CN101545007B - 一种纳米金生物复合探针、检测方法及其应用 - Google Patents
一种纳米金生物复合探针、检测方法及其应用 Download PDFInfo
- Publication number
- CN101545007B CN101545007B CN 200910050299 CN200910050299A CN101545007B CN 101545007 B CN101545007 B CN 101545007B CN 200910050299 CN200910050299 CN 200910050299 CN 200910050299 A CN200910050299 A CN 200910050299A CN 101545007 B CN101545007 B CN 101545007B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- probe
- antibody
- protein
- nano
- gold
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Fee Related
Links
Images
Abstract
本发明是一种纳米金生物复合探针、检测方法及其应用,其特征在于首先用待测蛋白质的单克隆抗体标记磁珠,再在纳米金上标记待测蛋白的多克隆抗体的同时还标记一种带有生物素标记的DNA探针,纳米金上的DNA探针再通过生物素-链霉亲和素反应,使镧系元素接到胶体金上构建成纳米金生物复合探针,将标记好待测蛋白质单克隆抗体的磁珠及纳米金生物复合探针与待测蛋白质样品混合,37℃孵育一段时间,洗去没有反应的纳米金探针,加入增强液,测定荧光强度,从而达到对待测蛋白质进行定量测定的目的。使用本发明的方法,可显著提高生物分子的检测灵敏度,且可同时检测多种生物分子。可广泛应用于临床诊断、抗原、抗体、核酸的检测、卫生检疫、环境检测等领域。
Description
技术领域
本发明涉及一种纳米金生物复合探针、检测方法及其应用,特别是一种基于纳米金与镧系元素组成的纳米生物复合探针、高灵敏检测的方法,及其在同时检测多种生物分子方面的应用。属于生物检测技术领域。
背景技术
能够对生物分子简便、快捷、高选择性、高灵敏度地检测,始终是人们努力的方向,在疾病的早期诊断、快速诊断、卫生检测、环境监测等领域都具有重要意义。根据不同的标记手段,人们开发了一系列有效的检测方法,如放射性标记、荧光标记、酶标记等。不同标记方法有不同的优点和缺点,受示踪剂性状的限制,酶标记灵敏度不高,检测范围受限,而放射性标记虽然比较灵敏,但存在一定放射性污染的问题,荧光标记是目前的一种主导的检测方法。20世纪80年代初Pettersson等和Eskola等创立的一种非放射性标记免疫分析技术,与传统的荧光素标记不同,它是以镧系元素,如铕(Eu)、铽(Tb)、钐(Sm)、镝(Dy)等的螯合物为标记物。镧系元素螯合物与普通荧光素相比具有许多独特的荧光特性:激发光谱带宽;发射光谱带窄;激发光与发射光之间的Stoke’s位移大,可达290nm,而普通荧光素的Stoke’s位移仅28nm;镧系元素螯合物的发射光能持续数百个微秒,而普通荧光素只能维持数个纳秒;镧系元素螯合物荧光寿命长,没有自发猝灭现象,不受光漂白的影响等。在时间分辨荧光仪上测量时,脉冲光源激发后,可适当延迟一段时间,待其他短半衰期(1~10ns)的非特异荧光完全衰变后再测量,从而极大的降低了本底荧光,提高检测灵敏度。并且铕(Eu)、铽(Tb)、钐(Sm)、镝(Dy)这四种荧光的发射波长差异非常明显,适用于同时多种标定的实验。
随着纳米科学技术的不断发展,纳米材料和纳米结构取得了引人瞩目的成就,为生物医学的发展提供了新的契机。纳米材料具有传统材料所不具备的特有的三大效应:表面效应、小尺寸效应和宏观量子隧道效应。尤其是纳米金由于具有容易制备、良好的生物相容性和相对较大的比表面积等特点,在生物体系中的应用引起了广大研究者的关注。纳米金可通过物理吸附、静电吸附、特异识别、共价结合等方式与蛋白质、核酸、糖等结合构建的纳米金生物复合探针,本发明拟利用纳米金的这一特性以及与生物分子具有高选择催化性与自我识别的性质,可广泛用于蛋白质、核酸、糖以及金属离子等各方面的检测。
发明内容
本发明的目的在于提供一种基于纳米金与镧系元素螯合物构建的纳米生物复合探针的检测方法以及在同时检测多种生物分子方法的应用。
本发明提供的纳米金生物复合探针的特征在于所述的纳米金生物复合探针是一种基于纳米金与镧系元素组成的纳米金生物复合探针,纳米金标记待测蛋白的检测抗体,同时还标记一种带有生物素标记的DNA探针,纳米金上的DNA探针通过生物素-链霉亲和素反应,使镧系元素接到纳米金上构建而成。
