WO2022177151A1 - 일산화질소 감응성 하이드로겔 - Google Patents

일산화질소 감응성 하이드로겔 Download PDF

Info

Publication number
WO2022177151A1
WO2022177151A1 PCT/KR2022/000357 KR2022000357W WO2022177151A1 WO 2022177151 A1 WO2022177151 A1 WO 2022177151A1 KR 2022000357 W KR2022000357 W KR 2022000357W WO 2022177151 A1 WO2022177151 A1 WO 2022177151A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
hydrogel
formula
situ
compound represented
present
Prior art date
Application number
PCT/KR2022/000357
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
김원종
김태정
Original Assignee
포항공과대학교 산학협력단
주식회사 옴니아메드
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 포항공과대학교 산학협력단, 주식회사 옴니아메드 filed Critical 포항공과대학교 산학협력단
Priority to CN202280015533.XA priority Critical patent/CN116867837A/zh
Priority to US18/277,652 priority patent/US20240165128A1/en
Priority to EP22756357.4A priority patent/EP4286453A1/en
Priority to JP2023548949A priority patent/JP2024506399A/ja
Publication of WO2022177151A1 publication Critical patent/WO2022177151A1/ko

Links

Images

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08G—MACROMOLECULAR COMPOUNDS OBTAINED OTHERWISE THAN BY REACTIONS ONLY INVOLVING UNSATURATED CARBON-TO-CARBON BONDS
    • C08G63/00—Macromolecular compounds obtained by reactions forming a carboxylic ester link in the main chain of the macromolecule
    • C08G63/66—Polyesters containing oxygen in the form of ether groups
    • C08G63/664—Polyesters containing oxygen in the form of ether groups derived from hydroxy carboxylic acids
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/56—Compounds containing cyclopenta[a]hydrophenanthrene ring systems; Derivatives thereof, e.g. steroids
    • A61K31/57—Compounds containing cyclopenta[a]hydrophenanthrene ring systems; Derivatives thereof, e.g. steroids substituted in position 17 beta by a chain of two carbon atoms, e.g. pregnane or progesterone
    • A61K31/573—Compounds containing cyclopenta[a]hydrophenanthrene ring systems; Derivatives thereof, e.g. steroids substituted in position 17 beta by a chain of two carbon atoms, e.g. pregnane or progesterone substituted in position 21, e.g. cortisone, dexamethasone, prednisone or aldosterone
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K45/00—Medicinal preparations containing active ingredients not provided for in groups A61K31/00 - A61K41/00
    • A61K45/06—Mixtures of active ingredients without chemical characterisation, e.g. antiphlogistics and cardiaca
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/0012—Galenical forms characterised by the site of application
    • A61K9/0019—Injectable compositions; Intramuscular, intravenous, arterial, subcutaneous administration; Compositions to be administered through the skin in an invasive manner
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P19/00—Drugs for skeletal disorders
    • A61P19/02—Drugs for skeletal disorders for joint disorders, e.g. arthritis, arthrosis
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08B—POLYSACCHARIDES; DERIVATIVES THEREOF
    • C08B37/00—Preparation of polysaccharides not provided for in groups C08B1/00 - C08B35/00; Derivatives thereof
    • C08B37/006—Heteroglycans, i.e. polysaccharides having more than one sugar residue in the main chain in either alternating or less regular sequence; Gellans; Succinoglycans; Arabinogalactans; Tragacanth or gum tragacanth or traganth from Astragalus; Gum Karaya from Sterculia urens; Gum Ghatti from Anogeissus latifolia; Derivatives thereof
    • C08B37/0063—Glycosaminoglycans or mucopolysaccharides, e.g. keratan sulfate; Derivatives thereof, e.g. fucoidan
    • C08B37/0072—Hyaluronic acid, i.e. HA or hyaluronan; Derivatives thereof, e.g. crosslinked hyaluronic acid (hylan) or hyaluronates
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08G—MACROMOLECULAR COMPOUNDS OBTAINED OTHERWISE THAN BY REACTIONS ONLY INVOLVING UNSATURATED CARBON-TO-CARBON BONDS
    • C08G63/00—Macromolecular compounds obtained by reactions forming a carboxylic ester link in the main chain of the macromolecule
    • C08G63/68—Polyesters containing atoms other than carbon, hydrogen and oxygen
    • C08G63/685—Polyesters containing atoms other than carbon, hydrogen and oxygen containing nitrogen
    • C08G63/6852—Polyesters containing atoms other than carbon, hydrogen and oxygen containing nitrogen derived from hydroxy carboxylic acids
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08J—WORKING-UP; GENERAL PROCESSES OF COMPOUNDING; AFTER-TREATMENT NOT COVERED BY SUBCLASSES C08B, C08C, C08F, C08G or C08H
    • C08J3/00—Processes of treating or compounding macromolecular substances
    • C08J3/02—Making solutions, dispersions, lattices or gels by other methods than by solution, emulsion or suspension polymerisation techniques
    • C08J3/03—Making solutions, dispersions, lattices or gels by other methods than by solution, emulsion or suspension polymerisation techniques in aqueous media
    • C08J3/075—Macromolecular gels
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08L—COMPOSITIONS OF MACROMOLECULAR COMPOUNDS
    • C08L5/00—Compositions of polysaccharides or of their derivatives not provided for in groups C08L1/00 or C08L3/00
    • C08L5/08—Chitin; Chondroitin sulfate; Hyaluronic acid; Derivatives thereof
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/06—Ointments; Bases therefor; Other semi-solid forms, e.g. creams, sticks, gels
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08J—WORKING-UP; GENERAL PROCESSES OF COMPOUNDING; AFTER-TREATMENT NOT COVERED BY SUBCLASSES C08B, C08C, C08F, C08G or C08H
    • C08J2305/00—Characterised by the use of polysaccharides or of their derivatives not provided for in groups C08J2301/00 or C08J2303/00
    • C08J2305/08—Chitin; Chondroitin sulfate; Hyaluronic acid; Derivatives thereof
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08J—WORKING-UP; GENERAL PROCESSES OF COMPOUNDING; AFTER-TREATMENT NOT COVERED BY SUBCLASSES C08B, C08C, C08F, C08G or C08H
    • C08J2367/00—Characterised by the use of polyesters obtained by reactions forming a carboxylic ester link in the main chain; Derivatives of such polymers
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08J—WORKING-UP; GENERAL PROCESSES OF COMPOUNDING; AFTER-TREATMENT NOT COVERED BY SUBCLASSES C08B, C08C, C08F, C08G or C08H
    • C08J2371/00—Characterised by the use of polyethers obtained by reactions forming an ether link in the main chain; Derivatives of such polymers
    • C08J2371/02—Polyalkylene oxides

Definitions

  • the present invention relates to a nitrogen monoxide-sensitive hydrogel, wherein the hydrogel is formed by matching in situ at the target site by a click chemical reaction, and is prepared using a crosslinking agent that is sensitive to nitrogen monoxide, so that the overexpressed nitrogen monoxide at the target site is effectively removed It can be captured and erased, and furthermore, the drug loaded on the hydrogel can be locally and selectively released to the target site requiring treatment, so it can be usefully used for the prevention or treatment of inflammatory diseases caused by overexpression of nitric oxide. .
  • Nitric oxide is a highly reactive radical molecule with a short half-life of less than a few seconds. is known
  • nitric oxide plays an important role in the body in the normal range, non-specific removal of nitric oxide can cause numerous side effects such as systemic toxicity. Because inoculations are performed up to 3-4 times, a technique that can cause rapid spread and removal to organs other than the diseased site is not desirable.
  • rheumatoid arthritis is a chronic inflammatory disease of unknown cause characterized by polyarthritis. Initially, inflammation occurs in the synovial membrane surrounding the joint, but gradually the inflammation spreads to the surrounding cartilage and bone, resulting in destruction and deformation of the joint. It is a disease that can invade the whole body, such as anemia, dry syndrome, subcutaneous nodular pulmonary fibrosis, vasculitis, and skin ulcers due to extra-articular symptoms as well as joints.
  • rheumatoid arthritis Although the exact cause of rheumatoid arthritis is not yet known, autoimmune phenomena are known to be the main mechanism. Autoimmunity is an abnormality in the immune system that protects the human body from the outside, and is a phenomenon in which the body attacks one's own body. In general, genetic predisposition, bacterial or viral infection, etc. are thought to be the cause of rheumatoid arthritis.
  • Such rheumatoid arthritis is accompanied by swelling, inflammation, stiffness, and pain of the joints, and is an intractable autoimmune disease showing the pathology of polyarthritis of the body, causing a lot of pain to patients with the disease.
  • Nitric oxide overproduced in the body can be locally captured and eliminated, and furthermore, it can be used for the prevention or treatment of inflammatory diseases by locally and selectively releasing the drug loaded in the hydrogel to the diseased area according to the concentration of nitrogen monoxide. It provides a nitric oxide-sensitive hydrogel.
  • the present invention provides an in situ hybridization hydrogel prepared from a compound represented by the following Chemical Formulas 1 to 3.
  • R 1 and R 2 are each independently C1-C10 alkylene
  • n and m is an integer from 1 to 1000.
  • Cx-Cy (where x and y are integers greater than or equal to 1) means the number of carbons.
  • C1-C10 alkylene means alkylene having 1 or more and 10 or less carbon atoms
  • C1-C10 alkyl means alkyl having 1 or more and 10 or less carbon atoms.
  • alkyl refers to a straight-chain or branched saturated hydrocarbon group, and includes methyl, ethyl, n-propyl, isopropyl, n-butyl, sec-butyl, isobutyl, tert-butyl, n-pentyl, n- hexyl, n-heptyl, n-octyl, n-nonyl, n-dikenyl, and the like.
  • alkylene refers to a divalent functional group derived from alkyl as defined above.
  • in situ may be used interchangeably with “in situ” or “in situ”, and means “at the site of administration” or “at the target site”.
  • in situ hybridization refers to precursor materials capable of forming a hydrogel are injected into the patient's body, and then gelled by binding of the precursor materials at a target site in a desired tissue, organ or body cavity. means to happen
  • patient means any individual or subject in need of treatment for a specific condition or disease, and may be a mammal, preferably a human.
  • the in situ hydrogel of the present invention does not require a surgical procedure for implantation, and it forms a hydrogel by simply mixing precursor materials in the body through minimal penetration technology, so it can provide comfort to the patient receiving treatment. , it is possible to form a hydrogel locally and selectively on a target site in the body, so it has excellent therapeutic effect, especially for areas requiring treatment.
  • the compound represented by Formula 1 may serve as a crosslinking agent in the formation of a hydrogel.
  • R 1 and R 2 are each independently C1-C10 alkylene
  • crosslinking agent refers to a material for bonding compounds to each other to take a network structure
  • R 1 and R 2 are C2 alkyl Renin, may be a compound represented by the following DA-NOCCL, but is not limited thereto.
  • the hydrogel of the present invention prepared using the compound represented by Formula 1 above is the overproduced monoxide in the body. It may be to remove nitrogen by collecting it.
  • the compound represented by Formula 1 of the present invention may be decomposed in response to nitrogen monoxide
  • the hydrogel of the present invention prepared from the compound represented by Formula 1 may be decomposed in response to nitrogen monoxide.
  • sensitivity (sex) means to react sensitively to certain environmental conditions, and in this specification, “sensitivity (sex)” and “reaction (sex)” may be used interchangeably.
  • the hydrogel of the present invention can absorb nitrogen monoxide and expand, thereby capturing and erasing excess nitrogen monoxide in the body, effectively preventing diseases caused by the overproduction of nitrogen monoxide It has been confirmed that it can be treated.
  • the hydrogel of the present invention can be decomposed in response to nitrogen monoxide, it is possible to selectively release the micellar structure bound in the hydrogel network to the diseased site, and to be supported on the micellar structure It was confirmed that the drug can be delivered locally, selectively and intensively to the diseased area.
  • the hydrogel of the present invention can vary the degree of decomposition in a concentration-dependent manner of NO, so that it is possible to control drug release according to the severity of the disease.
  • the compound represented by Formula 2 is also referred to as a PLA- b -PEG-N 3 block copolymer, and may be bonded to the alkyne group of the compound represented by Formula 1 by a click chemical reaction through an azide group.
  • n and m are each an integer of 1 to 1000
  • the compound represented by Formula 2 may form a micelle structure by self-assembly.
  • mice refers to a system composed of an inner hydrophobic region and an outer hydrophilic region in an aqueous solution
  • the PLA- b -PEG-N 3 block air of the compound represented by Chemical Formula 2 Coagulation was used to form micellar constructs.
  • the micellar structure supports a hydrophobic drug and is specifically released to the diseased site to treat a disease caused by overproduced nitric oxide, that is, it is possible to perform a complex treatment, that is, treatment due to nitric oxide removal and treatment with drugs. make it
  • the micelle structure may have a uniform diameter of 10 to 1000 nm, preferably 70 to 900 nm, more preferably 70 to 500 nm. If it is less than the above range, it may not be able to carry enough drug to treat the disease to be treated, and if it exceeds the above range, it may not be suitable in terms of ease of injection.
  • the micelle structure may be fixed to the network structure of the hydrogel.
  • the micelle structure can be released from the hydrogel when the hydrogel is decomposed in response to nitrogen monoxide, and can selectively deliver the supported drug to the site where nitrogen monoxide is overproduced.
  • the hyaluronic acid-based polymer chain which is the compound represented by Formula 3, is also referred to as HA-N 3 , and serves to form the backbone of the hydrogel of the present invention.
  • n is an integer from 1 to 1000, respectively
  • the “hyaluronic acid” is a linear polysaccharide composed of gluconic acid and acetylglucosamine, and is a glycerin present in the extracellular matrix (ECM), synovial fluid of joints, and supports constituting cartilage. It is one of the cosaminoglycans.
  • Cross-linked hyaluronic acid can be used as a joint lubricating fluid due to its viscoelastic properties, and when applied in vivo, there is no problem in the immune aspect, so it is a material with excellent biocompatibility that can be used for tissue engineering and drug delivery systems.
  • the compound represented by Formula 3 may be bonded to the alkyne group of the compound represented by Formula 1 through an azide group through a click chemistry reaction.
  • the hydrogel may be prepared by a click chemical reaction between the compound represented by Formula 1 and the compound represented by Formulas 2 and 3.
  • click chemistry refers to a modular approach to organic synthesis that enables fast, effective, and predictable binding under specific conditions as a customized reaction that occurs in a complex environment of an organism.
  • the azide-alkyne cyclo addition has a very high thermodynamic driving force and can form a bond between an azide compound and an alkyne compound in an efficient and high yield, such as oligomers, polymers, etc. Even in the reaction with a polymer, intermolecular bonds can be formed in a high yield.
  • the hydrogel may further enhance the effect of treating inflammation or disease caused by overexpressed nitric oxide.
  • bioactive substances are substances used for the treatment, cure, prevention or diagnosis of diseases, for example, proteins or peptides such as cells, growth factors and hormones, nucleic acids, extracellular matrix substances, and drugs having therapeutic functions.
  • proteins or peptides such as cells, growth factors and hormones, nucleic acids, extracellular matrix substances, and drugs having therapeutic functions.
  • it is not limited thereto, and if it is a bioactive material known to be effective for a specific disease, it can be applied to the hydrogel without limitation and used to increase the therapeutic effect.
  • a solution may be prepared to contain the bioactive material in one solution, and the other solution may be mixed with the target site to form a hydrogel.
  • each of the two solutions containing the bioactive material can be mixed at the target site using a syringe to form a hydrogel.
  • the hydrogel may further include a hydrophobic drug, and the hydrophobic drug may be supported on a micelle structure formed by self-assembly of the compound represented by Formula 2 above.
  • the micellar structure is formed by self-assembly of a block copolymer having hydrophilic and hydrophobic parts in water and has strong hydrophobicity, it is easy to carry a hydrophobic drug inside the micellar structure, which is the drug and the inside of the micellar structure. All are physical phenomena due to their hydrophobicity, and the drug content can be increased compared to the drug carrier due to chemical bonding.
  • hydrophobicity means including, but not limited to, non-polar or low-polar materials that are not miscible with water, and any material that can stably exist inside the hydrophobicity of the micelle structure of the present invention is included in the hydrophobic material.
  • the hydrophobic drug may be selected from analgesics, anti-inflammatory agents, immunosuppressive agents, or a combination thereof, and may preferably be anti-inflammatory agents, but is not limited thereto.
  • anti-inflammatory agent is also referred to as an anti-inflammatory agent, and refers to a drug that has a property of eliminating inflammation or inhibits it by participating in an inflammatory process.
  • the anti-inflammatory agent is, for example, 21-acetoxypregnenolone, alclomethasone, alclomethasone dipropionate, algestone, amcinonide, beclomethasone, betamethasone, betamethasone dipropionate, betamethasone.
  • the hydrophobic drug may be contained in 3 to 7% by weight based on the total weight of the micelle structure, but is not limited thereto.
  • the hydrogel of the present invention may further include a hydrophobic drug and a hydrophilic drug.
  • the hydrophobic drug and the hydrophilic drug may be simultaneously released from the target site, wherein the release of the hydrophobic drug is due to erosion-based release, and the release of the hydrophilic drug is Fickian ) may be due to diffusion.
  • the hydrogel of the present invention can carry a hydrophobic drug inside the micelles, which is the hydrophobic domain of the hydrogel, and the hydrophilic drug can be loaded on the hydrophilic domain of the hydrogel. It was confirmed that the drug could be released simultaneously.
  • the hydrogel of the present invention may have a different degree of drug release depending on the concentration of nitrogen monoxide, which means that drug release can be controlled depending on the degree of aggravation of the disease, which depends on the condition of the disease to be treated. This indicates that personalized treatment is possible.
  • the compounds of Formulas 1 to 3 for preparing the hydrogel in the present invention may be co-injected into the target site.
  • co-injection means that the compounds of Formulas 1 to 3 are injected together into a target site in the body of a patient in a formulation suitable for injection, for example, in a liquid state.
  • the composition in liquid form containing the compounds of Formulas 1 to 3 exits from the tip of the injection needle and is homogeneously mixed before entering the target site in the patient's body, and then as a mixture at the target site. It is injected, exits the needle and gels in the body.
  • the compounds of Formulas 1 to 3 of the present invention may be co-injected to a target site and then spontaneously bound by a click chemical reaction to form a hydrogel.
  • the co-injection may be accomplished using a dual syringe system or any other suitable syringe system, preferably by a dual syringe system.
  • the compounds represented by Chemical Formulas 1 to 3 are administered prior to co-injection, for example, in a series of processes of co-extrusion by injection, mixing, and injection through a needle in the body of a patient to occur. may have been physically separated before.
  • the composition including the compound represented by Chemical Formulas 1 and 3 may be physically separated from the composition including the compound represented by Chemical Formula 2.
  • a composition including the compound represented by Chemical Formulas 1 and 2 may be physically separated from the compound represented by Chemical Formula 3.
  • a composition including the compound represented by Formula 1 may be physically separated from the compound represented by Formula 2 and Formula 3.
  • the hydrogel of the present invention may be formed within 0.5 to 10 minutes, preferably within 0.5 to 1 minute after the compound of Formulas 1 to 3 is injected into the target site.
  • the hydrogel formation time (gelation time) is less than the above range, the injection into the target site may not be smooth due to early crosslinking after the compounds represented by Formulas 1 to 3 are mixed, and if it exceeds the above range, The injected material may diffuse into the surrounding tissue and may not be suitable for the formation of a local hydrogel at the target site.
  • Conventional in situ injection-type hydrogels developed through conventional temperature or UV irradiation, etc. have problems such as slow phase transition time.
  • the hydrogel of the present invention can be gelled in a short time through a click chemical reaction, thereby solving the problems of the prior art.
  • the hydrogel of the present invention may be used for preventing, alleviating or treating inflammatory diseases.
  • inflammatory disease means a disease having inflammation as a main lesion, and in the present invention, the inflammatory disease may be an inflammatory disease showing an overproduction of nitric oxide in vivo.
  • the hydrogel of the present invention can be removed by trapping the overproduced nitrogen monoxide.
  • the immune system collapses due to stress, etc. and the in vivo nitric oxide is overproduced, autoimmune diseases or inflammatory diseases can occur. Therefore, the hydrogel of the present invention capable of capturing and erasing overproduced nitrogen monoxide can effectively treat diseases caused by overproduction of nitrogen monoxide.
  • the inflammatory disease may be a disease caused by inflammation of the joints, for example, undifferentiated spondyloarthropathy, undifferentiated arthropathy, arthritis, chronic inflammatory disease caused by viral or bacterial infection, rheumatoid arthritis, reactive arthritis, osteoarthritis, osteoporosis, etc. can, but is not limited thereto.
  • the inflammatory disease may be rheumatoid arthritis, but is not limited thereto.
  • the rheumatoid arthritis is one of autoimmune diseases, and is a disease caused by a high concentration of nitric oxide. Therefore, the hydrogel of the present invention can reduce or treat rheumatoid arthritis by capturing nitrogen monoxide in a high-concentration nitrogen monoxide environment, inhibiting cytokine-induced bone resorption of osteoclasts, and preventing apoptosis in joints.
  • "alleviation or treatment” means reducing the severity of disease symptoms, increasing the frequency and duration of the disease symptom-free period, or preventing damage or disability due to suffering from disease.
  • the hydrogel of the present invention may be to reduce the levels of TNF- ⁇ and IL-6, which are pro-inflammatory cytokines.
  • pro-inflammatory cytokine refers to cytokines that are mainly produced by activated macrophages and promote systemic inflammation.
  • Pro-inflammatory cytokines include, for example, TNF- ⁇ (tumor necrosis factor- ⁇ ), IL-1, IL-2, IL-6, IL-8, etc., which appear together during an inflammatory response and are an indicator of the inflammatory response.
  • TNF- ⁇ tumor necrosis factor- ⁇
  • IL-1 tumor necrosis factor- ⁇
  • IL-2 interleukin-2
  • IL-6 interleukin-8
  • the hydrogel of the present invention can be used for visco-supplement.
  • visco-supplement refers to a substance that replenishes the mucous synovial fluid by injecting hyaluronic acid in a gel state into the joint site.
  • hydrogel of the present invention can be usefully used as a visco supplement by showing almost complete recovery according to the flow induced by stress after rupture. Without being bound by any particular theory, it is believed that this is due to intermolecular hydrogen bonding between HA chains and entropy-driven reassociation of micellar structures.
  • an in situ hydrogel precursor composition comprising a compound represented by the following Chemical Formulas 1 to 3.
  • R 1 and R 2 are each independently C1-C10 alkylene
  • n and m is an integer from 1 to 1000.
  • precursor refers to a compound that participates in a chemical reaction to produce another compound.
  • the precursor composition of the present invention may further include a hydrophobic drug, and the hydrophobic drug may be supported on a micelle structure formed by self-assembly of the compound represented by Formula 2 above.
  • the precursor composition of the present invention may further include a hydrophobic drug and a hydrophilic drug.
  • R 1 and R 2 are each independently C1 to C10 alkylene
  • n and m is an integer from 1 to 1000.
  • the compound represented by Formula 1 may be present in an amount of 0.02 to 0.06 wt% based on the total mass of the first precursor composition;
  • the compound represented by Formula 2 may be included in an amount of 1.00 to 3.00 wt% based on the total mass of the second precursor composition; and 1.00 to 1.50 wt% of the compound represented by Formula 3 based on the total mass of the first precursor composition, but is not limited thereto.
  • the second precursor composition may further include a catalyst, and according to embodiments of the present invention, the catalyst may be Cu(I), but is not limited thereto.
  • the second precursor composition may further include a hydrophobic drug, and the hydrophobic drug may be supported on a micelle structure formed by self-assembly of the compound represented by Formula 2 above.
  • the first and second precursor compositions may further include a hydrophobic drug and a hydrophilic drug.
  • the hydrophobic drug may be included in the second precursor composition
  • the hydrophilic drug may be included in the first precursor composition
  • both the hydrophobic drug and the hydrophilic drug may be included in the first precursor composition or the second precursor composition. can, but is not limited thereto.
  • the co-injection may be by a dual syringe system.
  • the first and second precursor compositions may be in the form of a suspension, solution, or emulsion to be suitable for parenteral administration, and may be prepared in the form of a solid or semi-solid, suspending agent, stabilizer , solubilizing and/or dispersing agents.
  • the first and second precursor compositions may be in a liquid state and may be sterilized, but the present invention is not limited thereto. And it can be preserved against the contaminating action of microorganisms such as bacteria and fungi.
  • the first and second precursor compositions may be in powder form and may be sterilized. In this case, it may be formulated in liquid form using water for injection before use.
  • the present invention provides a method for preventing, alleviating or treating an inflammatory disease comprising administering the hydrogel of the present invention to an individual having an inflammatory disease.
  • administration means introducing the hydrogel of the present invention to a patient by any suitable method, and the administration route of the hydrogel of the present invention is administered through any general route as long as it can reach the target tissue. It may be, but preferably parenteral administration.
  • the parenteral administration may include, for example, intramuscular, subcutaneous, intra-articular, intraperitoneal administration, etc., but is not limited thereto.
  • the administration may be intra-articular administration, but is not limited thereto.
  • the subject includes any human or non-human animal.
  • non-human animal may be a vertebrate, such as non-human primates, sheep, dogs, and rodents, such as mice, rats, and guinea pigs.
  • the subject may preferably be a human, and specifically may be a human having a specific disease.
  • the term “subject” may be used interchangeably with “subject” or “patient”.
  • Matters mentioned in the in situ hydrogel, precursor composition, preparation method, and treatment method of the present invention are the same as long as they do not contradict each other, and repeated descriptions are omitted to avoid excessive complexity of the specification.
  • the hydrogel of the present invention has an excellent preventive, alleviating or therapeutic effect in inflammatory diseases caused by overproduction of nitrogen monoxide because it can locally and selectively trap and remove overproduced nitrogen monoxide in and outside the body.
  • the hydrogel of the present invention can support a hydrophobic and/or hydrophilic drug, so it can serve as a carrier for drug delivery to a target site, and can have a complex therapeutic effect according to nitrogen monoxide capture and drug delivery.
  • the hydrogel of the present invention can be decomposed in response to nitrogen monoxide, as the crosslinking point dissociates in response to nitrogen monoxide in an environment in which nitrogen monoxide is present, the drug loaded on the hydrogel is localized and selectively delivered to the target site can be
  • the hydrogel of the present invention does not require a surgical operation and can form a hydrogel locally on a target site with minimal invasiveness, thereby providing excellent patient convenience.
  • the hydrogel of the present invention can prevent rapid removal from the target site and diffusion to other organs, and thus does not exhibit the problems of the prior art, such as systemic toxicity.
  • the hydrogel of the present invention has excellent recovery of mechanical properties due to its self-healing ability and can be usefully used as a visco-supplement.
  • FIG. 1 is a schematic diagram of the hydrogel formation process of the present invention and the process in which the formed hydrogel reacts with nitrogen monoxide to dissociate the crosslinking point.
  • Figure 2 shows the synthesis process of the compound represented by the formula (1).
  • FIG. 4a shows a mechanism in which the compound represented by Formula 1 reacts with nitrogen monoxide to decompose.
  • Figure 4b shows 1 H NMR data confirming whether the compound represented by Formula 1 is decomposed by reaction with nitrogen monoxide.
  • Figure 6 shows the synthesis process of the compound represented by the formula (2).
  • Figure 8a shows the FT-IR spectrum data of PLA- b -PEG-N 3 .
  • Figure 8b shows the GPC (Gel Permeation Chromatography) data of PLA- b -PEG-N 3 .
  • Figure 8c shows a TEM (transmission electron microscope) image of PLA- b -PEG-N 3 .
  • Figure 8d shows the average hydrodynamic size of PLA- b -PEG-N 3 determined by dynamic light scattering spectroscopy (DLS).
  • Figure 11a is an image of the M-NO gel through cryogenic scanning electron microscopy (Cryogenic scanning electron microscopy).
  • Figure 11b shows the vibrational rheological properties of self-healing of M-NO gels through a dynamic transient test.
  • Figure 12a shows a schematic diagram of self-healing of M-NO gel.
  • Figure 12b shows the frequency-dependent vibrational rheological properties of the M-NO gel.
  • Figure 12c shows the NO concentration-dependent oscillatory rheological properties of the M-NO gel and the control gel (NO non-reactive).
  • 13d shows images of M-NO gels and control gels (NO non-reactive) after incubation for 2 hours in various concentrations of NO solutions.
  • the scale bar is 1 cm.
  • 14A shows a schematic of simultaneous dual drug release in M-NO gels.
  • Figure 14b shows the BSA-FITC (hydrophilic cargo model) release profile of the M-NO gel.
  • Figure 14c shows the BSA-FITC release profile of the control gel.
  • Figure 14d shows the release profile of Nile Red (hydrophobic cargo model) supported on the micellar structure of the M-NO gel.
  • Figure 14e shows the Nile Red release profile of the control gel.
  • Figure 15a shows the average hydrodynamic size of the PLA- b -PEG-N 3 micellar construct before hydrogel formation and PLA- b -PEG identified in the supernatant after incubating the M-NO gel with NO solution (250 ⁇ M) for 24 hours.
  • -N 3 Shows the average hydrodynamic size of the micellar structure.
  • Figure 15b shows a TEM image of the supernatant after erosion of the M-NO gel.
  • the white box in the image indicates the morphology of the micellar structure before gel formation.
  • 16 and 17 show the reactivity and NO scavenging ability of the M-NO gel after LPS treatment in LPS-treated RAW 264.7 cells.
  • Figure 16a shows the NO concentration before and after 24 hours treatment with 5 ⁇ g/ml LPS in RAW 264.7 and NIH/3T3 cell lines.
  • Figure 16c shows the NO scavenging ability of the M-NO gel, and the level of NO in the cell medium supernatant after treatment with various concentrations of M-NO gel in RAW 264.7 cell line and culturing for 24 hours was confirmed by Griess assay.
  • 16d shows confocal microscopy images of the RAW 264.7 cell line activated with LPS after treatment with M-NO gel and control gel. Intracellular NO and nuclei were stained with DAF-2 DA (green) and DAPI (blue), respectively, and the scale bar is 100 ⁇ m.
  • Figure 17a shows the quantification of TNF- ⁇ levels after treatment with M-NO gel and control gel.
  • Figure 17b shows the quantification of IL-6 levels after treatment with M-NO gel and control gel.
  • Figure 17c shows images of M-NO gel and control gel after treatment with M-NO gel and control gel in cultured RAW 264.7 or NIH/3T3 cell lines (stimulated or unstimulated with LPS) and overnight incubation.
  • Figure 17d shows the relative swelling ratios after treatment with M-NO gel and control gel in cultured RAW 264.7 or NIH/3T3 cell lines (stimulated or not stimulated with LPS) and incubated overnight.
  • Figure 17e is a schematic diagram showing the in vitro NO-reactivity and scavenging ability of M-NO gel to reduce pro-inflammatory cytokine levels.
  • Fig. 18A shows the entire experimental timeline.
  • 18B shows the relative paw volume change in the RA mouse model after sample treatment.
  • the relative paw volume of the RA model mice treated with saline (B) was compared with other experimental groups, and statistically analyzed using one-way ANOVA (**p ⁇ 0.01, ***p ⁇ 0.001).
  • 19 shows representative mouse hindpaw images at 4 weeks, 6 weeks and 8 weeks.
  • 20B shows the mean clinical scores of RA mice at 8 weeks after sample treatment.
  • the RA model mice treated with saline (B) were compared with other experimental groups, and statistically analyzed using one-way ANOVA (**p ⁇ 0.01, ***p ⁇ 0.001).
  • Figure 20d shows the fall delay time of 8 weeks of RA mice after sample treatment.
  • the RA model mice treated with saline (B) were compared with other experimental groups, and statistically analyzed using one-way ANOVA (**p ⁇ 0.01, ***p ⁇ 0.001).
  • FIG. 21 shows the confirmation of the rheumatoid arthritis treatment effect of the M-NO gel of the present invention in collagen-induced arthritis (CIA) mice, which are animal models of rheumatoid arthritis.
  • CIA collagen-induced arthritis
  • FIG. 21a shows a micro-CT image of the forelimb of the RA mouse model. Red arrows indicate bone destruction and damage.
  • 21B shows the results of histological analysis of joint tissues after sample processing. Scale bar is 100 ⁇ m.
  • 22A shows the mean histological scores of joint tissues determined using H&E, masson's trichrome and Safranin-O staining.
  • the RA model mice treated with saline (B) were compared with other experimental groups, and statistically analyzed using one-way ANOVA (* p ⁇ 0.05, *** p ⁇ 0.001; n.s. no significant difference).
  • 22D shows the quantification of the level of TNF- ⁇ in the sample-treated RA mouse paw tissue fluid.
  • FIG. 22F shows the quantification of NO levels in sample-treated RA mouse paw tissue fluid at week 8.
  • nitric oxide-responsive, clickable crosslinking agent DA- NOCCL For the synthesis of nitric oxide-responsive, clickable crosslinking agent DA- NOCCL , the amine group at the C2 position of 4-nitro- o -phenylenediamine was first catalyzed by guanidine HCl. was selectively Boc-protected. Thereafter, 4-NO 2 was reduced to 4-NH 2 , and 4-pentynoic acid was bonded to each amine group through an amide bond. The synthesis was then completed by Boc-deprotection in acid conditions. The synthesis process of the crosslinking agent DA-NOCCL is shown in FIG. 2, and the successful synthesis of each compound obtained in the synthesis process and the crosslinking agent DA-NOCCL was confirmed through 1 H NMR and shown in FIG. 3 .
  • Step 1 Dissolve 4-nitro- o -phenylenediamine (1 g, 6.53 mmol) and guanidine HCl (95 mg, 0.91 mmol) in 20 ml of ethanol, di-tert-butyldicarbonate (2.85 g, 13.06 mmol) ) was added dropwise, and the reaction mixture was stirred vigorously at 25° C. for 24 h. After the reaction was completed, the organic solvent in the reaction solution was evaporated under reduced pressure and suspended in distilled water.
  • Step 2 To a solution of compound 1 (400 mg, 1.58 mmol) in 10 ml dry THF under nitrogen was added activated carbon loaded with 100 mg of palladium (10 % Pd/C) until the pressure reached a maximum of 40 psi. Hydrogen gas was pumped in and the reaction mixture was stirred at 25° C. for 36 hours. After completion of the reaction, the reaction mixture was filtered through a bed of Celite 545 to remove Pd/C, and evaporated under reduced pressure to obtain a purple solid compound 2 (322 mg, yield: 91.2 %).
  • Step 3 Compound 2 (200 mg, 0.90 mmol), 4-pentinoic acid (200 mg, 2.04 mmol), HOBt (280 mg, 2.07 mmol) and triethylamine (TEA, 190 mg, 1.88 mmol) were dissolved in 10 ml of Completely dissolved in anhydrous DMF. After EDC (400 mg, 2.09 mmol) was added to the solution, the reaction mixture was stirred vigorously at 25° C. for 24 h. After the reaction was completed, the reaction mixture was evaporated under reduced pressure and suspended in CH 2 Cl 2 .
  • EDC 400 mg, 2.09 mmol
  • Step 4 5 ml trifluoroacetic acid (TFA) was added dropwise to compound 3 (200 mg, 0.52 mmol) suspended in 20 ml CH 2 Cl 2 at 0°C. And the reaction mixture was stirred vigorously at 25 °C for 12 hours. After completion of the reaction, the reaction mixture was evaporated under reduced pressure and neutralized with saturated sodium bicarbonate (NaHCO 3 ) solution. The neutralized solution was extracted three times with 5% (v/v) methanol in CH 2 Cl 2 , and the organic portion was washed with Na 2 SO 4 , the crosslinker DA-NOCCL as a dark brown solid (138 mg, 0.49 mmol, yield: 93.5 %) was obtained.
  • TFA trifluoroacetic acid
  • the crosslinking agent represented by Formula 1 and the clickable compound of Formula 2 For the synthesis of the crosslinking agent represented by Formula 1 and the clickable compound of Formula 2, using PEG (polyethylene glycol) as a starting material, one of the hydroxyl groups of PEG is selectively synthesized under silver oxide (Ag 2 O) catalyst conditions. After tosylation, the tosyl group was substituted with bromide. The formed PEG-Br forms a block copolymer of PLA- b -PEG-Br through cyclic polymerization with D,L-lactide. Finally, the synthesis was completed by replacing the bromide group with azide.
  • PEG polyethylene glycol
  • Step 1 Silver(I) oxide (1.74 g, 7.51 mmol) and potassium iodide (KI, 0.33 g, 1.99 mmol) were dissolved in 160 ml anhydrous dichloromethane (CH 2 Cl 2 ) in vacuum-dried 2 kDa PEG (10 g) , 5.00 mmol) solution and p-toluene sulfonylchloride (TsCl, 1 g, 5.25 mmol) in 20 ml anhydrous CH 2 Cl 2 was added and stirred vigorously at 0° C. overnight. After completion of the reaction, the reaction mixture was carefully filtered through a Celite 545 bed and evaporated under reduced pressure to obtain a colorless oily product.
  • CH 2 Cl 2 anhydrous dichloromethane
  • TsCl p-toluene sulfonylchloride
  • the obtained product was further purified through multiple CH 2 Cl 2 /diethylether ((C 2 H 5 ) 2 O) recrystallization to obtain a white solid precipitate (monoTos-PEG, 9.72 g, yield: 90.9 %). .
  • Step 2 MonoTos-PEG (4.0 g, 1.86 mmol) and potassium bromide (KBr, 1.1 g, 9.24 mmol) were all dissolved in 40 ml anhydrous dimethylformamide (DMF) and reacted at 65° C. for 18 hours under stirring. . After completion of the reaction, the reaction mixture was evaporated under reduced pressure and redispersed in CH 2 Cl 2 . The product was passed through short silica gel and further purified via multiple CH 2 Cl 2 /(C 2 H 5 ) 2 O recrystallization to give a white solid precipitate (monoBr-PEG, 3.59 g, yield: 93.5 %).
  • DMF dimethylformamide
  • Step 3 MonoBr-PEG (1.5 g, 0.72 mmol) and 3,6-dimethyl-1,4-dioxane-2,5-dione (D, L-lactide, 2.1 g, 14.57 mmol) in 5 ml It was dissolved in anhydrous toluene. After several freeze-thaw cycles were performed to the solution, a tin(II) 2-ethylhexanoate catalyst (Sn(Oct) 2 , 0.01 g, 0.02 mmol) was added to initiate polymerization. The reaction mixture was stirred vigorously at 120° C. for 36 hours. After completion of the reaction, the mixture was evaporated under reduced pressure and redispersed in CH 2 Cl 2 .
  • D 3,6-dimethyl-1,4-dioxane-2,5-dione
  • the product was purified through multiple CH 2 Cl 2 /(C 2 H 5 ) 2 O recrystallization to obtain a white amorphous solid precipitate.
  • the product was further purified (PLA- b -PEG-Br) through 2-day dialysis against distilled water and subsequent lyophilization.
  • FIGS. 8c and 8d the TEM and DLS data of the micellar structure formed by self-assembly of the prepared PLA- b -PEG-N 3 are shown in FIGS. 8c and 8d, respectively, and as can be seen in FIGS. 8c and 8d, PLA- b It was confirmed that -PEG-N 3 was self-assembled in aqueous conditions to form a uniform micelle structure with a size of about 284.1 ⁇ 7.8 nm.
  • a hyaluronic acid-based polymer chain (HA-N 3 ), which is a compound represented by Formula 3 that can form a hydrogel backbone by clicking with the compound represented by Formula 1, converts the chloride group of 2-chloroethylamine to an azide group. After substitution with , the substituted 2-azidoethylamine was combined with hyaluronic acid through an amide bond to synthesize it.
  • the synthesis process of the hyaluronic acid-based polymer chain is shown in FIG. 9, and 1 H NMR spectrum of the compound obtained in each step of the synthesis is shown in FIG.
  • Step 1 2-Chloroethylamine hydrochloride (1.16 g, 10.00 mmol) and NaN 3 (1.3 g, 20.00 mmol) were all dissolved in 30 ml distilled water, and the reaction mixture was stirred vigorously at 80° C. for 12 hours. After completion of the reaction, 1M sodium hydroxide (NaOH) solution was added to adjust the pH of the solution to 10-11. The alkaline solution was extracted three times with CH 2 Cl 2 , and the organic portion was washed with anhydrous sodium sulfate (Na 2 SO 4 ) to give a pale yellow oily product (2-azidoethylamine, 0.62 g, yield: 72.0 %).
  • NaOH sodium hydroxide
  • Step 2 100 kDa hyaluronic acid (HA, 200 mg, 0.50 mmol (repeat units)) is completely dissolved in 40 ml distilled water, and N-(3-dimethylaminopropyl)-N'-ethylcarbodiimide hydrochloride in the solution (EDC, 144 mg, 0.75 mmol), 1-hydroxybenzotriazole (HOBt, 101 mg, 0.75 mmol) and 2-azidoethylamine (51.7 mg, 0.60 mmol) were added. After adjusting the pH to 6.8, the reaction mixture was vigorously stirred at 25° C. for 1 day in dark conditions. After completion of the reaction, the product was purified by continuous dialysis against 0.1 M sodium chloride (NaCl) and distilled water, and lyophilized to obtain HA-N 3 .
  • NaCl sodium chloride
  • M-NO gel The nitrogen monoxide-sensitive hydrogel (hereinafter, M-NO gel) of the present invention was prepared by the following method.
  • the M-NO gel was prepared with a double syringe system.
  • One syringe of the double syringe system contained the compound represented by Chemical Formulas 1 and 3, and the other syringe contained the compound represented by Chemical Formula 2 and Cu(I) catalyst.
  • Syringes containing Chemical Formulas 1 and 3 were prepared in 1% (v/v) DMSO, and the concentrations were 0.04 wt% and 2.5 wt%, respectively.
  • a syringe containing the compound represented by Formula 2 and a Cu(I) catalyst was prepared in distilled water, and the concentrations were 2 wt% and 0.02 wt%, respectively.
  • the Cu(I) catalyst was prepared by mixing 15.5 mg of CuSO 4 ⁇ 5H 2 O and 22.0 mg of sodium ascorbate in 0.2 mL distilled water.
  • the nitrogen monoxide non-reactive hydrogel used as a control was prepared by replacing DA-NOCCL with DA-NONCL (dialkyne-functionalized non-cleavable cross-linker) in the preparation method of the M-NO gel.
  • DA-NOCCL dialkyne-functionalized non-cleavable cross-linker
  • the M-NO gel prepared with a dual syringe system was imaged through cryogenic scanning electron microscopy, which is shown in FIG. 11a .
  • micellar structure was uniformly distributed and fixed in the hydrogel of a network structure.
  • the M-NO gel showed almost complete recovery according to the stress-induced flow, confirming that the M-NO gel of the present invention can be usefully used as a viscous supplement.
  • the storage modulus of the NO-reactive M-NO gel gradually decreased with the concentration of NO, indicating a decrease in mechanical strength upon NO-mediated decomposition of the cross-linking agent, whereas the control group In the NO non-reactive gel, there was no significant change in the storage modulus even in a high concentration of NO solution. That is, it was confirmed that the M-NO gel of the present invention exhibited a decomposition pattern according to an increase in NO concentration.
  • the NO scavenging ability of the M-NO gel of the present invention was determined by using a synthesized NO donor Py-NO (N-diazeniumdiolates-incorporated pyrrolidine) capable of releasing NO in aqueous conditions, after preparing a 25 ⁇ M Py-NO solution, M The -NO gel and the NO non-reactive gel were treated with the 25 ⁇ M Py-NO solution prepared above, and after incubation for 1 hour, the residual NO level of the supernatant was quantified by grease analysis (absorbance at 548 nm was measured with NaNO 2 ). determination of NO concentration by comparison with a standard curve plotted as ). In addition, the swelling level of the hydrogel was measured and confirmed, and the relative swelling ratio was calculated through the following formula, and the results are shown in FIGS. 13a, 13b, 13c and 13d.
  • Py-NO N-diazeniumdiolates-incorporated pyrrolidine
  • the M-NO gel of the present invention significantly reduced the amount of the NO solution according to the concentration of NO, and it was confirmed that it greatly expanded compared to the control group, the NO non-reactive gel.
  • the M-NO gel of the present invention effectively removes nitrogen monoxide in a concentration-dependent manner, and has a swelling characteristic due to an increase in pore size by cutting the network structure of the hydrogel according to the concentration of NO, so that the on-demand control delivery according to the concentration of NO It was confirmed that (on-demand controlled delivery) is possible.
  • BSA-FITC fluorescein isothiocyanate-labeled bovine serum albumin
  • FIG. 14a A schematic diagram of dual drug release is shown in Fig. 14a, and the results are shown in Figs. 14b, 14c, 14d and 14e.
  • the M-NO gel of the present invention is a hydrophilic molecule with release properties due to Fickian diffusion at high NO concentrations and erosion-based mechanism. Although it was possible to rapidly release all of the hydrophobic molecules with them ( FIGS. 14b and 14d ), the NO non-reactive gel as a control did not show a particular release pattern despite the increase in the NO concentration ( FIGS. 14c and 14e ).
  • the micelle construct having a hydrodynamically similar size and shape to the PLA- b -PEG-N 3 micelle construct was incubated with an NO solution of M-NO gel. Observed in the supernatant, it was confirmed that the hydrophobic drug could be released by an erosion-based mechanism.
  • the dose-dependent cytotoxicity of M-NO and control of the present invention was confirmed by MTT assay.
  • RAW 264.7 cells were seeded in 96-well plates at an initial density of 1x10 4 cells/well, and cultured in DMEM medium containing 10% FBS, 100 U/mL penicillin, and 100 ⁇ g/mL streptomycin at 37°C. did.
  • the medium was replaced with a fresh medium containing the sample, and incubated for another 40 hours. Thereafter, the cells were washed and incubated in a medium containing 0.5 mg/mL MTT solution for 4 hours. Finally, the medium was replaced with 200 ⁇ L DMSO, and the absorbance was measured at 570 nm to examine the cell viability, and the results are shown in FIG. 16B .
  • the M-NO gel of the present invention has little effect on cell viability, confirming the safety of the M-NO of the present invention.
  • composition of the present invention has NO-scavenging ability and thus cytokine levels were confirmed using the LPS-stimulated NO-releasing RAW 264.7 macrophage cell line.
  • the RAW 264.7 cell line was inoculated into a 12-well plate at a density of 5x10 4 cells/well and cultured in DMEM medium containing 10% FBS, 100 U/mL penicillin, and 100 ⁇ g/mL streptomycin at 37°C.
  • the medium was replaced with fresh medium containing 5 ⁇ g/mL of LPS containing the sample, and incubated for another 24 hours.
  • the medium was centrifuged (3,000 rpm, 10 min, 4° C.) to obtain a supernatant, transferred to a 96-well plate, and the level of NO remaining in the supernatant was confirmed through grease analysis, which is shown in FIG. 16c .
  • the M-NO gel of the present invention can significantly reduce the NO level of the RAW 264.7 cell line stimulated with LPS by 25%, which is in RAW 264.7 not treated with LPS. It was confirmed that the values were similar to the observed values.
  • Intracellular NO levels were imaged by confocal microscopy to evaluate NO scavenging ability.
  • cells were inoculated into a cover glass placed in a 6-well plate at a density of 1x10 5 cell/well, and in DMEM medium containing 10% FBS, 100 U/mL penicillin, and 100 ⁇ g/mL streptomycin at 37°C. cultured.
  • the medium was replaced with fresh medium containing 5 ⁇ g/mL LPS containing samples (25 ⁇ g/mL for cross-linking agent, 250 ⁇ g/mL for gel), and incubated for another 24 hours.
  • sample medium was replaced with a fresh medium containing 5 ⁇ m of DAF-2 DA and incubated for another 40 minutes, after which the cells were washed with DPBS and incubated with the fresh medium for another 20 minutes.
  • NO is an important pro-inflammatory mediator, but its overproduction increases levels of representative cytokines such as TNF- ⁇ and IL-6 at in vitro levels. Therefore, it was confirmed whether the M-NO gel of the present invention can reduce cytokine TNF- ⁇ and IL-6 levels.
  • the LPS-stimulated RAW 264.7 cell line was treated with M-NO gel and a control gel (250 ⁇ g/mL) and cultured for 24 hours, followed by ELISA of pro-inflammatory cytokines TNF- ⁇ and IL-6 in the supernatant of the cell medium. , and the results are shown in FIGS. 17A and 17B .
  • the M-NO gel can significantly expand in response to NO in the RAW 264.7 cell line stimulated with LPS, so that the M-NO gel of the present invention is advantageous for on-demand release. It was confirmed that the conditions exist.
  • mice were first immunized by subcutaneous injection into the tail.
  • mice After 2 weeks, 100 ⁇ L of an emulsion solution (1:1, v/v) of a mixture of CII (2 mg/mL) and IFA (incomplete freud's adjuvant, 1 mg/mL) dissolved in 10 mM acetic acid was added to the mice. It was injected subcutaneously in the tail. Then, 4 weeks after the primary immunization, the RA model mice were randomly distributed into 8 groups, and 20 ⁇ L of each sample was injected into the joints of the CIA mice.
  • the in situ hydrogel is a dual syringe system (one syringe contains HA-N 3 (2.5 wt%) and crosslinker (0.04 wt%), the other syringe contains micelles (2 wt%) and Cu(I) (0.02 wt%)) ), including).
  • the M-NO gel loaded with dexamethasone was diluted 2-fold to match the hydrogel system at 1 wt% (loaded amount: 5.02%, dose: 0.5 mg/kg).
  • the change in paw volume over time in the RA mouse model was statistically analyzed in comparison with the saline-treated group (B) in each RA mouse model experimental group, and the results are shown in FIG. 18B .
  • representative mouse hindpaw images at 4 weeks, 6 weeks and 8 weeks are shown in FIG. 19 .
  • arthritis clinical score over time was evaluated through a blind test according to a standard scoring method (scale 0-5) while monitoring the clinical score for 4 to 8 weeks, and the results are shown in FIGS. 20A and 20B .
  • Clinical scores and evaluation criteria according to arthritis evaluation are as follows.
  • the M-NO gel of the present invention and the M-NO gel loaded with dexamethasone can not only slow the progression of the disease, but also alleviate the arthritis symptoms themselves.
  • the M-NO gel loaded with dexamethasone showed almost complete relief of arthritis symptoms.
  • a rotarod assay was performed to evaluate locomotor activity in the RA mouse model.
  • mice were trained for 3 days to stay on the rotarod in order to reach a stable latency to fall. Thereafter, the fall delay time was recorded at a fixed speed of 10 rpm and 120 s, and the results are shown in FIGS. 20c and 20d.
  • hydrogel of the present invention can prevent oxidative/nitrification stress and upregulation of osteoclasts due to the scavenging of overproduced nitric oxide in RA lesions.
  • Histological assays of the joint tissues of each experimental group treated with the samples were performed using hematoxylin and eosin (H&E), masson's trichrome and safranin-O ( safranin-O), and the degree of cartilage damage evaluated according to the standard scoring method (scale 0-4) through analysis results and blind tests is shown in FIGS. 21B and 22A (B: bone, C: cartilage) .
  • Clinical scores and evaluation criteria are as follows.
  • the levels of pro-inflammatory cytokines, TNF- ⁇ and IL-6, in serum and foot tissue fluid were quantified by ELISA at week 8 according to the manufacturer's protocol and confirmed. NO levels were determined through grease analysis, and the results are shown in FIGS. 22B-22E.
  • the pro-inflammatory cytokine levels were significantly reduced in the group treated with the M-NO gel of the present invention and the M-NO gel loaded with dexamethasone in both serum and foot tissue fluid. .
  • the group treated with dexamethasone-supported M-NO gel significantly decreased to a steady state.
  • FIG. 22F data quantifying NO levels in paw tissues of RA mice treated with samples at week 8 are shown in FIG. 22F .
  • FIG. 22f it was confirmed that the group treated with the M-NO gel of the present invention and the dexamethasone-supported M-NO gel significantly decreased the NO concentration in the foot tissue fluid.

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Rheumatology (AREA)
  • Dermatology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Orthopedic Medicine & Surgery (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Physical Education & Sports Medicine (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Materials Engineering (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Pain & Pain Management (AREA)
  • Biophysics (AREA)

Abstract

본 발명은 일산화질소 감응성 하이드로겔에 관한 것으로, 상기 하이드로겔은 클릭화학 반응에 의해 표적부위에서 제자리부합하여 형성되고, 일산화질소에 감응하는 가교제를 이용하여 제조되므로 표적부위에 과발현된 일산화질소를 효과적으로 포집하여 소거할 수 있으며, 나아가 하이드로겔에 담지된 약물은 치료가 필요한 표적부위에 국소적이며 선택적으로 방출될 수 있으므로 일산화질소의 과발현으로 인해 발생하는 염증성 질환의 예방 또는 치료에 유용하게 사용될 수 있다.

Description

일산화질소 감응성 하이드로겔
본 발명은 일산화질소 감응성 하이드로겔에 관한 것으로, 상기 하이드로겔은 클릭화학 반응에 의해 표적부위에서 제자리부합하여 형성되고, 일산화질소에 감응하는 가교제를 이용하여 제조되므로 표적부위에 과발현된 일산화질소를 효과적으로 포집하여 소거할 수 있으며, 나아가 하이드로겔에 담지된 약물은 치료가 필요한 표적부위에 국소적이며 선택적으로 방출될 수 있으므로 일산화질소의 과발현으로 인해 발생하는 염증성 질환의 예방 또는 치료에 유용하게 사용될 수 있다.
일산화질소(nitric oxide)는 수초 이내의 짧은 반감기를 가지는 반응성이 높은 라디칼 분자이며, 인체의 여러 세포에서 발생하고, 인체 내부에서 농도에 따라 신경전달, 혈관확장, 항암효과 등 다양한 역할을 수행하는 것으로 알려져 있다.
2010년대 후반부터 일산화질소의 과분비로 인한 염증성 질환을 완화 또는 치료하기 위해 질환 부위에 과생성되어 있는 일산화질소를 국소적으로, 그리고 선택적으로 포집하려는 시도가 활발히 진행되고 있다.
이러한 시도에 따라 주사 용이성을 위한 나노미터 사이즈 기반의 기술들이 개발되어 왔지만, 주사부위 외 다른 장기로의 빠른 확산 및 제거로 인한 문제점이 있었다. 예를들면, 일산화질소는 정상 범위에서 생체 내 중요한 역할을 하므로 일산화질소를 비특이적으로 제거하면 전신 독성과 같은 수많은 부작용을 유발할 수 있으며, 만성 염증성 질환 중 하나인 류마티스 관절염의 경우, 연골 주사를 일년에 최대 3-4회 접종하기 때문에, 질환 부위 외 다른 장기로의 빠른 확산 및 제거가 유발될 수 있는 기술은 바람직하지 않다.
한편, 류마티스 관절염은 다발성 관절염을 특징으로 하는 원인 불명의 만성 염증성 질환이다. 초기에는 관절을 싸고 있는 활막에 염증이 발생하지만 점차 주위의 연골과 뼈로 염증이 퍼져 관절의 파괴와 변형을 초래하게 된다. 관절뿐만 아니라 관절 외 증상으로 빈혈, 건조증후군, 피하 결절 폐섬유화증, 혈관염, 피부 궤양 등 전신을 침범할 수 있는 질환이다.
류마티스 관절염의 정확한 원인은 아직 밝혀지지 않았지만 자가면역현상이 주요 기전으로 알려져 있다. 자가면역이란 외부로부터 인체를 지키는 면역계의 이상으로 오히려 자신의 인체를 공격하는 현상이다. 일반적으로는 유전적 소인, 세균이나 바이러스 감염 등이 류마티스 관절염의 원인으로 생각되고 있다.
이러한 류마티스 관절염은 관절의 종창, 염증, 경직, 동통을 수반하며, 전신의 다발성 관절염의 병상을 보이는 난치성 자기면역 질환으로 해당 질환을 가진 환자에게 많은 고통을 발생시킨다.
따라서, 표적부위에서 국소적으로 장기간 일산화질소를 포집할 수 있고, 나아가 일산화질소에 감응하여 질환의 악화 정도에 따라 치료제를 함께 전달하여 일산화질소의 과발현과 관련된 질환을 완화 또는 치료할 수 있는 새로운 기술이 필요하다.
체내 과생산된 일산화질소를 국소적으로 포집하여 소거할 수 있고, 나아가 하이드로겔에 담지된 약물을 일산화질소의 농도에 따라 질환 부위에 국소적이며 선택적으로 방출함으로써 염증성 질환의 예방 또는 치료에 사용할 수 있는 일산화질소 감응성 하이드로겔을 제공한다.
이하 이를 구체적으로 설명한다. 본 발명에서 개시된 다양한 요소들의 모든 조합은 본 발명의 범주에 속한다. 또한, 하기의 구체적인 서술에 의해 본 발명 범주가 제한된다고 볼 수 없다.
본 발명은 하기 화학식 1 내지 3으로 표시되는 화합물로부터 제조되는 제자리부합(in situ hybridization) 하이드로겔을 제공한다.
[화학식 1]
Figure PCTKR2022000357-appb-img-000001
[화학식 2]
Figure PCTKR2022000357-appb-img-000002
[화학식 3]
Figure PCTKR2022000357-appb-img-000003
여기서,
상기 R1 및 R2는 각각 독립적으로 C1-C10 알킬렌이고,
상기 n 및 m은 각각 1 내지 1000의 정수이다.
본 발명에서 “Cx-Cy”(여기서 x, y는 1 이상의 정수)는 탄소 개수를 의미한다. 예를 들면, C1-C10 알킬렌은 1 이상 10 이하의 탄소수를 가지는 알킬렌을 의미하며, C1-C10 알킬은 1 이상 10 이하의 탄소수를 가지는 알킬을 의미한다.
본 발명에서 “알킬”은 직쇄 또는 분지쇄 포화탄화수소기를 의미하는 것으로, 메틸, 에틸, n-프로필, 이소프로필, n-부틸, sec-부틸, 이소부틸, tert-부틸, n-펜틸, n-헥실, n-헵틸, n-옥틸, n-노닐, n-디케닐 등을 포함한다.
본 발명에서 “알킬렌”은 상기 정의된 알킬로부터 유도된 2가의 작용기를 의미한다.
본 발명에서 “인 시츄(in situ)”는 “제자리” 또는 “원위치에서”와 교환되어 사용될 수 있고, “투여부위에서” 또는 “표적부위에서”를 의미한다.
본 발명에서 "제자리부합(in situ hybridization)"은 하이드로겔을 형성할 수 있는 전구체 물질들이 환자의 체내에 주입된 뒤, 원하는 체내의 조직, 기관 또는 체강 내의 표적부위에서 전구체 물질들의 결합에 의해 겔화가 일어나는 것을 의미한다.
본 발명에서 “환자”는 특정 상태 또는 질환의 치료를 필요로 하는 임의의 개체 또는 대상체를 의미하며, 포유류일 수 있으며, 바람직하게는 인간일 수 있다.
본 발명의 제자리부합 하이드로겔은 이식을 위한 외과적인 시술을 필요로 하지 않고, 최소 침투 기술을 통하여 체내에서 단순히 전구체 물질들의 혼합을 통해 하이드로겔을 형성시키므로 치료를 받는 환자에게 편안함을 부여할 수 있으며, 체내 표적부위에 국소적이며 선택적으로 하이드로겔을 형성시킬 수 있어 특히 치료가 필요한 부위에 대한 치료 효과가 우수하다.
본 발명에서 화학식 1로 표시되는 화합물은 하이드로겔 형성에 있어서 가교제의 역할을 하는 것일 수 있다.
[화학식 1]
Figure PCTKR2022000357-appb-img-000004
(상기 R1 및 R2는 각각 독립적으로 C1-C10 알킬렌)
본 발명에서 "가교제"는 화합물을 서로 결합시켜 망상(network) 구조를 취하기 위한 물질을 의미하며, 본 발명의 실시예들에 의하면, 화학식 1로 표시되는 화합물은 상기 R1 및 R2가 C2 알킬렌인, 하기 DA-NOCCL로 표시되는 화합물일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
[DA-NOCCL]
Figure PCTKR2022000357-appb-img-000005
본 발명에서 화학식 1로 표시되는 화합물은 과생산된 일산화질소를 포집하여 소거하는 역할을 할 수 있으므로, 상기 화힉식 1로 표시되는 화합물을 사용하여 제조되는 본 발명의 하이드로겔은 체내 과생산된 일산화질소를 포집하여 소거하는 것일 수 있다.
또한, 본 발명의 화학식 1로 표시되는 화합물은 일산화질소에 감응하여 분해되는 것일 수 있으며, 상기 화힉식 1로 표시되는 화합물로부터 제조되는 본 발명의 하이드로겔은 일산화질소에 감응하여 분해되는 것일 수 있다.
본 발명에서 "감응(성)"은 어떠한 환경 조건에 민감하게 반응하는 것을 의미하며, 본 명세서에서 "감응(성)"과 "반응(성)"은 상호 교환적으로 사용될 수 있다.
후술하는 실험예에서는 본 발명의 하이드로겔이 일산화질소를 흡수하여 팽창할 수 있음을 입증하여, 체내 과생산된 일산화질소를 포집하여 소거할 수 있고, 일산화질소의 과생산으로 인해 발생하는 질환을 효과적으로 치료할 수 있다는 점을 확인하였다. 또한, 본 발명의 하이드로겔이 일산화질소에 감응하여 분해될 수 있다는 점을 입증하여, 하이드로겔 망상구조 내에 결합되어 있는 마이셀 구조체를 질환이 발생한 부위에 선택적으로 방출할 수 있고, 상기 마이셀 구조체에 담지된 약물을 질환이 발생한 부위에 국소적이고, 선택적이며 집중적으로 전달할 수 있음을 확인하였다. 또한, 본 발명의 하이드로겔은 NO 농도 의존적으로 분해되는 정도가 달라질 수 있어, 질환의 중증도에 따라 약물방출의 조절이 가능함을 확인하였다.
본 발명에서 화학식 2로 표시되는 화합물은 PLA-b-PEG-N3 블록공중합체로도 지칭되며, 화학식 1로 표시되는 화합물의 알킨기와는 아자이드기를 통한 클릭화학 반응에 의해 결합할 수 있다.
[화학식 2]
Figure PCTKR2022000357-appb-img-000006
(상기 n 및 m은 각각 1 내지 1000의 정수)
상기 화학식 2로 표시되는 화합물은 자가조립(self-assembly)에 의해 마이셀 구조체를 형성하는 것일 수 있다.
본 발명에서 “마이셀(micelle)”은 수용액 상에서 내부의 소수성 영역과 바깥쪽의 친수성 영역으로 구성되는 시스템을 의미하며, 본 발명에서는 화학식 2로 표시되는 화합물인 PLA-b-PEG-N3 블록공중합체를 사용하여 마이셀 구조체를 형성시켰다.
본 발명에서 마이셀 구조체는 소수성 약물을 담지하고 질환부위에 특이적으로 방출되어 과생산된 일산화질소로 인한 질환을 치료함에 있어서 복합적인 치료, 즉, 일산화질소 소거로 인한 치료 및 약물에 의한 치료를 가능하게 한다.
본 발명의 실시예들에 따르면, 상기 마이셀 구조체는 10 내지 1000 nm의 균일한 직경을 갖는 것일 수 있으며, 바람직하게는 70 내지 900 nm일 수 있으며, 더욱 바람직하게는 70 내지 500 nm일 수 있다. 상기 범위 미만인 경우, 치료하고자 하는 질환 치료하기에 충분한 약물을 담지할 수 없을 수 있고, 상기 범위를 초과하는 경우, 주사 용이성 면에서 적합하지 않을 수 있다.
본 발명에서 상기 마이셀 구조체는 하이드로겔의 망상구조에 고정되어 있는 것일 수 있다. 상기 마이셀 구조체는 하이드로겔이 일산화질소에 감응하여 분해될 때 하이드로겔로부터 방출될 수 있고, 일산화질소가 과생산된 부위에 선택적으로 담지된 약물을 전달할 수 있다.
본 발명에서 화학식 3로 표시되는 화합물인 히알루론산 기반 고분자 체인은 HA-N3로도 지칭되며, 본 발명의 하이드로겔 백본(backbone)을 이루는 역할을 수행한다.
[화학식 3]
Figure PCTKR2022000357-appb-img-000007
(상기 n은 각각 1 내지 1000의 정수)
본 발명에서 상기 “히알루론산(hyaluronic acid)”은 글루크로닉산 및 아세틸글루코스아민으로 구성된 선형 폴리사카리드로서 세포외기질(extracellular matrix, ECM), 관절의 윤활액, 연골을 구성하는 지지체에 존재하는 글리코스아미노 글리칸 중의 하나이다. 가교된 히알루론산은 점탄성적인 성질로 인해 관절 윤활액으로서 사용할 수 있으며, 생체 내 적용 시 면역적인 측면에서도 문제가 없어 조직공학 및 약물전달시스템에 이용할 수 있는 우수한 생체적합성을 가진 재료이다.
본 발명에서 화학식 3으로 표시되는 화합물은 아자이드기를 통해 화학식 1로 표시되는 화합물의 알킨기와 클릭화학 반응에 의해 결합할 수 있다.
본 발명에서 하이드로겔은 상기 화학식 1로 표시되는 화합물과 상기 화학식 2 및 3으로 표시되는 화합물 간의 클릭화학 반응에 의해 제조되는 것일 수 있다.
본 발명에서 "클릭화학(click chemistry)"은 생물의 복잡한 환경 중에 일어나는 맞춤형 반응으로, 특정한 조건 하에서 빠르고 효과적이고 동시에 예측 가능하게 결합시키는 유기합성에 대한 모듈적 접근을 의미한다. 예를 들어, 아자이드(azide)-알킨(alkyne) 고리첨가반응(cyclo addition)은 열역학적 추진력이 매우 높아 효율적이면서 높은 수율로 아자이드 화합물과 알킨 화합물의 결합을 형성할 수 있어 올리고머, 폴리머 등과 같은 고분자와의 반응에서도 높은 수율로 분자간 결합을 형성시킬 수 있다.
본 발명의 실시예들에 따르면, 화학식 1로 표시되는 화합물의 알킨(alkyne)기와 화학식 2 로 표시되는 화합물의 아자이드기(azide, -N3)기; 및 화학식 1로 표시되는 화합물의 알킨(alkyne)기와 화학식 3으로 표시되는 화합물의 아자이드기(azide, -N3)기는 클릭화학 반응에 의해 각각 1,2,3-트리아졸(1,2,3-triazole)을 형성하며, 이로인해 본 발명의 마이셀 구조체를 포함하는 일산화질소 반응성 제자리부합 하이드로겔을 형성할 수 있다.
본 발명에서 하이드로겔은 생체활성물질을 포함함으로써, 과발현된 일산화질소에 의해 발생된 염증 또는 질환을 치료하는 효과를 더욱 높일 수 있다. 이러한 생체활성물질은 질병의 치료, 치유, 예방 또는 진단 등에 사용되는 물질 예를들어, 세포, 성장인자 및 호르몬과 같은 단백질 또는 펩타이드, 핵산, 세포외기질 물질 및 의약적으로 치료기능을 가지는 약물 등일 수 있으나, 이에 제한되지 않으며, 특정 질병에 효과가 있는 것으로 알려진 생체활성물질이라면 제한없이 하이드로겔에 적용하여 치료효과를 높이는데 사용할 수 있다. 하이드로겔이 생체활성물질을 포함하도록 제조하기 위해, 생체활성물질을 어느 한 용액에 포함되도록 용액을 제조하고, 다른 용액과 표적부위에서 혼합하여 하이드로겔을 형성하도록 할 수 있다. 또한, 생체활성물질이 포함된 각각의 두가지 용액을 주사기를 사용하여 표적부위에서 혼합하여 하이드로겔을 형성하도록 할 수 있다.
본 발명에서 하이드로겔은 소수성 약물을 더 포함할 수 있으며, 상기 소수성 약물은 상기 화학식 2로 표시되는 화합물의 자가조립에 의해 형성된 마이셀 구조체에 담지된 것일 수 있다. 상기 마이셀 구조체는 수중에서 친수성 및 소수성 부분을 가지는 블록공중합체의 자가조립에 의해 형성되어 내부는 강한 소수성을 띠므로, 상기 마이셀 구조체 내부에는 소수성 약물이 담지되기 용이하고, 이는 약물 및 마이셀 구조체 내부가 모두 소수성을 나타내는 것에 기인한 물리적인 현상으로 화학적 결합으로 인한 약물 전달체 대비 약물 함유량을 늘릴 수 있다.
본 발명에서 “소수성”은 물과 혼화되지 않는 비극성 또는 저극성 물질을 포함하는 의미이나 이에 제한되지 않고, 본 발명의 마이셀 구조체의 소수성 내부에 안정하게 존재할 수 있는 물질이라면 모두 소수성 물질에 포함된다.
본 발명에서 소수성 약물은 진통제, 항염증제, 면역억제제 또는 이들의 조합으로부터 선택될 수 있고, 바람직하게는 항염증제일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
본 발명에서 “항염증제”는 소염제로도 지칭되며, 염증을 없애는 성질을 가지고 있거나 염증 과정에 관여하여 이를 억제하는 약물을 의미한다.
상기 항염증제는 예를 들어, 21-아세톡시프레그네놀론, 알클로메타손, 알클로메타손 디프로피오네이트, 알게스톤, 암시노니드, 베클로메타손, 베타메타손, 베타메타손 디프로피오네이트, 베타메타손인산나트륨, 베타메타손 발레레이트, 부데소니드, 클로로프레드니손, 시클레소니드, 클로베타솔, 클로베타솔17-프로피오네이트, 클로베타손-17-부티레이트, 클로베타손, 클로코르톨론, 클로프레드놀, 코르티코스테론, 코르티손, 코르티손 아세테이트, 코르티바졸, 데플라자코르트, 데소니드, 데스옥시메타손, 덱사메타손, 덱사메타손 인산나트륨, 디플로라손, 디플루코르톨론, 디플루프레드네이트, 에녹솔론, 플루아자코르트, 플루클로로니드, 플루메타손, 플루오시노니드, 플루오시놀론, 플루오시놀론 아세토니드, 플루오시노니드, 플루오코르틴 부틸, 플루오코르톨론, 플루오코르톨론 카프로에이트, 플루오코르톨론 피발레이트, 플루오로메톨론, 플루니솔리드, 플루페롤론 아세테이트, 플루프레드니덴 아세테이트, 플루프레드니솔론, 플루란드레놀리드, 플루티카손 프로피오네이트, 포르모코르탈, 할시노니드, 할로베타솔 프로피오네이트, 할로메타손, 할로프레돈 아세테이트, 히드로코르타메이트, 히드로코르티손, 히드로코르티손 아세테이트, 히드로코르티손-17-아세포네이트, 히드로코르티손17-부테프레이트, 히드로코르티손-17-부티레이트, 히드로코르티손-17-발레레이트, 로테프레드놀, 마지프레돈, 메드리손, 메프레드니손, 메틸프레드니솔론, 모메타손, 모메타손 푸로에이트, 파라메타손, 파라메타손 아세테이트, 프레드니카르베이트, 프레드니솔론, 프레드니솔론 25-디에틸아미노-아세테이트, 프레드니솔론 인산나트륨, 프레드니손, 프레드니발, 프레드닐리덴, 리멕솔론, 틱소코르톨, 틱소코르톨 피발레이트, 트리암시놀론, 트리암시놀론 아세토니드, 트리암시놀론 알콜, 트리암시놀론 베네토니드, 트리암시놀론 헥사세토니드로 구성된 군으로부터 선택되는 하나 이상일 수 있으며, 본 발명의 실시예들에 따르면, 상기 항염증제는 덱사메타손일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
또한, 본 발명의 실시예들에 따르면, 소수성 약물은 마이셀 구조체 전체 중량 대비 3 내지 7 중량%로 함유된 것일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
본 발명의 하이드로겔은 소수성 약물 및 친수성 약물을 더 포함하는 것일 수 있다.
본 발명에서 상기 소수성 약물 및 친수성 약물은 표적부위에서 동시에 방출될 수 있으며, 이때, 상기 소수성 약물의 방출은 침식-기반(erosion-based) 방출로 인한 것이며, 상기 친수성 약물의 방출은 피키언(Fickian) 확산으로 인한 것일 수 있다.
후술하는 실험예에서는 본 발명의 하이드로겔이 하이드로겔의 소수성 도메인인 마이셀 내부에는 소수성 약물을 담지하고, 하이드로겔의 친수성 도메인에 친수성 약물을 담지할 수 있으며, 상기 두가지 약물을 치료가 필요한 표적부위에서 약물을 동시에 방출할 수 있음을 확인하였다. 또한, 본 발명의 하이드로겔은 일산화질소의 농도에 따라서 약물의 방출 정도가 달라질 수 있는데, 이는 병의 악화정도에 따라 약물방출이 조절될 수 있음을 의미하며, 이는 치료하고자 하는 질환의 상태에 따른 맞춤형 치료가 가능함을 나타낸다.
본 발명에서 하이드로겔을 제조하기 위한 화학식 1 내지 3의 화합물은 표적부위에 동시-주사(co-injection)되는 것일 수 있다.
본 발명에서 “동시-주사(co-injection)”는 화학식 1 내지 3의 화합물이 주사에 적합한 제형, 예를 들면, 액체 상태로 환자의 체내 표적부위에 함께 주사되는 것을 의미한다. 본 발명 실시예들에 따르면, 화학식 1 내지 3의 화합물을 포함하는 액체 형태의 조성물은 주사 바늘의 팁(tip)으로부터 빠져나가 환자 체내 표적부위에 들어가기 전 균질하게 혼합되고, 이어서 표적부위에 혼합물로서 주사되며, 주사 바늘을 빠져나가 체내에서 겔화된다. 본 발명의 화학식 1 내지 3의 화합물은 표적부위에 동시-주사된 후 클릭화학 반응에 의해 자발적으로 결합되어 하이드로겔을 형성할 수 있다.
본 발명에서 상기 동시-주사는 이중 주사기 시스템(dual syringe system) 또는 임의의 다른 적합한 주사기 시스템을 사용하여 달성될 수 있으며, 바람직하게는 이중 주사기 시스템에 의한 것일 수 있다. 본 발명의 실시예들에 따르면, 화학식 1 내지 화학식 3으로 표시되는 화합물은 동시-주사 전, 예를 들어 주사에 의한 동시 압출, 혼합 및 환자의 체내에서 바늘을 통한 주입의 일련의 과정이 발생하기 전에 물리적으로 분리되어 있을 수 있다. 본 발명의 실시예들에 따르면, 화학식 1 및 화학식 3으로 표시되는 화합물을 포함하는 조성물은 화학식 2로 표시되는 화합물을 포함하는 조성물과 물리적으로 분리되어 있을 수 있다. 본 발명의 실시예들에 따르면, 화학식 1 및 화학식 2로 표시되는 화합물을 포함하는 조성물은 화학식 3으로 표시되는 화합물과 물리적으로 분리되어 있을 수 있다. 본 발명의 실시예들에 따르면, 화학식 1로 표시되는 화합물을 포함하는 조성물은 화학식 2 및 화학식 3으로 표시되는 화합물과 물리적으로 분리되어 있을 수 있다.
본 발명의 하이드로겔은 상기 화학식 1 내지 3의 화합물을 표적부위에 주사 후 0.5 내지 10분 이내, 바람직하게는 0.5 내지 1분 이내 형성되는 것일 수 있다. 하이드로겔 형성 시간(겔화 시간)이 상기 범위 미만인 경우, 화학식 1 내지 3으로 표시되는 화합물이 혼합된 후 조기 가교결합에 의해 표적부위에의 주사가 원활하지 않을 수 있고, 상기 범위를 초과하는 경우, 주사된 물질이 주위 조직으로 확산되어 표적부위에 국소적인 하이드로겔의 형성에 적합하지 않을 수 있다. 종래 온도 또는 UV 조사 등을 통해 개발된 기존의 in situ 주입형 하이드로겔은 느린 상전이 시간과 같은 문제점들을 가지고 있다. 본 발명의 하이드로겔은 클릭화학 반응을 통해 짧은 시간에 겔화 될 수 있어 종래 기술이 가진 문제점을 해결하였다.
본 발명의 하이드로겔은 염증성 질환 예방, 완화 또는 치료용으로 사용될 수 있다.
본 발명에서 "염증성 질환"은 염증을 주병변으로 하는 질환을 의미하며, 본 발명에서 상기 염증성 질환은 생체 내 일산화질소가 과생산되는 양상을 나타내는 염증성 질환일 수 있다.
본 발명의 하이드로겔은 과생산된 일산화질소를 포집하여 소거할 수 있다. 스트레스 등에 의해 면역체계가 무너져 생체 내 일산화질소가 과생산되는 경우 자가면역질환 또는 염증성 질환을 일으킬 수 있다. 따라서, 과생산된 일산화질소를 포집하여 소거할 수 있는 본 발명의 하이드로겔은 일산화질소 과생산에 의해 유발된 질환을 효과적으로 치료할 수 있다.
또한, 상기 염증성 질환은 관절의 염증으로 인한 질환일 수 있으며, 예를 들면, 미분화 척추관절증, 미분화 관절병증, 관절염, 바이러스 또는 박테리아 감염에 의한 만성 염증질환, 류마티스 관절염, 반응성 관절염, 골관절염, 골다공증 등일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다. 본 발명의 실시예들에 따르면, 상기 염증성 질환은 류마티스 관절염일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
상기 류마티스 관절염은 자가면역질환 중 하나로, 고농도의 일산화질소에 의하여 발병되는 질환이다. 따라서, 본 발명의 하이드로겔은 고농도의 일산화질소 환경에서 일산화질소를 포집하여 사이토카인으로 유도된 파골 세포의 골 흡수를 억제하고, 관절에서 세포 사멸을 막아 류마티스 관절염을 완화 또는 치료할 수 있다.
본 발명에서 “완화 또는 치료”는 질환 증상의 중증도 감소, 질환 증상이 없는 기간의 빈도 및 지속기간의 증가, 또는 질환의 고통으로 인한 손상 또는 장애의 방지를 의미한다.
본 발명의 하이드로겔은 전염증성 사이토카인인 TNF-α 및 IL-6 수준을 감소시키는 것일 수 있다.
본 발명에서 “전염증성 사이토카인(pro-inflammatory cytokine)”은 주로 활성화된 대식세포에 의해 생산되어 전신 염증을 촉진하는 사이토카인을 의미한다. 전염증성 사이토카인에는 예를 들면, TNF-α(tumor necrosis factor-α), IL-1, IL-2, IL-6, IL-8 등이 있으며, 이들은 염증 반응 시 함께 나타나며 염증반응의 지표가 될 수 있다.
후술하는 실험예에서 본 발명의 하이드로겔을 처리하는 경우, 전염증성 사이토카인인 TNF-α 및 IL-6 수준을 감소시킬 수 있음을 확인하여, 본 발명의 하이드로겔이 염증성 질환의 치료에 유용하게 사용될 수 있음을 확인하였다.
본 발명의 하이드로겔은 비스코 보충제(visco-supplement)용으로 사용될 수 있다.
본 발명에서 "비스코보충제(visco-supplement)"는 겔 상태의 히알우론산을 관절 부위에 주사하여 점액성 윤활액을 보충해 주는 물질을 의미한다.
후술하는 실험예에서 본 발명의 하이드로겔은 파열 후에 스트레스로 유발된 흐름에 따라 거의 완전한 회복을 보여 비스코보충제로서 유용하게 사용할 수 있음을 확인하였다. 이는 특정이론에 얽매이지 않고, HA 사슬 간의 분자간 수소 결합과 마이셀 구조의 엔트로피 기반 재연결(entropy-driven reassociation)에 기인한 것으로 여겨진다.
본 발명의 다른 일 양태에 따르면, 하기 화학식 1 내지 3으로 표시되는 화합물을 포함하는 제자리부합 하이드로겔 전구체 조성물을 제공한다.
[화학식 1]
Figure PCTKR2022000357-appb-img-000008
[화학식 2]
Figure PCTKR2022000357-appb-img-000009
[화학식 3]
Figure PCTKR2022000357-appb-img-000010
여기서,
상기 R1 및 R2는 각각 독립적으로 C1-C10 알킬렌이고,
상기 n 및 m은 각각 1 내지 1000의 정수이다.
본 발명에서 "전구체(precursor)"는 다른 화합물을 생성하는 화학 반응에 참여하는 화합물을 의미한다.
본 발명의 전구체 조성물은 소수성 약물을 더 포함하는 것일 수 있으며, 상기 소수성 약물은 상기 화학식 2로 표시되는 화합물의 자가조립에 의해 형성된 마이셀 구조체에 담지된 것일 수 있다.
본 발명의 전구체 조성물은 소수성 약물 및 친수성 약물을 더 포함하는 것일 수 있다.
본 발명의 다른 일 양태에 따르면, 하기 단계를 포함하는 제자리부합(in situ hybridization) 하이드로겔 제조방법을 제공한다.
a) 하기 화학식 1로 표시되는 화합물 및 하기 화학식 3으로 표시되는 화합물을 포함하는 제1 전구체 조성물을 제조하는 단계;
b) 하기 화학식 2로 표시되는 화합물로부터 형성된 마이셀 구조체를 포함하는 제2 전구체 조성물을 제조하는 단계; 및
c) 상기 제1 전구체 조성물 및 제2 전구체 조성물을 동시-주사하는 단계.
[화학식 1]
Figure PCTKR2022000357-appb-img-000011
[화학식 2]
Figure PCTKR2022000357-appb-img-000012
[화학식 3]
Figure PCTKR2022000357-appb-img-000013
여기서,
상기 R1 및 R2는 각각 독립적으로 C1 내지 C10의 알킬렌이고,
상기 n 및 m은 각각 1 내지 1000의 정수이다.
본 발명의 실시예들에 따르면, 상기 화학식 1로 표시되는 화합물은 제1 전구체 조성물 전체 질량 대비 0.02 내지 0.06 wt%; 상기 화학식 2로 표시되는 화합물은 제2 전구체 조성물 전체 질량 대비 1.00 내지 3.00 wt%; 및 상기 화학식 3으로 표시되는 화합물은 제1 전구체 조성물 전체 질량 대비 1.00 내지 1.50 wt%;로 포함될 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
본 발명의 제조방법에 있어서, 상기 제2 전구체 조성물에는 촉매가 더 포함될 수 있으며, 본 발명의 실시예들에 따르면 상기 촉매는 Cu(I)일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
본 발명의 제조방법에 있어서, 상기 제2 전구체 조성물은 소수성 약물을 더 포함하는 것일 수 있으며, 상기 소수성 약물은 상기 화학식 2로 표시되는 화합물의 자가조립에 의해 형성된 마이셀 구조체에 담지된 것일 수 있다.
본 발명의 제조방법에 있어서, 상기 제1 및 제2 전구체 조성물은 소수성 약물 및 친수성 약물을 더 포함하는 것일 수 있다. 본 발명의 실시예들에 따르면, 소수성 약물은 제2 전구체 조성물에 포함될 수 있으며, 친수성 약물은 제1 전구체 조성물에 포함될 수 있고, 소수성 약물 및 친수성 약물 모두 제1 전구체 조성물 또는 제2 전구체 조성물에 포함될 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
본 발명의 제조방법에 있어서, 상기 동시-주사는 이중 주사기 시스템(dual syringe system)에 의한 것일 수 있다.
본 발명의 제조방법에 있어서, 상기 제1 및 제2 전구체 조성물은 비경구투여에 적절하도록 현탁액, 용액 또는 에멀젼의 형태일 수 있고, 고체 또는 반고체의 형태로 제조될 수 있으며, 현탁제, 안정화제, 용해제 및/또는 분산제와 같은 제형화제를 포함할 수 있다.
본 발명의 실시예들에 따르면, 제1 및 제2 전구체 조성물은 액체 상태일 수 있고, 멸균된 것일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다. 그리고 세균이나 곰팡이와 같은 미생물의 오염작용에 대해 보존될 수 있다. 또한, 제1 및 제2 전구체 조성물은 분말 형태일 수 있고 멸균된 것일 수 있다. 이 경우 사용 전 주사용수 등을 이용하여 액체 형태로 제형화될 수 있다.
본 발명은 염증성 질환을 보유하고 있는 개체에 본 발명의 하이드로겔을 투여하는 단계를 포함하는 염증성 질환 예방, 완화 또는 치료방법을 제공한다.
본 발명에서 "투여"는 어떠한 적절한 방법으로 환자에게 본 발명의 하이드로겔을 도입하는 것을 의미하며, 본 발명의 하이드로겔의 투여 경로는 목적하는 조직에 도달할 수 있는 한 어떠한 일반적인 경로를 통하여도 투여될 수 있으나, 바람직하게는 비경구투여일 수 있다. 상기 비경구투여는 예를 들어, 근육내, 피하, 관절내, 복강내 투여 등을 들 수 있으나, 이에 제한되지 않는다. 본 발명의 실시예들에 따르면, 상기 투여는 관절내 투여일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
본 발명에서 개체는 임의의 인간, 비인간 동물을 포함한다. 용어 "비인간 동물"은 척추동물, 예컨대 비인간 영장류, 양, 개, 및 설치류, 예컨대 마우스, 래트 및 기니 피그일 수 있다. 상기 개체는 바람직하게 인간일 수 있으며, 구체적으로 특정 질환을 보유하고 있는 인간일 수 있다. 본 명세서에서 용어 "개체"는 "대상체" 또는 "환자"와 상호교환적으로 사용될 수 있다.
본 발명의 제자리부합 하이드로겔, 전구체 조성물, 제조방법 및 치료방법에서 언급된 사항은 서로 모순되지 않는 이상 동일하게 적용되며, 명세서의 과도한 복잡성을 피하기 위해 반복기재를 생략하였다.
본 발명의 하이드로겔은 체내외의 과생산된 일산화질소를 국소적이며 선택적으로 포집하여 소거할 수 있으므로 일산화질소의 과생산으로 인한 염증성 질환에 있어서 우수한 예방, 완화 또는 치료 효과를 가진다.
또한, 본 발명의 하이드로겔은 소수성 및/또는 친수성 약물을 담지할 수 있어 표적부위로의 약물의 전달체로서 역할을 할 수 있고, 일산화질소 포집 및 약물 전달에 따른 복합적인 치료효과를 가질 수 있다.
또한, 본 발명의 하이드로겔은 일산화질소에 감응하여 분해될 수 있으므로 일산화질소가 존재하는 환경에서 가교점이 일산화질소에 감응하여 해리됨에 따라 하이드로겔에 담지된 약물은 표적부위에 국소적이며 선택적으로 전달될 수 있다.
또한, 본 발명의 하이드로겔은 외과적 수술이 필요하지 않고 최소 침습으로 표적부위에 국소적으로 하이드로겔을 형성할 수 있어 환자 편의성이 우수하다.
또한, 본 발명의 하이드로겔은 표적부위에서의 빠른 제거 및 다른 장기로의 확산을 방지할 수 있어, 전신독성 등 종래 기술이 가지던 문제점을 나타내지 않는다.
또한, 본 발명의 하이드로겔은 자기치유(self-healing) 능력으로 인해 기계적 특성의 회복이 뛰어나 비스코 보충제(visco-supplement)로 유용하게 활용할 수 있다.
도 1은 본 발명의 하이드로겔 형성 과정 및 상기 형성된 하이드로겔이 일산화질소에 반응하여 가교점이 해리되는 과정을 도식화한 것이다.
도 2는 화학식 1로 표시되는 화합물의 합성 과정을 나타낸 것이다.
도 3은 화학식 1로 표시되는 화합물의 합성의 각 단계에서 수득된 화합물의 1H NMR 데이터이다.
도 4는 화학식 1로 표시되는 화합물이 일산화질소와 반응하여 분해될 수 있는지 여부를 나타낸 것이다.
구체적으로 도 4a는 화학식 1로 표시되는 화합물이 일산화질소와 반응하여 분해되는 메커니즘을 나타낸 것이다.
도 4b는 화학식 1로 표시되는 화합물이 일산화질소와 반응하여 분해되는지 여부를 확인한 1H NMR 데이터를 나타낸 것이다.
도 5는 화학식 1로 표시되는 화합물이 일산화질소와 반응하여 분해되는지 여부를 확인한 FT-IR(a) 및 UV-Vis 흡광 데이터(b)를 나타낸 것이다.
도 6은 화학식 2로 표시되는 화합물의 합성과정을 나타낸 것이다.
도 7은 화학식 2로 표시되는 화합물 합성의 각 단계에서 수득된 화합물의 1H NMR 스펙트럼 데이터를 나타낸 것이다.
도 8은 화학식 2로 표시되는 화합물의 FT-IR, GPC, TEM, DLS 데이터이다.
구체적으로 도 8a는 PLA-b-PEG-N3의 FT-IR 스펙트럼 데이터를 나타낸 것이다.
도 8b는 PLA-b-PEG-N3의 GPC(Gel Permeation Chromatography) 데이터를 나타낸 것이다.
도 8c는 PLA-b-PEG-N3의 TEM(transmission electron microscope) 이미지를 나타낸 것이다.
도 8d는 PLA-b-PEG-N3의 동적광산란광도계(DLS)에 의해 결정된 평균 유체 역학적 크기를 나타낸 것이다.
도 9는 화학식 3으로 표시되는 화합물의 합성과정을 나타낸 것이다.
도 10은 화학식 3으로 표시되는 화합물의 합성과정에서 수득된 화합물의 1H NMR 데이터를 나타낸 것이다.
도 11 내지 도 15는 본 발명의 M-NO 겔의 특성을 분석한 것이다.
구체적으로 도 11a는 M-NO 겔을 극저온 스캐닝 전자 현미경(Cryogenic scanning electron microscopy)을 통해 이미지화한 것이다.
도 11b는 동적 과도 테스트(dynamic transient test)를 통한 M-NO 겔의 자가치유의 진동 유변학적 특성을 나타낸 것이다.
도 12a는 M-NO 젤의 자가치유 개략도를 나타낸 것이다.
도 12b는 M-NO 겔의 주파수 의존적 진동 유변학적 특성을 나타낸 것이다.
도 12c는 M-NO 겔 및 대조군 겔(NO 비반응성)의 NO 농도 의존적 진동 유변학적 특성을 나타낸 것이다.
도 13a는 M-NO 겔의 NO 소거 능력을 확인한 것이다. 데이터는 평균±SD(n = 4)로 표시하였다.
도 13b는 다양한 농도에서 시간에 따른 M-NO 겔의 상대적 팽창비를 나타낸 것이다. 데이터는 평균±SD(n = 4)로 표시하였다.
도 13c는 다양한 농도에서 시간에 따른 대조군 겔(NO 비반응성)의 상대적 팽창비를 나타낸 것이다. 데이터는 평균±SD(n = 3)로 표시하였다.
도 13d는 다양한 농도의 NO 용액에서 2시간 배양한 후 M-NO 겔 및 대조군 겔(NO 비반응성)의 이미지를 나타낸 것이다. 스케일 바는 1 cm이다.
도 14a는 M-NO 겔에서의 동시적 이중 약물 방출에 대한 개략도를 나타낸 것이다.
도 14b는 M-NO 겔의 BSA-FITC(hydrophilic cargo model) 방출 프로파일을 나타낸 것이다.
도 14c는 대조군 겔의 BSA-FITC 방출 프로파일을 나타낸 것이다.
도 14d는 M-NO 겔의 마이셀 구조체에 담지된 Nile Red(hydrophobic cargo model)의 방출 프로파일을 나타낸 것이다.
도 14e는 대조군 겔의 Nile Red 방출 프로파일을 나타낸 것이다.
도 15a는 하이드로겔 형성 전의 PLA-b-PEG-N3 마이셀 구조체의 평균 유체역학적 크기 및 M-NO 겔을 NO 용액(250 μM)과 함께 24 시간 배양한 후 상청액에서 확인된 PLA-b-PEG-N3 마이셀 구조체의 평균 유체역학적 크기를 나타낸 것이다.
도 15b는 M-NO 겔의 침식 후 상청액의 TEM 이미지를 나타낸 것이다. 이미지 내의 흰색 박스는 겔 형성 전의 마이셀 구조체의 형태를 나타낸다.
도 16 및 도 17은 LPS 처리된 RAW 264.7 세포에 LPS 처리 후 M-NO 겔의 반응성 및 NO 소거능을 나타낸 것이다.
구체적으로, 도 16a는 RAW 264.7 및 NIH/3T3 세포주에 5 μg/ml LPS를 24시간 처리 전후의 NO 농도를 나타낸 것이다.
도 16b는 다양한 농도의 M-NO 겔 및 대조군 겔로 처리된 RAW 264.7 세포주의 세포생존율을 나타낸 것이다. 데이터는 평균±SD(n = 5)로 표시하였다.
도 16c는 M-NO 겔의 NO 소거능을 나타낸 것으로, 다양한 농도의 M-NO 겔을 RAW 264.7 세포주에 처리하고 24시간 배양 후 세포 배지 상청액의 NO의 수준을 Griess assay를 통해 확인한 것이다.
도 16d는 M-NO 겔 및 대조군 겔 처리 후 LPS로 활성화된 RAW 264.7 세포주의 공초점 현미경 이미지를 나타낸 것이다. 세포 내 NO 및 핵은 각각 DAF-2 DA(녹색) 및 DAPI(파란색)으로 염색되었으며, 스케일 바는 100 μm이다.
도 17a는 M-NO 겔 및 대조군 겔로 처리 후 TNF-α 수준을 정량화한 것을 나타낸 것이다.
도 17b는 M-NO 겔 및 대조군 겔로 처리 후 IL-6 수준을 정량화한 것을 나타낸 것이다.
도 17c는 배양된 RAW 264.7 또는 NIH/3T3 세포주(LPS로 자극되거나 자극되지 않은)에 M-NO 겔 및 대조군 겔을 처리하고 밤새 배양한 후의 M-NO 겔 및 대조군 겔의 이미지를 나타낸 것이다.
도 17d는 배양된 RAW 264.7 또는 NIH/3T3 세포주(LPS로 자극되거나 자극되지 않은)에 M-NO 겔 및 대조군 겔을 처리하고 밤새 배양한 후 상대적인 팽창 비율을 나타낸 것이다.
도 17e는 전염증성 사이토카인 수준을 감소시키기 위한 M-NO 겔의 in vitro NO-반응성 및 소거능을 나타낸 개략도이다.
도 18 내지 도 22는 류마티스 관절염 동물모델인 콜라겐 유도 관절염(CIA) 마우스에서 본 발명의 M-NO 겔의 류마티스 관절염 치료효과를 확인한 것을 나타낸 것이다.
구체적으로, 도 18a는 전체 실험 타임 라인을 나타낸 것이다.
도 18b는 샘플 처리 후 RA 마우스 모델에서의 상대적인 발 부피 변화를 나타낸 것이다. 상대적인 발 부피는 RA 모델 마우스를 식염수로 처리된 군(B)을 다른 실험군과 비교하였으며, 일원 ANOVA을 사용하여 통계적으로 분석하였다(** p<0.01, *** p<0.001).
도 19는 4주, 6주 및 8주에서의 대표적인 마우스 뒷발 이미지를 나타낸 것이다.
도 20a는 샘플 처리 후 RA 마우스의 시간-의존적 평균 임상 점수를 나타낸 것이다. 데이터는 평균±SD (n=8)로 표시하였다.
도 20b는 샘플 처리 후 RA 마우스의 8주차의 평균 임상점수를 나타낸 것이다. RA 모델 마우스를 식염수로 처리된 군(B)을 다른 실험군과 비교하였으며, 일원 ANOVA을 사용하여 통계적으로 분석하였다(** p<0.01, *** p<0.001).
도 20c는 로타로드 분석을 통해 샘플 처리 후 RA 마우스의 시간에 따른 낙하 지연 시간을 나타낸 것이다. 데이터는 평균±SEM(n=8)으로 표시하였다.
도 20d는 샘플 처리 후 RA 마우스의 8주차의 낙하 지연 시간을 나타낸 것이다. RA 모델 마우스를 식염수로 처리된 군(B)을 다른 실험군과 비교하였으며, 일원 ANOVA을 사용하여 통계적으로 분석하였다(** p<0.01, *** p<0.001).
도 21은 류마티스 관절염 동물모델인 콜라겐 유도 관절염(CIA) 마우스에서 본 발명의 M-NO 겔의 류마티스 관절염 치료효과를 확인한 것을 나타낸 것이다.
구체적으로 도 21a는 RA 마우스 모델의 앞발 마이크로컴퓨터단층촬영(micro-CT) 이미지를 나타낸 것이다. 빨간색 화살표는 뼈의 파괴 및 손상을 나타낸다.
도 21b는 샘플 처리 후 관절 조직의 조직학적 분석 결과를 나타낸 것이다. 스케일 바는 100 μm이다.
도 22a는 H&E, masson's trichrome 및 Safranin-O 염색을 사용하여 결정된 관절 조직의 평균 조직학적 점수를 나타낸 것이다. RA 모델 마우스를 식염수로 처리된 군(B)을 다른 실험군과 비교하였으며, 일원 ANOVA을 사용하여 통계적으로 분석하였다(* p<0.05, *** p<0.001; n.s. 큰 차이 없음).
도 22b는 샘플 처리된 RA 마우스 혈청 표본에서 TNF-α의 수준을 정량화한 것을 나타낸 것이다.
도 22c는 샘플 처리된 RA 마우스 혈청 표본에서 IL-6를 나타낸 것이다. 데이터는 평균 ± SD (n = 4)로 표시되며, #을 다른 군과 비교하여 일원 분산 분석 테스트를 사용하여 통계적으로 분석하였다(* p<0.05, *** p<0.001; n.s. 큰 차이 없음).
도 22d는 샘플 처리된 RA 마우스 발 조직액에서의 TNF-α의 수준을 정량화한 것을 나타낸 것이다.
도 22e는 샘플 처리된 RA 마우스 발 조직액에서의 IL-6의 수준을 정량화한 것을 나타낸 것이다. 데이터는 평균±SD (n=4)로 표시되며, RA 모델 마우스를 식염수로 처리된 군(B)을 다른 실험군과 비교하였으며, 일원 ANOVA을 사용하여 통계적으로 분석하였다(* p<0.05, *** p<0.001; n.s. 큰 차이 없음).
도 22f는 8 주차 샘플 처리된 RA 마우스 발 조직액에서 NO 수준의 정량화한 것을 나타낸 것이다. 데이터는 평균±SD (n=4)로 표시되며, RA 모델 마우스를 식염수로 처리된 군(B)을 다른 실험군과 비교하였으며, 일원 ANOVA을 사용하여 통계적으로 분석하였다(* p<0.05, *** p<0.001; n.s. 큰 차이 없음).
이하 본 발명을 실시예에 의해 보다 상세하게 설명한다. 그러나 이들 실시예는 본 발명을 예시적으로 설명하기 위한 것으로, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되는 것은 아니다. 또한, 본 명세서에서 특별히 정의되지 않은 용어들에 대해서는 본 발명이 속하는 기술 분야에서 통상적으로 사용되는 의미를 갖는 것으로 이해되어야 할 것이다.
제조예 1. 화학식 1의 화합물의 합성
일산화질소에 반응하는, 클릭 가능한 가교제 DA-NOCCL의 합성을 위해 먼저 4-니트로-o-페닐렌디아민(4-nitro-o-phenylenediamine) C2 위치에 있는 아민 그룹을 구아니딘 HCl(guanidine HCl)을 촉매로 하여 선택적으로 Boc-보호화하였다. 이후 4-NO2를 4-NH2로 환원시키고, 4-펜티노산(4-pentynoic acid)을 각 아민 그룹과 아미드 결합을 통해 결합시켰다. 이후 산 조건에서 Boc-탈보호화하여 합성을 완료하였다. 상기 가교제 DA-NOCCL의 합성과정은 도 2에 나타내었으며, 합성과정에서 수득된 각 화합물 및 가교제 DA-NOCCL의 성공적인 합성은 1H NMR을 통해 확인하고 도 3에 나타내었다.
구체적인 합성의 각 단계는 하기와 같다.
단계 1: 4-니트로-o-페닐렌디아민(1 g, 6.53 mmol) 및 구아니딘 HCl(95 mg, 0.91 mmol)을 에탄올 20 ml에 용해시키고, 디-tert-부틸디카보네이트(2.85 g, 13.06 mmol)를 적가(dropwise)한 후, 상기 반응 혼합물을 25℃에서 24시간 동안 격렬하게 교반하였다. 반응이 완료된 후 반응용액 내 유기용매를 감압 증발시키고 증류수에 현탁시켰다. 상기 수용액을 에틸 아세테이트(EA)로 3회 추출하고, 유기 부분을 Na2SO4로 세척하여 적황색 조(crude)-고체를 수득하였으며, 실리카겔 컬럼 크로마토그래피(용리액: EA-헥세인 혼합물)를 통해 정제하여 화합물 1(1.22 g, 수율: 73.8 %)을 수득하였다.
[화합물 1]
Figure PCTKR2022000357-appb-img-000014
1H NMR (500 MHz, DMSO-d6): δ= 8.56 (brs, 1H, D2O exchangeable), 8.30 (d, J = 1.6 Hz, 1H), 7.78 (dd, J = 9.0, 2.7 Hz, 1H), 6.72 (d, J = 9.0 Hz, 1H), 6.46 (brs, 2H, D2O exchangeable), 1.48 (s, 9H).
단계 2: 질소 하의 10 ml 무수 THF 중의 화합물 1(400 mg, 1.58 mmol) 용액에 팔라듐 100 mg이 로딩된 활성탄(10 % Pd/C)을 첨가한 후, 압력이 최대 40 psi에 도달할 때까지 수소 가스를 펌핑하고, 반응 혼합물을 25℃에서 36시간 동안 교반하였다. 반응이 완료된 후 반응 혼합물을 셀 라이트 545 베드를 통해 여과하여 Pd/C를 제거하고, 감압 하에 증발시켜 보라색 고체 화합물 2(322 mg, 수율: 91.2 %)를 수득하였다.
[화합물 2]
Figure PCTKR2022000357-appb-img-000015
1H NMR (500 MHz, DMSO-d6): δ= 8.08 (brs, 1H, D2O exchangeable), 6.64 (d, J = 1.6 Hz, 1H), 6.45 (d, J = 8.3 Hz, 1H), 6.16 (dd, J = 8.3, 2.5 Hz, 1H), 4.29 (brs, 2H, D2O exchangeable), 4.01 (brs, 2H, D2O exchangeable), 1.45 (s, 9H)
단계 3: 화합물 2(200 mg, 0.90 mmol), 4-펜티노산(200 mg, 2.04 mmol), HOBt(280 mg, 2.07 mmol) 및 트리에틸아민(TEA, 190 mg, 1.88 mmol)을 10 ml의 무수 DMF에 완전히 용해시켰다. EDC(400 mg, 2.09 mmol)를 용액에 첨가한 후, 반응 혼합물을 25℃에서 24시간 동안 격렬하게 교반하였다. 반응이 완료된 후 반응 혼합물을 감압 증발시키고 CH2Cl2에 현탁시켰다. 유기용매를 증류수로 3회 추출하고 유기 부분을 Na2SO4로 세척하여 밝은 갈색의 조(crude)-고체를 수득하였으며, 실리카겔 컬럼 크로마토그래피(용리액: EA-헥세인 혼합물)를 통해 정제하여 화합물 3(285 mg, 0.74 mmol, 수율: 82.7 %)을 수득하였다.
[화합물 3]
Figure PCTKR2022000357-appb-img-000016
1H NMR (500 MHz, DMSO-d6): δ= 9.99 (brs, 1H, D2O exchangeable), 9.41 (brs, 1H, D2O exchangeable), 8.26 (brs, 1H, D2O exchangeable), 7.87 (d, J = 2.2 Hz, 1H), 7.39 (dd, J = 8.7, 2.2 Hz, 1H), 7.27 (d, J = 8.7 Hz, 1H), 2.79 (t, J = 2.5 Hz, 2H), 2.55-2.41 (m, 8H), 1.47 (s, 9H)
단계 4: 5 ml 트리플루오로아세트산(TFA)을 0℃에서 20 ml CH2Cl2에 현탁된 화합물 3(200 mg, 0.52 mmol)에 적가하였다. 그리고 반응 혼합물을 25℃에서 12시간 동안 격렬하게 교반하였다. 반응 완료 후 반응 혼합물을 감압 증발시키고 포화 중탄산나트륨(NaHCO3) 용액으로 중화시켰다. 중화된 용액을 CH2Cl2 중의 5 %(v/v) 메탄올로 3회 추출하고 유기 부분을 Na2SO4로 세척하여 짙은 갈색 고체의 가교제 DA-NOCCL(138 mg, 0.49 mmol, 수율: 93.5 %)을 수득하였다.
[DA-NOCCL]
Figure PCTKR2022000357-appb-img-000017
1H NMR (500 MHz, DMSO-d6): δ= 9.70 (brs, 1H, D2O exchangeable), 9.06 (brs, 1H, D2O exchangeable), 7.08 (d, J = 2.2 Hz, 1H), 7.01 (d, J = 8.5 Hz, 1H), 6.70 (dd, J = 8.5, 2.2 Hz, 1H), 4.88 (brs, 2H, D2O exchangeable), 2.78 (dt, J = 14.7, 2.4, 2H), 2.44 (m, 8H).
상기 합성된 가교제 DA-NOCCL이 일산화질소와 반응하여 분해되는 메커니즘, 및 이를 확인한 1H NMR, FT-IR 및 UV-Vis 흡광 데이터는 도 4 및 도 5에 나타내었다.
도 4 및 도 5에서 확인할 수 있는 바와 같이, 포화된 NO 용액에서 배양 후, 1차 아민의 특징적인 피크가 소실되고, 벤조트리아졸(benzotriazole)기가 형성되어 가교제 DA-NOCCL이 NO에 반응하여 분해될 수 있음을 확인하였다.
제조예 2. 화학식 2의 화합물의 합성
화학식 1로 표시되는 가교제와 클릭 가능한 화학식 2의 화합물의 합성을 위해 PEG(polyethylene glycol)를 시작 물질로 하여 PEG의 히드록실기(hydroxyl group) 중 하나를 산화은(Ag2O) 촉매 조건에서 선택적으로 토실화(tosylation)시킨 후, 토실기를 브로마이드로 치환하였다. 상기 형성된 PEG-Br는 D,L-락타이드와 고리연결 중합을 통해 PLA-b-PEG-Br의 블록공중합체를 형성한다. 마지막으로 브로마이드기를 아자이드로 치환하여 합성을 완료하였다. 합성된 PLA-b-PEG-N3 10 mg을 1 ml THF에 녹인 후, 9 ml의 물을 적가(dropwise)하여 마이셀 구조체를 형성시키고, 남은 THF를 투석(dialysis)을 통해 제거하였다. 구체적인 합성의 각 단계는 하기와 같으며, 합성과정은 도 6에 나타내었다. PLA-b-PEG-N3의 성공적인 합성은 1H NMR, FT-IR 및 GPC로 확인하였으며, 각각 도 7, 8a 및 8b에 나타내었다.
구체적인 합성의 각 단계는 다음과 같다.
단계 1: 산화은(I) (1.74 g, 7.51 mmol) 및 요오드화 칼륨(KI, 0.33 g, 1.99 mmol)을 160 ml 무수 디클로로메탄(CH2Cl2)에 용해된 진공-건조 2 kDa PEG(10 g, 5.00 mmol) 용액에 첨가하고, 20 ml 무수 CH2Cl2 중의 p-톨루엔 설포닐클로라이드 (TsCl, 1 g, 5.25 mmol)를 첨가하여 0℃에서 밤새도록 격렬히 교반하였다. 반응완료 후 반응 혼합물을 셀라이트 545 베드(Celite 545 bed)를 통해 조심스럽게 여과하고 감압 증발시켜 무색 유성인 생성물을 수득하였다. 상기 수득한 생성물은 다중 CH2Cl2/디에틸에테르((C2H5)2O) 재결정을 통해 추가로 정제하여 백색 고체 침전물(monoTos-PEG, 9.72 g, 수율: 90.9 %)을 수득하였다.
단계 2: monoTos-PEG(4.0 g, 1.86 mmol) 및 브롬화 칼륨(KBr, 1.1 g, 9.24 mmol)을 모두 40 ml 무수 디메틸포름아미드(DMF)에 용해시키고, 교반 하에 65℃에서 18 시간 동안 반응시켰다. 반응완료 후 반응 혼합물을 감압 증발시켜 CH2Cl2에 재분산시켰다. 상기 생성물을 짧은 실리카겔에 통과시키고, 다중 CH2Cl2/(C2H5)2O 재결정을 통해 추가로 정제하여 백색 고체 침전물(monoBr-PEG, 3.59 g, 수율: 93.5 %)을 수득하였다.
단계 3: monoBr-PEG(1.5 g, 0.72 mmol) 및 3,6-디메틸-1,4-디옥세인-2,5-디온(D, L-락타이드, 2.1 g, 14.57 mmol)을 5 ml에 무수 톨루엔에 용해시켰다. 상기 용액에 여러번의 동결-해동 사이클 수행 후, 주석(II) 2-에틸헥사노에이트 촉매(Sn(Oct)2, 0.01 g, 0.02 mmol)를 첨가하여 중합을 시작하였다. 반응 혼합물은 120℃에서 36시간 동안 격렬하게 교반하였다. 반응완료 후 상기 혼합물을 감압 증발시키고 CH2Cl2에 재분산하였다. 그리고 생성물을 다중 CH2Cl2/(C2H5)2O 재결정화를 통해 정제하여 백색 무정형 고체 침전물을 수득하였다. 생성물은 증류수에 대한 2일 투석 및 후속적인 동결건조를 통해 추가로 생성물을 정제(PLA-b-PEG-Br)하였다. 분자량은 테트라하이드로퓨란(THF)(Mn=5540, PDI=1.50) 하에서 GPC(gel permeation chromatography)에 의해 측정하였다.
단계 4: 상기 제조된 PLA-b-PEG-Br(1.1 g, 0.19 mmol) 및 과량의 아지드화 나트륨(NaN3, 0.45 g, 6.92 mmol)을 20 ml 무수 DMF에 용해시키고, 반응 혼합물을 50℃에서 3일 동안 격렬히 교반하였다. 반응종료 후 증류수에 대해 2일 투석 및 후속적인 동결건조를 통해 생성물을 정제(PLA-b-PEG-N3)하였다. 분자량은 THF(Mn=5864, PDI=1.55) 하에 GPC에 의해 측정하였다.
또한, 상기 제조된 PLA-b-PEG-N3의 자가조립에 의해 형성된 마이셀 구조체의 TEM 및 DLS 데이터는 각각 도 8c 및 8d에 나타내었으며, 도 8c 및 8d에서 확인할 수 있는 바와 같이, PLA-b-PEG-N3는 수성 조건에서 자가조립되어 약 284.1±7.8 nm 크기의 균일한 마이셀 구조를 형성할 수 있다는 점을 확인하였다.
제조예 3. 화학식 3의 화합물의 합성
화학식 1로 표시되는 화합물과 클릭하여 하이드로겔 백본(backbone)을 이룰 수 있는 화학식 3으로 표시되는 화합물인 히알루론산 기반 고분자 체인(HA-N3)은 2-클로로에틸아민의 클로라이드 그룹을 아자이드 그룹으로 치환 후, 치환된 2-아지도에틸아민을 히알루론산과 아미드결합을 통해 결합시켜 합성하였다. 상기 히알루론산 기반 고분자 체인의 합성과정은 도 9에 나타내었으며, 합성의 각 단계에서 수득된 화합물의 1H NMR 스펙트럼은 도 10에 나타내었다.
구체적인 합성의 각 단계는 하기와 같다.
단계 1: 2-클로로에틸아민 하이드로클로라이드(1.16 g, 10.00 mmol) 및 NaN3(1.3 g, 20.00 mmol)을 모두 30 ml 증류수에 용해시키고, 반응 혼합물을 80℃에서 12시간 동안 격렬하게 교반하였다. 반응완료 후 1M 수산화 나트륨(NaOH) 용액을 첨가하여 용액의 pH를 10-11까지 조절하였다. 알칼리성 용액을 CH2Cl2로 3회 추출하고 유기 부분을 무수 황산나트륨(Na2SO4)으로 세척하여 연황색 유성 생성물(2-아지도에틸아민, 0.62 g, 수율: 72.0 %)을 수득하였다.
1H NMR (500 MHz, D2O): δ= 3.41 (t, J = 5.7Hz, 1H), 2.80 (t, J = 5.7Hz, 1H).
단계 2: 100 kDa 히알루론산(HA, 200 mg, 0.50 mmol (반복 단위))을 40 ml 증류수에 완전히 용해시키고, 상기 용액에 N-(3-디메틸아미노프로필)-N'-에틸카르보디이미드 염산염(EDC, 144 mg, 0.75 mmol), 1-히드록시벤조트리아졸(HOBt, 101 mg, 0.75 mmol) 및 2-아지도에틸아민(51.7 mg, 0.60 mmol)을 첨가하였다. pH를 6.8로 조정한 후, 반응 혼합물을 암(dark) 조건에서 1일 동안 25℃에서 격렬하게 교반하였다. 반응완료 후 생성물은 0.1 M 염화나트륨(NaCl) 및 증류수에 대한 연속 투석으로 정제하고, 동결건조하여 HA-N3를 수득하였다.
제조예 4. 하이드로겔의 제조
본 발명의 일산화질소 감응성 하이드로겔(이하, M-NO 겔)은 하기 방법을 통해 제조하였다.
구체적으로 M-NO 겔은 이중 주사기 시스템으로 준비하였다. 이중 주사기 시스템의 하나의 시린지에는 화학식 1 및 화학식 3으로 표시되는 화합물을, 다른 하나의 시린지에는 화학식 2로 표시되는 화합물과 Cu(I) 촉매를 포함하도록 하였다. 화학식 1과 화학식 3을 포함하는 시린지는 1 %(v/v) DMSO 상에서 준비되었으며, 각각의 농도는 0.04 wt%, 2.5 wt%이었다. 화학식 2로 표시되는 화합물과 Cu(I) 촉매를 포함하는 시린지는 증류수에서 준비되었으며, 각각의 농도는 2 wt%, 0.02 wt%이었다. 여기서 Cu(I) 촉매는 CuSO4·5H2O 15.5 mg 및 아스코르브산 나트륨(sodium ascorbate) 22.0 mg를 0.2 mL 증류수에서 혼합하여 제조하였다.
또한, 대조군으로 사용된 일산화질소 비반응성 하이드로겔은 상기 M-NO 겔의 제조방법에서 DA-NOCCL을 DA-NONCL(dialkyne-functionalized non-cleavable cross-linker)로 대체하여 제조하였다.
실험예 1. M-NO 겔의 형태학적 분석
본 발명의 M-NO 겔의 형태학적 분석을 위해 이중 주사기 시스템(dual syringe system)으로 준비된 M-NO 겔을 극저온 스캐닝 전자 현미경(cryogenic scanning electron microscopy)을 통해 이미지화 하였으며, 이는 도 11a에 나타내었다.
상기 도 11a에서 확인할 수 있는 바와 같이, 마이셀 구조체가 망상구조(network)의 하이드로겔 내에 균일하게 분포되어 고정되어 있음을 확인하였다.
실험예 2. M-NO 겔의 기계적 특성 분석
본 발명의 M-NO 겔의 관절에 대한 인공 점성보충제(visco-supplements) 용도를 확인하기 위하여 동적 과도 테스트(dynamic transient test)를 통해 M-NO 겔의 파열 후 자가치유(self-healing) 특성을 분석하였다.
구체적으로 여러 사이클에 걸친 스탭-스트레인(step-strain) (ε=0.5 내지 200 %, ωrad/s, 25℃)을 측정하여 인공 점성보충제의 중요한 매개 변수인 높은 스트레인에서 망상구조 파열 후 기계적 특성의 자가치유 여부를 확인하였으며, 결과는 도 11b 및 12a에 나타내었다.
상기 결과에서 확인할 수 있는 바와 같이, M-NO 겔은 스트레스로 유발된 흐름에 따라 거의 완전한 회복을 나타내어 본 발명의 M-NO 겔이 점성보충제로서 유용히 사용될 수 있음을 확인하였다.
실험예 3. M-NO 겔의 NO 농도 의존적 기계적 특성 변화 분석
M-NO 겔의 NO 농도에 따른 기계적 특성 변화를 확인하기 위해 주파수-의존적 유변학적 매개 변수(frequency-dependent rheological parameters)를 분석하였다.
구체적으로 NO 비반응성 겔과 NO 반응성인 본 발명의 M-NO 겔의 주파수 의존적 진동 유변학적 특성(ε%, 25℃) 및 농도 의존성 유변학적 특성(ωrad/s에서 ωrad/s, ε%, 25℃)을 각주파수(angular frequency)를 측정하고 정량화하여 비교하였으며, 결과는 도 12b 및 12c에 나타내었다.
도 12b 및 12c에서 확인할 수 있는 바와 같이, NO 반응성인 M-NO 겔의 저장 모듈러스(modulus)는 NO의 농도에 따라 점진적으로 감소하여 가교제의 NO 매개 분해 시 기계적 강도의 감소를 나타낸 반면, 대조군인 NO 비반응성 겔에서는 고농도의 NO 용액에서도 저장 모듈러스에는 큰 변화가 나타나지 않았다. 즉, 본 발명의 M-NO 겔은 NO 농도의 증가에 따른 분해양상을 나타냄을 확인하였다.
실험예 4. M-NO 겔의 NO 소거능 확인
본 발명의 M-NO 겔의 NO 소거능은 수성 조건에서 NO를 방출할 수 있는 합성된 NO 공여자 Py-NO(N-diazeniumdiolates-incorporated pyrrolidine)를 사용하여 25 μM Py-NO 용액을 제조한 후, M-NO 겔 및 NO 비반응성 겔을 상기 제조된 25 μM Py-NO 용액으로 처리하고, 1시간 동안 배양한 후, 그리스 분석을 통해 상청액의 잔류 NO 수준을 정량화 하였다(548 nm에서의 흡광도를 NaNO2로 플롯된 표준 곡선과 비교하여 NO 농도 결정). 또한, 하이드로겔의 팽창 수준을 측정하여 확인하고 하기 계산식을 통해 상대적 팽창비를 계산하였으며, 결과는 도 13a, 13b, 13c 및 13d에 나타내었다.
<계산식>
- 팽창비=(Mf-Mi)/Mi
(Mf: NO 용액에서 팽창된 하이드로겔 무게, Mi: 건조된 하이드로겔의 무게)
- 상대적 팽창비=팽창비/0 h에서의 물에 의한 팽창비
도 13a, 13b, 13c 및 13d에서 확인할 수 있는 바와 같이, 본 발명의 M-NO 겔은 NO의 농도에 따라 NO 용액의 양을 크게 감소시켰으며, 대조군인 NO 비반응성 겔 대비 크게 팽창한 것을 확인할 수 있었다.
즉, 본 발명의 M-NO 겔은 농도 의존적으로 일산화질소를 효과적으로 소거하며, NO 농도에 따라 하이드로겔의 망상구조 절단에 의한 기공 크기 증가로 인한 팽창 특성을 가지므로, NO 농도에 따른 주문형 제어 전달(on-demand controlled delivery)이 가능하다는 점을 확인하였다.
실험예 5. M-NO 겔의 동시적 이중 약물 방출 확인
M-NO 겔의 NO 반응성 동시적 이중 약물 방출(simultaneous dual-stage release)에 대해서는 하기 실험을 통해 확인하였다.
구체적으로, 친수성 약물 모델인 BSA-FITC(fluorescein isothiocyanate-labeled bovine serum albumin)을 최종적으로 1 wt%가 되도록 HA-N3를 포함한 용액에 용해시켜 하이드로겔의 친수성 도메인으로 캡슐화하였으며, 소수성 약물 모델인 Nile Red는 PLA-b-PEG-N3 마이셀의 소수성 도메인으로 캡슐화하였다. 상기 친수성 및 소수성 약물 모델은 하이드로겔 형성 시 M-NO 겔에 공동-캡슐화되었다.
이후 200 μL의 M-NO 겔을 25℃에서 5 mL의 NO 용액(0, 2.5, 25 및 250 μM)에 배양하였다. 상청액은 미리 정해진 시간 간격으로 NO 용액으로 교체하고, 수득된 상청액을 동결건조를 통해 농축한 후, 형광(여기/방출 피크는 485/510 nm) 및 585 nm에서의 흡광도를 표준 곡선과 비교하여 BSA-FITC 및 Nile red 각각의 시간-의존적 NO 반응성 동시적 이중 약물 방출 프로파일을 조사하였다.
이중 약물 방출의 모식도는 도 14a에 나타내었으며, 결과는 도 14b, 14c, 14d 및 14e에 나타내었다.
도 14b, 14c, 14d 및 14e에서 확인할 수 있는 바와 같이, 본 발명의 M-NO 겔은 높은 NO 농도에서 Fickian 확산으로 인한 방출 특성을 갖는 친수성 분자 및 침식-기반 방출(erosion-based mechanism) 특성을 갖는 소수성 분자를 모두 빠르게 방출할 수 있었으나(도 14b 및 14d), 대조군인 NO 비반응성 겔은 NO 농도의 증가에도 불구하고 특별한 방출 양상을 나타내지 않았다(도 14c 및 14e).
또한, 본 발명의 M-NO 겔의 마이셀 구조체로부터 소수성 약물의 침식-기반 방출이 가능한지 여부는 하이드로겔 형성 전의 PLA-b-PEG-N3 마이셀 구조체의 평균 유체역학적(hydrodynamic) 크기와 M-NO 겔을 NO 용액(250 μM)과 함께 24 시간 배양 후 상청액에서 확인된 PLA-b-PEG-N3 마이셀 구조체의 평균 유체역학적 크기를 대비하여 확인하였으며, 결과는 도 15a 및 15b에 나타내었다.
상기 도 15a 및 15b에서 확인할 수 있는 바와 같이, 하이드로겔 형성 전 PLA-b-PEG-N3 마이셀 구조체와 유체역학적으로 유사한 크기와 형태를 가진 마이셀 구조체가 NO 용액과 함께 배양한 M-NO 겔의 상청액에서 관찰되어, 침식 기반 메커니즘(erosion-based mechanism)에 의해 소수성 약물이 방출될 수 있음을 확인하였다.
실험예 6. M-NO의 세포독성 확인
본 발명의 M-NO 및 대조군의 용량-의존성 세포독성에 대해서는 MTT assay를 통해 확인하였다.
구체적으로, RAW 264.7 세포를 96-웰 플레이트에 1x104 cell/well의 초기 밀도로 접종하고, 37℃에서 10% FBS, 100 U/mL 페니실린 및 100 μg/mL 스트렙토마이신을 포함하는 DMEM 배지에 배양하였다.
24시간 배양 후, 배지를 샘플이 포함된 신선한 배지로 교체하고, 다시 40시간 동안 배양하였다. 그 후, 세포를 세척하고 0.5 mg/mL의 MTT 용액이 포함된 배지에 4시간 동안 배양하였다. 마지막으로 배지를 200 μL DMSO로 교체하고, 570 nm에서 흡광도를 측정하여 세포 생존율을 조사하였으며, 결과는 도 16b에 나타내었다.
도 16b에서 확인할 수 있는 바와 같이, 본 발명의 M-NO 겔은 세포 생존율에 거의 영향을 주지 않아 본 발명의 M-NO의 안전성을 확인하였다.
실험예 7. M-NO의 NO 소거능 확인
본 발명의 조성물의 NO 소거능(NO-scavenging ability)을 가지는 여부 및 이에 따른 사이토카인 수준은 LPS로 자극된 NO-방출 RAW 264.7 대식세포 세포주를 사용하여 확인하였다.
(1) 농도에 따른 NO 소거능 확인
RAW 264.7 세포주를 5x104 cell/well의 밀도로 12-웰 플레이트에 접종하고 37℃에서 10% FBS, 100 U/mL 페니실린 및 100 μg/mL 스트렙토마이신을 포함하는 DMEM 배지에 배양하였다.
밤새 배양 후, 배지를 샘플이 포함된, 5 μg/mL의 LPS를 포함하는 신선한 배지로 교체하고, 다시 24시간 동안 배양하였다.
마지막으로, 배지를 원심분리(3,000 rpm, 10분, 4℃)하여 상층액을 수득한 후 96-웰 플레이트로 옮기고 그리스 분석을 통해 상청액에 남아 있는 NO 수준을 확인하였으며, 이는 도 16c에 나타내었다.
도 16c에서 확인할 수 있는 바와 같이, 본 발명의 M-NO 겔은 LPS로 자극된 RAW 264.7 세포주의 NO 수준을 25 %까지 현저하게 감소시킬 수 있음을 확인할 수 있으며, 이는 LPS 처리되지 않은 RAW 264.7에서 관찰된 값과 유사한 것을 확인할 수 있었다.
(2) 공초점 현미경을 통한 NO 소거능 확인
세포 내 NO 수준을 공초점 현미경(Confocal microscopy)으로 이미지화하여 NO 소거 능력을 평가하였다.
구체적으로, 세포를 1x105 cell/well 밀도로 6-웰 플레이트에 배치된 커버 글라스에 접종하고, 37℃에서 10% FBS, 100 U/mL 페니실린 및 100 μg/mL 스트렙토마이신을 포함하는 DMEM 배지에 배양하였다.
밤새 배양 후, 배지를 샘플(가교제의 경우 25 μg/mL, 겔의 경우 250 μg/mL)이 포함된, 5 μg/mL의 LPS를 포함하는 신선한 배지로 교체하고, 다시 24시간 동안 배양하였다.
이후 샘플 배지를 5 μm의 DAF-2 DA를 포함하는 신선한 배지로 교체하고 다시 40분 동안 배양한 후, 세포를 DPBS로 세척하고 신선한 배지와 함께 20분 동안 더 배양하였다.
이어 DPBS로 세척하고 실온의 암조건(dark condition)에서 10% 중성 포르말린(NBF)으로 처리하고, 30분 후 공초첨 현미경을 통해 관찰하였으며, 결과는 도 16d에 나타내었다.
도 16d에서 확인할 수 있는 바와 같이, LPS로 자극된 RAW 264.7 세포주에서 높은 형광 강도가 관찰되었지만 M-NO 겔 처리 후 신호가 크게 감소하는 것을 확인하여, 본 발명의 M-NO가 NO를 효율적으로 소거할 수 있음을 확인하였다.
(3) 사이토카인 수준의 정량화
NO는 중요한 전-염증 매개체(pro-inflammatory mediator)이지만 과잉 생산은 시험관 내 수준에서 TNF-α 및 IL-6과 같은 대표적인 사이토카인 수준을 증가시킨다. 따라서 본 발명의 M-NO 겔이 사이토카인 TNF-α 및 IL-6 수준을 감소시킬 수 있는지 여부를 확인하였다.
구체적으로 LPS로 자극된 RAW 264.7 세포주에 M-NO 겔 및 대조군 겔로 처리(250 μg/mL)하고 24시간 배양한 후, 세포 배지의 상청액의 전-염증성 사이토카인 TNF-α 및 IL-6을 ELISA에 의해 정량화하였으며, 결과는 도 17a 및 17b에 나타내었다.
도 17a 및 17b에서 확인할 수 있는 바와 같이, M-NO 겔 처리 후 NO로 인해 유도된 전-염증성 사이토카인 TNF-α 및 IL-6의 수준이 크게 감소하여 본 발명의 M-NO 겔이 과잉 생산된 NO를 효과적으로 소거할 수 있음을 확인하였으며, 이에 따라 염증을 감소시켜 다양한 염증성 질환을 치료할 수 있음을 확인하였다.
(4) NO 포집에 따른 M-NO 겔의 팽창 확인
LPS에 의해 자극되거나 자극되지 않은 배양된 RAW 264.7 또는 NIH/3T3 세포주에 M-NO 겔 및 대조군 겔을 처리 후 밤새 배양하고 NO 포집에 따른 M-NO 겔의 팽창 여부를 확인하였으며, 결과는 도 17c 및 17d에 나타내었다.
상기 도 17c 및 17d에서 확인할 수 있는 바와 같이, M-NO 겔은 LPS로 자극된 RAW 264.7 세포주에서 NO에 반응하여 현저하게 팽창할 수 있음을 확인하여 본 발명의 M-NO 겔이 주문형 방출에 유리한 조건을 가지고 있음을 확인하였다.
실험예 6. 류마티스 관절염 치료효과 확인 (1)
류머티스 관절염(RA) 동물모델인 콜라겐 유도 관절염(collagen-induced arthritis, CIA) 마우스에서 본 발명의 M-NO 겔의 류머티스 관절염에 대한 치료 효과를 확인하였다(도 18a).
(1) 콜라겐 유도 관절염 마우스 모델의 준비
10 mM 아세트산에 용해시킨 CII(collagen type II, 2 mg/mL) 및 CFA(complete Freund's adjuvant, 1 mg/mL) 혼합물의 유화 용액(1:1, v/v) 100 μL를 6주령 DBA/1j 마우스의 꼬리에 피하주사하여 1차 면역화하였다.
2주 후, 10 mM 아세트산에 용해시킨 CII(2 mg/mL) 및 IFA(incomplete freud''s adjuvant, 1 mg/mL) 혼합물의 유화 용액(1:1, v/v) 100 μL를 마우스의 꼬리에 피하주사하였다. 그리고 1차 면역화 4주 후 RA 모델 마우스를 무작위로 8개 군으로 분배하고 각 샘플 20 μL를 CIA 마우스의 관절 내에 주사하였다. 제자리부합 하이드로겔은 이중 주사기 시스템(하나의 시린지에는 HA-N3(2.5 wt%) 및 가교제(0.04 wt%)를 포함, 다른 시린지에는 마이셀(2 wt%) 및 Cu(I)(0.02 wt%) 포함)을 통해 주사하였다. 덱사메타손이 담지된 M-NO 겔은 1 wt%에서 하이드로겔 시스템과 일치하도록 2배 희석되었다(담지량: 5.02%, 용량: 0.5 mg/kg).
각각의 실험군은 하기와 같이 분류된다.
(A) 면역화되지 않은 건강한 마우스
(B) RA 모델 마우스를 식염수로 처리된 군
(C) RA 모델 마우스를 덱사메타손이 담지된 마이셀 구조체로 처리된 군
(D) RA 모델 마우스를 DA-NOCCL로 처리된 군
(E) RA 모델 마우스를 M-NO 겔로 처리된 군
(F) RA 모델 마우스를 대조군 겔(NO 비반응성)로 처리된 군
(G) RA 모델 마우스를 덱사메타손이 담지된 M-NO 겔로 처리된 군
(H) RA 모델 마우스를 덱사메타손이 담지된 대조군 겔(NO 비반응성)로 처리된 군
(2) 발의 부피 변화 확인 및 관절염에 대한 임상 점수 평가
RA 마우스 모델에서의 시간 경과에 따른 발 부피 변화는 각각의 RA 마우스 모델 실험군에서 식염수를 처리한 군(B)과 상대적으로 비교하여 통계적으로 분석하였으며, 결과는 도 18b에 나타내었다. 또한, 4주, 6주 및 8주에서의 대표적인 마우스 뒷발 이미지는 도 19에 나타내었다.
도 18b 및 도 19에서 확인할 수 있는 바와 같이, 본 발명의 M-NO 겔 및 덱사메타손이 담지된 M-NO 겔로 처리된 군에서는 유의미한 발의 부피 감소를 나타내었다.
또한, 시간 경과에 따른 관절염 임상점수는 4주 내지 8주 동안 임상점수를 모니터링하면서 표준 채점 방법(척도 0-5)에 따라 블라인드 테스트를 통해 평가하였으며, 결과는 도 20a 및 20b에 나타내었다. 관절염 평가에 따른 임상점수 및 평가 기준은 하기와 같다.
0: 임상 징후 없음
1: 최소 미만성 홍반/부종(1 또는 2개의 발가락에 영향)
2: 경미한 미만성 홍반/부종(3개 이상의 발가락에 영향)
3: 중증도 미만성 홍반/부종(전체 발)
4: 뚜렷한 미만성 홍반/부종(전제 발 및 발목)
5: 심한 미만성 홍반/부종(전체 발), 손가락을 구부릴 수 없음(관절유착증)
도 20a 및 20b에서 확인할 수 있는 바와 같이, 본 발명의 M-NO 겔 및 덱사메타손이 담지된 M-NO 겔로 처리된 군에서는 유의미한 임상점수의 감소를 나타내었다.
상기 결과에서 확인한 바에 의하면, 본 발명의 M-NO 겔 및 덱사메타손이 담지된 M-NO 겔은 질환의 진행을 늦출 수 있을 뿐만 아니라 관절염 증상 자체를 완화시킬 수 있다는 점을 확인할 수 있다. 특히 덱사메타손이 담지된 M-NO 겔은 거의 완전한 관절염의 증상의 완화를 나타내었다.
(3) 운동성 평가
RA 마우스 모델에서의 운동 활성을 평가하기 위해 로타로드 분석(rotarod assay)을 수행하였다.
구체적으로 1차 면역화 전, 마우스가 안정된 낙하지연(latency to fall)에 도달하기 위해 로타로드에 머무르도록 3일 동안 훈련하였다. 이후 10 rpm, 120s의 고정 속도에서 낙하지연 시간을 기록하였으며, 결과는 도 20c 및 20d에 나타내었다.
상기 도 20c 및 20d에서 확인할 수 있는 바와 같이, 본 발명의 M-NO 겔 및 덱사메타손이 담지된 M-NO 겔로 처리된 군에서는 낙하지연 시간이 증가하였으며, 특히 덱사메타손이 담지된 M-NO 겔로 처리된 군에서는 유의미한 낙하지연 시간의 증가를 나타내어 마우스의 운동성의 점진적인 개선을 확인할 수 있었다.
실험예 7. 류마티스 관절염 치료효과 확인 (2)
본 발명의 M-NO 겔의 류마티스 관절염 치료효과를 집중적으로 조사하기 위해 8주차에 일련의 추가 실험을 수행하였다.
(1) 뼈 및 관절 형태 확인
뼈 및 관절 형태는 샘플을 처리한 각 실험군의 대표적인 앞발 마이크로 컴퓨터 단층 촬영(microcomputed tomography, micro-CT) 이미지를 통해 확인하였으며, 결과는 도 21a에 나타내었다.
도 21a에서 확인할 수 있는 바와 같이, 다른 실험군과 대비하여 본 발명의 M-NO 겔 및 덱사메타손이 담지된 M-NO 겔로 처리된 군에서는 뼈의 침식이 적어 뼈의 명확한 경계를 확인할 수 있었다.
이는 본 발명의 하이드로겔이 RA 병변에서 과생산된 일산화질소의 소거로 인해 산화적/질산화적 스트레스 및 파골 세포(osteoclasts)의 상향 조절을 방지할 수 있다는 점을 나타내는 것이다.
(2) 조직학적 분석
샘플을 처리한 각 실험군의 관절 조직의 조직학적 분석(Histological assays)은 8주차에 희생된 마우스의 관절 조직을 헤마톡실린 및 에오신(H&E), 마손 삼색(masson's trichrome) 및 사프라닌-O(safranin-O)으로 염색하여 관찰하였으며, 분석 결과 및 블라인드 테스트를 통해 표준 채점 방법(척도 0-4)에 따라 평가된 연골 손상 정도는 도 21b 및 22a에 나타내었다(B: 뼈, C: 연골). 임상점수 및 평가 기준은 하기와 같다.
0: 손상 없음, 정상적인 활동
1: 단일 지점으로 제한되는 최소 미란(erosion)
2: 제한된 범위에서의 경미한/중증도의 미란
3: 뚜렷한/광범위한 미란
4: 대부분 손상
상기 도 21b 및 22a에서 확인할 수 있는 바와 같이, 본 발명의 M-NO 겔 및 덱사메타손이 담지된 M-NO 겔이 손상된 연골 및 관절강을 회복할 수 있음을 확인하였다.
(3) TNF-α 및 IL-6 수준 및 NO 농도 확인
혈청 및 발 조직액에서의 전-염증성 사이토카인인 TNF-α 및 IL-6의 수준은 8주차에 제조자의 프로토콜에 따라 ELISA를 통해 정량화하여 확인하였다. NO 수준은 그리스 분석을 통해 결정하였으며, 결과는 도 22b 내지 22e에 나타내었다.
도 22b 내지 22e에서 확인할 수 있는 바와 같이, 전-염증성 사이토카인 수준은 혈청 및 발 조직액 모두에서 본 발명의 M-NO 겔 및 덱사메타손이 담지된 M-NO 겔을 처리한 군은 유의미한 감소를 나타내었다. 특히, 덱사메타손이 담지된 M-NO 겔을 처리한 군은 정상 상태까지 크게 감소함을 확인할 수 있었다.
또한, 8주차 샘플 처리된 RA 마우스의 발 조직에서 NO 수준을 정량화한 데이터는 도 22f에 나타내었다. 상기 도 22f에서 나타낸 바와 같이, 본 발명의 M-NO 겔 및 덱사메타손이 담지된 M-NO 겔을 처리한 군은 발 조직액에서 NO 농도가 유의하게 감소함을 확인하였다.

Claims (32)

  1. 하기 화학식 1 내지 3으로 표시되는 화합물로부터 제조되는 제자리부합(in situ hybridization) 하이드로겔:
    [화학식 1]
    Figure PCTKR2022000357-appb-img-000018
    [화학식 2]
    Figure PCTKR2022000357-appb-img-000019
    [화학식 3]
    Figure PCTKR2022000357-appb-img-000020
    여기서,
    상기 R1 및 R2는 각각 독립적으로 C1-C10 알킬렌이고,
    상기 n 및 m은 각각 1 내지 1000의 정수이다.
  2. 제1항에 있어서,
    상기 R1 및 R2는 C2 알킬렌인 제자리부합 하이드로겔.
  3. 제1항에 있어서,
    상기 하이드로겔은 일산화질소를 포집하여 소거하는 것인 제자리부합 하이드로겔.
  4. 제1항에 있어서,
    상기 하이드로겔은 일산화질소와 반응하여 분해되는 것인 제자리부합 하이드로겔.
  5. 제1항에 있어서,
    상기 화학식 2로 표시되는 화합물은 자가조립에 의해 마이셀 구조체를 형성하는 것인 제자리부합 하이드로겔.
  6. 제5항에 있어서,
    상기 마이셀 구조체는 10 내지 1000 nm의 균일한 직경을 갖는 것인 제자리부합 하이드로겔.
  7. 제1항에 있어서,
    상기 하이드로겔은 상기 화학식 1로 표시되는 화합물과 상기 화학식 2 및 3으로 표시되는 화합물 간의 클릭화학 반응에 의해 제조되는 것인 제자리부합 하이드로겔.
  8. 제1항에 있어서,
    상기 하이드로겔은 소수성 약물을 더 포함하는 것인 제자리부합 하이드로겔.
  9. 제8항에 있어서,
    상기 소수성 약물은 상기 화학식 2로 표시되는 화합물의 자가조립에 의해 형성된 마이셀 구조체에 담지된 것인 제자리부합 하이드로겔.
  10. 제8항에 있어서,
    상기 소수성 약물은 항염증제인 제자리부합 하이드로겔.
  11. 제10항에 있어서,
    상기 항염증제는 덱사메타손인 제자리부합 하이드로겔.
  12. 제8항에 있어서,
    상기 소수성 약물은 상기 마이셀 구조체 전체 중량 대비 3 내지 7 중량%로 함유된 것인 제자리부합 하이드로겔.
  13. 제1항에 있어서,
    상기 하이드로겔은 소수성 약물 및 친수성 약물을 더 포함하는 것인 제자리부합 하이드로겔.
  14. 제13항에 있어서,
    상기 소수성 약물 및 친수성 약물은 표적부위에서 동시에 방출되는 것인 제자리부합 하이드로겔.
  15. 제1항에 있어서,
    상기 화학식 1 내지 3의 화합물은 표적부위에 동시-주사(co-injection)되는 것인 제자리부합 하이드로겔.
  16. 제15항에 있어서,
    상기 동시-주사는 이중 주사기 시스템(dual syringe system)에 의한 것인 제자리부합 하이드로겔.
  17. 제15항에 있어서,
    상기 동시-주사는 이중 주사기 시스템(dual syringe system)에 의한 것인 제자리부합 하이드로겔.
  18. 제1항에 있어서,
    상기 하이드로겔은 염증성 질환 치료용인 제자리부합 하이드로겔.
  19. 제18항에 있어서,
    상기 염증성 질환은 생체 내 일산화질소가 과생산되는 양상을 나타내는 질환인 제자리부합 하이드로겔.
  20. 제18항에 있어서,
    상기 염증성 질환은 류마티스 관절염인 제자리부합 하이드로겔.
  21. 제1항에 있어서,
    상기 하이드로겔은 TNF-α 및 IL-6 수준을 감소시키는 것인 제자리부합 하이드로겔.
  22. 제1항에 있어서,
    상기 하이드로겔은 점성보충제용인 제자리부합 하이드로겔.
  23. 하기 화학식 1 내지 3으로 표시되는 화합물을 포함하는 제자리부합(in situ hybridization) 하이드로겔 전구체 조성물:
    [화학식 1]
    Figure PCTKR2022000357-appb-img-000021
    [화학식 2]
    Figure PCTKR2022000357-appb-img-000022
    [화학식 3]
    Figure PCTKR2022000357-appb-img-000023
    여기서,
    상기 R1 및 R2는 각각 독립적으로 C1-C10 알킬렌이고,
    상기 n 및 m은 각각 1 내지 1000의 정수이다.
  24. 제23항에 있어서,
    상기 조성물은 소수성 약물을 더 포함하는 것인 제자리부합 하이드로겔 전구체 조성물.
  25. 제24항에 있어서,
    상기 소수성 약물은 상기 화학식 2로 표시되는 화합물의 자가조립에 의해 형성된 마이셀 구조체에 담지된 것인 제자리부합 하이드로겔 전구체 조성물.
  26. 제23항에 있어서,
    상기 조성물은 소수성 약물 및 친수성 약물을 더 포함하는 것인 제자리부합 하이드로겔 전구체 조성물.
  27. a) 하기 화학식 1로 표시되는 화합물 및 하기 화학식 3으로 표시되는 화합물을 포함하는 제1 전구체 조성물을 제조하는 단계;
    b) 하기 화학식 2로 표시되는 화합물로부터 형성된 마이셀 구조체를 포함하는 제2 전구체 조성물을 제조하는 단계; 및
    c) 상기 제1 전구체 조성물 및 제2 전구체 조성물을 동시-주사하는 단계;를 포함하는 제자리부합(in situ hybridization) 하이드로겔 제조방법:
    [화학식 1]
    Figure PCTKR2022000357-appb-img-000024
    [화학식 2]
    Figure PCTKR2022000357-appb-img-000025
    [화학식 3]
    Figure PCTKR2022000357-appb-img-000026
    여기서,
    상기 R1 및 R2는 각각 독립적으로 C1 내지 C10의 알킬렌이고,
    상기 n 및 m은 각각 1 내지 1000의 정수이다.
  28. 제27항에 있어서,
    상기 화학식 1로 표시되는 화합물은 제1 전구체 조성물 전체 질량 대비 0.02 내지 0.06 wt%;
    상기 화학식 2로 표시되는 화합물은 제2 전구체 조성물 전체 질량 대비 1.00 내지 3.00 wt%; 및
    상기 화학식 3으로 표시되는 화합물은 제1 전구체 조성물 전체 질량 대비 1.00 내지 1.50 wt%;로 포함되는 것인 제자리부합 하이드로겔 제조방법.
  29. 제27항에 있어서,
    상기 제2 전구체 조성물은 소수성 약물을 더 포함하는 것인 제자리부합 하이드로겔 제조방법.
  30. 제27항에 있어서,
    상기 제1 전구체 조성물은 친수성 약물을 더 포함하고, 제2 전구체 조성물은 소수성 약물을 더 포함하는 것인 제자리부합 하이드로겔 제조방법.
  31. 제29항 또는 제30항에 있어서,
    상기 소수성 약물은 마이셀 구조체에 담지된 것인 제자리부합 하이드로겔 제조방법.
  32. 제27항에 있어서,
    상기 동시-주사는 이중 주사기 시스템(dual syringe system)에 의한 것인 제자리부합 하이드로겔 제조방법.
PCT/KR2022/000357 2021-02-18 2022-01-10 일산화질소 감응성 하이드로겔 WO2022177151A1 (ko)

Priority Applications (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202280015533.XA CN116867837A (zh) 2021-02-18 2022-01-10 一氧化氮敏感性水凝胶
US18/277,652 US20240165128A1 (en) 2021-02-18 2022-01-10 Nitric oxide-sensitive hydrogel
EP22756357.4A EP4286453A1 (en) 2021-02-18 2022-01-10 Nitric oxide-sensitive hydrogel
JP2023548949A JP2024506399A (ja) 2021-02-18 2022-01-10 一酸化窒素感応性ヒドロゲル

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR1020210021980A KR102430034B1 (ko) 2021-02-18 2021-02-18 일산화질소 감응성 하이드로겔
KR10-2021-0021980 2021-02-18

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2022177151A1 true WO2022177151A1 (ko) 2022-08-25

Family

ID=82826745

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/KR2022/000357 WO2022177151A1 (ko) 2021-02-18 2022-01-10 일산화질소 감응성 하이드로겔

Country Status (6)

Country Link
US (1) US20240165128A1 (ko)
EP (1) EP4286453A1 (ko)
JP (1) JP2024506399A (ko)
KR (1) KR102430034B1 (ko)
CN (1) CN116867837A (ko)
WO (1) WO2022177151A1 (ko)

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2013127949A1 (en) * 2012-02-28 2013-09-06 Sanofi Functional pla-peg copolymers, the nanoparticles thereof, their preparation and use for targeted drug delivery and imaging
KR20200025379A (ko) * 2018-08-30 2020-03-10 포항공과대학교 산학협력단 일산화질소 감응성을 갖는 아크릴아마이드계 고분자를 포함하는 염증성 질환 예방 또는 치료용 약학 조성물

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR101743220B1 (ko) * 2015-10-12 2017-06-05 한국화학연구원 클릭 화학을 이용한 주입형 히알루론산 유도체 하이드로겔, 이의 제조방법 및 이를 이용한 생체 내 겔 형성방법
KR101820494B1 (ko) * 2017-03-09 2018-01-19 재단법인대구경북과학기술원 약물전달체용 양친매성 멀티 제미니 고분자 및 이를 포함하는 약물전달체

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2013127949A1 (en) * 2012-02-28 2013-09-06 Sanofi Functional pla-peg copolymers, the nanoparticles thereof, their preparation and use for targeted drug delivery and imaging
KR20200025379A (ko) * 2018-08-30 2020-03-10 포항공과대학교 산학협력단 일산화질소 감응성을 갖는 아크릴아마이드계 고분자를 포함하는 염증성 질환 예방 또는 치료용 약학 조성물

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
JUNGHONG PARK, PRAMANICK SWAPAN, PARK DONGSIK, YEO JIWON, LEE JIHYUN, LEE HAESHIN, KIM WON JONG: "Therapeutic-Gas-Responsive Hydrogel", ADVANCED MATERIALS, vol. 29, no. 44, 1 November 2017 (2017-11-01), DE , pages 1702859, XP055613335, ISSN: 0935-9648, DOI: 10.1002/adma.201702859 *
KIM TAEJEONG, SUH JEEYEON, KIM WON JONG: "Polymeric Aggregate‐Embodied Hybrid Nitric‐Oxide‐Scavenging and Sequential Drug‐Releasing Hydrogel for Combinatorial Treatment of Rheumatoid Arthritis", ADVANCED MATERIALS, vol. 33, no. 34, 1 August 2021 (2021-08-01), DE , pages 1 - 12, XP055961680, ISSN: 0935-9648, DOI: 10.1002/adma.202008793 *
SCALA ANGELA, PIPERNO ANNA, MICALE NICOLA, MINEO PLACIDO G., ABBADESSA ANTONIO, RISOLUTI ROBERTA, CASTELLI GERMANO, BRUNO FEDERICA: ""Click" on PLGA-PEG and hyaluronic acid: Gaining access to anti-leishmanial pentamidine bioconjugates : Click conjugation of Pentamidine to PLGA-PEG and hyaluronic acid", JOURNAL OF BIOMEDICAL MATERIALS RESEARCH PART B: APPLIED BIOMATERIALS, vol. 106, no. 8, 1 November 2018 (2018-11-01), US , pages 2778 - 2785, XP055961666, ISSN: 1552-4973, DOI: 10.1002/jbm.b.34058 *
YEO JIWON, LEE YEONG MI, LEE JUNSEOK, PARK DONGSIK, KIM KUNHO, KIM JIHOON, PARK JUNGHONG, KIM WON JONG: "Nitric Oxide-Scavenging Nanogel for Treating Rheumatoid Arthritis", NANO LETTERS, vol. 19, no. 10, 9 October 2019 (2019-10-09), US , pages 6716 - 6724, XP055961447, ISSN: 1530-6984, DOI: 10.1021/acs.nanolett.9b00496 *

Also Published As

Publication number Publication date
EP4286453A1 (en) 2023-12-06
JP2024506399A (ja) 2024-02-13
KR102430034B1 (ko) 2022-08-05
US20240165128A1 (en) 2024-05-23
CN116867837A (zh) 2023-10-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
WO2012008722A2 (ko) 조직 증강용 충전 조성물
WO2018128360A1 (ko) 암 및 피부질환 치료를 위한 생체 적합성 광열용 조성물
WO2020153774A1 (ko) 항체-페이로드 컨쥬게이트 제조용 화합물, 이의 용도
WO2019066586A1 (ko) 글루카곤 유사 펩타이드-2(glp-2) 유도체의 지속형 결합체
WO2010117248A2 (ko) 피에이치 민감성 그라프트 공중합체, 이의 제조방법 및 이를 이용한 고분자 마이셀
WO2021080345A1 (ko) 약물전달시스템으로서의 안구 주입형 마이크로젤 및 이를 포함하는 하이드로젤
WO2021107298A1 (ko) 가역적 솔-젤 전이 특성이 변화된 온도감응성 하이드로젤 조성물 및 이의 용도
WO2020222461A1 (ko) 면역항암 보조제
WO2022177151A1 (ko) 일산화질소 감응성 하이드로겔
WO2020116999A1 (ko) 히알루론산 가교물, 히알루론산 수화 겔 및 이들의 제조방법
WO2021194298A1 (ko) 약물 이합체를 포함하는 나노입자 및 이의 용도
WO2024167073A1 (ko) 자가팽창성 및 바이오필름 저감 특성을 가지는 형상기억고분자 및 이의 의료용 소재로서의 용도
WO2020106119A1 (en) Pharmaceutical composition comprising histone deacetylase 6 inhibitors
WO2021201654A1 (ko) Glp-2 유도체 또는 이의 지속형 결합체를 포함하는 방사선요법, 화학요법, 또는 이들의 조합으로 유발된 점막염의 예방 또는 치료용 약학적 조성물
WO2024025396A1 (ko) 신규 오리스타틴 전구약물
WO2020222541A1 (ko) 캐스파제 저해제의 프로드럭
WO2021206428A1 (ko) 로즈마린산 유도체, 로즈마린산-유래 입자 및 이를 포함하는 염증성 질환 치료용 조성물
WO2021145586A1 (ko) 국소 지방 감소용 기체 발포형 마이셀
WO2021137611A1 (ko) 나노 구조체가 부착된 면역세포
WO2020242268A1 (ko) 비오틴 모이어티와 결합된 생리활성 물질 및 이를 포함하는 경구 투여용 조성물
WO2020080912A1 (ko) 치료 효능을 개선한 핵산 변형체 및 이를 포함하는 항암용 약학 조성물
WO2021015588A1 (ko) 히알루론산 및 폴리에틸렌글리콜을 포함하는 생체적합성 하이드로겔
WO2022270865A1 (ko) 이산화탄소 발생형 나노소재
WO2022005155A1 (ko) 신규 아텔로콜라겐 및 그의 용도
WO2024219743A1 (ko) 삼중음성유방암이 다른 장기로 전이되는 것을 억제하기 위한 자연살해 세포의 표면 개질용 고분자 화합물

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 22756357

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2023548949

Country of ref document: JP

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 202280015533.X

Country of ref document: CN

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2022756357

Country of ref document: EP

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2022756357

Country of ref document: EP

Effective date: 20230830

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE