CN101620229B - 乙型肝炎病毒e抗体检测试剂盒及检测方法 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及乙肝的诊断试剂,公开了乙型肝炎病毒e抗体检测试剂盒及检测方法。本发明采用光激化学发光检测技术,公开了一种乙型肝炎e抗体检测试剂盒,包括抗-HBe抗体包被的发光微粒、生物素标记的抗-HBe抗体以及中和e抗原。本发明还进一步公开了利用光激化学发光检测技术定性或定量检测乙型肝炎e抗体的方法。本发明的检测试剂盒可以与其它血清和临床信息联合用于诊断个体发生急性或慢性乙型肝炎感染的情况,也可用于对围产期女性乙型肝炎的筛选,以判断新生儿感染乙型肝炎的危险性。此外,本发明的试剂盒具有灵敏度高、检测范围宽等特点,在方法学上较酶免法能达到更高的灵敏度和更优的检测范围。
Description
技术领域
本发明涉及乙肝的诊断试剂盒,具体涉及基于光激化学发光原理的乙型肝炎病毒e抗体检测试剂盒及检测方法。
背景技术
乙肝病毒(HBV)具有地方性,是引发肝脏疾病的主要原因。HBV可通过血液和体液直接传播。常见的传播方式包括输血、注射、开放伤口的直接接触、性交和婴儿出生时的母婴传播。HBV感染后的潜伏期平均为6到8周(1~6个月)。常见的临床症状包括不适、发热、肠胃炎、黄胆、可导致典型的黄胆肝炎、无症状肝炎、爆发型肝炎及慢性肝炎。成年人中,有90%至95%的急性HBV感染患者得到康复,清除病毒。大约5~10%的患者转变成慢性携带者。在HBV感染的婴儿中,大约90%发展成慢性肝炎。估计全世界有超过3亿的病毒携带者。HBV感染,尤其是慢性感染,易发展成为肝癌。
乙肝e抗体在e抗原消失后出现,通常在乙肝症状缓解后持续1年。e抗体的产生通常提示传染危险性的下降——传染周围人群的能力下降。但是,请注意,e抗体阳性患者仍然携带HBV,依然具有传染性。
免疫学检测是基于抗原和抗体的特异性反应进行检测的一种手段,由于其可以利用同位素、酶、化学发光物质等对被检测信号进行放大和显示,因此常被用于检测蛋白质,激素等微量生物活性物质。
我国免疫学检测基本经历了放射免疫检测(兴起于20世纪70年代,现仍普遍使用于县级以上医院);酶联免疫检测(兴起于20世纪80年代,各临床机构普遍使用);以化学发光为代表的光生物学标记及免疫检测技术(20世纪90年代开始推广使用,产品步入成长期)三个阶段。这一衍变过程主要是基于对检测方法的敏感性、准确性、以及操作简捷性的需求的不断提高而决定的。
化学发光免疫分析(Chemiluminescence Immunoassay)是近十年来在世界范围内发展非常迅速的非放射性免疫分析技术。检测原理是以发光物质作为信号放大系统并籍助其发光强度直接测定免疫结合。由于其高灵敏度,检测范围宽等优点,已成为放射性免疫分析与普通酶免疫分析的取代者,是免疫学检测重要的发展方向。
但目前国内自行研制的化学发光检测试剂,大多为非均相反应,采用化学底物直接标记,通过化学反应激发。其分析过程与传统酶标检测类似,需反复清洗与分离,检测耗时长,自动化程度不高。国外厂家检测试剂随发光基质与检测形式而各不相同。以Abbott,Bayer与Chiron等公司为代表的化学激发,即以化学发光底物直接标记抗原或抗体进行免疫测定。最常用的为吖啶酯,在碱性环境中可被过氧化氢氧化而发光。BD则以AKP,金钢脘为基质采用酶促化学发光。Roche为则采用电化学发光(electrochemiluminescence,ECL,发光底物二价的三联吡啶钌及反应参与物三丙胺在电极表面失去电子而被氧化。氧化的三丙胺失去一个H+而成为强还原剂,将氧化型的三价钌还原为激发态的二价钌,随即释放光子而恢复为基态的发光底物。这一过程在电极表面周而复始地进行,不断地发出光子而常保持底物浓度的恒定。因反应过程中牵涉到分离清洗,自动化设计复杂,仪器相当昂贵。此外,发光基质的稳定性也是一大问题。
光激化学发光法通过引入激光技术与纳米微球技术,成功的解决了上述不足。因反应在均相进行,既加快了反应速度,又避免了反复分离与清洗步骤,能有效降低检测背景值,减少反应时间,并可实现自动化操作。目前,PE公司推出了针对生物研究用的光激化学发光试剂Alpha-screen。但在临床检测领域,还没有面世的光激化学发光检测试剂,尤其是用于肿瘤标志物与肝炎检测项目。
发明内容
本发明的目的是提供一种可用于定性或定量检测乙型肝炎e抗体(抗-HBe)的检测试剂盒及相应的检测方法。
本发明的技术原理:
本发明的乙型肝炎e抗体(抗-HBe)检测试剂及试剂盒与光激化学发光检测技术相关,光激化学发光免疫技术是一种利用化学发光物质发射的光波进行免疫测定的方法。该技术主要整合了高分子微粒技术,有机合成,蛋白质化学与临床检测相关领域的研究。
本发明在均相条件下,将乙型肝炎e抗原、内部带有染料的感光微球(纳米级)以及包被有乙型肝炎e抗体并且内部带有发光化合物的发光微球(纳米级)的混合物作为试剂和检测样品混合。此时纳米感光微球和包被有乙型肝炎e抗体的纳米发光微球可迅速有效地捕捉靶分子,在近距离内,三者形成免疫夹心复合物。激发光照射后,纳米感光微球中的染料被诱导激活,并释放高能态的活性氧离子(单线态氧)。该高能态的活性氧离子被近距离的纳米发光微球俘获,从而传递能量以激活所述发光微球中的发光化合物。数微秒后,发光微球中的发光化合物将释放出高能级红光。用光子计数器测定这些高能级光子,并通过电脑将光子数换算为目标分子浓度,光子数的多少即精确地反映了目标分子的浓度。而当样本不含靶分子时,无法在近距离形成免疫夹心复合物,活性氧离子也无法传递至发光微球表面。活性氧离子在液相中迅速衰减,检测时则无光能级红光产生。具体原理参见图1及图2。
基于上述原理,本发明第一方面提供了一种用于检测乙型肝炎e抗体(抗-HBe)的检测试剂盒,包括抗-HBe抗体包被的发光微粒、生物素标记的抗-HBe抗体以及中和e抗原,其中,中和e抗原为HBeAg。
较佳的,上述抗-HBe抗体包被的发光微粒为鼠单克隆抗-HBe包被的发光微粒。
较佳的,上述试剂盒中还包括亲和素包被的感光微粒。
上述作为中和e抗原的HBeAg可以为重组HBeAg。
在试剂盒中,上述抗-HBe抗体包被的发光微粒、生物素标记的抗-HBe抗体、亲和素包被的感光微粒或中和e抗原分别以溶液的形式置于各自独立的容器中。上述含有抗-HBe抗体包被的发光微粒、生物素标记的抗-HBe抗体、亲和素包被的感光微粒或中和e抗原的溶液的溶剂可以是常规的适合抗原抗体反应的溶剂体系,如HEPES缓冲体系、Tris缓冲体系。抗-HBe抗体包被的发光微粒的溶剂优选pH8.0的成分为HEPES、NaCl和EDTA-Na-2H2O的HEPES缓冲液,生物素标记的抗-HBe抗体的溶剂优选pH8.0的成分为Tris、NaCl和EDTA-Na-2H2O的Tris缓冲液,亲和素包被的感光微粒的溶剂优选HEPES、NaCl和EDTA-Na-2H2O的HEPES缓冲液,中和e抗原的溶剂优选pH8.0的成分为Tris、NaCl和EDTA-Na-2H2O的Tris缓冲液。上述各种溶剂中还可添加起封闭和蛋白保护作用的物质如BSA以及防止微粒聚集的稳定试剂如Tween20,出于对试剂防腐以及长期储存的考虑还可在溶剂中添加防腐剂,防腐剂优选100U/ml庆大霉素和质量百分比为万分之五的Proclin 300作为防腐剂。
在用于定量检测乙型肝炎e抗体时,上述试剂盒中还包括抗-HBe定标品。
抗-HBe定标品即为含有已知确定浓度乙型肝炎e抗体的溶液。不同浓度的抗-HBe定标品分别独立包装。较佳的,上述抗-HBe定标品中的乙型肝炎e抗体为单克隆抗体。
较佳的,在用于定量检测乙型肝炎e抗体时,试剂盒中还包括质控品。
质控品包括高水平质控品和低水平质控品。高水平质控品和低水平质控品均为含有已知确定浓度乙型肝炎e抗体的溶液,高水平质控品中抗-HBe浓度较高达到阳性水平,低水平质控品中抗-HBe浓度较低为阴性水平。
在用于定性检测乙型肝炎e抗体时,前述试剂盒中还可包括阳性对照、阴性对照,以及参考样品。上述参考样品为含有确定浓度乙型肝炎e抗体的溶液,该确定浓度乙型肝炎e抗体的溶液中,乙型肝炎e抗体的浓度为乙型肝炎e抗体临床cutoff点对应的浓度。上述阳性对照、阴性对照,以及参考样品分别独立包装。
前述发光微粒是指填充有发光化合物和镧系元素化合物的高分子微粒。发光化合物可以是Dioxene(二氧杂环己烯)或thioxene(二甲基噻吩)的衍生物等,镧系元素化合物可以是Eu(TTA)3/TOPO或Eu(TTA)3/Phen等,该微粒可由市场上购得。
研究发现,由于最终的检测反应是均相反应,发光微粒的粒径(微粒的平均直径)太大(>400nm)会自然沉降,影响检测效果,微粒的粒径太小(<50nm),会使制备过程中的清洗工作比较困难,对抗体连接工作不利,因此发光微粒的粒径范围应在50-400nm之间,较好为100-300nm之间,优选250nm。
发光微粒的表面官能团可以是任何能联接蛋白质的基团,如羧基,醛基,胺基,环氧乙基或卤代烷基等各种已知的可连接蛋白质的官能团,最优化的微粒表面官能团为羧基表面官能团的微粒或醛基表面官能团的微粒。使用不同的微粒表面官能团,连接抗体的反应方式和条件也不相同。
A)羧基微粒和抗体连接方法:羧基表面官能团的微粒亲水性好,颗粒均匀稳定。根据表面羧基含量的不同,一般可分为低,中和高羧基微粒。低羧基微粒一般采用物理吸附法连接抗体。但物理吸附的抗体会逐渐由微粒表面释放,造成溶液中的游离抗体浓度增加,从而降低了检测灵敏度。并且试剂保存的稳定性也不够。高羧基微粒一般采用化学方法连接抗体。化学法连接的微粒与抗体结合比较牢固,在检测灵敏度及试剂的稳定性方面要优于物理吸附。化学法连接微粒与抗体一般采用EDAC和NHS活化微粒,然后活化得微粒与抗体羧合的反应。可以一步反应(活化和羧合同时进行)也可两步反应(活化和羧合分步进行)。一步反应较两步反应简单,但反应的重现性不好,抗体容易失活。两步法连接抗体虽然避免了抗体失活,但仍没有完全解决抗体连接的重现性问题。
B)醛基微粒和抗体连接方法:醛基表面的微粒也有很好亲水性,颗粒均匀稳定,微粒表面容易修饰,并且与蛋白的反应比较容易。一般采用NaBH3CN进行还原胺化反应,反应生成的碳氮键很稳定,抗体连接的效率也很高,重复性也很好。
鉴于获得更好的抗-HBe抗体连接效率,试剂稳定性和连接重复性,经试验优选醛基表面官能团的微粒,并应用了NaBH3CN的还原胺化反应作为抗体的连接方法。
发光微粒的发光量会直接影响最终检测的发光效果。市场提供的发光微粒发光量一般会在50,000-10,000,000光子数/100ug发光微粒范围内,优选150,000-350,000光子数/100ug发光微粒,最佳为25,000-35,000光子数/100ug。
上述抗-HBe抗体包被的发光微粒中,发光微粒与抗-HBe抗体的质量比例较佳为10∶(0.2-10),优选10∶(1-4),最佳为5∶1。
上述生物素标记的抗-HBe抗体中,生物素与抗体的分子比例较佳为(5-50)∶1,优选30∶1。
上述感光微粒是填充有感光化合物的高分子微粒。在670~690nm光激发下,可以产生单线态氧离子,当其与发光微粒距离足够近的情况下,单线氧离子传递到发光微粒,与发光微粒中的发光化合物反应,产生紫外光,紫外光再进一步激发镧系元素化合物,产生520~620nm波长光子。感光化合物可以是酞菁染料等,该微粒也可由市场上购得。
上述亲和素包被的感光微粒中,亲和素与感光微粒的质量比例无特殊限制,较佳为1∶(3-10),优选1∶5。
市售感光微粒均适用于本发明,微粒粒径较佳为180-260nm,优选220nm。
本发明的试剂盒中的各种试剂,可采用下列方法制备:
1.抗-HBe抗体包被的发光微粒:采用NaBH3CN的还原胺化反应法制备,反应步骤如下:
1)混合:将发光微粒与抗-HBe抗体按质量比例为10∶(1-4)混合于缓冲液中;
2)反应:加入缓冲液配制的NaBH3CN溶液混合并反应;
3)封闭:加入缓冲液配制的Gly及NaBH3CN溶液,混匀反应后,再加入BSA溶液封闭;
4)清洗产物,获得抗-HBe抗体包被的发光微粒。
其中,混合步骤中,发光微粒与抗HBe抗体的质量比例为10∶(1-4)优选5∶1。反应缓冲液可为MES缓冲液、磷酸缓冲液,优选MES缓冲液,浓度优选0.05M,反应步骤中,反应溶液中发光微粒的浓度可为10-40mg/ml,优选25mg/ml。清洗的方式可以为离心法清洗或透析法清洗。
透析法清洗步骤:采用反应缓冲液透析,每次4-5小时,更换缓冲液4次。透析清洗操作时间较长,且微粒损失较多,造成收率降低。
离心法清洗步骤包括离心去上清,加入反应缓冲液洗涤,超声处理打开沉淀,如此反复3-5次。离心法清洗时离心力会使发光微粒暂时聚集在一起,但经过超声处理可以很容易再次分散打开,此法操作时间短,且收率较高。因此优选采用此种清洗方式。
