发明内容
本发明的目的在于提供一种生产丙酮酸氧化酶的方法。
本发明的另一目的在于提供一种特别适合于生产丙酮酸氧化酶的培养基。
在本发明的第一方面,提供一种用于培养大肠杆菌的培养基,所述的培养基含有碳源、氮源、磷源、无机盐,所述的大肠杆菌中含有表达载体,所述的表达载体中含有丙酮酸氧化酶的表达盒;其中,所述的培养基中碳源90%以上是甘油。
在另一优选例中,所述的表达盒含有与启动子操作性相连的丙酮酸氧化酶基因。
在另一优选例中,所述的培养基中碳源95%以上是甘油;更优选的,所述的培养基中碳源98%以上是甘油。
在另一优选例中,所述的大肠杆菌是E.coli DH5α/pSMLPyOD。
在另一优选例中,所述的培养基用于发酵生产丙酮酸氧化酶。
在另一优选例中,所述的氮源选自:蛋白胨,酵母提取物,硫酸铵或它们的组合。
在另一优选例中,所述的磷源是磷酸盐。
在另一优选例中,所述的无机盐选自:氯化钠,硫酸镁或它们的组合。
在另一优选例中,所述的培养基的碳源是甘油。
在另一优选例中,所述的培养基含有:
甘油 6-18ml/L
蛋白胨 12-20g/L;
酵母提取物 10-16g/L;
硫酸铵 3-7g/L;
硫酸镁 1-4g/L;
磷酸盐 4-8g/L;
氯化钠 6-15g/L。
在另一优选例中,所述的培养基含有:
甘油 8-16ml/L;
蛋白胨 12-16g/L;
酵母提取物 10-12g/L;
硫酸铵 4-6g/L;
硫酸镁 2-3g/L;
磷酸盐 5-7g/L;
氯化钠 8-12g/L。
在另一优选例中,所述的磷酸盐是复合磷酸盐,其中,K2HPO4∶Na2HPO4∶KH2PO4=1∶2∶1。
在另一优选例中,所述的培养基中还含有微量元素1-2.2ml/L(优选的是1.25-2ml/L);其中所述的微量元素含有:
FeSO4·7H2O 12.8±3g/L;
ZnSO4·7H2O 2.84±1g/L;
CuSO4·5H2O 1.6±0.5g/L;
MnSO4·H2O 3.2±1g/L;
CaCl2 0.28±0.08g/L;
CoCl2·6H2O 1.6±0.5g/L;
H3BO4 0.24±0.08g/L;
Na2MoO4 12.8±3g/L;和
KI 0.16±0.05g/L。
在另一优选例中,所述的培养基由甘油、蛋白胨、酵母提取物、硫酸铵、硫酸镁、磷酸盐、微量元素、氯化钠组成。
在另一优选例中,所述的大肠杆菌是E.coli DH5α/pSMLPyOD。
在本发明的第二方面,提供所述的培养基的用途,用于培养大肠杆菌,发酵生产丙酮酸氧化酶;其中,所述的大肠杆菌中含有表达载体,所述的表达载体中含有丙酮酸氧化酶的表达盒。
在本发明的第三方面,提供一种生产丙酮酸氧化酶的方法,所述方法包括步骤:
(1)利用所述的培养基培养大肠杆菌,获得培养产物;其中,所述的大肠杆菌中含有表达载体,所述的表达载体中含有丙酮酸氧化酶的表达盒;
(2)从步骤(1)获得的培养产物中分离获得丙酮酸氧化酶。
在另一优选例中,在步骤(1)中,培养时间是12-20小时;或者培养的温度是28-37℃。
在另一优选例中,所述的大肠杆菌是E.coli DH5α/pSMLPyOD。
本发明的其它方面由于本文的公开内容,对本领域的技术人员而言是显而易见的。
具体实施方式
本发明人经过广泛而深入的研究,发现在丙酮酸氧化酶的发酵生产过程中,发酵培养基的成份是影响发酵产量的关键因素,而在培养基中利用甘油作为碳源,可极大地提高丙酮酸氧化酶的产量,并且在整个发酵过程中pH值稳定,发酵时间短。在此基础上完成了本发明。
培养基
本发明人在研究中发现,葡萄糖代谢产物乙酸对大肠杆菌的生长有明显的抑制作用,另外,以葡萄糖作为碳源时,重组菌在生长过程前期不表达目的产物丙酮酸氧化酶,只有在生长后期,碳源消耗殆尽时才开始表达,而该阶段细胞生理活性已经下降,产酶水平很难提高。经过反复的试验,本发明人发现,以甘油为碳源的培养基,可克服葡萄糖对丙酮酸氧化酶生产菌株的抑制作用,同时使得重组细胞的质粒稳定性大大提高。此外,采用该培养基能够使发酵液pH在发酵全过程稳定在6.8-7.2之间,这使得整个发酵过程省去了pH控制环节,发酵工艺大大简化。
并且,采用本发明提供的发酵培养基,能够使得丙酮酸氧化酶生产菌株在发酵全过程持续表达丙酮酸氧化酶,使得批发酵时间缩短至约16-20小时之间,丙酮酸氧化酶的发酵单位也大大提高,进一步体现了基因重组技术在丙酮酸氧化酶生产中的优势。
碳源是指能提供微生物营养所需碳元素的营养源。本发明的培养基中主要以甘油(占碳源的90%以上)作为碳源。作为本发明的优选方式,所述的培养基的以甘油作为唯一的碳源。
作为本发明的优选方式,甘油在培养基中的含量是6-18ml/L;进一步优选的是8-16ml/L。上述用量中,所述的甘油含量以纯甘油计。
此外,所述培养基中还含有氮源、磷源、无机盐或微量元素等成分。氮源是指能提供微生物营养所需氮元素的营养源。无机盐是行使构成菌体成分、酶活性基组成或维持酶活性、调节渗透压、pH等的成份。
作为本发明的优选方式,所述的培养基中含有的氮源、磷源、无机盐或微量元素如表1所列。
表1
|
含量 |
优选含量 |
蛋白胨 |
12-20g/L |
12-16g/L |
酵母提取物 |
10-16g/L |
10-12g/L |
硫酸铵 |
3-7g/L |
4-6g/L |
硫酸镁 |
1-4g/L |
2-3g/L |
磷酸盐 |
4-8g/L |
5-7g/L |
微量元素 |
1-2.2ml/L |
1.25-2ml/L |
氯化钠 |
6-15g/L |
8-12g/L |
作为本发明的优选方式,所述的磷酸盐可选自:K2HPO4、Na2HPO4、KH2PO4、或它们的组合。更优选的,所述的磷酸盐是复合磷酸盐,其中含有K2HPO4、Na2HPO4和KH2PO4。进一步优选的,所述复合磷酸盐中,K2HPO4∶Na2HPO4∶KH2PO4=1∶2∶1。
作为本发明的优选方式,所述的微量元素的成分如表2所示。
表2
|
含量 |
FeSO4·7H2O |
12.8±3g/L |
ZnSO4·7H2O |
2.84±1g/L |
CuSO4·5H2O |
1.6±0.5g/L |
MnSO4·H2O |
3.2±1g/L |
CaCl2 |
0.28±0.08g/L |
CoCl2·6H2O |
1.6±0.5g/L |
H3BO4 |
0.24±0.08g/L |
Na2MoO4 |
12.8±3g/L |
KI |
0.16±0.05g/L |
作为本发明的优选方式,所述的培养基由甘油、蛋白胨、酵母提取物、硫酸铵、硫酸镁、磷酸盐、微量元素、氯化钠组成。
经本发明人优化后的培养基配方,它含有足够的营养成份,既能满足摇瓶实验的需要,又能成功地将摇瓶发酵结果放大到发酵罐。在本发明的实施例中,所述培养基与不以甘油作为主要碳源的培养基相比,丙酮酸氧化酶的产量大大提高,并且发酵时间很短。
本发明的培养基适用于不同规模的丙酮酸氧化酶生产菌的培养或发酵,包括(但不限于)用于进行:发酵生产丙酮酸氧化酶的摇瓶培养;或大规模发酵生产丙酮酸氧化酶。
培养方法
本发明还提供了利用所述的培养基生产丙酮酸氧化酶的方法,所述方法包括步骤:
(1)利用所述的培养基培养可表达丙酮酸氧化酶的重组大肠杆菌,获得培养产物;
(2)从步骤(1)获得的培养产物中分离获得丙酮酸氧化酶。
作为本发明的优选方式,在步骤(1)中,培养时间是12-20小时;或者培养的温度是28-37℃。
可用于生产丙酮酸氧化酶的重组大肠杆菌中含有至少一个表达载体(质粒),并且,所述的表达载体中含有丙酮酸氧化酶的表达盒。所述的表达盒含有与启动子操作性相连的丙酮酸氧化酶基因,本领域人员了解如何在适当的表达载体中构建可表达丙酮酸氧化酶的基因表达盒。
在本发明中,对用于表达丙酮酸氧化酶的表达载体没有限制,可以是任何适于转化进入大肠杆菌并且表达丙酮酸氧化酶的组成型表达载体。优选的表达载体是pSML。可采用常规的技术,将丙酮酸氧化酶基因克隆入表达载体的多克隆位点中,构建含有丙酮酸氧化酶表达盒的重组表达载体;再通过常规方法,将重组表达载体转化宿主菌。
在本发明的一种优选方式中,使用的重组大肠杆菌是E.coli DH5α/pSMLPyOD。
本发明的主要优点在于:
(1)首次发现在生产丙酮酸氧化酶时利用甘油作为碳源,能够使得重组大肠杆菌在发酵全过程持续表达丙酮酸氧化酶,发酵单位大大提高,因而极大地提高了丙酮酸氧化酶的产量。并且,采用本发明的培养基进行发酵,重组细胞的质粒稳定性大大提高。
(2)采用本发明的培养基进行发酵,在整个发酵过程中pH值稳定在6.8-7.2之间,无需额外控制pH值,发酵工艺大大简化。
下面结合具体实施例,进一步阐述本发明。应理解,这些实施例仅用于说明本发明而不用于限制本发明的范围。下列实施例中未注明具体条件的实验方法,通常按照常规条件如Sambrook等人,分子克隆:实验室指南(New York:Cold Spring Harbor Laboratory Press,1989)中所述的条件,或按照制造厂商所建议的条件。除非另外说明,否则百分比和份数按重量计算。
除非另行定义,文中所使用的所有专业与科学用语与本领域熟练人员所熟悉的意义相同。此外,任何与所记载内容相似或均等的方法及材料皆可应用于本发明中。文中所述的较佳实施方法与材料仅作示范之用。
实施例1
E.coli DH5α/pSMLPyOD的构建
从绿色气球菌(Aerococcus viridans)ATCC 10400基因组中扩增得到丙酮酸氧化酶基因。
上游引物(SEQ ID NO:1):
5’CATGCCATGGGAATGCATCACCATCACCATCACTCAGATAACAAAATTAACATC-3’(划线部分为NcoI酶切位点,同时添加对应9个氨基酸残基MGMHHHHHH(SEQ ID NO:3)的核苷酸序列,可用于Ni亲和层析);
下游引物(SEQ ID NO:2):
5’CGCGGATCCTTATCATTTGATGTATTTAGATTCTAAGCCTTCAGC-3’(划线部分为BamHI酶切位点)。
以Aerococcus viridans ATCC 10400基因组为模板,采用以上引物对,PCR扩增得到AvPyOD基因,鉴定PCR扩增产物,经鉴定获得序列正确的AvPyOD扩增产物。常规方法纯化该PCR扩增产物。
用限制性内切酶NcoI和BamHI酶切上述PCR扩增产物,将酶切后的产物连接入经过NcoI和BglII酶切的质粒pSML104(购自中国科学院生化细胞所)中,获得重组表达质粒pSMLPyOD。
采用常规的方法,将重组质粒pSMLPyOD转化E.coli DH5α感受态细胞。由于转化有重组表达质粒pSMLPyOD的目的转化子表达丙酮酸氧化酶,丙酮酸氧化酶催化丙酮酸产生过氧化氢,过氧化氢从菌体细胞渗透到胞外,在辣根过氧化物酶的酶催化下,过氧化氢与联大茴香胺作用产生棕褐色色素物质,从而使阳性转化子形成棕褐色的菌落。因此,将上述转化后的细胞在含四环素的选择性指示平板上生长的菌落置4℃显色,具有四环素抗性又呈现棕褐色的菌落即为含有表达质粒pSMLPyOD的细胞,经验证该重组细胞能够组成型表达丙酮酸氧化酶。
实施例2
培养基的配制
所述的培养基的几种配方见表3。
表3
|
培养基1 |
培养基2 |
培养基3 |
培养基4 |
甘油(ml/L) |
10 |
12 |
10 |
15 |
蛋白胨(g/L) |
15 |
15 |
17 |
13 |
酵母提取物(g/L) |
12 |
12 |
10 |
12 |
硫酸铵(g/L) |
5 |
5 |
4 |
6 |
硫酸镁(g/L) |
2 |
2 |
3 |
2 |
复合磷酸盐(g/L) |
5 |
7 |
4.5 |
