CN101661036A - 一种黄曲霉毒素b1磁微粒分离酶联免疫检测方法 - Google Patents
一种黄曲霉毒素b1磁微粒分离酶联免疫检测方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN101661036A CN101661036A CN200910091750A CN200910091750A CN101661036A CN 101661036 A CN101661036 A CN 101661036A CN 200910091750 A CN200910091750 A CN 200910091750A CN 200910091750 A CN200910091750 A CN 200910091750A CN 101661036 A CN101661036 A CN 101661036A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- afb1
- enzyme
- antibody
- magnetic
- add
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明提供了一种黄曲霉毒素B1(AFB1)磁分离酶联免疫定量检测方法，属于食品安全免疫检测技术领域。本发明采用竞争法的免疫检测原理，将AFB1与生物酶连接制成酶标抗原试剂，将抗异硫氰酸荧光素(FITC)抗体吸附在磁微粒表面制成磁分离试剂，将FITC与抗AFB1抗体连接制成抗试剂。样本中AFB1与酶标AFB1竞争结合少量的FITC标抗AFB1抗体，形成抗原抗体复合物。加入磁分离试剂后，磁微粒表面连接的抗FITC抗体将复合物捕获到磁微粒表面。洗涤，最后加入底物并检测。本发明的优点在于：①以磁微粒代替传统酶标板作为固相载体，使免疫反应接近液相条件下进行，反应更充分和迅速，与传统ELISA方法比较，具有特异性高、重复性好的特点；②采用一步竞争法原理，检测用时短。
Description
技术领域
本发明属于免疫检测分析技术领域，涉及食品安全相关的免疫检测分析技术，特别提供了一种快速检测黄曲霉毒素B1(Aflatoxin B1，AFB1)的磁微粒分离酶联免疫检测方法，适用于花生、玉米等各种食物和饲料中黄曲霉毒素B1的定性检测。
背景技术
黄曲霉毒素(Aflatoxin，AF)是黄曲霉和寄生曲霉中产毒菌株的代谢产物，普遍存在于霉变的食物及饲料中，是目前为止所发现的毒性最大的真菌毒素。它可通过多种途径污染食品和饲料，直接或间接进入人类食物链，威胁人类健康和生命安全。黄曲霉毒素进入机体后除抑制DNA、RNA的合成外，也抑制肝脏蛋白质的合成，对人体及动物内脏器官尤其是肝脏损害严重。黄曲霉毒素十分耐热，加热至230℃才能被完全破坏，因此一般烹饪加工也不易消除。黄曲霉毒素引起人类的急性中毒事件，国内外均有许多报导，最典型的是印度的霉变玉米事件。该事件直接导致了数十人丧生，数百人患上不同程度的肝脏疾病。世界卫生组织报导，黄曲霉毒素含量在30-50ng/ml时为低毒，50-100ng/ml时为中毒，100-1000ng/ml时为高毒，1000ng/ml以上为极毒。
鉴于黄曲霉毒素对人类的巨大危害性，各国对其在食品中的含量作了严格规定。我国对玉米、小麦等粮食中AF的限量标准是小于10ng/ml。花生中限量标准是小于20ng/ml。
目前，黄曲霉毒素根据分子结构的差别主要分为4类：即B1、B2、G1、G2，其中AFB1是最常见也是毒性最强的黄曲霉毒素。黄曲霉毒素有2种代谢产物M1和M2。
磁微粒分离酶联免疫检测技术是一种以磁性微粒为固相分离载体，将免疫磁微粒分离技术与酶联免疫检测技术相结合而建立的一种新型免疫检测方法。传统ELISA方法，抗原、抗体的结合反应是在固相(ELISA板反应孔)表面进行的，而磁微粒分离酶联免疫检测方法，抗原、抗体的结合反应也在近似液相的条件下进行，因而反应快速、彻底。与传统ELISA相比具有灵敏度高，检测用时少的优点。
“竞争免疫检测法”是一种多用于检测小分子半抗原的方法，其检测原理是：待测抗原与酶标记的抗原竞争结合少量的固相抗体，通过洗涤去除未结合的抗原，最后加入生物酶催化的显色或发光底物显色。在一定浓度范围内，显色或发光强度与待测抗原含量呈反比。
发明内容
本发明的目的在于提供一种具有灵敏度高、特异性好、适用性广、操作简便和节省检测时间的检测AFB1的磁微粒分离酶联免疫检测方法。