2.生物素标记抗体:可采用常规的方法进行。
3.亲和素包被的感光微粒:可采用NaBH3CN的还原胺化反应法制备。
本发明第二方面,公开了一种利用光激化学发光原理,采用双抗体夹心法,定性或定量检测乙型肝炎e抗体的方法,包括将待测样品与抗-HBe抗体包被的发光微粒、中和e抗体、生物素标记的抗-HBe抗体以及亲和素包被的感光微粒混合反应,而后用激发光照射反应孔,测量每个反应孔发光光子量获得光信号值。
其中,光激化学发光法检测的激发光光源波长范围为600-700nm,优选640-680nm;反应孔发光的发射光光源波长范围为600-680nm,优选610-620nm;发射光延迟时间范围为100ms-1000ms;激发光光源的功率范围为5-100mw,优选40-60w。
定量检测乙型肝炎e抗体的方法,包括下列步骤:
1)在反应孔中,将待测样品和中和e抗原混合反应获得反应溶液1;
2)在反应溶液1中加入抗-HBe抗体包被的发光微粒和生物素标记的抗-HBe抗体混合反应,获得反应溶液2;
3)在反应溶液2中再加入亲和素包被的感光微粒获得最终反应溶液;
4)激发光照射反应孔,测量每个反应孔发光光子量获得光信号值;
5)根据标准曲线计算待测样品抗-HBe抗体含量。
定性检测乙型肝炎e抗体的方法,包括下列步骤:
1)在反应孔中,将待测样品或参考样品与中和e抗原混合反应获得反应溶液1;
2)在反应溶液1中加入抗-HBe抗体包被的发光微粒和生物素标记的抗-HBe抗体混合反应,获得反应溶液2;
3)在反应溶液2中再加入亲和素包被的感光微粒获得最终反应溶液;
4)激发光照射反应孔,测量每个反应孔发光光子量获得光信号值;
5)计算待测样品光信号值与抗-HBe抗体参考样品光信号的比值,即S/CO值,当S/CO≤1时待测样品被判定为阳性,当S/CO>1时待测样品被判定为阴性。
上述参考样品中,抗-HBe抗体的浓度与乙型肝炎e抗体临床cutoff点对应。
在定性或定量检测乙型肝炎e抗原的方法中:
步骤2)的反应条件为37℃温育10-120分钟,较佳为10-30分钟,优选20分钟,步骤3)的反应条件也为37℃温育10-30分钟,优选15分钟。
反应溶液1中,中和e抗原的浓度可以为0.5-2ug/ml,最佳为1ug/ml。
反应溶液2中,抗-HBe抗体包被的发光微粒的浓度无特殊限制,可以为40-300ug/ml,优选40ug/ml-160ug/ml,最佳60ug/ml。
反应溶液2中,生物素标记的抗-HBe抗体的浓度无特殊限制,可以为0.5-10ug/ml,较佳为0.5ug/ml-1.5ug/ml,优选1ug/ml。
在最终反应溶液中,亲和素包被的感光微粒的浓度一般控制在30-100ug/ml,优选60ug/ml。
上述方法中,反应溶液2的体积无特殊限制,可以为50-125ul,优选125ul;最终反应溶液的体积也无特殊限制,可以为120-300ul,优选300ul。
上述待测样品包括血清、血浆和全血。
本发明是采用光激化学发光检测技术,测定人血清样品中乙型肝炎e抗体(抗-HBe)的定量及定性体外诊断试剂盒,可以与其它血清和临床信息联合用于诊断个体发生急性或慢性乙型肝炎感染的情况,也可用于对围产期女性乙型肝炎的筛选,以判断新生儿感染乙型肝炎的危险性。本发明的试剂盒采用光激化学发光法测定标本中的抗HBe抗体,具有灵敏度高、检测范围宽等特点,在方法学上较酶免法能达到更高的灵敏度和更优的检测范围。
附图说明
图1:光激化学发光免疫技术原理图:微粒结合形成二聚体,产生光子信号
图2:光激化学发光免疫技术原理图:未结合微粒,无光子信号产生
图3:单线态氧随微粒间距离衰减,在大概600nm的距离,基本没有单线氧的存在,因此也不发光
附图标记:
FG BEAD:发光微粒,内含发光分子;
GG BEAD:感光微粒,内含感光分子;
Singlet Oxygen:单线态氧,活性氧离子;
A/B:两者可直接或间接特异结合的活性分子。如在双抗夹心检测中,A,B为针对靶分子C不同的表位的单克隆抗体
具体实施方式
下面结合实施例进一步阐述本发明。应理解,这些实施例仅用于说明本发明,而非限制本发明的范围。下列实施例中未注明具体条件的实验方法及未说明配方的试剂均为按照常规条件如Sambrook等人,分子克隆:试验手册(New York:Cold Spring Harbor LaboratoryPress,1989)中所述的条件或者制造商建议的条件进行或配置。
实验中仪器原料来源及试剂配方:
原料及试剂 厂家
Biotin-X-X-NHS Sigma TLC≥95%
BSA Equi tech/protease free
Gly Sigma≥95%
HEPES 华美
Tris Sigma
NaBH3CN Acros
Avidin Pierce
抗-HBe 厦门波生生物有限责任公司
感光微粒 美国PentaTek公司
发光微粒 美国PentaTek公司
重组HBeAg 厦门波生生物有限责任公司
仪器 型号 厂家
粒径 Model 370 Nicomp
酶标仪 MultiSKAN MK3 labsystem
紫外可见分光光度计 752P 上海光谱有限公司
荧光分光光度计 F95 上海棱光技术有限公司
光激化学发光分析系统 博阳生物/上海北滨光子
本发明中所提及的PEIU/ml单位,是指向Paul-Ehrlich-Institute(PEI)出品的乙型肝炎抗-HBe定量标准品Anti-HBe IgG:Virological standards(10/2001)溯源所产生的标准单位。
实施例1抗-HBe抗体包被的发光微粒的制备
制备方法:
1)发光微粒混悬液处理:吸取一定量的发光微粒(粒径250±20nm)于高速冷冻离心机中离心,弃去上清,加入一定量MES缓冲液,超声破碎至微粒重新悬浮,加入MES缓冲液调节发光微粒浓度至100mg/ml。
2)抗体处理:抗-HBe于0.05M pH6.0的MES缓冲液(以下简称MES缓冲液)透析,透析完成后测定浓度,并调节浓度至8mg/ml。
3)MES缓冲液、100mg/ml的发光微粒混悬液(MES缓冲液)和8mg/ml的抗-HBe(MES缓冲液)以及,以1∶2∶5的体积比进行混合,迅速混匀,得到反应液。
4)用MES缓冲液配制25mg/ml的NaBH3CN溶液,按照与反应液1∶25的体积比加入,迅速混匀,37℃旋转反应48小时。
