔抗,并将其喷涂在玻璃纤维膜上,即为制备好的HBeAg检测试纸条的荧光微球垫;将另一种抗-HBe单抗包被到硝酸纤维素膜上制成检测区,将鼠抗兔IgG或羊抗兔IgG包被到硝酸纤维素膜上制成质控区;
(c)抗-HBs检测试纸条C的制备:
用荧光微球标记HBsAg和兔抗,并将其喷涂在玻璃纤维膜上,即为制备好的抗-HBs检测试纸条的荧光微球垫;将HBsAg包被到硝酸纤维素膜上制成检测区,将鼠抗兔IgG或羊抗兔IgG包被硝酸纤维素膜上制成质控区;
(d)抗-HBe检测试纸条D的制备:
用荧光微球标记HBeAg和兔抗,并将其喷涂在玻璃纤维膜上,即为制备好的抗-HBe检测试纸条的荧光微球垫;将抗-HBe单抗包被到硝酸纤维素膜上制成检测区,将鼠抗兔IgG或羊抗兔IgG包被到硝酸纤维素膜上制成质控区;
(e)抗-HBc检测试纸条E的制备:
用荧光微球标记HBcAg和兔抗,并将其喷涂在玻璃纤维膜上,即为制备好的抗-HBc检测试纸条的荧光微球垫;将抗-HBc单抗包被到硝酸纤维素膜上制成检测区,将鼠抗兔IgG或羊抗兔IgG包被到硝酸纤维素膜上制成质控区;
组装和剪切:分别在粘性底板上依次搭接地粘贴:滤纸、样本垫、荧光微球垫、硝酸纤维素膜以及吸水纸,并剪切成适当宽度即成为5张免疫层析试纸条。
6.根据权利要求5所述的检测乙肝五项的荧光微球免疫层析检测卡的制备方法,其特征在于:所述检测区和质控区的制备方法如下:
用喷膜仪将抗原或抗体包被到硝酸纤维素膜上:分别用0.01~0.1M pH 7.2的磷酸盐缓冲液调节包被物浓度为0.5~8.0mg/mL,喷膜量为0.5~1.0μL/cm,检测区喷涂抗原或抗体,质控区喷涂抗体,两区相隔4~8mm,37℃烘干过夜后,室温干燥环境下保存备用。
7.根据权利要求5所述的检测乙肝五项的荧光微球免疫层析检测卡的制备方法,其特征在于:
分别将5张免疫层析试纸条固定在5张底卡上,或将5张试纸条并排固定在同一张底卡上,试纸条表面用面卡压紧,所述面卡上预留加样孔和观察窗,加样孔的位置与试纸条的样本垫对应,观察窗的位置与试纸条的硝酸纤维素膜对应。
8.用权利要求1、2、3或4所述的检测卡定量检测乙肝五项指标的方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)绘制标准曲线:配制一系列浓度的乙肝五项指标的标准品溶液,用同一批次的数张免疫层析检测卡分别检测其荧光强度,以荧光强度为纵坐标,标准品溶液浓度或浓度的对数为横坐标,分别绘制标准曲线,并存入荧光分析仪中;
(2)免疫层析检测卡的加样孔中加入待检样本,反应5~15min后,将检测卡放入检测窗口;
(3)截留在检测区和质控区的荧光微球在灯源激发下,发出稳定特定波长的荧光;
(4)发射的荧光经滤除杂光后,通过聚焦系统将采集的光学信号送入光电倍增管,使光信号得到增强,再经过信号转换元件的转换,获得检测区与质控区的荧光强度;
(5)将获得的质控区荧光强度与荧光分析仪中内置的质控线荧光强度进行校正,得到本次待检样本测定时的校正系数;
(6)将获得的检测区荧光数值乘以校正系数,并将所得数值代入已设置在荧光分析仪中的标准曲线,即得到样本中乙肝五项中各项的浓度。
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Cited By (22)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102539751A (zh) * | 2010-12-09 | 2012-07-04 | 苏州生物医学工程技术研究所 | 一种免疫荧光试纸条及其定量检测方法 |
CN102830230A (zh) * | 2012-08-28 | 2012-12-19 | 暨南大学 | 莱克多巴胺-克伦特罗荧光微球检测试纸条及制备与应用 |
WO2013030524A1 (en) * | 2011-08-30 | 2013-03-07 | Supernova Diagnostics, Inc. | Assay device comprising an optical filter and a method of assaying |
CN103105492A (zh) * | 2013-01-17 | 2013-05-15 | 重庆市科学技术研究院 | 一种荧光免疫层析流感病毒检测试纸 |
CN103163294A (zh) * | 2013-03-21 | 2013-06-19 | 厦门市波生生物技术有限公司 | 乙肝5项化学发光检测试剂盒及其制备方法 |
CN103207270A (zh) * | 2013-04-09 | 2013-07-17 | 江西中德生物工程有限公司 | 西马特罗胶体金试纸条及其制备方法与用途 |
CN103217533A (zh) * | 2012-01-21 | 2013-07-24 | 厦门大学 | Anti-HBc 定量检测方法及其在监控慢性乙肝患者病情发展和预测治疗疗效中的用途 |
CN103257226A (zh) * | 2013-04-09 | 2013-08-21 | 江西中德生物工程有限公司 | 莱克多巴胺、沙丁胺醇、西马特罗三联胶体金试纸条及其制备方法与用途 |
CN104076142A (zh) * | 2014-03-05 | 2014-10-01 | 广东医学院附属医院 | 微量靶标物质多重联检的荧光微球侧向层析检测条及其制备方法和用途 |
CN104101703A (zh) * | 2013-04-11 | 2014-10-15 | 南昌大学 | 一种快速检测食品中牛乳过敏原的装置及其制备方法 |
CN104101713A (zh) * | 2013-04-11 | 2014-10-15 | 南昌大学 | 一种快速检测食品中大豆蛋白的装置及其制备方法 |
CN104101581A (zh) * | 2013-04-11 | 2014-10-15 | 南昌大学 | 一种快速检测食品中花生致敏蛋白的装置及其制备方法 |
CN104198699A (zh) * | 2014-09-04 | 2014-12-10 | 深圳市领治医学科技有限公司 | 一种快速诊断试纸及其制备方法 |
CN106596984A (zh) * | 2016-10-18 | 2017-04-26 | 秦明 | 全自动荧光免疫法术前四项测定系统及其检测方法 |
CN108089013A (zh) * | 2018-01-05 | 2018-05-29 | 潍坊科瑞斯生物科技有限公司 | 一种犬降钙素原检测试剂盒和该检测试剂盒中荧光试剂的制备方法 |
CN109324184A (zh) * | 2018-12-05 | 2019-02-12 | 厦门同仁心生物技术有限公司 | 一种丙型肝炎病毒抗原荧光免疫层析检测试剂盒及其制备方法 |
CN109613273A (zh) * | 2019-01-23 | 2019-04-12 | 博奥赛斯(天津)生物科技有限公司 | 一种乙肝五项时间分辨荧光免疫层析测定试剂盒 |
CN110672843A (zh) * | 2019-10-30 | 2020-01-10 | 南京海关动植物与食品检测中心 | 一种用于定量测定磺胺类药物的五联时间分辨荧光免疫试纸条 |
CN111521776A (zh) * | 2020-04-23 | 2020-08-11 | 安徽华培生物科技有限公司 | 多通道成像定量荧光免疫方法 |
CN111965357A (zh) * | 2019-11-28 | 2020-11-20 | 上海荣盛生物药业有限公司 | 荧光免疫层析检测方法及其试纸和应用 |
CN112285358A (zh) * | 2020-09-17 | 2021-01-29 | 上海基灵生物科技有限公司 | 一种用于犬c反应蛋白及胰腺特异性脂肪酶双联检测试剂卡 |
CN113234143A (zh) * | 2021-05-10 | 2021-08-10 | 北京保图生物技术有限公司 | 一种快速检测病毒的核酸抗体试剂盒 |
-
2009
- 2009-11-04 CN CN200910236870A patent/CN101726596A/zh active Pending
Cited By (32)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102539751A (zh) * | 2010-12-09 | 2012-07-04 | 苏州生物医学工程技术研究所 | 一种免疫荧光试纸条及其定量检测方法 |
CN104040340A (zh) * | 2011-08-30 | 2014-09-10 | 超新星诊断公司 | 包括滤光器的测定装置和一种测定方法 |
WO2013030524A1 (en) * | 2011-08-30 | 2013-03-07 | Supernova Diagnostics, Inc. | Assay device comprising an optical filter and a method of assaying |
AU2018200744B2 (en) * | 2012-01-21 | 2019-08-08 | Xiamen Innovax Biotech Co., Ltd. | Anti-HBc quantitative detection method and uses thereof in monitoring and controlling disease progression of chronic hepatitis B patient and in predicting therapeutic effect |
CN103217533A (zh) * | 2012-01-21 | 2013-07-24 | 厦门大学 | Anti-HBc 定量检测方法及其在监控慢性乙肝患者病情发展和预测治疗疗效中的用途 |
US9952217B2 (en) | 2012-01-21 | 2018-04-24 | Xiamen Innovax Biotech, Co., LTD. | Anti-HBc quantitative detection method and uses thereof in monitoring and controlling disease progression of chronic hepatitis B patient and in predicting therapeutic effect |
WO2013107355A1 (zh) * | 2012-01-21 | 2013-07-25 | 厦门大学 | Anti-hbc 定量检测方法及其在监控慢性乙肝患者病情发展和预测治疗疗效中的用途 |
CN103217533B (zh) * | 2012-01-21 | 2016-01-06 | 厦门大学 | Anti-HBc定量检测方法及其在监控慢性乙肝患者病情发展和预测治疗疗效中的用途 |
AU2013211346B2 (en) * | 2012-01-21 | 2017-11-30 | Xiamen Innovax Biotech Co., Ltd. | Anti-HBc quantitative detection method and uses thereof in monitoring and controlling disease progression of chronic hepatitis B patient and in predicting therapeutic effect |
CN102830230A (zh) * | 2012-08-28 | 2012-12-19 | 暨南大学 | 莱克多巴胺-克伦特罗荧光微球检测试纸条及制备与应用 |
CN103105492A (zh) * | 2013-01-17 | 2013-05-15 | 重庆市科学技术研究院 | 一种荧光免疫层析流感病毒检测试纸 |
CN103163294A (zh) * | 2013-03-21 | 2013-06-19 | 厦门市波生生物技术有限公司 | 乙肝5项化学发光检测试剂盒及其制备方法 |
CN103257226B (zh) * | 2013-04-09 | 2015-12-09 | 江西中德生物工程有限公司 | 莱克多巴胺、沙丁胺醇、西马特罗三联胶体金试纸条及其制备方法与用途 |
CN103257226A (zh) * | 2013-04-09 | 2013-08-21 | 江西中德生物工程有限公司 | 莱克多巴胺、沙丁胺醇、西马特罗三联胶体金试纸条及其制备方法与用途 |
CN103207270A (zh) * | 2013-04-09 | 2013-07-17 | 江西中德生物工程有限公司 | 西马特罗胶体金试纸条及其制备方法与用途 |
CN104101703A (zh) * | 2013-04-11 | 2014-10-15 | 南昌大学 | 一种快速检测食品中牛乳过敏原的装置及其制备方法 |
CN104101713A (zh) * | 2013-04-11 | 2014-10-15 | 南昌大学 | 一种快速检测食品中大豆蛋白的装置及其制备方法 |
CN104101581A (zh) * | 2013-04-11 | 2014-10-15 | 南昌大学 | 一种快速检测食品中花生致敏蛋白的装置及其制备方法 |
CN104076142A (zh) * | 2014-03-05 | 2014-10-01 | 广东医学院附属医院 | 微量靶标物质多重联检的荧光微球侧向层析检测条及其制备方法和用途 |
CN104198699B (zh) * | 2014-09-04 | 2016-06-15 | 深圳市领治医学科技有限公司 | 一种快速诊断试纸及其制备方法 |
CN104198699A (zh) * | 2014-09-04 | 2014-12-10 | 深圳市领治医学科技有限公司 | 一种快速诊断试纸及其制备方法 |
CN106596984A (zh) * | 2016-10-18 | 2017-04-26 | 秦明 | 全自动荧光免疫法术前四项测定系统及其检测方法 |
CN108089013A (zh) * | 2018-01-05 | 2018-05-29 | 潍坊科瑞斯生物科技有限公司 | 一种犬降钙素原检测试剂盒和该检测试剂盒中荧光试剂的制备方法 |
CN109324184A (zh) * | 2018-12-05 | 2019-02-12 | 厦门同仁心生物技术有限公司 | 一种丙型肝炎病毒抗原荧光免疫层析检测试剂盒及其制备方法 |
CN109613273A (zh) * | 2019-01-23 | 2019-04-12 | 博奥赛斯(天津)生物科技有限公司 | 一种乙肝五项时间分辨荧光免疫层析测定试剂盒 |
CN110672843A (zh) * | 2019-10-30 | 2020-01-10 | 南京海关动植物与食品检测中心 | 一种用于定量测定磺胺类药物的五联时间分辨荧光免疫试纸条 |
CN111965357A (zh) * | 2019-11-28 | 2020-11-20 | 上海荣盛生物药业有限公司 | 荧光免疫层析检测方法及其试纸和应用 |
CN111965357B (zh) * | 2019-11-28 | 2023-08-18 | 上海荣盛生物药业股份有限公司 | 荧光免疫层析检测方法及其试纸和应用 |
CN111521776A (zh) * | 2020-04-23 | 2020-08-11 | 安徽华培生物科技有限公司 | 多通道成像定量荧光免疫方法 |
CN112285358A (zh) * | 2020-09-17 | 2021-01-29 | 上海基灵生物科技有限公司 | 一种用于犬c反应蛋白及胰腺特异性脂肪酶双联检测试剂卡 |
CN113234143A (zh) * | 2021-05-10 | 2021-08-10 | 北京保图生物技术有限公司 | 一种快速检测病毒的核酸抗体试剂盒 |
CN113234143B (zh) * | 2021-05-10 | 2021-12-14 | 合肥金域医学检验实验室有限公司 | 一种快速检测病毒的核酸抗体试剂盒 |
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