所述的AFB1磁微粒分离酶联免疫检测方法的试剂组成包括：①磁分离试剂[结合有抗异硫氰酸荧光素(FITC)抗体的磁微粒混悬液]；②抗试剂(FITC标记的抗AFB1抗体溶液)；③酶标抗原试剂(偶联有生物酶的AFB1溶液)；④清洗液；⑤AFB1校准品(含有一定量AFB1抗原的溶液)；⑥质控品(含有一定量AFB1抗原的溶液)；⑦底物溶液(显色或发光底物溶液)。
所述的AFB1磁微粒分离酶联免疫检测方法的检测方法如下：
(1)样本(食品、饲料等)处理：采用行业通用的方式进行处理，将固体样品粉碎成粉末，之后一定比例的甲醇水溶液进行萃取，之后滤纸过滤去除沉渣，滤液可直接用于测试使用，有需要时也可用纯化水进行适当稀释，具体做法举例如下：取约50～100g样品碾碎或粉碎成均一的粉末或糊状物；取5g均质样品加15ml 70％甲醇水溶液；室温下搅拌混合10分钟；用滤纸过滤去除沉渣；取100μl滤液，加入600μl的水，即得到样品溶液(该过程将样本稀释21倍)。
(2)加样和免疫反应：在试管中加入20-200μl样本，然后依次加入20-200μl酶标抗原试剂和20-200μl抗试剂。混匀后，37℃温育5-30分钟；
(3)加磁分离试剂：在试管中加入20-100μl，0.1-10mg/ml的磁分离试剂，混匀后，37℃温育5-30分钟；
(4)洗涤：使磁微粒在磁场中沉降，去上清，加入100-500μl清洗液，去除磁场，震荡30秒使磁微粒充分混悬，再次使磁微粒在磁场中沉降，去除上清液。如此重复洗涤2-4次；
(5)加底物溶液：每管加入50-300μl生物酶催化的显色或发光底物。混匀后，37℃温育5-30分钟；
(6)终止显色：每管加入100-300μl终止液，并放在磁分离器上分离10分钟(适用于显色法)；
(7)读值：在分光光度计或发光强度检测仪上读取吸光度或发光强度值；
所述的AFB1磁微粒分离酶联免疫检测方法的工作原理是：首先，通过样本处理过程，使样本中的AFB1溶解在甲醇水溶液中用于后续分析。样本提取液与酶标AFB1抗原试剂、FITC标抗试剂混合温育后，样品中的AFB1与酶标AFB1竞争结合少量的FITC标抗体，形成抗原抗体复合物。加入偶联有羊抗FITC抗体的磁分离试剂后，磁分离试剂可将免疫复合物捕获到磁微粒表面。经过洗涤，去除未结合的AFB1、酶标AFB1和其他杂质。最后加入酶催化的显色或发光底物。在一定浓度范围内，待测样本中的AFB1含量与显色或发光程度呈反比，据此可以定量测定样本中AFB1的含量。
本发明的技术解决方案如下：
(1)磁分离试剂的制备：将抗FITC抗体连接在磁微粒表面。所述的磁微粒直径在0.1-5.0μm之间，具有超顺磁性，表面可含有氨基(NH2-)或羧基(COOH-)活性基团。所述的羊抗FITC抗体与磁微粒的连接可以通过化学交联剂，如戊二醛、1-ethyl-3-[3-dimethylaminopropyl]carbodiimide hydrochloride(EDC)等以共价键的形式，也可以通过物理吸附(静电作用、离子键或疏水作用等)的形式。
(2)酶标抗原试剂的制备：将AFB1衍生物与牛血清白蛋白(BSA)共价连接，之后再与生物酶共价连接。所述的生物酶可以是辣根过氧化物酶(HRP)，也可以是碱性磷酸酶(ALP)。共价连接方法可以通过过碘酸钠氧化法、戊二醛法或Succinimidyl4-(N-maleimidomethyl)cyclohexane-1-carboxylate(SMCC)、2-Iminothiolane·HCl(2IT)交联等多种方法。
(3)底物溶液：所述的底物溶液可以是HRP催化的显色底物甲基联苯胺(Tetrabenzidine，TMB)或发光底物鲁米诺(Luminol)等，也可以是ALP催化的显色底物单磷酸酚酞(PMP)或发光底物AMPPD，CSPD和CSPD-Star等。
(4)AFB1校准品和质控品：将高纯度AFB1抗原称重后用甲醇水溶液溶解分装制成。
本发明具有以下优点：
(1)样本处理方法简单。样本经粉碎、提取、过滤和稀释等简单处理后即可用于检测，无需离心、纯化、浓缩等复杂处理过程。
(2)该方法检测灵敏度高、重复性好、操作简便和节省检测时间的优点。
附图说明
图1磁微粒分离酶联免疫法检测AFB1示意图
具体实施方式
实施例1：抗FITC抗原与表面氨基(COOH-)磁微粒偶联，制备磁分离试剂
取100mg表面含羧基(COOH-)活性基团的磁微粒用0.1M MES(2-[N-morpholino]ethanesulfonic acid)，pH 4.5-5溶液10ml洗涤3次。磁微粒用该溶液1ml重悬，加入2mg抗FITC抗体，混合均匀。加入100μl 10mg/ml EDC溶液，混合均匀后室温反应2小时。用10ml含1％牛血清白蛋白(BSA)的0.01M磷酸盐缓冲液(PBS)pH7.4洗涤磁珠3次后，用该溶液配制成2.5mg/ml的磁分离试剂工作液。