5)MES缓冲液配制75mg/ml的Gly溶液以及25mg/ml的NaBH3CN溶液,按照与反应液2∶1∶10的体积比加入上述溶液中,混匀,37℃旋转反应2小时。再加入200mg/ml的BSA溶液(MES缓冲液),其与反应液体积比为5∶8,迅速混匀,37℃旋转反应16小时。
6)用MES缓冲液离心清洗三次,最后用发光试剂缓冲液进行悬浮,测定粒径和固含量,调节浓度至10mg/ml。
参照上述制备方法制备抗-HBe抗体包被的发光微粒,并通过各项性能测试比较从以下几方面进行了具体工艺条件的选择研究:
研究中涉及的各个参数的检测方法如下:
1.光信号检测方法:
在反应孔中分别加入25μl样品,再依次加入50μl中和e抗原试剂(1ug/ml)、25μl发光试剂(60ug/ml)和25μl生物素化抗体试剂(按实施例4的方法制备,1ug/ml)。然后放入仪器(光激化学发光分析系统),由仪器自动按以下步骤操作:振动,37℃温育15分钟,再自动加入175μl亲和素包被的感光微粒试剂(按实施例4的方法制备,60ug/ml)后37℃温育15分钟。仪器自动产生激光照射微孔计算每孔发光光子量。
2.灵敏度检测方法:检测灵敏度参考品(编号L1-1~3、L2-1~3、L3-1~3)光信号,均需检出所要求的企业灵敏度参考品(需检出L1-2;L2-2;L3-2)。
L1-1~3、L2-1~3、L3-1~3配方:选取3份不同来源的血清标本,经检测HCV、HIV均为阴性,抗-HBe经Abbott公司试剂盒检测确认为阳性,分别按照比例稀释后得到3个标本系列。
编号 | 1∶64 | 1∶128 | 1∶256 | 1∶512 | 1∶1024 |
1#(S/CO值) | 0.11 | 0.26 | 0.52 | 0.85 | 1.71 |
编号 | 1∶64 | 1∶128 | 1∶256 | 1∶512 | 1∶1024 |
2#(S/CO值) | 0.22 | 0.48 | 0.76 | 1.56 | 3.15 |
编号 | 1∶64 | 1∶128 | 1∶256 | 1∶512 | 1∶1024 |
3#(S/CO值) | 0.09 | 0.19 | 0.40 | 0.62 | 1.25 |
结果表明按上述比例稀释后组成的3个标本系列为弱阳性标本,可用于试剂盒灵敏度的考核。以1#标本的1∶1024-1∶256、2#标本的1∶512-1∶128、3#标本的1∶1024-1∶256组成的3个标本系列作为公司内部灵敏度参考品(编号L1-1~3、L2-1~3、L3-1~3)。3.特异性检测方法:检测20份特异性参考品光信号,不得检出假阳性,无假阳性则记为20/20。
特异性参考品配方:从收集的HBeAg阴性标本中选取20份,组成特异性参考品,编号N-01~N-20。标本选择时既包括了健康人标本,也包括了的较易引起假阳性的特殊人群标本。其具体组成如下:
标本类型 | 份数 |
正常献血员标本 | 5份 |
甲肝阳性标本 | 4份 |
丙肝阳性标本 | 4份 |
类风湿关节炎病人标本 | 4份 |
高血脂等其他病人标本 | 3份 |
4.精密性检测方法:
检测抗-HBe浓度分别为0.5PEIU/ml和4.6PEIU/ml的质控品光信号,每个浓度做10孔重复测定,代入公式,计算CV值。低浓度的精密性测定表示为QC L,高浓度的精密性测定表示为QC H。
工艺条件选择:
a.反应pH值
其它反应条件:25mg/ml的发光微粒反应浓度,10∶2的FG-bead与抗-HBe质量比,离心法清洗
pH5.0:0.1MMES缓冲反应体系中有明显的微粒聚集现象,故不采用此反应条件。pH6.0:0.1M MES缓冲体系反应基本正常,抗体连接率及抗-HBe检测比pH7.0的0.1M磷酸缓冲体系稍差。pH7.0的0.1M磷酸缓冲体系反应基本正常,抗体连接率及抗-HBe检测比pH6MES缓冲体系稍好,且考虑到一般购买的抗体均保存在PB buffer中,在抗体的前处理过程中会避免因抗体缓冲液的改变带来的抗体的损失。故选择pH7.0的0.1M PB buffer作为反应缓冲液。
b.发光微粒在反应液中的浓度
其它反应条件:0.05M pH6.0的MES buffer作为反应缓冲液,10∶2的FG-bead与抗-HBe的质量比,离心法清洗
1
10mg/ml反应浓度时,抗体连接率及灵敏度均不佳。反应浓度升高有利于抗体的连接,当发光微粒浓度为20mg/ml时,抗体连接率基本达到平台,浓度再高,达到40mg/ml时,由于溶液浓度较大在37℃反应时间较长的情况下黏附损失较严重,故选择20mg/ml的发光微粒反应浓度为宜。
c.发光微粒与抗体的反应比例
其它反应条件:0.05M pH6.0的MES buffer作为反应缓冲液,25mg/ml的发光微粒反应浓度,离心法清洗。
抗体加入量与发光微粒上包被的抗体量基本呈正比关系,但抗体继续增加时包被上的抗体达到饱和。综合考虑QC结果及成本问题,选择10mg FG-bead与2mg抗-HBe反应条件。
d.清洗方式
其它反应条件:0.05M pH6.0的MES buffer作为反应缓冲液,25mg/ml的发光微粒反应浓度,5∶1的FG-bead与抗-HBe比例。
透析法清洗步骤:100倍体积透析,每次4-5小时,更换缓冲液4次。透析清洗操作时间较长,透析过程中微粒损失较多。
离心法清洗步骤:12000rpm离心30分钟,清洗4次。离心法清洗的离心力会使发光微粒暂时聚集,但经过超声处理很容易可再次分散打开。且操作时间短,收率较高。考虑到生产周期以及生产成本,决定采用此种清洗方式。
最终选择250nm的粒径,发光量为≥250,000光子数/100ug的发光微粒,0.05M pH6.0的MES buffer作为反应缓冲液,25mg/ml的发光微粒反应浓度,5∶1的FG-bead与抗-HBe比例,离心法清洗作为最优制备条件。
实施例2生物素标记抗体的制备
制备方法:
1)抗体处理:将抗-HBe透析于0.1M NaHCO3溶液,测定抗体浓度并调节至1mg/ml。
2)用DMSO配制16.17mg/ml的Biotin溶液。
3)标记:取处理好的1mg/ml抗-HBe标记抗体与配制好的Biotin溶液,二者按照10000∶54的体积比进行混合,迅速混匀。2~8℃静置反应12~16小时。
4)透析:将反应好的生物素标记抗体透析于生物素标记透析缓冲液(pH8.00)。
5)将透析好的生物素化抗体吸出转移至干净离心管中,取样测定抗体浓度。将质检合格的生物素标记抗体浓度调节至0.5mg/ml。
按上述制备方法,改变抗体与Biotin的分子比例进行反应并进行检测:
光信号检测方法:
在反应孔中分别加入25μl样品,再依次加入50μl中和e抗原试剂(1ug/ml浓度),25μl发光试剂(按实施例1的方法制备,60ug/ml浓度)和25μl生物素化抗体试剂(1ug/ml浓度)。然后放入仪器(光激化学发光分析系统),由仪器自动按以下步骤操作:振动,37℃温育15分钟,再自动加入175μl亲和素包被的感光微粒试剂(按实施例3的方法制备,60ug/ml浓度)后37℃温育15分钟。仪器自动产生激光照射微孔计算每孔发光光子量。
从灵敏度等方面进行考虑,认为优选30∶1的比例。
实施例3亲和素包被的感光微粒的制备
感光微粒:采用粒径为220±40nm的感光微粒(美国PentaTek公司)
制备方法:
a、感光微粒混悬液处理:吸取一定量的感光微粒于高速冷冻离心机中离心,弃去上清,加入一定量MES缓冲液,超声细胞破碎仪上超声至微粒重新悬浮,加入MES缓冲液调节感光微粒浓度至100mg/ml。
b、亲和素溶液配制:称量一定量Avidin,加MES缓冲液溶解至8mg/ml。
c、混合:将处理好的感光微粒混悬液、8mg/ml的Avidin以及MES缓冲液,以2∶5∶1的体积比进行混合,迅速混匀,得到反应液。
d、反应:MES缓冲液配制25mg/ml的NaBH3CN溶液,按照与反应液1∶25的体积比加入,迅速混匀。37℃旋转反应48小时。
e、封闭:MES缓冲液配制75mg/ml的Gly溶液以及25mg/ml的NaBH3CN溶液,按照与反应液2∶1∶10的体积比加入上述溶液中,混匀,37℃旋转反应2小时。再加入200mg/ml的BSA溶液(MES缓冲液),其与反应液体积比为5∶8,迅速混匀,37℃旋转反应16小时。
f、清洗:向反应好的溶液中加入MES缓冲液,高速冷冻离心机离心,弃上清,加入新鲜MES缓冲液超声法重新悬浮,再次离心,如此清洗3次,最后用少量的感光试剂缓冲液进行悬浮,测定固含量,用感光试剂缓冲液调节浓度至10mg/ml。
实施例4临床cutoff点确定
试剂配制:
1.发光抗体缓冲液:pH8.0成分为HEPES、NaCl和EDTA-Na-2H2O的HEPES缓冲液,添加BSA及100U/ml庆大霉素和质量百分比为万分之五Proclin 300。
2.生物素标记抗体缓冲液:pH8.0的成分为Tris、NaCl和EDTA-Na-2H2O的Tris缓冲液,添加BSA及100U/ml庆大霉素和质量百分比为万分之五Proclin 300。
3.中和抗原稀释液:pH8.0的成分为Tris、NaCl和EDTA-Na-2H2O的Tris缓冲液,添加BSA及100U/ml庆大霉素和质量百分比为万分之五Proclin 300。
4.抗-HBe抗体包被的发光微粒试剂:采用实施例1的方法,选择250nm的粒径,发光量为≥250,000光子数/100ug的发光微粒,0.05M pH6.0的MES buffer作为反应缓冲液,25mg/ml的发光微粒反应浓度,5∶1的FG-bead与抗-HBe比例,离心法清洗制得抗-HBe抗体包被的发光微粒。将抗体包被的发光微粒用发光抗体缓冲液调节浓度至10mg/ml。
5.生物素标记抗体试剂:采用实施例2的方法,抗体与Biotin按照30∶1的比例制得生物素标记抗体。将生物素标记抗体用生物素标记抗体缓冲液调节浓度至0.5mg/ml。
6.亲和素包被的感光微粒试剂:由实施例3的方法制得亲和素包被的感光微粒,将亲和素包被的感光微粒用感光试剂缓冲液调节浓度至10mg/ml。
7.中和e抗原试剂:将重组HBeAg用中和抗原稀释液稀释至1μg/ml。
光信号检测方法:
在反应孔中分别加入25μl样品和50μl中和e抗原试剂,再依次加入25μl发光试剂和25μl生物素化抗体试剂混合。然后放入仪器(光激化学发光分析系统),由仪器自动按以下步骤操作:振动,37℃温育15分钟,再自动加入175μl亲和素包被的感光微粒试剂后37℃温育15分钟。仪器自动产生激光照射微孔计算每孔发光光子量。
根据对1042个正常非乙型肝炎患者的血样进行检测的结果,99%的样品抗-HBe水平小于0.5PEIU/ml,所以我们可以认为0.5PEIU/ml是本试剂的临床cutoff点。
测定均值(PEIU/ml) | SD | CV(%) | |
抗-HBe参考样品 | 0.6 | 0.03 | 5.00 |
实施例5阴性、阳性对照、参考样、定标品及质控品的制备
1.HBeAg阴性对照:新生牛血清。
2.HBeAg阳性对照:使用Paul-Ehrlich-Institute(Virological standards 10/2001)出品的乙型肝炎抗-HBe定量参考品以新生牛血清为稀释液配制浓度为3.50PEIU/ml的溶液作为阳性对照。
3.参考样品:
根据实施例4对临床cutoff点的研究,使用Paul-Ehrlich-Institute(Virologicalstandards 10/2001)出品的乙型肝炎抗-HBe定量参考品以新生牛血清为稀释液配制浓度为0.6PEIU/ml的样品作为参考样。
4.定标品
使用Paul-Ehrlich-Institute(Virological standards 10/2001)出品的乙型肝炎抗-HBe定量标准品以新生牛血清为稀释液,按照浓度0PEIU/ml,0.5PEIU/ml,2.0PEIU/ml,4.0PEIU/ml,12PEIU/ml,20PEIU/ml配制6个定标品。
5.质控品:使用Paul-Ehrlich-Institute(Virological standards 10/2001)出品的乙型肝炎抗-HBe定量参考品以新生牛血清为稀释液配制浓度为4.6PEIU/ml的溶液作为QC H,浓度为0.5PEIU/ml的溶液作为QC L。
实施例6乙型肝炎e抗体定性及定量检测
1.基本检测模式:
首先向反应孔中分别加入样品和中和e抗原试剂,再依次加入发光试剂(抗体包被的发光微粒)和生物素标记抗体。然后放入仪器(光激化学发光分析系统),由仪器自动按以下步骤操作:振动,37℃温育。再自动加入感光试剂(含亲和素包被的感光微粒)后37℃再次温育。温育结束后仪器自动产生激光照射微孔计算每孔发光光子量。
2.标准曲线的获得:
按上述方法检测各个定标品的发光光子量,将测得的光信号值与相应的定标品浓度采用cubic spline拟和作图即得,标准曲线呈线性。
3.定量检测:
在定量测定中,根据标准曲线,按样本实测光信号值计算每一个样本的抗-HBe含量,单位是PEIU/ml。
4.定性检测:
在定性测定中,检测参考样品的光信号值计,计算每一个样本的S/CO(即待测样品光信号值与抗HBe参考样品光信号的比值),当S/CO≤1时待测样品被判定为阳性,当S/CO>1时待测样品被判定为阴性。检测阴阳对照的光信号,如检测结果出错,则检测无效,需重新检测。
5.检测条件的优化试验:
5.1温育时间的确定:
试验材料:采用实施例4的方法制备抗体包被的60ug/ml的发光微粒试剂(下简称发光抗体试剂)、1ug/ml中和e抗原试剂、1ug/ml的生物素标记抗体试剂,及60ug/ml的亲和素包被的感光微粒试剂
检验样本:灵敏度参考品和质控品QcL,QcH。
初始反应条件:加样量为样品25ul,中和e抗原试剂50ul,发光微粒试剂25ul,生物素标记抗体试剂25ul,亲和素包被的感光微粒试剂为175ul,两步温浴。
5.1.1第一步温育时间的确定
第一步温育时间分别为10min、15min、20min、30min,第二步温育时间为20min对检验样本进行检测,分别考察灵敏度、特异性、准确性、精密度等指标。结果见下表:
对上述结果进行分析比较,在初始条件下,第一步温育时间为10-30min均可,根据结果当第一温浴时间大于15min后,结果已经趋于稳定。
5.1.2第二步温育时间的确定
第一步温育时间为15min,第二步温育时间分别为10min、15min、20min、30min对检验样本进行检测,分别考察灵敏度、特异性、准确性、精密度等指标。结果见下表:
根据上述结果,当第二步温浴时间为15min时结果已经趋于稳定,因此确定第二温浴时间为15min。
5.2加样模式的考察
试验材料:采用实施例4的方法制备抗体包被的60ug/ml的发光微粒试剂(下简称发光抗体试剂)、1ug/ml中和e抗原试剂、1ug/ml的生物素标记抗体试剂,及60ug/ml的亲和素包被的感光微粒试剂
检验样本:灵敏度参考品和质控品QcL,QcH。
初始反应条件:依次添加样品、中和e抗原试剂、发光微粒试剂、生物素标记抗体试剂、亲和素包被的感光微粒,两步温浴,其中第一温浴时间为15min,第二温浴时间为15min。
设计了三种加样模式进行考察。
模式1:10ul样品+20ul中和e抗原试剂+10ul发光抗体试剂+10ul生物素标记抗体试剂+70ul亲和素包被的感光微粒试剂;
模式2:15ul样品+30ul中和e抗原试剂+15ul发光抗体试剂+15ul生物素标记抗体试剂+105ul亲和素包被的感光微粒试剂;
模式3:25ul样品+50ul中和e抗原试剂+25ul发光抗体试剂+25ul生物素标记抗体试剂+175ul亲和素包被的感光微粒试剂。
按照以上三种加样模式对检测样本进行检测,分别考察灵敏度、特异性、准确性、精密度等指标。结果见下表:
对上述结果进行分析比较,在其余条件相同的情况下,并考虑到手工加样样品量过小会造成不便于操作的影响以及更容易产生误差,所以我们选择模式3。
5.3发光抗体、生物素化抗体、亲和素包被的感光微粒浓度的筛选
试验材料:采用实施例4的方法制备抗体包被的发光微粒试剂(下简称发光抗体试剂)、中和e抗原试剂、生物素标记抗体试剂,及亲和素包被的感光微粒试剂
检验样本:灵敏度参考品和质控品QcL,QcH。
初始反应条件:25ul样品+50ul中和e抗原试剂+25ul发光抗体试剂+25ul生物素标记抗体试剂+175ul亲和素包被的感光微粒试剂,两步温浴,其中第一温浴时间为15min,第二温浴时间为15min。
5.3.1发光抗体和生物素化抗体浓度的初筛
中和e抗原试剂采用1ug/ml的浓度,亲和素包被的感光微粒采用60ug/ml的浓度,分别配制浓度为40ug/ml、80ug/ml、160ug/ml的发光抗体试剂以及浓度为0.5ug/ml、1.5ug/ml、4.5ug/ml的生物素标记抗体试剂交叉配对进行检测,在初始反应条件下结果分别如下:
40ug/ml发光抗体
80ug/ml发光抗体
160ug/ml发光抗体
对上述结果进行分析比较,发光抗体的浓度在40ug/ml-80ug/ml之间,生物素化抗体的浓度在0.5ug/ml-1.5ug/ml之间结果较为理想。
5.3.2发光抗体和生物素化抗体浓度的精筛
根据初筛的结果分别配制浓度为40ug/ml、60ug/ml、80ug/ml的发光抗体以及浓度为0.5ug/ml、1ug/ml、1.5ug/ml的生物素化抗体交叉配对进行检测,中和e抗原浓度为1ug/ml(厂商建议),结果分别如下:
40ug/ml发光抗体
60ug/ml发光抗体
80ug/ml发光抗体
对上述结果进行分析比较,发光抗体的浓度在60ug/ml,生物素化抗体的浓度在1ug/ml时结果最为理想。
5.3.3中和e抗原浓度的选择
结合本方法的特点,采用发光抗体的浓度在60ug/ml,生物素化抗体的浓度在1ug/ml,分别配制浓度为0.5ug/ml、1ug/ml、2ug/ml中和e抗原试剂的进行检测,结果分别如下:
对上述结果进行分析比较,中和抗原的浓度在1ug/ml时结果最为理想。
实施例7评价试验
试剂:采用实施例4的方法制备发光抗体试剂(浓度60ug/ml)、中和e抗原试剂(浓度为1ug/ml)、生物素标记抗体试剂(浓度为1ug/ml)及亲和素包被的感光微粒试剂(浓度为60ug/ml)。
检测方法:在反应孔中分别加入25μl样品,再依次加入50μl中和e抗原试剂、25μl发光试剂和25μl生物素化抗体试剂。然后放入仪器,由仪器自动按以下步骤操作:振动,37℃温育15分钟,再自动加入亲和素包被的感光微粒试剂175μl后37℃温育15分钟。仪器自动产生激光照射微孔计算每孔发光光子量,根据标准曲线可以推算样品抗-HBe浓度,单位是PEIU/ml,也可以根据S/CO值判断样品的阴阳性,最后打印试验报告。
1.定量模式性能评价
1.1检测范围
在3个临床试验点对1042个正常非乙型肝炎患者的样品进行检测,99%的样品抗-HBe水平小于0.50PEIU/ml。在本测定方法中,设定检测范围为0.3-10.0PEIU/ml。
1.2灵敏度的检测
企业灵敏度参考品(编号L1-1~3、L2-1~3、L3-1~3),均需检出所要求的企业灵敏度参考品。1#需检出L1-2;2#需检出L2-2;3#需检出L3-2。结果如下:
1 | 2 | 3 | |
L1(PEIU/ml) | 0.32 | 0.75 | 1.57 |
L2(PEIU/ml) | 0.45 | 1.05 | 1.65 |
L3(PEIU/ml) | 0.48 | 1.25 | 2.16 |
1.3特异性的检测
检测20份特异性参考品,不得检出假阳性。
编号 | 测定值 | 编号 | 测定值 | 编号 | 测定值 | 编号 | 测定值 |
N-01 | 0.01 | N-06 | 0.07 | N-11 | 0.09 | N-16 | 0.16 |
N-02 | 0.00 | N-07 | 0.09 | N-12 | 0.10 | N-17 | 0.19 |
N-03 | 0.02 | N-08 | 0.07 | N-13 | 0.14 | N-18 | 0.13 |
N-04 | 0.01 | N-09 | 0.10 | N-14 | 0.08 | N-19 | 0.16 |
N-05 | 0.09 | N-10 | 0.09 | N-15 | 0.07 | N-20 | 0.08 |
1.4线性的检测
对除0值外其他5点定标品(实施例5制备)做线性分析,计算线性相关系数r(r应大于0.99),r=0.9994。
1.5精密性的检测
分别采用2个批号的抗-HBe试剂盒对高、低2个水平的乙肝e抗体质控品进行检测,重复10孔,将结果数值代入公式,计算CV值
1.6干扰性试验
在一份已知浓度的临床标本中添加血红蛋白、甘油三酯及胆红素制成250mg/dL血红蛋白的溶血标本、500mg/dL甘油三酯的脂血标本及10mg/dL胆红素的黄疸标本进行检测,测定值与原浓度的偏差不得超过15%。
测定值 | 理论值 | 偏差率(%) | |
溶血标本 | 1.98 | 2.10 | -5.7 |
脂血标本 | 2.23 | 2.10 | 6.2 |
黄疸标本 | 2.28 | 2.10 | 8.6 |
2.定性模式检测
使用灵敏度参考品、特异性参考品以及阴阳性对照对定性模式下的试剂进行检测
由上述结果确定:本产品在定性模式下灵敏度、特异性、精密性等指标均能达到要求。
实施例8比较试验
试剂:采用实施例4的方法制备发光抗体试剂(60ug/ml)、中和e抗原(1ug/ml)、生物素标记抗体试剂(1ug/ml)及亲和素包被的感光微粒试剂(60ug/ml)。
以美国Abbott公司Anti-HBe试剂盒为参照进行了质量水平比较,所用标本为前述灵敏度参考品,结果如下:
根据以上结果,本发明试剂盒的最低检出率与特异性已和Abbott公司的产品基本相当。
国内目前尚无经国家食品药品监督管理局批准的同类方法试剂盒上市,故未进行比较。
与本产品检测对象相近的乙型肝炎e抗体(Anti-HBe)酶免法试剂盒在方法学上比较,酶免法以OD值体现样本检测值,OD值可检测范围窄,仅可做定性检测,且灵敏度低。本试剂盒采用光激化学发光法测定标本中的Anti-HBe,具有灵敏度高、检测范围宽等特点,在方法学上较酶免法能达到更高的灵敏度和更优的检测范围。
实施例9试剂盒的组配
将实施例1和2中按照各种方法制备的两种试剂分别独立包装,与按照实施例4的方法配置的中和e抗原试剂的独立包装组配后获得基本试剂盒。可用于检测待测样本的光激化学反应光信号。按照实施例3制备的亲和素包被的感光微粒试剂即可独立包装后组配入上述试剂盒,也可自行独立包装,与上诉试剂盒配合使用。
在上述试剂盒中加入分别独立包装的实施例5配制的阴性、阳性对照及参考样后获得定性检测试剂盒。可用于定性检测乙型肝炎e抗原。
在上述试剂盒中加入独立包装的实施例5配制的定标品后获得定量检测试剂盒。可用于定量检测乙型肝炎e抗原。
实施例10临床试验
试剂盒中,各种试剂的浓度取值:
发光抗体试剂:含发光抗体60ug/ml
中和e抗原试剂:含中和抗原1ug/ml
生物素标记抗体试剂:含生物素标记抗体1ug/ml
亲和素包被的感光微粒试剂:含亲和素包被的感光微粒(60ug/ml)
样品来源:临床标本选择为乙型肝炎患者标本、门诊及体检标本和完成乙型肝炎疫苗接种后一年的人群标本。本次临床试验中,乙型肝炎患者标本共367例,门诊及体检标本共280例,完成乙型肝炎疫苗接种后一年的人群标本共377例。合计1024例。
试验结果:
检测中,采用Abbott AxSym乙型肝炎e抗体检测试剂盒做平行比较,计算两者的阴阳性符合率。结果如下
阳性符合177/179*100%为98.9%
阴性符合率845/845*100%为100%
结论:
本发明的乙型肝炎e抗体(抗-HBe)检测试剂盒(光激化学发光法)与Abbott试剂的阳性符合率为98.0%阴性符合率为100%。
通过临床测试证明本发明试剂盒用于乙型肝炎e抗体的检测与国外产品相近,可用于临床乙型肝炎的辅助诊断及血液筛选使用。
Claims (29)
1.一种乙型肝炎e抗体检测试剂盒,包括抗-HBe抗体包被的发光微粒、生物素标记的抗-HBe抗体以及中和e抗原,其中,中和e抗原为HBeAg,所述试剂盒中还包括亲和素包被的感光微粒。
2.如权利要求1所述乙型肝炎e抗体检测试剂盒,其特征在于,所述发光微粒粒径为150-300nm。
3.如权利要求1所述乙型肝炎e抗体检测试剂盒,其特征在于,所述发光微粒的表面官能团选自羧基、醛基、胺基、环氧乙基或卤代烷基。
4.如权利要求3所述乙型肝炎e抗体检测试剂盒,其特征在于,所述发光微粒表面官能团选自羧基或醛基。
5.如权利要求1所述乙型肝炎e抗体检测试剂盒,其特征在于,所述抗-HBe抗体包被的发光微粒中,发光微粒与抗-HBe抗体的质量比例为10∶(0.2-10)。
6.如权利要求5所述乙型肝炎e抗体检测试剂盒,其特征在于,所述抗-HBe抗体包被的发光微粒中,发光微粒与抗-HBe抗体的质量比例为10∶(1-4)。
7.如权利要求6所述乙型肝炎e抗体检测试剂盒,其特征在于,所述抗-HBe抗体包被的发光微粒中,发光微粒与抗-HBe抗体的质量比例为5∶1。
8.如权利要求1所述乙型肝炎e抗体检测试剂盒,其特征在于,所述抗-HBe抗体为鼠单克隆抗-HBe抗体。
9.如权利要求1所述乙型肝炎e抗体检测试剂盒,其特征在于,所述生物素标记的抗-HBe抗体中,生物素与抗体的分子比例为(5-50)∶1.
10.如权利要求9所述乙型肝炎e抗体检测试剂盒,其特征在于,所述生物素标记的抗-HBe抗体中,生物素与抗体的分子比例为30∶1。
11.如权利要求1所述乙型肝炎e抗体检测试剂盒,其特征在于,所述亲和素包被的感光微粒中,亲和素与感光微粒的质量比例为1∶5。
12.如权利要求1-11中任一权利要求所述乙型肝炎e抗体检测试剂盒,其特征在于,所述抗-HBe抗体包被的发光微粒、生物素标记的抗-HBe抗体和中和e抗原分别独立包装。
13.如权利要求12所述乙型肝炎e抗体检测试剂盒,其特征在于,所述抗-HBe抗体包被的发光微粒、生物素标记的抗-HBe抗体和中和e抗原均为混悬液。
14.如权利要求13所述乙型肝炎e抗体检测试剂盒,其特征在于,所述亲和素包被的感光微粒以溶液的形式置于独立的容器中。
15.如权利要求13或14所述乙型肝炎e抗体检测试剂盒,其特征在于,所述混悬液的溶剂选自HEPES缓冲体系或Tris缓冲体系。
16.如权利要求15所述乙型肝炎e抗体检测试剂盒,其特征在于,所述混悬液的溶剂中含有蛋白保护剂、防止微粒聚集的稳定试剂或防腐剂中的一种或多种。
17.如权利要求12所述乙型肝炎e抗体检测试剂盒,其特征在于,所述试剂盒还包括独立包装的定标品或质控品,所述定标品或质控品为含有确定浓度乙型肝炎e抗体的溶液。
18.如权利要求12所述乙型肝炎e抗体检测试剂盒,其特征在于,所述试剂盒还包括独立包装的阳性对照和阴性对照。
19.如权利要求12所述乙型肝炎e抗体检测试剂盒,其特征在于,所述试剂盒还包括独立包装的参考样品,所述参考样品为含有确定浓度乙型肝炎e抗体的溶液,该确定浓度为乙型肝炎e抗体临床cutoff点对应的乙型肝炎e抗体浓度。
20.一种非诊断目的的定性或定量检测乙型肝炎e抗体的方法,包括将待测样品与抗-HBe抗体包被的发光微粒、中和e抗原、生物素标记的抗-HBe抗体以及亲和素包被的感光微粒混合反应,而后用激发光照射反应孔,测量每个反应孔发光光子量获得光信号值,其中,中和e抗原为HBeAg。
21.如权利要求20所述非诊断目的的定性或定量检测乙型肝炎e抗体的方法,其特征在于,包括下列步骤:
1)在反应孔中,将待测样品和中和e抗原混合反应获得反应溶液1;
2)在反应溶液1中加入抗-HBe抗体包被的发光微粒和生物素标记的抗-HBe抗体混合反应,获得反应溶液2;
3)在反应溶液2中再加入亲和素包被的感光微粒获得最终反应溶液进行反应;
4)激发光照射反应孔,测量每个反应孔发光光子量获得光信号值。
22.如权利要求21所述非诊断目的的定性或定量检测乙型肝炎e抗体的方法,其特征在于,所述步骤2和3的反应条件为37℃温育10-30分钟。
23.如权利要求22所述非诊断目的的定性或定量检测乙型肝炎e抗体的方法,其特征在于,所述步骤2和3的反应条件为37℃温育15分钟。
24.如权利要求21所述非诊断目的的定性或定量检测乙型肝炎e抗体的方法,其特征在于,所述抗-HBe抗体包被的发光微粒为混悬液,混悬液中抗-HBe抗体包被的发光微粒浓度为40-300ug/ml,所述生物素标记的抗-HBe抗体为混悬液,混悬液中生物素标记的抗-HBe抗体浓度为0.5-10ug/ml,所述亲和素包被的感光微粒为混悬液,混悬液中亲和素包被的感光微粒浓度为30-100ug/ml。
25.如权利要求24所述非诊断目的的定性或定量检测乙型肝炎e抗体的方法,其特征在于,所述抗-HBe抗体包被的发光微粒混悬液中,抗-HBe抗体包被的发光微粒浓度为40ug/ml-160ug/ml,所述生物素标记的抗-HBe抗体混悬液中,生物素标记的抗-HBe抗体浓度为0.5ug/ml-1.5ug/ml,所述中和e抗原为混悬液,混悬液中HBeAg的浓度为0.5-2ug/ml。
26.如权利要求25所述非诊断目的的定性或定量检测乙型肝炎e抗体的方法,其特征在于,所述抗-HBe抗体包被的发光微粒混悬液中,抗-HBe抗体包被的发光微粒浓度为60ug/ml,所述生物素标记的抗-HBe抗体混悬液中,生物素标记的抗-HBe抗体浓度为1ug/ml,所述亲和素包被的感光微粒混悬液中,亲和素包被的感光微粒浓度为60ug/ml,所述中和e抗原混悬液中,HBeAg的浓度为1ug/ml。
27.如权利要求21所述非诊断目的的定性或定量检测乙型肝炎e抗体的方法,其特征在于,所述反应溶液2的体积为50-125ul,最终反应溶液的体积为120-300ul。
28.如权利要求27所述非诊断目的的定性或定量检测乙型肝炎e抗体的方法,其特征在于,所述反应溶液2的体积为125ul,最终反应溶液的体积为300ul。
29.如权利要求21-28中任一权利要求所述非诊断目的的定性或定量检测乙型肝炎e抗体的方法,其特征在于,当定量检测乙型肝炎e抗体时,步骤4后还包括根据标准曲线计算待测样品抗-HBe抗体含量。
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