CN109942646B - 一种盐酸林可霉素的提取方法 - Google Patents

一种盐酸林可霉素的提取方法 Download PDF

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Abstract

本发明提供了一种盐酸林可霉素的提取方法,包括:S1)将林可霉素发酵液依次经微滤、纳滤后,得到水相浓缩液;S2)将所述水相浓缩液碱化处理后综合絮凝除杂,碟片离心机过滤,碱化清液用萃取剂萃取,得到萃取液;S3)将所述萃取液浓缩加酸反应结晶,得到盐酸林可霉素。本发明依次采用微滤进行发酵液固液分离、纳滤得到水相浓缩液,经综合除杂后再用萃取剂萃取,浓缩加酸结晶即得盐酸林可霉素,生产过程自动化程度高,连续可靠,生产周期短,同时提高了产品品质。

Description

一种盐酸林可霉素的提取方法
技术领域
本发明涉及盐酸林可霉素制备技术领域,具体涉及为一种盐酸林可霉素的提取方法。
背景技术
林可霉素(Lincomycin,简称LCM)又称洁霉素、林肯霉素,属于林可酰胺类抗生素,是由林肯链霉菌(Sterptmyces linconinensis)通过好氧发酵而生成的一种光谱抗生素。林可霉素临床主要用于敏感菌引起的各种感染,如肺炎、脑膜炎、心内膜炎、蜂窝织炎、扁桃体炎、丹毒及泌尿系统感染等。由于本品用药途径较多,副反应较少,控制感染快,对组织和细胞的穿透力强,可进入骨组织中,和骨有特殊亲和力,故特别适用于厌气菌引起的感染及金葡菌性骨髓炎。
林可霉素提取工艺最早由美国人于1963年提出,目前,林可霉素提取工艺较为传统,生产企业多采用板框过滤进行发酵液固液分离、混合醇萃取、盐酸反萃取、浓缩结晶等工艺过程从发酵液中提取林可霉素。提取工艺在经过不断改进后,滤液经辛醇等高碳醇混合溶剂萃取后利用盐酸进行反萃取,再进行脱色、浓缩,最后采用丙酮溶析结晶得到产品。传统工艺采用板框压滤方式进行固液分离,滤液直接萃取溶媒用量大,尤其高碳醇气味大,环境不友好,溶析结晶对杂质组分的去除有限,对产品有效组分的优化不显著。近年来,专利CN102746348A公布了一种树脂吸附技术提取林可霉素的工艺方法,即使用大孔吸附树脂对林可霉素碱化滤液进行吸附、溶剂解析,解析液经减压蒸馏加酸反应结晶粗品,再丙酮溶析结晶得到产品。但该工艺采用板框压滤进行前端固液分离,过滤精度低,上样液中含有部分悬浮物及蛋白、多肽等大分子杂质,影响树脂的吸附效率和处理量,另外树脂工艺存在生产周期长、树脂再生废水产生量大等问题,需要进一步提升树脂性能,优化工艺过程。
发明内容
本发明的目的是提供一种盐酸林可霉素的提取方法,优化发酵液固液分离和料液浓缩方法,有效提高林可霉素收率、降低溶媒消耗等问题,提供一种自动化程度高、溶剂损耗量少,且产品纯度大幅提高的林可霉素提取方法。
本发明技术方案为:
一种盐酸林可霉素的提取方法,包括以下步骤:
S1)将林可霉素发酵液依次经微滤、纳滤后,得到水相浓缩液;
S2)将所述水相浓缩液碱化处理后综合絮凝除杂,过滤,碱化清液使用萃取剂萃取,得到萃取液;
S3)将所述萃取液浓缩、加酸结晶,得到盐酸林可霉素。
优选地,所述步骤S1)微滤所用的微滤膜的规格为膜孔径100-1200nm;所述微滤的膜为金属膜或陶瓷膜,微滤压力为0.1-0.2MPa。
优选地,所述步骤S1)纳滤所使用的膜的规格为100-300Da;所述纳滤的膜为聚醚或聚砜类纳滤膜,纳滤压力为1.5-3.0MPa。
优选地,所述步骤S1)林可霉素发酵液菌浓为28%-38%(固形物质量百分数),微滤过程林可霉素料液pH为7.0-7.5。
优选地,所述步骤S1)具体为:将林可霉素发酵液经微滤至滤液体积为发酵液体积的0.2-0.7倍,然后向浓缩端连续补加清水继续微滤至清液体积为发酵液体积的1.5-3倍(补加清水是为了将料液中的有效成分稀释出来,提高收率),即得微滤液,再将所述微滤清液进行纳滤,浓缩5-10倍,即得水相浓缩液。纳滤的透析水套用至微滤透析环节。