实施例2：AFB1-BSA连接碱性磷酸酶(ALP)，制备酶标抗原试剂
取5mg AFB1-BSA抗原，浓缩至5mg/ml，加入13.76mg/ml的活化剂2-Iminothiolane·HCl(2IT)溶液10μl，室温放置20分钟后加甘氨酸终止活化反应，室温下放置5分钟。使用Sephadex G25柱子除盐，收集蛋白洗脱峰。
取5mg ALP溶液，加入6.69mg/ml的Succinimidyl 4-(N-maleimidomethyl)cyclohexane-1-carboxylate(SMCC)溶液50μl，室温放置30分钟，加入甘氨酸终止活化反应，室温放置5分钟。使用Sephadex G25柱子除盐，收集蛋白洗脱峰。
将活化的AFB1-BSA与活化的ALP混合，室温放置10个小时，然后使用Supperdex200凝胶层析柱分离纯化，除去未连接的游离AFB1-BSA和ALP，将连接物保存于4℃。
酶标抗原试剂稀释液配制方法为：Tris 12.11g，氯化钠8.77g，叠氮钠1g，加纯化水至600ml，校正pH值至7.5。加Tween-202mL，BSA 10g，加纯化水定容至1000ml。用0.22μm过滤器过滤，于4℃保存。
将上述AFB1-BSA-ALP连接物用上述稀释液稀释到1-5μg/ml配制成酶标抗原试剂工作液。
实施例3：抗AFB1抗体连接FITC，制备抗试剂
取5mg抗AFB1抗体溶液对20mM pH9.0碳酸缓冲液透析超过12h，透析后浓度要求大于1mg/ml。加入500μl 0.5mg/ml的FITC溶液(以20mM pH9.0碳酸缓冲液配制)，混匀后室温反应超过12h。使用Sephadex G25柱子除去未结合FITC，收集蛋白洗脱峰。
抗试剂稀释液配制方法与酶标抗原试剂稀释液配制方法相同，将上述AFB1抗体FITC连接物用稀释液稀释到1-5μg/ml，配制成抗试剂工作液。
实施例4：AFB1磁微粒分离酶免疫检测法检测花生和玉米样本中AFB1
材料与仪器
(1)磁分离试剂：见上述磁分离试剂的制备；
(2)酶标抗原试剂：见上述酶标抗原试剂的制备；
(3)抗试剂：见上述抗试剂的制备；
(4)洗涤液：500mL(北京倍爱康生物技术有限公司生产)；
(5)底物溶物(PMP溶液)：300mL(北京倍爱康生物技术有限公司生产)；
(6)终止溶液：600mL(北京倍爱康生物技术有限公司生产)；
(7)磁分离酶联免疫测定仪：北京倍爱康生物技术有限公司生产；
(8)磁分离器：北京倍爱康生物技术有限公司生产；
(9)水浴箱(用于37℃温浴)。
检测步骤如下：
(1)样本处理：取5g粉碎均质的花生或玉米样品分别加15ml 70％甲醇水溶液；室温下混合10分钟；用Whatman No.1滤纸过滤；取100μl滤液，加入600μl的水，即得到样品溶液(该过程将样本稀释21倍)。
(2)加样与免疫反应：在平底试管中加入60μL样本溶液，然后分别依次加入60μl酶标抗原试剂和60μl抗试剂，混匀后37℃温育15分钟；
(3)加磁分离试剂：在试管中加入60μl混匀后的磁分离试剂，混匀后37℃温育5分钟；
(4)洗涤：将平底试管放在磁分离器上分离2分钟，倒去上清液，每管加入清洗液300μL，充分混匀后，再将平底试管放在磁分离器上分离2分钟，弃去上清液。重复洗涤过程2次；
(5)加入底物溶液：每管加入100μl单磷酸酚酞(PMP)底物溶液，混匀后，37℃温育15分钟；
(6)终止显色：每管加入300μL终止液，并放在磁分离器上分离10分钟；
(7)读取吸光度值：用分光光度计或磁酶免测定仪读取吸光度值，波长为492nm/550nm。
检测结果：
(1)测量范围：0～50ppb
(2)准确度：回收率为80-110％。
(3)重复性：批内变异系数：CV≤10％；批间变异系数：CV≤15％
(4)灵敏度：灵敏度不高于0.1ppb。
(5)特异性：与其他类似毒素的交叉反应率见下表。
| 交叉反应物 | 交叉反应率(％) |
| 黄曲霉毒素B1 | 100 |
| 黄曲霉毒素B2 | 50 |
| 黄曲霉毒素G1 | 7 |
| 黄曲霉毒素G2 | 5 |
| 赭曲霉毒素 | 0.1 |
| 玉米赤霉烯酮 | 0.1 |
Claims (4)
1、一种黄曲霉毒素B1(AFB1)磁微粒分离酶联免疫方法，其特征在于检测步骤为：
(1)加样与免疫反应：在试管中加入20-200μl样本溶液、AFB1校准品或AFB1质控品，然后加入20-200μl酶标抗原试剂和20-200μl抗试剂。混匀后，37℃温育5-30分钟；
(2)加磁分离试剂：在试管中加入20-100μl磁分离试剂，混匀后，37℃温育5-30分钟；
(3)洗涤：使磁微粒在磁场中沉降，去上清，加入100-500μl清洗液，去除磁场，震荡使磁微粒充分混悬30秒，然后再次使磁微粒在磁场中沉降，去除上清液。如此重复2-4次；
(4)加底物溶液：每管加入50-300μl生物酶催化的显色或发光底物，混匀后，37℃温育5-30分钟；
(5)终止显色(仅适用于显色法)：每管加入100-300μl终止液，并放在磁分离器上分离10分钟；
(6)读值：在分光光度计或发光强度检测仪上读取吸光度或发光强度值；
2、根据权利要求1所述的抗试剂其特征在于：是抗AFB1抗体与异硫氰酸荧光素(FITC)的共价连接物溶液。所述抗AFB1抗体可以是单克隆抗体，也可以是多克隆抗体。其工作浓度为0.2-10μg/ml。
3、根据权利要求1所述的酶标抗原试剂，其特征在于：是黄曲霉毒素B1衍生物与牛血清白蛋白(BSA)的共价连接物(AFB1-BSA)进一步共价连接生物酶形成的连接物溶液。所述的生物酶可以是辣根过氧化物酶(HRP)，也可以是碱性磷酸酶(ALP)。生物酶与AFB1-BSA的连接方法可以通过过碘酸钠氧化法，戊二醛法或Succinimidyl4-(N-maleimidomethyl)cyclohexane-1-carboxylate(SMCC)、2-Iminothiolane·HCl(2IT)交联法等多种方法。其工作浓度为0.5-5μg/ml。
4、根据权利要求1所述的AFB1校准品和AFB1质控品的稀释液是AFB1的甲醇水溶液，甲醇浓度为50-80％。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN200910091750A CN101661036A (zh) | 2009-08-27 | 2009-08-27 | 一种黄曲霉毒素b1磁微粒分离酶联免疫检测方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN200910091750A CN101661036A (zh) | 2009-08-27 | 2009-08-27 | 一种黄曲霉毒素b1磁微粒分离酶联免疫检测方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CN101661036A true CN101661036A (zh) | 2010-03-03 |
Family
ID=41789177
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CN200910091750A Pending CN101661036A (zh) | 2009-08-27 | 2009-08-27 | 一种黄曲霉毒素b1磁微粒分离酶联免疫检测方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CN (1) | CN101661036A (zh) |
Cited By (18)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN101923089A (zh) * | 2010-07-16 | 2010-12-22 | 吉林大学 | 一种黄曲霉毒素b1磁分离荧光定量检测试剂盒的制备方法 |
| CN101937000A (zh) * | 2010-08-05 | 2011-01-05 | 北京倍爱康生物技术有限公司 | 一种人胱抑素c的磁微粒分离化学发光免疫分析检测方法 |
| CN102608324A (zh) * | 2012-01-06 | 2012-07-25 | 上海交通大学 | 基于多重放大系统的检测玉米赤霉烯酮的方法 |
| CN102818892A (zh) * | 2012-08-16 | 2012-12-12 | 北京恩济和生物科技有限公司 | 一种前列腺特异性抗原检测试剂盒及其制备方法 |
| CN103018458A (zh) * | 2012-12-06 | 2013-04-03 | 北京普赞生物技术有限公司 | 超灵敏黄曲霉毒素b1酶联免疫检测试剂盒 |
| CN103048473A (zh) * | 2012-12-18 | 2013-04-17 | 苏州浩欧博生物医药有限公司 | 一种促卵泡生成激素的纳米磁微粒化学发光测定试剂盒及其制备方法和检测方法 |
| CN103048475A (zh) * | 2012-12-18 | 2013-04-17 | 苏州浩欧博生物医药有限公司 | 游离人绒毛膜促性腺激素β亚单位的纳米磁微粒化学发光测定试剂盒及其制备和检测方法 |
| CN103076458A (zh) * | 2012-12-16 | 2013-05-01 | 北京利德曼生化股份有限公司 | 游离人绒毛膜促性腺激素β亚单位磁微粒化学发光法定量测定试剂盒及其制备方法 |
| CN103823064A (zh) * | 2014-03-03 | 2014-05-28 | 中华人民共和国张家港出入境检验检疫局 | 一种呕吐毒素定量检测试剂盒及其使用方法 |
| CN104698189A (zh) * | 2015-03-12 | 2015-06-10 | 北京中航赛维生物科技有限公司 | 保护异硫氰酸荧光素与抗原抗体偶联物的稳定剂及其制备方法和用途 |
| CN105319356A (zh) * | 2015-12-16 | 2016-02-10 | 北京勤邦生物技术有限公司 | 一种用于黄曲霉毒素b1富集净化的免疫磁珠及其制备方法和应用 |
| CN105675565A (zh) * | 2016-01-24 | 2016-06-15 | 湖南科技大学 | 一种快速检测黄曲霉毒素b1的方法 |
| WO2016127320A1 (zh) * | 2015-02-10 | 2016-08-18 | 深圳市新产业生物医学工程股份有限公司 | 一种用于检测胃泌素-17的试剂盒及其制备方法和应用 |
| CN106680485A (zh) * | 2016-11-22 | 2017-05-17 | 云南辉瑞贝尔生物科技有限公司 | 大观霉素药物的酶联免疫检测试剂盒及其应用 |
| CN107202891A (zh) * | 2017-06-27 | 2017-09-26 | 江苏大学 | 一种黄曲霉毒素b1免疫快速检测装置和检测方法 |
| CN108828208A (zh) * | 2018-06-25 | 2018-11-16 | 沭阳康源泰博生物科技有限公司 | 一种应用免疫磁珠技术的黄曲霉毒素前处理试剂盒 |
| CN109060783A (zh) * | 2018-10-25 | 2018-12-21 | 成都博奥新景医学科技有限公司 | 一种基于磁棒法的单人份化学发光免疫检测方法及系统 |
| CN113218937A (zh) * | 2021-04-19 | 2021-08-06 | 江苏科技大学 | 一种黄曲霉毒素磁性多重增敏传感器及其制备与应用 |
-
2009
- 2009-08-27 CN CN200910091750A patent/CN101661036A/zh active Pending
Cited By (25)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN101923089A (zh) * | 2010-07-16 | 2010-12-22 | 吉林大学 | 一种黄曲霉毒素b1磁分离荧光定量检测试剂盒的制备方法 |
| CN101937000A (zh) * | 2010-08-05 | 2011-01-05 | 北京倍爱康生物技术有限公司 | 一种人胱抑素c的磁微粒分离化学发光免疫分析检测方法 |
| CN102608324B (zh) * | 2012-01-06 | 2014-08-06 | 上海交通大学 | 基于多重放大系统的检测玉米赤霉烯酮的方法 |
| CN102608324A (zh) * | 2012-01-06 | 2012-07-25 | 上海交通大学 | 基于多重放大系统的检测玉米赤霉烯酮的方法 |
| CN102818892A (zh) * | 2012-08-16 | 2012-12-12 | 北京恩济和生物科技有限公司 | 一种前列腺特异性抗原检测试剂盒及其制备方法 |
| CN103018458A (zh) * | 2012-12-06 | 2013-04-03 | 北京普赞生物技术有限公司 | 超灵敏黄曲霉毒素b1酶联免疫检测试剂盒 |
| CN103018458B (zh) * | 2012-12-06 | 2015-06-24 | 北京普赞生物技术有限公司 | 超灵敏黄曲霉毒素b1酶联免疫检测试剂盒 |
| CN103076458A (zh) * | 2012-12-16 | 2013-05-01 | 北京利德曼生化股份有限公司 | 游离人绒毛膜促性腺激素β亚单位磁微粒化学发光法定量测定试剂盒及其制备方法 |
| CN103048475A (zh) * | 2012-12-18 | 2013-04-17 | 苏州浩欧博生物医药有限公司 | 游离人绒毛膜促性腺激素β亚单位的纳米磁微粒化学发光测定试剂盒及其制备和检测方法 |
| CN103048473B (zh) * | 2012-12-18 | 2015-05-13 | 苏州浩欧博生物医药有限公司 | 一种促卵泡生成激素的纳米磁微粒化学发光测定试剂盒及其制备方法和检测方法 |
| CN103048473A (zh) * | 2012-12-18 | 2013-04-17 | 苏州浩欧博生物医药有限公司 | 一种促卵泡生成激素的纳米磁微粒化学发光测定试剂盒及其制备方法和检测方法 |
| CN103823064B (zh) * | 2014-03-03 | 2016-05-25 | 中华人民共和国张家港出入境检验检疫局 | 一种呕吐毒素定量检测试剂盒及其使用方法 |
| CN103823064A (zh) * | 2014-03-03 | 2014-05-28 | 中华人民共和国张家港出入境检验检疫局 | 一种呕吐毒素定量检测试剂盒及其使用方法 |
| WO2016127320A1 (zh) * | 2015-02-10 | 2016-08-18 | 深圳市新产业生物医学工程股份有限公司 | 一种用于检测胃泌素-17的试剂盒及其制备方法和应用 |
| CN104698189A (zh) * | 2015-03-12 | 2015-06-10 | 北京中航赛维生物科技有限公司 | 保护异硫氰酸荧光素与抗原抗体偶联物的稳定剂及其制备方法和用途 |
| CN105319356A (zh) * | 2015-12-16 | 2016-02-10 | 北京勤邦生物技术有限公司 | 一种用于黄曲霉毒素b1富集净化的免疫磁珠及其制备方法和应用 |
| CN105675565B (zh) * | 2016-01-24 | 2018-10-09 | 湖南科技大学 | 一种快速检测黄曲霉毒素b1的方法 |
| CN105675565A (zh) * | 2016-01-24 | 2016-06-15 | 湖南科技大学 | 一种快速检测黄曲霉毒素b1的方法 |
| CN106680485A (zh) * | 2016-11-22 | 2017-05-17 | 云南辉瑞贝尔生物科技有限公司 | 大观霉素药物的酶联免疫检测试剂盒及其应用 |
| CN107202891A (zh) * | 2017-06-27 | 2017-09-26 | 江苏大学 | 一种黄曲霉毒素b1免疫快速检测装置和检测方法 |
| CN107202891B (zh) * | 2017-06-27 | 2019-06-28 | 江苏大学 | 一种黄曲霉毒素b1免疫快速检测装置和检测方法 |
| CN108828208A (zh) * | 2018-06-25 | 2018-11-16 | 沭阳康源泰博生物科技有限公司 | 一种应用免疫磁珠技术的黄曲霉毒素前处理试剂盒 |
| CN109060783A (zh) * | 2018-10-25 | 2018-12-21 | 成都博奥新景医学科技有限公司 | 一种基于磁棒法的单人份化学发光免疫检测方法及系统 |
| CN113218937A (zh) * | 2021-04-19 | 2021-08-06 | 江苏科技大学 | 一种黄曲霉毒素磁性多重增敏传感器及其制备与应用 |
| CN113218937B (zh) * | 2021-04-19 | 2022-12-02 | 江苏科技大学 | 一种黄曲霉毒素磁性多重增敏传感器及其制备与应用 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CN101661036A (zh) | 一种黄曲霉毒素b1磁微粒分离酶联免疫检测方法 | |
| Anfossi et al. | Lateral-flow immunoassays for mycotoxins and phycotoxins: a review | |
| EP1826562B1 (en) | Method of pretreating specimen and immunoassay method using the same | |
| CN101907627A (zh) | 一种盐酸克伦特罗磁微粒分离酶联免疫检测方法 | |
| JP3398199B2 (ja) | 塩基解離アッセイ | |
| US20140356978A1 (en) | Extraction of Mycotoxins | |
| CN101533011A (zh) | 一种日本血吸虫虫卵抗体磁微粒分离酶联免疫检测方法 | |
| Schnerr et al. | A biosensor-based immunoassay for rapid screening of deoxynivalenol contamination in wheat | |
| WO1999032886A1 (en) | Generic signalling mechanism for detection of analytes | |
| WO2007092302A2 (en) | Test device for analyte detection | |
| KR101451733B1 (ko) | 아플라톡신 ｂ1 검출용 표지물질 및 이를 포함한 아플라톡신 ｂ1 검출용 키트 | |
| JP6712863B2 (ja) | イムノクロマト処理によるアレルゲンの検出方法 | |
| Yu et al. | Development of a magnetic microplate chemifluorimmunoassay for rapid detection of bacteria and toxin in blood | |
| EP3929584A1 (en) | Method for measuring thyroglobulin | |
| WO1994011734A1 (en) | Two-site immunoassay for an antibody with chemiluminescent label and biotin bound ligand | |
| CN116840487A (zh) | 一种检测糖缺失性转铁蛋白的方法 | |
| CN110907442A (zh) | 一种牛奶致敏原的比色检测试剂盒及检测方法 | |
| CN116008524A (zh) | 一种无蛋白通用型保护液及其制备方法和在真菌毒素定量检测试剂盒中的应用 | |
| JP2004239885A (ja) | イオン性界面活性剤存在下における免疫測定法 | |
| CN102539772A (zh) | 基于免疫磁酶的检测伏马毒素b1的方法 | |
| US20220326209A1 (en) | Paper-Based Microfluidic Don-Chip for Rapid and Low-Cost Deoxynivalenol Quantification in Foods, Feeds and Feed Ingredients | |
| KR100436567B1 (ko) | 다중필터를 이용한 경쟁여과면역분석법 및 이에 이용되는면역분석용 키트 | |
| AU613337B2 (en) | Immunoassay utilizing microparticle neutralization | |
| Burmistrova et al. | Simultaneous determination of several mycotoxins by rapid immunofiltration assay | |
| CN113834938B (zh) | 黄曲霉预警分子参考物质、制备方法及其应用 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| C06 | Publication | ||
| PB01 | Publication | ||
| C10 | Entry into substantive examination | ||
| SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
| DD01 | Delivery of document by public notice |
Addressee: Beijing Bio-Ekon Biotechnology Co., Ltd. Xiong Yi Document name: the First Notification of an Office Action |
|
| C02 | Deemed withdrawal of patent application after publication (patent law 2001) | ||
| WD01 | Invention patent application deemed withdrawn after publication |
Application publication date: 20100303 |