6.5 |
微量元素母液(ml/L) |
1.25 |
1.25 |
1.7 |
1.2 |
NaCl(g/L) |
10 |
10 |
11 |
8.5 |
其中,微量元素母液的组成为:FeSO4·7H2O 12.8g/L;ZnSO4·7H2O 2.84g/L;CuSO4·5H2O 1.6g/L;MnSO4·H2O 3.2g/L;CaCl2 0.28g/L;CoCl2·6H2O 1.6g/L;H3BO4 0.24g/L;Na2MoO4 12.8g/L;KI 0.16g/L。
复合磷酸盐为:K2HPO4、Na2HPO4和KH2PO4,且它们的比例是K2HPO4∶Na2HPO4∶KH2PO4=1∶2∶1。
实施例3
采用发酵培养基2摇瓶培养丙酮酸氧化酶
发酵培养基1:配方如实施例2中培养基1,pH 7。
将硫酸镁以外的其它组分按照所述浓度混合,以30ml/瓶装入250ml摇瓶中,经121℃,20分钟灭菌,冷却。将硫酸镁分开灭菌(过滤除菌法灭菌),接种前按照所述浓度加入。
甘油管保存的E.coli DH5α/pSMLPyOD按1%接种量接入盛有100ml LB培养基(含50mg/L四环素)的500ml摇瓶,37℃,220RPM培养过夜后,按10%接种量接入上述发酵培养基摇瓶,37℃,220RPM培养12小时后,将发酵温度降至30℃,继续培养至16小时左右发酵终了,经检测,此时发酵液中丙酮酸氧化酶活性达到1100U/L。
实施例4
采用发酵培养基1发酵生产丙酮酸氧化酶
发酵培养基2:配方如实施例2中培养基1,pH 7.2。
将硫酸镁以外的其它组分按照所述浓度混合,3升上述培养基加入5升发酵罐后,经121℃、15分钟灭菌,冷却。将硫酸镁分开灭菌(过滤除菌法灭菌),接种前按照所述浓度加入。
种子同实施例1,按10%接种量接入上述5升发酵罐,32℃发酵培养,初始搅拌转速200RPM,通气量5L/Min,进入对数生长期后,通过调整搅拌转速和通气量将DO控制在30%以上。14小时左右发酵终了,经检测,此时发酵液中丙酮酸氧化酶活性达到1300U/L。
实施例5
采用以葡萄糖为碳源的培养基发酵生产丙酮酸氧化酶
发酵培养基3(/L):配方见表4,pH 7。
表4
葡萄糖 |
10g/L |
蛋白胨 |
15g/L |
酵母提取物 |
12g/L |
硫酸铵 |
5g/L |
硫酸镁 |
2g/L |
复合磷酸盐 |
5g/L |
微量元素母液 |
1.25ml/L |
NaCI |
10g/L |
其中,微量元素母液的组成为:FeSO4·7H2O 12.8g/L;ZnSO4·7H2O 2.84g/L;CuSO4·5H2O 1.6g/L;MnSO4·H2O 3.2g/L;CaCl2 0.28g/L;CoCl2·6H2O 1.6g/L;H3BO4 0.24g/L;Na2MoO4 12.8g/L;KI O.16g/L。
复合磷酸盐为:K2HPO4、Na2HPO4和KH2PO4,且它们的比例是K2HPO4∶Na2HPO4∶KH2PO4=1∶2∶1。
将硫酸镁和葡萄糖以外的其它组分按照所述浓度混合,以100ml/瓶装入500ml摇瓶,经121℃,20分钟灭菌。硫酸镁和葡萄糖单另灭菌,接种前按照所述浓度加入。
甘油管保存的E.coli DH5α/pSMLPyOD按1%接种量接入盛有100ml LB培养基(含50mg/L四环素)的500ml摇瓶,37℃,220RPM培养过夜后,按10%接种量接入上述发酵培养基摇瓶,37℃,220RPM培养12小时后,将发酵温度降至30℃,继续培养至16小时左右发酵终了,此时发酵液中基本未检测到丙酮酸氧化酶活性。
在本发明提及的所有文献都在本申请中引用作为参考,就如同每一篇文献被单独引用作为参考那样。此外应理解,在阅读了本发明的上述讲授内容之后,本领域技术人员可以对本发明作各种改动或修改,这些等价形式同样落于本申请所附权利要求书所限定的范围。