优选地,所述步骤S2)具体为:将所述水相浓缩液pH调至8.0-12.0,依次加入聚合氯化铝溶液和聚丙烯酰胺溶液絮凝除杂,离心过滤,得到的碱化清液与萃取剂分别输送至萃取塔,搅拌,在线调节体系pH至8.0-12.0,通过分相室静置分相,即得上层萃取液与下层萃余水相。
进一步优选地,所述萃取塔的萃取过程为震动筛板塔逆流连续萃取。
进一步优选地,所述聚合氯化铝溶液浓度为5-10%,加入量为水相浓缩液体积的5-20%;所述聚丙烯酰胺分子量为800万-1400万,聚丙烯酰胺溶液浓度为5-10‰,加入量为水相浓缩液体积的1-2‰。
进一步优选地,:所述水相浓缩液与萃取剂的体积比为1:(0.4-1.2),萃取剂为丁醇。
优选地,所述步骤S3)具体为:将所述萃取液于50-80℃减压蒸发浓缩,浓缩至原萃取液体积的1/5至1/4得到浓缩液,将浓缩液转移至结晶罐,于65-85℃加盐酸反应结晶,控制体系终点pH为2.0-3.0,加酸完成后降温至0-10℃结晶,离心分离,干燥即得盐酸林可霉素。
进一步优选地,所述步骤S3)中,减压浓缩分离的丁醇、离心分离所得母液经精馏回收后丁醇继续套用到本反应萃取过程中;步骤S2)下层萃余水相中的丁醇进行回收利用,回收的丁醇套用于本反应萃取过程中;废水浓缩后进行焚烧处理。
本发明有益效果:
1、依次采用微滤、纳滤、碱化液综合絮凝、离心过滤,再用萃取剂萃取,萃取液减压浓缩后加酸反应结晶得到盐酸林可霉素,生产周期较传统提取工艺生产周期缩短40%以上,以每批生产1200Kg产品为例,现行工艺生产周期平均48h,而传统工艺生产周期平均为70h,减压浓缩有效避免了林可霉素热降解的发生,同时提高了产品品质。可以提高林可霉素A组分含量至86.9%以上,任一单杂含量<0.2%。
2、通过综合絮凝除杂处理,可有效团聚水相浓缩液中的细胞碎片、菌丝体以及调碱过程变性产生的碱性蛋白类杂质,显著降低碱化清液浊度,提升清液质量,有利于后续萃取操作。
3、碱化清液与萃取剂萃取过程为逆流连续萃取。以保证萃取效果,提高萃取收率,同时降低萃取乳化物的产生。
4、步骤S3)中,减压浓缩分离的丁醇、离心分离所得母液经精馏回收后丁醇继续套用到本反应萃取过程中;步骤S2)下层萃余水相中的丁醇进行回收利用,回收的丁醇套用于本反应萃取过程中;废水浓缩后进行焚烧处理。可以将溶剂充分回收利用,降低生产成本。精馏所得丁醇溶液不含挥发性杂质和色素,生产过程定期进行丁醇质量检测,确保合格的丁醇才能流转至萃取过程,因此回收丁醇不会对产品质量产生负面影响。
5、将微滤液进行纳滤浓缩,可以将浓缩液体积降至微滤液体积的15-25%,同时实现对林可霉素的有效富集,浓缩液综合絮凝除杂处理后萃取,萃余液体积与浓缩液体积基本一致,相较于微滤液大幅减少,残留在萃余液中的丁醇总量会大幅减少,每1Kg盐酸林可霉素产品丁醇消耗由传统提取工艺的1.5-2.0Kg下降至1.0Kg以下。
6、所述步骤S1)林可霉素发酵液菌浓为28-38%,微滤过程林可霉素料液pH为7.0-7.5。由于微滤前未对林可霉素发酵液进行灭活处理,活细胞易产酸引起料液pH下降进而引起酸性蛋白类物质析出,与此同时微滤膜面剪切破坏菌体引起料液的黏度升高,降低微滤通量,为保证微滤生产的连续性和过滤效率,必须将发酵液菌浓降至28-38%,同时控制料液pH7.0-7.5。
7、萃取塔的萃取过程为震动筛板塔逆流连续萃取。震动筛板塔为动态萃取设备,占地面积少,实现萃取过程连续生产,多级逆流萃取有效增加林可霉素在丁醇和水之间的传质,提高萃取收率。
8、聚合氯化铝能将悬浮颗粒物及胶粒吸附并架桥,聚丙烯酰胺是将架桥颗粒物团聚为大颗粒沉淀物,以促进絮凝液的固液分离,聚合氯化铝和聚丙烯酰胺发挥的作用不一样,所以要依次加入而不能组合使用。
9、选用减压浓缩方式进行丁醇相物料减压浓缩,可保证物料不受高温影响,避免了热不稳定成分在高温下受热降解,同时低温蒸发可防止物料焦化。
10、所述萃取液于50-80℃减压蒸发浓缩,结合65-85℃加盐酸反应结晶,控制体系终点pH为2.0-3.0,加酸完成后降温至0-10℃结晶,可以使结晶的产物中林可霉素A组分含量相对其他结晶方式含量提高,林可霉素B组分含量降低。丁醇相浓缩液于65-85℃加盐酸反应结晶,该温度条件盐酸林可霉素溶解度22-25万μg/ml,加完盐酸后体系的盐酸林可霉素浓度未达到22-25万μg/ml,控制降温至0-10℃对结晶过饱和度的有效调控,进而达到晶体的有序析出的目的,有效避免了晶体爆析进而影响晶体质量。采用丁醇作为精制结晶溶剂,保持生产全过程使用同一溶剂,减少溶剂种类,有效避免其他溶剂对产品组分的干扰。
附图说明
图1本发明工艺流程图。
具体实施方式
下面结合实施例来进一步说明本发明,但本发明要求保护的范围并不局限于实施例表述的范围。
实施例1
一种盐酸林可霉素的提取方法,所述方法包括以下步骤:
1.1发酵液微滤
将400Kg发酵液转入中间罐,使用30%NaOH溶液调pH至7.1,直接使用陶瓷膜进行微滤。当过滤所得滤液为200Kg时,向发酵液浓缩端连续流加清洗水进行透析,当滤液质量达到900Kg时,停止微滤(选用膜孔径500nm陶瓷膜)。
1.2微滤液纳滤浓缩
将所得滤液混合均匀后进行纳滤,浓缩至微滤液体积的1/6,即得水相浓缩液150Kg。
1.3水相浓缩液碱化处理及过滤
将水相浓缩液转入中间罐,开启搅拌,使用30%NaOH溶液调节pH至11.0-11.5,依次加入浓度为5%聚合氯化铝溶液10Kg、浓度为1‰聚丙烯酰胺溶液浓度为1.5Kg,搅拌均匀后碟片离心机过滤,即得碱化清液。
1.4碱化清液萃取
将碱化清液、萃取剂(丁醇溶剂)分别泵入萃取塔塔顶、塔底,逆流连续萃取,碱化清液与萃取剂的体积比为1:1,萃取完成后,萃取塔塔顶所得萃取液转入薄膜浓缩系统减压蒸发,萃取塔塔底得到萃余液转入回收系统回收丁醇。
1.5减压蒸发浓缩
将丁醇相萃取液连续泵入薄膜蒸发器,于50-80℃减压蒸发浓缩,真空度0.07MPa以上,浓缩至原萃取液体积的1/5至1/4后转入结晶罐。
1.6加酸结晶
将丁醇相浓缩液于65-85℃加盐酸反应结晶,控制体系终点pH为2.0-3.0,加酸完成后降温至0-10℃,离心分离,于70-75℃干燥,即得盐酸林可霉素。
对所得产品进行高效液相色谱分析,结果表明:林可霉素A组分含量86.9%,林可霉素B组分含量1.5%,任一单杂含量<0.2%,总杂0.35%,产品质量如表1所示:
表1实施例1所得产品组分结果
组分(%) Linc-A Linc-B 杂A 杂B之和 杂C 未知杂质 总杂
质量要求 ≥82.5 ≤5.0 ≤0.5 ≤0.5 ≤0.2 ≤0.1 ≤2.0
盐酸林可霉素产品 86.9 1.5 0.14 0.16 0.05 0.01 0.35
实施例1的按照附图流程实施。
实施例2
2.1发酵液微滤
将400Kg发酵液转入中间罐,使用10%NaOH溶液调pH至7.4,直接使用陶瓷膜进行微。当过滤所得滤液为200Kg时,向发酵液浓缩端连续流加清洗水进行透析,当滤液质量达到900Kg时,停止微滤(选用膜孔径1200nm陶瓷膜)。
2.2微滤液纳滤浓缩
将所得滤液混合均匀后进行纳滤,浓缩至微滤液体积的1/6,即得水相浓缩液150Kg。
2.3水相浓缩液碱化处理及过滤
将水相浓缩液转入中间罐,开启搅拌,使用30%NaOH溶液调节pH至11.0-11.5,依次加入浓度为10%聚合氯化铝溶液5Kg、浓度为2‰聚丙烯酰胺溶液浓度为1Kg,搅拌均匀后碟片离心机过滤,即得碱化清液。
2.4碱化清液萃取
将碱化清液、萃取剂(丁醇溶剂)分别泵入萃取塔塔顶、塔底,逆流连续萃取,碱化清液与萃取剂的体积比为1:1,萃取完成后,萃取塔塔顶所得萃取液转入薄膜浓缩系统减压蒸发,萃取塔塔底得到萃余液转入回收系统回收丁醇。
2.5减压浓缩
将丁醇相萃取液连续泵入薄膜蒸发器,于50-80℃减压蒸发浓缩,真空度0.07MPa以上,浓缩至原萃取液体积的1/5至1/4后转入结晶罐。
2.6加酸结晶
将丁醇相浓缩液于65-85℃加盐酸反应结晶,控制体系终点pH为2.0-3.0,加酸完成后逐步降温至0-10℃,离心分离,于70-75℃干燥,即得盐酸林可霉素。
对所得产品进行高效液相色谱分析,结果表明:林可霉素A组分含量87.6%,林可霉素B组分含量1.2%,任一单杂含量<0.2%,总杂0.25%,产品质量如表2所示:
表2实施例2所得产品组分结果
组分(%) Linc-A Linc-B 杂A 杂B之和 杂C 未知杂质 总杂
质量要求 ≥82.5 ≤5.0 ≤0.5 ≤0.5 ≤0.2 ≤0.1 ≤2.0
盐酸林可霉素产品 87.6 1.2 0.07 0.07 0.08 0.04 0.25
实施例3
3.1发酵液微滤
将500Kg发酵液转入中间罐,不调发酵液pH,直接使用陶瓷膜进行微。当过滤所得滤液为200Kg时,向发酵液浓缩端连续流加清洗水进行透析,当滤液质量达到1100Kg时,停止微滤(选用膜孔径500nm陶瓷膜)。
3.2微滤液纳滤浓缩
将所得滤液混合均匀后进行纳滤,浓缩至微滤液体积的1/5,即得水相浓缩液220Kg。
3.3水相浓缩液碱化处理及过滤
将水相浓缩液转入中间罐,开启搅拌,使用30%NaOH溶液调节pH至11.0-11.5,依次加入浓度为10%聚合氯化铝溶液7Kg、浓度为2‰聚丙烯酰胺溶液浓度为1.5Kg,搅拌均匀后碟片离心机过滤,即得碱化清液。
3.4碱化清液萃取
将碱化清液、萃取剂(丁醇溶剂)分别泵入萃取塔塔顶、塔底,逆流连续萃取,碱化清液与萃取剂的体积比为1:1,萃取完成后,萃取塔塔顶所得萃取液转入薄膜浓缩系统减压蒸发,萃取塔塔底得到萃余液转入回收系统回收丁醇。
3.5减压浓缩
将丁醇相萃取液连续泵入薄膜蒸发器,于50-80℃减压蒸发浓缩,真空度0.075MPa以上,浓缩至原萃取液体积的1/5至1/4后转入结晶罐。
3.6加酸结晶
将丁醇相浓缩液于65-85℃加盐酸反应结晶,控制体系终点pH为2.0-3.0,加酸完成后降温至0-10℃,离心分离,于70-75℃干燥,即得盐酸林可霉素。
微滤和纳滤过程发现:(1)不调节发酵液pH,微滤通量均值为28L/(m2*h),只相当于正常水平的60%左右,微滤时长显著增加;(2)纳滤过程浓差极化严重,浓缩液浓缩达不到目标值2万μg/ml左右。
对所得产品进行高效液相色谱分析,结果表明:林可霉素A组分含量85.6%,林可霉素B组分含量3.2%,总杂0.53%,产品质量如表3所示:
表3实施例3所得产品组分结果
组分(%) Linc-A Linc-B 杂A 杂B之和 杂C 未知杂质 总杂
质量要求 ≥82.5 ≤5.0 ≤0.5 ≤0.5 ≤0.2 ≤0.1 ≤2.0
盐酸林可霉素产品 85.6 3.2 0.17 0.09 0.18 0.09 0.53
实施例4
4.1发酵液微滤
将500Kg发酵液转入中间罐,使用30%NaOH溶液将发酵液调pH至7.2,直接使用陶瓷膜进行微。当过滤所得滤液为250Kg时,向发酵液浓缩端连续流加清洗水进行透析,当滤液质量达到1150Kg时,停止微滤(选用膜孔径500nm陶瓷膜)。
4.2微滤液纳滤浓缩
将所得滤液混合均匀后进行纳滤,浓缩至微滤液体积的1/6,即得水相浓缩液190Kg。
4.3水相浓缩液碱化处理及过滤
将水相浓缩液转入中间罐,开启搅拌,使用30%NaOH溶液调节pH至11.0-11.5,依次加入浓度为10%聚合氯化铝溶液6.3Kg、浓度为2‰聚丙烯酰胺溶液浓度为1.3Kg,搅拌均匀后碟片离心机过滤,即得碱化清液。
