三、发明内容:
技术问题本发明主要克服现有技术的不足,提供一种低成本,并且对环境污染小的虫草素和虫草多糖的精制方法,目的是使虫草素和虫草多糖能同时被提取、避免单一提取给蛹虫草活性成分带来的损失,以提高蛹虫草综合利用度,降低投资和运行成本,最大价值的发挥蛹虫草的综合经济效益。
技术方案
一种从蛹虫草中提取精制虫草素和虫草多糖的方法,包括如下步骤:
(1)将蛹虫草子实体粉碎过40~60目筛;
(2)向粉碎的原料中加入95%乙醇或无水乙醇以冷渗法进行提取,蛹虫草粉和95%乙醇或无水乙醇的混合比例按重量计为1∶5-20,将醇溶性色素之类的杂质以滤液的形式初步分离出来;
(3)弃滤液,将滤渣回收于55℃真空烘干;
(4)将烘干后的滤渣与乙醇混合,蛹虫草粉和10-30%乙醇的混合比例按重量计为1∶15-40,进行超声波辅助提取,超声波频率为20-40KHz,超声处理时间为30-90分钟,重复处理1-3次,其中乙醇浓度为10-30%;提取结束后,过滤,合并多次滤液,在35-45℃,300-700mmHg下减压浓缩,添加95%乙醇或无水乙醇,使溶液中乙醇重量含量为55-90%,静置8-24小时,使水溶性蛹虫草粗多糖析出;
(5)取醇析后的上清液,在35-45℃,300-700mmHg下减压浓缩至干,向其中加蒸馏水溶解,调pH值至3.0-4.0,上离子交换柱用0.1-0.3mol/L氨水洗脱除掉杂质,收集洗脱液进行再浓缩,冷藏析出晶体,用正丁醇重结晶,得到精制虫草素;
(6)收集第(4)步沉淀出的水溶性蛹虫草粗多糖,在50-60℃下将之烘干;
(7)向烘干的蛹虫草粗多糖中加入20-25倍体积蒸馏水溶解,加入木瓜蛋白酶进行脱蛋白处理,木瓜蛋白酶在提取溶液中重量含量为1.5-3.0‰,在50-60℃,pH5.5-6.5条件下水解4-6小时,离心去除沉淀得二次上清液,将二次上清液浓缩,上大孔树脂柱床,用蒸馏水洗脱至流出液呈无色透明,合并流出液,浓缩,加入95%乙醇或无水乙醇,使得溶液中乙醇重量含量达到55-90%,沉淀出多糖,经冷冻干燥后得到精制蛹虫草多糖。
上述从蛹虫草中提取精制虫草素和虫草多糖的方法中,所述的冷渗法是在0-8℃环境中,进行静态提取1-3次,每次2-4小时。离子交换树脂为732、724型阳离子交换树脂或D113型大孔阳离子交换树脂。大孔树脂为普通大孔树脂,其型号为AB-8型或D101型。
有益效果
本发明克服了现有技术的不足,提供了一种低成本,并且对环境污染小的虫草素和虫草多糖的精制方法,制备过程中只以水和乙醇为溶剂,减少污染,所用的树脂再生后可数次重复使用,成本低,制得的虫草素纯度在90%以上,多糖纯度在85%以上。
本发明方法以综合利用蛹虫草资源为前提,充分挖掘蛹虫草功能性成分,实现虫草素和虫草多糖的共同提取,保证了虫草素和虫草多糖的生物活性。最大限度地增加了原料的利用率,降低了生产成本。本发明方法适合大规模工业化生产。
四、具体实施方式:
下面的实施例是对本发明的进一步详细描述,但并不意味着对本发明的任何限制。
实施例1
将1kg蛹虫草子实体粉碎过60目筛,向粉碎的原料中加入5000毫升95%乙醇以冷渗法提取3次,每次3小时,将醇溶性色素之类的杂质以滤液的形式初步分离出来,弃滤液,滤液可留作其他用途。将滤渣回收于55℃真空烘干,将烘干后的滤渣与20%的乙醇按重量比1∶10混合,进行超声波辅助提取3次,每次提取40分钟。提取结束后,过滤,合并多次滤液,减压浓缩,添加95%乙醇,使溶液中乙醇含量为80%(重量),静置8小时。
取上清液,减压浓缩至干,向其中加水溶解,调pH值至3.5,上732型阳离子交换柱用0.15mol/L的氨水进行洗脱除掉杂质,收集洗脱液进行再浓缩,冷藏析出晶体,用8毫升正丁醇重结晶,得到精制虫草素0.489g,含量为97.1%。
收集沉淀出的水溶性蛹虫草粗多糖,在55℃下将之烘干,收取蛹虫草粗多糖,向烘干的蛹虫草粗多糖中加入15倍体积蒸馏水溶解,加入木瓜蛋白酶在55℃,pH6.0条件下水解5小时,木瓜蛋白酶的加入量为加入木瓜蛋白酶后提取溶液重量的2‰,离心去除沉淀得二次上清液,将二次上清液浓缩,上D101型大孔树脂柱床,用蒸馏水洗脱至流出液呈无色透明,合并流出液,浓缩,加入95%乙醇,使得溶液中乙醇含量达到80%(重量比),沉淀出多糖,经冷冻干燥后得到精制蛹虫草多糖33.21g,含量为92.8%。
实施例2
将0.5kg蛹虫草子实体粉碎过40目筛,向粉碎的原料中加入3000毫升无水乙醇以冷渗法提取2次,每次4小时,将醇溶性色素之类的杂质以滤液的形式初步分离出来,弃滤液,滤液可留作其他用途。将滤渣回收于55℃真空烘干,将烘干后的滤渣与30%的乙醇按重量比1∶20混合,进行超声波辅助提取2次,每次提取60分钟。提取结束后,进行过滤,合并多次滤液,减压浓缩,添加无水乙醇,使溶液中乙醇含量为80%(重量),静置12小时。
取上清液,减压浓缩至干,向其中加水溶解,调pH值至3.0,上724型阳离子交换柱用0.2mol/L氨水进行洗脱除掉杂质,收集洗脱液进行再浓缩,冷藏析出晶体,用4毫升正丁醇重结晶,得到精制虫草素0.185g,含量为94.8%。
收集沉淀出的水溶性蛹虫草粗多糖,在55℃下将之烘干,收取蛹虫草粗多糖,向烘干的蛹虫草粗多糖中加入20倍体积蒸馏水溶解,加入木瓜蛋白酶在55℃,pH6.0条件下水解4小时,木瓜蛋白酶的加入量为加入木瓜蛋白酶后提取溶液重量的1.5‰,离心去除沉淀得二次上清液,将二次上清液浓缩,上D101型大孔树脂柱床,用蒸馏水洗脱至流出液呈无色透明,合并流出液,浓缩,加入无水乙醇,使得溶液中乙醇含量达到80%(重量),沉淀出多糖,经冷冻干燥后得到精制蛹虫草多糖15.52g,含量为93.1%。
实施例3
将0.8kg蛹虫草子实体粉碎过40目筛,向粉碎的原料中加入4500毫升无水乙醇以冷渗法提取2次,每次5小时,将醇溶性色素之类的杂质以滤液的形式初步分离出来,弃滤液,滤液可留作其他用途。将滤渣回收于55℃真空烘干,将烘干后的滤渣与20%的乙醇按重量比1∶25混合,进行超声波辅助提取2次,每次提取90分钟。提取结束后,进行过滤,合并多次滤液,减压浓缩,添加无水乙醇,使溶液中乙醇含量为70%(重量),静置16小时。
取上清液,减压浓缩至干,向其中加水溶解,调pH值至3.0,上D113型大孔阳离子交换柱用0.15mol/L氨水∶乙醇(80∶20,体积比)的碱性洗脱液除掉杂质,收集洗脱液进行再浓缩,冷藏析出晶体,用7毫升正丁醇重结晶,得到精制虫草素0.336g,含量为94.8%。
收集沉淀出的水溶性蛹虫草粗多糖,在55℃下将之烘干,向烘干的蛹虫草粗多糖中加入20倍体积蒸馏水溶解,加入木瓜蛋白酶在55℃,pH6.5条件下水解6小时,木瓜蛋白酶的加入量为加入木瓜蛋白酶后提取溶液重量的2‰,离心去除沉淀得二次上清液,将二次上清液浓缩,上AB-8型大孔树脂柱床,用蒸馏水洗脱至流出液呈无色透明,合并流出液,浓缩,加入无水乙醇,使得溶液中乙醇含量达到70%(重量),沉淀出多糖,经冷冻干燥后得到精制蛹虫草多糖26.63g,含量为90.8%。
实施例4
将0.75kg蛹虫草子实体粉碎过60目筛,向粉碎的原料中加入4800毫升95%乙醇以冷渗法提取3次,每次4小时,将醇溶性色素之类的杂质以滤液的形式初步分离出来,弃滤液,滤液可留作其他用途。将滤渣回收于55℃真空烘干,将烘干后的滤渣与10%的乙醇按重量比1∶25混合,进行超声波辅助提取2次,每次60分钟。提取结束后,过滤,合并多次滤液,减压浓缩,添加无水乙醇,使溶液中乙醇含量为90%(重量比),静置24小时。
取上清液,减压浓缩至干,向其中加水溶解,调pH值至3.0,上732型阳离子交换柱用0.2mol/L氨水进行洗脱除掉杂质,收集洗脱液进行再浓缩,冷藏析出晶体,用6毫升正丁醇重结晶,得到精制虫草素0.321g,含量为96.8%。
收集沉淀出的水溶性蛹虫草粗多糖,在55℃下将之烘干,收取蛹虫草粗多糖,向烘干的蛹虫草粗多糖中加入25倍体积蒸馏水溶解,加入木瓜蛋白酶在50℃,pH5.5条件下水解6小时,木瓜蛋白酶的加入量为加入木瓜蛋白酶后提取溶液重量的3.0‰,离心去除沉淀得二次上清液,将二次上清液浓缩,上AB-8型大孔树脂柱床,用蒸馏水洗脱至流出液呈无色透明,合并流出液,浓缩,加入无水乙醇,使得溶液中乙醇含量达到90%(重量),沉淀出多糖,经冷冻干燥后得到精制蛹虫草多糖22.17g,含量为89.7%。
实施例5
(一)虫草素含量测定(高效液相色谱法)
标准曲线的绘制 分别准确称取虫草素标准品(购于Sigma公司,纯度≥98%)10.0mg,用甲醇定容至50ml,摇匀。分别准确吸取标准品母液1ml、2ml、4ml、8ml和10ml,用甲醇稀释至10ml,摇匀,得系列标准溶液。色谱条件:色谱柱为Eclipse XDB C18色谱柱(150mm×4.6mm i.d.,5μm);流动相为水∶甲醇∶甲酸=95∶4∶1(v/v/v);流速0.8ml/min;柱温25℃;检测波长:260nm。分别取上述制备的系列标准溶液20μl,按色谱条件分别进样,测定峰面积,以峰面积Y为横坐标,对照品浓度X为纵坐标,绘制标准曲线。
样品含量测定 取精制的虫草素0.0050g,加入甲醇稀释至100ml,过0.22μm微孔滤膜,20μl进样,通过标准回归方程计算虫草素含量。
(二)虫草多糖含量的测定(蒽酮-硫酸法)
葡萄糖标准曲线的绘制 精密称取105℃下干燥至恒重的无水葡萄糖约10.0mg,置100ml量瓶中,加水溶解并稀释至刻度,摇匀,配得葡萄糖标准溶液。准确称取0.2g蒽酮和1g硫脲置于烧杯中,缓慢加入100ml浓硫酸,边加边搅拌,直至溶解后呈黄色透明溶液,将其置于棕色瓶中于冷暗处保存。从葡萄糖对照品溶液中分别精密吸取0.2,0.4,0.6,0.8,1.0,1.2ml,置于25ml干燥洁净的具塞试管中,补水至2.0ml,混匀。在冰浴中沿管壁缓慢加入蒽酮试剂4.0ml,混匀,将反应液一并在沸水浴中加热8min,取出在流水中冷却至室温,同时以2.0ml蒸馏水加蒽酮试剂4.0ml作空白,在624nm波长处测定吸光值。以吸光值A为纵坐标,以标准品浓度C为横坐标绘制标准曲线。
样品含量测定 准确称取0.0010g待测样品,加蒸馏水溶解稀释至10μg/ml,取0.5ml置于25ml干燥洁净的具塞试管中,补水至2.0ml,混匀。在冰浴中沿管壁缓慢加入蒽酮试剂4.0ml,混匀,将反应液一并在沸水浴中加热8min,取出在流水中冷却至室温,同时以2.0ml蒸馏水加蒽酮试剂4.0ml作空白,在624nm波长处测定吸光值。根据标准回归方程计算蛹虫草多糖含量。