WO2021107451A1 - 암모니아의 지속 가능한 순환이 가능한 분지쇄 아미노산의 결정화 방법 - Google Patents

암모니아의 지속 가능한 순환이 가능한 분지쇄 아미노산의 결정화 방법 Download PDF

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WO2021107451A1
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chain amino
amino acid
branched chain
ammonia
branched
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박신애
신지현
유재헌
오창엽
김민종
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씨제이제일제당(주)
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    • C07C227/38—Separation; Purification; Stabilisation; Use of additives
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    • C07C229/08—Compounds containing amino and carboxyl groups bound to the same carbon skeleton having amino and carboxyl groups bound to acyclic carbon atoms of the same carbon skeleton the carbon skeleton being acyclic and saturated having only one amino and one carboxyl group bound to the carbon skeleton the nitrogen atom of the amino group being further bound to hydrogen atoms
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    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07B—GENERAL METHODS OF ORGANIC CHEMISTRY; APPARATUS THEREFOR
    • C07B2200/00—Indexing scheme relating to specific properties of organic compounds
    • C07B2200/13—Crystalline forms, e.g. polymorphs

Definitions

  • the present application relates to a method for crystallizing branched chain amino acids capable of sustainable circulation of ammonia.
  • Branched chain amino acid is an amino acid having a branched aliphatic side-chain.
  • 20 proteinogenic amino acids leucine, isoleucine ( isoleucine), and valine.
  • branched-chain amino acids play a very important role in building muscle, so they are treated as essential substances for people who train mainly for anaerobic exercise.
  • branched-chain amino acids are one of the most used health supplements after protein supplements, along with glutamine and creatine.
  • the branched-chain amino acid has a lower solubility in pure water than other hydrophilic amino acids due to the hydrophobic aliphatic side chain.
  • an increase in the concentration of the target material in the fermentation broth due to the development of a new fermentation technology is considered inevitable. That is, in the industrial fermentation process, when branched-chain amino acids having a concentration higher than the solubility of branched-chain amino acids are included in the fermentation broth, amino acid crystals will be formed in the prepared fermentation broth, which inhibits the pretreatment of the fermentation broth, or the recovery rate of branched-chain amino acid crystals may act as a reducing factor. Therefore, in order to solve this problem, there is a need for a new technology capable of enhancing the solubility of branched-chain amino acids in fermentation broth or suspension.
  • Patent Document 1 Republic of Korea Patent No. 10-1736654
  • Another object of the present application is to provide a branched chain amino acid crystal produced by the above method.
  • the present application in one aspect, (a) mixing the reaction solution containing the branched chain amino acid crystals with ammonia to obtain a solution in which the branched chain amino acid crystals are dissolved; (b) crystallizing the obtained solution to obtain a concentrated solution containing branched chain amino acid crystals; (c) obtaining a mixed gas including water vapor and ammonia, generated in the crystallization process; And (d) reusing the ammonia derived from the obtained mixed gas as the ammonia of the step (a); including, wherein the steps (b) and (c) are carried out simultaneously or sequentially, branched chain A method for crystallizing amino acids is provided.
  • the method of the present application may include a step of mixing a reaction solution containing branched chain amino acid crystals with ammonia to obtain a solution in which branched chain amino acid crystals are dissolved.
  • branched-chain amino acid refers to an amino acid having a branched aliphatic side chain, and may be at least one amino acid selected from the group consisting of leucine, isoleucine, and valine, for example, For example, it may be at least one amino acid selected from the group consisting of L-leucine, L-isoleucine, and L-valine.
  • mixing with ammonia may increase the pH of the reaction solution containing the branched chain amino acid crystals and increase the solubility of the branched chain amino acid in the reaction solution.
  • separate ammonia for example, ammonia water
  • step (c) It may be mixing ammonia derived from the mixed gas.
  • the reaction solution containing the branched-chain amino acid crystals may be in the form of a suspension in a solution in which the branched-chain amino acids are supersaturated, for example, it may include a solution or a fermentation broth containing the branched-chain amino acid crystals.
  • the solution containing the branched-chain amino acid crystals may be a mixture of branched-chain amino acid crystals and distilled water, and the fermentation broth containing the branched-chain amino acid crystals may be obtained by culturing a microorganism producing branched-chain amino acids in a medium. have.
  • the microorganism producing the branched chain amino acids is not particularly limited as long as it is a microorganism having branched chain amino acid production ability, for example, Corynebacterium , or Escherichia . It may be of the genus, specifically, Coryne Bacterium glutamicum ( Corynebacterium glutamicum ) It may be a strain or a mutant thereof, and in one embodiment, it may be a Corynebacterium glutamicum mutant having an accession number KCCM11662P, KCCM11248P or KCCM11336P.
  • the term "cultivation” means growing microorganisms in an artificially controlled environment.
  • the method for producing branched-chain amino acids using a microorganism having branched-chain amino acid-producing ability may be performed using a method widely known in the art. Specifically, the culture may be continuously cultured in a batch process, an injection batch or a repeated fed batch process, but is not limited thereto.
  • culture media for Corynebacterium sp. strains are known (eg, Manual of Methods for General Bacteriology. American Society for Bacteriology. Washington D.C., USA, 1981).
  • Sugar sources that can be used include sugars and carbohydrates such as glucose, saccharose, lactose, fructose, maltose, starch, cellulose, oils and fats such as soybean oil, sunflower oil, castor oil, coconut oil, palmitic acid, Fatty acids such as stearic acid and linoleic acid, alcohols such as glycerol and ethanol, and organic acids such as acetic acid may be included.
  • Nitrogen sources that may be used include peptone, yeast extract, broth, malt extract, corn steep liquor, soybean wheat and urea or inorganic compounds such as ammonium sulfate, ammonium chloride, ammonium phosphate, ammonium carbonate and ammonium nitrate.
  • the nitrogen source may also be used individually or as a mixture, but is not limited thereto.
  • the phosphorus that may be used may include potassium dihydrogen phosphate or dipotassium hydrogen phosphate or the corresponding sodium-containing salt.
  • the culture medium may contain a metal salt such as magnesium sulfate or iron sulfate necessary for growth. Additionally, essential growth substances such as amino acids and vitamins may be used. In addition, precursors suitable for the culture medium may be used. The above-mentioned raw materials may be added batchwise or continuously by a method suitable for the culture during the culture process. However, it is not limited thereto.
  • the pH of the solution in which the branched chain amino acid crystal obtained in step (a) is dissolved may be 9 to 12.
  • the pH of the branched chain amino acid solution is, for example, 9 to 11.5, 9 to 11, 9 to 10.5, 9 to 10.0, 9, to 9.5, 9.5 to 12.0, 9.5 to 11.5, 9.5 to 11.0, or 9.5 to 10.5 , 9.5 to 10, 10 to 12.0, 10 to 11.5, 10 to 11.0, or may be in the range of 10 to 10.5, it can be appropriately adjusted according to the type of amino acid, other reaction conditions, etc.
  • the solution in which the branched chain amino acid crystals are dissolved may be changed to a transparent solution in suspension as the branched chain amino acid crystals are dissolved.
  • the method of the present application may include crystallizing a solution in which the obtained branched-chain amino acid crystals are dissolved to obtain a concentrate containing the branched-chain amino acid crystals.
  • crystallization of the branched chain amino acid solution may be applied to a conventional technique known in the art.
  • the crystallization may be accompanied by evaporation of the solvent, and the temperature during the crystallization process is 60 to 90 °C, 60 to 85 °C, 60 to 80 °C, 60 to 75 °C, 60 to 70 °C, 60 to 65 °C, 70 to 90 °C, 70 to 85 °C, 70 to 80 °C, 70 to 75 °C, 75 to 90 °C, 75 to 85 °C, or 75 to 80 °C.
  • the crystallization may be performed by a crystallization apparatus without limitation in its configuration and structure, as long as the object of the present application can be achieved.
  • the concentrate contains a high concentration of branched chain amino acids, and the concentration of the branched chain amino acids is, for example, 40 to 800 g/L, 55 to 750 g/L, 70 to 700 g/L, 85 to 650 g/L, 100 to It may be 600 g/L, 115 to 550 g/L, 130 to 500 g/L, 145 to 450 g/L, 160 to 400 g/L, 175 to 350 g/L, or 190 to 300 g/L, but this is on the scale of the industrialization process. The enemy can be changed accordingly.
  • the branched chain amino acid concentration of the concentrate is 1.0 to 2.0 times, 1.0 to 1.8 times, 1.0 to 1.7 times, 1.0 compared to the branched chain amino acid concentration of the reaction solution comprising the branched chain amino acid crystal of step (a) to 1.6 times, 1.2 to 2.0 times, 1.2 to 1.8 times, 1.2 to 1.7 times, 1.2 to 1.6 times, 1.3 to 2.0 times, 1.3 to 1.8 times, 1.3 to 1.7 times, 1.3 to 1.6 times, 1.4 to 2.0 times, 1.4 to 1.8 times, 1.4 to 1.7 times, or 1.4 to 1.6 times, but is not limited thereto.
  • the concentrate may be changed to a suspension form due to increased turbidity of the solution as branched chain amino acid crystals are formed again by crystallization of a transparent branched chain amino acid solution.
  • the method of the present application may include obtaining a mixed gas including water vapor and ammonia generated in the crystallization process.
  • the step may be carried out simultaneously or sequentially with the step of obtaining a concentrate comprising the aforementioned branched chain amino acid crystals, for example, if the above step can be performed, the composition and structure It can be carried out by any ammonia recovery device without limitation.
  • the step may be carried out until the pH of the solution in which the branched chain amino acid crystal of step (b) is dissolved becomes 5.5 to 8.0, and specifically, the pH of the solution 5.5 to 7.5, 5.5 to 7.0, 5.5 to 6.5, 6.0 to 8.0, 6.0 to 7.5, 6.0 to 7.0, 6.0 to 6.5, 6.5 to 8.0, 6.5 to 7.5, 6.5 to 7.0, or 7.0.
  • the pH of the solution 5.5 to 7.5, 5.5 to 7.0, 5.5 to 6.5, 6.0 to 8.0, 6.0 to 7.5, 6.0 to 7.0, 6.0 to 6.5, 6.5 to 8.0, 6.5 to 7.5, 6.5 to 7.0, or 7.0.
  • the mixed gas may be a gas in a vapor state in which water vapor and ammonia are mixed, and the composition ratio of the mixed gas is dominantly influenced by the gas-liquid equilibrium system of water-ammonia-branched chain ammonia. It may have various distributions depending on the internal temperature and pressure conditions.
  • the method of the present application may include reusing ammonia derived from the obtained mixed gas as ammonia in step (a).
  • the step may be to reuse the ammonia in a vapor state, or to reuse the vapor in a compressed or condensed liquid state.
  • it may further include the step of condensing or compressing the obtained mixed gas to convert ammonia in the mixed gas to a liquid state, for example, condensing the mixed gas using a cooler or using a compressor It may be used to compress the mixed gas, or to use the cooler and the compressor at the same time.
  • the above step can be performed, it may be performed by a compressor without limitation in its configuration and structure.
  • the above step may be repeated until a high concentration of branched chain amino acid concentrate can be obtained.
  • the step may be performed 2 to 50 times, 2 to 45 times, 2 to 40 times, 2 to 35 times, 2 to 30 times, 2 to 25 times, 2 to 20 times, 2 to 15 times, 2 to 10 times. Times, or may be repeated 2 to 5 times, but is not limited thereto.
  • the method of the present application includes the step of reusing ammonia derived from the mixed gas obtained in step (c) as the ammonia of step (a), so that it does not require a large amount of pH adjusting material and is economical and branched-chain amino acid. It can improve the crystallization efficiency and can be used in an environmentally friendly way by reducing the generation of salt waste that is difficult to sustainably circulate.
  • the method of the present application may further include, between steps (a) and (b), filtering the solution in which the branched chain amino acid crystals are dissolved, thereby removing the biomass in the solution. have.
  • the method of the present application may further include, between steps (a) and (b), adding activated carbon to the solution in which the branched chain amino acid crystals are dissolved to remove the colored substances in the solution.
  • ammonia generated in a plurality of crystallization processes could be obtained with a high level of recovery, and the recovered ammonia, for example, aqueous ammonia, could be reused to dissolve the branched chain amino acid crystals present in the reaction solution.
  • the method can continuously produce branched-chain amino acid crystals based on the crystallization process without a separate pH adjusting agent, and thus can improve the production efficiency of branched-chain amino acid crystals.
  • the method of the present application may further include, after step (b), separating the branched chain amino acid crystals from the concentrate containing the branched chain amino acid crystals of the step (b).
  • Separating the branched chain amino acid crystal may be performed, for example, between steps (b) and (c), between steps (c) and (d), or after step (d). And, it may be made simultaneously with step (c) or step (d), but if it is after step (b), it may be made at any step regardless of the order of steps (c) and (d).
  • the separation of the branched chain amino acid crystals from the concentrate includes, for example, solid-liquid separation of the concentrate containing the branched chain amino acid crystals to obtain a wet crystal of branched chain amino acids; and drying the obtained wet crystal to obtain branched chain amino acid crystals, but related to the separation and purification of amino acid crystals, conventional techniques known in the art may be applied without limitation.
  • the present application is another aspect, (a) mixing the reaction solution containing the branched chain amino acid crystals with ammonia to obtain a solution in which the branched chain amino acid crystals are dissolved; (b) crystallizing the obtained solution to obtain a concentrated solution containing branched chain amino acid crystals; (c) obtaining a mixed gas including water vapor and ammonia, generated in the crystallization process; And (d) reusing the ammonia derived from the obtained mixed gas as the ammonia of the step (a); including, wherein the steps (b) and (c) are carried out simultaneously or sequentially, branched chain Branched chain amino acid crystals produced by a method for crystallizing amino acids are provided.
  • the crystallization method of the branched chain amino acid is as described above.
  • the method for crystallizing branched-chain amino acids according to the present application obtains ammonia, which was first added to increase the solubility of branched-chain amino acids in a vapor state during the crystallization process, and reuses it, thereby improving the production efficiency of branched-chain amino acid crystals, Production costs can be reduced because a large amount of pH adjusting material and additional neutralization process are not required.
  • the method for crystallizing branched chain amino acids according to the present application can be utilized as an environmentally friendly method by further reducing the generation of salt wastes that are difficult to sustain sustainable circulation.
  • L-valine, L-isoleucine, and L-leucine products with a purity of 98% or more were used, and CJ CheilJedang products were used as the branched chain amino acid products.
  • water tertiary distilled water prepared by our was used, and 26% (v/v) ammonia water and 98% (v/v) sulfuric acid were purchased from Daejung Hwageum and used.
  • 0.1M aqueous nitric acid solution and 0.02M aqueous dipicolinic acid solution for high-performance liquid chromatography (HPLC) analysis were purchased from Sigma-Aldrich (US) and used.
  • the concentration of the branched-chain amino acid solution and the purity of the branched-chain amino acid crystals were analyzed using high-performance liquid chromatography (model DIONEX Ultimate 3000 system, Thermo Scientific, US), and the analysis conditions were as follows:
  • ammonia concentration in the branched-chain amino acid solution was performed using ion chromatography (model 930 compact IC Flex, Metrohm, Switzerland), and the analysis conditions were as follows:
  • the solubility of branched-chain amino acids was measured in a 1 L jacketed reactor made of glass. After mixing distilled water and ammonia water in various ratios in a 1 L jacketed reactor, an excess of branched-chain amino acid crystals was added and stirred, thereby preparing a reaction solution containing branched-chain amino acid crystals. Thereafter, while the internal temperature of the reactor was kept constant at 30° C. using a refrigeration/heating circulation device (model F35, Julabo, Germany), this condition was maintained for at least 12 hours with stirring.
  • Crystallization was performed a total of 5 times under the same process conditions for each condition.
  • ammonia water was added to a solution containing BCAA crystals prepared by mixing BCAA crystals and distilled water to dissolve the entire BCAA crystals.
  • the recovered ammonia water was added to the reaction solution containing BCAA crystals to dissolve BCAA crystals (experimental group).
  • a control group a group in which 26% (v/v) aqueous ammonia was added to a reaction solution containing BCAA crystals without a recovery process of ammonia water, and then the pH was readjusted to 7 with 98% (v/v) sulfuric acid. was used.
  • Crystallization and ammonia recovery is a crystallizer comprising an injection unit, a pH control unit, a heating circulator and an outlet into which the crystallization feed is injected; a vapor recovery device including an injection unit into which the recovered ammonia water is injected, a cooling circulator and an outlet; And a device having a structure including a compressor between the vapor recovery device in the crystallizer was used.
  • the crystallization feed refers to a concentrate containing branched chain amino acid crystals obtained in the first crystallization process, and the crystallization was carried out in a glass material 20 L jacketed reactor, and to prevent scaling in the heat exchange unit, the jacket The silver was installed only up to the height of the point where the volume of the internal liquid was 10 L.
  • the jacket area was filled with tertiary distilled water whose temperature was controlled by a refrigeration/heating circulation device (model F35, Julabo, Germany), and the temperature was maintained at 80° C. during the crystallization process.
  • Agitation of the internal reaction solution was carried out using a stirrer (model RW-20, IKA, Germany) capable of controlling the rotation speed with a 4-blade impeller made of Teflon, and the stirring speed was maintained at 200 rpm while crystallization was in progress.
  • the pressure reduction inside the reactor was carried out using a compressor connected by a pipe, and an electronic vacuum controller (model NVC 2300-A, Eyela, Japan) was installed between the compressor and the crystallizer to control the pressure. adjusted.
  • the pressure inside the crystallizer was maintained at 100 mbar.
  • the ammonia recovery unit consisted of a 20 L jacketed pressure vessel made of stainless steel that can store up to 20 bar, and was cooled with cooling water at 4°C supplied to its own facility. At this time, the recovery of ammonia was carried out until the pH inside the crystallizer became 5.5 to 8.0.
  • the concentration of the final concentrate was adjusted to be 1.5 times the concentration of the reaction solution containing BCAA crystals before ammonia was added.
  • the crystallization process is terminated and the concentrate in the reactor is recovered through a discharge pipe disposed below. Thereafter, the recovered concentrate was subjected to solid-liquid separation for 5 min at a speed of 2000 rpm using a centrifugal basket separator (Model H-122, Kokusan, Japan) equipped with a cotton filter. If necessary, a washing process was performed at the beginning of the separation using distilled water. Thereafter, the obtained wet crystal was dried in an oven dryer at 80° C. until there was no change in weight to obtain BCAA crystals.
  • Corynebacterium glutamicum a strain that produces L-leucine, a mutant (accession number: KCCM11662P), a strain that produces L-isoleucine, a Corynebacterium glutamicum mutant (accession number: KCCM11248P) , and a Corynebacterium glutamicum mutant strain (Accession No.: KCCM11336P), which is a strain producing L-valine, was used to prepare a fermentation broth containing L-leucine, L-isoleucine and L-valine, respectively.
  • the pre-culture medium was dispensed into a 500 mL shaking Erlenmeyer flask, autoclaved at 121°C for 15 minutes, inoculated with each strain, and cultured for 24 hours in a rotary stirrer while stirring at 33°C at 200 rpm. did.
  • the 5 L fermenter was filled with 3 L of the seed culture medium and autoclaved at 121° C. for 30 minutes, the pH was adjusted to 7.0, and 4% of the pre-culture was inoculated with 800 rpm at 33° C. and an aeration volume of 0.5 vvm.
  • the seed culture was performed by culturing until the OD value reached 20.
  • Seed culture medium Main culture medium Glucose (g/l) 5.0 10.1 40.2 MgSO 4 (g/l) 0.5 0.5 4.2 Yeast Extract (g/l) 5 10 3.2 KH 2 PO 4 2 3 3 Ammonium Sulfate (g/l) 6.3 NH 4 Cl (g/l) 0.5 One NaCl (g/l) 0.5 0.5 Na 2 HPO 4 (g/l) 4.07 5.07
  • biomass such as cells was removed from the solution in which BCAA crystals were dissolved using a microfiltration device equipped with a 0.1 ⁇ m microfiltration membrane (model Pellicon 2, Merck, US), and for removal of colored substances, the After adding 10 wt% of powdered activated carbon (model YL303, Yuanli, China) compared to BCAA to the permeate, the mixture was stirred at 60° C. for 30 minutes. Thereafter, activated carbon was removed from the BCAA solution through primary vacuum filtration using a 7 ⁇ m filtration membrane, and residual activated carbon was further removed through secondary vacuum filtration using a 0.45 ⁇ m filtration membrane.
  • powdered activated carbon model YL303, Yuanli, China
  • L-leucine purification was repeated 5 times from the fermentation broth having an L-leucine concentration of 60 g/L containing L-leucine crystals prepared in (1) of Example 3 above.
  • the pH was adjusted to 10 by adding the recovered ammonia water (however, the aqueous ammonia reagent) to 20 L of the fermentation broth containing L-leucine crystals, and after dissolving the entire amount of L-leucine, the biomass was removed through microfiltration. . Thereafter, the microfiltration permeate was treated with powdered activated carbon to separate colored substances. Thereafter, concentrated crystallization of the filtrate was carried out to a concentration of 90 g/L, and the concentrate containing L-leucine crystals was separated into solid and liquid using a basket filter. At this time, washing was performed using 20 vol% of tertiary distilled water based on the concentrate containing L- leucine crystals.
  • the weight of the finally recovered crystals through drying was 1.1 kg on average 5 times, and the purity of the crystals was 98.4% on average 5 times.
  • L-isoleucine Purification of L-isoleucine was repeated 5 times from the fermentation broth having an L-isoleucine concentration of 90 g/L containing L-isoleucine crystals prepared in (1) of Example 3 above.
  • the recovered ammonia water (however, at first, ammonia water reagent) is added to adjust the pH to 10, the entire amount of L-isoleucine is dissolved, and the biomass is filtered through microfiltration. removed. Thereafter, the microfiltration permeate was treated with activated carbon powder to separate colored substances.
  • the weight of the crystals finally recovered through drying was 1.7 kg on average 5 times, and the purity of the crystals was 98.6% on average 5 times.
  • L-valine purification was repeated 5 times from the fermentation broth having an L-valine concentration of 150 g/L containing L-valine crystals prepared in (1) of Example 3 above.
  • the recovered ammonia water (however, initially, aqueous ammonia reagent) was added to adjust the pH to 10, and after dissolving the entire amount of L-valine, the biomass was removed through microfiltration. Thereafter, the microfiltration permeate was treated with powdered activated carbon to separate colored substances. Thereafter, concentrated crystallization of the filtrate was carried out to a concentration of 225 g/L, and the concentrate containing L-valine crystals was separated into solid and liquid using a basket filter. At this time, washing was performed using 20 vol% of tertiary distilled water based on the concentrate containing L-valine crystals.
  • the weight of the finally recovered crystals through drying was 3.0 kg on average 5 times, and the purity of the crystals was 98.4% on average 5 times.

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Abstract

본 출원은 암모니아의 지속 가능한 순환이 가능한 분지쇄 아미노산의 결정화 방법, 및 상기 방법에 의해 생산된 분지쇄 아미노산 결정을 제공한다.

Description

암모니아의 지속 가능한 순환이 가능한 분지쇄 아미노산의 결정화 방법
본 출원은 암모니아의 지속 가능한 순환이 가능한 분지쇄 아미노산의 결정화 방법에 관한 것이다.
분지쇄 아미노산(Branched chain amino acid; BCAA)은 분지가 있는 지방족 측쇄(Aliphatic side-chain)를 갖는 아미노산으로서, 20종의 단백질원 아미노산 (Proteinogenic amino acid) 중에는 루이신(leucine), 이소루이신(isoleucine), 및 발린(valine)이 여기에 해당한다. 단백질원으로서 분지쇄 아미노산은 근육을 형성하는데 매우 중요한 역할을 하기 때문에 무산소 운동 위주의 트레이닝을 하는 사람들에게 필수적인 물질로 취급된다. 실제로, 분지쇄 아미노산은 글루타민, 크레아틴 등과 함께 단백질 보충제 다음으로 가장 많이 이용되는 헬스 보조제 중 하나이다.
한편, 분지쇄 아미노산은 소수성 지방족 측쇄로 인해 순수한 물에서의 용해도가 다른 친수성 아미노산들에 비해 낮은 편이다. 특히, 새로운 발효 기술의 개발로 인한 발효액 내 타겟 물질의 농도 상승은 필연적인 것으로 여겨지고 있다. 즉, 산업적 발효 공정에서 분지쇄 아미노산의 용해도 이상의 농도의 분지쇄 아미노산이 발효액 내 포함될 경우, 상기 제조된 발효액에는 아미노산 결정이 형성되어 있을 것이며, 이는 발효액의 전처리를 저해하거나, 분지쇄 아미노산 결정의 회수율을 감소시키는 요인으로 작용할 수 있다. 따라서, 이러한 문제점을 해결하기 위하여, 발효액 또는 현탁액 내 분지쇄 아미노산의 용해도를 증진시킬 수 있는 새로운 기술이 필요한 실정이다.
또한, 분지쇄 아미노산을 결정화하는 방법으로 사용되는 중화 재결정화 방법 등에서는 다량의 pH 조절 물질을 필요로 하여 결정화 효율이 낮고 지속 가능한 순환이 어려운 염 폐기물을 생성하여 환경적 문제를 야기하는 바, 결정화 효율이 높으면서도 환경 친화적인 새로운 결정화 공정 개발이 필요하다.
[선행기술문헌]
[특허문헌]
(특허문헌 1) 대한민국 등록특허 제10-1736654호
본 출원의 일 목적은 암모니아의 지속 가능한 순환이 가능한, 분지쇄 아미노산의 결정화 방법을 제공하는 것이다.
본 출원의 또 다른 목적은 상기 방법에 의해 생산된 분지쇄 아미노산 결정을 제공하는 것이다.
출원에서 개시된 각각의 설명 및 실시형태는 각각의 다른 설명 및 실시 형태에도 적용될 수 있다. 즉, 본 출원에서 개시된 다양한 요소들의 모든 조합이 본 출원의 범주에 속한다. 또한, 하기 기술된 구체적인 서술에 의하여 본 출원의 범주가 제한된다고 볼 수 없다.
본 출원은 일 양상으로, (a) 분지쇄 아미노산 결정을 포함하는 반응액과 암모니아를 혼합하여 상기 분지쇄 아미노산 결정이 용해된 용해액을 수득하는 단계; (b) 상기 수득된 용해액을 결정화하여 분지쇄 아미노산 결정을 포함하는 농축액을 수득하는 단계; (c) 상기 결정화 과정에서 생성된, 수증기 및 암모니아를 포함하는 혼합 기체를 수득하는 단계; 및 (d) 상기 수득한 혼합 기체로부터 유래한 암모니아를 상기 (a) 단계의 암모니아로 재사용하는 단계;를 포함하고, 상기 (b) 단계 및 (c) 단계는 동시 또는 순차적으로 실시되는, 분지쇄 아미노산의 결정화 방법을 제공한다.
본 출원의 분지쇄 아미노산의 결정화 방법을 각각의 단계별로 상세하게 설명하면, 다음과 같다.
우선, 본 출원의 방법은 분지쇄 아미노산 결정을 포함하는 반응액과 암모니아를 혼합하여 분지쇄 아미노산 결정이 용해된 용해액을 수득하는 단계를 포함할 수 있다.
본 출원에서 용어, "분지쇄 아미노산"은 분지가 있는 지방족 측쇄를 갖는 아미노산을 지칭하는 것으로서, 루이신, 이소루이신, 및 발린으로 이루어진 군에서 선택되는 적어도 어느 하나의 아미노산일 수 있고, 예를 들어, L-루이신, L-이소루이신, 및 L-발린으로 이루어진 군에서 선택되는 적어도 하나의 아미노산일 수 있다.
상기 단계에서, 암모니아와의 혼합은 분지쇄 아미노산 결정을 포함하는 반응액의 pH를 증가시키고, 반응액 내 분지쇄 아미노산의 용해도를 증가시킬 수 있다. 상기 암모니아에 있어서, 최초의 공정에서는 결정화 피드(Crystallization Feed)를 생성하기 위하여, 별도의 암모니아, 예를 들어, 암모니아수를 반응액과 혼합하는 것일 수 있으며, 이후의 공정에서는 (c) 단계로부터 수득한 혼합 기체로부터 유래한 암모니아를 혼합하는 것일 수 있다.
일 구현예에 있어서, 분지쇄 아미노산 결정을 포함하는 반응액은 분지쇄 아미노산이 과포화된 용액으로 현탁액 형태인 것일 수 있으며, 예를 들어, 분지쇄 아미노산 결정을 포함하는 용액 또는 발효액을 포함할 수 있다.
상기 분지쇄 아미노산 결정을 포함하는 용액은 분지쇄 아미노산 결정 및 증류수를 혼합한 용액일 수 있고, 상기 분지쇄 아미노산 결정을 포함하는 발효액은 분지쇄 아미노산을 생산하는 미생물을 배지에서 배양하여 수득되는 것일 수 있다.
상기 분지쇄 아미노산을 생산하는 미생물은 분지쇄 아미노산 생산능이 있는 미생물이면 특별히 제한이 없으며, 예를 들어, 코리네박테리움(Corynebacterium) 속 또는 에스케리키아(Escherichia) 속일 수 있고, 구체적으로, 코리네박테리움 글루타미쿰(Corynebacterium glutamicum) 균주 또는 이의 변이주일 수 있고, 일 구현예에 있어서, 수탁번호 KCCM11662P, KCCM11248P 또는 KCCM11336P를 갖는 코리네박테리움 글루타미쿰 변이주일 수 있다.
본 출원에서 용어, "배양"은 미생물을 적당히 인공적으로 조절한 환경조건에서 생육시키는 것을 의미한다. 본 출원에서 분지쇄 아미노산 생산능을 가지는 미생물을 이용한 분지쇄 아미노산 생산 방법은 당업계에 널리 알려져 있는 방법을 이용하여 수행할 수 있다. 구체적으로, 상기 배양은 배치 공정, 주입 배치 또는 반복 주입 배치 공정(fed batch or repeated fed batch process)에서 연속식으로 배양할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
배양에 사용되는 배지는 적절한 방식으로 특정 균주의 요건을 충족해야 한다. 예를 들어, 코리네박테리움 속 균주에 대한 배양 배지는 공지되어 있다(예를 들면, Manual of Methods for General Bacteriology. American Society for Bacteriology. Washington D.C., USA, 1981). 사용될 수 있는 당원으로는 글루코즈, 사카로즈, 락토즈, 프락토즈, 말토즈, 전분, 셀룰로즈와 같은 당 및 탄수화물, 대두유, 해바라기유, 피마자유, 코코넛유 등 과 같은 오일 및 지방, 팔미트산, 스테아린산, 리놀레산과 같은 지방산, 글리세롤, 에탄올과 같은 알코올, 아세트산과 같은 유기산이 포함될 수 있다. 이들 물질은 개별적으로 또는 혼합물로서 사용될 수 있으며, 이에 제한되는 것은 아니다. 사용될 수 있는 질소원으로는 펩톤, 효모 추출물, 육즙, 맥아 추출물, 옥수수 침지액, 대두밀 및 요소 또는 무기 화합물, 예를 들면 황산암모늄, 염화암모늄, 인산암모늄, 탄산 암모늄 및 질산암모늄이 포함될 수 있다. 질소원 또한 개별적으로 또는 혼합물로서 사용할 수 있으며, 이에 제한되는 것은 아니다. 사용될 수 있는 인원으로는 인산이수소칼륨 또는 인산수소이칼륨 또는 상응하는 나트륨-함유 염이 포함될 수 있다.
또한, 배양 배지는 성장에 필요한 황산마그네슘 또는 황산철과 같은 금속염을 함유할 수 있다. 추가적으로, 아미노산 및 비타민과 같은 필수 성장 물질이 사용될 수 있다. 또한, 배양 배지에 적절한 전구체들이 사용될 수 있다. 상기된 원료들은 배양과정에서 배양물에 적절한 방식에 의해 회분식으로 또는 연속식으로 첨가될 수 있다. 그러나, 이에 제한되는 것은 아니다.
일 구현예에 있어서, 상기 (a) 단계에서 수득된 분지쇄 아미노산 결정이 용해된 용해액의 pH는 9 내지 12일 수 있다. 상기 용해액의 pH가 9 이하인 경우에는 용해액 내 분지쇄 아미노산 결정이 존재하여, 용해액의 결정화 효율을 감소시킬 수 있다. 상기 분지쇄 아미노산 용해액의 pH는 예를 들어, 9 내지 11.5, 9 내지 11, 9 내지 10.5, 9 내지 10.0, 9, 내지 9.5, 9.5 내지 12.0, 9.5 내지 11.5, 9.5 내지 11.0, 또는 9.5 내지 10.5, 9.5 내지 10, 10 내지 12.0, 10 내지 11.5, 10 내지 11.0, 또는 10 내지 10.5의 범위를 갖는 것일 수 있으나, 아미노산의 종류, 기타 반응 조건 등에 따라 적절하게 조절 가능하다.
일 구현예에 있어서, 상기 분지쇄 아미노산 결정이 용해된 용해액은 분지쇄 아미노산 결정이 용해됨에 따라 현탁액에서 투명한 용액의 형태로 변화된 것일 수 있다.
이후, 본 출원의 방법은 상기 수득된 분지쇄 아미노산 결정이 용해된 용해액을 결정화하여 분지쇄 아미노산 결정을 포함하는 농축액을 수득하는 단계를 포함할 수 있다.
상기 단계에서, 분지쇄 아미노산 용해액의 결정화는 당업계에 알려진 통상의 기술이 적용될 수 있다. 예를 들어, 상기 결정화는 용매의 증발을 수반하는 것일 수 있고, 결정화 공정이 진행되는 동안 온도는 60 내지 90℃, 60 내지 85℃, 60 내지 80℃, 60 내지 75℃, 60 내지 70℃, 60 내지 65℃, 70 내지 90℃, 70 내지 85℃, 70 내지 80℃, 70 내지 75℃, 75 내지 90℃, 75 내지 85℃, 또는 75 내지 80℃일 수 있다. 또한, 상기 결정화는 본 출원의 목적을 달성할 수 있다면 그 구성 및 구조에 제한이 없는 결정화 장치에 의해 수행될 수 있다.
상기 농축액은 분지쇄 아미노산을 고농도로 함유하고 있으며, 상기 분지쇄 아미노산의 농도는 예를 들어, 40 내지 800g/L, 55 내지 750g/L, 70 내지 700g/L, 85 내지 650g/L, 100 내지 600g/L, 115 내지 550g/L, 130 내지 500g/L, 145 내지 450g/L, 160 내지 400g/L, 175 내지 350g/L, 또는 190 내지 300g/L일 수 있으나, 이는 산업화 공정의 규모에 따라 적의 변경 가능하다.
일 구현예에 있어서, 상기 농축액의 분지쇄 아미노산 농도는 (a) 단계의 분지쇄 아미노산 결정을 포함하는 반응액의 분지쇄 아미노산 농도 대비 1.0 내지 2.0배, 1.0 내지 1.8배, 1.0 내지 1.7배, 1.0 내지 1.6배, 1.2 내지 2.0배, 1.2 내지 1.8배, 1.2 내지 1.7배, 1.2 내지 1.6배, 1.3 내지 2.0배, 1.3 내지 1.8배, 1.3 내지 1.7배, 1.3 내지 1.6배, 1.4 내지 2.0배, 1.4 내지 1.8배, 1.4 내지 1.7배, 또는 1.4 내지 1.6배일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
일 구현예에 있어서, 상기 농축액은 투명한 분지쇄 아미노산 용해액의 결정화에 의하여 다시 분지쇄 아미노산 결정이 형성됨에 따라 용액의 탁도가 증가하여 현탁액의 형태로 변화된 것일 수 있다.
본 출원의 방법은 상기 결정화 과정에서 생성된, 수증기 및 암모니아를 포함하는 혼합 기체를 수득하는 단계를 포함할 수 있다.
일 구현예에 있어서, 상기 단계는 전술한 분지쇄 아미노산 결정을 포함하는 농축액을 수득하는 단계와 동시 또는 순차적으로 실시되는 것일 수 있으며, 예를 들어, 상기 단계를 수행할 수 있다면 그 구성 및 구조에 제한이 없는 암모니아 회수 장치에 의해 수행될 수 있다.
일 구현예에 있어서, 상기 단계는 전술한 상기 (b) 단계의 분지쇄 아미노산 결정이 용해된 용해액의 pH가 5.5 내지 8.0이 될 때까지 실시하는 것일 수 있고, 구체적으로, 상기 용해액의 pH가 5.5 내지 7.5, 5.5 내지 7.0, 5.5 내지 6.5, 6.0 내지 8.0, 6.0 내지 7.5, 6.0 내지 7.0, 6.0 내지 6.5, 6.5 내지 8.0, 6.5 내지 7.5, 6.5 내지 7.0, 또는 7.0이 될 때까지 실시하는 것일 수 있다.
또한, 상기 혼합 기체는 수증기와 암모니아가 혼합되어 있는 증기 상태의 기체일 수 있으며, 상기 혼합 기체의 조성비는 물-암모니아-분지쇄 암모니아의 기액상 평형계에 지배적인 영항을 받기 때문에, 결정화 장치의 내부 온도 및 압력 조건에 따라 다양한 분포를 가질 수 있다.
본 출원의 방법은 상기 수득한 혼합 기체로부터 유래한 암모니아를 상기 (a) 단계의 암모니아로 재사용하는 단계를 포함할 수 있다.
일 구현예에 있어서, 상기 단계는 상기 암모니아를 증기 상태로 재사용하거나, 상기 증기가 압축 또는 응축된 액체 상태로 재사용하는 것일 수 있다.
상기 단계에 앞서서, 수득된 혼합 기체를 응축 또는 압축하여, 혼합기체 내 암모니아를 액체 상태로 전환시키는 단계를 추가로 포함할 수 있으며, 예를 들어, 냉각기를 사용하여 혼합 기체를 응축하거나, 압축기를 사용하여 혼합 기체를 압축하거나, 상기 냉각기와 압축기를 동시에 사용하는 것일 수 있다. 또한, 예를 들어, 상기 단계를 수행할 수 있다면 그 구성 및 구조에 제한이 없는 압축기 등에 의해 수행될 수 있다.
일 구현예에 있어서, 상기 단계는 고농도의 분지쇄 아미노산 농축액을 수득할 수 있을 때까지 반복 실시될 수 있다. 예를 들어, 상기 단계는 2 내지 50회, 2 내지 45회, 2 내지 40회, 2 내지 35회, 2 내지 30회, 2 내지 25회, 2 내지 20회, 2 내지 15회, 2 내지 10회, 또는 2 내지 5회 반복 실시될 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
본 출원의 방법은 (c) 단계에서 수득한 혼합 기체로부터 유래한 암모니아를 상기 (a) 단계의 암모니아로 재사용하는 단계를 포함함으로써, 다량의 pH 조절 물질을 필요로 하지 않아 경제적이고, 분지쇄 아미노산 결정화 효율을 향상시킬 수 있으며, 지속 가능한 순환이 어려운 염 폐기물 생성을 감소시켜 친환경적인 방법으로 활용될 수 있다.
또한, 본 출원의 방법은 상기 (a) 단계와 (b) 단계 사이에, 상기 분지쇄 아미노산 결정이 용해된 용해액을 미세 여과하여, 용해액 내 바이오매스를 제거하는 단계를 추가로 포함할 수 있다.
또한, 본 출원의 방법은 상기 (a) 단계와 (b) 단계 사이에, 상기 분지쇄 아미노산 결정이 용해된 용해액에 활성탄을 첨가하여, 용해액 내 유색 물질을 제거하는 단계를 추가로 포함할 수 있다.
일 실시예에 따르면, 다수 회의 결정화 과정에서 생성되는 암모니아를 높은 수준의 회수율로 수득할 수 있었으며, 상기 회수된 암모니아, 예를 들어, 암모니아수는 반응액에 존재하는 분지쇄 아미노산 결정을 용해시키는데 재사용될 수 있었다. 따라서, 상기 방법은 별도의 pH 조절제 없이 결정화 공정에 기반하여, 지속적으로 분지쇄 아미노산 결정을 생성할 수 있고, 이에 따라, 분지쇄 아미노산 결정의 생산 효율을 향상시킬 수 있다.
본 출원의 방법은 상기 (b) 단계 이후에, 상기 (b) 단계의 분지쇄 아미노산 결정을 포함하는 농축액으로부터 분지쇄 아미노산 결정을 분리하는 단계를 추가로 포함할 수 있다.
상기 분지쇄 아미노산 결정을 분리하는 단계는 예를 들여, 상기 (b) 단계와 (c) 단계 사이에, 상기 (c) 단계와 (d) 단계 사이에, 또는 상기 (d) 단계 이후에 이루어질 수 있고, 상기 (c) 단계 또는 (d) 단계와 동시에 이루어질 수 있으나, 상기 (b) 단계 이후라면 (c) 단계 및 (d) 단계와의 순서와는 무관하게 어느 단계에나 이루어질 수 있다.
상기 단계에서, 농축액으로부터 분지쇄 아미노산 결정의 분리는 예를 들어, 상기 분지쇄 아미노산 결정을 포함하는 농축액을 고액 분리하여 분지쇄 아미노산 습정(Wet crystal)을 수득하는 단계; 및 상기 수득된 습정을 건조하여 분지쇄 아미노산 결정을 수득하는 단계를 포함할 수 있으나, 아미노산 결정의 분리 및 정제와 관련된, 당업계에 알려진 통상의 기술이 비제한적으로 적용될 수 있다.
또한, 본 출원은 다른 양상으로, (a) 분지쇄 아미노산 결정을 포함하는 반응액과 암모니아를 혼합하여 상기 분지쇄 아미노산 결정이 용해된 용해액을 수득하는 단계; (b) 상기 수득된 용해액을 결정화하여 분지쇄 아미노산 결정을 포함하는 농축액을 수득하는 단계; (c) 상기 결정화 과정에서 생성된, 수증기 및 암모니아를 포함하는 혼합 기체를 수득하는 단계; 및 (d) 상기 수득한 혼합 기체로부터 유래한 암모니아를 상기 (a) 단계의 암모니아로 재사용하는 단계;를 포함하고, 상기 (b) 단계 및 (c) 단계는 동시 또는 순차적으로 실시되는, 분지쇄 아미노산의 결정화 방법에 의해 생산된 분지쇄 아미노산 결정을 제공한다.
상기 분지쇄 아미노산의 결정화 방법은 상술한 바와 같다.
본 출원에 따른 분지쇄 아미노산의 결정화 방법은 분지쇄 아미노산의 용해도 증가를 위해 최초로 첨가된 암모니아를 결정화 과정에서 증기 상태로 수득하여, 이를 재사용함으로써, 분지쇄 아미노산 결정의 생산 효율을 향상시킬 수 있고, 다량의 pH 조절 물질 및 추가적인 중화 공정이 필요하지 않으므로 생산 비용이 절감될 수 있다.
또한, 본 출원에 따른 분지쇄 아미노산의 결정화 방법은 추가적으로 지속 가능한 순환이 어려운 염 폐기물의 생성을 감소시켜 친환경적인 방법으로 활용될 수 있다.
도 1은 용액의 pH에 따른 분지쇄 아미노산의 용해도 변화를 확인한 결과이다.
이하 본 발명을 실시예를 통하여 보다 상세하게 설명한다. 그러나, 이들 실시예는 본 발명을 예시적으로 설명하기 위한 것으로 본 발명의 범위가 이들 실시예에 한정되는 것은 아니다. 또한, 본 명세서에 기재되지 않은 내용은 본 출원의 기술 분야 또는 유사 분야에서 숙련된 자이면 충분히 인식하고 유추할 수 있는 것이므로 그 설명을 생략한다.
실시예 1. 실험 재료 및 실험 방법
(1) 실험 재료
분지쇄 아미노산은 순도 98% 이상의 L-발린, L-이소루이신, 및 L-루이신 제품을 사용하였으며, 상기 분지쇄 아미노산 제품으로는 모두 CJ 제일제당 제품을 사용하였다. 물은 직접 제조한 3차 증류수를 사용하였으며, 26%(v/v) 암모니아수와 98%(v/v)의 황산은 대정화금社로부터 구매하여 사용하였다. 고성능 액체 크로마토그래피(high-performance liquid chromatograph; HPLC) 분석을 위한 0.1M 질산 수용액, 0.02M 디피콜린산 수용액은 Sigma-Aldrich (US)로부터 구매하여 사용하였다.
(2) 분지쇄 아미노산 용해액의 농도 및 분지쇄 아미노산 결정의 순도 분석
분지쇄 아미노산 용해액의 농도 및 분지쇄 아미노산 결정의 순도 분석은 고성능 액체 크로마토그래피 (model DIONEX Ultimate 3000 system, Thermo Scientific, US)를 이용하여 진행하였으며, 분석 조건의 다음과 같다:
- 컬럼: Hypersil gold HPLC column (Thermo Scientific, US)
- 컬럼 온도: 40℃
- 이동상: 0.1 wt% 황산 수용액
- 이동상 속도: 1.0 ml/분
- 감지기: Fluorescence detector.
(3) 분지쇄 아미노산 용해액 내 암모니아 농도 분석
분지쇄 아마노산 용해액 내 암모니아 농도 분석은 이온 크로마토그래피 (model 930 compact IC Flex, Metrohm, Switzerland)를 이용하여 진행하였으며, 분석 조건은 다음과 같다:
- 컬럼: Metrosep C4-150 (Metrohm, Switzerland)
- 컬럼 온도: 25℃
- 이동상: 0.7 mM 질산 수용액+1.7 mM 디피콜린산 수용액
- 이동상 속도: 1.0 ml/분.
(4) 분지쇄 아미노산의 용해도 분석
분지쇄 아미노산의 용해도 측정은 유리 재질의 1 L 자켓 반응기에서 진행하였다. 1 L 자켓 반응기에 증류수와 암모니아수를 다양한 비율로 섞은 후, 과량의 분지쇄 아미노산 결정을 첨가하고 이들을 교반함으로써, 분지쇄 아미노산 결정을 포함하는 반응액을 제조하였다. 이후, 반응기의 내부 온도를 냉동/가열 순환 장치 (model F35, Julabo, Germany)를 사용하여 30℃로 일정하게 유지하면서, 이러한 조건을 교반과 함께 12시간 이상 동안 유지하였다. 이후, 교반을 멈추고 분지쇄 아미노산 결정이 모두 가라앉으면, 징명한 상태의 상등액 일부를 0.45μm 실린지 필터가 장착된 실린지 샘플러로 옮겨 담았다. 이때, 해당 용액의 pH를 pH 측정기 (model S220, Mettler Toledo, US)를 이용하여 측정하였다. 해당 샘플의 농도는 정량 플라스크를 사용하여 3차 증류수로 희석한 뒤, HPLC를 이용하여 측정하였다. 상기 상등액 샘플의 농도를 용해도로 상정하였으며, 용액의 pH에 따른 분지쇄 아미노산의 용해도 변화를 확인하였다(도 1). 그 결과, 용액의 pH가 9 이상이 되는 시점부터 분지쇄 아미노산의 용해도가 증가함을 확인할 수 있었다.
실시예 2. 분지쇄 아미노산 결정을 포함하는 용액에서의 분리 및 정제
(1) 분지쇄 아미노산의 결정화 및 암모니아의 회수
결정화는 각 조건당 동일한 공정 조건에서 총 5회 진행하였다. 단, 1회차 결정화 공정에서는 결정화 피드를 제조하기 위하여, BCAA 결정 및 증류수를 혼합하여 제조한 BCAA 결정을 포함하는 용액에 암모니아수를 첨가하여 BCAA 결정을 전량 용해하였다. 이후의 회차에서는 BCAA 결정을 포함하는 반응액에 회수한 암모니아수를 첨가하여 BCAA 결정을 용해하였다(실험군). 한편, 대조군으로는 암모니아수의 회수 과정없이 BCAA 결정을 포함하는 반응액에 26%(v/v)의 암모니아수를 첨가하고, 뒤이어 98%(v/v)의 황산으로 pH를 7로 재조정한 군을 사용하였다.
결정화 및 암모니아 회수는 결정화 피드가 주입되는 주입부, pH 조절부, 가열 순환기 및 배출구를 포함하는 결정화기; 회수된 암모니아수가 주입되는 주입부, 냉각 순환기 및 배출구를 포함하는 증기 회수 장치; 및 결정화기에서 증기 회수 장치 사이에 압축기를 포함하는 구조로 된 장치를 사용하였다. 구체적으로, 상기 결정화 피드는 1회차 결정화 과정에서 수득된, 분지쇄 아미노산 결정을 포함하는 농축액을 의미하며, 결정화는 유리 재질의 20 L 자켓 반응기에서 진행하였고, 열교환부에서의 스케일링 방지를 위하여, 자켓은 내부 액체의 부피가 10 L가 되는 지점의 높이까지만 설치하였다. 자켓 부위는 냉동/가열 순환 장치 (model F35, Julabo, Germany)로 온도가 제어되는 3차 증류수로 채워졌으며, 결정화 공정이 진행되는 동안 온도는 80℃로 유지하였다. 내부 반응액 등의 교반은 Teflon 재질의 4-blade impeller로 회전 속도 조절이 가능한 교반기 (model RW-20, IKA, Germany)를 이용하여 진행하였고, 결정화가 진행되는 동안 교반 속도는 200 rpm을 유지하였다. 반응기 내부의 압력 감소는 배관으로 연결된 압축기(Compressor)를 이용하여 진행하였으며, 압축기와 결정화기 사이에는 압력 조절을 위한 전자식 진공 제어기(model NVC 2300-A, Eyela, Japan)가 설치되어 이들의 압력을 조절하였다. 결정화기 내부의 압력은 100 mbar로 유지하였다. 암모니아 회수부는 20 bar까지 저장 가능한 스테인리스강 재질의 20 L 자켓 압력 용기로 구성하였으며, 자체 설비로 공급되는 4℃의 냉각수로 냉각을 진행하였다. 이때, 암모니아의 회수는 결정화기 내부의 pH가5.5 내지 8.0이 될 때까지 진행하였다. 최종 농축액의 농도는 암모니아가 투입되기 전의 BCAA 결정을 포함하는 반응액의 농도 대비 1.5배가 되도록 조절하였다.
(2) 분지쇄 아미노산 결정의 분리 및 건조
상기 최종 농축 농도에 이르면, 결정화 공정을 종료하고 반응기 내 농축액을 하부에 배치된 배출 배관을 통해 회수하였다. 이후, 상기 회수된 농축액을 코튼 필터가 장착된 원심 바스켓 분리기(Model H-122, Kokusan, Japan)를 사용하여 2000 rpm의 속도로 5 min 동안 고액 분리하였다. 필요에 따라, 증류수를 이용하여 분리 초기에 세척 공정을 진행하였다. 이후, 수득된 습정(wet crystal)을 80℃의 오븐 건조기에서 무게 변화가 없을 때까지 건조하여 BCAA 결정을 수득하였다.
(3) 실험 결과
(3.1) L-루이신의 결정화 및 암모니아 회수
98% 이상 순도의 L-루이신 결정으로 제조한 20 L 현탁액을 이용하여 L-루이신의 결정화 및 암모니아 회수 실험을 진행하였다. 실험은 총 5회 진행하였으며, 해당 실험결과 중 2회차부터 5회차까지의 결정화 공정에 대한 평균 값을 표 1에 나타내었다. 30 내지 200 g/L의 L-루이신 농도 범위를 가지는 반응액을 대상으로, 회수된 암모니아수를 첨가하여 상기 반응액의 pH를 9에서 12의 범위로 조정하여 결정의 용해를 진행하였으며, 이후 결정화를 진행하면서 다시 암모니아수를 회수하였다.
하기 표 1에 나타낸 바와 같이, 대조군에서는 회수된 암모니아수가 없었으나, 일 실시예에 따른 결정화 공정에서는 9 내지 23% 농도의 암모니아수를 97% 이상의 회수율로 확보할 수 있었으며, 상기 회수된 암모니아수는 반응액 내 L-루이신 결정을 용해하는데 재사용될 수 있었다.
항목 대조군 실험군
초기 반응액 농도 (g/L) 30 100 200 30 100 200
초기 반응액 pH 6 6 6 6 6 6
회수 암모니아 투입비 (vol%) 0 0 0 4 8 13
26% 암모니아 투입비 (vol%) 1 5 10 0 0 0
98% 황산 투입비 (vol%) 1 2 4 1 2 4
1회차 결정화 과정에서 수득된 농축액의 농도 (g/L) 29 93 175 28 91 167
1회차 결정화 과정에서 수득된 농축액의 pH 7 7 7 9 11 12
최종 농축액 농도 (g/L) 45 150 300 45 150 300
최종 농축액 pH 7 7 7 7 7 7
결정 회수율 (%) 42 81 90 42 81 90
암모니아 회수율 (%) 0 0 0 97 98 98
회수 암모니아 농도 (%) 0 0 0 9 17 23
(3.2) L-이소루이신의 결정화 및 암모니아 회수
98% 이상 순도의 L-이소루이신 결정으로 제조한 20 L 현탁액을 이용하여 L-이소루이신의 결정화 및 암모니아 회수 실험을 진행하였다. 실험은 총 5회 진행하였으며, 해당 실험결과 중 2회차부터 5회차까지의 결정화 공정에 대한 평균 값을 표 2에 나타내었다. 50 내지 250 g/L의 L-이소루이신 농도 범위를 가지는 반응액을 대상으로, 회수된 암모니아수를 첨가하여 상기 반응액의 pH를 9에서 12의 범위로 조정하여 결정의 용해를 진행하였으며, 이후 결정화를 진행하면서 다시 암모니아수를 회수하였다.
하기 표 2에 나타낸 바와 같이, 대조군에서는 회수된 암모니아수가 없었으나, 일 실시예에 따른 결정화 공정에서는 9 내지 22% 농도의 암모니아수를 97% 이상의 회수율로 확보할 수 있었으며, 상기 회수된 암모니아수는 반응액 내 L-이소루이신 결정을 용해하는데 재사용될 수 있었다.
항목 대조군 실험군
초기 반응액 농도 (g/L) 50 150 250 50 150 250
초기 반응액 pH 6 6 6 6 6 6
회수 암모니아 투입비 (vol%) 0 0 0 6 11 17
26% 암모니아 투입비 (vol%) 2 7 12 0 0 0
98% 황산 투입비 (vol%) 1 3 5 1 3 5
1회차 결정화 과정에서 수득된 농축액의 농도 (g/L) 48 136 213 45 131 205
1회차 결정화 과정에서 수득된 농축액의 pH 7 7 7 9 11 12
최종 농축액 농도 (g/L) 75 225 375 75 225 375
최종 농축액 pH 7 7 7 7 7 7
결정 회수율 (%) 45 80 88 45 80 88
암모니아 회수율 (%) 0 0 0 97 98 98
회수 암모니아 농도 (%) 0 0 0 9 17 22
(3.3) L-발린의 결정화 및 암모니아의 회수
98% 이상 순도의 L-발린 결정으로 제조한 20 L 현탁액을 이용하여 L-발린의 결정화 및 암모니아 회수 실험을 진행하였다. 실험은 총 5회 진행하였으며, 해당 실험결과 중 2회차부터 5회차까지의 결정화 공정에 대한 평균 값을 표 3에 나타내었다. 120 내지 350 g/L의 L-발린 농도 범위를 가지는 반응액을 대상으로, 회수된 암모니아수를 첨가하여 상기 반응액의 pH를 9에서 12의 범위로 조정하여 결정의 용해를 진행하였으며, 이후 결정화를 진행하면서 다시 암모니아수를 회수하였다.
하기 표 3에 나타낸 바와 같이, 대조군에서는 회수된 암모니아수가 없었으나, 일 실시예에 따른 결정화 공정에서는 13 내지 23% 농도의 암모니아수를 98% 이상의 회수율로 확보할 수 있었으며, 상기 회수된 암모니아수는 반응액 내 L-발린 결정을 용해하는데 재사용될 수 있었다.
항목 대조군 실험군
초기 반응액 농도 (g/L) 120 250 350 120 250 350
초기 반응액 pH 6 6 6 6 6 6
회수 암모니아 투입비 (vol%) 0 0 0 11 21 30
26% 암모니아 투입비 (vol%) 7 14 20 0 0 0
98% 황산 투입비 (vol%) 3 6 8 1 3 5
1회차 결정화 과정에서 수득된 농축액의 농도 (g/L) 110 209 275 107 206 273
1회차 결정화 과정에서 수득된 농축액의 pH 7 7 7 9 11 12
최종 농축액 농도 (g/L) 180 375 525 180 375 525
최종 농축액 pH 7 7 7 7 7 7
결정 회수율 (%) 76 87 90 76 87 90
암모니아 회수율 (%) 0 0 0 98 98 98
회수 암모니아 농도 (%) 0 0 0 13 17 23
실시예 3. 분지쇄 아미노산 결정을 포함하는 발효액에서의 분리 및 정제
(1) 분지쇄 아미노산을 포함하는 발효액의 제조
L-루이신을 생산하는 균주인 코리네박테리움 글루타미쿰(Corynebacterium glutamicum) 변이주(수탁번호: KCCM11662P), L-이소루이신을 생산하는 균주인 코리네박테리움 글루타미쿰 변이주(수탁번호: KCCM11248P), 및 L-발린을 생산하는 균주인 코리네박테리움 글루타미쿰 변이주(수탁번호: KCCM11336P)를 이용하여 L-루이신, L-이소루이신 및 L-발린을 각각 포함하는 발효액을 제조하였다.
구체적으로, 전배양 배지 40 mL를 500 mL 진탕용 삼각 플라스크에 분주하고, 121℃에서 15분간 가압 살균한 후, 각 균주를 식균하여 33℃에서 200 rpm으로 교반시키면서 회전 교반 배양기에서 24시간 동안 배양하였다. 이후, 5 L 발효조에 종배양 배지 3 L를 채우고 121℃에서 30분간 가압 살균한 후, pH를 7.0으로 조절하고, 상기 전배양물 4%를 식균하여 33℃에서 800 rpm 및 통기량 0.5 vvm 조건으로 OD 값이 20이 될 때까지 배양하여 종배양을 실시하였다. 이후, 5 L 발효조에 본배양 배지 2.1 L를 채우고 121℃에서 30분간 가압 살균한 후, 포도당을 0.6 L씩 첨가하고, 암모니아 가스를 이용하여 pH를 7.0으로 조절하였다. 상기 종배양액을 준비된 본배양조에 20%로 식균하여 배양온도 33℃ 및 통기량 1.0 vvm 조건에서 용존산소가 최소 30% 이상 유지되도록 400 내지 800 rpm까지 조절하면서 42시간 동안 배양하여 L-루이신, L-이소루이신 및 L-발린을 포함하는 각 발효액을 제조하였다. 상기 배양 과정에 사용된 전배양, 종배양 및 본배양 배지 조성은 하기 표 4와 같다.
조성 전배양 배지 종배양 배지 본배양 배지
포도당 (g/l) 5.0 10.1 40.2
MgSO4 (g/l) 0.5 0.5 4.2
효모추출액 (g/l) 5 10 3.2
KH2PO4 2 3 3
암모늄 설페이트 (g/l) 6.3
NH4Cl (g/l) 0.5 1
NaCl (g/l) 0.5 0.5
Na2HPO4 (g/l) 4.07 5.07
(2) 분지쇄 아미노산 결정의 분리 및 건조
BCAA 결정을 포함하는 용액 대신 상기 제조한 BCAA 결정을 포함하는 발효액을 이용하여 실시예 2의 (1) 및 (2)에 기재된 것과 동일한 방법으로 암모니아 첨가, 결정화, BCAA 결정의 분리 및 건조를 수행하였고, 이와 함께, 암모니아 첨가 단계와 결정화 단계 사이에 하기와 같이 미세여과 단계와 분말 활성탄 첨가 단계를 추가로 진행하였다.
구체적으로, BCAA 결정이 용해된 용해액에서 0.1 μm 미세여과막이 장착된 미세여과장치(model Pellicon 2, Merck, US)를 이용하여 균체와 같은 바이오매스를 제거하였고, 유색 물질의 제거를 위하여, 상기 투과액에 BCAA 대비 10 wt%의 분말 활성탄(model YL303, Yuanli, China)을 첨가한 후, 60℃에서 30분 동안 교반하였다. 이후, 7 μm 여과막을 이용한 1차 진공 여과를 통해 상기 BCAA 용해액으로부터 활성탄을 제거하고, 0.45 μm 여과막을 이용한 2차 진공 여과를 통해 잔류 활성탄을 추가로 제거하였다.
(3) 실험 결과
(3.1) L-루이신의 정제
상기 실시예 3의 (1)에서 제조한, L-루이신 결정을 포함하는 L-루이신 농도 60 g/L의 발효액으로부터 L-루이신 정제를 5회 반복하여 시행하였다. L-루이신 결정을 포함하는 발효액 20 L에 회수된 암모니아수(단, 최초에는 암모니아수 시약)를 첨가하여 pH를 10까지 조정하고, L-루이신을 전량 용해한 후, 미세여과를 통해 바이오매스를 제거하였다. 이후, 미세여과 투과액에 분말 활성탄 처리를 진행하여 유색 물질을 분리하였다. 이후, 여과액을 대상으로 농축 결정화를 90 g/L의 농도까지 진행하였으며, L-루이신 결정을 포함하는 농축액은 바스켓 여과기를 이용하여 고액 분리하였다. 이때, 세척은 L-루이신 결정을 포함하는 농축액 기준으로 20 vol%의 3차 증류수를 이용하여 실시하였다.
이후 건조를 통해 최종 회수된 결정의 무게는 5회 평균 1.1 kg이었고, 결정의 순도는 5회 평균 98.4%였다. 일 실시예에 따른 결정화 공정에서는 13% 농도의 암모니아수를 98%이상의 회수율로 확보할 수 있었으며, 상기 회수된 암모니아수는 발효액 내 L-루이신 결정을 용해하는데 재사용될 수 있었다.
(3.2) L-이소루이신의 정제
상기 실시예 3의 (1)에서 제조한, L-이소루이신 결정을 포함하는 L-이소루이신 농도 90 g/L의 발효액으로부터 L-이소루이신 정제를 5회 반복하여 시행하였다. L-이소루이신 결정을 포함하는 발효액 20 L에 회수된 암모니아수(단, 최초에는 암모니아수 시약)를 첨가하여 pH를 10까지 조정하고, L-이소루이신을 전량 용해한 후, 미세여과를 통해 바이오매스를 제거하였다. 이후, 미세여과 투과액에 분말 활성탄 처리를 진행하여 유색 물질을 분리하였다. 이후, 여과액을 대상으로 농축 결정화를 135 g/L의 농도까지 진행하였으며, L-이소루이신 결정을 포함하는 농축액은 바스켓 여과기를 이용하여 고액 분리하였다. 이때, 세척은 L-이소루이신 결정을 포함하는 농축액 기준으로 20 vol%의 3차 증류수를 이용하여 실시하였다.
이후 건조를 통해 최종 회수된 결정의 무게는 5회 평균 1.7 kg이었고, 결정의 순도는 5회 평균 98.6% 였다. 일 실시예에 따른 결정화 공정에서는 13% 농도의 암모니아수를 98% 이상의 회수율로 확보할 수 있었으며, 상기 회수된 암모니아수는 발효액 내 L-이소루이신 결정을 용해하는데 재사용될 수 있었다.
(3.3) L-발린의 정제
상기 실시예 3의 (1)에서 제조한, L-발린 결정을 포함하는 L-발린 농도 150 g/L의 발효액으로부터 L-발린 정제를 5회 반복하여 시행하였다. L-발린 결정을 포함하는 발효액 20 L에 회수된 암모니아수(단, 최초에는 암모니아수 시약)를 첨가하여 pH를 10까지 조정하고, L-발린을 전량 용해한 후, 미세여과를 통해 바이오매스를 제거하였다. 이후, 미세여과 투과액에 분말 활성탄 처리를 진행하여 유색 물질을 분리하였다. 이후, 여과액을 대상으로 농축 결정화를 225 g/L의 농도까지 진행하였으며, L-발린 결정을 포함하는 농축액은 바스켓 여과기를 이용하여 고액 분리하였다. 이때, 세척은 L-발린 결정을 포함하는 농축액 기준으로 20 vol%의 3차 증류수를 이용하여 실시하였다.
이후 건조를 통해 최종 회수된 결정의 무게는 5회 평균 3.0 kg이었고, 결정의 순도는 5회 평균 98.4% 였다. 일 실시예에 따른 결정화 공정에서는 13% 농도의 암모니아수를 98% 이상의 회수율로 확보할 수 있었으며, 상기 회수된 암모니아수는 발효액 내 L-발린 결정을 용해하는데 재사용될 수 있었다.
전술한 본 발명의 설명은 예시를 위한 것이며, 본 발명이 속하는 기술분야의 통상의 지식을 가진 자는 본 발명의 기술적 사상이나 필수적인 특징을 변경하지 않고서 다른 구체적인 형태로 쉽게 변형이 가능하다는 것을 이해할 수 있을 것이다. 그러므로 이상에서 기술한 실시예들은 모든 면에서 예시적인 것이며 한정적이 아닌 것으로 이해해야만 한다.

Claims (12)

  1. (a) 분지쇄 아미노산 결정을 포함하는 반응액과 암모니아를 혼합하여 상기 분지쇄 아미노산 결정이 용해된 용해액을 수득하는 단계;
    (b) 상기 수득된 용해액을 결정화하여 분지쇄 아미노산 결정을 포함하는 농축액을 수득하는 단계;
    (c) 상기 결정화 과정에서 생성된, 수증기 및 암모니아를 포함하는 혼합 기체를 수득하는 단계; 및
    (d) 상기 수득한 혼합 기체로부터 유래한 암모니아를 상기 (a) 단계의 암모니아로 재사용하는 단계;를 포함하고,
    상기 (b) 단계 및 (c) 단계는 동시 또는 순차적으로 실시되는, 분지쇄 아미노산의 결정화 방법.
  2. 청구항 1에 있어서, 상기 분지쇄 아미노산은 L-루이신, L-이소루이신, 및 L-발린으로 이루어진 군에서 선택되는 적어도 하나의 아미노산인 것인, 분지쇄 아미노산의 결정화 방법.
  3. 청구항 1에 있어서, 상기 분지쇄 아미노산 결정을 포함하는 반응액은 분지쇄 아미노산 결정을 포함하는 용액 또는 발효액을 포함하는 것인, 분지쇄 아미노산의 결정화 방법.
  4. 청구항 3에 있어서, 상기 분지쇄 아미노산 결정을 포함하는 발효액은 분지쇄 아미노산을 생산하는 미생물을 배지에서 배양하여 수득되는 것인, 분지쇄 아미노산의 결정화 방법.
  5. 청구항 1에 있어서, 상기 (a) 단계에서, 상기 분지쇄 아미노산 결정이 용해된 용해액의 pH는 9 내지 12인 것인, 분지쇄 아미노산의 결정화 방법.
  6. 청구항 1에 있어서, 상기 (b) 단계의 분지쇄 아미노산 결정을 포함하는 농축액의 분지쇄 아미노산 농도는 (a) 단계의 분지쇄 아미노산 결정을 포함하는 반응액의 분지쇄 아미노산 농도 대비 1.3 내지 1.7 배인, 분지쇄 아미노산의 결정화 방법.
  7. 청구항 1에 있어서, 상기 (c) 단계는 상기 (b) 단계의 분지쇄 아미노산 용해액의 pH가 5.5 내지 8.0이 될 때까지 실시하는 것인, 분지쇄 아미노산의 결정화 방법.
  8. 청구항 1에 있어서, 상기 (d) 단계는 상기 암모니아를 증기 상태로 재사용하거나, 상기 증기가 압축 또는 응축된 액체 상태로 재사용하는 것인, 분지쇄 아미노산의 결정화 방법.
  9. 청구항 1에 있어서, 상기 (a) 단계와 (b) 단계 사이에,
    (a-1) 상기 분지쇄 아미노산 결정이 용해된 용해액을 미세 여과하여, 용해액 내 바이오매스를 제거하는 단계;를 추가로 포함하는 것인, 분지쇄 아미노산의 결정화 방법.
  10. 청구항 1에 있어서, 상기 (a) 단계와 (b) 단계 사이에,
    (a-2) 상기 분지쇄 아미노산 결정이 용해된 용해액에 활성탄을 첨가하여, 용해액 내 유색 물질을 제거하는 단계;를 추가로 포함하는 것인, 분지쇄 아미노산의 결정화 방법.
  11. 청구항 1에 있어서, 상기 (b) 단계 이후에,
    (e) 상기 (b) 단계의 분지쇄 아미노산 결정을 포함하는 농축액으로부터 분지쇄 아미노산 결정을 분리하는 단계;를 추가로 포함하는 것인, 분지쇄 아미노산의 결정화 방법.
  12. (a) 분지쇄 아미노산 결정을 포함하는 반응액과 암모니아를 혼합하여 상기 분지쇄 아미노산 결정이 용해된 용해액을 수득하는 단계;
    (b) 상기 수득된 용해액을 결정화하여 분지쇄 아미노산 결정을 포함하는 농축액을 수득하는 단계;
    (c) 상기 결정화 과정에서 생성된, 수증기 및 암모니아를 포함하는 혼합 기체를 수득하는 단계; 및
    (d) 상기 수득한 혼합 기체로부터 유래한 암모니아를 상기 (a) 단계의 암모니아로 재사용하는 단계;를 포함하고,
    상기 (b) 단계 및 (c) 단계는 동시 또는 순차적으로 실시되는, 분지쇄 아미노산의 결정화 방법에 의해 생산된 분지쇄 아미노산 결정.
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