4.4碱化清液萃取
将碱化清液、萃取剂(正辛醇溶剂)分别泵入萃取罐静态萃取,碱化清液与萃取剂的体积比为1:1,萃取完成后,分相。向正辛醇相萃取液加入0.5倍纯化水,加盐酸调节体系pH至2.5,实现林可霉素由醇相向水相的反向萃取,水相转入减压浓缩,醇相再生后套用至萃取。
4.5减压浓缩
将水相反萃液连续泵入薄膜蒸发器,于50-80℃减压蒸发浓缩,真空度0.09MPa以上,浓缩至原萃取液体积的1/5至1/4后转入结晶罐。
4.6加丙酮溶析结晶
将水相浓缩液降温至10-15℃,流加12倍浓缩液体积的低温(10-15℃)丙酮溶析结晶,丙酮流加完成后降温至0-10℃,离心分离,于70-75℃干燥,即得盐酸林可霉素。
对所得产品进行高效液相色谱分析,结果表明:林可霉素A组分含量84.5%,林可霉素B组分含量3.9%,总杂0.88%,产品质量如表3所示:
表4实施例4所得产品组分结果
组分(%) Linc-A Linc-B 杂A 杂B之和 杂C 未知杂质 总杂
质量要求 ≥82.5 ≤5.0 ≤0.5 ≤0.5 ≤0.2 ≤0.1 ≤2.0
盐酸林可霉素产品 84.5 3.9 0.37 0.10 0.32 0.09 0.88

Claims (8)

1.一种盐酸林可霉素的提取方法,其特征在于,所述方法包括以下步骤:
S1)将林可霉素发酵液依次经微滤、纳滤后,得到水相浓缩液;
S2)将所述水相浓缩液碱化处理后综合絮凝除杂,过滤,碱化清液使用萃取剂萃取,得到萃取液,其具体操作为:将所述水相浓缩液pH调至8.0-12.0,依次加入聚合氯化铝溶液和聚丙烯酰胺溶液絮凝除杂,离心过滤,得到的碱化清液与萃取剂分别输送至萃取塔,搅拌,在线调节体系pH至8.0-12.0,通过分相室静置分相,即得上层萃取液与下层萃余水相,萃取剂为丁醇;
S3)将所述萃取液于50-80℃减压蒸发浓缩,浓缩至原萃取液体积的1/5至1/4得到浓缩液,将浓缩液转移至结晶罐,于65-85℃加盐酸反应结晶,控制体系终点pH为2.0-3.0,加酸完成后降温至0-10℃结晶,离心分离,干燥即得盐酸林可霉素。
2.根据权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤S1)微滤所用的微滤膜的规格为膜孔径100-1200nm;所述微滤的膜为金属膜或陶瓷膜,微滤压力为0.1-0.2MPa。
3.根据权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤S1)纳滤所使用的膜的规格为100-300Da;所述纳滤的膜为聚醚或聚砜类纳滤膜,纳滤压力为1.5-3.0MPa。
4.根据权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤S1)林可霉素发酵液菌浓为28-38%,微滤过程林可霉素料液pH为7.0-7.5。
5.根据权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤S1)具体为:将林可霉素发酵液经微滤至滤液体积为发酵液体积的0.2-0.7倍,然后向浓缩端连续补加清水继续微滤至清液体积为发酵液体积的1.5-3倍,即得微滤液,再将所述微滤清液进行纳滤,直至浓缩液体积为微滤液体积的0.1-0.2倍,即得水相浓缩液。
6.根据权利要求1所述的方法,其特征在于:所述萃取塔的萃取过程为震动筛板塔逆流连续萃取。
7.根据权利要求1所述的方法,其特征在于:所述聚合氯化铝溶液浓度为5-10%,加入量为水相浓缩液体积的5-20%;所述聚丙烯酰胺分子量为800-1400万,聚丙烯酰胺溶液浓度为5-10‰,加入量为水相浓缩液体积的1-2‰。
8.根据权利要求1所述的方法,其特征在于:所述水相浓缩液与萃取剂的体积比为1:(0.4-1.2),萃取剂为丁醇。
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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN111592576B (zh) * 2020-05-11 2023-11-24 天方药业有限公司 盐酸林可霉素的丁醇结晶母液的处理方法
CN112875954A (zh) * 2021-04-22 2021-06-01 莱特莱德(上海)技术有限公司 一种林可霉素生产废水的膜法处理方法及系统

Citations (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1709902A (zh) * 2005-07-18 2005-12-21 亓平言 林可霉素提取工艺
CN102746348A (zh) * 2011-04-19 2012-10-24 上海医药工业研究院 一种林可霉素的分离方法
CN103724380A (zh) * 2013-12-25 2014-04-16 江苏久吾高科技股份有限公司 一种林可霉素的提取方法
CN104861007A (zh) * 2015-06-02 2015-08-26 江苏海阔生物医药有限公司 一种利用树脂吸附发酵原液提取林可霉素的方法
CN105237593A (zh) * 2015-11-17 2016-01-13 宁夏泰益欣生物科技有限公司 盐酸林可霉素提取方法
CN107474081A (zh) * 2017-08-20 2017-12-15 合肥信达膜科技有限公司 一种高效的提取林可霉素的膜法工艺
CN107954949A (zh) * 2018-01-18 2018-04-24 四川龙蟒福生科技有限责任公司 一种赤霉酸的精制方法
CN109134556A (zh) * 2018-10-18 2019-01-04 江西国药有限责任公司 林可霉素的盐酸结晶分离纯化方法

Patent Citations (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1709902A (zh) * 2005-07-18 2005-12-21 亓平言 林可霉素提取工艺
CN102746348A (zh) * 2011-04-19 2012-10-24 上海医药工业研究院 一种林可霉素的分离方法
CN103724380A (zh) * 2013-12-25 2014-04-16 江苏久吾高科技股份有限公司 一种林可霉素的提取方法
CN104861007A (zh) * 2015-06-02 2015-08-26 江苏海阔生物医药有限公司 一种利用树脂吸附发酵原液提取林可霉素的方法
CN105237593A (zh) * 2015-11-17 2016-01-13 宁夏泰益欣生物科技有限公司 盐酸林可霉素提取方法
CN107474081A (zh) * 2017-08-20 2017-12-15 合肥信达膜科技有限公司 一种高效的提取林可霉素的膜法工艺
CN107954949A (zh) * 2018-01-18 2018-04-24 四川龙蟒福生科技有限责任公司 一种赤霉酸的精制方法
CN109134556A (zh) * 2018-10-18 2019-01-04 江西国药有限责任公司 林可霉素的盐酸结晶分离纯化方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
林可霉素发酵液组合连续絮凝;董明等;《化工学报》;20060331;第57卷(第3期);第630-635页 *

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