本发明提供的检测方法主要内容包括:首先用待测蛋白质的单克隆捕捉抗体标记磁珠,然后在纳米金上标记上待测蛋白的单克隆或多克隆待测抗体,同时还标记一种带有生物素标记的DNA探针,纳米金上的DNA探针通过生物素-链霉亲和素反应,使镧系元素接到胶体金上,构建成纳米金生物复合探针,最后将标记好待测蛋白质单克隆捕捉抗体的磁珠及纳米金生物复合探针与待测蛋白质样品混合,37℃孵育一段时间,洗去没有反应的纳米金探针,加入增强液,测荧光强度,从而达到对待测蛋白质进行定量测定的目的。
本发明提供的检测方法具体步骤为:
1.用待测蛋白质的单克隆抗体标记磁珠制成磁珠探针
选用羧基修饰的磁珠,按常规方法活化磁珠,加入待测蛋白质的单克隆捕捉抗体,抗体浓度为10~100μg/mg磁珠,混匀,室温放置半小时。再用PBS(含质量百分数为0.1-0.5%BSA和质量百分数为0.01-0.1%Tween-20)洗数次,按所需浓度重悬磁珠,2-8℃储存备用。
2.制备纳米金生物复合探针
a.确定抗体的最佳用量用K2CO3溶液将纳米金溶液的pH值调到8.5~9,取不同量的抗体加到1ml纳米金溶液里,室温静置5分钟,再加入NaCl溶液,确定蛋白的最佳用量。稳定1ml纳米金溶液红色不变的最低蛋白质用量,即为该标记蛋白质的最佳用量。
b.抗体标记 用无菌双蒸水溶解检测抗体,并加入到纳米金中,室温放置30分钟。
c.DNA探针标记 向经过抗体标记的纳米金溶液里,加入一定量的巯基(5’端)及生物素标记(3’端)的DNA探针(探针序列:5’SH-(CH2)3-(T)10-AGC TAC GAG TTG AGAATC CTG AAT GCG ACG-(T)10-(CH2)-Biotin 3’),使探针的终浓度为3-5μM,室温静置标记17小时,加入稳定剂(终浓度为1%BSA、0.1N NaCl及10mM的PB溶液)稳定48小时,离心清洗3-4次,洗去未标记上的抗体及DNA探针。
d.镧系元素标记加入链霉亲和素-镧素与标记了抗体及DNA探针的纳米金溶液混合,在室温下放置1小时,用Tris-HCL缓冲液清洗3-4次,洗去未标记上的链霉亲和素-Eu,再用Tris-HCL缓冲液重悬,4℃保存备用。
3.免疫反应
将步骤1制成的标记好待测蛋白质单克隆捕捉抗体的磁珠,37℃孵育一段时间,引入磁场,用洗液清洗3-4次,再加入步骤2标记好的纳米金生物复合探针,继续杂交形成磁珠-待测蛋白-纳米金探针的复合体,引入磁场清洗,然后再洗去没有反应的纳米金探针;
4.检测
加入增强液后,室温轻摇5~10min,测定荧光强度,从而达到对待测蛋白质进行定量测定的目的。
由此可见,本发明最大的特点及优点是灵敏度高,检测方便,耗时短,且能同时检测多种生物分子。
(1)灵敏度高
本技术主要采用基于纳米颗粒的、利用信号探针放大信号及链霉亲和素-生物素反应放大系统的蛋白质检测技术,在纳米金颗粒上同时标记抗体及起信号放大作用的信号DNA探针,信号DNA探针同时还标记有生物素分子,生物素分子通过与链霉亲和素反应将镧系元素引入纳米金颗粒上。通过信号的逐级放大,达到对微量蛋白质的检测,测定蛋白质的灵敏度为pg/ml。
(2)同时检测多种生物分子
本发明利用铕(Eu)、铽(Tb)、钐(Sm)、镝(Dy)这四种荧光的发射波长差异明显,检测波长不一样的优点,分别在胶体金颗粒上接上不同的镧系元素,从而构建层多种针对不同生物分子的纳米金复合探针实现既可检测一种生物分子也可同时检测多种生物分子。
(3)操作方便,耗时短
本发明提供的测定方法从检测标本开始,只需要1-1.5h的时间,就可以得到检测结果;另外,本技术操作步骤少,操作方便、简单,适于临床大批量标本的快速检测。可广泛应用于临床诊断、抗原、抗体、核酸的检测、卫生检疫、环境检测等领域,具有十分广泛的应用前景和开发价值。
附图说明
图1基于纳米复合探针的时间分辨荧光免疫分析方法
图2基于纳米复合探针的两种蛋白质检测方法
图3基于纳米复合探针的三种蛋白质检测方法
图4.不同浓度CEA蛋白质的测定结果
图5.双重检测中不同浓度CEA蛋白质的测定结果
图6.双重检测中不同浓度P53蛋白质的测定结果
图7.三重检测中不同浓度CEA蛋白质的测定结果
图8.三重检测中不同浓度P53蛋白质的测定结果
图9.三重检测中不同浓度NSE蛋白质的测定结果
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明作进一步的说明。
实施例1:检测人CEA阳性血清(原理图见图1)
1 CEA单克隆捕获抗体标记磁珠
1.1 活化磁珠:用MES(pH6)清洗磁珠两次,加冰浴的EDC溶液、NHS溶液,室温孵育30min;再用MES(pH6)洗两次。
1.2 标记:加入CEA抗体,抗体浓度为50μg/mg磁珠,室温放置30min;再用PBS缓冲液洗4次并重悬磁珠,2-8℃储存备用。
2 制备纳米金生物复合探针
2.1 确定抗体的最佳用量用K2CO3溶液将纳米金溶液的pH值调到8.5~9,取不同量的抗体(分别为0μg、0.5μg、1μg、2μg、3μg、5μg、6μg、7μg、8μg)加到1ml纳米金溶液里,室温静置5分钟,再加入NaCl溶液,确定蛋白的最佳用量。稳定1ml纳米金溶液红色不变的最低蛋白质用量,即为该标记蛋白质的最佳用量。蛋白质标记纳米金时,蛋白质(抗体)的用量是一个非常重要的因素,抗体用量少了会使纳米金聚集沉淀,用量多了会浪费昂贵的抗体,还会影响到DNA探针的标记。在本实施例中,CEA检测抗体的最佳用量为6μg/ml纳米金。
2.2 抗体标记用无菌双蒸水溶解CEA检测抗体,并加入到纳米金中,室温放置30分钟。
2.3 DNA探针标记 向经过CEA抗体标记的纳米金溶液中,加入一定量的巯基(5’端)及生物素标记(3’端)的DNA探针(探针序列:5’SH-(CH2)3-(T)10-AGC TAC GAG TTGAGAATC CTGAAT GCGACG-(T)10-(CH2)-Biotin 3’),使探针的终浓度为3μM,室温静置标记17小时,加入稳定剂(终浓度为1%BSA、0.1N NaCl及10mM的PB溶液)稳定48小时,离心清洗3-4次,洗去未标记上的抗体及DNA探针。
2.4 铕元素标记加入链霉亲和素-Eu与标记了抗体及DNA探针的纳米金溶液混合,在室温下放置1小时,用Tris-HCL缓冲液清洗3-4次,洗去未标记上的链霉亲和素-Eu,再用Tris-HCL缓冲液重悬,4℃保存备用。
3 免疫反应
取标记好抗体的磁珠,先与待测血清在37℃下孵育30分钟,引入磁场,用洗液(含0.05%Tween20及0.1%BSA的Tris-HCL)清洗3-4次,再加入标记好的纳米金生物复合探针,继续杂交30分钟,杂交体积为20μl,杂交液为含0.05%Tween20及0.5%BSA的Tris-HCL缓冲液,形成磁珠-待测蛋白-纳米金探针复合体,引入磁场,清洗6次,洗去未反应的纳米金探针。
4 检测结果
加入增强液后,室温静置5~10min,615nm测荧光强度。用上述方法测定按浓度梯度(CEA蛋白质浓度分别为57pg/ml、28.5pg/ml、14.25pg/ml、7.13pg/ml、3.56pg/ml)稀释的CEA阳性血清及阴性对照血清,测定结果如图3所示,为615nm荧光强度与CEA蛋白质浓度的相关性的柱状图;由图4可看出该套体系测定蛋白质的灵敏度为pg/ml。
实施例2:检测人含CEA、P53的血清(原理图见图2)
1 捕获抗体标记磁珠
1.1 活化磁珠:用MES(pH6)清洗磁珠两次,加冰浴的EDC溶液、NHS溶液,室温孵育30min;再用MES(pH6)洗两次。
1.2 标记:CEA抗体、P53抗体按一定的比例混合,加入抗体混合液,抗体浓度为50μg/mg磁珠,室温放置30min;再用PBS缓冲液洗4次并重悬磁珠,2-8℃储存备用。
2 CEA检测抗体及DNA探针标记纳米金
2.1 确定抗体的最佳用量用K2CO3溶液将纳米金溶液的pH值调到8.5~9,取不同量的抗体(分别为0μg、0.5μg、1μg、2μg、3μg、5μg、6μg、7μg、8μg)加到1ml纳米金溶液里,室温静置5分钟,再加入NaCl溶液,确定蛋白的最佳用量。稳定1ml纳米金溶液红色不变的最低蛋白质用量,即为该标记蛋白质的最佳用量。在本实施例中,CEA抗体的最佳用量为6μg/ml纳米金。
2.2 抗体标记用无菌双蒸水溶解CEA检测抗体,并加入到纳米金中,室温放置30分钟。
2.3 DNA探针标记 向经过CEA抗体标记的纳米金溶液里,加入一定量的巯基(5’端)及生物素标记(3’端)的DNA探针(探针序列:5’SH-(CH2)3-(T)10-AGC TAC GAG TTG AGA ATC CTG AAT GCG ACG-(T)10-(CH2)-Biotin 3’),使探针的终浓度为3μM,室温静置标记17小时,加入稳定剂(终浓度为1%BSA、0.1N NaCl及10mM的PB溶液)稳定48小时,离心清洗3-4次,洗去未标记上的抗体及DNA探针。
2.4 镧系元素标记加入链霉亲和素-Eu与标记了抗体及DNA探针的纳米金溶液混合,在室温下放置1小时,用Tris-HCL缓冲液清洗3-4次,洗去未标记上的链霉亲和素-Eu,再用Tris-HCL缓冲液重悬,4℃保存备用。
3 P53检测抗体及DNA探针标记纳米金
3.1 确定抗体的最佳用量 用K2CO3溶液将纳米金溶液的pH值调到8.5~9,取不同量的抗体(分别为0μg、0.5μg、1μg、2μg、3μg、5μg、6μg、7μg、8μg)加到1ml纳米金溶液里,室温静置5分钟,再加入NaCl溶液,确定蛋白的最佳用量。稳定1ml纳米金溶液红色不变的最低蛋白质用量,即为该标记蛋白质的最佳用量。在本实施例中,P53检测抗体的最佳用量为7μg/ml纳米金。
3.2 抗体标记用无菌双蒸水溶解P53检测抗体,并加入到纳米金中,室温放置30分钟。
3.3 DNA探针标记 向经过P53抗体标记的纳米金溶液里,加入一定量的巯基(5’端)及生物素标记(3’端)的DNA探针(探针序列:5’SH-(CH2)3-(T)10-AGC TAC GAG TTG AGAATC CTG AAT GCG ACG-(T)10-(CH2)-Biotin 3’),使探针的终浓度为3μM,室温静置标记17小时,加入稳定剂(终浓度为1%BSA、0.1N NaCl及10mM的PB溶液)稳定48小时,离心清洗3-4次,洗去未标记上的抗体及DNA探针。
3.4 镧系元素标记加入链霉亲和素-Tb与标记了抗体及DNA探针的纳米金溶液混合,在室温下放置1小时,用Tris-HCL缓冲液清洗3-4次,洗去未标记上的链霉亲和素-Tb,再用Tris-HCL缓冲液重悬,4℃保存备用。
4 免疫反应
取标记好抗体的磁珠,先与待测血清在37℃下孵育30分钟,引入磁场,用洗液(含0.05%Tween20及0.1%BSA的Tris-HCL)清洗3-4次,加入标记好的纳米金CEA抗体复合探针与纳米金P53抗体复合探针混合液,继续杂交30分钟,杂交体积为20μl,杂交液为含0.05%Tween20及0.5%BSA的Tris-HCL缓冲液,形成磁珠-待测蛋白-纳米金探针复合体,引入磁场,清洗6次,洗去未反应的纳米金探针。
5 检测结果
加入增强液后,室温轻摇5~10min,在615nm及545nm处测荧光强度。用上述方法测定按浓度梯度(CEA蛋白质浓度分别为1 25pg/ml、62.5pg/ml、31.25pg/ml、15.63pg/ml、7.81pg/ml;P53浓度分别为528pg/ml、264pg/ml、132pg/ml、66pg/ml、33pg/ml)稀释的阳性血清及阴性对照血清,测定结果如图5、6所示,为荧光强度与蛋白质浓度的相关性的柱状图。
实施例3:检测人含CEA、P53、NSE的血清
1 捕获抗体标记磁珠
1.1 活化磁珠:用MES(pH6)清洗磁珠两次,加冰浴的EDC溶液、NHS溶液,室温孵育30min;再用MES(pH6)洗两次。
1.2 标记:CEA抗体、P53抗体、NSE抗体按一定的比例混合,加入抗体混合液,抗体浓度为50μg/mg磁珠,室温放置30min;再用PBS缓冲液洗4次并重悬磁珠,2-8℃储存备用。
2 CEA检测抗体及DNA探针标记纳米金
2.1 确定抗体的最佳用量用K2CO3溶液将纳米金溶液的pH值调到8.5~9,取不同量的抗体(分别为0μg、0.5μg、1μg、2μg、3μg、5μg、6μg、7μg、8μg)加到1ml纳米金溶液里,室温静置5分钟,再加入NaCl溶液,确定蛋白的最佳用量。稳定1ml纳米金溶液红色不变的最低蛋白质用量,即为该标记蛋白质的最佳用量。在本实施例中,CEA抗体的最佳用量为6μg/ml纳米金。
2.2 抗体标记用无菌双蒸水溶解CEA检测抗体,并加入到纳米金中,室温放置30分钟。
2.3 DNA探针标记 向经过CEA抗体标记的纳米金溶液里,加入一定量的巯基(5’端)及生物素标记(3’端)的DNA探针(探针序列:5’SH-(CH2)3-(T)10-AGC TAC GAG TTGAGAATC CTGAAT GCGACG-(T)10-(CH2)-Biotin 3’),使探针的终浓度为3μM,室温静置标记17小时,加入稳定剂(终浓度为1%BSA、0.1N NaCl及10mM的PB溶液)稳定48小时,离心清洗3-4次,洗去未标记上的抗体及DNA探针。
2.4 镧系元素标记 加入链霉亲和素-Eu与标记了抗体及DNA探针的纳米金溶液混合,在室温下放置1小时,用Tris-HCL缓冲液清洗3-4次,洗去未标记上的链霉亲和素-Eu,再用Tris-HCL缓冲液重悬,4℃保存备用。
3 P53检测抗体及DNA探针标记纳米金
3.1 确定抗体的最佳用量用K2CO3溶液将纳米金溶液的pH值调到8.5~9,取不同量的抗体(分别为0μg、0.5μg、1μg、2μg、3μg、5μg、6μg、7μg、8μg)加到1ml纳米金溶液里,室温静置5分钟,再加入NaCl溶液,确定蛋白的最佳用量。稳定1ml纳米金溶液红色不变的最低蛋白质用量,即为该标记蛋白质的最佳用量。在本实施例中,P53检测抗体的最佳用量为7μg/ml纳米金。
3.2 抗体标记用无菌双蒸水溶解P53检测抗体,并加入到纳米金中,室温放置30分钟。
3.3 DNA探针标记 向经过P53抗体标记的纳米金溶液里,加入一定量的巯基(5’端)及生物素标记(3’端)的DNA探针(探针序列:5’SH-(CH2)3-(T)10-AGC TAC GAG TTGAGAATC CTGAAT GCGACG-(T)10-(CH2)-Biotin 3’),使探针的终浓度为3μM,室温静置标记17小时,加入稳定剂(终浓度为1%BSA、0.1N NaCl及10mM的PB溶液)稳定48小时,离心清洗3-4次,洗去未标记上的抗体及DNA探针。
3.4 镧系元素标记加入链霉亲和素-Tb与标记了抗体及DNA探针的纳米金溶液混合,在室温下放置1小时,用Tris-HCL缓冲液清洗3-4次,洗去未标记上的链霉亲和素-Tb,再用Tris-HCL缓冲液重悬,4℃保存备用。
4 NSE检测抗体及DNA探针标记纳米金
4.1 确定抗体的最佳用量 用K2CO3溶液将纳米金溶液的pH值调到8.5~9,取不同量的抗体(分别为0μg、0.5μg、1μg、2μg、3μg、5μg、6μg、7μg、8μg)加到1 ml纳米金溶液里,室温静置5分钟,再加入NaCl溶液,确定蛋白的最佳用量。稳定1ml纳米金溶液红色不变的最低蛋白质用量,即为该标记蛋白质的最佳用量。在本实施例中,NSE检测抗体的最佳用量为7μg/ml纳米金。
4.2 抗体标记用无菌双蒸水溶解NSE检测抗体,并加入到纳米金中,室温放置30分钟。
4.3 DNA探针标记 向经过NSE抗体标记的纳米金溶液里,加入一定量的巯基(5’端)及生物素标记(3’端)的DNA探针(探针序列:5’SH-(CH2)3-(T)10-AGC TAC GAG TTG AGA ATC CTG AAT GCG ACG-(T)10-(CH2)-Biotin 3’),使探针的终浓度为3μM,室温静置标记17小时,加入稳定剂(终浓度为1%BSA、0.1N NaCl及10mM的PB溶液)稳定48小时,离心清洗3-4次,洗去未标记上的抗体及DNA探针。
4.4 镧系元素标记 加入链霉亲和素-Dy与标记了抗体及DNA探针的纳米金溶液混合,在室温下放置1小时,用Tris-HCL缓冲液清洗3-4次,洗去未标记上的链霉亲和素-Dy,再用Tris-HCL缓冲液重悬,4℃保存备用。
5 免疫反应
取标记好抗体的磁珠,先与待测血清在37℃下孵育30分钟,引入磁场,用洗液(含0.05%Tween20及0.1%BSA的Tris-HCL)清洗3-4次,加入标记好的纳米金CEA抗体复合探针、纳米金P53抗体复合探针、纳米金NSE抗体复合探针混合液,继续杂交30分钟,杂交体积为20μl,杂交液为含0.05%Tween20及0.5%BSA的Tris-HCL缓冲液,形成磁珠-待测蛋白-纳米金探针复合体,引入磁场,清洗6次,洗去未反应的纳米金探针。
6 检测结果
加入增强液后,室温轻摇5~10min,在615nm、545nm及573nm处测荧光强度。用上述方法测定按浓度梯度(CEA蛋白质浓度分别为125pg/ml、62.5pg/ml、31.25pg/ml、15.63pg/ml、7.81pg/ml;P53浓度分别为528pg/ml、264pg/ml、132pg/ml、66pg/ml、33pg/ml;NSE浓度分别为200pg/ml、100pg/ml、50pg/ml、25pg/ml、12.5pg/ml)稀释的阳性血清及阴性对照血清,测定结果如图7~9所示,为荧光强度与蛋白质浓度的相关性的柱状图。
本发明适用于通过任何方法将抗体及镧系元素标记在纳米金或其它纳米颗粒上组成纳米复合探针,并适用于CEA、p53及其他所有蛋白及DNA的微量检测。
Claims (2)
1.一种纳米金生物复合探针,所述的纳米金生物复合探针由纳米金、镧系元素、待测蛋白的检测抗体和带有生物素标记的DNA探针组成,所述待测蛋白的检测抗体标记在所述纳米金上,所述的纳米金上同时还标记带有生物素标记的DNA探针;所述的DNA探针中5’端为巯基修饰,使DNA探针连接在纳米金上;3’端为生物素修饰,可通过链亲和素-生物素反应将镧素标记在纳米金上;所述的DNA探针的长度序列为:5’SH-(CH2)3-(T)10-AGC TACGAG TTG AGAATC CTG AAT GCG TCG-(T)10-(CH2)-Biotin3’,所述的镧系元素为Eu、Tb、Sm或Dy;所述镧系元素的荧光的发射波长和检测波长差异明显,构建成多种针对不同生物分子的纳米金生物复合探针。
2.按权利要求1所述的纳米金生物复合探针,其特征在于所述的纳米金生物复合探针测定蛋白质的灵敏度为Pg/ml。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN 200910050299 CN101545007B (zh) | 2009-04-30 | 2009-04-30 | 一种纳米金生物复合探针、检测方法及其应用 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN 200910050299 CN101545007B (zh) | 2009-04-30 | 2009-04-30 | 一种纳米金生物复合探针、检测方法及其应用 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN101545007A CN101545007A (zh) | 2009-09-30 |
CN101545007B true CN101545007B (zh) | 2013-06-26 |
Family
ID=41192384
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN 200910050299 Expired - Fee Related CN101545007B (zh) | 2009-04-30 | 2009-04-30 | 一种纳米金生物复合探针、检测方法及其应用 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN101545007B (zh) |
Families Citing this family (25)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101709327B (zh) * | 2009-12-02 | 2012-08-08 | 浙江大学 | 一种基于纳米金棒荧光猝灭效应的微流芯片核酸传感方法 |
CN101812531A (zh) * | 2010-05-06 | 2010-08-25 | 天津朝海科技有限公司 | 一种检测大肠杆菌的试剂盒 |
CN101812544A (zh) * | 2010-05-06 | 2010-08-25 | 天津朝海科技有限公司 | 一种检测流感病毒的试剂盒 |
CN101824492A (zh) * | 2010-05-18 | 2010-09-08 | 天津朝海科技有限公司 | 一种检测甲型h1n1流感病毒的试剂盒 |
CN101824491A (zh) * | 2010-05-18 | 2010-09-08 | 天津朝海科技有限公司 | 一种检测丙型肝炎病毒的试剂盒 |
CN101824493A (zh) * | 2010-05-18 | 2010-09-08 | 天津朝海科技有限公司 | 一种检测乙型肝炎病毒的试剂盒 |
CN102879580A (zh) * | 2011-07-11 | 2013-01-16 | 上海生物芯片有限公司 | 微量蛋白检测方法 |
TWI476394B (zh) * | 2012-04-02 | 2015-03-11 | Univ Chang Gung | And a method and method for determining whether a target biomolecule exists in a sample to be measured |
CN103540651B (zh) * | 2012-07-12 | 2017-05-10 | 中国科学院上海应用物理研究所 | 一种纳米金复合物及其制备和应用 |
CN102866139B (zh) * | 2012-09-21 | 2014-08-06 | 南开大学 | 基于表面等离子体增强能量转移生物传感器的构建方法 |
CN103472052B (zh) * | 2013-07-02 | 2015-08-26 | 南昌大学 | 一种多功能纳米探针GOx/Au NPs/DNA的制备方法及其激酶检测应用 |
CN103389382B (zh) * | 2013-08-07 | 2015-02-25 | 中国科学院广州生物医药与健康研究院 | 一种用于检测组蛋白甲基化的信号增强的试纸条生物传感器 |
CN103983555B (zh) * | 2014-05-28 | 2016-04-20 | 国家纳米科学中心 | 一种检测生物分子相互作用的方法 |
CN103983783B (zh) * | 2014-06-10 | 2016-03-23 | 江苏出入境检验检疫局动植物与食品检测中心 | 一种检测致病菌的试剂盒及其应用 |
CN104792999A (zh) * | 2015-03-24 | 2015-07-22 | 中国科学院上海微系统与信息技术研究所 | 一种基于双纳米金探针检测标志物的蛋白芯片 |
CN105158221A (zh) * | 2015-07-31 | 2015-12-16 | 天津医科大学 | 一种用于检测微核糖核酸的荧光传感器的制备方法及应用 |
CN105911041B (zh) * | 2016-06-01 | 2019-03-05 | 章健 | 一种时间分辨荧光检测方法 |
CN107656059B (zh) * | 2017-09-26 | 2019-06-18 | 中南大学 | 一种用于p53蛋白的荧光检测剂及其制备方法和应用 |
CN108753941B (zh) * | 2018-06-22 | 2022-03-08 | 广东顺德工业设计研究院(广东顺德创新设计研究院) | 双重标记磁珠及其制备方法和应用 |
CN109991202A (zh) * | 2019-04-16 | 2019-07-09 | 南京医科大学 | 一种基于核酸适配体荧光传感器用于多目标物检测的方法 |
CN110596057A (zh) * | 2019-08-19 | 2019-12-20 | 广西医科大学 | 一种新型无标记的铽(iii)-核酸适体传感器及其制备方法与应用 |
CN111575383A (zh) * | 2020-06-10 | 2020-08-25 | 四川省疾病预防控制中心 | 基于金属纳米探针的多种宫颈癌miRNA标志物同时检测的方法 |
CN112315056A (zh) * | 2020-10-16 | 2021-02-05 | 杭州医学院 | 用于呼吸道病毒采集和检测的拉曼免疫探针的特种检测口罩及方法 |
CN113355393A (zh) * | 2021-06-15 | 2021-09-07 | 杭州谱育科技发展有限公司 | 基于金属编码技术的核酸检测方法 |
CN117368464A (zh) * | 2023-10-12 | 2024-01-09 | 上海领检科技有限公司 | 一种纳米金微球复合物及其制备方法和用途 |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101256191A (zh) * | 2008-03-07 | 2008-09-03 | 中国科学院上海微系统与信息技术研究所 | 基于磁珠和纳米金探针的微量蛋白质的测定方法 |
-
2009
- 2009-04-30 CN CN 200910050299 patent/CN101545007B/zh not_active Expired - Fee Related
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101256191A (zh) * | 2008-03-07 | 2008-09-03 | 中国科学院上海微系统与信息技术研究所 | 基于磁珠和纳米金探针的微量蛋白质的测定方法 |
Non-Patent Citations (4)
Title |
---|
Ambrosi A et.al.Double—codified gold nanolabels for enhanced immunoanalysis.《Anal Chem》.2007,第79卷(第14期),5232-5240. * |
Nam JM et.al.Nanoparticle-Based Bio—Bar Codes for the Ultrasensitive Detection of Proteins.《Science》.2003,第301卷l884-l886. * |
贾春平 等.免疫标记技术的进展及纳米技术在其中的应用.《生命科学》.2008,第20卷(第5期),749-753. * |
赵建龙 等.基于纳米金探针的高灵敏免疫测定方法.《2008全国纳米生物与医学学术会议(天日湖)论文摘要集》.2008,39-41. * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN101545007A (zh) | 2009-09-30 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN101545007B (zh) | 一种纳米金生物复合探针、检测方法及其应用 | |
EP0617286B1 (en) | Biospecific solid phase carrier | |
Diamandis et al. | Europium chelate labels in time-resolved fluorescence immunoassays and DNA hybridization assays | |
RU2415432C2 (ru) | Точный магнитный биодатчик | |
JP6251244B2 (ja) | 広範発光免疫アッセイ | |
FI114826B (fi) | Sidontamääritys, jossa käytetään häntäryhmiä sisältäviä sidonta-aineita | |
CN108080042A (zh) | 结合时间分辨荧光技术的微流控芯片及其制备方法和应用 | |
CN104991075A (zh) | 使用磁性标记进行的肌钙蛋白i 测定 | |
CN103994946A (zh) | 基于气压检测的多种靶标的高灵敏定量分析方法 | |
US20080206892A1 (en) | Rapid Magnetic Biosensor With Integrated Arrival Time Measuremnt | |
CN103608675B (zh) | 发光聚合物循环扩增 | |
US6551788B1 (en) | Particle-based ligand assay with extended dynamic range | |
CN108333344A (zh) | 高灵敏度的化学发光免疫分析试剂盒及其制备方法和应用 | |
Chen et al. | Gold nanoparticles-based fluorescence resonance energy transfer for competitive immunoassay of biomolecules | |
Qin et al. | A sensitive gold nanoparticles sensing platform based on resonance energy transfer for chemiluminescence light on detection of biomolecules | |
CN109298177A (zh) | 基于磁分离的时间分辨荧光免疫分析方法 | |
CN103575896A (zh) | 高灵敏可抛式多组分化学发光成像免疫传感器 | |
Xu et al. | A gold nanoparticle-based four-color proximity immunoassay for one-step, multiplexed detection of protein biomarkers using ribonuclease H signal amplification | |
CN106932564A (zh) | 基于fret用于检测样品中核酸靶标的试剂盒及其应用 | |
Xia et al. | Biosensors based on sandwich assays | |
CN101281196A (zh) | HIV-1 p24抗原吖啶酯化学发光免疫分析检测方法 | |
Shi et al. | A multicolor nano-immunosensor for the detection of multiple targets | |
CN108872594A (zh) | 一种甲胎蛋白检测试剂盒及其制备方法 | |
Li et al. | Ultrasensitive eletrogenerated chemiluminescence immunoassay by magnetic nanobead amplification | |
Lee et al. | Induced electrostatic potentials on antigen-antibody complexes for bioanalytical applications |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |
Granted publication date: 20130626 |
|
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |