WO2020032185A1 - カチオン性脂質を用いた心筋細胞へのトランスフェクション方法 - Google Patents

カチオン性脂質を用いた心筋細胞へのトランスフェクション方法 Download PDF

Info

Publication number
WO2020032185A1
WO2020032185A1 PCT/JP2019/031418 JP2019031418W WO2020032185A1 WO 2020032185 A1 WO2020032185 A1 WO 2020032185A1 JP 2019031418 W JP2019031418 W JP 2019031418W WO 2020032185 A1 WO2020032185 A1 WO 2020032185A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
linear
alkyl group
mrna
integer
cells
Prior art date
Application number
PCT/JP2019/031418
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
善紀 吉田
健嗣 三木
悟 松本
Original Assignee
国立大学法人京都大学
武田薬品工業株式会社
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 国立大学法人京都大学, 武田薬品工業株式会社 filed Critical 国立大学法人京都大学
Priority to US17/267,602 priority Critical patent/US20220145329A1/en
Priority to JP2020535883A priority patent/JP7436990B2/ja
Priority to CN201980052837.1A priority patent/CN112639111B/zh
Priority to EP19846186.5A priority patent/EP3842538A4/en
Publication of WO2020032185A1 publication Critical patent/WO2020032185A1/ja

Links

Images

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/87—Introduction of foreign genetic material using processes not otherwise provided for, e.g. co-transformation
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602—Vertebrate cells
    • C12N5/0652—Cells of skeletal and connective tissues; Mesenchyme
    • C12N5/0657—Cardiomyocytes; Heart cells
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/999—Small molecules not provided for elsewhere
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2506/00—Differentiation of animal cells from one lineage to another; Differentiation of pluripotent cells
    • C12N2506/45—Differentiation of animal cells from one lineage to another; Differentiation of pluripotent cells from artificially induced pluripotent stem cells
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2510/00—Genetically modified cells
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2513/00—3D culture

Definitions

  • the present invention relates to a composition that enables introduction of a nucleic acid into a cardiomyocyte. Furthermore, the present invention relates to a method for transfecting nucleic acid into cardiomyocytes, and a method for purifying and producing cardiomyocytes using such a composition.
  • ES cells embryonic stem cells
  • iPS cells induced pluripotent stem cells
  • cardiomyocytes As a method for selecting cardiomyocytes, a method for selecting cardiomyocytes using a surface marker for cardiomyocytes or cardiomyocyte progenitors is often used. It is described that cardiomyocytes contained in a cell population induced to differentiate from pluripotent stem cells or the like can be purified using “miRNA-responsive off-switch mRNA” corresponding to the mRNA being used.
  • Non-Patent Document 2 discloses L ⁇ -Phosphatidylcholine (PC), 1,2- Dipalmitoyl-sn-Glycero-3-Phopshoethanolamine (DPPE ) And Cholesterol (CHOL) ⁇ ⁇ L L L (LNP) FI ⁇ ⁇ L L L L L L ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ Have been.
  • An object of the present invention is to provide a means, particularly a transfection method, which can be used to carry out the method described in Patent Document 4, for example, and which has excellent nucleic acid introduction efficiency into cardiomyocytes. .
  • an object of the present invention is to provide a method for purifying and producing a cardiomyocyte utilizing such means.
  • n1 is an integer of 2 to 6
  • n2 is an integer of 0 to 2
  • n3 is an integer of 0 to 2
  • L represents —C (O) O— or —NHC (O) O—
  • Ra represents a linear C 5-13 alkyl group, a linear C 13-17 alkenyl group or a linear C 17 alkadenyl group
  • Rb represents a linear C 2-9 alkyl group
  • Rc represents a hydrogen atom or a linear C 2-9 alkyl group
  • Rd represents a hydrogen atom or a linear C 2-9 alkyl group
  • Re represents a linear C 2-9 alkyl group
  • Rf represents a linear C 2-9 alkyl group.
  • a compound represented by or a salt thereof A method for transfecting a cardiomyocyte with a nucleic acid, comprising a step of contacting a cell population containing a cardiomyocyte with a composition containing 2) a structural lipid and 3) a nucleic acid.
  • Item 2 The method according to Item 1, wherein the nucleic acid is mRNA.
  • the mRNA is (I) a cardiomyocyte-specific miRNA-responsive mRNA comprising a nucleotide sequence specifically recognized by a miRNA specifically expressed in a cardiomyocyte, and a nucleotide sequence encoding a functional gene; and / or (Ii) mRNA containing a base sequence encoding a functional gene Item 3.
  • the method according to Item 2 comprising: [4]
  • the mRNA is (I) a ventricular myocyte-specific miRNA-responsive mRNA comprising a base sequence specifically recognized by a miRNA specifically expressed in ventricular myocytes, and a base sequence encoding a functional gene; and And / or (ii) mRNA containing a base sequence encoding a functional gene Item 3.
  • the method according to Item 2, comprising: [5] One or more genes selected from the group consisting of a drug resistance gene, a gene encoding a fluorescent protein, an apoptosis inducing gene and a suicide gene, wherein the functional genes (i) and (ii) are each independently Item 5.
  • the cell population containing cardiomyocytes is a cell population containing cardiomyocytes differentiated from induced pluripotent stem cells, embryonic stem cells or other stem cells.
  • n1 is an integer of 2 to 6
  • n2 is an integer of 0 to 2
  • n3 is an integer of 0 to 2
  • L represents —C (O) O— or —NHC (O) O—
  • Ra represents a linear C 5-13 alkyl group, a linear C 13-17 alkenyl group or a linear C 17 alkadenyl group
  • Rb represents a linear C 2-9 alkyl group
  • Rc represents a hydrogen atom or a linear C 2-9 alkyl group
  • Rd represents a hydrogen atom or a linear C 2-9 alkyl group
  • Re represents a linear C 2-9 alkyl group
  • Rf represents a linear C 2-9 alkyl group.
  • a method for purifying cardiomyocytes comprising the step of contacting a composition comprising the following with a cell population containing cardiomyocytes, wherein the mRNA is (I) a cardiomyocyte-specific miRNA-responsive mRNA comprising a nucleotide sequence specifically recognized by a miRNA specifically expressed in a cardiomyocyte, and a nucleotide sequence encoding a functional gene; and / or (Ii) mRNA containing a base sequence encoding a functional gene
  • a method for purifying cardiomyocytes comprising: [8] 1) Formula (I): [In the formula, n1 is an integer of 2 to 6, n2 is an integer of 0 to 2, n3 is an integer of 0 to 2, L represents —C (O) O— or —NHC (O) O— Ra represents a linear C 5-13 alkyl group, a linear C 13-17 alkenyl group or
  • a method for purifying ventricular myocytes comprising the step of contacting a composition comprising: (I) a ventricular myocyte-specific miRNA-responsive mRNA comprising a base sequence specifically recognized by a miRNA specifically expressed in ventricular myocytes, and a base sequence encoding a functional gene; and And / or (ii) mRNA containing a base sequence encoding a functional gene
  • a method for purifying ventricular myocytes comprising: [9] 1) Formula (I): [In the formula, n1 is an integer of 2 to 6, n2 is an integer of 0 to 2, n3 is an integer of 0 to 2, L represents —C (O) O— or —NHC (O) O— Ra represents a linear C 5-13 alkyl group, a linear C 13-17 alkenyl group or a linear C 17 alkadenyl group; Rb represents a linear C 2-9 alkyl
  • a method for producing cardiomyocytes comprising the step of contacting a composition comprising: and a cell population comprising cardiomyocytes, wherein the mRNA comprises (I) a cardiomyocyte-specific miRNA-responsive mRNA comprising a nucleotide sequence specifically recognized by a miRNA specifically expressed in a cardiomyocyte, and a nucleotide sequence encoding a functional gene; and / or (Ii) mRNA containing a base sequence encoding a functional gene
  • a method for producing a cardiomyocyte comprising: [10] 1) Formula (I): [In the formula, n1 is an integer of 2 to 6, n2 is an integer of 0 to 2, n3 is an integer of 0 to 2, L represents —C (O) O— or —NHC (O) O— Ra represents a linear C 5-13 alkyl group, a linear C 13-17 alkenyl group or a
  • a compound represented by or a salt thereof, 2) structural lipids, and 3) mRNA A method for producing ventricular myocytes, comprising the step of contacting a composition comprising: and a cell population comprising ventricular myocytes, wherein the mRNA comprises: (I) a ventricular myocyte-specific miRNA-responsive mRNA comprising a base sequence specifically recognized by a miRNA specifically expressed in ventricular myocytes, and a base sequence encoding a functional gene; and And / or (ii) mRNA containing a base sequence encoding a functional gene
  • a method for producing ventricular myocytes comprising: [11] 1) Formula (I): [In the formula, n1 is an integer of 2 to 6, n2 is an integer of 0 to 2, n3 is an integer of 0 to 2, L represents —C (O) O— or —NHC (O) O— Ra represents a linear C 5-13 alkyl group, a linear C 13-17 alkenyl group or a linear C 17
  • a compound represented by or a salt thereof A composition for transfection of a cardiomyocyte with 2) a structural lipid, and 3) a nucleic acid.
  • a compound represented by or a salt thereof A kit for transfection of cardiomyocytes with 2) structural lipids and
  • the “compound represented by the formula (I)” may be referred to as “compound (I)” in some cases.
  • the “compound represented by the formula (I) or a salt thereof” may be referred to as a “compound of the present invention”.
  • the “lipid particles containing the compound represented by the formula (I) or a salt thereof (the compound of the present invention)” may be referred to as “lipid particles of the present invention”.
  • a composition for transfection of a nucleic acid into a cardiomyocyte containing the compound of the present invention, the structural lipid, and the nucleic acid may be referred to as a “composition of the present invention”.
  • a kit for transfection of a nucleic acid into a cardiomyocyte containing a compound of the present invention, a structural lipid, and a nucleic acid may be referred to as a “kit of the present invention”.
  • the transfection method of the present invention enables various nucleic acids to be introduced into cardiomyocytes with excellent transfection efficiency.
  • a cardiomyocyte-specific miRNA-responsive mRNA is used as a nucleic acid to efficiently purify cardiomyocytes in a cell population, in other words, to efficiently purify cardiomyocytes. It is possible to produce a purified product of a cell population containing
  • a specific cardiomyocyte subtype eg, ventricular myocyte
  • a specific cardiomyocyte in a cell population can be efficiently used. Only subtypes can be purified.
  • FIG. 1 shows that, in the examples, lipid nanoparticles (LNP) containing green fluorescent protein (GFP) mRNA prepared using “Messenger MAX” and LNP containing GFPL mRNA prepared using the compound of the present invention (preparation).
  • LNP lipid nanoparticles
  • GFP green fluorescent protein
  • FIG. 2 shows that in Examples, GFP @ mRNA-containing LNP prepared using "Messenger @ MAX” and GFP @ mRNA-containing LNP prepared using the compound of the present invention (Preparation Examples 8, 10, and 11) were converted into iPSCs.
  • FIG. 9 shows the results of flow cytometry analysis on the day after transfection into a cell population containing cardiomyocytes of origin.
  • transfection means introducing an arbitrary substance into a cell.
  • the inside of the cell includes at least the cytoplasm and the nucleus.
  • nucleic acid eg, “mRNA”
  • the amount of the nucleic acid used may vary depending on the conditions and purpose of transfection.
  • the amount of the mRNA used is 1 ng to 100 ⁇ g, preferably 100 ng to 5000 ng per 1 ⁇ 10 6 cells.
  • “Culture” or “culturing” refers to maintaining, growing, and / or differentiating cells outside a tissue or body, for example, in a dish, petri dish, flask, or culture tank (tank). Means
  • “Pluripotency” refers to the ability to differentiate into tissues and cells with a variety of different morphologies and functions and to differentiate into cells of any lineage of the three germ layers.
  • a “pluripotency” is a “totipotency” that can differentiate into any tissue of the organism, including the scutellum, in that it cannot differentiate into the scutellum and thus has no ability to form an individual. ".
  • Multipotency means the ability to differentiate into a plurality of a limited number of lineage cells. For example, mesenchymal stem cells, hematopoietic stem cells, and neural stem cells are multipotent, but not pluripotent.
  • Stetem cells include, for example, pluripotent stem cells.
  • “Pluripotent stem cells” that can be used in the present invention can be differentiated into tissues and cells having various different morphologies and functions of a living body, and can be divided into three germ layers (endoderm, mesoderm, ectoderm) Refers to stem cells that have the ability to differentiate into cells of any lineage. Examples thereof include, but are not limited to, embryonic stem cells (ESC), embryonic stem cells derived from cloned embryos obtained by nuclear transfer, sperm stem cells, embryonic germ cells, induced pluripotent stem cells (in the present specification, “iPSC ”).
  • ESC embryonic stem cells
  • iPSC induced pluripotent stem cells
  • the“ multipotent stem cell ”(multipotent stem cell) that can be used in the present invention refers to a stem cell capable of differentiating into a plurality of cells of a limited number of lineages.
  • the “multipotent stem cells” that can be used in the present invention include dental pulp stem cells, oral mucosal stem cells, hair follicle stem cells, cultured fibroblasts, and somatic stem cells derived from bone marrow stem cells.
  • Preferred pluripotent stem cells are ESCs and iPSCs.
  • iPSCs Induced pluripotent stem cells
  • Nanog expression was selected as an index and established Nanog-iPS cells (Okita, K., Ichisaka, T., and Yamanaka, S. (2007). Nature 448, 313-317.), IPS cells prepared by a method without c-Myc (Nakagawa M, Yamanaka S., et al. Nature Biotechnology, (2008) 26, 101) -106), iPS cells (Okita K ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ et al. Nat. Methods 2011 May; 8 (5): 409-12, Okita K et al. Stem Cells. 31 3): 458-66.) Can be.
  • induced pluripotent stem cells Yu J., Thomson JA. Et al., Science (2007) 318: 318: established by introducing four factors of OCT3 / 4, SOX2, NANOG, and LIN28 produced by Thomson et al. 1917-1920.
  • Induced pluripotent stem cells produced by Daley et al. Park IH, Daley GQ. Et al., Nature (2007) 451: 141-146
  • induced pluripotent stem cells produced by Sakurada et al. Japanese Patent Application Laid-Open No. 2008-307007
  • iPSC strains established by NIH, RIKEN (RIKEN), Kyoto University, etc. can be used.
  • RIKEN RIKEN
  • RIKEN RIKEN
  • Kyoto University etc.
  • human iPSC strain RIKEN HiPS-RIKEN-1A strain
  • HiPS-RIKEN-2A strain HiPS-RIKEN-12A strain
  • Nips-B2 strain Kyoto University 253G1, 201B7, 409B2 strain
  • 454E2 Strains 606A1, 610B1 and 648A1 strains.
  • clinical grade cell lines provided by Kyoto University and Cellular @ Dynamics @ International, etc., and research and clinical cell lines produced using these cell lines may be used.
  • ESC embryonic stem cells
  • RIKEN RIKEN
  • NIH Various human ESC strains established by RIKEN, Kyoto University and Cellartis are available.
  • human ESC strains include NIH CHB-1 to CHB-12 strains, RUES1, RUES2 strains, HUES1 to HUES28 strains, WisCell Research H1 strains, H9 strains, RIKEN KhES-1 strains, and KhES-2 strains. Strains, KhES-3, KhES-4, KhES-5, SSES1, SSES2, SSES3 and the like can be used.
  • clinical grade cell lines and research and clinical cell lines produced using those cell lines may be used.
  • cardiomyocytes include one or more subtypes such as ventricular myocytes, atrial myocytes, and pacemaker cells, unless otherwise specified.
  • the term "cell population containing cardiomyocytes” means a cell population containing one or more types of cells other than cardiomyocytes and cardiomyocytes, both in vivo (in vivo) and ex vivo (exvivo). Or cultured (invitro).
  • the cell population containing cardiomyocytes is, for example, in vivo or collected by any method and ex vivo, peripheral blood, heart, bone marrow tissue, adipose tissue, skeletal muscle tissue, amniotic tissue, placental tissue, umbilical cord Cells that can be induced to differentiate into cardiomyocytes (eg, stem cells, pluripotent stem cells, ESC, iPSCs) can be cell populations contained in blood, etc. It may be a cell population (including embryoid bodies) obtained by culturing under conditions.
  • cells other than cardiomyocytes are not particularly limited, and include, for example, living tissue from which “cell population containing cardiomyocytes” is derived, and cells other than cardiomyocytes contained in culture.
  • the “cell population containing cardiomyocytes” is a cell population containing cells other than cardiomyocytes such as cardiomyocytes (including one or more subtypes) derived from iPSCs and undifferentiated iPSCs. is there.
  • the “cell population containing ventricular myocytes” is a cell population containing ventricular myocytes and one or more types of cells other than ventricular myocytes.
  • cells other than ventricular muscle cells is not particularly limited.
  • subcellular types of cardiomyocytes other than ventricular muscle cells eg, atrial muscle cells, pacemaker cells
  • the “cardiomyocytes”, “ventricular myocytes”, “cells other than myocardial cells” and “cells other than ventricular myocytes” in the present invention may be human-derived cells or non-human mammals (non-human (Mammals).
  • Non-human mammals include, for example, mice, rats, hamsters, guinea pigs, rabbits, dogs, cats, pigs, cows, horses, sheep, monkeys.
  • target cell means a cardiomyocyte or a specific subtype thereof (eg, a ventricular muscle cell, an atrial muscle cell, a pacemaker cell, etc.) to be transfected according to the present invention.
  • miRNA refers to a short-chain (usually 20 to 25 bases) non-coding RNA present in a cell and involved in the regulation of gene expression through inhibition of translation of mRNA into protein and degradation of mRNA. It is.
  • This miRNA is transcribed from the DNA as a single-stranded pri-miRNA capable of taking a hairpin loop structure containing the miRNA and its complementary strand, and partially cut by an enzyme called Drosha in the nucleus to cut the pre-miRNA. After being transported out of the nucleus, it is further cut by Dicer to function.
  • “Comprise (s) or comprising” indicates the inclusion of, but is not limited to, the element following the phrase. Thus, inclusion of an element that follows the phrase is suggested, but not exclusion of any other element.
  • Consist (s) of or consistent of means including and limited to any element that follows the phrase. Thus, the phrase “consisting of” indicates that the listed elements are required or required, and that no other elements are substantially present.
  • consisting essentially of is meant to include any element that follows the phrase and to be limited to that element that does not affect the activity or action identified in this disclosure for that element. . Thus, the phrase “consisting essentially of” requires or requires the listed elements, while other elements are optional and may affect the activity or action of the listed elements. , Depending on whether or not it is caused, there is a case where it does not exist.
  • linear C 5-13 alkyl group examples include pentyl, hexyl, heptyl, octyl, nonyl, decanyl, undecanyl, dodecanyl, and tridecanyl.
  • the “linear C 13-17 alkenyl group” includes, for example, 1-tridecenyl, 2-tridecenyl, 3-tridecenyl, 4-tridecenyl, 5-tridecenyl, 6-tridecenyl, 7-tridecenyl, 8 -Tridecenyl, 9-tridecenyl, 10-tridecenyl, 11-tridecenyl, 12-tridecenyl; 1-tetradecenyl, 2-tetradecenyl, 3-tetradecenyl, 4-tetradecenyl, 5-tetradecenyl, 6-tetradecenyl, 7-tetradecenyl, 8-tetradecenyl 9-tetradecenyl, 10-tetradecenyl, 11-tetradecenyl, 12-tetradecenyl, 13-tetradecenyl; 1-pentadecenyl,
  • the “linear C 17 alkadienyl group” includes, for example, 1,3-heptadecadienyl, 1,4-heptadecadienyl, 1,5-heptadecadienyl, 1,6- Heptadecadienyl, 1,7-heptadecadienyl, 1,8-heptadecadienyl, 1,9-heptadecadienyl, 1,10-heptadecadienyl, 1,11-heptadecadienyl, 1,12-heptadecadienyl, 1,13-heptadecadienyl, 1,14-heptadecadienyl, 1,15-heptadecadienyl, 1,16-heptadecadienyl, 2,4-hepta Decadienyl, 2,5-heptadecadienyl, 2,6-heptadecadienyl, 2,7-heptadecadieny
  • linear C 2-9 alkyl group examples include ethyl, butyl, propyl, pentyl, hexyl, heptyl, octyl, and nonyl.
  • n1 is preferably an integer of 3 to 5.
  • n2 is preferably an integer of 0 to 2.
  • n3 is preferably an integer of 0 to 2.
  • L is preferably -C (O) O-.
  • Ra is preferably a straight-chain C 5-9 alkyl group, a straight-chain C 13-17 alkenyl group or a straight-chain C 17 alkadienyl group.
  • Rb is preferably a linear C 4-8 alkyl group.
  • Rc is preferably a hydrogen atom or a linear C 4-7 alkyl group.
  • Rd is preferably a hydrogen atom or a linear C 3-6 alkyl group.
  • Re is preferably a linear C 3-6 alkyl group.
  • Rf is preferably a linear C 3-7 alkyl group.
  • n1 is an integer of 3 to 5
  • L is -C (O) O-
  • Ra is linear A C 5-9 alkyl group
  • Rb is a linear C 4-8 alkyl group
  • Rc is a hydrogen atom
  • Rd is a hydrogen atom
  • Re is a linear C 3-6 alkyl group.
  • Rf is a linear C 3-7 alkyl group.
  • n1 is an integer of 3 to 5, n2 is 0 or 1, n3 is 0 or 1, L is —C (O) O—, and Ra is linear A C 5-9 alkyl group, Rb is a linear C 4-8 alkyl group, Rc is a linear C 5-7 alkyl group, Rd is a hydrogen atom, and Re is a linear C 4-8 alkyl group.
  • a compound wherein the compound is a 3-6 alkyl group and Rf is a linear C 3-7 alkyl group.
  • n1 is an integer of 3 to 5, n2 is 0 or 1, n3 is an integer of 0 to 2, L is -C (O) O-, and Ra is A linear C 5-9 alkyl group, Rb is a linear C 4-8 alkyl group, Rc is a hydrogen atom, Rd is a linear C 3-6 alkyl group, and Re is a linear C 5-9 alkyl group; A compound having a linear C 3-6 alkyl group and Rf being a linear C 3-7 alkyl group.
  • n1 is an integer of 3 to 5
  • n2 is 0 or 1
  • n3 is an integer of 0 to 2
  • L is -C (O) O-
  • Ra is A linear C 13-17 alkenyl group or a linear C 17 alkadienyl group
  • Rb is a linear C 3-6 alkyl group
  • Rc is a linear C 3-6 alkyl group
  • Rd is Compounds which are a hydrogen atom
  • Re is a linear C 2-6 alkyl group
  • Rf is a linear C 2-7 alkyl group.
  • n1 is 3 or 4
  • n2 is 0, n3 is 0 or 2
  • L is —C (O) O—
  • Ra is a linear C 7 alkyl group.
  • Rb is a straight-chain C 6 alkyl group
  • Rc is a hydrogen atom
  • Rd is a hydrogen atom
  • Re is a straight-chain C 5-6 alkyl group
  • Rf is a straight-chain C 6-7
  • n1 is an integer of 3 to 5, n2 is 0 or 1, n3 is 0 or 1, L is —C (O) O—, and Ra is linear C 6 a -7 alkyl group, Rb is a straight chain C 5-6 alkyl group, Rc is a linear C 5-6 alkyl group, Rd is a hydrogen atom, Re is a linear C 4- A compound having 5 alkyl groups and Rf being a linear C 5-6 alkyl group.
  • n1 is an integer of 3 ⁇ 5, n2 is 0, n3 is 2, L is -C (O) O-, Ra is linear C 5-9 alkyl group Rb is a linear C 3-8 alkyl group, Rc is a hydrogen atom, Rd is a linear C 3-5 alkyl group, and Re is a linear C 3-5 alkyl group. And Rf is a linear C 3-5 alkyl group.
  • n1 is an integer of 3 to 5
  • n2 is 0 or 1
  • n3 is an integer of 0 to 2
  • L is -C (O) O-
  • Ra is linear A C 13-17 alkenyl group or a linear C 17 alkadienyl group
  • Rb is a linear C 3-5 alkyl group
  • Rc is a linear C 3-5 alkyl group
  • Rd is a hydrogen atom
  • Re is a linear C 3-6 alkyl group and Rf is a linear C 3-7 alkyl group.
  • the salt of compound (I) is preferably a pharmacologically acceptable salt, for example, a salt with an inorganic base, a salt with an organic base, a salt with an inorganic acid, a salt with an organic acid, a basic or acidic salt And salts with amino acids.
  • the salt with an inorganic base include an alkali metal salt such as a sodium salt and a potassium salt; an alkaline earth metal salt such as a calcium salt and a magnesium salt; an aluminum salt and an ammonium salt.
  • alkali metal salt such as a sodium salt and a potassium salt
  • alkaline earth metal salt such as a calcium salt and a magnesium salt
  • aluminum salt and an ammonium salt Preferred are sodium, potassium, calcium, and magnesium salts, and more preferred are sodium and potassium salts.
  • salts with organic bases include trimethylamine, triethylamine, pyridine, picoline, ethanolamine, diethanolamine, triethanolamine, tromethamine [tris (hydroxymethyl) methylamine], tert-butylamine, cyclohexylamine, benzylamine, And salts with dicyclohexylamine and N, N-dibenzylethylenediamine.
  • salts with inorganic acids include salts with hydrofluoric acid, hydrochloric acid, hydrobromic acid, hydroiodic acid, nitric acid, sulfuric acid, and phosphoric acid. Preferred are salts with hydrochloric acid and salts with phosphoric acid.
  • salts with organic acids include formic acid, acetic acid, trifluoroacetic acid, phthalic acid, fumaric acid, oxalic acid, tartaric acid, maleic acid, citric acid, succinic acid, malic acid, methanesulfonic acid, benzenesulfonic acid , P-toluenesulfonic acid.
  • salts with basic amino acids include salts with arginine, lysine and ornithine.
  • salts with acidic amino acids include salts with aspartic acid and glutamic acid.
  • cardiomyocytes containing 1) a compound represented by the formula (I) or a salt thereof (the compound of the present invention), 2) a structural lipid, and 3) a nucleic acid.
  • a predetermined nucleic acid is introduced into cardiomyocytes using the nucleic acid transfection composition of the present invention, that is, the composition of the present invention.
  • the compound of the present invention and the structural lipid contained in the composition of the present invention form a lipid particle, and the nucleic acid is encapsulated in the lipid particle.
  • the “structural lipid” is not particularly limited as long as it can form lipid particles after mixing with the compound of the present invention to prepare a mixed lipid component.
  • Such structural lipids include, for example, Sterols (eg, cholesterol, cholesterol ester, cholesterol hemisuccinic acid, etc.); Phospholipids (eg, phosphatidylcholine (eg, dipalmitoyl phosphatidylcholine, distearoyl phosphatidylcholine, lysophosphatidylcholine, dioleoylphosphatidylcholine, palmitoyloleoylphosphatidylcholine, dipalmitoylphosphatidylcholine, dilinolenoylphosphatidylcholine, MC-1010 (NOFCORPOR)) (NOF CORPORATION), MC-4040 (NOF CORPORATION), MC-6060 (NOF CORPORATION), MC-8080 (NOF CO
  • sterols particularly, cholesterol
  • phospholipids particularly, phosphatidylcholine
  • polyethylene glycol lipids as structural lipids.
  • the ratio of the compound of the present invention to the structural lipid in the composition of the present invention can be appropriately adjusted depending on the purpose.
  • the structural lipid when a lipid particle is formed by the mixed lipid component containing the compound of the present invention and the structural lipid, the structural lipid is usually 0.008 to 1 mol per mole of the compound of the present invention.
  • the ratio is 4 mol, preferably 0.4 to 1.5 mol.
  • the compound of the present invention is usually 1 to 4 mol
  • sterols is usually 0 to 3 mol
  • phospholipid is usually 0 to 2 mol
  • polyethylene glycol lipid is usually in the mixed lipid component. It is a ratio of 0 to 1 mol.
  • a more preferred embodiment when the compound of the present invention is used in combination with another lipid component is 1 to 1.5 mol of the compound of the present invention, 0 to 1.25 mol of sterols, 0 to 0.5 mol of phospholipid. And 0 to 0.125 mol of polyethylene glycol lipid.
  • nucleic acid may be any molecule as long as it is a polymer of a nucleotide and a molecule having a function equivalent to the nucleotide, such as RNA that is a polymer of ribonucleotide, DNA that is a polymer of deoxyribonucleotide, Examples thereof include a polymer in which nucleotides and deoxyribonucleotides are mixed, and a nucleotide polymer including a nucleotide analog, and further a nucleotide polymer including a nucleic acid derivative.
  • the nucleic acid may be a single-stranded nucleic acid or a double-stranded nucleic acid.
  • the double-stranded nucleic acid also includes a double-stranded nucleic acid in which one strand hybridizes to another strand under stringent conditions.
  • Nucleotide analogs include, as compared to RNA or DNA, ribonucleases for improving or stabilizing nuclease resistance, increasing affinity with complementary strand nucleic acids, increasing cell permeability, or visualizing. Any molecule may be used as long as it is a modified molecule of nucleotide, deoxyribonucleotide, RNA or DNA.
  • the nucleotide analog may be a naturally occurring molecule or a non-natural molecule, such as a sugar-modified nucleotide analog or a phosphodiester bond-modified nucleotide analog.
  • the sugar moiety-modified nucleotide analog may be any analog as long as an arbitrary chemical structural substance is added or substituted to part or all of the chemical structure of the nucleotide sugar, and specific examples thereof include 2 ′ Nucleotide analogue substituted with -O-methylribose, nucleotide analogue substituted with 2'-O-propylribose, nucleotide analogue substituted with 2'-methoxyethoxyribose, 2'-O-methoxyethylribose Nucleotide analogue substituted with 2'-O- [2- (guanidium) ethyl] ribose, nucleotide analogue substituted with 2'-fluororibose, sugar moiety substituted with morpholino ring Nucleic acid analog (morpholino nucleic acid) has two cyclic structures by introducing a cross-linking structure into the sugar moiety Artificial nucleic acid (Bridge
  • any or all of the chemical structure of the nucleotide phosphodiester bond may be added or substituted with any chemical substance, and specific examples thereof include Can be exemplified by nucleotide analogs substituted by phosphorothioate bonds, nucleotide analogs substituted by N3'-P5 'phosphoramidate bonds [Cell Engineering, ⁇ 16, ⁇ 1463-1473 ⁇ (1997)] [RNAi method And the antisense method, Kodansha (2005)].
  • nucleic acid derivative compared to nucleic acids, in order to improve nuclease resistance, stabilize, increase affinity with complementary strand nucleic acid, increase cell permeability, or visualize the nucleic acid with another chemical compound.
  • Any molecule may be used as long as it is a molecule to which a substance is added. Specific examples thereof include 5′-polyamine addition derivatives, cholesterol addition derivatives, steroid addition derivatives, bile acid addition derivatives, vitamin addition derivatives, Cy5 addition derivatives, and Cy3 addition derivatives. , 6-FAM addition derivatives, and biotin addition derivatives.
  • the nucleic acid according to the present invention is not particularly limited as long as it is capable of purifying or producing a target cell, or other intended purpose by contacting with a cell population containing the target cell and transfecting the target cell. Not limited.
  • the nucleic acid is mRNA.
  • MRNA means RNA containing a base sequence that can be translated into a protein.
  • the mRNA in the present invention is not particularly limited as long as it can express a desired protein in a cell.
  • the mRNA has a nucleotide sequence encoding a functional gene, which may be further bound to a nucleotide sequence specifically recognized by the miRNA specifically expressed in the target cell. MRNA.
  • the mRNA comprises the following (i) and / or (ii): (I) a cardiomyocyte (or cardiomyocyte) comprising a nucleotide sequence specifically recognized by a miRNA specifically expressed in the cardiomyocyte (or cardiomyocyte subtype) and a nucleotide sequence encoding a functional gene Subtype) specific miRNA-responsive mRNA; (Ii) mRNA containing a base sequence encoding a functional gene.
  • the “cardiomyocyte (or cardiomyocyte subtype) -specific miRNA-responsive mRNA” in the embodiment (i) is “specifically expressed by a miRNA specifically expressed in a cardiomyocyte (or cardiomyocyte subtype)”.
  • cardiomyocyte or cardiomyocyte subtype
  • a “miRNA specifically expressed in a cardiomyocyte (or cardiomyocyte subtype)” is present, “functional” Translation of the “gene” into a protein is suppressed, and the expression level (abundance) of the protein in cardiomyocytes (or cardiomyocyte subtypes) decreases.
  • a cardiomyocyte or a cardiomyocyte subtype in which “a miRNA specifically expressed in a cardiomyocyte (or a cardiomyocyte subtype)” exists, and a cardiomyocyte (a cardiomyocyte in which such a miRNA does not exist) ( Or a non-cardiomyocyte subtype), resulting in a difference in the expression level of the “functional gene” between the cells and the other cells, so that the myocardial cell (or myocardial cell subtype) can be distinguished from other cells .
  • RNA specifically expressed in cardiomyocytes refers to cells other than cardiomyocytes, more specifically, those other than cardiomyocytes in a cell population containing cardiomyocytes.
  • the miRNA is not particularly limited as long as it is a miRNA that is more highly expressed in cardiomyocytes as compared to the cells of the above.
  • the expression level of cardiomyocyte-specific miRNA in cardiomyocytes is 10% or more, 20% or more, 30% or more, 40% or more, 50% or more, compared to the expression level in cells other than cardiomyocytes. % Or more, 70% or more, 80% or more, or 90% or more miRNA.
  • miRNAs are registered in information of a database (for example, http://www.mirbase.org/ or http://www.microrna.org/), and / or are described in the database. It can be appropriately selected from miRNAs described in literature information.
  • miRNAs specifically expressed in cardiomyocytes include hsa-miR-1, hsa-miR-22-5p, hsa-miR-133a, hsa-miR-133b, hsa-miR-143-3p, hsa-miR-145-3p, hsa-miR-208a-3p, hsa-miR-208b-3p, hsa-miR-490-3p, hsa-miR-490-5p, hsa-miR-499a-5p, hsa- miR-1271-5p, hsa-miR-3907, hsa-miR-4324, and hs
  • cardiomyocyte-specific miRNA examples include hsa-miR-1, hsa-miR-208a-3p, hsa-miR-208b-3p and hsa-miR-499a-5p.
  • a base sequence specifically recognized by a miRNA specifically expressed by a miRNA specifically expressed by a cardiomyocyte subtype in the above (i), and a base sequence encoding a functional gene As a specific embodiment of a cardiomyocyte subtype-specific miRNA-responsive mRNA, a nucleotide sequence specifically recognized by a miRNA specifically expressed in ventricular myocytes, and a nucleotide sequence encoding a functional gene
  • a ventricular myocyte-specific miRNA-responsive mRNA including: "Ventricular myocyte-specific miRNA-responsive mRNA" is a "controllable” of "base sequences specifically recognized by miRNAs specifically expressed in ventricular myocytes" and "functional genes”. "Linked" nucleic acids.
  • the expression of the “functional gene” is controlled by the “base sequence specifically recognized by the miRNA specifically expressed in ventricular myocytes”,
  • a present miRNA When "a present miRNA” is present, the translation of the "functional gene” into a protein is regulated according to its abundance.
  • a ventricular myocyte in which a “miRNA specifically expressed in a ventricular myocyte” is present translation of a “functional gene” into a protein is suppressed depending on its abundance.
  • the expression level (abundance) of the protein in ventricular myocytes decreases.
  • a “functional gene” is identified between a ventricular myocyte in which "a miRNA specifically expressed in ventricular myocyte” exists and a cell other than a ventricular myocyte in which such a miRNA is not present.
  • the ventricular myocytes can be distinguished from other cells.
  • ventricular myocyte-specific miRNA refers to cells other than ventricular myocytes, more specifically, a cell population containing ventricular myocytes.
  • the miRNA is not particularly limited as long as it is a miRNA expressed at a higher level in ventricular myocytes as compared with cells other than ventricular myocytes.
  • the expression level in ventricular myocytes is 10% or more, 20% or more, 30% or more, 40% or more, 50% as compared with the expression level in cells other than ventricular myocytes.
  • the miRNA may be 60% or more, 70% or more, 80% or more, or 90% or more miRNA.
  • Such miRNAs are registered in information of a database (for example, http://www.mirbase.org/ or http://www.microrna.org/), and / or are described in the database. It can be appropriately selected from miRNAs described in literature information.
  • preferred specific examples of the ventricular myocyte-specific miRNA include hsa-miR-208b-3p.
  • the “base sequence specifically recognized by miRNA specifically expressed in cardiomyocytes” (hereinafter referred to as “cardiomyocyte-specific miRNA recognition sequence”) interacts with a plurality of predetermined proteins to cause RISC (RNA-induced silencing complex) is a base sequence that is specifically recognized by a cardiomyocyte-specific miRNA in a state of forming.
  • the cardiomyocyte-specific miRNA recognition sequence may be any sequence as long as the cardiomyocyte-specific miRNA can be recognized and hybridized as RISC, and may be a completely complementary sequence or a sequence having a mismatch (mismatch). You may.
  • the cardiomyocyte-specific miRNA recognition sequence is 1% or less, 5% or less, 10% or less, 20% or less, 30% or less, 40% or less based on a sequence completely complementary to the cardiomyocyte-specific miRNA.
  • it may have a mismatch of 50% or less, or a mismatch of 1 base, 2 bases, 3 bases, 4 bases, 5 bases, 6 bases, 7 bases, 8 bases, 9 bases or 10 bases.
  • the base length of the cardiomyocyte-specific miRNA recognition sequence is not particularly limited, and may be an appropriate base length corresponding to the cardiomyocyte-specific miRNA (including RISC). Are preferred, and 20 or 21 bases are more preferred.
  • ventricular myocyte-specific miRNA recognition sequence “base sequence specifically recognized by miRNA specifically expressed in ventricular muscle cells” (hereinafter referred to as “ventricular myocyte-specific miRNA recognition sequence”). Is a base sequence that is specifically recognized by ventricular myocyte-specific miRNA in a state of interacting with a plurality of predetermined proteins to form a RISC (RNA-induced silencing complex).
  • the ventricular myocyte-specific miRNA recognition sequence may be any sequence as long as it is recognized by the ventricular myocyte-specific miRNA and hybridizable as RISC, and may be a completely complementary sequence or a sequence having a mismatch (mismatch). It may be.
  • the ventricular myocyte-specific miRNA recognition sequence is 1% or less, 5% or less, 10% or less, 20% or less, 30% or less, 40% or less based on a sequence completely complementary to the ventricular myocyte-specific miRNA. % Or 50% or less, or 1 base, 2 bases, 3 bases, 4 bases, 5 bases, 6 bases, 7 bases, 8 bases, 9 bases or 10 bases.
  • the base length of the ventricular myocyte-specific miRNA recognition sequence is not particularly limited, and may be an appropriate base length corresponding to the ventricular myocyte-specific miRNA (including RISC). Bases or less are preferred, and 20 or 21 bases are more preferred.
  • Table 2 shows standard cardiomyocyte-specific miRNA recognition sequences (completely complementary nucleotide sequences) corresponding to each of the cardiomyocyte-specific miRNA base sequences exemplified above.
  • the “functional gene” in the embodiment (i) can be used for the purification of cardiomyocytes in a cell population containing cardiomyocytes or for the purification of ventricular myocytes in a cell population containing ventricular myocytes.
  • Gene more generally, various genes that can be used to select a specific cell from a cell population, and are not particularly limited.
  • Such "functional genes” include, for example, drug resistance genes, genes encoding fluorescent proteins, apoptosis-inducing genes, and suicide genes.
  • the “functional genes” are each independently a drug resistance gene, a gene encoding a fluorescent protein, It can be selected from an apoptosis-inducing gene and a suicide gene, and may be the same or different.
  • Examples of the “drug resistance gene” include a kanamycin resistance gene, an ampicillin resistance gene, and a puromycin resistance gene. One of these genes may be used, or two or more of them may be used.
  • Examples of the "gene encoding a fluorescent protein” include, for example, blue fluorescent proteins such as Sirius, BFP and EBFP; cyan fluorescent proteins such as mTurquoise, TagCFP, AmCyan, mTFP1, MidoriishiCyan and CFP; TurboGFP, AcGFP, TagGFP, Azami-Green (E.g., hmAG1), green fluorescent proteins such as ZsGreen, EmGFP, EGFP, GFP2, HyPer; yellow fluorescent proteins such as TagYFP, EYFP, Venus, YFP, PhiYFP, PhiYFP-m, TurboYFP, ZsYellow, mBanana; KusabiraOrange (for example, hmKO2), orange fluorescent protein such as mOrange; red fluorescent protein such as TurboRFP, DsRed-Express, DsRed2, TagRFP, DsRed-Monomer, AsRed2, mStrawberry; TurboFP602, mRFP1, J
  • ⁇ apoptosis-inducing gene '' for example, I ⁇ B, Smac / DIABLO, ICE, HtrA2 / OMI, AIF, endonucleasecleG, Bax, Bak, Noxa, Hrk (harakiri), Mtd, Bim, Bad, Bid, PUMA, activated ⁇ caspase -3, Fas and Tk.
  • I ⁇ B I ⁇ B
  • Smac / DIABLO ICE
  • HtrA2 / OMI AIF
  • endonucleasecleG Bax
  • Bak Noxa
  • Hrk Yamakiri
  • Mtd Bim
  • Bad Bad
  • Bid PUMA
  • Fas and Tk Fas and Tk.
  • One of these genes may be used, or two or more of them may be used.
  • suicide gene examples include diphtheria A toxin, herpes simplex thymidine kinase gene (HSV-TK), carboxypeptidase G2 (CPG2), carboxylesterase (CA), cytosine deaminase (CD), and cytochrome P450 (cyt-450).
  • HSV-TK herpes simplex thymidine kinase gene
  • CPG2 carboxypeptidase G2
  • CA carboxylesterase
  • CD cytosine deaminase
  • cyt-450 cytochrome P450
  • dCK deoxycytidine kinase
  • NR nitroreductase
  • PNP purine nucleoside phosphorylase
  • TP thymidine phosphorylase
  • VZV-TK varicella-zoster virus thymidine kinase
  • XGPRT xanthine-guanine phosphoribosyltransferase
  • Cardiomyocyte-specific miRNA-responsive mRNA and “ventricular myocyte-specific miRNA-responsive mRNA” that can be used in the present invention, including a target cell-specific miRNA recognition sequence and a base sequence encoding a functional gene "(Target cell-specific miRNA-responsive mRNA) can be designed and prepared by a person skilled in the art. If necessary, specific examples of the full-length nucleotide sequences of these target cell-specific miRNA-responsive mRNAs can be referred to, for example, Patent Document 4 mentioned above.
  • the target cell-specific miRNA-responsive mRNA includes a base sequence (target cell-specific miRNA recognition sequence) specifically recognized by a miRNA specifically expressed in the target cell, if necessary, and a “functional gene”. May be included.
  • the target cell-specific miRNA-responsive mRNA may include a gene encoding a localization signal.
  • a gene encoding a localization signal may be linked to the gene.
  • the phrase “controllably linked” between the target cell-specific miRNA recognition sequence and the “functional gene” means that the “functional gene” has an open reading frame ( At least one subject cell in the 5 'untranslated region (UTR) of the ORF (including the start codon), in the 3' UTR, or in at least one of the ORFs (3 'to the start codon). It means that a specific miRNA recognition sequence is included.
  • the number of target cell-specific miRNA recognition sequences may be one, two, three, four, five, six, seven, eight or more, and the recognition sequences are 5 ' It may be included in one or more of the UTR, 3'UTR or ORF.
  • the target cell-specific miRNA-responsive mRNA encodes a Cap structure (7-methylguanosine 5′-phosphate), “functional gene” in the direction from the 5 ′ end to the 3 ′ end. And a polyA tail and at least one target cell-specific miRNA recognition sequence in the 5′UTR, 3′UTR, and / or ORF.
  • the target cell-specific miRNA recognition sequence and the “functional gene” are arranged in this order from the 5 ′ end to the 3 ′ end. It is therefore preferred that at least one cell-specific miRNA recognition sequence of interest is contained within the 5'UTR.
  • the number of bases and the type of bases between the cap structure and the target cell-specific miRNA recognition sequence may be arbitrary as long as they do not constitute a stem structure or a three-dimensional structure.
  • the number of bases between the cap structure and the target cell-specific miRNA recognition sequence can be 0 to 50 bases, preferably 10 to 30 bases.
  • the number of bases and the type of base between the target cell-specific miRNA recognition sequence and the start codon of a functional gene are arbitrary as long as they do not constitute a stem structure or a three-dimensional structure. May be.
  • the number of bases between the target cell-specific miRNA recognition sequence and the start codon of a functional gene can be 0 to 50 bases, preferably 10 to 30 bases.
  • the target cell-specific miRNA recognition sequence does not include a base sequence serving as an initiation codon.
  • the recognition sequence may be incompatible with a functional gene linked to the 3 ′ side.
  • it is designed to be a frame.
  • the target cell-specific miRNA recognition sequence contains AUG as an initiation codon, the AUG can be used after being converted to a GUG that is not an initiation codon.
  • the location of the recognition sequence in the 5'UTR can be appropriately adjusted.
  • the number of bases between the cap structure and the start codon (AUG) in the target cell-specific miRNA recognition sequence is 0-60 bases, for example, 0-15 bases, 10-20 bases, 20-30 bases, 30 bases.
  • the base may be designed to have 40 to 40 bases, 40 to 50 bases, and 50 to 60 bases.
  • a target cell-specific miRNA-responsive mRNA can be obtained by a genetic engineering method known to those skilled in the art, generally a template containing a promoter sequence, if the elements (sequences) to be contained therein are determined as described above. It can be synthesized by an in vitro synthesis method using DNA as a template.
  • the target cell-specific miRNA-responsive mRNA may have been verified for its effectiveness in selecting target cells in a cell population. That is, the transfection method, the purification method, and the production method of the present invention use the target cell-specific miRNA-responsive mRNA in advance to carry out the selection of the target cells in the cell population as necessary before performing each method. (And a step of selecting a target cell-specific miRNA-responsive mRNA based on the result of the step) may be performed. Specifically, a plurality of candidate target cell-specific miRNA-responsive mRNAs having 5′ ⁇ UTR as exemplified above are prepared, and each of them is converted into a cell population containing target cells of known purity. After transfection, it can be determined that the target cells are highly effective in sorting.
  • the target cell-specific miRNA-responsive mRNA may be used alone or in combination of two or more. When two or more target cell-specific miRNA-responsive mRNAs are used, target cell-specific miRNA recognition sequences and functional genes contained in those miRNA-responsive mRNAs are different from each other between the miRNA-responsive mRNs. Is preferred. When two or more target cell-specific miRNA-responsive mRNAs are used, the number of target cell-specific miRNA recognition sequences contained in those miRNA-responsive mRNAs, the distance from the 5 ′ end, and other structural features The characteristics may be the same or different in each miRNA-responsive mRNA.
  • two or more target cell-specific miRNA-responsive mRNAs having the same target cell-specific miRNA recognition sequence but different functional genes can also be used.
  • the “functional gene” contained in the mRNA of the embodiment (ii) may be the same as the “functional gene” contained in the mRNA of the embodiment (i), such as a drug resistance gene and a fluorescent protein.
  • the gene which codes is mentioned.
  • the “functional gene” contained in the mRNA of the embodiment (ii) is a gene other than a drug resistance gene and a gene encoding a fluorescent protein, which is a gene indicating that a nucleic acid has been introduced into a cell, a so-called reporter gene.
  • reporter genes include, for example, proteins other than fluorescent proteins that assist in luminescence or coloration, and membrane-localized proteins that are localized and expressed on cell membranes and can bind to antibodies that use them as antigens.
  • the target cell-specific miRNA-responsive mRNA of (i) and the mRNA of (ii) can be used in combination. That is, both the miRNA-responsive mRNA of (i) and the mRNA of (ii) can be brought into contact with a cell population containing a target cell and introduced into the cell (particularly a cardiomyocyte).
  • the mRNA of (ii) can be referred to as a "control mRNA.”
  • control mRNA By using control mRNA in combination, the selection of target cells can be made more efficient. For example, when a drug resistance gene is used as the “control mRNA” and an apoptosis-inducing gene or a suicide gene is used as the “functional gene”, by selecting a cell population that is drug-resistant and has not induced cell death. In addition, the accuracy of sorting target cells can be improved. More specifically, cells with low transfection nucleic acid transfection efficiency, that is, target cells and other cells with low transfection efficiency of target cell-specific miRNA-responsive mRNA, are identified based on their drug resistance.
  • the selection of target cells can be made more efficient by the presence or absence of the expression of “functional genes” contained in the target cell-specific miRNA-responsive mRNA. This is because, in a target cell, “functional cardiomyocyte-specific miRNA” or “ventricular myocyte-specific miRNA” existing in the target cell hybridizes to a predetermined base sequence of miRNA-responsive mRNA, and thus “functional”.
  • the expression of the "functional gene” is suppressed because the expression of the "gene” is suppressed in the cells other than the target cells, whereas the "cardiomyocyte-specific miRNA” or the "ventricular myocyte-specific miRNA” is not present in the cells. By not being suppressed.
  • the selection of a cell population exhibiting drug resistance can be performed by a known method.
  • the control mRNA when a gene encoding a fluorescent protein is used as the “control mRNA” and the “functional gene”, by selecting a cell population having lower fluorescence intensity, it is possible to improve the accuracy of selecting target cells. More specifically, cells with high transfection nucleic acid transduction efficiency are identified based on fluorescence, and a cell population having a lower fluorescence intensity is selected from the cell population, thereby selecting target cells. Can be made more efficient. This indicates that the amount of the fluorescent protein contained in the control mRNA introduced into the target cells and other cells is the same as the amount of the target cell-specific miRNA-responsive mRNA that is simultaneously transfected into the target cells and other cells. This is because it is proportional.
  • the selection of cells based on the fluorescence intensity can be performed, for example, by selectively separating cells that emit fluorescence above a certain standard using a cell sorter (for example, “FACS” manufactured by Bexon Dickinson).
  • the transfection method of the present invention includes at least a step of bringing the composition of the present invention into contact with a cell population containing a target cell (referred to as a “composition contacting step” in this specification), and if necessary. Further, other steps related to introducing (transfecting) nucleic acid into cardiomyocytes may be included.
  • the transfection method of the present invention uses the composition of the present invention as a reagent, but the other technical items are basically the same as those of a general transfection method, for example, using a lipid nanoparticle (LNP) or a liposome.
  • LNP lipid nanoparticle
  • the transfection (lipofection) method can be used.
  • the transfection method of the present invention can be performed under conditions that allow transfection of a nucleic acid-containing LNP into a cell population containing target cells (conditions that can induce transfection).
  • composition of the present invention When the composition of the present invention is brought into contact with a cell population containing a target cell in a living body, a target to which an effective amount of the nucleic acid is targeted relative to an administration target (eg, a human or non-human mammal, preferably a human).
  • an administration target eg, a human or non-human mammal, preferably a human.
  • the composition may be administered so as to be delivered to the cells.
  • the composition of the present invention can be used stably, with low toxicity and safely.
  • composition of the present invention when used in vivo, for example, it is preferable to use an injection such as intravenous injection, intraarterial injection, intramuscular injection, subcutaneous injection, intraperitoneal injection, etc. If an effective amount can be delivered to a target cell, a dosage form adapted to it can be prepared.
  • the cell population containing the target cells is differentiated into target cells such as induced pluripotent stem cells (iPS cells), embryonic stem cells (ES cells), or other stem cells, progenitor cells, and the like.
  • target cells such as induced pluripotent stem cells (iPS cells), embryonic stem cells (ES cells), or other stem cells, progenitor cells, and the like.
  • iPS cells induced pluripotent stem cells
  • ES cells embryonic stem cells
  • An in vitro cell population prepared by culturing inducible cells under conditions suitable for inducing differentiation into target cells, wherein the stem cells and the like are mixed with target cells.
  • the composition of the present invention is added to the embryoid body on day 10 to 40, preferably day 14 to 20, or around the day when the embryoid body containing the target cell was formed from the iPS cells. Can be contacted.
  • mRNA containing a base sequence encoding a functional gene can be used as "nucleic acid”.
  • a “drug resistance gene”, a “gene encoding a fluorescent protein”, and other positive or negative selection marker genes may be used.
  • an agent eg, puromycin
  • puromycin resistance gene corresponding to the drug resistance gene (eg, puromycin resistance gene) is added to the medium at an appropriate concentration.
  • a step of culturing cells in the medium a step of selecting cells into which the drug resistance gene has been introduced by the culturing, and the like.
  • a step of irradiating light of an excitation wavelength corresponding to the fluorescent protein, a fluorescence emitted by the irradiation is a fluorescence microscope, a cell sorter, etc.
  • the step of selecting cells having predetermined characteristics of the emission of fluorescence by the fluorescent protein by the detection is a fluorescence microscope, a cell sorter, etc.
  • nucleic acid refers to “cardiomyocyte-specific miRNA responsiveness including a nucleotide sequence specifically recognized by a miRNA specifically expressed in cardiomyocytes and a nucleotide sequence encoding a functional gene” "mRNA” or "a ventricular myocyte-specific miRNA-responsive mRNA containing a nucleotide sequence specifically recognized by a miRNA specifically expressed in ventricular myocytes, and a nucleotide sequence encoding a functional gene” Can also be used.
  • the “functional gene” is obtained by hybridizing a miRNA specifically expressed in the target cell present in the target cell to a predetermined base sequence of the miRNA-responsive mRNA.
  • the miRNA specifically expressed in the target cell is not present in the cell, so that the expression of the “functional gene” is not suppressed. Therefore, when a miRNA-responsive mRNA containing, for example, an “apoptosis-inducing gene” or a “suicide gene” that kills a cell in which it is expressed is used as the “functional gene”, after the composition contacting step, these genes are used.
  • a step for enriching, isolating, or detecting target cells in a cell population in which cells other than the target cells are mixed can be performed depending on the presence or absence of the expression of.
  • the “transfection method” of the present invention in such an embodiment includes the “cardiomyocyte purification method”, “cardiomyocyte production method”, and “ventricular myocyte purification method” of the present invention, as described later. And “Method for producing ventricular myocytes”, and the description of the technical items related to “Transfection method” is appropriately described as “Method for purifying cardiomyocytes”, “Method for producing cardiomyocytes”, “Purification of ventricular myocytes” Method “and” a method for producing ventricular myocytes ".
  • the transfection method of the present invention is carried out as a method comprising the following step 1, and optionally further comprising the following step 2:
  • Step 1 a step of forming an aggregate of a cell population containing a target cell in a non-cell-adherent container under conditions that allow transfection of the composition of the present invention into a cell population containing the target cell (hereinafter, “ Agglomerate forming step ”).
  • Step 2 a step of selecting a target cell from a cell population transfected with the composition based on the function of the nucleic acid contained in the composition in the cell (hereinafter, referred to as a “selection step”) Sometimes.).
  • Step 1 may more specifically include any of the following steps 1-1 or 1-2: Step 1-1: A cell population containing a target cell is cultured in a cell non-adhesive container in the presence of the composition of the present invention and a microcarrier, and cells into which the nucleic acid contained in the composition of the present invention has been introduced.
  • a step of forming an aggregate composed of the microcarriers and the microcarriers (hereinafter, also referred to as an “aggregate formation step first embodiment”); Step 1-2: A cell population containing a target cell is cultured in a cell non-adhesive container in the presence of the composition of the present invention, and a coagulation consisting of cells into which the nucleic acid contained in the composition of the present invention has been introduced.
  • a step of forming an aggregate hereinafter, also referred to as an “aggregate forming step second embodiment”).
  • Step A a step of inducing differentiation of pluripotent stem cells (population) into target cells
  • Step B a step of dispersing the cells (population) after the differentiation induction in Step A.
  • the cell population containing the target cells in the aggregate formation step is preferably an adhesive cell population.
  • adhesive cells (population) means cells (population) that can be optimally maintained or proliferated in a state of adhesion to a solid phase surface serving as a scaffold.
  • the “cell population containing target cells” in Step 1-1 is a population containing cells that have an agglutinating ability and can form an aggregate when cultured in a cell non-adhesive container.
  • the “cell population containing target cells” in step 1-2 includes cells that have an adhesive ability to a microcarrier and can adhere to the microcarrier when cultured with the microcarrier in a cell non-adhesive container. It is a group.
  • the “cell population containing target cells” may be prepared in any manner.
  • a step for inducing differentiation of a pluripotent stem cell into a target cell may be performed, if necessary (as Step A performed before Step 1).
  • the method for inducing differentiation from various pluripotent stem cells into target cells as described above is not particularly limited, and various known methods can be used. Examples of a method for inducing differentiation of pluripotent stem cells into target cells include a method reported by Laflamme MA and others (Laflamme MA & Murry CE, Nature 2011, Review).
  • a method for producing cardiomyocytes by forming a cell mass (embryoid body) by suspension culture of induced pluripotent stem cells (iPS cells), and a method for producing cardiomyocytes in the presence of a substance that inhibits BMP signaling (WO2005 / 033298), a method for producing cardiomyocytes by sequentially adding Activin A and BMP (WO2007 / 002136), and a method for producing cardiomyocytes in the presence of a substance that promotes activation of the canonical Wnt signal pathway (WO2007 / 126077), a method of isolating Flk / KDR-positive cells from induced pluripotent stem cells and producing cardiomyocytes in the presence of cyclosporin A (WO2009 / 118928).
  • the target cells for which differentiation has been induced are cells expressing at least cardiac troponin (cTnT) or ⁇ MHC.
  • cTnT cardiac troponin
  • ⁇ MHC ⁇ MHC
  • the dispersed cell population is subjected to culture. That is, in the transfection method of the present invention, if necessary, a cell population containing a target cell, preferably a pluripotency (as the step B performed before the step 1) may be previously prepared in the step prior to the aggregate forming step.
  • a step for dispersion treatment of the cell population after the differentiation induction from the germ stem cells to the target cells may be performed.
  • the dispersion treatment can be performed by a known method, and a chemical treatment with an enzyme or the like, a physical treatment with pipetting or the like, and a combination thereof can be adopted.
  • Commercially available reagents eg, Liberase TM Research Grade, Roche; StemPro Accutase Cell Dissociation Reagent, Gibco; TrypLE Select CTS, Gibco, etc.
  • the “cell non-adhesive container” used for culturing the cell population in the aggregate formation step includes (a) an artificially treated surface (eg, extracellular matrix, etc.) for the purpose of improving the adhesion of the container to cells. (B) the surface of the container is artificially treated (for example, a coating treatment with a hydrophobic molecule) for the purpose of reducing the adhesion to cells. can do.
  • an artificially treated surface eg, extracellular matrix, etc.
  • the surface of the container is artificially treated (for example, a coating treatment with a hydrophobic molecule) for the purpose of reducing the adhesion to cells. can do.
  • cell non-adhesive means that the adherent cells do not adhere or hardly adhere, for example, less than 20%, preferably less than 10%, more preferably less than 1%, based on the total number of cells seeded in a container. It means that less than% of cells are attached to the container.
  • Examples of the material of the cell non-adhesive container include polycarbonate, polyethylene, polypropylene, Teflon (registered trademark), polyethylene terephthalate, polymethyl methacrylate, nylon 6,6, polyvinyl alcohol, cellulose, silicon, polystyrene, glass, polyacrylamide, Polydimethylacrylamide, and stainless steel.
  • Examples of the form of the cell non-adhesive container include a microplate, a Petri dish (dish), a cell culture flask (such as a spinner flask and a shaker flask), a cell culture bag, a roller bottle, a bioreactor, and a culture tank (tank). .
  • the size of the cell non-adhesive container can also be appropriately selected according to the production scale (for example, in the range of 1 mL to 2000 L). In the present invention, particularly, a large volume (for example, 100 mL to 2000 L) of the cell non-adhesive Sex containers are preferred.
  • the composition of the present invention and a microcarrier are added to a cell population containing target cells that are adhesive cell populations in a cell non-adhesive container.
  • the cell population is statically cultured in the presence thereof.
  • the cell population containing the target cell adheres to the microcarrier to form an aggregate, and in the process, the nucleic acid contained in the composition of the present invention is introduced into the cells constituting the cell population.
  • the “aggregate” in the first embodiment means an aggregate including at least one cell and one microcarrier.
  • the size of the aggregate depends on the size of the microcarrier used and is not particularly limited.
  • the number of cells adhering to one microcarrier is not particularly limited, but is, for example, 2 to 500, preferably 50 to 300.
  • Aggregate Formation Step The cell population cultured in the first embodiment includes cells that form aggregates (aggregate-forming cells) and cells that do not form aggregates (non-aggregate-forming cells).
  • the ratio of the aggregate-forming cells to the total number thereof is not particularly limited, but for example, 10% or more, 20% or more, 30% or more, 40% or more, 50% or more, 60% or more, 70% or more , 80% or more, 90% or more, or 100%.
  • the “microcarrier” used in the first embodiment means a carrier capable of adhering a cell population containing target cells to the surface.
  • the microcarrier can be suspended in a liquid medium in a state where the cell population containing the target cell is adhered, and it is sufficient that the microcarrier can play a role in culturing the adhered cell population, and its material, shape, and size are sufficient. There is no particular limitation on the degree.
  • microcarrier examples include dextran, gelatin, collagen, polystyrene, polyethylene, polyacrylamide, glass, and cellulose.
  • Examples of the shape of the microcarrier include a sphere (beads) and a disk shape.
  • the size of the spherical microcarrier is, for example, 2 to 1000 ⁇ m in diameter, preferably 100 to 300 ⁇ m.
  • the microcarrier may be porous.
  • the number of microcarriers used for culturing cells is not particularly limited, but is, for example, one microcarrier per 10 cells.
  • the amount of microcarriers used for culturing of cells is not particularly limited, for example, cells 1 ⁇ 10 microcarriers 0.1g against six 5 ⁇ 10 7, preferably 3 ⁇ 10 from 2 ⁇ 10 7 cells cells 0.1 g of microcarriers per 7 microcarriers.
  • the microcarriers may be commercially available, for example, high-concentration Synthemax II microcarriers (Corning) can be used.
  • the composition of the present invention is added to a cell population containing a target cell that is an adhesive cell population in a cell non-adhesive container, This is performed by statically culturing the cell population in the presence.
  • a step in the cell population containing the target cells, aggregates are formed between the cells even when microcarriers are not present, and in the process, the nucleic acid contained in the composition of the present invention constitutes the cell population. Is introduced into the cell.
  • aggregate in the second embodiment means an aggregate including at least two cells. Most of the aggregates are occupied by a large number of adhered cells.
  • the number of cells forming one aggregate is not particularly limited, but is, for example, 2 to 500, preferably 50 to 300.
  • Aggregate Formation Step The cell population cultured in the second embodiment includes cells that form aggregates (aggregate-forming cells) and cells that do not form aggregates (non-aggregate-forming cells).
  • the ratio of the aggregate-forming cells to the total number thereof is not particularly limited, but for example, 10% or more, 20% or more, 30% or more, 40% or more, 50% or more, 60% or more, 70% or more , 80% or more, 90% or more, or 100%.
  • the stationary culture in the aggregate formation step may be performed for a period sufficient for the formation of the aggregate and the completion of the transfection.
  • the period of the stationary culture is not particularly limited, but is, for example, about 2 to 10 hours, preferably about 3 to 6 hours, and more preferably 4 to 5 hours.
  • the conditions for static culture are not particularly limited, either.
  • the culture can be performed at about 37 ° C. in the presence of 5% CO 2 .
  • stirring culture may be performed in order to maintain the formed aggregate.
  • the period of stirring culture is not particularly limited, but is, for example, about 12 to 48 hours, and preferably about 24 hours.
  • Stirring culture conditions is not particularly limited, for example, about 37 ° C., can be set to the presence of 5% CO 2.
  • the stirring speed and time are appropriately set according to the cell density and the size of the culture vessel. Typically, the mixture is left still for 4 to 6 hours and then stirred at 25 rpm for 12 hours or more. Excessive agitation or shaking can put physical stress on the cells and can hinder the maintenance of aggregates. Therefore, it is desirable to control the stirring speed so that the medium components and the oxygen concentration in the medium can be made uniform and the maintenance of the aggregates is not hindered.
  • a conventionally known medium suitable for culturing a cell population containing the target cell can be used.
  • BME medium BME medium, BGJb medium, CMRL-1066 medium, Glasgow MEM medium, Improved MEM (IMEM) medium, Improved MDM (IMDM) medium, Medium 199 medium, Eagle MEM medium, ⁇ MEM medium, DMEM medium (High glucose, Low glucose) , DMEM / F12 medium, ham medium, RPMIRP1640 medium, Fischer's medium, and a mixed medium thereof.
  • IMEM Improved MEM
  • IMDM Improve
  • the medium may contain, if necessary, amino acids, L-glutamine, GlutaMAX (product name), non-essential amino acids, vitamins, antibiotics (eg, penicillin, streptomycin, or a mixture thereof), antibacterial agents (eg, amphotericin B) And additives such as antioxidants, pyruvic acid, buffers, inorganic salts and the like. Those skilled in the art can appropriately set the type and amount of the additive depending on the cells and the culture conditions.
  • the transfection method including the aggregate forming step as described above, there is a limitation due to the area of the container surface as in the conventional method in which cells are adhered and cultured on the surface of a container (dish, dish, etc.).
  • a large amount of cardiomyocytes (including cell populations) into which a desired nucleic acid has been introduced can be obtained at a commercial level.
  • the method for purifying a target cell of the present invention includes at least a step of bringing the composition of the present invention into contact with a cell population containing the target cell (composition contacting step), and further purifying the target cell as necessary. Other steps related to the above may be included.
  • the method for purifying a target cell of the present invention comprises purifying a target cell in a cell population, in other words, increasing a ratio of the target cell in the cell population (enriching the target cell) with a specific nucleic acid.
  • the composition of the present invention is used, other technical matters can basically be based on a known method for purifying cardiomyocytes.
  • the target cell-specific miRNA-responsive mRNA of (i) and / or the mRNA of (ii) are used as the “nucleic acid”.
  • the composition of the present invention containing such a specific nucleic acid is brought into contact with a cell population containing a target cell and the predetermined nucleic acid is introduced into the target cell and other cells, the target In a cell, a target cell-specific miRNA-responsive mRNA contains a "base sequence specifically recognized by a miRNA specifically expressed in a cardiomyocyte" (cardiomyocyte-specific miRNA recognition sequence) or a "ventricular myocyte”
  • the expression level of a "functional gene” is suppressed by the "base sequence specifically recognized by the miRNA specifically expressed in E.
  • coli a ventricular muscle cell-specific miRNA recognition sequence
  • the expression level of the “functional gene” is not suppressed and becomes relatively high.
  • a step for selecting the target cells which includes a treatment corresponding to the “functional gene” (this specification) In this document, this is referred to as a “target cell selection step”).
  • the target cell selection step uses a predetermined detection device to detect a signal (fluorescence emission) emitted from the fluorescent protein. It is appropriate to include processing.
  • the detection device therefor include a flow cytometer, an imaging cytometer, a fluorescence microscope, an emission microscope, and a CCD camera. Such a detection device can be adjusted to an embodiment (device configuration, measurement conditions, etc.) suitable for the absorption wavelength and emission wavelength of the fluorescent protein.
  • the expression level of the fluorescent protein can be reduced by using a fluorescence microscope or by using a culture dish coated with photoresponsive cell culture equipment (cells that have not been irradiated with light can be detached from the culture dish). It is also possible to select and exclude cells other than the high (high fluorescence intensity) target cells.
  • the cell population obtained by the method for purifying target cells of the present invention can increase the purity of target cells to a certain level.
  • the purity of the target cells in such a cell population may be higher than the purity of the target cells in the cell population obtained without applying the target cell purification method of the present invention, and the degree is not particularly limited. Absent.
  • the purity of the target cells in the cell population obtained by the method for purifying the target cells of the present invention is 60% or more, 70% or more, 80% or more, 81% or more, 82% or more, 83% or more, 84% or more, 85% or more, 86% or more, 87% or more, 88% or more, 89% or more, 90% or more, 91% or more, 92% or more, 93% or more, 94% or more, 95% or more, 96%
  • the above may be 97% or more, 98% or more, 99% or more, and 100% (substantially no cells other than the target cell can be detected).
  • purification method can be appropriately replaced with “production method”. That is, the "purification method of cardiomyocytes” of the present invention (a method of increasing the purity or ratio of cardiomyocytes in a cell population) and the “purification method of ventricular myocytes” (increase the purity or ratio of ventricular myocytes in a cell population)
  • the description of the invention relating to (method) is “Method for producing cardiomyocytes” (method for producing a cell population with increased purity or ratio of cardiomyocytes, or method for producing cardiomyocytes contained in such a cell population).
  • Method for producing ventricular myocytes (Method for producing cell population with increased purity or ratio of ventricular myocytes, or method for producing ventricular myocytes contained in such cell population) Can be.
  • the method for purifying and producing the target cells of the present invention correspond to the embodiment for purifying and producing the target cells in the above-described transfection method of the present invention, respectively. Can be applied to each other.
  • the raw materials and reagents used in each step in the following production methods, and the obtained compounds may form salts.
  • Such salts include, for example, those similar to the salts of the compounds of the present invention described above.
  • the compound obtained in each step can be used in the next reaction after being obtained as a reaction solution or as a crude product, or the compound obtained in each step can be concentrated from the reaction mixture according to a conventional method. It can be isolated and / or purified by separation means such as crystallization, recrystallization, distillation, solvent extraction, fractionation, chromatography and the like.
  • the reaction time may vary depending on the reagent or solvent used, but is usually 1 minute to 48 hours, preferably 10 minutes to 8 hours unless otherwise specified.
  • the reaction temperature may vary depending on the reagents and solvents used, but is usually -78 ° C to 300 ° C, preferably -78 ° C to 150 ° C, unless otherwise specified.
  • the pressure may vary depending on the reagent and solvent used, but unless otherwise specified, it is usually 1 to 20 atm, preferably 1 to 3 atm.
  • a Microwave synthesizer such as Initiator manufactured by Biotage may be used.
  • the reaction temperature may vary depending on the reagents and solvents used, but is usually from room temperature to 300 ° C, preferably from room temperature to 250 ° C, more preferably from 50 ° C to 250 ° C, unless otherwise specified.
  • the reaction time may vary depending on the reagent and solvent used, but is usually 1 minute to 48 hours, preferably 1 minute to 8 hours unless otherwise specified.
  • the reagent is used in an amount of 0.5 to 20 equivalents, preferably 0.8 to 5 equivalents to the substrate, unless otherwise specified.
  • the reagent is used in an amount of 0.001 to 1 equivalent, preferably 0.01 to 0.2 equivalent based on the substrate.
  • the reagent also serves as the reaction solvent, the reagent is used in the amount of the solvent.
  • Alcohols methanol, ethanol, isopropanol, isobutanol, tert-butyl alcohol, 2-methoxyethanol and the like; Ethers: diethyl ether, diisopropyl ether, diphenyl ether, tetrahydrofuran, 1,2-dimethoxyethane, cyclopentyl methyl ether, and the like; Aromatic hydrocarbons: chlorobenzene, toluene, xylene, etc .; Saturated hydrocarbons: cyclohexane, hexane, heptane, etc .; Amides: N, N-dimethylformamide, N-methylpyrrolidone and the like; Halogenated hydrocarbons: dichloromethane, carbon tetrachloride, etc .; Nitriles: acetonitrile and the like; Sulfoxides: dimethyl sulfoxide and the like; Aromatic organic bases: pyridine and the like; Acid
  • Inorganic bases sodium hydroxide, potassium hydroxide, magnesium hydroxide and the like
  • Basic salts sodium carbonate, calcium carbonate, sodium hydrogen carbonate, etc .
  • Organic bases triethylamine, diethylamine, N, N-diisopropylethylamine, pyridine, 4-dimethylaminopyridine, N, N-dimethylaniline, 1,4-diazabicyclo [2.2.2] octane, 1,8-diazabicyclo [ 5.4.0] -7-undecene, imidazole, piperidine and the like
  • Metal alkoxides sodium ethoxide, potassium tert-butoxide, sodium tert-butoxide and the like
  • Alkali metal hydrides sodium hydride and the like
  • Metal amides sodium amide, lithium diisopropylamide, lithium hexamethyldisilazide, and the like
  • Organic lithiums n-butyllithium, sec-
  • Inorganic acids hydrochloric acid, sulfuric acid, nitric acid, hydrobromic acid, phosphoric acid, etc .
  • Organic acids acetic acid, trifluoroacetic acid, citric acid, p-toluenesulfonic acid, 10-camphorsulfonic acid and the like
  • Lewis acid boron trifluoride diethyl ether complex, zinc iodide, anhydrous aluminum chloride, anhydrous zinc chloride, anhydrous iron chloride and the like.
  • the protection or deprotection reaction of the functional group is performed by a known method, for example, “Protective Groups, in Organic, Synthesis, 4th Ed.”, Wiley-Interscience, 2007 (4th Ed., Theodora, W., Peter, Germany)
  • the method is described in, for example, "Protecting Groups 3rd Ed.” (Published by PJ Kocienski), published by Thieme, 2004, or the method described in Examples.
  • Examples of the protecting group for a hydroxyl group such as alcohol and a phenolic hydroxyl group include ether-type protecting groups such as methoxymethyl ether, benzyl ether, p-methoxybenzyl ether, t-butyldimethylsilyl ether, t-butyldiphenylsilyl ether and tetrahydropyranyl ether.
  • ether-type protecting groups such as methoxymethyl ether, benzyl ether, p-methoxybenzyl ether, t-butyldimethylsilyl ether, t-butyldiphenylsilyl ether and tetrahydropyranyl ether.
  • Protective groups; carboxylic acid ester-type protecting groups such as acetate
  • sulfonic acid ester-type protecting groups such as methanesulfonic acid ester
  • carbonate-type protecting groups such as t-butyl carbonate.
  • Examples of the protecting group for the carbonyl group of the aldehyde include an acetal-type protecting group such as dimethyl acetal; and a cyclic acetal-type protecting group such as cyclic 1,3-dioxane.
  • the protecting group for the carbonyl group of the ketone includes, for example, a ketal-type protecting group such as dimethyl ketal; a cyclic ketal-type protecting group such as cyclic 1,3-dioxane; an oxime-type protecting group such as O-methyloxime; And hydrazone-type protecting groups such as dimethylhydrazone.
  • a ketal-type protecting group such as dimethyl ketal
  • a cyclic ketal-type protecting group such as cyclic 1,3-dioxane
  • an oxime-type protecting group such as O-methyloxime
  • hydrazone-type protecting groups such as dimethylhydrazone.
  • carboxyl-protecting group examples include ester-type protecting groups such as methyl ester; and amide-type protecting groups such as N, N-dimethylamide.
  • thiol protecting group examples include ether-type protecting groups such as benzyl thioether; and ester-type protecting groups such as thioacetate, thiocarbonate and thiocarbamate.
  • Examples of the protecting group for an amino group or an aromatic heterocycle such as imidazole, pyrrole, and indole include, for example, carbamate-type protecting group such as benzyl carbamate; amide-type protecting group such as acetamide; alkylamine such as N-triphenylmethylamine And a sulfonamide-type protecting group such as methanesulfonamide.
  • Removal of the protecting group can be performed by a known method, for example, acid, base, ultraviolet light, hydrazine, phenylhydrazine, sodium N-methyldithiocarbamate, tetrabutylammonium fluoride, palladium acetate, trialkylsilyl halide (eg, trimethylsilyl iodide) , Trimethylsilyl bromide) or a reduction method.
  • a known method for example, acid, base, ultraviolet light, hydrazine, phenylhydrazine, sodium N-methyldithiocarbamate, tetrabutylammonium fluoride, palladium acetate, trialkylsilyl halide (eg, trimethylsilyl iodide) , Trimethylsilyl bromide) or a reduction method.
  • the reducing agent used includes lithium aluminum hydride, sodium triacetoxyborohydride, sodium cyanoborohydride, diisobutylaluminum hydride (DIBAL-H), and sodium borohydride.
  • Metal hydrides such as triacetoxyboron tetramethylammonium hydride; borane such as borane tetrahydrofuran complex; Raney nickel; Raney cobalt; hydrogen; and formic acid.
  • Raney nickel or Raney cobalt can be used in the presence of hydrogen or formic acid.
  • oxidizing agents used include peracids such as m-chloroperbenzoic acid (MCPBA), hydrogen peroxide, t-butyl hydroperoxide; and tetrabutylammonium perchlorate.
  • MCPBA m-chloroperbenzoic acid
  • hydrogen peroxide hydrogen peroxide
  • t-butyl hydroperoxide t-butyl hydroperoxide
  • tetrabutylammonium perchlorate tetrabutylammonium perchlorate
  • Chlorates such as sodium chlorite; chlorites such as sodium chlorite; periodic acids such as sodium periodate; high-valent iodine reagents such as iodosylbenzene; manganese dioxide; A reagent having manganese such as potassium manganate; a lead such as lead tetraacetate; a reagent having chromium such as pyridinium chlorochromate (PCC), pyridinium dichromate (PDC) and Jones reagent; N-bromosuccinimide (NBS) Halogen compounds such as oxygen; ozone; sulfur trioxide / pyridine complex; male tetroxide Um; dioxide Zeren; 2,3-dichloro-5,6-dicyano-1,4-benzoquinone (DDQ) and the like.
  • PCC pyridinium chlorochromate
  • PDC pyridinium dichromate
  • NBS N-bromosuccinimide
  • the radical initiator used may be an azo compound such as azobisisobutyronitrile (AIBN); 4-4′-azobis-4-cyanopentanoic acid (ACPA) Water-soluble radical initiators; triethylboron in the presence of air or oxygen; benzoyl peroxide, and the like.
  • the radical reaction reagent used include tributylstannane, tristrimethylsilylsilane, 1,1,2,2-tetraphenyldisilane, diphenylsilane, and samarium iodide.
  • Examples of the Wittig reagent to be used include alkylidene phosphoranes.
  • Alkylidenephosphoranes can be prepared by known methods, for example, by reacting a phosphonium salt with a strong base.
  • the reagents used include phosphonoacetic esters such as methyl dimethylphosphonoacetate and ethyl diethylphosphonoacetate; bases such as alkali metal hydrides and organic lithiums. No.
  • examples of the reagent used include a Lewis acid and an acid chloride or an alkylating agent (eg, alkyl halides, alcohols, olefins, etc.).
  • an organic acid or an inorganic acid can be used instead of the Lewis acid, and an acid anhydride such as acetic anhydride can be used instead of the acid chloride.
  • a nucleophile eg, amines, imidazole, etc.
  • a base eg, basic salts, organic bases, etc.
  • a base used for generating a carbanion examples include organic lithiums, metal alkoxides, inorganic bases, organic bases, and the like.
  • examples of the Grignard reagent include arylmagnesium halides such as phenylmagnesium bromide; and alkylmagnesium halides such as methylmagnesium bromide and isopropylmagnesium bromide.
  • the Grignard reagent can be prepared by a known method, for example, by reacting an alkyl halide or an aryl halide with metal magnesium using ether or tetrahydrofuran as a solvent.
  • the active methylene compound eg, malonic acid, diethyl malonate, malononitrile, etc.
  • a base eg, organic bases, Metal alkoxides, inorganic bases.
  • examples of the azidating agent used include diphenylphosphoryl azide (DPPA), trimethylsilyl azide, and sodium azide.
  • DPPA diphenylphosphoryl azide
  • examples of the azidating agent used include diphenylphosphoryl azide (DPPA), trimethylsilyl azide, and sodium azide.
  • DPPA diphenylphosphoryl azide
  • DBU 1,8-diazabicyclo [5,4,0] undec-7-ene
  • examples of the reducing agent used include sodium triacetoxyborohydride, sodium cyanoborohydride, hydrogen, and formic acid.
  • examples of the carbonyl compound to be used include aldehydes such as acetaldehyde and ketones such as cyclohexanone, in addition to paraformaldehyde.
  • the amines used include primary amines such as ammonia and methylamine; and secondary amines such as dimethylamine.
  • azodicarboxylic acid esters eg, diethyl azodicarboxylate (DEAD), diisopropyl azodicarboxylate (DIAD), etc.
  • triphenylphosphine eg, triphenylphosphine
  • the reagents used include acyl halides such as acid chloride and acid bromide; acid anhydrides, active esters, and sulfates Activated carboxylic acids.
  • carboxylic acid activator examples include carbodiimide-based condensing agents such as 1-ethyl-3- (3-dimethylaminopropyl) carbodiimide hydrochloride (WSCD); 4- (4,6-dimethoxy-1,3,5- Triazine-based condensing agents such as triazin-2-yl) -4-methylmorpholinium chloride-n-hydrate (DMT-MM); carbonate-based condensing agents such as 1,1-carbonyldiimidazole (CDI); diphenyl Phosphate azide (DPPA); benzotriazol-1-yloxy-trisdimethylaminophosphonium salt (BOP reagent); 2-chloro-1-methyl-pyridinium iodide (Mukoyama reagent); thionyl chloride; haloformic acid such as ethyl chloroformate Lower alkyl; O- (7-azabenzotriazol-1-yl) -
  • an additive such as 1-hydroxybenzotriazole (HOBt), N-hydroxysuccinimide (HOSu), or dimethylaminopyridine (DMAP) may be further added to the reaction.
  • HOBt 1-hydroxybenzotriazole
  • HOSu N-hydroxysuccinimide
  • DMAP dimethylaminopyridine
  • the metal catalyst to be used includes palladium (II) acetate, tetrakis (triphenylphosphine) palladium (0), dichlorobis (triphenylphosphine) palladium (II), dichlorobis (triethyl) Palladium compounds such as phosphine) palladium (II), tris (dibenzylideneacetone) dipalladium (0), 1,1′-bis (diphenylphosphino) ferrocenepalladium (II) chloride, palladium (II) acetate; tetrakis (tri) Nickel compounds such as phenylphosphine) nickel (0); rhodium compounds such as tris (triphenylphosphine) rhodium (III); cobalt compounds; copper compounds such as copper oxide and copper (I) iodide; platinum compounds; Can be Further, a base may be added to the
  • diphosphorus pentasulfide When performing a thiocarbonylation reaction in each step, diphosphorus pentasulfide is typically used as a thiocarbonylating agent.
  • 2,4-bis (4-methoxyphenyl) ) Reagents having a 1,3,2,4-dithiadiphosphetane-2,4-disulfide structure such as -1,3,2,4-dithiadiphosphetane-2,4-disulfide (Lowesson's reagent) May be used.
  • halogenating agent examples include N-iodosuccinimide, N-bromosuccinimide (NBS), N-chlorosuccinimide (NCS), bromine, sulfuryl chloride and the like. Is mentioned. Further, the reaction can be accelerated by adding a radical initiator such as heat, light, benzoyl peroxide, or azobisisobutyronitrile to the reaction.
  • a radical initiator such as heat, light, benzoyl peroxide, or azobisisobutyronitrile
  • an acid halide of a hydrohalic acid and an inorganic acid specifically, in chlorination, hydrochloric acid, thionyl chloride, oxy
  • bromination such as phosphorus chloride, 48% hydrobromic acid and the like
  • a method of obtaining an alkyl halide from an alcohol by the action of triphenylphosphine and carbon tetrachloride or carbon tetrabromide may be used.
  • an alkyl halide is synthesized through a two-step reaction in which an alcohol is converted into a sulfonic acid ester and then reacted with lithium bromide, lithium chloride or sodium iodide.
  • examples of the reagent used include alkyl halides such as ethyl bromoacetate; and phosphites such as triethyl phosphite and tri (isopropyl) phosphite.
  • the sulfonating agent used includes methanesulfonyl chloride, p-toluenesulfonyl chloride, methanesulfonic anhydride, p-toluenesulfonic anhydride, trifluoromethanesulfonic anhydride. Things.
  • examples of the dehydrating agent used include sulfuric acid, phosphorus pentoxide, phosphorus oxychloride, N, N'-dicyclohexylcarbodiimide, alumina, and polyphosphoric acid.
  • Compound (I) can be produced, for example, by the following production method.
  • the salt of compound (I) can be obtained by appropriate mixing with an inorganic base, an organic base, an organic acid, a basic or acidic amino acid.
  • the lipid particles of the present invention can be produced by mixing the compound of the present invention as a cationic lipid with other lipid components (for example, structural lipids) and then preparing the lipid particles from the lipid components by a known method.
  • a lipid particle dispersion can be produced by dissolving the above mixed lipid component in an organic solvent, and mixing the resulting organic solvent solution with water or a buffer solution (for example, an emulsification method).
  • the mixing can be performed using a microfluidic mixing system (for example, NanoAssemblr apparatus (Precision, NanoSystems)).
  • the resulting lipid particles may be subjected to desalting or dialysis and sterile filtration. Further, pH adjustment and osmotic pressure adjustment may be performed as necessary.
  • Compound (I) can have multiple structures depending on the combination of definitions of n1, n2, n3, L, Ra, Rb, Rc, Rd, Re, and Rf in formula (I).
  • one type of compound having a specific structure may be used alone or as a mixture of a plurality of types of compounds having different structures as compound (I).
  • Structural lipids include those described above, for example, sterols, phospholipids, and polyethylene glycol lipids.
  • the “structural lipid” is used, for example, in an amount of 0.008 to 4 mol per 1 mol of the compound of the present invention.
  • the compound of the present invention is particularly preferably used as a mixture with cholesterol as a sterol, phosphatidylcholine as a phospholipid, and polyethylene glycol lipid.
  • the preferred mixing ratio is 1 to 4 mol of the compound of the present invention, 0 to 3 mol of sterols, 0 to 2 mol of phospholipid and 0 to 1 mol of polyethylene glycol lipid.
  • the more preferable mixing ratio is 1 to 1.5 mol of the compound of the present invention, 0 to 1.25 mol of sterols, 0 to 0.5 mol of phospholipid and 0 to 0 mol of polyethylene glycol lipid. .125 mol.
  • the concentration of the compound of the present invention or the mixture of the compound of the present invention and other lipid components in the above-mentioned organic solvent solution is preferably 0.5 to 100 mg / mL.
  • organic solvent examples include methanol, ethanol, 1-propanol, 2-propanol, 1-butanol, tert-butanol, acetone, acetonitrile, N, N-dimethylformamide, dimethylsulfoxide, and a mixture thereof.
  • Organic solvents may contain 0-20% water or buffer.
  • buffer examples include acidic buffers (eg, acetate buffer, citrate buffer, 2-morpholinoethanesulfonic acid (MES) buffer, phosphate buffer) and neutral buffers (eg, 4- (2 -Hydroxyethyl) -1-piperazineethanesulfonic acid (HEPES) buffer, tris (hydroxymethyl) aminomethane (Tris) buffer, phosphate buffer, phosphate buffered saline (PBS).
  • acidic buffers eg, acetate buffer, citrate buffer, 2-morpholinoethanesulfonic acid (MES) buffer, phosphate buffer
  • neutral buffers eg, 4- (2 -Hydroxyethyl) -1-piperazineethanesulfonic acid (HEPES) buffer, tris (hydroxymethyl) aminomethane (Tris) buffer, phosphate buffer, phosphate buffered saline (PBS).
  • Tris hydroxymethyl aminomethane
  • the flow rate of the mixture is, for example, 0.01 to 20 mL / min, preferably 0.1 to 10 mL / min.
  • the temperature is 5 to 60 ° C, preferably 15 to 45 ° C.
  • the composition of the present invention can be produced as a lipid particle dispersion containing a nucleic acid by adding a nucleic acid to water or a buffer when producing a lipid particle or a lipid particle dispersion.
  • the nucleic acid is preferably added so that the concentration of the nucleic acid in water or a buffer is, for example, 0.01 to 20 mg / mL, preferably 0.05 to 2.0 mg / mL.
  • the composition of the present invention can also be produced as a lipid particle dispersion containing nucleic acids by mixing a lipid particle or a lipid particle dispersion with a nucleic acid or an aqueous solution thereof by a known method.
  • the lipid particle dispersion can be prepared by dispersing lipid particles in an appropriate dispersion medium.
  • an aqueous solution of a nucleic acid can be prepared by dissolving the nucleic acid in an appropriate solvent.
  • the content of the compound of the present invention in the composition of the present invention excluding the dispersion medium and the solvent is usually 10 to 70% by weight, preferably 40 to 70% by weight.
  • the content of the nucleic acid in the composition of the present invention excluding the dispersion medium and the solvent is usually 0.1 to 25% by weight, preferably 1 to 20% by weight.
  • the dispersion medium of the lipid particle dispersion or the dispersion containing the composition can be replaced with water or a buffer by dialysis. Dialysis is performed at 4 ° C. to room temperature using an ultrafiltration membrane having a molecular weight cutoff of 10 to 20K. Repeated dialysis may be performed. For replacement of the dispersion medium, tangential flow filtration (TFF) may be used. After the replacement of the dispersion medium, pH adjustment and osmotic pressure adjustment may be performed as necessary. Examples of the pH adjuster include sodium hydroxide, citric acid, acetic acid, triethanolamine, sodium hydrogen phosphate, sodium dihydrogen phosphate, potassium dihydrogen phosphate and the like.
  • the osmotic pressure adjusting agent examples include inorganic salts such as sodium chloride, potassium chloride, sodium hydrogen phosphate, potassium hydrogen phosphate, sodium dihydrogen phosphate, and potassium dihydrogen phosphate; and polyols such as glycerol, mannitol, and sorbitol. And sugars such as glucose, fructose, lactose and sucrose.
  • the pH is usually adjusted to 6.5 to 8.0, preferably 7.0 to 7.8.
  • the osmotic pressure is preferably adjusted to 250-350 Osm / kg.
  • composition of the present invention may contain components other than lipid particles and nucleic acids, if necessary.
  • Such components include, for example, appropriate amounts of stabilizers and antioxidants.
  • Stabilizers are not particularly limited, and include, for example, saccharides such as glycerol, mannitol, sorbitol, lactose, and sucrose.
  • antioxidants examples include ascorbic acid, uric acid, cysteine, tocopherol homologs (vitamin E, four isomers of tocopherol ⁇ , ⁇ , ⁇ , and ⁇ , etc.), EDTA, cysteine, and the like.
  • the particle size of the lipid particles (in the composition) can be measured by known means.
  • the Z-average particle diameter can be calculated by cumulant analysis of an autocorrelation function using a particle diameter measuring device based on dynamic light scattering measurement technology, Zetasizer Nano Nano ZS (Malvern Instruments).
  • the particle size (average particle size) of the lipid particles (in the composition) is, for example, 10 to 200 nm, preferably 60 to 150 nm.
  • the concentration of nucleic acids (for example, siRNA and mRNA) and the encapsulation rate in the composition of the present invention can be measured by known means.
  • the concentration and encapsulation rate can be determined by fluorescently labeling the nucleic acid using Quant-iT TM RiboGreen (registered trademark) (Invitrogen) and measuring the fluorescence intensity.
  • the concentration of the nucleic acid in the composition can be calculated using a standard curve prepared from an aqueous solution of a nucleic acid having a known concentration, and the encapsulation rate is determined by Triton-X100 (a surfactant for disintegrating lipid particles). Can be calculated based on the difference in fluorescence intensity depending on the presence or absence of addition of.
  • the concentration of the nucleic acid in the composition refers to the total concentration of the nucleic acid encapsulated in the lipid particles and the unencapsulated nucleic acid. Refers to the percentage of sealed items.
  • the kit of the present invention comprises 1) a compound represented by the formula (I) or a salt thereof (the compound of the present invention), 2) a structural lipid, and 3) a nucleic acid.
  • the compound, structural lipid and nucleic acid of the present invention in the kit of the present invention are the same as the compound, structural lipid and nucleic acid of the present invention contained in the composition of the present invention.
  • Root temperature in the following examples usually indicates about 10 ° C to about 35 ° C.
  • the ratios shown for the mixed solvents are volume ratios unless otherwise specified. % Indicates% by weight unless otherwise specified.
  • 1 H NMR was measured by Fourier transform type NMR.
  • ACD / SpecManager (trade name) software and the like were used for 1 H NMR analysis.
  • a peak having a very gentle proton peak such as a hydroxyl group or an amino group may not be described.
  • MS was measured by LC / MS and MALDI / TOFMS.
  • the ionization method the ESI method, the APCI method, or the MALDI method was used.
  • CHCA was used as the matrix.
  • the data described are the actual values (found).
  • a molecular ion peak is observed, but it may be observed as a fragment ion.
  • a molecular ion peak, a cationic species, an anionic species or a fragment ion peak of a free form is generally observed.
  • MS mass spectrum M: molar concentration N: normality CDCl 3 : deuterated chloroform DMSO-d 6 : deuterated dimethyl sulfoxide 1 H NMR: proton nuclear magnetic resonance LC / MS: liquid chromatography mass spectrometer ESI: electrospray ionization, electrospray ionization APCI: atmospheric pressure chemical ionization, atmospheric pressure chemical ionization MALDI: Matrix-assisted laser desorption / ionization, matrix Laser assisted desorption ionization TOFMS: Time-of-flight mass spectrometry, time-of-flight mass spectrometry CHCA: ⁇ -cyano-4-hydroxycinnamic acid DMF: N, N-dimethylformamide THF: Tetrahydrofuran DMAP: 4-dimethylaminoviridine TBAF: tetrabutylammonium fluoride DIBAL-H: diiso
  • reaction mixture was neutralized with 6N hydrochloric acid, diluted with ethyl acetate, washed twice with a saturated saline solution, dried over anhydrous sodium sulfate, and the solvent was distilled off under reduced pressure.
  • the residue was dissolved in DMSO (75 mL), water (0.68 mL) and lithium chloride (3.21 g) were added, and the temperature was raised to 165 ° C. After stirring at the same temperature for 16 hours, water was added, and the mixture was diluted with ethyl acetate. After washing twice with a saturated saline solution, it was dried over anhydrous sodium sulfate, and the solvent was distilled off under reduced pressure.
  • nonan-5-one (10.0 g) was added and the temperature was raised to room temperature. After stirring for a while, the temperature was raised to 50 ° C. After stirring for 10 hours, the reaction mixture was cooled to 5 ° C. or lower, water was added, diluted with ethyl acetate, washed twice with saturated saline, dried over anhydrous sodium sulfate, and the solvent was distilled off under reduced pressure. The residue was purified by silica gel column chromatography (ethyl acetate / hexane) to obtain the title compound (4.47 g).
  • Ethyl 4,5-dibutylnon-2-enoate A suspension of 60% sodium hydride (containing mineral oil) (1.0 g) in dehydrated THF (41 mL) was stirred for 10 minutes under a stream of nitrogen and ice cooling. Thereafter, ethyl (diethoxyphosphoryl) acetate (6.10 g) was added dropwise at 10 ° C or lower. After stirring at the same temperature for 10 minutes, a solution of 2,3-dibutylheptanal (4.10 g) in dehydrated THF (8 mL) was added dropwise, and the temperature was raised to room temperature. After stirring for a while, the temperature was raised to 50 ° C.
  • the residue was diluted with ethyl acetate, washed once with a saturated aqueous sodium hydrogen carbonate solution and once with a saturated saline solution, dried over anhydrous sodium sulfate, and the solvent was distilled off under reduced pressure.
  • the residue was purified by silica gel column chromatography (ethyl acetate / hexane) to give the title compound (680 mg).
  • the obtained lipid solution and nucleic acid solution were mixed at room temperature with a Nanoassemblr apparatus (Precision Nanosystems) at a flow rate ratio of 3 ml / min: 6 ml / min to obtain a dispersion containing the composition.
  • the resulting dispersion was dialyzed against water for 1 hour at room temperature and against PBS for 48 hours at 4 ° C. using Slyde-A-Lyzer (fraction molecular weight of 20 k, Thermo scientific). Subsequently, the mixture was filtered using a 0.2 ⁇ m syringe filter (Iwaki) and stored at 4 ° C.
  • the analysis results of the obtained GFP mRNA-containing LNP are shown in the table below.
  • the particle diameter of the lipid particles in the composition was calculated as a Z-average particle diameter by cumulant analysis of an autocorrelation function using a particle diameter measuring apparatus based on dynamic light scattering measurement technology, Zetasizer Nano ZS (Malvern Instruments). .
  • Preparation Example 10 Preparation of LNP containing GFP mRNA using compound of Synthesis Example 10 LNP was prepared in the same manner as in Preparation Example 8 except that the compound of Synthesis Example 10 was used instead of the compound of Synthesis Example 8. .
  • the analysis results of the obtained GFP mRNA-containing LNP are shown in the table below.
  • Preparation Example 11 Preparation of LNP containing GFP mRNA using compound of Synthesis Example 11 LNP was prepared in the same manner as in Preparation Example 8 except that the compound of Synthesis Example 11 was used instead of the compound of Synthesis Example 8. .
  • the analysis results of the obtained GFP mRNA-containing LNP are shown in the table below.
  • Example 1 LNP to differentiated cells derived from iPSCs (containing cardiomyocytes) transfection
  • LNPs containing EGFP mRNA were added to cells induced to differentiate from iPSCs, and the transfection efficiency was confirmed.
  • iPSCs Ff-I14s04, obtained from Kyoto University iPS Cell Research Institute maintained and cultured in StemFit AK03N (AJINOMOTO) were obtained from Stemtro Accutase. (Thermo Fisher Scientific) for about 5 minutes, and then dissociated into single cells by pipetting. The medium was removed by centrifugation (1,000 rpm, 5 min), and the obtained cells were seeded at 1 ⁇ 10 7 cells per 30 mL bioreactor (ABLE), and a medium (AJINOMOTO) was prepared by removing the C solution from StemFit AK03N.
  • the obtained embryoid bodies were collected in a 50 mL centrifuge tube and subjected to centrifugation (200 g, 1 min) .After that, the medium was removed, and the C solution was removed from StemFit AK03N.
  • the bioreactor was allowed to stand to sediment the embryoid bodies, and after removing 80 to 90% of the medium, 1% L-glutamine, transferrin 150 ⁇ g / mL, and ascorbic acid 50 ⁇ g / mL (sigma), a medium obtained by removing solution C from StemFit AK03N to which 4 ⁇ 10 ⁇ 4 M of monothioglycerol and 5 ng / mL VEGF had been added (total 500 mL of 400 mL of solution A and 100 mL of solution B of AJINOMOTO AK03N).
  • a medium 400 mL of AJINOMOTO AK03N solution A and 100 mL of solution B, 500 mL in total
  • the medium was removed by centrifugation (1,000 rpm, 5 min), and the obtained cells were adjusted to 1 ⁇ 10 6 cells / ml with 1% L-glutamine, transferrin 150 ⁇ g / mL, ascorbic acid 50 ⁇ g / mL (sigma),
  • a suspension was prepared in StemFit AK03N supplemented with 4 ⁇ 10 -4 M monothioglycerol and 5 ng / mL VEGF, excluding solution C (400 mL of AJINOMOTO AK03N A solution and 100 mL of B solution, 500 mL in total).
  • the cell suspension was seeded at 1 ml / well in a 12-well plate coated with fibronectin (Sigma).
  • Lipofectamine registered trademark
  • Lipofectamine Messenger MAX Reagent Lipofectamine Messenger MAX Reagent
  • GFP mRNA TriLink
  • mRNA (TriLink) prepared using the compound (cationic lipid) of Synthesis Example 8, Synthesis Example 10, or Synthesis Example 11, respectively.
  • LNP containing was added to the above cell suspension of the 12-well plate, mixed, and cultured in an incubator at 37 ° C. under normoxic conditions for 1 day.
  • the transfection method using the composition containing the specific compound (the compound of the present invention), the structural lipid and the nucleic acid according to the present invention enables nucleic acid to be efficiently introduced into cardiomyocytes.
  • Such a transfection method of the present invention can be applied to, for example, a method for purifying cardiomyocytes in a cell population containing cardiomyocytes, in other words, a method for producing a cell population having high cardiomyocyte purity. it can.
  • the high-purity cell population of cardiomyocytes obtained by these methods includes, for example, heart failure, ischemic heart disease, myocardial infarction, cardiomyopathy, myocarditis, hypertrophic cardiomyopathy, dilated phase hypertrophic cardiomyopathy, dilated cardiomyopathy It can be used for the treatment of heart diseases such as.
  • SEQ ID NO: 16 Standard cardiomyocyte-specific miRNA recognition sequence corresponding to has-miR-1 represented by SEQ ID NO: 1.
  • SEQ ID NO: 17 Standard cardiomyocyte-specific miRNA recognition sequence corresponding to has-miR-22-5p represented by SEQ ID NO: 2.
  • SEQ ID NO: 18 Standard cardiomyocyte-specific miRNA recognition sequence corresponding to has-miR-133a represented by SEQ ID NO: 3.
  • SEQ ID NO: 19 Standard cardiomyocyte-specific miRNA recognition sequence corresponding to has-miR-133b represented by SEQ ID NO: 4.
  • SEQ ID NO: 20 Standard cardiomyocyte-specific miRNA recognition sequence corresponding to has-miR-143-3p represented by SEQ ID NO: 5.
  • SEQ ID NO: 21 Standard cardiomyocyte-specific miRNA recognition sequence corresponding to has-miR-145-3p represented by SEQ ID NO: 6.
  • SEQ ID NO: 22 Standard cardiomyocyte-specific miRNA recognition sequence corresponding to has-miR-208a-3p represented by SEQ ID NO: 7.
  • SEQ ID NO: 23 Standard cardiomyocyte-specific miRNA recognition sequence corresponding to has-miR-208b-3p represented by SEQ ID NO: 8.
  • SEQ ID NO: 24 Standard cardiomyocyte-specific miRNA recognition sequence corresponding to has-miR-490-3p represented by SEQ ID NO: 9.
  • SEQ ID NO: 25 Standard cardiomyocyte-specific miRNA recognition sequence corresponding to has-miR-490-5p represented by SEQ ID NO: 10.
  • SEQ ID NO: 26 Standard cardiomyocyte-specific miRNA recognition sequence corresponding to has-miR-499a-5p represented by SEQ ID NO: 11.
  • SEQ ID NO: 27 Standard cardiomyocyte-specific miRNA recognition sequence corresponding to has-miR-1271-5p represented by SEQ ID NO: 12.
  • SEQ ID NO: 28 Standard cardiomyocyte-specific miRNA recognition sequence corresponding to has-miR-3907 represented by SEQ ID NO: 13.
  • SEQ ID NO: 29 Standard cardiomyocyte-specific miRNA recognition sequence corresponding to has-miR-4324 represented by SEQ ID NO: 14.
  • SEQ ID NO: 30 Standard cardiomyocyte-specific miRNA recognition sequence corresponding to has-let-7e-5p represented by SEQ ID NO: 15.

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Cardiology (AREA)
  • Rheumatology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Abstract

本発明は、心筋細胞への核酸の導入効率に優れた手段、特にトランスフェクション方法を提供する。本発明の心筋細胞への核酸のトランスフェクション方法は、式（Ｉ）で表される化合物又はその塩、構造脂質、および核酸を含む組成物と、心筋細胞を含む細胞集団とを接触させる工程を含む。ｎ１は２～６の整数を、ｎ２は０～２の整数を、ｎ３は０～２の整数を、Ｌは、－Ｃ（Ｏ）Ｏ－または－ＮＨＣ（Ｏ）Ｏ－を、Ｒａは、直鎖状Ｃ５－１３アルキル基、直鎖状Ｃ１３－１７アルケニル基または直鎖状Ｃ１７アルカジエニル基を、Ｒｂは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、Ｒｃは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、Ｒｄは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、Ｒｅは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、Ｒｆは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を示す。

Description

カチオン性脂質を用いた心筋細胞へのトランスフェクション方法
　本発明は、核酸を心筋細胞に導入することを可能にする組成物に関する。さらに本発明は、そのような組成物を用いた、心筋細胞への核酸のトランスフェクション方法、ならびに心筋細胞の精製方法および製造方法に関する。
［発明の背景］
　心筋細胞は出生と同時にその分裂能を喪失し、再生が困難である。したがって、近年、心筋梗塞、心筋炎または老化等を原因とする傷害心組織に対して、胚性幹細胞（ＥＳ細胞）や人工多能性幹細胞（ｉＰＳ細胞）など多能性を有する細胞を分化誘導して得られる心筋細胞を移植する補充療法が注目されている。これら多能性幹細胞からの心筋細胞への分化誘導法が多数報告されている（特許文献１、特許文献２、特許文献３および非特許文献１）。しかし、移植用細胞として用いるためには、ソーティング等により心筋細胞の純度を高める必要がある。
　従来、心筋細胞を選別する方法として、心筋細胞もしくは心筋前駆細胞に対する表面マーカーを用いて心筋細胞を選別する方法が多く用いられているが、例えば特許文献４には、心筋細胞において特異的に発現しているｍＲＮＡに対応する「ｍｉＲＮＡ応答性オフスイッチｍＲＮＡ」を用いて、多能性幹細胞等から分化誘導された細胞集団に含まれる心筋細胞を精製できることが記載されている。
　一方、心筋細胞に所望の物質を導入する（トランスフェクションする）ことに関して、例えば非特許文献２には、L α-Phosphatidylcholine (PC)、1,2- Dipalmitoyl-sn-Glycero-3-Phopshoethanolamine (DPPE) およびCholesterol (CHOL) によって形成される脂質ナノ粒子 (LNP) 中にFITC-Dextranを内封したものを、培養心筋細胞にトランスフェクションすることにより、心筋細胞中で蛍光が認められたことが記載されている。
国際公開第2007/002136号 国際公開第2009/118928号 特開2010-158206号公報 国際公開第2015/141827号
Yan P, et al, Biochem Biophys Res Commun. 379:115-20 (2009) Stephen L. Hayward [Univ. Nebraska - Lincoln] (Digital Commons @University of Nebraska - Lincoln, 2015)
　本発明の目的は、例えば前掲特許文献４に記載された方法を実施するために利用することのできる、心筋細胞への核酸の導入効率に優れた手段、特にトランスフェクション方法を提供することにある。また、別の観点では、本発明の目的は、そのような手段を利用した心筋細胞の精製方法および製造方法を提供することにある。
　本発明者らが上記課題を解決すべく鋭意検討を行った結果、下記の式で示される化合物（カチオン性脂質の一種）またはその塩と他の構造脂質とにより形成される脂質粒子を用いることにより、核酸を心筋細胞に効率的に導入することができ、上記課題を解決可能であることを見出し、本発明を完成するに至った。
　すなわち、本発明は少なくとも以下の発明に関する。
［１］
　１）式（Ｉ）：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000008
 ［式中、ｎ１は２～６の整数を、ｎ２は０～２の整数を、ｎ３は０～２の整数を、
Ｌは、－Ｃ（Ｏ）Ｏ－または－ＮＨＣ（Ｏ）Ｏ－を、
Ｒａは、直鎖状Ｃ５－１３アルキル基、直鎖状Ｃ１３－１７アルケニル基または直鎖状Ｃ１７アルカジエニル基を、
Ｒｂは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
Ｒｃは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
Ｒｄは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
Ｒｅは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
Ｒｆは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を示す。］
で表される化合物又はその塩、
　２）構造脂質、および
　３）核酸
を含む組成物と、心筋細胞を含む細胞集団とを接触させる工程を含む、心筋細胞への核酸のトランスフェクション方法。
［２］
　前記核酸が、ｍＲＮＡである、項１記載の方法。
［３］
　前記ｍＲＮＡが、
　（ｉ）心筋細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡによって特異的に認識される塩基配列、および機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含む、心筋細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡ、および／または
　（ｉｉ）機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含むｍＲＮＡ
を含む、項２記載の方法。
［４］
　前記ｍＲＮＡが、
　（ｉ）心室筋細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡによって特異的に認識される塩基配列、および機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含む、心室筋細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡ、および／または
　（ｉｉ）機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含むｍＲＮＡ
を含む、項２記載の方法。
［５］
　前記（ｉ）および（ｉｉ）の機能的な遺伝子が、それぞれ独立して、薬剤耐性遺伝子、蛍光タンパク質をコードする遺伝子、アポトーシス誘導遺伝子および自殺遺伝子からなる群から選択される１またはそれ以上の遺伝子である、項３または４記載の方法。
［６］
　心筋細胞を含む細胞集団が、人工多能性幹細胞、胚性幹細胞またはその他の幹細胞から分化誘導された心筋細胞を含む細胞集団である、項１記載の方法。
［７］
　１）式（Ｉ）：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000009
 ［式中、ｎ１は２～６の整数を、ｎ２は０～２の整数を、ｎ３は０～２の整数を、
Ｌは、－Ｃ（Ｏ）Ｏ－または－ＮＨＣ（Ｏ）Ｏ－を、
Ｒａは、直鎖状Ｃ５－１３アルキル基、直鎖状Ｃ１３－１７アルケニル基または直鎖状Ｃ１７アルカジエニル基を、
Ｒｂは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
Ｒｃは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
Ｒｄは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
Ｒｅは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
Ｒｆは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を示す。］
で表される化合物又はその塩、
　２）構造脂質、および
　３）ｍＲＮＡ
を含む組成物と、心筋細胞を含む細胞集団とを接触させる工程を含む、心筋細胞の精製方法であって、ここで該ｍＲＮＡが、
　（ｉ）心筋細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡによって特異的に認識される塩基配列、および機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含む、心筋細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡ、および／または
　（ｉｉ）機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含むｍＲＮＡ
を含む、心筋細胞の精製方法。
［８］
　１）式（Ｉ）：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000010
 ［式中、ｎ１は２～６の整数を、ｎ２は０～２の整数を、ｎ３は０～２の整数を、
Ｌは、－Ｃ（Ｏ）Ｏ－または－ＮＨＣ（Ｏ）Ｏ－を、
Ｒａは、直鎖状Ｃ５－１３アルキル基、直鎖状Ｃ１３－１７アルケニル基または直鎖状Ｃ１７アルカジエニル基を、
Ｒｂは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
Ｒｃは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
Ｒｄは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
Ｒｅは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
Ｒｆは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を示す。］
で表される化合物又はその塩、
　２）構造脂質、および
　３）ｍＲＮＡ
を含む組成物と、心室筋細胞を含む細胞集団とを接触させる工程を含む、心室筋細胞の精製方法であって、ここで該ｍＲＮＡが、
　（ｉ）心室筋細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡによって特異的に認識される塩基配列、および機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含む、心室筋細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡ、および／または
　（ｉｉ）機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含むｍＲＮＡ
を含む、心室筋細胞の精製方法。
［９］
　１）式（Ｉ）：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000011
 ［式中、ｎ１は２～６の整数を、ｎ２は０～２の整数を、ｎ３は０～２の整数を、
Ｌは、－Ｃ（Ｏ）Ｏ－または－ＮＨＣ（Ｏ）Ｏ－を、
Ｒａは、直鎖状Ｃ５－１３アルキル基、直鎖状Ｃ１３－１７アルケニル基または直鎖状Ｃ１７アルカジエニル基を、
Ｒｂは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
Ｒｃは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
Ｒｄは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
Ｒｅは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
Ｒｆは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を示す。］
で表される化合物又はその塩、
　２）構造脂質、および
　３）ｍＲＮＡ
を含む組成物と、心筋細胞を含む細胞集団とを接触させる工程を含む、心筋細胞の製造方法であって、ここで該ｍＲＮＡが、
　（ｉ）心筋細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡによって特異的に認識される塩基配列、および機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含む、心筋細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡ、および／または
　（ｉｉ）機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含むｍＲＮＡ
を含む、心筋細胞の製造方法。
［１０］
　１）式（Ｉ）：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000012
 ［式中、ｎ１は２～６の整数を、ｎ２は０～２の整数を、ｎ３は０～２の整数を、
Ｌは、－Ｃ（Ｏ）Ｏ－または－ＮＨＣ（Ｏ）Ｏ－を、
Ｒａは、直鎖状Ｃ５－１３アルキル基、直鎖状Ｃ１３－１７アルケニル基または直鎖状Ｃ１７アルカジエニル基を、
Ｒｂは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
Ｒｃは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
Ｒｄは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
Ｒｅは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
Ｒｆは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を示す。］
で表される化合物又はその塩、
　２）構造脂質、および
　３）ｍＲＮＡ
を含む組成物と、心室筋細胞を含む細胞集団とを接触させる工程を含む、心室筋細胞の製造方法であって、ここで該ｍＲＮＡが、
　（ｉ）心室筋細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡによって特異的に認識される塩基配列、および機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含む、心室筋細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡ、および／または
　（ｉｉ）機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含むｍＲＮＡ
を含む、心室筋細胞の製造方法。
［１１］
　１）式（Ｉ）：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000013
 ［式中、ｎ１は２～６の整数を、ｎ２は０～２の整数を、ｎ３は０～２の整数を、
Ｌは、－Ｃ（Ｏ）Ｏ－または－ＮＨＣ（Ｏ）Ｏ－を、
Ｒａは、直鎖状Ｃ５－１３アルキル基、直鎖状Ｃ１３－１７アルケニル基または直鎖状Ｃ１７アルカジエニル基を、
Ｒｂは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
Ｒｃは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
Ｒｄは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
Ｒｅは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
Ｒｆは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を示す。］
で表される化合物又はその塩、
　２）構造脂質、および
　３）核酸
を含む、心筋細胞への核酸のトランスフェクション用組成物。
［１２］
　１）式（Ｉ）：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000014
 ［式中、ｎ１は２～６の整数を、ｎ２は０～２の整数を、ｎ３は０～２の整数を、
Ｌは、－Ｃ（Ｏ）Ｏ－または－ＮＨＣ（Ｏ）Ｏ－を、
Ｒａは、直鎖状Ｃ５－１３アルキル基、直鎖状Ｃ１３－１７アルケニル基または直鎖状Ｃ１７アルカジエニル基を、
Ｒｂは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
Ｒｃは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
Ｒｄは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
Ｒｅは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
Ｒｆは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を示す。］
で表される化合物又はその塩、
　２）構造脂質、および
　３）核酸
を含む、心筋細胞への核酸のトランスフェクション用キット。
　なお、本明細書において、「式（Ｉ）で表される化合物」を「化合物（Ｉ）」と記載することがある。「式（Ｉ）で表される化合物又はその塩」を「本発明の化合物」と呼ぶことがある。「式（Ｉ）で表される化合物又はその塩（本発明の化合物）を含有する脂質粒子」を「本発明の脂質粒子」と呼ぶことがある。本発明の化合物、構造脂質、および核酸を含む、心筋細胞への核酸のトランスフェクション用組成物を「本発明の組成物」と呼ぶことがある。本発明の化合物、構造脂質、および核酸を含む、心筋細胞への核酸のトランスフェクション用キットを「本発明のキット」と呼ぶことがある。
　本発明のトランスフェクション方法により、種々の核酸を心筋細胞に対して優れたトランスフェクション効率で導入することが可能となる。また、そのようなトランスフェクション方法において、核酸として心筋細胞に特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡを利用することにより、効率的に細胞集団中の心筋細胞を精製すること、換言すれば効率的に心筋細胞を含む細胞集団の精製物を製造することが可能となる。
　さらに本発明のトランスフェクション方法において、核酸として、特定の心筋細胞サブタイプ（例、心室筋細胞）に特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡを利用することにより、効率的に細胞集団中の特定の心筋細胞サブタイプのみを精製することができる。
図１は、実施例において、「Messenger MAX」を用いて調製された緑色蛍光タンパク質（GFP）mRNA含有脂質ナノ粒子（LNP）、および本発明の化合物を用いて調製されたGFP mRNA含有LNP（調製例８、１０、１１）を、iPSC由来の心筋細胞を含む細胞集団へトランスフェクションした翌日の、位相差顕微鏡写真および蛍光顕微鏡写真である。 図２は、実施例において、「Messenger MAX」を用いて調製されたGFP mRNA含有LNP、および本発明の化合物を用いて調製されたGFP mRNA含有LNP（調製例８、１０、１１）を、iPSC由来の心筋細胞を含む細胞集団へトランスフェクションした翌日の、フローサイトメトリー解析の結果を表す。
　（発明の詳細な説明）
　本明細書において、「トランスフェクション」とは、任意の物質を細胞の内部に導入することを意味する。細胞の内部には、少なくとも、細胞質内及び核内が包含される。
　本明細書では「核酸」（例えば「ｍＲＮＡ」）をトランスフェクションにより細胞内部に導入する。核酸の使用量は、トランスフェクションの条件や目的などによって変わり得るが、例えば、ｍＲＮＡの使用量は、１×１０６個の細胞に対して１ｎｇ～１００μｇ、好ましくは１００ｎｇ～５０００ｎｇである。
　「培養（Culture)」又は「培養する」とは、組織外又は体外で、例えば、ディッシュ、シャーレ、フラスコ、あるいは培養槽（タンク）中で細胞を維持し、増殖させ、かつ／又は分化させることを意味する。
　「多能性（pluripotency）」とは、種々の異なった形態や機能を持つ組織や細胞に分化でき、３胚葉のどの系統の細胞にも分化し得る能力を意味する。「多能性（pluripotency）」は、胚盤には分化できず、したがって個体を形成する能力はないという点で、胚盤を含めて、生体のあらゆる組織に分化しうる「全能性（totipotency）」とは区別される。
　「多能性（multipotency）」とは、複数の限定的な数の系統の細胞へと分化できる能力を意味する。例えば、間葉系幹細胞、造血幹細胞、神経幹細胞はmultipotentだが、pluripotentではない。
　「幹細胞（stem cell）」としては、例えば、多能性幹細胞（pluripotent stem cell）が挙げられる。
　本発明において使用可能な「多能性幹細胞（pluripotent stem cell）」とは、生体の種々の異なった形態や機能を持つ組織や細胞に分化でき、３胚葉（内胚葉、中胚葉、外胚葉）のどの系統の細胞にも分化し得る能力を有する幹細胞を指す。それには、特に限定されないが、例えば、胚性幹細胞（ESC）、核移植により得られるクローン胚由来の胚性幹細胞、精子幹細胞、胚性生殖細胞、人工多能性幹細胞（本明細書中、「iPSC」と称することもある）などが挙げられる。
　また、本発明において使用可能な「多能性幹細胞（multipotent stem cell）」とは、複数の限定的な数の系統の細胞へと分化できる能力を有する幹細胞を指す。本発明において使用可能な「多能性幹細胞（multipotent stem cell）」としては、例えば、歯髄幹細胞、口腔粘膜由来幹細胞、毛包幹細胞、培養線維芽細胞や骨髄幹細胞由来の体性幹細胞などが挙げられる。好ましい多能性幹細胞（pluripotent stem cell）は、ESC及びiPSCである。
　「人工多能性幹細胞（iPSC）」とは、哺乳動物体細胞又は未分化幹細胞に、特定の因子（核初期化因子）を導入して再プログラミングすることにより得られる細胞を指す。現在、「人工多能性幹細胞」にはさまざまなものがあり、山中らにより、マウス線維芽細胞にOct3/4・Sox2・Klf4・c-Mycの４因子を導入することにより、樹立されたiPSC（Takahashi K, Yamanaka S., Cell, (2006) 126: 663-676）のほか、同様の４因子をヒト線維芽細胞に導入して樹立されたヒト細胞由来のiPSC（Takahashi K, Yamanaka S., et al. Cell, (2007) 131: 861-872.）、上記４因子導入後、Nanogの発現を指標として選別し、樹立したNanog-iPS細胞（Okita, K., Ichisaka, T., and Yamanaka, S. (2007). Nature 448, 313-317.）、c-Mycを含まない方法で作製されたiPS細胞（Nakagawa M, Yamanaka S., et al. Nature Biotechnology, (2008) 26, 101-106）、ウイルスフリー法で6因子を導入して樹立されたiPS細胞（Okita K et al. Nat. Methods 2011 May;8(5):409-12, Okita K et al. Stem Cells. 31(3):458-66.）も用いることができる。また、Thomsonらにより作製されたOCT3/4・SOX2・NANOG・LIN28の４因子を導入して樹立された人工多能性幹細胞（Yu J., Thomson JA. et al., Science (2007) 318: 1917-1920.）、Daleyらにより作製された人工多能性幹細胞（Park IH, Daley GQ. et al., Nature (2007) 451: 141-146）、桜田らにより作製された人工多能性幹細胞（特開2008-307007号）等も用いることができる。このほか、公開されているすべての論文（例えば、Shi Y., Ding S., et al., Cell Stem Cell, (2008) Vol3, Issue 5,568-574；Kim JB., Scholer HR., et al., Nature, (2008) 454, 646-650；Huangfu D., Melton, DA., et al., Nature Biotechnology, (2008) 26, No 7, 795-797）、あるいは特許（例えば、特開2008-307007号、特開2008-283972号、US2008-2336610、US2009-047263、WO2007-069666、WO2008-118220、WO2008-124133、WO2008-151058、WO2009-006930、WO2009-006997、WO2009-007852）に記載されている当該分野で公知の人工多能性幹細胞のいずれも用いることができる。
　「人工多能性幹細胞」としては、NIH、理研（理化学研究所）、京都大学等が樹立した各種iPSC株が利用可能である。例えば、ヒトiPSC株であれば、理研のHiPS-RIKEN-1A株、HiPS-RIKEN-2A株、HiPS-RIKEN-12A株、Nips-B2株、京都大学の253G1株、201B7株、409B2株、454E2株、606A1株、610B1株、648A1株等が挙げられる。あるいは、京都大学やCellular Dynamics International等から提供される臨床グレードの細胞株並びにそれらの細胞株を用いて作製された研究用および臨床用の細胞株等を用いてもよい。
　「胚性幹細胞（ESC）」としては、マウスESCであれば、inGenious targeting laboratory社、理研（理化学研究所）等が樹立した各種マウスESC株が利用可能であり、ヒトESCであれば、NIH、理研、京都大学、Cellartis社が樹立した各種ヒトESC株が利用可能である。たとえば、ヒトESC株としては、NIHのCHB-1～CHB-12株、RUES1株、RUES2株、HUES1～HUES28株等、WisCell ResearchのH1株、H9株、理研のKhES-1株、KhES-2株、KhES-3株、KhES-4株、KhES-5株、SSES1株、SSES2株、SSES3株等を利用することができる。あるいは、臨床グレードの細胞株並びにそれらの細胞株を用いて作製された研究用および臨床用の細胞株等を用いてもよい。
　本明細書において「心筋細胞」とは、特に述べない限り、心室筋細胞、心房筋細胞、ペースメーカー細胞などのサブタイプを１種以上含む。
　本明細書において「心筋細胞を含む細胞集団」は、心筋細胞と心筋細胞以外の細胞を１種以上含む細胞集団を意味し、生体内（in vivo）におけるものでも、生体外（ex vivo）におけるものでも、培養されているもの（in vitro）でもよい。心筋細胞を含む細胞集団は、例えば、生体内にある、または任意の方法で採取されて生体外にある、末梢血、心臓、骨髄組織、脂肪組織、骨格筋組織、羊膜組織、胎盤組織、臍帯血などに含まれる細胞集団であってもよいし、心筋細胞へ分化誘導することが可能な細胞（例、幹細胞、多能性幹細胞、ESC、iPSC）を、心筋細胞への分化誘導に適した条件下で培養することにより得られた細胞集団（胚様体を含む）であってもよい。
　本明細書において「心筋細胞以外の細胞」とは、特に限定はないが、例えば、「心筋細胞を含む細胞集団」が由来する生体組織、培養物に含まれる心筋細胞以外の細胞が挙げられる。
　一つの実施形態では、「心筋細胞を含む細胞集団」は、iPSCから分化誘導した心筋細胞（１種以上のサブタイプを含む）と未分化のiPSC等の心筋細胞以外の細胞を含む細胞集団である。
　本明細書において「心室筋細胞を含む細胞集団」は、心室筋細胞と、心室筋細胞以外の細胞を１種以上含む細胞集団である。
　本明細書において「心室筋細胞以外の細胞」とは、特に限定はないが、例えば、心室筋細胞以外の心筋細胞のサブタイプ（例、心房筋細胞、ペースメーカー細胞）、心筋細胞以外の細胞が挙げられる。
　本発明における「心筋細胞」、「心室筋細胞」、「心筋細胞以外の細胞」および「心室筋細胞以外の細胞」は、ヒト由来の細胞であってもよいし、ヒト以外の哺乳類（非ヒト哺乳動物）由来の細胞であってもよい。非ヒト哺乳動物としては、例えば、マウス、ラット、ハムスター、モルモット、ウサギ、イヌ、ネコ、ブタ、ウシ、ウマ、ヒツジ、サルが挙げられる。
　本明細書において「対象細胞」とは、本発明のトランスフェクションの対象となる心筋細胞またはその特定のサブタイプ（例えば、心室筋細胞、心房筋細胞、ペースメーカー細胞など）を意味する。
　本明細書において「ｍｉＲＮＡ」とは、ｍＲＮＡからタンパク質への翻訳の阻害やｍＲＮＡの分解を通して、遺伝子の発現調節に関与する、細胞内に存在する短鎖（通常２０～２５塩基）のノンコーディングＲＮＡである。このｍｉＲＮＡは、ＤＮＡからｍｉＲＮＡとその相補鎖を含むヘアピンループ構造を取ることが可能な一本差のｐｒｉ－ｍｉＲＮＡとして転写され、核内にあるＤｒｏｓｈａと呼ばれる酵素により一部が切断されｐｒｅ－ｍｉＲＮＡとなって核外に輸送された後、さらにＤｉｃｅｒによって切断されて機能する。
　「～を含む（comprise(s)又はcomprising）」とは、その語句に続く要素の包含を示すがこれに限定されないことを意味する。したがって、その語句に続く要素の包含は示唆するが、他の任意の要素の除外は示唆しない。
　「～からなる（consist(s) of又はconsisting of）」とは、その語句に続くあらゆる要素を包含し、かつ、これに限定されることを意味する。したがって、「～からなる」という語句は、列挙された要素が要求されるか又は必須であり、他の要素は実質的に存在しないことを示す。「～から本質的になる」とは、その語句に続く任意の要素を包含し、かつ、その要素について本開示で特定された活性又は作用に影響しない他の要素に限定されることを意味する。したがって、「～から本質的になる」という語句は、列挙された要素が要求されるか又は必須であるが、他の要素は任意選択であり、それらが列挙された要素の活性又は作用に影響を及ぼすかどうかに応じて、存在させる場合もあり、存在させない場合もあることを示す。
　以下、本明細書中で用いられる各置換基の定義について詳述する。特記しない限り各置換基は以下の定義を有する。
　本明細書中、「直鎖状Ｃ５－１３アルキル基」としては、例えば、ペンチル、ヘキシル、ヘプチル、オクチル、ノニル、デカニル、ウンデカニル、ドデカニル、トリデカニルが挙げられる。
　本明細書中、「直鎖状Ｃ１３－１７アルケニル基」としては、例えば、１－トリデセニル、２－トリデセニル、３－トリデセニル、４－トリデセニル、５－トリデセニル、６－トリデセニル、７－トリデセニル、８－トリデセニル、９－トリデセニル、１０－トリデセニル、１１－トリデセニル、１２－トリデセニル；１－テトラデセニル、２－テトラデセニル、３－テトラデセニル、４－テトラデセニル、５－テトラデセニル、６－テトラデセニル、７－テトラデセニル、８－テトラデセニル、９－テトラデセニル、１０－テトラデセニル、１１－テトラデセニル、１２－テトラデセニル、１３－テトラデセニル；１－ペンタデセニル、２－ペンタデセニル、３－ペンタデセニル、４－ペンタデセニル、５－ペンタデセニル、６－ペンタデセニル、７－ペンタデセニル、８－ペンタデセニル、９－ペンタデセニル、１０－ペンタデセニル、１１－ペンタデセニル、１２－ペンタデセニル、１３－ペンタデセニル、１４－ペンタデセニル；１－ヘキサデセニル、２－ヘキサデセニル、３－ヘキサデセニル、４－ヘキサデセニル、５－ヘキサデセニル、６－ヘキサデセニル、７－ヘキサデセニル、８－ヘキサデセニル、９－ヘキサデセニル、１０－ヘキサデセニル、１１－ヘキサデセニル、１２－ヘキサデセニル、１３－ヘキサデセニル、１４－ヘキサデセニル、１５－ヘキサラデセニル；１－ヘプタデセニル、２－ヘプタデセニル、３－ヘプタデセニル、４－ヘプタデセニル、５－ヘプタデセニル、６－ヘプタデセニル、７－ヘプタデセニル、８－ヘプタデセニル、９－ヘプタデセニル、１０－ヘプタデセニル、１１－ヘプタデセニル、１２－ヘプタデセニル、１３－ヘプタデセニル、１４－ヘプタデセニル、１５－ヘプタラデセニル、１６－ヘプタラデセニルが挙げられる。これらの直鎖状Ｃ１３－１７アルケニル基は炭素－炭素二重結合を１つ含むためシス型およびトランス型の構造を取り得るが、どちらの構造であってもよい。
　本明細書中、「直鎖状Ｃ１７アルカジエニル基」としては、例えば、１，３－ヘプタデカジエニル、１，４－ヘプタデカジエニル、１，５－ヘプタデカジエニル、１，６－ヘプタデカジエニル、１，７－ヘプタデカジエニル、１，８－ヘプタデカジエニル、１，９－ヘプタデカジエニル、１，１０－ヘプタデカジエニル、１，１１－ヘプタデカジエニル、１，１２－ヘプタデカジエニル、１，１３－ヘプタデカジエニル、１，１４－ヘプタデカジエニル、１，１５－ヘプタデカジエニル、１，１６－ヘプタデカジエニル、２，４－ヘプタデカジエニル、２，５－ヘプタデカジエニル、２，６－ヘプタデカジエニル、２，７－ヘプタデカジエニル、２，８－ヘプタデカジエニル、２，９－ヘプタデカジエニル、２，１０－ヘプタデカジエニル、２，１１－ヘプタデカジエニル、２，１２－ヘプタデカジエニル、２，１３－ヘプタデカジエニル、２，１４－ヘプタデカジエニル、２，１５－ヘプタデカジエニル、２，１６－ヘプタデカジエニル、３，５－ヘプタデカジエニル、３，６－ヘプタデカジエニル、３，７－ヘプタデカジエニル、３，８－ヘプタデカジエニル、３，９－ヘプタデカジエニル、３，１０－ヘプタデカジエニル、３，１１－ヘプタデカジエニル、３，１２－ヘプタデカジエニル、３，１３－ヘプタデカジエニル、３，１４－ヘプタデカジエニル、３，１５－ヘプタデカジエニル、３，１６－ヘプタデカジエニル、４，６－ヘプタデカジエニル、４，７－ヘプタデカジエニル、４，８－ヘプタデカジエニル、４，９－ヘプタデカジエニル、４，１０－ヘプタデカジエニル、４，１１－ヘプタデカジエニル、４，１２－ヘプタデカジエニル、４，１３－ヘプタデカジエニル、４，１４－ヘプタデカジエニル、４，１５－ヘプタデカジエニル、４，１６－ヘプタデカジエニル、５，７－ヘプタデカジエニル、５，８－ヘプタデカジエニル、５，９－ヘプタデカジエニル、５，１０－ヘプタデカジエニル、５，１１－ヘプタデカジエニル、５，１２－ヘプタデカジエニル、５，１３－ヘプタデカジエニル、５，１４－ヘプタデカジエニル、５，１５－ヘプタデカジエニル、５，１６－ヘプタデカジエニル、６，８－ヘプタデカジエニル、６，９－ヘプタデカジエニル、６，１０－ヘプタデカジエニル、６，１１－ヘプタデカジエニル、６，１２－ヘプタデカジエニル、６，１３－ヘプタデカジエニル、６，１４－ヘプタデカジエニル、６，１５－ヘプタデカジエニル、６，１６－ヘプタデカジエニル、７，９－ヘプタデカジエニル、７，１０－ヘプタデカジエニル、７，１１－ヘプタデカジエニル、７，１２－ヘプタデカジエニル、７，１３－ヘプタデカジエニル、７，１４－ヘプタデカジエニル、７，１５－ヘプタデカジエニル、７，１６－ヘプタデカジエニル、８，１０－ヘプタデカジエニル、８，１１－ヘプタデカジエニル、８，１２－ヘプタデカジエニル、８，１３－ヘプタデカジエニル、８，１４－ヘプタデカジエニル、８，１５－ヘプタデカジエニル、８，１６－ヘプタデカジエニル、９，１１－ヘプタデカジエニル、９，１２－ヘプタデカジエニル、９，１３－ヘプタデカジエニル、９，１４－ヘプタデカジエニル、９，１５－ヘプタデカジエニル、９，１６－ヘプタデカジエニル、１０，１２－ヘプタデカジエニル、１０，１３－ヘプタデカジエニル、１０，１４－ヘプタデカジエニル、１０，１５－ヘプタデカジエニル、１０，１６－ヘプタデカジエニル、１１，１３－ヘプタデカジエニル、１１，１４－ヘプタデカジエニル、１１，１５－ヘプタデカジエニル、１１，１６－ヘプタデカジエニル、１２，１４－ヘプタデカジエニル、１２，１５－ヘプタデカジエニル、１２，１６－ヘプタデカジエニル、１３，１５－ヘプタデカジエニル、１３，１６－ヘプタデカジエニル、１４，１６－ヘプタデカジエニルが挙げられる。これらの直鎖状Ｃ１１アルカジエニル基は炭素－炭素二重結合を２つ含むため、それぞれにおいて互いに独立してシス型およびトランス型の構造を取り得るが、それぞれどちらの構造であってもよい。
　本明細書中、「直鎖状Ｃ２－９アルキル基」としては、例えば、エチル、ブチル、プロピル、ペンチル、ヘキシル、ヘプチル、オクチル、ノニルが挙げられる。
　式（Ｉ）におけるｎ１、ｎ２、ｎ３、Ｌ、Ｒａ、Ｒｂ、Ｒｃ、Ｒｄ、Ｒｅ、およびＲｆの各々の好ましい例は次の通りである。
　ｎ１は、好ましくは３～５の整数である。
　ｎ２は、好ましくは０～２の整数である。
　ｎ３は、好ましくは０～２の整数である。
　Ｌは、好ましくは－Ｃ（Ｏ）Ｏ－である。
　Ｒａは、好ましくは直鎖状Ｃ５－９アルキル基、直鎖状Ｃ１３－１７アルケニル基または直鎖状Ｃ１７アルカジエニル基である。
　Ｒｂは、好ましくは直鎖状Ｃ４－８アルキル基である。
　Ｒｃは、好ましくは水素原子または直鎖状Ｃ４－７アルキル基である。
　Ｒｄは、好ましくは水素原子または直鎖状Ｃ３－６アルキル基である。
　Ｒｅは、好ましくは直鎖状Ｃ３－６アルキル基である。
　Ｒｆは、好ましくは直鎖状Ｃ３－７アルキル基である。
　化合物（Ｉ）の好適な具体例は次の通りである。
　化合物（Ｉ－Ａ）：ｎ１が３～５の整数であり、ｎ２が０であり、ｎ３が０～２の整数であり、Ｌが－Ｃ（Ｏ）Ｏ－であり、Ｒａが直鎖状Ｃ５－９アルキル基であり、Ｒｂが直鎖状Ｃ４－８アルキル基であり、Ｒｃが水素原子であり、Ｒｄが水素原子であり、Ｒｅが直鎖状Ｃ３－６アルキル基であり、Ｒｆが直鎖状Ｃ３－７アルキル基である化合物。
　化合物（Ｉ－Ｂ）：ｎ１が３～５の整数であり、ｎ２が０または１であり、ｎ３が０または１であり、Ｌが－Ｃ（Ｏ）Ｏ－であり、Ｒａが直鎖状Ｃ５－９アルキル基であり、Ｒｂが直鎖状Ｃ４－８アルキル基であり、Ｒｃが直鎖状Ｃ５－７アルキル基であり、Ｒｄが水素原子であり、Ｒｅが直鎖状Ｃ３－６アルキル基であり、Ｒｆが直鎖状Ｃ３－７アルキル基である化合物。
　化合物（Ｉ－Ｃ）：ｎ１が３～５の整数であり、ｎ２が０または１であり、ｎ３が０～２の整数であり、Ｌが－Ｃ（Ｏ）Ｏ－であり、Ｒａが直鎖状Ｃ５－９アルキル基であり、Ｒｂが直鎖状Ｃ４－８アルキル基であり、Ｒｃが水素原子であり、Ｒｄが直鎖状Ｃ３－６アルキル基であり、Ｒｅが直鎖状Ｃ３－６アルキル基であり、Ｒｆが直鎖状Ｃ３－７アルキル基である化合物。
　化合物（Ｉ－Ｄ）：ｎ１が３～５の整数であり、ｎ２が０または１であり、ｎ３が０～２の整数であり、Ｌが－Ｃ（Ｏ）Ｏ－であり、Ｒａが、直鎖状Ｃ１３－１７アルケニル基または直鎖状Ｃ１７アルカジエニル基であり、Ｒｂが直鎖状Ｃ３－６アルキル基であり、Ｒｃが直鎖状Ｃ３－６アルキル基であり、Ｒｄが水素原子であり、Ｒｅが直鎖状Ｃ２－６アルキル基であり、Ｒｆが直鎖状Ｃ２－７アルキル基である化合物。
　化合物（Ｉ）のより好適な具体例は次の通りである。
　化合物（a）：ｎ１が３または４であり、ｎ２が０であり、ｎ３が０または２であり、Ｌが－Ｃ（Ｏ）Ｏ－であり、Ｒａが直鎖状Ｃ７アルキル基であり、Ｒｂが直鎖状Ｃ６アルキル基であり、Ｒｃが水素原子であり、Ｒｄが水素原子であり、Ｒｅが直鎖状Ｃ５－６アルキル基であり、Ｒｆが直鎖状Ｃ６－７アルキル基である化合物。
　化合物（b）：ｎ１が３～５の整数であり、ｎ２が０または１であり、ｎ３が０または１であり、Ｌが－Ｃ（Ｏ）Ｏ－であり、Ｒａが直鎖状Ｃ６－７アルキル基であり、Ｒｂが直鎖状Ｃ５－６アルキル基であり、Ｒｃが直鎖状Ｃ５－６アルキル基であり、Ｒｄが水素原子であり、Ｒｅが直鎖状Ｃ４－５アルキル基であり、Ｒｆが直鎖状Ｃ５－６アルキル基である化合物。
　化合物（c）：ｎ１が３～５の整数であり、ｎ２が０であり、ｎ３が２であり、Ｌが―Ｃ（Ｏ）Ｏ－であり、Ｒａが直鎖状Ｃ５－９アルキル基であり、Ｒｂが直鎖状Ｃ４－８アルキル基であり、Ｒｃが水素原子であり、Ｒｄが直鎖状Ｃ３－５アルキル基であり、Ｒｅが直鎖状Ｃ３－５アルキル基であり、Ｒｆが直鎖状Ｃ３－５アルキル基である化合物。
　化合物（d）：ｎ１が３～５の整数であり、ｎ２が０または１であり、ｎ３が０～２の整数であり、Ｌが－Ｃ（Ｏ）Ｏ－であり、Ｒａが、直鎖状Ｃ１３－１７アルケニル基または直鎖状Ｃ１７アルカジエニル基であり、Ｒｂが直鎖状Ｃ３－５アルキル基であり、Ｒｃが直鎖状Ｃ３－５アルキル基であり、Ｒｄが水素原子であり、Ｒｅが直鎖状Ｃ３－６アルキル基であり、Ｒｆが直鎖状Ｃ３－７アルキル基である化合物。
　化合物（Ｉ）の塩としては、薬理学的に許容される塩が好ましく、例えば、無機塩基との塩、有機塩基との塩、無機酸との塩、有機酸との塩、塩基性または酸性アミノ酸との塩が挙げられる。
　無機塩基との塩の好適な例としては、ナトリウム塩、カリウム塩等のアルカリ金属塩；カルシウム塩、マグネシウム塩等のアルカリ土類金属塩；アルミニウム塩、アンモニウム塩が挙げられる。好ましくは、ナトリウム塩、カリウム塩、カルシウム塩、マグネシウム塩であり、より好ましくは、ナトリウム塩、カリウム塩である。
　有機塩基との塩の好適な例としては、トリメチルアミン、トリエチルアミン、ピリジン、ピコリン、エタノールアミン、ジエタノールアミン、トリエタノールアミン、トロメタミン［トリス（ヒドロキシメチル）メチルアミン]、tert－ブチルアミン、シクロヘキシルアミン、ベンジルアミン、ジシクロヘキシルアミン、Ｎ,Ｎ－ジベンジルエチレンジアミンとの塩が挙げられる。
　無機酸との塩の好適な例としては、フッ化水素酸、塩酸、臭化水素酸、ヨウ化水素酸、硝酸、硫酸、リン酸との塩が挙げられる。好ましくは、塩酸との塩、リン酸との塩である。
　有機酸との塩の好適な例としては、ギ酸、酢酸、トリフルオロ酢酸、フタル酸、フマル酸、シュウ酸、酒石酸、マレイン酸、クエン酸、コハク酸、リンゴ酸、メタンスルホン酸、ベンゼンスルホン酸、p－トルエンスルホン酸との塩が挙げられる。
　塩基性アミノ酸との塩の好適な例としては、アルギニン、リジン、オルニチンとの塩が挙げられる。
　酸性アミノ酸との塩の好適な例としては、アスパラギン酸、グルタミン酸との塩が挙げられる。
　以下、本発明の組成物について説明する。
　本発明によるトランスフェクション方法、精製方法および製造方法では、１）式（Ｉ）で表される化合物またはその塩（本発明の化合物）、２）構造脂質、および３）核酸を含む、心筋細胞への核酸のトランスフェクション用組成物、すなわち本発明の組成物、を使用して、所定の核酸を心筋細胞に導入する。
　本発明の典型的な実施形態において、本発明の組成物に含まれる本発明の化合物および構造脂質は、脂質粒子を形成しており、核酸はこの脂質粒子に内封されている。
　「構造脂質」は、本発明の化合物と混合して混合脂質成分を調製した後、脂質粒子を形成することができるものであれば特に限定されるものではない。そのような構造脂質としては、例えば、
　ステロール類（例えば、コレステロール、コレステロールエステル、コレステロールヘミコハク酸など）；
　リン脂質（例えば、ホスファチジルコリン（例えば、ジパルミトイルホスファチジルコリン、ジステアロイルホスファチジルコリン、リソホスファチジルコリン、ジオレオイルホスファチジルコリン、パルミトイルオレオイルホスファチジルコリン、ジパルミトイルホスファチジルコリン、ジリノレノイルホスファチジルコリン、ＭＣ－１０１０（ＮＯＦ　ＣＯＲＰＯＲＡＴＩＯＮ）、ＭＣ－２０２０（ＮＯＦ　ＣＯＲＰＯＲＡＴＩＯＮ）、ＭＣ－４０４０（ＮＯＦ　ＣＯＲＰＯＲＡＴＩＯＮ）、ＭＣ－６０６０（ＮＯＦ　ＣＯＲＰＯＲＡＴＩＯＮ）、ＭＣ－８０８０（ＮＯＦ　ＣＯＲＰＯＲＡＴＩＯＮ）など）、ホスファチジルセリン（例えば、ジパルミトイルホスファチジルセリン、ジステアロイルホスファチジルセリン、ジオレオイルホスファチジルセリン、パルミトイルオレオイルホスファチジルセリンなど）、ホスファチジルエタノールアミン（例えば、ジパルミトイルホスファチジルエタノールアミン、ジステアロイルホスファチジルエタノールアミン、ジオレオイルホスファチジルエタノールアミン、パルミトイルオレオイルホスファチジルエタノールアミン、リソホスファチジルエタノールアミンなど）、ホスファチジルイノシトール、ホスファチジン酸など）；および
　ポリエチレングリコール脂質（ＰＥＧ脂質）（例えば、ＰＥＧ－ＤＡＡ、ＰＥＧ－ＤＡＧ、ＰＥＧ－ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄ　ｃｕｎｊｕｇａｔｅ、ＰＥＧ－Ｃｅｒ、ＰＥＧ－ｃｈｏｌｅｓｔｅｒｏｌ、ＰＥＧ－Ｃ－ＤＯＭＧ、２ＫＰＥＧ－ＣＭＧ、ＧＭ－０２０（ＮＯＦ　ＣＯＲＰＯＲＡＴＩＯＮ）、ＧＳ－０２０（ＮＯＦ　ＣＯＲＰＯＲＡＴＩＯＮ）、ＧＳ－０５０（ＮＯＦ　ＣＯＲＰＯＲＡＴＩＯＮ）など）
からなる群より選ばれる少なくとも１種を用いることができる。本発明では、構造脂質として、ステロール類（特に、コレステロール）、リン脂質（特に、ホスファチジルコリン）およびポリエチレングリコール脂質の３種全てを用いることが好ましい。
　本発明の組成物における、本発明の化合物と構造脂質との割合は、目的に応じて適宜調節することができる。例えば、本発明の組成物において、本発明の化合物および構造脂質を含有する混合脂質成分によって脂質粒子が形成されている場合、本発明の化合物１モルに対して、構造脂質は通常０．００８～４モルの割合であり、好ましくは０．４～１．５モルの割合である。また、別の規定の仕方をすれば、混合脂質成分中、本発明の化合物は通常１～４モル、ステロール類は通常０～３モル、リン脂質は通常０～２モル、ポリエチレングリコール脂質は通常０～１モルの比率である。本発明の化合物と他の脂質成分とを混合して用いる場合のより好ましい態様は、本発明の化合物１～１．５モル、ステロール類０～１．２５モル、リン脂質０～０．５モルおよびポリエチレングリコール脂質０～０．１２５モルの比率である。
　「核酸」とは、ヌクレオチドおよび該ヌクレオチドと同等の機能を有する分子が重合した分子であればいかなるものでもよく、例えば、リボヌクレオチドの重合体であるＲＮＡ、デオキシリボヌクレオチドの重合体であるＤＮＡ、リボヌクレオチドおよびデオキシリボヌクレオチドが混合した重合体、および、ヌクレオチド類似体を含むヌクレオチド重合体を挙げることができ、さらに、核酸誘導体を含むヌクレオチド重合体であってもよい。また、核酸は、一本鎖核酸または二本鎖核酸であってもよい。また二本鎖核酸には、一方の鎖に対し、他方の鎖がストリンジェントな条件でハイブリダイズする二本鎖核酸も含まれる。
　ヌクレオチド類似体としては、ＲＮＡまたはＤＮＡと比較して、ヌクレアーゼ耐性の向上または、安定化させるため、相補鎖核酸とのアフィニティーを上げるため、あるいは細胞透過性を上げるため、あるいは可視化させるために、リボヌクレオチド、デオキシリボヌクレオチド、ＲＮＡまたはＤＮＡに修飾を施した分子であればいかなる分子でもよい。ヌクレオチド類似体としては、天然に存在する分子でも非天然の分子でもよく、例えば、糖部修飾ヌクレオチド類似体やリン酸ジエステル結合修飾ヌクレオチド類似体等が挙げられる。
　糖部修飾ヌクレオチド類似体としては、ヌクレオチドの糖の化学構造の一部あるいは全てに対し、任意の化学構造物質を付加あるいは置換したものであればいかなるものでもよく、その具体例としては、２’－Ｏ－メチルリボースで置換されたヌクレオチド類似体、２’－Ｏ－プロピルリボースで置換されたヌクレオチド類似体、２’－メトキシエトキシリボースで置換されたヌクレオチド類似体、２’－Ｏ－メトキシエチルリボースで置換されたヌクレオチド類似体、２’－Ｏ－[２－(グアニジウム)エチル]リボースで置換されたヌクレオチド類似体、２’－フルオロリボースで置換されたヌクレオチド類似体、糖部をモルフォリノ環に置換した核酸類縁体（モルフォリノ核酸）、糖部に架橋構造を導入することにより２つの環状構造を有する架橋構造型人工核酸（Bridged Nucleic Acid）（ＢＮＡ）、より具体的には、２’位の酸素原子と４’位の炭素原子がメチレンを介して架橋したロックド人工核酸（Locked Nucleic Acid）（ＬＮＡ）、およびエチレン架橋構造型人工核酸（Ethylene bridged nucleic acid）（ＥＮＡ）［Nucleic Acid Research, 32, e175(2004)］、２’位の炭素原子と４’位の炭素原子がアミド結合を介して架橋したアミド架橋構造型人工核酸（Amide - Bridged Nucleic Acids） (ＡｍＮＡ)が挙げられ、さらにペプチド核酸（ＰＮＡ）［Acc. Chem. Res., 32, 624(1999)］、オキシペプチド核酸（ＯＰＮＡ）［J. Am．Chem. Soc., 123， 4653 (2001)］、およびペプチドリボ核酸（ＰＲＮＡ）［J．Am. Chem. Soc., 122, 6900 (2000)］等を挙げることができる。
　リン酸ジエステル結合修飾ヌクレオチド類似体としては、ヌクレオチドのリン酸ジエステル結合の化学構造の一部あるいは全てに対し、任意の化学物質を付加あるいは置換したものであればいかなるものでもよく、その具体例としては、ホスホロチオエート結合に置換されたヌクレオチド類似体、Ｎ３’－Ｐ５’ホスホアミデート結合に置換されたヌクレオチド類似体等を挙げることができる［細胞工学， 16, 1463-1473 (1997)］［RNAi法とアンチセンス法、講談社(2005)］。
　核酸誘導体としては、核酸に比べ、ヌクレアーゼ耐性を向上させるため、安定化させるため、相補鎖核酸とのアフィニティーを上げるため、細胞透過性を上げるため、あるいは可視化させるために、該核酸に別の化学物質を付加した分子であればいかなる分子でもよく、その具体例としては、５’－ポリアミン付加誘導体、コレステロール付加誘導体、ステロイド付加誘導体、胆汁酸付加誘導体、ビタミン付加誘導体、Ｃｙ５付加誘導体、Ｃｙ３付加誘導体、６－ＦＡＭ付加誘導体、およびビオチン付加誘導体等を挙げることができる。
　本発明における核酸としては、対象細胞を含む細胞集団と接触させ、対象細胞へトランスフェクションすることにより、対象細胞の精製もしくは製造、またはその他の所期の目的を果たすことのできるものであれば特に限定されない。
　本発明の好ましい一実施形態において、核酸はｍＲＮＡである。「ｍＲＮＡ」とは、タンパク質に翻訳可能な塩基配列を含むＲＮＡを意味する。本発明におけるｍＲＮＡとしては、細胞内で所望のタンパク質を発現させることができるｍＲＮＡであれば、特に限定されない。本発明の一実施形態において、ｍＲＮＡは、対象細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡによって特異的に認識される塩基配列がさらに結合していてもよい、機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含むｍＲＮＡである。
　本発明の好ましい一実施形態において、ｍＲＮＡは下記（ｉ）および／または（ｉｉ）を含む：
　（ｉ）心筋細胞（または心筋細胞サブタイプ）で特異的に発現しているｍｉＲＮＡによって特異的に認識される塩基配列、および機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含む、心筋細胞（または心筋細胞サブタイプ）特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡ；
　（ｉｉ）機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含むｍＲＮＡ。
　（ｉ）の実施形態における「心筋細胞（または心筋細胞サブタイプ）特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡ」は、「心筋細胞（または心筋細胞サブタイプ）で特異的に発現しているｍｉＲＮＡによって特異的に認識される塩基配列」と「機能的な遺伝子」とが“制御可能に連結”している核酸である。すなわち、「機能的な遺伝子」の発現は、「心筋細胞（または心筋細胞サブタイプ）で特異的に発現しているｍｉＲＮＡによって特異的に認識される塩基配列」によって制御され、「心筋細胞（または心筋細胞サブタイプ）で特異的に発現しているｍｉＲＮＡ」が存在する場合に、その存在量に応じて「機能的な遺伝子」のタンパク質への翻訳が調節される。典型的には、「心筋細胞（または心筋細胞サブタイプ）で特異的に発現しているｍｉＲＮＡ」が存在する心筋細胞（または心筋細胞サブタイプ）内で、その存在量に応じて「機能的な遺伝子」のタンパク質への翻訳は抑制され、当該タンパク質の心筋細胞（または心筋細胞サブタイプ）内での発現量（存在量）は減少する。このような機構により、「心筋細胞（または心筋細胞サブタイプ）で特異的に発現しているｍｉＲＮＡ」が存在する心筋細胞（または心筋細胞サブタイプ）と、そのようなｍｉＲＮＡが存在しない心筋細胞（または心筋細胞サブタイプ）以外の細胞との間で「機能的な遺伝子」の発現量が相違することなり、それによって心筋細胞（または心筋細胞サブタイプ）とその他の細胞とを区別することができる。
　「心筋細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡ」（以下「心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ」と呼ぶ。）は、心筋細胞以外の細胞、より具体的には心筋細胞を含む細胞集団中の心筋細胞以外の細胞と比較して、心筋細胞でより高く発現しているｍｉＲＮＡであれば特に限定されるものではない。例えば、心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡは、心筋細胞における発現量が、心筋細胞以外の細胞における発現量と比較して、１０％以上、２０％以上、３０％以上、４０％以上、５０％以上、６０％以上、７０％以上、８０％以上または９０％以上高いｍｉＲＮＡであってよい。このようなｍｉＲＮＡは、データベースの情報（例えば、http://www.mirbase.org/又はhttp://www.microrna.org/）に登録されたｍｉＲＮＡ、及び／または当該データベースに記載されている文献情報に記載されたｍｉＲＮＡより適宜選択することができる。心筋細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡとしては、例えば、ｈｓａ－ｍｉＲ－１、ｈｓａ－ｍｉＲ－２２－５ｐ、ｈｓａ－ｍｉＲ－１３３ａ、ｈｓａ－ｍｉＲ－１３３ｂ、ｈｓａ－ｍｉＲ－１４３－３ｐ、ｈｓａ－ｍｉＲ－１４５－３ｐ、ｈｓａ－ｍｉＲ－２０８ａ－３ｐ、ｈｓａ－ｍｉＲ－２０８ｂ－３ｐ、ｈｓａ－ｍｉＲ－４９０－３ｐ、ｈｓａ－ｍｉＲ－４９０－５ｐ、ｈｓａ－ｍｉＲ－４９９ａ－５ｐ、ｈｓａ－ｍｉＲ－１２７１－５ｐ、ｈｓａ－ｍｉＲ－３９０７、ｈｓａ－ｍｉＲ－４３２４、ｈｓａ－ｌｅｔ－７ｅ－５ｐが挙げられる。このうち、心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡの好ましい具体例としては、ｈｓａ－ｍｉＲ－１、ｈｓａ－ｍｉＲ－２０８ａ－３ｐ、ｈｓａ－ｍｉＲ－２０８ｂ－３ｐおよびｈｓａ－ｍｉＲ－４９９ａ－５ｐが挙げらる。
　上記（ｉ）において心筋細胞サブタイプで特異的に発現しているｍｉＲＮＡで特異的に発現しているｍｉＲＮＡによって特異的に認識される塩基配列、および機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含む、心筋細胞サブタイプ特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡの特定の実施形態として、心室筋細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡによって特異的に認識される塩基配列、および機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含む、心室筋細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡを用いることができる。「心室筋細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡ」は、「心室筋細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡによって特異的に認識される塩基配列」と「機能的な遺伝子」とが“制御可能に連結”している核酸である。すなわち、「機能的な遺伝子」の発現は、「心室筋細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡによって特異的に認識される塩基配列」によって制御され、「心室筋細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡ」が存在する場合に、その存在量に応じて「機能的な遺伝子」のタンパク質への翻訳が調節される。典型的には、「心室筋細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡ」が存在する心室筋細胞内で、その存在量に応じて「機能的な遺伝子」のタンパク質への翻訳は抑制され、当該タンパク質の心室筋細胞内での発現量（存在量）は減少する。このような機構により、「心室筋細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡ」が存在する心室筋細胞と、そのようなｍｉＲＮＡが存在しない心室筋細胞以外の細胞との間で「機能的な遺伝子」の発現量が相違することなり、それによって心室筋細胞とその他の細胞とを区別することができる。
　「心室筋細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡ」（以下「心室筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ」と呼ぶ。）は、心室筋細胞以外の細胞、より具体的には心室筋細胞を含む細胞集団中の心室筋細胞以外の細胞と比較して、心室筋細胞でより高く発現しているｍｉＲＮＡであれば特に限定されるものではない。例えば、心室筋細胞特異的ｍｉＲＮＡは、心室筋細胞における発現量が、心室筋細胞以外の細胞における発現量と比較して、１０％以上、２０％以上、３０％以上、４０％以上、５０％以上、６０％以上、７０％以上、８０％以上または９０％以上高いｍｉＲＮＡであってよい。このようなｍｉＲＮＡは、データベースの情報（例えば、http://www.mirbase.org/又はhttp://www.microrna.org/）に登録されたｍｉＲＮＡ、及び／または当該データベースに記載されている文献情報に記載されたｍｉＲＮＡより適宜選択することができる。心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡのなかでも、心室筋細胞特異的ｍｉＲＮＡの好ましい具体例としては、ｈｓａ－ｍｉＲ－２０８ｂ－３ｐが挙げられる。
　上に例示した心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡの塩基配列を下記表１に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000015
　「心筋細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡによって特異的に認識される塩基配列」（以下「心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列」と呼ぶ。）は、所定の複数のタンパク質と相互作用してＲＩＳＣ（RNA-induced silencing complex）を形成した状態にある心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡによって、特異的に認識される塩基配列である。心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列は、心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡが認識し、ＲＩＳＣとしてハイブリダイズ可能であればよく、完全に相補的な配列であってもよいし、不一致（ミスマッチ）を有する配列であってもよい。例えば、心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列は、心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡと完全に相補的な配列を基準として、１％以下、５％以下、１０％以下、２０％以下、３０％以下、４０％以下または５０％以下のミスマッチ、あるいは１塩基、２塩基、３塩基、４塩基、５塩基、６塩基、７塩基、８塩基、９塩基または１０塩基のミスマッチを有していてもよい。心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列の塩基長は特に限定されるものではなく、心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ（を含むＲＩＳＣ）に対応する適切な塩基長とすればよいが、例えば、１８塩基以上２３塩基以下が好ましく、２０塩基または２１塩基がより好ましい。
　心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列のなかでも、「心室筋細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡによって特異的に認識される塩基配列」（以下「心室筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列」と呼ぶ。）は、所定の複数のタンパク質と相互作用してＲＩＳＣ（RNA-induced silencing complex）を形成した状態にある心室筋細胞特異的ｍｉＲＮＡによって、特異的に認識される塩基配列である。心室筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列は、心室筋細胞特異的ｍｉＲＮＡが認識し、ＲＩＳＣとしてハイブリダイズ可能であればよく、完全に相補的な配列であってもよいし、不一致（ミスマッチ）を有する配列であってもよい。例えば、心室筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列は、心室筋細胞特異的ｍｉＲＮＡと完全に相補的な配列を基準として、１％以下、５％以下、１０％以下、２０％以下、３０％以下、４０％以下または５０％以下のミスマッチ、あるいは１塩基、２塩基、３塩基、４塩基、５塩基、６塩基、７塩基、８塩基、９塩基または１０塩基のミスマッチを有していてもよい。心室筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列の塩基長は特に限定されるものではなく、心室筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ（を含むＲＩＳＣ）に対応する適切な塩基長とすればよいが、例えば、１８塩基以上２３塩基以下が好ましく、２０塩基または２１塩基がより好ましい。
　上に例示した心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡの塩基配列のそれぞれに対応する、標準的な心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列（完全に相補的な塩基配列）を下記表２に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000016
　（ｉ）の実施形態における「機能的な遺伝子」は、心筋細胞を含む細胞集団における心筋細胞の精製、または、心室筋細胞を含む細胞集団における心室筋細胞の精製のために用いることができる公知の遺伝子、より一般的には、細胞集団の中から特定の細胞を選別するために用いることのできる各種の遺伝子であればよく、特に限定されるものではない。そのような「機能的な遺伝子」としては、例えば、薬剤耐性遺伝子、蛍光タンパク質をコードする遺伝子、アポトーシス誘導遺伝子、および自殺遺伝子が挙げられる。複数の「機能的な遺伝子」を使用する場合、例えば後述するような実施形態において、「機能的な遺伝子」を含む（ｉ）の心筋細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡまたは心室筋細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡと、「機能的な遺伝子」を含む（ｉｉ）のｍＲＮＡとを併用する場合、それぞれの「機能的な遺伝子」は、互いに独立して薬剤耐性遺伝子、蛍光タンパク質をコードする遺伝子、アポトーシス誘導遺伝子、および自殺遺伝子の中から選択することができ、互いに同一であってもよいし、異なっていてもよい。
　「薬剤耐性遺伝子」としては、例えば、カナマイシン耐性遺伝子、アンピシリン耐性遺伝子、ピューロマイシン耐性遺伝子が挙げられる。これらの遺伝子は、いずれか１種を用いてもよいし、２種以上を用いてもよい。
　「蛍光タンパク質をコードする遺伝子」としては、例えば、Sirius、BFP、EBFPなどの青色蛍光タンパク質；mTurquoise、TagCFP、AmCyan、mTFP1、MidoriishiCyan、CFPなどのシアン蛍光タンパク質；TurboGFP、AcGFP、TagGFP、Azami-Green (例えば、hmAG1)、ZsGreen、EmGFP、EGFP、GFP2、HyPerなどの緑色蛍光タンパク質；TagYFP、EYFP、Venus、YFP、PhiYFP、PhiYFP-m、TurboYFP、ZsYellow、mBananaなどの黄色蛍光タンパク質；KusabiraOrange (例えば、hmKO2)、mOrangeなどの橙色蛍光タンパク質；TurboRFP、DsRed-Express、DsRed2、TagRFP、DsRed-Monomer、AsRed2、mStrawberryなどの赤色蛍光タンパク質；TurboFP602、mRFP1、JRed、KillerRed、mCherry、HcRed、KeimaRed（例えば、hdKeimaRed）、mRasberry、mPlumなどの近赤外蛍光タンパク質が挙げられる。これらの遺伝子は、いずれか１種を用いてもよいし、２種以上を用いてもよい。２種以上の蛍光タンパク質をコードする遺伝子を利用する場合、その蛍光タンパク質の発光波長を異なるものとすれば、互いの視認性を妨げないため好ましい。
　「アポトーシス誘導遺伝子」としては、例えば、IκB、Smac/DIABLO、ICE、HtrA2/OMI、AIF、endonuclease G、Bax、Bak、Noxa、Hrk (harakiri)、Mtd、Bim、Bad、Bid、PUMA、activated caspase-3、Fas、Tkが挙げられる。これらの遺伝子は、いずれか１種を用いてもよいし、２種以上を用いてもよい。
　「自殺遺伝子」としては、例えば、ジフテリアＡ毒素、単純ヘルペスチミジンキナーゼ遺伝子（HSV-TK）、カルボキシペプチダーゼG2（CPG2）、カルボキシルエステラーゼ（CA）、シトシンデアミナーゼ（CD）、チトクロームP450（cyt-450）、デオキシシチジンキナーゼ（dCK）、ニトロレダクターゼ（NR）、プリンヌクレオシドホスホリラーゼ（PNP）、チミジンホスホリラーゼ（TP）、水痘帯状疱疹ウイルスチミジンキナーゼ（VZV-TK）、キサンチン－グアニンホスホリボシルトランスフェラーゼ（XGPRT）をコードする遺伝子が挙げられる。これらの遺伝子は、いずれか１種を用いてもよいし、２種以上を用いてもよい。
　対象細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列および機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含む、本発明において用いることのできる「心筋細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡ」および「心室筋細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡ」（対象細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡ）は、当業者であれば適切なものを設計し作成することができる。必要であれば、これらの対象細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡの全長の塩基配列の具体例は、例えば前掲特許文献４を参照することができる。
　対象細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡは、必要に応じて対象細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡによって特異的に認識される塩基配列（対象細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列）および「機能的な遺伝子」以外の塩基配列を含んでいてもよい。例えば、対象細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡは、局在化シグナルをコードする遺伝子を含んでいてもよい。一例として、「機能的な遺伝子」として「蛍光タンパク質をコードする遺伝子」を選択する実施形態において、当該遺伝子に局在化シグナルをコードする遺伝子が連結されていてもよい。そのような実施形態は、後述する対象細胞の精製方法および製造方法における選別工程を、イメージングサイトメトリー等を用いて画像上で行う際に特に有利である。
　対象細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡにおいて、対象細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列と「機能的な遺伝子」とが“制御可能に連結”されているとは、「機能的な遺伝子」のオープンリーディングフレーム（ＯＲＦ）（ただし、開始コドンを含む。）の５’非翻訳領域（ＵＴＲ）内、３’ＵＴＲ内、または当該ＯＲＦ内（開始コドンの３’側）の少なくとも１つに、少なくとも１つの対象細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列が含まれていることを意味する。対象細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列の数は、１つ、２つ、３つ、４つ、５つ、６つ、７つ、８つまたはそれ以上であってよく、それらの認識配列は、５’ＵＴＲ、３’ＵＴＲまたはＯＲＦの１つ以上に含まれていてよい。
　本発明の一実施形態において、対象細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡは、５’末端から３’末端の向きに、Ｃａｐ構造（７メチルグアノシン５’リン酸）、「機能的な遺伝子」をコードするＯＲＦおよびポリＡテイルを備えており、５’ＵＴＲ内、３’ＵＴＲ内、及び／またはＯＲＦ内に、少なくとも１つの対象細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列を備えている。効率的な翻訳の制御（抑制）を達成するためには、対象細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列および「機能的な遺伝子」は、５’末端から３’末端の向きに、この順序で配置されていることが好ましく、したがって少なくとも１つの対象細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列が５’ＵＴＲ内に含まれていることが好ましい。
　ｃａｐ構造と対象細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列との間の塩基数及び塩基の種類は、ステム構造や立体構造を構成しない限り、任意であってよい。例えば、ｃａｐ構造と対象細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列との間の塩基数は、０～５０塩基、好ましくは１０～３０塩基とすることができる。
　対象細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列と、機能的な遺伝子の開始コドン（真核生物においては通常ＡＵＧ）との間の塩基数及び塩基の種類は、ステム構造や立体構造を構成しない限り、任意であってよい。例えば、対象細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列と機能的な遺伝子の開始コドンとの間の塩基数は、０～５０塩基、好ましくは１０～３０塩基とすることができる。
　対象細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列内には、開始コドンとなる塩基配列が存在しないことが好ましい。例えば、対象細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列が５’ＵＴＲに存在し、かつ、当該認識配列が開始コドンとしてＡＵＧを含む場合には、３'側に連結される機能的な遺伝子との関係上でインフレームとなるように設計されることが好ましい。また、対象細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列が開始コドンとしてＡＵＧを含む場合、当該ＡＵＧを開始コドンではないＧＵＧに変換した上で使用することも可能である。一方で、対象細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列内の開始コドンの影響を最小限に留めるために、当該認識配列の５’ＵＴＲ内における配置場所を適宜調整することができる。例えば、ｃａｐ構造と対象細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列内の開始コドン（ＡＵＧ）との間の塩基数が、０～６０塩基、例えば、０～１５塩基、１０～２０塩基、２０～３０塩基、３０～４０塩基、４０～５０塩基、５０～６０塩基となるよう設計してもよい。
　対象細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡは、上記のようにしてそこに含める要素（配列）が決定されれば、当業者にとって既知の遺伝子工学的な方法、一般的には、プロモーター配列を含むテンプレートDNAを鋳型として用いたin vitro合成法により、合成することができる。
　対象細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡは、細胞集団中の対象細胞の選別における有効性が検証されたものであってもよい。すなわち、本発明のトランスフェクション方法、精製方法および製造方法は、各方法を実施する前に必要に応じて予め、対象細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡを用いて、細胞集団中の対象細胞の選別における有効性を検証する工程（および当該工程の結果に基づいて対象細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡを選択する工程）を行ってもよい。具体的には、上記に例示したような５’ ＵＴＲを有する、候補となる複数種の対象細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡを作製して、それぞれを純度が既知の対象細胞を含む細胞集団にトランスフェクションし、対象細胞の選別の有効性が高いものを決定することができる。
　対象細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡは、１種のみを用いてもよいし、２種以上を用いてもよい。２種以上の対象細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡを用いる場合、それらのｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡに含まれる対象細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列および機能的な遺伝子は、ｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮ同士の間で互いに異なっていることが好ましい。また、２種以上の対象細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡを用いる場合、それらのｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡに含まれる対象細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列の数および５’末端からの距離、ならびにその他の構造的特徴は、各ｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡにおいて同一であってもよいし、異なっていてもよい。あるいは、対象細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列は同一であるが、機能的な遺伝子が異なる、２種以上の対象細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡを用いることもできる。例えば、ＦａｓおよびＢｉｍのように、異なる経路でシグナル伝達するアポトーシス誘導遺伝子の組み合わせを、同一の対象細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列と組み合わせた、２種類の対象細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡを用いることが可能であり、この場合には目的としない細胞（対象細胞以外の細胞）の除去を効率よく行うことが期待できる。
　（ｉｉ）の実施形態のｍＲＮＡに含まれる「機能的な遺伝子」としては、（ｉ）の実施形態のｍＲＮＡに含まれる「機能的な遺伝子」と同様のもの、例えば薬剤耐性遺伝子および蛍光タンパク質をコードする遺伝子が挙げられる。
　あるいは、（ｉｉ）の実施形態のｍＲＮＡに含まれる「機能的な遺伝子」は、薬剤耐性遺伝子および蛍光タンパク質をコードする遺伝子以外の、核酸が細胞に導入されたことを示す遺伝子、いわゆるレポーター遺伝子であってもよい。そのようなレポーター遺伝子としては、例えば、蛍光タンパク質以外の、発光または呈色を補助するタンパク質や、細胞膜に局在して発現し、それを抗原とする抗体と結合可能な膜局在タンパク質が挙げられる。
　本発明の一実施形態において、（ｉ）の対象細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡと、（ｉｉ）のｍＲＮＡとは、併用することができる。すなわち、（ｉ）のｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡおよび（ｉｉ）のｍＲＮＡを両方とも対象細胞を含む細胞集団に接触させ、その細胞（特に心筋細胞）に導入することができる。このような実施形態において、（ｉｉ）のｍＲＮＡは「コントロールｍＲＮＡ」と呼ぶことができる。
　コントロールｍＲＮＡを併用することにより、対象細胞の選別をより効率的なものとすることができる。例えば、「コントロールｍＲＮＡ」として薬剤耐性遺伝子、「機能的な遺伝子」としてアポトーシス誘導遺伝子または自殺遺伝子をそれぞれ用いた場合、薬剤耐性であり、且つ細胞死が誘導されていない細胞集団を選択することで、対象細胞の選別の精度を向上させるができる。より具体的には、トランスフェクションによる核酸の導入効率が悪い細胞、すなわち対象細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡの導入効率が悪い対象細胞およびその他の細胞を、薬剤耐性を示すことに基づいて識別し、そのような細胞を除外した上で、対象細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡが含む「機能的な遺伝子」の発現の有無によって対象細胞の選別をより効率的なものとすることができる。これは、対象細胞においてはその細胞内に存在している「心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ」または「心室筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ」がｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡの所定の塩基配列にハイブリダイズすることにより「機能的な遺伝子」の発現が抑制される、一方で対象細胞以外の細胞では「心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ」または「心室筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ」は細胞内に存在しないため「機能的な遺伝子」の発現は抑制されないことによる。なお、薬剤耐性を示す細胞集団の選択は、公知の方法により行うことができる。
　また、「コントロールｍＲＮＡ」および「機能的な遺伝子」として蛍光タンパク質をコードする遺伝子をもちいた場合、より蛍光強度の低い細胞集団を選択することで、対象細胞の選別の精度を向上させるができる。より具体的には、トランスフェクションによる核酸の導入効率がよい細胞を、蛍光を発することに基づいて識別し、その細胞集団の中でもより蛍光強度の低い細胞集団を選択することにより、対象細胞の選別をより効率的なものとすることができる。これは、コントロールｍＲＮＡに含まれる蛍光タンパク質の対象細胞およびその他の細胞への導入量は、それと同時にトランスフェクションされる対象細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡの対象細胞およびその他の細胞への導入量と比例するためである。蛍光強度に基づく細胞の選択は、例えば、セルソーター（例えばベクソン・ディッキンソン社「ＦＡＣＳ」）を用いて一定基準以上の蛍光を発している細胞を選択的に分離することにより可能である。
　以下、本発明のトランスフェクション方法の工程について説明する。
　本発明のトランスフェクション方法は、少なくとも、本発明の組成物と、対象細胞を含む細胞集団とを接触させる工程（本明細書において「組成物接触工程」と呼ぶ。）を含み、必要に応じてさらに、心筋細胞へ核酸を導入する（トランスフェクションする）ことに関するその他の工程を含んでいてもよい。また、本発明のトランスフェクション方法は、試薬として本発明の組成物を用いるが、それ以外の技術的事項は基本的に、一般的なトランスフェクション方法、例えば脂質ナノ粒子（ＬＮＰ）またはリポソームを用いたトランスフェクション（リポフェクション）方法に準じたものとすることが可能である。例えば、本発明のトランスフェクション方法は、対象細胞を含む細胞集団への核酸含有ＬＮＰのトランスフェクションが可能な条件（トランスフェクションを誘起しうる条件）の下で行うことができる。
　本発明の組成物を、生体内にある対象細胞を含む細胞集団と接触させる場合、投与対象（例えばヒトまたは非ヒト哺乳動物、好ましくはヒト）に対して、核酸の有効量が標的とする対象細胞に送達されるように、当該組成物を投与すればよい。このような実施形態においても、本発明の組成物は、安定かつ低毒性で安全に使用することができる。
　本発明の組成物をin vivoで用いる場合、例えば、静脈内注射、動脈内注射、筋肉内注射、皮下注射、腹腔内注射などの注射剤とすることが好ましいが、他の経路によっても核酸の有効量を目的の細胞に送達することができれば、それに適応した剤型とすることも可能である。
　本発明の好ましい実施形態の一つにおいて、対象細胞を含む細胞集団は、人工多能性幹細胞（ｉＰＳ細胞）、胚性幹細胞（ＥＳ細胞）、またはその他の幹細胞、前駆細胞などの対象細胞へ分化誘導することが可能な細胞を、対象細胞への分化誘導に適した条件下で培養することにより作製される、前記幹細胞等と対象細胞が混合しているin vitroにおける細胞集団である。
　ｉＰＳ細胞またはその他の多能性幹細胞からの分化誘導工程を経て調製された細胞集団（胚様体であってもよい。）に対象細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡを含む組成物を接触させる時期は、一定程度の細胞が対象細胞に分化した後であれば特に限定されるものではなく、目的に応じて対象細胞に核酸をトランスフェクションするのに適した時期、例えば目標とする対象細胞の純度を達成する上で対象細胞の選別を行うのに適した時期であればよい。例えば、ｉＰＳ細胞から対象細胞を含む胚様体が形成された日から起算して１０～４０日目、好ましくは１４～２０日目またはその前後に、その胚様体に本発明の組成物を接触させることができる。
　本発明のトランスフェクション方法では、組成物接触工程の前後に、その他の工程、特に細胞に導入される「核酸」に対応する処理を含む工程を行うことができる。
　例えば、本発明では「核酸」として「機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含むｍＲＮＡ」を用いることができるが、その核酸が導入された細胞の濃縮、単離、または検出をするために、「機能的な遺伝子」として「薬剤耐性遺伝子」、「蛍光タンパク質をコードする遺伝子」、その他の陽性選択マーカー遺伝子または陰性選択マーカー遺伝子を用いてもよい。「薬剤耐性遺伝子」を用いる実施形態では、例えば、組成物接触工程の後、その薬剤耐性遺伝子（例えばピューロマイシン耐性遺伝子）に対応した薬剤（例えばピューロマイシン）を、適切な濃度で培地に添加する工程、およびその培地で細胞を培養する工程、その培養によって薬剤耐性遺伝子が導入された細胞を選択する工程、などを行うことができる。「蛍光タンパク質をコードする遺伝子」を用いる実施形態では、例えば、組成物接触工程の後、その蛍光タンパク質に対応した励起波長の光を照射する工程、その照射により発せられる蛍光を蛍光顕微鏡、セルソーター等で検出する工程、その検出によって蛍光タンパク質による蛍光の発光が所定の特徴を有する細胞を選択する工程、などを行うことができる。
　本発明では「核酸」として「心筋細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡによって特異的に認識される塩基配列、および機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含む、心筋細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡ」または「心室筋細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡによって特異的に認識される塩基配列、および機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含む、心室筋細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡ」を用いることもできる。この実施形態では、対象細胞においてはその細胞内に存在している対象細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡがｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡの所定の塩基配列にハイブリダイズすることにより「機能的な遺伝子」の発現が抑制される、一方で対象細胞以外の細胞では対象細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡは細胞内に存在しないため「機能的な遺伝子」の発現は抑制されない。したがって、「機能的な遺伝子」として、例えばそれが発現する細胞を死滅させる「アポトーシス誘導遺伝子」または「自殺遺伝子」を含むｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡを用いる場合は、組成物接触工程の後に、それらの遺伝子の発現の有無によって、対象細胞以外の細胞が混在している細胞集団内の対象細胞の濃縮、単離、または検出をするための工程を行うことができる。なお、そのような実施形態の本発明の「トランスフェクション方法」は、後述するような、本発明の「心筋細胞の精製方法」、「心筋細胞の製造方法」、「心室筋細胞の精製方法」および「心室筋細胞の製造方法」に対応しており、「トランスフェクション方法」に関する技術的事項の記載を適宜「心筋細胞の精製方法」、「心筋細胞の製造方法」、「心室筋細胞の精製方法」および「心室筋細胞の製造方法」に適用することが可能である。
　本発明の好ましい実施形態の一つにおいて、本発明のトランスフェクション方法は、下記工程１を含み、必要に応じてさらに下記工程２を含む方法として実施される：
　工程１：細胞非接着性容器内において、対象細胞を含む細胞集団への本発明の組成物のトランスフェクションが可能な条件下で、対象細胞を含む細胞集団の凝集体を形成する工程（以下「凝集体形成工程」と呼ぶこともある。）；
　工程２：前記組成物がトランスフェクションされた細胞集団の中から、前記組成物に含まれている核酸の細胞内での機能に基づいて、対象細胞を選別する工程（以下「選別工程」と呼ぶこともある。）。
　工程１（凝集体形成工程）には、より具体的には、下記工程１－１または１－２のいずれかが含まれていてもよい：
　工程１－１：細胞非接着性容器内において、本発明の組成物およびマイクロキャリアの存在下で、対象細胞を含む細胞集団を培養し、本発明の組成物に含まれる核酸が導入された細胞と前記マイクロキャリアとからなる凝集体を形成する工程（以下「凝集体形成工程第１実施形態」と呼ぶこともある。）；
　工程１－２：細胞非接着性容器内において、本発明の組成物の存在下で、対象細胞を含む細胞集団を培養し、本発明の組成物に含まれる核酸が導入された細胞からなる凝集体を形成する工程（以下「凝集体形成工程第２実施形態」と呼ぶこともある。）。
　さらに、工程１（凝集体形成工程）の前に、必要に応じて、下記工程ＡおよびＢが含まれていてもよい：
　工程Ａ：多能性幹細胞（集団）の対象細胞への分化を誘導する工程；
　工程Ｂ：工程Ａによる分化誘導後の細胞（集団）を分散させる工程。
　凝集体形成工程における対象細胞を含む細胞集団は、好ましくは接着性細胞集団である。ここで、「接着性細胞（集団）」とは、足場となる固相表面への接着状態において最適に維持又は増殖させることができる細胞（集団）を意味する。特に、工程１－１における「対象細胞を含む細胞集団」は、凝集能を有し、細胞非接着性容器内において培養されると凝集体を形成し得る細胞を含む集団である。また、工程１－２における「対象細胞を含む細胞集団」は、マイクロキャリアへの接着能を有し、細胞非接着性容器内においてマイクロキャリアとともに培養されるとマイクロキャリアに接着し得る細胞を含む集団である。
　「対象細胞を含む細胞集団」はどのようにして調製されたものであってもよい。例えば、本発明のトランスフェクション方法においては、必要に応じて（工程１の前に行われる前記工程Ａとして）、多能性幹細胞を対象細胞へ分化誘導するための工程を行ってもよい。前述したような各種の多能性幹細胞から対象細胞への分化誘導方法は特に限定されるものではなく、公知の各種の方法を用いることができる。多能性幹細胞から対象細胞への分化誘導方法としては、例えば、Laflamme MAらにより報告された方法が挙げられる（Laflamme MA ＆ Murry CE, Nature 2011, Review）。また、人工多能性幹細胞（ｉＰＳ細胞）を浮遊培養により細胞塊（胚様体）を形成させて心筋細胞を製造する方法、ＢＭＰシグナル伝達を抑制する物質の存在下で心筋細胞を製造する方法（ＷＯ２００５／０３３２９８）、Ａｃｔｉｖｉｎ　ＡとＢＭＰを順に添加させて心筋細胞を製造する方法（ＷＯ２００７／００２１３６）、カノニカルＷｎｔシグナル経路の活性化を促す物質の存在下で心筋細胞を製造する方法（ＷＯ２００７／１２６０７７）、人工多能性幹細胞からＦｌｋ／ＫＤＲ陽性細胞を単離し、シクロスポリンＡの存在下で心筋細胞を製造する方法（ＷＯ２００９／１１８９２８）などを例示することもできる。
　分化誘導された対象細胞とは、少なくとも心筋トロポニン（ｃＴｎＴ）またはαＭＨＣを発現している細胞を意味する。ｃＴｎＴは、ヒトの場合ＮＣＢＩのａｃｃｅｓｓｉｏｎ番号ＮＭ＿０００３６４が例示され、マウスの場合、ＮＭ＿００１１３０１７４が例示される。αＭＨＣは、ヒトの場合ＮＣＢＩのａｃｃｅｓｓｉｏｎ番号ＮＭ＿００２４７１が例示され、マウスの場合、ＮＭ＿００１１６４１７１が例示される。
　凝集体形成工程には、分散された状態の細胞集団が培養に供されることが好ましい。すなわち、本発明のトランスフェクション方法においては、必要に応じて、凝集体形成工程の前段工程においてあらかじめ、対象細胞を含む細胞集団、好ましくは（工程１の前に行われる前記工程Ｂとして）多能性幹細胞から対象細胞への分化誘導が行われた後の細胞集団の、分散処理のための工程を行ってもよい。分散処理は、公知の手法によって行うことができ、酵素などによる化学的処理、ピペッティングなどによる物理的処理、及びこれらの組み合わせを採用できる。化学処理には市販の試薬（例えば、Liberase TM Research Grade、Roche社；StemPro Accutase Cell Dissociation Reagent、Gibco社；TrypLE Select CTS、Gibco社など）を用いることができる。
　凝集体形成工程における細胞集団の培養に用いられる「細胞非接着性容器」としては、（ａ）容器の表面が細胞との接着性を向上させる目的で人工的に処理（例えば、細胞外マトリクス等によるコーティング処理）されていないもの、または（ｂ）容器の表面が、細胞との接着性を低下させる目的で人工的に処理（例えば、疎水性の分子によるコーティング処理）されているものを、使用することができる。「細胞非接着性」とは、接着性細胞が接着しないか、または接着しにくいこと、例えば、容器に播種した細胞の総数に対して、２０％未満、好ましくは１０％未満、更に好ましくは１％未満の細胞が容器に接着していることを意味する。
　細胞非接着性容器の材料としては、例えば、ポリカーボネート、ポリエチレン、ポリプロピレン、テフロン（登録商標）、ポリエチレンテレフタレート、ポリメチルメタクリレート、ナイロン６，６、ポリビニルアルコール、セルロース、シリコン、ポリスチレン、ガラス、ポリアクリルアミド、ポリジメチルアクリルアミド、およびステンレスが挙げられる。
　細胞非接着性容器の形態としては、例えば、マイクロプレート、シャーレ（ディッシュ）、細胞培養フラスコ（スピナーフラスコ、シェイカーフラスコ等）、細胞培養バッグ、ローラーボトル、バイオリアクターおよび培養槽（タンク）が挙げられる。細胞非接着性容器のサイズも、製造規模に応じて適宜（例えば、１ｍＬ～２０００Ｌの範囲で）選択することができ、本発明においては特に、大容量（例えば、１００ｍＬ～２０００Ｌ）の細胞非接着性容器が好ましい。
　凝集体形成工程第１実施形態（工程１－１）は、例えば、細胞非接着性容器内で、接着性細胞集団である対象細胞を含む細胞集団に、本発明の組成物およびマイクロキャリアを添加し、それらの存在下で前記細胞集団を静置培養することにより行われる。このような工程では、対象細胞を含む細胞集団がマイクロキャリアに接着して凝集体が形成され、その過程で本発明の組成物に含まれる核酸が前記細胞集団を構成している細胞に導入される。
　したがって、凝集体形成工程第１実施形態における「凝集体」は、少なくとも１つの細胞と１つのマイクロキャリアを含む集合体を意味する。この凝集体のサイズは、使用するマイクロキャリアの大きさに依存し、特に限定されない。１つのマイクロキャリアに接着する細胞の数は、特に限定されるものではないが、例えば２～５００個、好ましくは、５０～３００個である。凝集体形成工程第１実施形態において培養される細胞集団には、凝集体を形成する細胞（凝集体形成細胞）と凝集体を形成していない細胞（非凝集体形成細胞）が含まれる。それらの総数に対する凝集体形成細胞の割合は、特に限定されるものではないが、例えば、１０％以上、２０％以上、３０％以上、４０％以上、５０％以上、６０％以上、７０％以上、８０％以上、９０％以上、または１００％である。
　凝集体形成工程第１実施形態で用いられる「マイクロキャリア」は、対象細胞を含む細胞集団を表面に接着させることのできる担体を意味する。マイクロキャリアは、対象細胞を含む細胞集団が接着した状態で、液体培地中に懸濁させることができ、それによって接着した細胞集団を培養する役割を果たすことができればよく、その材質、形状、大きさなどは特に制限されない。
　マイクロキャリアの材質としては、例えば、デキストラン、ゼラチン、コラーゲン、ポリスチレン、ポリエチレン、ポリアクリルアミド、ガラス、セルロースが挙げられる。
　マイクロキャリアの形状としては、例えば、球状（ビーズ）、円盤状などが挙げられる。
　球状のマイクロキャリアの大きさは、例えば直径２～１０００μｍ、好ましくは１００～３００μｍである。
　マイクロキャリアは多孔性であってもよい。
　細胞の培養に用いるマイクロキャリアの数は、特に限定されるものではないが、例えば、細胞１０個あたりマイクロキャリア１個である。細胞の培養に用いるマイクロキャリアの量は、特に限定されないが、例えば細胞１×１０６個から５×１０７個に対してマイクロキャリア０．１ｇ、好ましくは細胞２×１０７個から３×１０７個に対してマイクロキャリア０．１ｇである。
　マイクロキャリアは、市販のものであってもよく、例えば高濃度Synthemax IIマイクロキャリア（Corning社）を用いることができる。
　凝集体形成工程第２実施形態（工程１－２）は、例えば、細胞非接着性容器内で、接着性細胞集団である対象細胞を含む細胞集団に、本発明の組成物を添加し、その存在下で前記細胞集団を静置培養することにより行われる。このような工程では、対象細胞を含む細胞集団は、マイクロキャリアが存在しなくても、細胞同士で凝集体が形成され、その過程で本発明の組成物に含まれる核酸が前記細胞集団を構成している細胞に導入される。
　したがって、凝集体形成工程第２実施形態における「凝集体」は、少なくとも２つの細胞を含む集合体を意味する。凝集体の多くは、多数の細胞が接着したものが占める。１つの凝集体を形成する細胞数は、特に限定されるものではないが、例えば２～５００個、好ましくは、５０～３００個である。凝集体形成工程第２実施形態において培養される細胞集団には、凝集体を形成する細胞（凝集体形成細胞）と凝集体を形成していない細胞（非凝集体形成細胞）が含まれる。それらの総数に対する凝集体形成細胞の割合は、特に限定されるものではないが、例えば、１０％以上、２０％以上、３０％以上、４０％以上、５０％以上、６０％以上、７０％以上、８０％以上、９０％以上、または１００％である。
　凝集体形成工程（第１実施形態および第２実施形態）における静置培養は、凝集体の形成およびトランスフェクションの完了にとって十分な期間行えばよい。静置培養の期間は特に限定されないが、例えば２～１０時間程度、好ましくは３～６時間程度、より好ましくは４～５時間である。静置培養の条件も特に限定されないが、例えば、約３７℃、５％ＣＯ２存在下とすることができる。
　静置培養後、形成された凝集体を維持するために、撹拌培養が行われてもよい。撹拌培養の期間は特に限定されないが、例えば１２～４８時間程度、好ましくは２４時間程度である。撹拌培養の条件も特に限定されないが、例えば、約３７℃、５％ＣＯ２存在下とすることができる。
　撹拌速度および時間は、細胞密度と培養容器の大きさに応じて適宜設定されるが、代表的には、４～６時間静置後、２５ｒｐｍで１２時間以上撹拌する。過度の撹拌または振盪は、細胞に対して物理的ストレスを与え、また凝集体の維持を阻害するおそれがある。したがって、培地成分および培地内酸素濃度を均一化でき、かつ凝集体の維持を阻害しないように、撹拌速度を制御することが望ましい。
　培地としては、対象細胞を含む細胞集団の培養にとって適切な、従来公知の培地を用いることができる。例えば、BME培地、BGJb培地、CMRL 1066培地、Glasgow MEM培地、Improved MEM（IMEM）培地、Improved MDM（IMDM）培地、Medium 199培地、Eagle MEM培地、αMEM培地、DMEM培地（High glucose、Low glucose）、DMEM/F12培地、ハム培地、RPMI 1640培地、Fischer's培地、及びこれらの混合培地などが用いられる。培地の種類および使用量は、当業者であれば、細胞や培養条件に応じて適宜設定することができる。
　培地には、必要に応じて、アミノ酸、L-グルタミン、GlutaMAX（製品名）、非必須アミノ酸、ビタミン、抗生物質（例えば、ペニシリン、ストレプトマイシン、又はこれらの混合物）、抗菌剤（例えば、アンホテリシンB）、抗酸化剤、ピルビン酸、緩衝剤、無機塩類等の添加物を添加してもよい。添加物の種類および使用量は、当業者であれば、細胞や培養条件に応じて適宜設定することができる。
　上述したような凝集体形成工程を含むトランスフェクション方法によれば、容器（シャーレ、ディッシュ等）の表面に細胞を接着させて培養する従来の方法のように、容器表面の面積による制約を受けることがなく、所望の核酸が導入された心筋細胞（を含む細胞集団）を商業レベルで大量に得ることが可能となる。
　以下、本発明の対象細胞の精製方法の工程について説明する。
　本発明の対象細胞の精製方法は、少なくとも、本発明の組成物と、対象細胞を含む細胞集団とを接触させる工程（組成物接触工程）を含み、必要に応じてさらに、対象細胞を精製することに関するその他の工程を含んでいてもよい。また、本発明の対象細胞の精製方法は、細胞集団中の対象細胞を精製する、換言すれば細胞集団中の対象細胞の比率を高める（対象細胞を富化する）ために、特定の核酸を含む本発明の組成物を用いるが、それ以外の技術的事項は基本的に、公知の心筋細胞の精製方法に準じたものとすることが可能である。
　本発明の対象細胞の製造方法では、「核酸」として、前記（ｉ）の対象細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡ、および／または前記（ｉｉ）のｍＲＮＡを用いる。このような特定の核酸を含む本発明の組成物を、対象細胞を含む細胞集団と接触させ、対象細胞およびそれ以外の細胞内に上記所定の核酸を導入すると、前述したような機構により、対象細胞内では対象細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡが含む「心筋細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡによって特異的に認識される塩基配列」（心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列）または「心室筋細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡによって特異的に認識される塩基配列」（心室筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列）によって「機能的な遺伝子」の発現量が抑制されるのに対し、対象細胞以外の細胞内では「機能的な遺伝子」の発現量は抑制されず、相対的に高い発現量となる。そのような差異を利用することにより、細胞集団中の対象細胞以外の細胞を排除し、対象細胞の純度を高めることができる。
　上記のようにして対象細胞を精製するためには、具体的には、組成物接触工程の後、「機能的な遺伝子」に対応する処理を含む、対象細胞を選別するための工程（本明細書において「対象細胞選別工程」と呼ぶ。）を行う必要がある。
　例えば、「機能的な遺伝子」として「蛍光タンパク質をコードする遺伝子」を用いる場合、対象細胞選別工程は、所定の検出装置を用いて、当該蛍光タンパク質から発せられる信号（蛍光の発光）を検出する処理を含むことが適切である。そのための検出装置としては、例えば、フローサイトメーター、イメージングサイトメーター、蛍光顕微鏡、発光顕微鏡、CCDカメラが挙げられる。このような検出装置は、蛍光タンパク質の吸収波長および発光波長に適した実施形態（装置の構成、測定条件等）に調整することができる。また、蛍光顕微鏡を用いたり、光応答性細胞培養器材をコーティングした培養皿（光を照射しなかった細胞を培養皿から剥離させることができる）を用いたりすることで、蛍光タンパク質の発現量が高い（蛍光強度の高い）対象細胞以外の細胞を選択して除外することも可能である。
　本発明の対象細胞の精製方法によって得られる細胞集団は、対象細胞の純度を一定の水準まで高めることができる。そのような細胞集団中の対象細胞の純度は、本発明の対象細胞の精製方法を適用せずに得られる細胞集団中の対象細胞の純度より高ければよく、その程度は特に限定されるものではない。一つの指標として、本発明の対象細胞の精製方法によって得られる細胞集団中の対象細胞の純度は、60%以上、70%以上、80%以上、81%以上、82%以上、83%以上、84%以上、85%以上、86%以上、87%以上、88%以上、89%以上、90%以上、91%以上、92%以上、93%以上、94%以上、95%以上、96%以上、97%以上、98%以上、99%以上、および100%（実質的に対象細胞以外の細胞が検出できない）であってよい。
　本発明の対象細胞の精製方法に関する、上記の説明およびその他の本明細書の説明において、「精製方法」は適宜「製造方法」に読み替えることができる。すなわち、本発明の「心筋細胞の精製方法」（細胞集団中の心筋細胞の純度または比率を高める方法）および「心室筋細胞の精製方法」（細胞集団中の心室筋細胞の純度または比率を高める方法）に関係する発明についての記載は、「心筋細胞の製造方法」（心筋細胞の純度または比率が高められた細胞集団の製造方法、あるいはそのような細胞集団に含まれる心筋細胞の製造方法）および「心室筋細胞の製造方法」（心室筋細胞の純度または比率が高められた細胞集団の製造方法、あるいはそのような細胞集団に含まれる心室筋細胞の製造方法）についての記載にそれぞれ読み替えることができる。また、本発明の対象細胞の精製方法および製造方法はそれぞれ、前述した本発明のトランスフェクション方法において、対象細胞の精製および製造を目的とする実施形態に対応するといえ、技術的事項に関する記載は適宜相互に適用することができる。
　以下、本発明の化合物の製造方法について説明する。
　以下の製造方法における各工程で用いられた原料や試薬、ならびに得られた化合物は、それぞれ塩を形成していてもよい。このような塩としては、例えば、前述の本発明の化合物における塩と同様のものが挙げられる。
　各工程で得られた化合物が遊離化合物である場合には、公知の方法により、目的とする塩に変換することができる。逆に各工程で得られた化合物が塩である場合には、公知の方法により、遊離体または目的とする他の種類の塩に変換することができる。
　各工程で得られた化合物は反応液のままか、または粗生成物として得た後に、次反応に用いることもできる、あるいは、各工程で得られた化合物を、常法に従って、反応混合物から濃縮、晶出、再結晶、蒸留、溶媒抽出、分溜、クロマトグラフィーなどの分離手段により単離および／または精製することができる。
　各工程の原料や試薬の化合物が市販されている場合には、市販品をそのまま用いることができる。
　各工程の反応において、反応時間は、用いる試薬や溶媒により異なり得るが、特に記載の無い場合、通常１分～４８時間、好ましくは１０分～８時間である。
　各工程の反応において、反応温度は、用いる試薬や溶媒により異なり得るが、特に記載が無い場合、通常－７８℃～３００℃、好ましくは－７８℃～１５０℃である。
　各工程の反応において、圧力は、用いる試薬や溶媒により異なり得るが、特に記載が無い場合、通常１気圧～２０気圧、好ましくは１気圧～３気圧である。
　各工程の反応において、例えば、Ｂｉｏｔａｇｅ社製ＩｎｉｔｉａｔｏｒなどのＭｉｃｒｏｗａｖｅ合成装置を用いることがある。反応温度は、用いる試薬や溶媒により異なり得るが、特に記載がない場合、通常室温～３００℃、好ましくは室温～２５０℃、より好ましくは５０℃～２５０℃である。反応時間は、用いる試薬や溶媒により異なり得るが、特に記載の無い場合、通常１分～４８時間、好ましくは１分～８時間である。
　各工程の反応において、試薬は、特に記載が無い場合、基質に対して０．５当量～２０当量、好ましくは０．８当量～５当量が用いられる。試薬を触媒として使用する場合、試薬は基質に対して０．００１当量～１当量、好ましくは０．０１当量～０．２当量が用いられる。試薬が反応溶媒を兼ねる場合、試薬は溶媒量が用いられる。
　各工程の反応において、特に記載が無い場合、これらの反応は、無溶媒、あるいは適当な溶媒に溶解または懸濁して行われる。溶媒の具体例としては、実施例に記載されている溶媒、あるいは以下が挙げられる。
　アルコール類：メタノール、エタノール、イソプロパノール、イソブタノール、ｔｅｒｔ－ブチルアルコール、２－メトキシエタノールなど；
　エーテル類：ジエチルエーテル、ジイソプロピルエーテル、ジフェニルエーテル、テトラヒドロフラン、１，２－ジメトキシエタン、シクロペンチルメチルエーテルなど；
　芳香族炭化水素類：クロロベンゼン、トルエン、キシレンなど；
　飽和炭化水素類：シクロヘキサン、ヘキサン、ヘプタンなど；
　アミド類：Ｎ，Ｎ－ジメチルホルムアミド、Ｎ－メチルピロリドンなど；
　ハロゲン化炭化水素類：ジクロロメタン、四塩化炭素など；
　ニトリル類：アセトニトリルなど；
　スルホキシド類：ジメチルスルホキシドなど；
　芳香族有機塩基類：ピリジンなど；
　酸無水物類：無水酢酸など；
　有機酸類：ギ酸、酢酸、トリフルオロ酢酸など；
　無機酸類：塩酸、硫酸など；
　エステル類：酢酸エチル、酢酸イソプロピルエステルなど；
　ケトン類：アセトン、メチルエチルケトンなど；
　水。
　上記溶媒は、二種以上を適宜の割合で混合して用いてもよい。
　各工程の反応において塩基を用いる場合、例えば、以下に示す塩基、あるいは実施例に記載されている塩基が用いられる。
　無機塩基類：水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、水酸化マグネシウムなど；
　塩基性塩類：炭酸ナトリウム、炭酸カルシウム、炭酸水素ナトリウムなど；
　有機塩基類：トリエチルアミン、ジエチルアミン、Ｎ，Ｎ－ジイソプロピルエチルアミン、ピリジン、４－ジメチルアミノピリジン、Ｎ，Ｎ－ジメチルアニリン、１，４－ジアザビシクロ［２．２．２］オクタン、１，８－ジアザビシクロ［５．４．０］－７－ウンデセン、イミダゾール、ピペリジンなど；
　金属アルコキシド類：ナトリウムエトキシド、カリウムｔｅｒｔ－ブトキシド、ナトリウムｔｅｒｔ－ブトキシドなど；
アルカリ金属水素化物類：水素化ナトリウムなど；
金属アミド類：ナトリウムアミド、リチウムジイソプロピルアミド、リチウムヘキサメチルジシラジドなど；
　有機リチウム類：ｎ－ブチルリチウム、ｓｅｃ－ブチルリチウムなど。
　各工程の反応において酸または酸性触媒を用いる場合、例えば、以下に示す酸や酸性触媒、あるいは実施例に記載されている酸や酸性触媒が用いられる。
　無機酸類：塩酸、硫酸、硝酸、臭化水素酸、リン酸など；
　有機酸類：酢酸、トリフルオロ酢酸、クエン酸、ｐ－トルエンスルホン酸、１０－カンファースルホン酸など；
　ルイス酸：三フッ化ホウ素ジエチルエーテル錯体、ヨウ化亜鉛、無水塩化アルミニウム、無水塩化亜鉛、無水塩化鉄など。
　各工程の反応は、特に記載の無い限り、公知の方法、例えば、第５版実験化学講座、１３巻～１９巻（日本化学会編）；新実験化学講座、１４巻～１５巻（日本化学会編）；精密有機化学　改定第２版（Ｌ．　Ｆ．　Ｔｉｅｔｚｅ，Ｔｈ．　Ｅｉｃｈｅｒ、南江堂）；改訂　有機人名反応　そのしくみとポイント（東郷秀雄著、講談社）；ＯＲＧＡＮＩＣ　ＳＹＮＴＨＥＳＥＳ　Ｃｏｌｌｅｃｔｉｖｅ　Ｖｏｌｕｍｅ　Ｉ～ＶＩＩ（Ｊｏｈｎ　Ｗｉｌｅｙ　＆　ＳｏｎｓＩｎｃ）；Ｍｏｄｅｒｎ　Ｏｒｇａｎｉｃ　Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ　ｉｎ　ｔｈｅ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ａ　Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｓｔａｎｄａｒｄ　Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ　Ｐｒｏｃｅｄｕｒｅｓ（Ｊｉｅ　Ｊａｃｋ　Ｌｉ著、ＯＸＦＯＲＤ　ＵＮＩＶＥＲＳＩＴＹ出版）；Ｃｏｍｐｒｅｈｅｎｓｉｖｅ　Ｈｅｔｅｒｏｃｙｃｌｉｃ　Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ　ＩＩＩ、Ｖｏｌ．１～Ｖｏｌ．１４（エルゼビア・ジャパン株式会社）；人名反応に学ぶ有機合成戦略（富岡清監訳、化学同人発行）；コンプリヘンシブ・オーガニック・トランスフォーメーションズ（ＶＣＨ　Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ　Ｉｎｃ．）１９８９年刊などに記載された方法、あるいは実施例に記載された方法に準じて行われる。
　各工程において、官能基の保護または脱保護反応は、公知の方法、例えば、Ｗｉｌｅｙ－Ｉｎｔｅｒｓｃｉｅｎｃｅ社２００７年刊「Ｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅ　Ｇｒｏｕｐｓ　ｉｎ　Ｏｒｇａｎｉｃ　Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ，　４ｔｈＥｄ．」（Ｔｈｅｏｄｏｒａ　Ｗ．　Ｇｒｅｅｎｅ，　Ｐｅｔｅｒ　Ｇ．　Ｍ．　Ｗｕｔｓ著）；Ｔｈｉｅｍｅ社２００４年刊「Ｐｒｏｔｅｃｔｉｎｇ　Ｇｒｏｕｐｓ　３ｒｄＥｄ．」（Ｐ．Ｊ．Ｋｏｃｉｅｎｓｋｉ著）などに記載された方法、あるいは実施例に記載された方法に準じて行われる。
　アルコールなどの水酸基やフェノール性水酸基の保護基としては、例えば、メトキシメチルエーテル、ベンジルエーテル、ｐ－メトキシベンジルエーテル、ｔ－ブチルジメチルシリルエーテル、ｔ－ブチルジフェニルシリルエーテル、テトラヒドロピラニルエーテルなどのエーテル型保護基；酢酸エステルなどのカルボン酸エステル型保護基；メタンスルホン酸エステルなどのスルホン酸エステル型保護基；ｔ－ブチルカルボネートなどの炭酸エステル型保護基などが挙げられる。
　アルデヒドのカルボニル基の保護基としては、例えば、ジメチルアセタールなどのアセタール型保護基；環状１，３－ジオキサンなどの環状アセタール型保護基などが挙げられる。
　ケトンのカルボニル基の保護基としては、例えば、ジメチルケタールなどのケタール型保護基；環状１，３－ジオキサンなどの環状ケタール型保護基；Ｏ－メチルオキシムなどのオキシム型保護基；Ｎ，Ｎ－ジメチルヒドラゾンなどのヒドラゾン型保護基などが挙げられる。
　カルボキシル基の保護基としては、例えば、メチルエステルなどのエステル型保護基；Ｎ，Ｎ－ジメチルアミドなどのアミド型保護基などが挙げられる。
　チオールの保護基としては、例えば、ベンジルチオエーテルなどのエーテル型保護基；チオ酢酸エステル、チオカルボネート、チオカルバメートなどのエステル型保護基などが挙げられる。
　アミノ基や、イミダゾール、ピロール、インドールなどの芳香族ヘテロ環の保護基としては、例えば、ベンジルカルバメートなどのカルバメート型保護基；アセトアミドなどのアミド型保護基；Ｎ－トリフェニルメチルアミンなどのアルキルアミン型保護基、メタンスルホンアミドなどのスルホンアミド型保護基などが挙げられる。
　保護基の除去は、公知の方法、例えば、酸、塩基、紫外光、ヒドラジン、フェニルヒドラジン、Ｎ－メチルジチオカルバミン酸ナトリウム、テトラブチルアンモニウムフルオリド、酢酸パラジウム、トリアルキルシリルハライド（例えば、トリメチルシリルヨージド、トリメチルシリルブロミド）を使用する方法や還元法などを用いて行うことができる。
　各工程において、還元反応を行う場合、使用される還元剤としては、水素化アルミニウムリチウム、水素化トリアセトキシホウ素ナトリウム、水素化シアノホウ素ナトリウム、水素化ジイソブチルアルミニウム（ＤＩＢＡＬ－Ｈ）、水素化ホウ素ナトリウム、水素化トリアセトキシホウ素テトラメチルアンモニウムなどの金属水素化物類；ボランテトラヒドロフラン錯体などのボラン類；ラネーニッケル；ラネーコバルト；水素；ギ酸などが挙げられる。例えば、水素またはギ酸存在下で、ラネーニッケルまたはラネーコバルトを用いることができる。炭素－炭素二重結合あるいは三重結合を還元する場合は、パラジウム－カーボンやＬｉｎｄｌａｒ触媒などの触媒を用いる方法がある。
　各工程において、酸化反応を行う場合、使用される酸化剤としては、ｍ－クロロ過安息香酸（ＭＣＰＢＡ）、過酸化水素、ｔ－ブチルヒドロペルオキシドなどの過酸類；過塩素酸テトラブチルアンモニウムなどの過塩素酸塩類；塩素酸ナトリウムなどの塩素酸塩類；亜塩素酸ナトリウムなどの亜塩素酸塩類；過ヨウ素酸ナトリウムなどの過ヨウ素酸類；ヨードシルベンゼンなどの高原子価ヨウ素試薬；二酸化マンガン、過マンガン酸カリウムなどのマンガンを有する試薬；四酢酸鉛などの鉛類；クロロクロム酸ピリジニウム（ＰＣＣ）、二クロム酸ピリジニウム（ＰＤＣ）、ジョーンズ試薬などのクロムを有する試薬；Ｎ－ブロモスクシンイミド（ＮＢＳ）などのハロゲン化合物類；酸素；オゾン；三酸化硫黄・ピリジン錯体；四酸化オスミウム；二酸化ゼレン；２，３－ジクロロ－５，６－ジシアノ－１，４－ベンゾキノン（ＤＤＱ）などが挙げられる。
　各工程において、ラジカル環化反応を行う場合、使用されるラジカル開始剤としては、アゾビスイソブチロニトリル（ＡＩＢＮ）などのアゾ化合物；４－４’－アゾビス－４－シアノペンタン酸（ＡＣＰＡ）などの水溶性ラジカル開始剤；空気あるいは酸素存在下でのトリエチルホウ素；過酸化ベンゾイルなどが挙げられる。また、使用されるラジカル反応試剤としては、トリブチルスタナン、トリストリメチルシリルシラン、１，１，２，２－テトラフェニルジシラン、ジフェニルシラン、ヨウ化サマリウムなどが挙げられる。
　各工程において、Ｗｉｔｔｉｇ反応を行う場合、使用されるＷｉｔｔｉｇ試薬としては、アルキリデンホスホラン類などが挙げられる。アルキリデンホスホラン類は、公知の方法、例えば、ホスホニウム塩と強塩基を反応させることで調製することができる。
　各工程において、Ｈｏｒｎｅｒ－Ｅｍｍｏｎｓ反応を行う場合、使用される試薬としては、ジメチルホスホノ酢酸メチル、ジエチルホスホノ酢酸エチルなどのホスホノ酢酸エステル類；アルカリ金属水素化物類、有機リチウム類などの塩基が挙げられる。
　各工程において、Ｆｒｉｅｄｅｌ－Ｃｒａｆｔｓ反応を行う場合、使用される試薬としては、ルイス酸と、酸クロリドあるいはアルキル化剤（例、ハロゲン化アルキル類、アルコール、オレフィン類など）が挙げられる。あるいは、ルイス酸の代わりに、有機酸や無機酸を用いることもでき、酸クロリドの代わりに、無水酢酸などの酸無水物を用いることもできる。
　各工程において、芳香族求核置換反応を行う場合、試薬としては、求核剤（例、アミン類、イミダゾールなど）と塩基（例、塩基性塩類、有機塩基類など）が用いられる。
　各工程において、カルボアニオンによる求核付加反応、カルボアニオンによる求核１，４－付加反応（Ｍｉｃｈａｅｌ付加反応）、あるいはカルボアニオンによる求核置換反応を行う場合、カルボアニオンを発生するために用いる塩基としては、有機リチウム類、金属アルコキシド類、無機塩基類、有機塩基類などが挙げられる。
　各工程において、Ｇｒｉｇｎａｒｄ反応を行う場合、Ｇｒｉｇｎａｒｄ試薬としては、フェニルマグネシウムブロミドなどのアリールマグネシウムハライド類；メチルマグネシウムブロミド、イソプロピルマグネシウムブロミドなどのアルキルマグネシウムハライド類が挙げられる。Ｇｒｉｇｎａｒｄ試薬は、公知の方法、例えばエーテルあるいはテトラヒドロフランを溶媒として、ハロゲン化アルキルまたはハロゲン化アリールと、金属マグネシウムとを反応させることにより調製することができる。
　各工程において、Ｋｎｏｅｖｅｎａｇｅｌ縮合反応を行う場合、試薬としては、二つの電子求引基に挟まれた活性メチレン化合物（例、マロン酸、マロン酸ジエチル、マロノニトリルなど）および塩基（例、有機塩基類、金属アルコキシド類、無機塩基類）が用いられる。
　各工程において、Ｖｉｌｓｍｅｉｅｒ－Ｈａａｃｋ反応を行う場合、試薬としては、塩化ホスホリルとアミド誘導体（例、Ｎ，Ｎ－ジメチルホルムアミドなど）が用いられる。
　各工程において、アルコール類、アルキルハライド類、スルホン酸エステル類のアジド化反応を行う場合、使用されるアジド化剤としては、ジフェニルホスホリルアジド（ＤＰＰＡ）、トリメチルシリルアジド、アジ化ナトリウムなどが挙げられる。例えば、アルコール類をアジド化する場合、ジフェニルホスホリルアジドと１，８－ジアザビシクロ［５，４，０］ウンデカ－７－エン（ＤＢＵ）を用いる方法やトリメチルシリルアジドとルイス酸を用いる方法などがある。
　各工程において、還元的アミノ化反応を行う場合、使用される還元剤としては、水素化トリアセトキシホウ素ナトリウム、水素化シアノホウ素ナトリウム、水素、ギ酸などが挙げられる。基質がアミン化合物の場合は、使用されるカルボニル化合物としては、パラホルムアルデヒドの他、アセトアルデヒドなどのアルデヒド類、シクロヘキサノンなどのケトン類が挙げられる。基質がカルボニル化合物の場合は、使用されるアミン類としては、アンモニア、メチルアミンなどの１級アミン；ジメチルアミンなどの２級アミンなどが挙げられる。
　各工程において、光延反応を行う場合、試薬としては、アゾジカルボン酸エステル類（例、アゾジカルボン酸ジエチル（ＤＥＡＤ）、アゾジカルボン酸ジイソプロピル（ＤＩＡＤ）など）およびトリフェニルホスフィンが用いられる。
　各工程において、エステル化反応、アミド化反応、あるいはウレア化反応を行う場合、使用される試薬としては、酸クロリド、酸ブロミドなどのハロゲン化アシル体；酸無水物、活性エステル体、硫酸エステル体など活性化されたカルボン酸類が挙げられる。カルボン酸の活性化剤としては、１－エチル－３－（３－ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩（ＷＳＣＤ）などのカルボジイミド系縮合剤；４－（４，６－ジメトキシ－１，３，５－トリアジン－２－イル）－４－メチルモルホリニウムクロライド－ｎ－ハイドレート（ＤＭＴ－ＭＭ）などのトリアジン系縮合剤；１，１－カルボニルジイミダゾール（ＣＤＩ）などの炭酸エステル系縮合剤；ジフェニルリン酸アジド（ＤＰＰＡ）；ベンゾトリアゾール－１－イルオキシ－トリスジメチルアミノホスホニウム塩（ＢＯＰ試薬）；ヨウ化２－クロロ－１－メチル－ピリジニウム（向山試薬）；塩化チオニル；クロロギ酸エチルなどのハロギ酸低級アルキル；Ｏ－（７－アザベンゾトリアゾール－１－イル）－Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’－テトラメチルウロニウム ヘキサフルオロリン酸塩（ＨＡＴＵ）；硫酸；あるいはこれらの組み合わせなどが挙げられる。カルボジイミド系縮合剤を用いる場合、１－ヒドロキシベンゾトリアゾール（ＨＯＢｔ）、Ｎ－ヒドロキシコハク酸イミド（ＨＯＳｕ）、ジメチルアミノピリジン（ＤＭＡＰ）などの添加剤をさらに反応に加えてもよい。
　各工程において、カップリング反応を行う場合、使用される金属触媒としては、酢酸パラジウム（ＩＩ）、テトラキス（トリフェニルホスフィン）パラジウム（０）、ジクロロビス（トリフェニルホスフィン）パラジウム（ＩＩ）、ジクロロビス（トリエチルホスフィン）パラジウム（ＩＩ）、トリス（ジベンジリデンアセトン）ジパラジウム（０）、塩化１，１’－ビス（ジフェニルホスフィノ）フェロセンパラジウム（ＩＩ）、酢酸パラジウム（ＩＩ）などのパラジウム化合物；テトラキス（トリフェニルホスフィン）ニッケル（０）などのニッケル化合物；塩化トリス（トリフェニルホスフィン）ロジウム（ＩＩＩ）などのロジウム化合物；コバルト化合物；酸化銅、ヨウ化銅（Ｉ）などの銅化合物；白金化合物などが挙げられる。さらに反応に塩基を加えてもよく、このような塩基としては、無機塩基類、塩基性塩類などが挙げられる。
　各工程において、チオカルボニル化反応を行う場合、チオカルボニル化剤としては、代表的には五硫化二リンが用いられるが、五硫化二リンの他に、２，４－ビス（４－メトキシフェニル）－１，３，２，４－ジチアジホスフェタン－２，４－ジスルフィド（Ｌｏｗｅｓｓｏｎ試薬）などの１，３，２，４－ジチアジホスフェタン－２，４－ジスルフィド構造を持つ試薬を用いてもよい。
　各工程において、Ｗｏｈｌ－Ｚｉｅｇｌｅｒ反応を行う場合、使用されるハロゲン化剤としては、Ｎ－ヨードコハク酸イミド、Ｎ－ブロモコハク酸イミド（ＮＢＳ）、Ｎ－クロロコハク酸イミド（ＮＣＳ）、臭素、塩化スルフリルなどが挙げられる。さらに、熱、光、過酸化ベンゾイル、アゾビスイソブチロニトリルなどのラジカル開始剤を反応に加えることで、反応を加速させることができる。
　各工程において、ヒドロキシ基のハロゲン化反応を行う場合、使用されるハロゲン化剤としては、ハロゲン化水素酸と無機酸の酸ハロゲン化物、具体的には、塩素化では、塩酸、塩化チオニル、オキシ塩化リンなど、臭素化では、４８％臭化水素酸などが挙げられる。また、トリフェニルホスフィンと四塩化炭素または四臭化炭素などとの作用により、アルコールからハロゲン化アルキル体を得る方法を用いてもよい。あるいは、アルコールをスルホン酸エステルに変換の後、臭化リチウム、塩化リチウムまたはヨウ化ナトリウムと反応させるような２段階の反応を経てハロゲン化アルキル体を合成する方法を用いてもよい。
　各工程において、Ａｒｂｕｚｏｖ反応を行う場合、使用される試薬としては、ブロモ酢酸エチルなどのハロゲン化アルキル類；トリエチルフォスファイトやトリ（イソプロピル）ホスファイトなどのホスファイト類が挙げられる。
　各工程において、スルホンエステル化反応を行う場合、使用されるスルホン化剤としては、メタンスルホニルクロリド、ｐ－トルエンスルホニルクロリド、メタンスルホン酸無水物、ｐ－トルエンスルホン酸無水物、トリフルオロメタンスルホン酸無水物などが挙げられる。
　各工程において、加水分解反応を行う場合、試薬としては、酸または塩基が用いられる。また、ｔ－ブチルエステルの酸加水分解反応を行う場合、副生するｔ－ブチルカチオンを還元的にトラップするためにギ酸やトリエチルシランなどを加えることがある。
　各工程において、脱水反応を行う場合、使用される脱水剤としては、硫酸、五酸化二リン、オキシ塩化リン、Ｎ，Ｎ’－ジシクロヘキシルカルボジイミド、アルミナ、ポリリン酸などが挙げられる。
　化合物（Ｉ）は、例えば、以下の製法によって製造することができる。本発明では、特にエステル化の際に、目的とする化合物（Ｉ）の構造に応じた適切な原料を用いることにより、所望の構造の化合物（Ｉ）を合成することが可能である。また、化合物（Ｉ）の塩は、無機塩基、有機塩基、有機酸、塩基性または酸性アミノ酸との適切な混合により得ることができる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000017
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000018
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000019
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000020
　以下、本発明の化合物を含有する脂質粒子、および当該脂質粒子と核酸を含有する、心筋細胞への核酸のトランスフェクション用組成物（本発明の組成物）の製造方法について記載する。
　本発明の脂質粒子は、カチオン性脂質として本発明の化合物を、その他の脂質成分（例えば、構造脂質）と混合した後、脂質成分から脂質粒子を調製するための公知の方法により製造することができる。例えば、上記の混合脂質成分を有機溶媒に溶解し、得られる有機溶媒溶液を水もしくは緩衝液と混合すること（例えば、乳化法）により、脂質粒子分散液として製造することができる。上記混合は、微小流体混合システム（例えば、NanoAssemblr装置 (Precision NanoSystems社)）を用いて行うことができる。得られた脂質粒子は、脱塩もしくは透析および滅菌ろ過に付してもよい。また、必要に応じてｐＨ調整、浸透圧調整を行ってもよい。
　化合物（Ｉ）は、式（Ｉ）のｎ１、ｎ２、ｎ３、Ｌ、Ｒａ、Ｒｂ、Ｒｃ、Ｒｄ、Ｒｅ、およびＲｆの定義の組み合わせによって、複数の構造を取り得る。脂質粒子の製造には、化合物（Ｉ）として、特定の構造を有する１種類の化合物を単独で使用してもよいし、構造の異なる複数の種類の化合物の混合物として使用してもよい。
　「構造脂質」としては、前述したようなもの、例えば、ステロール類、リン脂質、ポリエチレングリコール脂質が挙げられる。「構造脂質」は、例えば、本発明の化合物１モルに対して、０．００８～４モル用いられる。本発明の化合物は、特に、ステロール類としてのコレステロール、リン脂質としてのホスファチジルコリン、およびポリエチレングリコール脂質と混合して用いることが好ましい。構造脂質として上記成分を用いる場合の好ましい混合比率は、本発明の化合物１～４モル、ステロール類０～３モル、リン脂質０～２モルおよびポリエチレングリコール脂質０～１モルである。構造脂質として上記成分を用いる場合のより好ましい混合比率は、本発明の化合物１～１．５モル、ステロール類０～１．２５モル、リン脂質０～０．５モルおよびポリエチレングリコール脂質０～０．１２５モルである。
　前記した有機溶媒溶液中の本発明の化合物、あるいは本発明の化合物と他の脂質成分との混合物の濃度は、好ましくは０．５～１００ｍｇ／ｍＬである。
　有機溶媒としては、例えば、メタノール、エタノール、１－プロパノール、２－プロパノール、１－ブタノール、tert－ブタノール、アセトン、アセトニトリル、Ｎ，Ｎ－ジメチルホルムアミド、ジメチルスルホキシド、またはこれらの混合物が挙げられる。有機溶媒は、０～２０％の水もしくは緩衝液を含有してもよい。
　緩衝液としては、酸性緩衝液（例えば、酢酸緩衝液、クエン酸緩衝液、２-モルホリノエタンスルホン酸（ＭＥＳ）緩衝液、リン酸緩衝液）や、中性緩衝液（例えば、４－(２－ヒドロキシエチル)－１－ピペラジンエタンスルホン酸（ＨＥＰＥＳ）緩衝液、トリス(ヒドロキシメチル)アミノメタン（Ｔｒｉｓ）緩衝液、リン酸緩衝液、リン酸緩衝生理食塩水(ＰＢＳ)）が挙げられる。
　微小流体混合システムを用いて混合を行う場合、有機溶媒溶液１容積部に対して水もしくは緩衝液１～５容積部を混合することが好ましい。また、該システムにおいて、混合液（有機溶媒溶液と水もしくは緩衝液との混合液）流速は、例えば０．０１～２０ｍL／ｍｉｎ、好ましくは０．１～１０ｍＬ／ｍｉｎであり、温度は、例えば５～６０℃、好ましくは１５～４５℃である。
　本発明の組成物は、脂質粒子または脂質粒子分散液を製造する際、水もしくは緩衝液に核酸を添加しておくことにより、核酸を含む脂質粒子分散液として製造することができる。核酸は、水もしくは緩衝液における核酸の濃度が、例えば０．０１～２０ｍｇ／ｍＬ、好ましくは０．０５～２．０ｍｇ／ｍＬとなるように添加することが好ましい。
　また、本発明の組成物は、脂質粒子または脂質粒子分散液と、核酸またはその水溶液とを、公知の方法で混和することによっても、核酸を含む脂質粒子分散液として製造することができる。脂質粒子分散液は、脂質粒子を適当な分散媒に分散させることにより調製することができる。また、核酸の水溶液は、核酸を適当な溶媒に溶解させることにより調製することができる。
　分散媒および溶媒を除いた本発明の組成物における本発明の化合物の含量は、通常１０～７０重量％、好ましくは４０～７０重量％である。
　分散媒および溶媒を除いた本発明の組成物における核酸の含量は、通常０．１～２５重量％、好ましくは１～２０重量％である。
　脂質粒子分散液または組成物を含む分散液の分散媒は、透析することで水または緩衝液に置換することができる。透析には、分画分子量１０～２０Ｋの限外ろ過膜を用い、４℃～室温にて実施する。繰り返し透析を行ってもよい。分散媒の置換には、タンジェンシャルフロー・フィルトレーション（ＴＦＦ）を使用してもよい。また、分散媒の置換後、必要に応じてｐＨ調整、浸透圧調整を行ってもよい。ｐＨ調整剤としては、例えば水酸化ナトリウム、クエン酸、酢酸、トリエタノールアミン、リン酸水素ナトリウム、リン酸二水素ナトリウム、リン酸二水素カリウムなどが挙げられる。また、浸透圧調整剤としては、例えば塩化ナトリウム、塩化カリウム、リン酸水素ナトリウム、リン酸水素カリウム、リン酸二水素ナトリウム、リン酸二水素カリウムなどの無機塩類、グリセロール、マンニトール、ソルビトールなどのポリオール類、グルコース、フルクトース、ラクトース、スクロースなどの糖類が挙げられる。ｐＨは、通常６．５～８．０、好ましくは７．０～７．８に調整される。浸透圧は、好ましくは２５０～３５０Ｏｓｍ／ｋｇに調整される。
　本発明の組成物には、必要に応じて、脂質粒子および核酸以外の成分を含んでいてもよい。そのような成分としては、例えば、適量の安定化剤および酸化防止剤が挙げられる。
　安定化剤としては、特に限定されないが、例えば、グリセロール、マンニトール、ソルビトール、ラクトース、またはスクロースのような糖類が挙げられる。
　酸化防止剤としては、例えばアスコルビン酸、尿酸、システイン、トコフェロール同族体（ビタミンＥ、トコフェロールα、β、γ、δの４つの異性体など）、ＥＤＴＡ、システインなどが挙げられる。
　以下、本発明の化合物を含有する脂質粒子、および当該脂質粒子と核酸を含有する組成物の分析方法について記載する。
　（組成物中の）脂質粒子の粒子径は、公知の手段により測定することができる。例えば、動的光散乱測定技術に基づく粒子径測定装置、Ｚｅｔａｓｉｚｅｒ　Ｎａｎｏ　ＺＳ（Ｍａｌｖｅｒｎ　Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ）を用い、自己相関関数のキュムラント解析によりＺ平均粒子径として算出することができる。（組成物中の）脂質粒子の粒子径（平均粒子径）は、例えば１０～２００ｎｍ、好ましくは６０～１５０ｎｍである。
　本発明の組成物における核酸（例えばｓｉＲＮＡ、ｍＲＮＡ）の濃度および内封率は、公知の手段により測定することができる。例えば、Ｑｕａｎｔ－ｉＴＴＭ ＲｉｂｏＧｒｅｅｎ（登録商標）（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いて核酸を蛍光標識し、その蛍光強度を測定することによって濃度および内封率を求めることができる。組成物中の核酸の濃度は、濃度が既知の核酸水溶液から作成される標準曲線を用いて算出することができ、内封率は、Ｔｒｉｔｏｎ－Ｘ１００（脂質粒子を崩壊させるための界面活性剤）の添加の有無による蛍光強度の違いを元に算出することができる。なお、組成物中の核酸の濃度は、脂質粒子に内封されている核酸および内封されていない核酸の合計の濃度を指し、内封率は組成物中の核酸全体のうち脂質粒子に内封されているものの割合を指す。
　以下、本発明のキットについて説明する。
　本発明のキットは、１）式（Ｉ）で表される化合物またはその塩（本発明の化合物）、２）構造脂質、および３）核酸を含む。本発明のキットにおける、本発明の化合物、構造脂質および核酸は、本発明の組成物に含まれる本発明の化合物、構造脂質および核酸と同じである。
　本発明は、更に以下の合成例、調製例および実施例によって詳しく説明されるが、これらは本発明を限定するものではなく、また本発明の範囲を逸脱しない範囲で変化させてもよい。
　以下の実施例中の「室温」は通常約１０℃ないし約３５℃を示す。混合溶媒において示した比は、特に断らない限り容量比を示す。％は、特に断らない限り重量％を示す。
　実施例のカラムクロマトグラフィーにおける溶出は、特に言及しない限り、ＴＬＣ（Ｔｈｉｎ　Ｌａｙｅｒ　Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ，薄層クロマトグラフィー）による観察下に行った。ＴＬＣ観察においては、ＴＬＣプレートとしてメルク（Ｍｅｒｃｋ）社製の６０　Ｆ２５４を用い、展開溶媒として、カラムクロマトグラフィーで溶出溶媒として用いた溶媒を用いた。また、検出にはＵＶ検出器を採用し、必要に応じてＴＬＣ発色試薬を用いて観察した。シリカゲルカラムクロマトグラフィーにおいて、ＮＨと記載した場合はアミノプロピルシラン結合シリカゲルを、Ｄｉｏｌと記載した場合は３－（２，３－ジヒドロキシプロポキシ）プロピルシラン結合シリカゲルを用いた。分取ＨＰＬＣ（高速液体クロマトグラフィー）において、Ｃ１８と記載した場合はオクタデシル結合シリカゲルを用いた。溶出溶媒において示した比は、特に断らない限り容量比を示す。
　１Ｈ　ＮＭＲはフーリエ変換型ＮＭＲで測定した。１Ｈ　ＮＭＲの解析にはＡＣＤ／ＳｐｅｃＭａｎａｇｅｒ（商品名）ソフトウエアなどを用いた。水酸基やアミノ基などのプロトンピークが非常に緩やかなピークについては記載していないことがある。
　ＭＳは、ＬＣ／ＭＳおよびＭＡＬＤＩ／ＴＯＦＭＳにより測定した。イオン化法としては、ＥＳＩ法、ＡＰＣＩ法または、ＭＡＬＤＩ法を用いた。マトリックスとしてはＣＨＣＡを用いた。データは実測値（ｆｏｕｎｄ）を記載した。通常、分子イオンピークが観測されるがフラグメントイオンとして観測されることがある。塩の場合は、通常、フリー体の分子イオンピーク、カチオン種、アニオン種もしくはフラグメントイオンピークが観測される。
　以下の実施例においては下記の略号を使用する。
ＭＳ：マススペクトル
Ｍ：モル濃度
Ｎ：規定度
ＣＤＣｌ３：重クロロホルム
ＤＭＳＯ－ｄ６：重ジメチルスルホキシド
１Ｈ　ＮＭＲ：プロトン核磁気共鳴
ＬＣ／ＭＳ：液体クロマトグラフ質量分析計
ＥＳＩ：electrospray ionization、エレクトロスプレーイオン化
ＡＰＣＩ：atmospheric pressure chemical ionization、大気圧化学イオン化
ＭＡＬＤＩ：Matrix-assisted laser desorption/ionization、マ卜リックス支援レーザー脱離イオン化
ＴＯＦＭＳ：Time-of-flight mass spectrometry、飛行時間型質量分析
ＣＨＣＡ：α-シアノ-4-ヒドロキシケイ皮酸
ＤＭＦ：N,N-ジメチルホルムアミド
ＴＨＦ：テトラヒドロフラン
ＤＭＡＰ：４－ジメチルアミノビリジン
ＴＢＡＦ：テトラブチルアンモニウムフルオリド
ＤＩＢＡＬ－Ｈ：水素化ジイソブチルアルミニウム
ＤＢＵ：１，８－ジアザビシクロ［５，４，０］ウンデカ－７－エン
　［合成例１］　3-((5-(ジメチルアミノ)ペンタノイル)オキシ)-2,2-ビス((オクタノイルオキシ)メチル)プロピル 4-ヘプチルウンデカノアート
A)　2-ヘプチルノナン酸メチルエステル
　窒素気流氷冷下、60% 水素化ナトリウム(ミネラルオイル含有)（3.78 g）の脱水DMF（100 mL）懸濁液を10分間撹拌した。その後、マロン酸ジメチル（5.0 g）を10℃以下で滴下した。同温度で10分間撹拌した後、1-ヨードヘプタン（18.3 mL）を滴下し、室温まで昇温した。4時間後、反応混合物に6N 塩酸で中和した後、酢酸エチルで希釈し、飽和食塩水で2回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥し、溶媒を減圧下留去した。残渣をDMSO (75 mL)に溶解し、水（0.68 mL）、塩化リチウム（3.21 g）添加し、165℃に昇温した。同温度で16時間撹拌した後、水を加え、酢酸エチルで希釈した。飽和食塩水で2回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥し、溶媒を減圧下留去した。シリカゲルカラムクロマトグラフィー (酢酸エチル/ヘキサン) で精製して標題化合物（8.14 g） を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 0.84 - 0.90 (6 H, m), 1.20 - 1.32 (20 H, m), 1.36 - 1.47 (2 H, m), 1.54 - 1.62 (2 H, m), 2.33 (1 H, tt, J = 9.0, 5.4 Hz), 3.67 (3 H, s)
B)　2-ヘプチルノナン-1-オール
　窒素気流氷冷下、水素化アルミニウムリチウム（2.15 g）の脱水THF（92 mL）懸濁液に、2-ヘプチルノナン酸メチルエステル（7.67 g）の脱水THF（50 mL）溶液を滴下し、10℃以下で1時間撹拌した。その後室温に昇温し、3時間撹拌した。再度10℃以下に冷却した後、硫酸ナトリウム・10水和物を少しずつ添加した。酢酸エチルで希釈した後、不溶物をセライトろ過し、溶媒を減圧留去して、標題化合物（6.91 g）を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 0.86 - 0.91 (6 H, m), 1.16 - 1.34 (25 H, m), 1.41 - 1.49 (1 H, m), 3.54 (2 H, t, J = 5.2 Hz)
C)　2-ヘプチルノナナール
　窒素気流下、塩化オキザリル（4.9 mL）のジクロロメタン（30 mL）溶液を-70℃に冷却し、ジメチルスルホキシド（6.1 mL）のジクロロメタン(30 mL) 溶液を-60℃以下を保持しながら滴下した。-70℃で15分撹拌後、2-ヘプチルノナン-1-オール（6.9 g）のジクロロメタン（25 mL）溶液を-60℃以下を保持しながら滴下した。-70℃で2時間撹拌後、トリエチルアミン（23.8 mL）を加え室温まで昇温した。飽和塩化アンモニウム水溶液を加えて分液操作を行った後、無水硫酸ナトリウムで乾燥後、溶媒を減圧下留去した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（酢酸エチル/ヘキサン）で精製して標題化合物（6.06 g）を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 0.85 - 0.92 (6 H, m), 1.19 - 1.33 (20 H, m), 1.37 - 1.47 (2 H, m), 1.56 - 1.65 (2 H, m), 2.18 - 2.25 (1 H, m), 9.55 (1 H, d, J = 3.2 Hz)
D)　エチル-4-ヘプチルウンデカ-2-エノアート
　窒素気流氷冷下、60% 水素化ナトリウム(ミネラルオイル含有)（1.4 g）の脱水THF（70mL）懸濁液を10分間撹拌した。その後、エチル(ジエトキシフォスフォリル)アセタート（16.8 g）を10℃以下で滴下した。同温度で10分間撹拌した後、2-ヘプチルノナナール（6.0 g）の脱水THF（60 mL）溶液を滴下し、室温まで昇温した。しばらく撹拌した後、50℃に昇温した。6時間撹拌後、反応混合物を5℃以下にして水を添加した後、酢酸エチルで希釈し、飽和食塩水で2回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥し、溶媒を減圧下留去した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（酢酸エチル/ヘキサン）で精製して標題化合物（5.4 g）を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 0.87 (6 H, t, J=6.0 Hz), 1.16 - 1.34 (25 H, m), 1.37 - 1.45 (2 H, m) 2.07 - 2.15 (1 H, m), 4.19 (2 H, q, J = 7.5 Hz), 5.75 (1 H, d, J = 16.0 Hz), 6.75 (1 H, dd, J=16.0, 10.0 Hz)
E)　4-ヘプチルウンデカン酸
　エチル-4-ヘプチルウンデカ-2-エノアート（5.40 g）のエタノール（100 mL）溶液に、10%Pd炭素（1.08 g）を室温で加え、水素雰囲気下、20時間撹拌した。反応後、Pd炭素をろ過除去した後、溶媒を減圧下留去した。得られた残渣に8N 水酸化ナトリウム水溶液（6.38 mL）のエタノール（20 mL）溶液を加え、60℃で5時間撹拌した。溶媒を減圧下留去した後、6N塩酸で酸性にした。残渣をヘキサンで希釈し、飽和食塩水で1回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥した。溶媒を減圧下留去して標題化合物（4.73 g）を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 0.88 (6 H, t, J = 7.5 Hz), 1.17 - 1.41 (25 H, m), 1.16 - 1.34 (2 H, m), 2.22 - 2.34 (2 H, m)
F)　2-(((tert-ブチル(ジフェニル)シリル)オキシ)メチル)-2-(ヒドロキシメチル)プロパン-1,3-ジオール
　2, 2-ビス（ヒドロキシメチル）プロパン-1,3-ジオ一ル（5.0 g)、1H-イミダゾ一ル（2.5 g）およびDMF（200 mL）の混合物に、tert-ブチルクロロジフェニルシラン（5.1 g）のDMF（10 mL）溶液を室温で加えた。18時間撹拌後、反応混合物を減圧下濃縮した。残渣を酢酸エチルで希釈し、水で3回、飽和食塩水で1回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥し、溶媒を減圧下留去した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（酢酸エチル/ヘキサン）で精製して標題化合物（6.4 g）を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 1.07 (9 H, s), 2.34 (3 H, t, J = 5.5 Hz), 3.67 (2H,s), 3.74 (6 H, d, J = 5.7 Hz), 7.39 - 7.48 (6 H, m), 7.63 - 7.67 (4 H, m)
G)　(5-(((tert-ブチル(ジフェニル)シリル)オキシ)メチル)-2,2-ジメチル-1,3-ジオキサン-5-イル)メタノール
　2-(((tert-ブチル(ジフェニル)シリル)オキシ)メチル)-2-(ヒドロキシメチル)プロパン-1,3-ジオール（3.5 g）、2,2-ジメトキシプロパン（1.5 g）のアセトン（35 mL）溶液に、p-トルエンスルホン酸一水和物（89 mg）を室温で加えた。2時間撹拌後、反応混合物に希アンモニア水を加え中和した後、溶媒を減圧下留去した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（酢酸エチル/ヘキサン）で精製して標題化合物（2.7 g）を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 1.07 (9 H, s), 1.27 (3 H, s), 1.41 (3 H, s), 2.12 - 2.18 (1 H, m), 3.69 - 3.78 (8 H, m), 7.38 - 7.47 (6 H, m), 7.65 - 7.69 (4 H, m)
H)　(5-(ヒドロキシメチル)-2,2-ジメチル-1,3-ジオキサン-5-イル)メチル 4-ヘプチルウンデカノアート
　(5-(((tert-ブチル(ジフェニル)シリル)オキシ)メチル)-2,2-ジメチル-1,3-ジオキサン-5-イル)メタノール（3.56 g）、DMAP（1.37 g）および4-ヘプチルウンデカン酸（3.18 g）のDMF（30 mL）溶液に、1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩（2.47 g）を50℃で加えた。6時間撹拌後、反応混合物に酢酸エチルを加え、水で1回、飽和食塩水で1回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥後、溶媒を減圧下留去した。得られた残渣（6.15 g）のTHF（20mL）溶液に、TBAFのTHF溶液（1M, 10.3 mL）を室温で加えた。4時間撹拌後、反応混合物を減圧下濃縮した。残渣を酢酸エチルで希釈し、水で1回、飽和食塩水で1回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥し、溶媒を減圧下留去した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（酢酸エチル/ヘキサン）で精製して標題化合物（2.34 g）を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 0.88 (6 H, t, J = 6.9 Hz), 1.22 - 1.32 (25 H, m), 1.42 (6 H, s), 1.57 - 1.62 (2 H, m), 2.30 - 2.35 (2 H, m), 3.48 (2 H, d, J = 6.6 Hz), 3.71 - 3.73 (4 H, m), 4.25 (2 H, s)
I)　(5-(((5-ジメチルアミノ)ペンタノイル)オキシ)メチル)-2,2-ジメチル-1,3-ジオキサン-5-イル)メチル 4-ヘプチルウンデカノアート
　(5-(ヒドロキシメチル)-2,2-ジメチル-1,3-ジオキサン-5-イル)メチル 4-ヘプチルウンデカノアート（1.2 g）、DMAP（0.94  g）および5-(ジメチルアミノ)ペンタン酸塩酸塩（0.74 g）のDMF（30 mL）溶液に、1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩（0.94 g）を40℃で加えた。4時間撹拌後、反応混合物に酢酸エチルを加え、水で1回、飽和食塩水で1回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥後、溶媒を減圧下留去した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（NH、酢酸エチル/ヘキサン）で精製して標題化合物（1.37 g）を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 0.88 (6 H, t, J = 6.9 Hz), 1.20 - 1.32 (25 H, m), 1.42 (6 H, s), 1.45 - 1.52 (2 H, m), 1.54 - 1.67 (4 H, m), 2.21 (6 H, s), 2.23 - 2.31 (4 H, m), 2.35 (2 H, t, J = 7.5 Hz), 3.75 (4 H, s), 4.11 (2 H, s), 4.12 (2 H, s)
J)　3-((5-(ジメチルアミノ)ペンタノイル)オキシ)-2,2-ビス((オクタノイルオキシ)メチル)プロピル 4-ヘプチルウンデカノアート
　(5-(((5-ジメチルアミノ)ペンタノイル)オキシ)メチル)-2,2-ジメチル-1,3-ジオキサン-5-イル)メチル 4-ヘプチルウンデカノアート（1.37 g）に酢酸（6.85 mL）、水（3.43 mL）を加えて、70℃で2時間撹拌後、溶媒を減圧下留去した。残渣に酢酸エチル、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液を加えて、2時間撹拌した。水で2回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥後、溶媒を減圧下留去した。得られた残渣（400 mg）に、DMAP（478 mg）およびオクタン酸（327 mg）のDMF（4 mL）溶液を加えた後、1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩（478 mg）を50℃で加えた。4時間撹拌後、反応混合物に酢酸エチルを加え、飽和炭酸ナトリウム水溶液で2回、飽和食塩水で1回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥後、溶媒を減圧下留去した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（NH、酢酸エチル/ヘキサン）で精製して標題化合物（300 mg）を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 0.86 - 0.91 (12 H, m), 1.15 - 1.34 (45 H, m), 1.45 - 1.52 (2 H, m), 1.53 - 1.66 (4 H, m), 2.20 (6 H, s), 2.23 - 2.36 (10 H, m), 4.11 (8 H, s)
　［合成例８］　2-(((6-(ジメチルアミノ)ヘキサノイル)オキシ)メチル-2-((オクタノイルオキシ)メチル)プロパン-1,3-ジイル ビス（2-ヘキシルオクタノアート）
A)　2-ヘキシルオクタン酸
　窒素気流氷冷下、60% 水素化ナトリウム（ミネラルオイル含有）（3.78 g）の脱水DMF（90 mL）懸濁液を10分間撹拌した。その後、マロン酸ジメチル（5.0 g）を10℃以下で滴下した。同温度で10分間撹拌した後、1-ヨードヘキサン（16.8 mL）を滴下し、室温まで昇温した。8時間後、反応混合物に酢酸（1 mL）添加した後、酢酸エチルで希釈し、水で2回、飽和食塩水で1回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥し、溶媒を減圧下留去した。残渣をEtOH （80 mL）に溶解し、8N 水酸化ナトリウム水溶液（25 mL）加えて、60℃で6時間撹拌した。6N 塩酸で中和した後、酢酸エチルで希釈し、飽和食塩水で洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥し、溶媒を減圧下留去した。残渣を160℃で1.5時間加熱し、室温に冷却後、シリカゲルカラムクロマトグラフィー（酢酸エチル/ヘキサン）で精製して標題化合物（7.45 g）を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 0.83 - 0.92 (6 H, m), 1.22 - 1.35 (16 H, m), 1.38 - 1.52 (2 H, m), 1.56 - 1.67 (2 H, m), 2.34 (1 H, ddd, J=8.7, 5.4, 3.3 Hz)
B)　(2-(4-メトキシフェニル)-1,3-ジオキサン-5,5-ジイル)ジメタノール
　2, 2-ビス(ヒドロキシメチル)プロパン-1,3-ジオ一ル（506 g）の水（2.0 L）溶液を50℃で撹拌した。濃塩酸（18 mL）を加え、p-メトキシベンズアルデヒド（474 mL）を30℃付近で3時間かけて滴下した。その後、反応液を25℃にし、5時間撹拌した。2N水酸化ナトリウム水溶液（120 mL）を加え、1時間撹拌した。結晶をろ過し、水で洗浄した後、酢酸エチル/ヘキサンで再結晶して標題化合物（769 g）を得た。
1H NMR (500 MHz, DMSO-d6) δ ppm 3.24 (2 H, d, J = 5.0 Hz), 3.67 (2 H, d, J = 5.4 Hz), 3.74 (3 H, s), 3.77 (2 H, d, J = 11.3 Hz), 3.88 (2 H, t, J = 11.3 Hz), 4.53 (1 H, t, J = 5.4 Hz), 4.62 (1 H, t, J = 5.0 Hz), 5.34 (1 H, s), 6.90 (2 H, d, J = 8.9 Hz), 7.33 (2 H, d, J = 8.9 Hz)
C)　9-(4-メトキシフェニル)-3,3-ジメチル-2,4,8,10-テトラオキサスピロ[5.5]ウンデカン
　(2-(4-メトキシフェニル)-1,3-ジオキサン-5,5-ジイル)ジメタノール（2.00 g）、2,2-ジメトキシプロパン（2.46 g）のDMF（8 mL）溶液に、ピリジニウム p-トルエンスルホナート（20 mg）を室温で加えた。4時間撹拌後、反応混合物を酢酸エチルで希釈し、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液で2回、飽和食塩水で2回洗浄後、無水硫酸マウネシウムで乾燥後、溶媒を減圧下留去した。残渣を酢酸エチル/ヘキサンで再結晶して標題化合物（1.62 g）を得た。
1H NMR (500 MHz, DMSO-d6) δ ppm 1.34 (6 H, s), 3.33 (2 H, s), 3.63 (2 H, d, J = 11.7 Hz), 3.74 (3 H, s), 3.99 (2 H, s), 4.12 (2 H, d, J = 11.7 Hz), 5.37 (1 H, s), 6.90 (2 H, d, J = 8.8 Hz), 7.34 (2 H, d, J = 8.8 Hz)
D)　(5-(((4-メトキシベンジル)オキシ)メチル)-2,2-ジメチル-1,3-ジオキサン-5-イル)メタノール
　9-(4-メトキシフェニル)-3,3-ジメチル-2,4,8,10-テトラオキサスピロ[5.5]ウンデカン（22.0 g）のトルエン（200 mL）懸濁溶液に1.5M DIBAL-H溶液（60 mL）を5～20℃で滴下し、15℃で3時間撹拌した。メタノール（22 mL）を添加した後、2N 水酸化ナトリウム水溶液（100 mL）、4N 水酸化ナトリウム水溶液（200 mL）を順に滴下した。1.5時間攪拌した後、トルエン層を分取し、5%食塩水で洗浄した。溶媒を減圧下留去した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（酢酸エチル/ヘキサン）で精製して標題化合物（14.7 g）を得た。
1H NMR (500 MHz, DMSO-d6) δ ppm 1.29 (3 H, s), 1.29 (3 H, s), 3.35 (2 H, s), 3.39 (2 H, d, J = 5.1 Hz), 3.61 (4 H, s), 3.74 (3 H, s), 4.38 (2 H, s), 4.59 (1 H, t, J = 5.1 Hz), 6.90 (2 H, d like, J = 7.5 Hz), 7.24 (2 H, d like, J = 7.5 Hz)
E)　(5-(((4-メトキシベンジル)オキシ)メチル)-2,2-ジメチル-1,3-ジオキサン-5-イル)メチルオクタノアート
　(5-(((4-メトキシベンジル)オキシ)メチル)-2,2-ジメチル-1,3-ジオキサン-5-イル)メタノール（2.00 g）、DMAP（412 mg）およびオクタン酸（1.27 g）のDMF（20 mL）溶液に、1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩（1.94 g）を50℃で加えた。4時間撹拌後、反応混合物に酢酸エチルを加え、水で2回、飽和食塩水で1回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥後、溶媒を減圧下留去した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（酢酸エチル/ヘキサン）で精製して標題化合物（2.78 g）を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 0.84 - 0.91 (3 H, m), 1.22 - 1.33 (8 H, m), 1.40 (6 H, s), 1.53 - 1.61 (2 H, m), 2.26 (2 H, t, J = 7.6 Hz), 3.39 (2 H, s), 3.68 - 3.74 (2 H, m), 3.76 - 3.80 (2 H, m), 3.80 (3 H, s), 4.15 (2 H, s), 4.42 (2 H, s), 6.87 (2 H, d, J = 7.8 Hz), 7.20 - 7.24 (2 H, m)
F)　3-ヒドロキシ-2-(ヒドロキシメチル)-2-(((4-メトキシベンジル)オキシ)メチル)プロピル オクタノアート
　(5-(((4-メトキシベンジル)オキシ)メチル)-2,2-ジメチル-1,3-ジオキサン-5-イル)メチルオクタノアート（754 mg）のTHF（6 mL）溶液に１N 塩酸（6 mL）を加え、室温で6時間撹拌した。飽和炭酸水素ナトリウム水溶液または2N 水酸化ナトリウム水溶液（4 mL）加えた後、酢酸エチルで抽出し、水および飽和食塩水で洗浄した。この一連の操作を、脱保護が完了するまで4回繰り返した。反応完結後、溶媒を減圧下留去し、標題化合物（608 mg）を得た。
1H NMR (500 MHz, DMSO-d6) δ ppm 0.85 (3 H, t, J = 7.3 Hz), 1.15 - 1.30 (9 H, m), 1.40 - 1.50 (2 H, m), 2.22 (2 H, t, J = 7.5 Hz), 3.31 (2 H, s), 3.39 (4 H, d, J = 5.4 Hz), 3.76 (3 H, s), 3.95 (2 H, s), 4.35 (2 H, s), 4.43 (2 H, t, J = 5.4 Hz), 6.89 (2 H, d, J = 6.6 Hz), 7.21 (2 H, d, J = 6.6 Hz)
G)　2-(((4-メトキシベンジル)オキシ)メチル)-2-((オクタノイルオキシ)メチル)プロパン-1,3-ジイル ビス（2-ヘキシルオクタノアート）
　3-ヒドロキシ-2-(ヒドロキシメチル)-2-(((4-メトキシベンジル)オキシ)メチル)プロピル オクタノアート（2.0 g）、DMAP（0.64 g）および2-ヘキシルオクタン酸（2.63 g）のDMF（20 mL）溶液に、1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩（2.41 g）を室温で加えた。室温で15時間撹拌した後、反応混合物に酢酸エチルを加え、水で2回、飽和食塩水で1回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥後、溶媒を減圧下留去した。シリカゲルカラムクロマトグラフィー（酢酸エチル/ヘキサン）で精製して標題化合物（3.48 g）を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 0.83 - 0.91 (15 H, m), 1.19 - 1.33 (42 H, m), 1.37 - 1.47 (4 H, m), 1.51 - 1.61 (4 H, m), 2.24 (2 H, t, J = 7.6 Hz), 2.32 (2 H, br t, J = 5.4 Hz), 3.41 (2 H, s), 3.80 (3 H, s), 4.08 - 4.16 (6 H, m), 4.39 (2 H, s), 6.86 (2 H, d, J = 7.6 Hz), 7.19 (2 H, d, J = 8.8 Hz)
H)　2-(ヒドロキシメチル)-2-((オクタノイルオキシ)メチル)プロパン-1,3-ジイル ビス（2-ヘキシルオクタノアート）
　2-(((4-メトキシベンジル)オキシ)メチル)-2-((オクタノイルオキシ)メチル)プロパン-1,3-ジイル ビス(2-ヘキシルオクタノアート)（3.48 g）のエタノール（30 mL）溶液に、10%Pd炭素（280 mg）を室温で加え、水素雰囲気下で7時間撹拌した。反応後、Pd炭素をろ過除去した後、溶媒を減圧下留去した。シリカゲルカラムクロマトグラフィー（酢酸エチル/ヘキサン）で精製して標題化合物（1.68 g）を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 0.84 - 0.91 (15 H, m), 1.19 - 1.33 (42 H, m), 1.41 - 1.51 (4 H, m), 1.54 - 1.63 (4 H, m), 2.30 - 2.38 (4 H, m), 2.61 - 2.64 (1 H, m), 3.48 (2 H, d, J = 7.3 Hz), 4.08 - 4.14 (6 H, m)
I)　2-(((6-(ジメチルアミノ)ヘキサノイル)オキシ)メチル-2-((オクタノイルオキシ)メチル)プロパン-1,3-ジイル ビス（2-ヘキシルオクタノアート）
　2-(ヒドロキシメチル)-2-((オクタノイルオキシ)メチル)プロパン-1,3-ジイル ビス(2-ヘキシルオクタノアート)（600 mg）、DMAP（54 mg）および6-(ジメチルアミノ)ヘキサン酸（280 mg）のDMF（6 mL）溶液に、1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩（303 mg）を室温で加えた。40℃で15時間撹拌した後、反応混合物に酢酸エチルを加え、水で2回、飽和食塩水で1回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥後、溶媒を減圧下留去した。シリカゲルカラムクロマトグラフィー（NH, 酢酸エチル/ヘキサン）で精製して標題化合物（513 mg）を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 0.83 - 0.92 (15 H, m), 1.19 - 1.34 (42 H, m), 1.39 - 1.50 (6 H, m), 1.52 - 1.73 (8 H, m), 2.21 (6 H, s), 2.21 - 2.35 (8 H, m), 4.10 (8 H, s)
　［合成例１０］　3-((5-(ジメチルアミノ)ペンタノイル)オキシ)-2,2-ビス((オクタノイルオキシ)メチル)プロピル 4,5-ジブチルノナノアート
A)　エチル 3-ブチルヘプタ-2-エノアート
　窒素気流氷冷下、60% 水素化ナトリウム（ミネラルオイル含有）（3.94 g）の脱水THF （100 mL）懸濁液を10分間撹拌した。その後、エチル(ジエトキシフォスフォリル)アセタート（23.7 g）を10℃以下で滴下した。同温度で10分間撹拌した後、ノナン-5-オン（10.0 g）を添加し室温まで昇温した。しばらく撹拌した後、50℃に昇温した。10時間撹拌後、反応混合物を5℃以下にして水を添加した後、酢酸エチルで希釈し、飽和食塩水で2回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥し、溶媒を減圧下留去した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（酢酸エチル/ヘキサン）で精製して標題化合物（4.47 g）を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 0.92 (6 H, td, J = 7.3, 3.2 Hz), 1.25 - 1.47 (11 H, m), 2.14 (2 H, td, J = 7.6, 1.1 Hz), 2.57 - 2.62 (2 H, m), 4.14 (2 H, q, J = 7.1 Hz), 5.62 (1 H, s)
B)　エチル 3-ブチルヘプタノアート
　エチル 3-ブチルヘプタ-2-エノアート（5.80 g）のエタノール（25 mL）溶液に、10%Pd炭素（1.50 g）を室温で加え、水素雰囲気下、5時間撹拌した。反応後、Pd炭素をろ過除去した後、溶媒を減圧下留去し標題化合物（5.49 g）を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 0.84 - 0.93 (6 H, m), 1.21 - 1.33 (15 H, m), 1.80 - 1.88 (1 H, m), 2.22 (2 H, d, J = 6.9 Hz), 4.12 (2 H, q, J = 7.1 Hz)
C)　エチル 2,3-ジブチルヘプタノアート
　窒素気流下、ジイソプロピルアミン（11.8 mL）の脱水THF（59 mL）溶液を-10℃に冷却し、1.6M n-BuLiヘキサン溶液（35.2 mL）をゆっくり滴下した。滴下終了後、反応液を0℃にして10分間撹拌した。再度-10℃に冷却し、エチル 3-ブチルヘプタノアート（5.49 g）の脱水THF（16 mL）溶液を滴下し、-5℃付近で30分間撹拌する。その後、1-ヨードブタン（9.43 g）を滴下し、しばらく撹拌した後室温にした。3時間撹拌後、6N塩酸で中和した後、酢酸エチルで希釈し、10%チオ硫酸ナトリウム水溶液で2回、飽和食塩水で1回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥し、溶媒を減圧下留去した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（酢酸エチル/ヘキサン）で精製して標題化合物（5.57 g）を得た。 
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 0.84 - 0.93 (9 H, m), 1.17 - 1.41 (20 H, m), 1.51 - 1.65 (2 H, m), 2.34 (1 H, ddd, J = 10.6, 6.5, 3.8 Hz), 4.07 - 4.19 (2 H, m)
D)　2,3-ジブチルヘプタン-1-オール
　窒素気流氷冷下、水素化リチウムアルミニウム（1.54 g）の脱水THF（66 mL）懸濁液に、エチル 2,3-ジブチルヘプタノアート（5.50 g）の脱水THF（10 mL）溶液を滴下した。滴下終了後、10分撹拌し室温に戻した。2時間撹拌後、5℃以下に冷却し、硫酸ナトリウム・10水和物を少量ずつ添加した。発泡が見られなくなった後、酢酸エチルで希釈して不溶物をセライトろ過した。溶媒を減圧下留去して標題化合物（4.67 g） を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 0.86 - 0.93 (9 H, m), 1.12 - 1.34 (19 H, m), 1.37 - 1.46 (1 H, m), 1.47 - 1.61 (1 H, m), 3.49 - 3.62 (2 H, m)
E)　2,3-ジブチルヘプタナール
　窒素気流下、2,3-ジブチルヘプタン-1-オール（4.60 g）およびDBU（6.02 mL）のジクロロメタン（46 mL）溶液を-10℃に冷却し、N-tert-ブチルベンゼンスルフィンイミドイル クロリド（6.52 g）のジクロロメタン（20 mL）溶液を-5℃以下を保持しながら滴下した。-10℃で3時間撹拌後、1N塩酸で酸性にした。分液操作を行った後、溶媒を減圧下留去した。残渣を酢酸エチルで希釈し、飽和食塩水で1回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥し、溶媒を減圧下留去した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（酢酸エチル/ヘキサン）で精製して標題化合物 （4.11 g） を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 0.83 - 0.96 (9 H, m), 1.15 - 1.39 (16 H, m), 1.52 - 1.60 (1 H, m), 1.62 - 1.74 (2 H, m), 2.22 - 2.27 (1 H, m), 9.64 (1 H, d, J = 2.8 Hz)
F)　エチル 4,5-ジブチルノン-2-エノアート
　窒素気流氷冷下、60% 水素化ナトリウム（ミネラルオイル含有）（1.0 g）の脱水THF（41 mL）懸濁液を10分間撹拌した。その後、エチル(ジエトキシフォスフォリル)アセタート（6.10 g）を10℃以下で滴下した。同温度で10分間撹拌した後、2,3-ジブチルヘプタナール（4.10 g）の脱水THF（8 mL）溶液を滴下し、室温まで昇温した。しばらく撹拌した後、50℃に昇温した。5時間撹拌後、反応混合物を5℃以下にして水を添加した後、酢酸エチルで希釈し、飽和食塩水で2回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥し、溶媒を減圧下留去した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（酢酸エチル/ヘキサン）で精製して標題化合物（4.14 g）を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 0.83 - 0.97 (9 H, m), 1.14 - 1.38 (22 H, m), 2.16 - 2.30 (1 H, m), 4.10 - 4.22 (2 H, m), 5.72 - 5.78 (1 H, m), 6.80 (1 H, dd, J = 15.6, 9.6 Hz)
G)　4,5-ジブチルノン-2-エノン酸
　エチル 4,5-ジブチルノン-2-エノアート（4.10 g）および8N 水酸化ナトリウム水溶液（6.1 mL）のエタノール（30 mL）溶液を60℃で2時間撹拌した。溶媒を減圧下留去し、1N塩酸で酸性にした。残渣を酢酸エチルで希釈し、水で2回、飽和食塩水で1回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥し、溶媒を減圧下留去した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（酢酸エチル/ヘキサン）で精製して標題化合物（2.80 g）を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 0.81 - 0.93 (9 H, m), 1.06 - 1.47 (19 H, m), 2.16 - 2.33 (1 H, m), 5.75 - 5.80 (1 H, m), 6.92 (1 H, dd, J = 15.8, 9.8 Hz)
H)　3-ヒドロキシ-2-(ヒドロキシメチル)-2-(((4-メトキシベンジル)オキシ)メチル)プロピル-4,5-ジブチルノン-2-エノアート
　(5-(((4-メトキシベンジル)オキシ)メチル)-2,2-ジメチル-1,3-ジオキサン-5-イル)メタノール（600 mg）、DMAP（240 mg）および4,5-ジブチルノン-2-エノン酸（706 mg）のDMF（4 mL）溶液に、1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩（582 mg）を室温で加えた。一晩撹拌後、反応混合物に酢酸エチルを加え、水で2回、飽和食塩水で1回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥後、溶媒を減圧下留去した。得られた残渣をTHF（12 mL）に溶解させた後、1N塩酸（6 mL）を加えて3日間撹拌した。反応混合物に酢酸エチルを加え、5%炭酸水素ナトリウム水溶液で2回、飽和食塩水で1回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥後、溶媒を減圧下留去した。シリカゲルカラムクロマトグラフィー （酢酸エチル/ヘキサン）で精製して標題化合物（870 mg）を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 0.84 - 0.93 (9 H, m), 1.13 - 1.36 (18 H, m), 1.40 - 1.47 (1 H, m), 2.21 (1 H, dt, J = 9.3, 4.8 Hz), 2.69 (2 H, td, J = 6.6, 2.5 Hz), 3.48 (2 H, s), 3.55 - 3.67 (4 H, m), 3.80 - 3.82 (3 H, m), 4.23 - 4.32 (2 H, m), 4.45 (2 H, s), 5.74 - 5.79 (1 H, m), 6.82 - 6.91 (3 H, m), 7.21 - 7.25 (2 H, m)
I)　3-((4-メトキシベンジル)オキシ)-2,2-ビス((オクタノイルオキシ)メチル)プロピル -4,5-ジブチルノン-2-エノアート
　3-ヒドロキシ-2-(ヒドロキシメチル)-2-(((4-メトキシベンジル)オキシ)メチル)プロピル-4,5-ジブチルノン-2-エノアート（870 mg）、DMAP（210 mg）およびオクタン酸（545 mg）のDMF（6 mL）溶液に、1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩（757 mg）を室温で加えた。60℃で4時間撹拌した後、反応混合物に酢酸エチルを加え、水で2回、飽和食塩水で1回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥後、溶媒を減圧下留去した。シリカゲルカラムクロマトグラフィー（酢酸エチル/ヘキサン）で精製して標題化合物（1.26 g）を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 0.83 - 0.93 (15 H, m), 1.13 - 1.45 (35 H, m), 1.52 - 1.61 (4 H, m), 2.17 - 2.31 (5 H, m), 3.43 (2 H, s), 3.80 (3 H, s), 4.10 - 4.22 (6 H, m), 4.40 (2 H, s), 5.73 (1 H, d, J = 15.4 Hz), 6.78 - 6.90 (3 H, m), 7.19 (2 H, d, J = 7.9 Hz)
J)　3-((5-(ジメチルアミノ)ペンタノイル)オキシ)-2,2-ビス((オクタノイルオキシ)メチル)プロピル 4,5-ジブチルノナノアート
　3-((4-メトキシベンジル)オキシ)-2,2-ビス((オクタノイルオキシ)メチル)プロピル -4,5-ジブチルノン-2-エノアート（1.26 g）のエタノール（10 mL）と酢酸エチル（10 mL）の混合溶液に、10%Pd炭素（110 mg）を室温で加え、水素雰囲気下で一晩撹拌した。反応後、Pd炭素をろ過除去した後、溶媒を減圧下留去した。残渣（500 mg）、DMAP（95 mg）および5-(ジメチルアミノ)ペンタン酸塩酸塩（170 mg）のDMF（4 mL）溶液に、1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩（194 mg）を室温で加えた。50℃で7時間撹拌後、反応混合物に酢酸エチルを加え、水で2回、飽和食塩水で1回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥後、溶媒を減圧下留去した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（NH、酢酸エチル/ヘキサン）で精製して標題化合物（250 mg）を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 0.84 - 0.91 (15 H, m), 1.09 - 1.31 (37 H, m), 1.42 - 1.52 (2 H, m), 1.54 - 1.66 (6 H, m), 1.76 - 1.97 (1 H, m), 2.21 (6 H, s), 2.24 - 2.35 (10 H, m), 4.07 - 4.13 (8 H, m)
　［合成例１４］　2-(((4,5-ジブチルノナノイル)オキシ)メチル)-2-(((5-(ジメチルアミノ)ペンタノイル)オキシ)メチル)プロパン-1,3-ジイル ジデカノアート
A)　エチル 4,5-ジブチルノナノアート
　エチル 4,5-ジブチルノン-2-エノアート（2,50 g）のエタノール（20 mL）溶液に、10%Pd炭素（0.54 g）を室温で加え、水素雰囲気下、5時間撹拌した。反応後、Pd炭素をろ過除去した後、溶媒を減圧下留去し標題化合物（2.49 g）を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 0.82 - 1.00 (9 H, m), 1.10 - 1.33 (23 H, m), 1.46 - 1.63 (2 H, m), 2.19 - 2.36 (2 H, m), 4.06 - 4.19 (2 H, m)
B)　4,5-ジブチルノナノン酸
　エチル 4,5-ジブチルノナノアート（2.49 g）および8N 水酸化ナトリウム水溶液（3.55 mL）のエタノール（12.5 mL）溶液を60℃で7時間撹拌した。溶媒を減圧下留去し、1N塩酸で酸性にした。残渣を酢酸エチルで希釈し、水で2回、飽和食塩水で1回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥した。溶媒を減圧下留去して標題化合物（2.36 g）を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 0.83 - 0.94 (9 H, m), 0.95 - 1.33 (20 H, m), 1.49 (1 H, ddt, J = 13.7, 9.3, 6.8, 6.8 Hz), 1.56 - 1.74 (1 H, m), 2.26 - 2.42 (2 H, m)
C)　(5-(ヒドロキシメチル)-2,2-ジメチル-1,3-ジオキサン-5-イル)メチル 4,5-ジブチルノナノアート
　(5-(((tert-ブチル(ジフェニル)シリル)オキシ)メチル)-2,2-ジメチル-1,3-ジオキサン-5-イル)メタノール（800 mg）、DMAP（306 mg）および4,5-ジブチルノナノン酸（678 mg）のDMF（8 mL）溶液に、1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩（555 mg）を室温で加えた。50℃で8時間撹拌後、反応混合物に酢酸エチルを加え、水で2回、飽和食塩水で1回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥後、溶媒を減圧下留去した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（酢酸エチル/ヘキサン）で精製した。この化合物のTHF（4 mL）溶液に、TBAFのTHF溶液（1M, 2.32 mL）を室温で加えた。室温で一晩撹拌後、反応混合物を減圧下濃縮した。残渣を酢酸エチルで希釈し、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液で1回、飽和食塩水で1回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥し、溶媒を減圧下留去した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（酢酸エチル/ヘキサン）で精製して標題化合物（680 mg）を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 0.89 (9 H, t, J = 6.8 Hz), 1.09 - 1.31 (20 H, m), 1.42 (6 H, s), 1.45 - 1.54 (1 H, m), 1.57 - 1.62 (1 H, m), 2.29 - 2.37 (3 H, m), 3.48 (2 H, d, J = 6.6 Hz), 3.70 - 3.75 (4 H, m), 4.25 (2 H, d, J = 1.9 Hz)
D)　(5-(((5-(ジメチルアミノ)ペンタノイル)オキシ)メチル)-2,2-ジメチル-1,3-ジオキサン-5-イル)メチル 4,5-ジブチルノナノアート
　(5-(ヒドロキシメチル)-2,2-ジメチル-1,3-ジオキサン-5-イル)メチル 4,5-ジブチルノナノアート（680 mg）、DMAP（388 mg）および5-(ジメチルアミノ)ペンタン酸塩酸塩（576 mg）のDMF（7 mL）溶液に、1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩（669 mg）を室温で加えた。50℃で7時間撹拌後、反応混合物に酢酸エチルを加え、水で2回、飽和食塩水で1回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥後、溶媒を減圧下留去した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（酢酸エチル/ヘキサン）で精製して標題化合物（740 mg）を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 0.89 (9 H, t, J = 6.9 Hz), 1.09 - 1.31 (21 H, m), 1.42 (6 H, s), 1.48 (3 H, dt, J = 15.1, 7.6 Hz), 1.60 - 1.66 (2 H, m), 2.21 (6 H, s), 2.22 - 2.32 (4 H, m), 2.35 (2 H, t, J = 7.6 Hz), 3.75 (4 H, s), 4.09 - 4.13 (4 H, m)
E)　2-(((4,5-ジブチルノナノイル)オキシ)メチル)-2-(((5-(ジメチルアミノ)ペンタノイル)オキシ)メチル)プロパン-1,3-ジイル ジデカノアート
　(5-(((5-(ジメチルアミノ)ペンタノイル)オキシ)メチル)-2,2-ジメチル-1,3-ジオキサン-5-イル)メチル 4,5-ジブチルノナノアート（1.68 g）に酢酸（8.4mL）と水（4.2 mL）を加え75℃で2時間撹拌した。溶媒を減圧留去し、酢酸エチルと飽和水酸化ナトリウム水溶液を加えて2時間撹拌した。有機層を飽和水酸化ナトリウム水溶液、飽和食塩水で洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥後、溶媒を減圧下留去した。残渣（700 mg）、DMAP（497 mg）およびデカン酸（701 mg）のDMF（7 mL）溶液に、1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩（859 mg）を室温で加えた。50℃で7時間撹拌後、反応混合物に酢酸エチルを加え、水で2回、飽和食塩水で1回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥後、溶媒を減圧下留去した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（酢酸エチル/ヘキサン、酢酸エチル/メタノール及びNH, 酢酸エチル/ヘキサン）で精製して標題化合物（405 mg）を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 0.84 - 0.93 (15 H, m), 1.10 - 1.32 (44 H, m), 1.40 - 1.54 (3 H, m), 1.54 - 1.66 (7 H, m), 2.21 (6 H, s), 2.23 - 2.35 (10 H, m), 4.11 (8 H, s)
　［合成例１８］　3-(((4-(ジメチルアミノ)ブチル)カルバモイル)オキシ)-2,2-ビス((オクタノイルオキシ)メチル)プロピル 4,5-ジブチルノナノアート
　(5-(ヒドロキシメチル)-2,2-ジメチル-1,3-ジオキサン-5-イル)メチル 4,5-ジブチルノナノアート（0.50 g）のテトラヒドロフラン溶液（7.5 mL）に1,1-カルボニルジイミダゾール（0.28 g）を室温で加えた。1時間撹拌後、反応混合物を減圧下濃縮した。残渣をヘキサンで希釈し、不溶物を除いた後、ろ液を減圧下濃縮した。残渣にテトラヒドロフラン（10 mL）、(4-アミノブチル)ジメチルアミン（0.20 g）、トリエチルアミン（0.24 mL）を室温で加えた。20時間攪拌後、酢酸エチルで希釈し、水、塩化アンモニウム水溶液、炭酸水素ナトリウム水溶液で順次洗浄し、溶媒を減圧下留去した。残渣に酢酸（3.3 mL）、水（1.7 mL）を加え、65℃で5時間攪拌した。室温に冷却後、溶媒を減圧下留去した。残渣を酢酸エチルで希釈し、炭酸水素ナトリウム水溶液、水で順次洗浄し、溶媒を減圧下留去した。残渣に、N, N-ジメチルホルムアミド（4 mL）、DMAP（61 mg）、1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩（288 mg）、オクタン酸（0.19 mL）を加えた。60℃で3時間撹拌後、反応混合物に酢酸エチルを加え、水、食塩水で順次洗浄後、溶媒を減圧下留去した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（NH、酢酸エチル/ヘキサン）で精製して標題化合物（215 mg）を得た。
1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ ppm 0.88 (15 H, t, J = 7.09 Hz) 1.10 - 1.33 (32 H, m) 1.40 - 1.62 (14 H, m) 2.21 (6 H, s) 2.25 - 2.32 (8 H, m) 3.16 (2 H, m) 4.10 (8 H, s) 5.84 (1 H, m)
　［合成例２０］　3-((3-ブチルヘプタノイル)オキシ)-2-(((3-ブチルヘプタノイル)オキシ)メチル)-2-(((4-(ジメチルアミノ)ブタノイル)オキシ)メチル)プロピル (9Z)-ヘキサデカ-9-エノアート
A)　(5-(((tert-ブチル(ジフェニル)シリル)オキシ)メチル)-2,2-ジメチル-1,3-ジオキサン-5-イル)メチル (9Z)-ヘキサデカ-9-エノアート
　窒素雰囲気下、(5-(((tert-ブチル(ジフェニル)シリル)オキシ)メチル)-2,2-ジメチル-1,3-ジオキサン-5-イル)メタノール（1.50 g）、DMAP（0.49 g）およびパルミトレイン酸（1.01 g）のDMF（15 mL）溶液に、1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩（0.83 g）を50℃で加えた。21時間撹拌後、反応混合物に酢酸エチルを加え、水で1回、飽和食塩水で1回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥後、溶媒を減圧下留去した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（酢酸エチル/ヘキサン）で精製して標題化合物（2.11 g）を得た。
1H NMR (300 MHz, CDCl3) δ ppm 0.85 - 0.94 (3 H, m), 1.01 - 1.10 (9 H, m), 1.24 - 1.35 (16 H, m), 1.40 (6 H, d, J = 10.3 Hz), 1.52 - 1.61 (2 H, m), 1.97 - 2.07 (4 H, m), 2.25 (2 H, t, J = 7.6 Hz), 3.66 (2 H, s), 3.77 (4 H, q, J = 11.8 Hz), 4.18 (2 H, s), 5.35 (2 H, ddd, J = 5.8, 3.4, 2.7 Hz), 7.36 - 7.47 (6 H, m), 7.65 - 7.69 (4 H, m)
B)　3-((tert-ブチル(ジフェニル)シリル)オキシ)-2,2-ビス(((3-ブチルヘプタノイル)オキシ)メチル)プロピル (9Z)-ヘキサデカ-9-エノアート
　窒素雰囲気下、(5-(((tert-ブチル(ジフェニル)シリル)オキシ)メチル)-2,2-ジメチル-1,3-ジオキサン-5-イル)メチル (9Z)-ヘキサデカ-9-エノアート（2.11 g）に酢酸（10.6  mL）、水（5.3 mL）を加え、75℃で8時間攪拌した。室温に冷却後、溶媒を減圧下留去した。残渣を酢酸エチルで希釈し、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液、水で順次洗浄し、無水硫酸ナトリウムで乾燥後、溶媒を減圧下留去し、残渣（1.95 g）を得た。窒素雰囲気下、残査（0.95 g）を秤量し、DMF（9.5 mL）溶液に溶解した後、DMAP（0.42 g）および3-ブチルヘプタン酸（0.64 g）を添加してしばらく撹拌した。その後、1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩（0.69 g）を50℃で加えた。6時間撹拌後、反応混合物に酢酸エチルを加え、水で1回、飽和食塩水で1回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥後、溶媒を減圧下留去した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（酢酸エチル/ヘキサン）で精製して標題化合物（0.71 g）を得た。
1H NMR (300 MHz, CDCl3) δ ppm 0.84 - 0.93 (15 H, m), 1.05 (9 H, s), 1.18 - 1.37 (40 H, m), 1.51 - 1.60 (2 H, m), 1.78 (2 H, br d, J = 5.2 Hz), 1.97 - 2.07 (4 H, m), 2.17 - 2.26 (6 H, m), 3.63 (2 H, s), 4.10 - 4.17 (6 H, m), 5.35 (2 H, ddd, J = 5.6, 3.5, 2.2 Hz), 7.35 - 7.48 (6 H, m), 7.60 - 7.65 (4 H, m)
C)　3-((3-ブチルヘプタノイル)オキシ)-2-(((3-ブチルヘプタノイル)オキシ)メチル)-2-(((4-(ジメチルアミノ)ブタノイル)オキシ)メチル)プロピル (9Z)-ヘキサデカ-9-エノアート
　3-((tert-ブチル(ジフェニル)シリル)オキシ)-2,2-ビス(((3-ブチルヘプタノイル)オキシ)メチル)プロピル (9Z)-ヘキサデカ-9-エノアート（0.71 g）のTHF（2.1 mL）溶液に、TBAFのTHF溶液（1M, 0.9 mL）を室温で加えた。室温で一晩撹拌後、反応混合物を減圧下濃縮した。残渣を酢酸エチルで希釈し、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液で1回、飽和食塩水で1回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥し、溶媒を減圧下留去した。残査をDMF（5.3 mL）溶液に溶解した後、DMAP（0.14 g）および4-(ジメチルアミノ)ブタン酸塩酸塩（0.19 g）を添加してしばらく撹拌した。その後、1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩（0.24 g）を50℃で加えた。8時間撹拌後、反応混合物に酢酸エチルを加え、水で1回、飽和食塩水で1回洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾燥後、溶媒を減圧下留去した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（NH, 酢酸エチル/ヘキサン）で精製して標題化合物（0.31 g）を得た。
1H NMR (300 MHz, CDCl3) d ppm 0.85 - 0.94 (15 H, m), 1.20 - 1.37 (40 H, m), 1.55 - 1.66 (2 H, m), 1.66 - 1.86 (4 H, m), 1.97 - 2.08 (4 H, m), 2.21 (6 H, s), 2.22 - 2.39 (10 H, m), 4.08 - 4.17 (8 H, m), 5.35 (2 H, ddd, J = 5.6, 3.5, 2.1 Hz)
　上記の各合成例に示した方法、またはそれらに準じた方法のいずれかに従って、以下の表中の合成例２～７、９、１１～１３、１５～１７、１９及び２１が製造された。これらの合成例について、合成例１、８、１０、１４、１８及び２０ともに、化合物の名称、構造式、１H NMRケミカルシフト及び製造時に実施された質量数（表中、ＭＳで示す）を表３に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000021
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000022
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000023
　［調製例８］合成例８の化合物を用いたGFP mRNA含有LNPの調製
　脂質混合物（各カチオン性脂質:DPPC:Cholesterol:GM-020 = 60:10.6:28:1.4, モル比）を、90% EtOH、10% 水に溶解して、8.5 mg/mlの脂質溶液を得た。GFP mRNA（TriLink）は10mM 2-モルホリノエタンスルホン酸 (MES) 緩衝液pH4.0に溶解して0.22 mg/ mlの核酸溶液を得た。得られた脂質溶液および核酸溶液を、室温で、Nanoassemblr装置 (Precision Nanosystems)によって、流速比 3 ml/min : 6 ml/minで混合し、組成物を含む分散液を得た。得られた分散液は、Slyde-A-Lyzer (20kの分画分子量、Thermo scientific) を用いて水に対して室温で1時間、PBSに対して4℃で48時間透析を行った。続いて、0.2 μmのsyringe filter (Iwaki) を用いてろ過を行い、４℃に保存した。得られたGFP mRNA含有LNPの分析結果を下表に示した。以下、組成物中の脂質粒子の粒子径は、動的光散乱測定技術に基づく粒子径測定装置、Ｚｅｔａｓｉｚｅｒ　Ｎａｎｏ　ＺＳ（Ｍａｌｖｅｒｎ　Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ）を用い、自己相関関数のキュムラント解析によりＺ平均粒子径として算出した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000024
　［調製例１０］合成例１０の化合物を用いたGFP mRNA含有LNPの調製
　合成例８の化合物を用いる代わりに合成例１０の化合物を用いたこと以外は調製例８と同様にしてＬＮＰを調製した。得られたGFP mRNA含有LNPの分析結果を下表に示した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000025
　［調製例１１］合成例１１の化合物を用いたGFP mRNA含有LNPの調製
　合成例８の化合物を用いる代わりに合成例１１の化合物を用いたこと以外は調製例８と同様にしてＬＮＰを調製した。得られたGFP mRNA含有LNPの分析結果を下表に示した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000026
［実施例１］iPSC由来分化細胞(心筋細胞含有)へのLNP
transfection
　本実施例では、iPSCから分化誘導した細胞に、EGFP mRNAを含有したLNPを添加してその導入効率を確認した。
（1）心筋細胞系譜への誘導
　iMatrix-511(Nippi)でコートした10cmディッシュを用い、StemFit AK03N（AJINOMOTO)で維持培養したiPSC（Ff-I14s04、京都大学iPS細胞研究所から入手）をStempro Accutase(Thermo Fisher Scientific)で5分程度処理後、ピペッティングによりシングルセルへと解離した。遠心分離(1,000 rpm, 5 min)により培地を除去し、得られた細胞を、30mLバイオリアクター1本(ABLE)あたり1×107 cells播種して、StemFit AK03NからC液を除いた培地(AJINOMOTO AK03NのA液400 ｍLおよびB液100 ｍLの計500 ｍL)に1% L－グルタミン、トランスフェリン150 μg/mL、アスコルビン酸50 μg/mL(sigma）、モノチオグリセロール4×10-4 M、10 μM Rock inhibitor（Y-27632）、2 ng/mL BMP4（R&D）および0.5% Matrigel(Growth Factor Reduced)を添加し、37℃、5%酸素条件下にて培養(55 rpm、浮遊撹拌培養法)して、胚様体を形成させた(0日目）。翌日(１日目)、10 μg/mLのアクチビンAを45 μL(最終濃度15 ng/mL)、10 μg/mLのbFGFを15 μL(最終濃度5 ng/mL)および10 μg/mLのBMP4を54μL(最終濃度20 ng/mL)をバイオリアクター中へ添加し、37℃、5%酸素条件にてさらに2日間培養した。続いて(3日目)、得られた胚様体を50 mL遠沈管に回収して遠心分離に供した(200 g、1 min)後、培地を除去し、StemFit AK03NからC液を除いた培地(AJINOMOTO AK03NのA液400 ｍLおよびB液100 ｍLの計500 ｍL)に1% L－グルタミン、トランスフェリン150 μg/mL、アスコルビン酸50 μg/mL(sigma）、モノチオグリセロール4×10-4 M、10 ng/mL VEGF、1μM IWP-3、0.6 μM Dorsomorphinおよび5.4 μM SB431542を添加した培地中で、37℃、5%酸素条件下(55 rpm、浮遊撹拌培養法)で、3日間培養した。
　続いて(6日目)、バイオリアクターを静置して胚様体を沈降させ、培地の80～90%除去した後、1%Ｌ－グルタミン、トランスフェリン150 μg/mL、アスコルビン酸50 μg/mL(sigma）、モノチオグリセロール4×10-4 Mおよび5 ng/mL VEGFを添加したStemFit AK03NからC液を除いた培地(AJINOMOTO AK03NのA液400 ｍLおよびB液100 ｍLの計500 ｍL)をtotal 30mLになるよう添加し、10日目まで37℃、5%酸素条件下で培養し(55 rpm)、その後Ultra Low Attachment 10 cm dish (Corning)に移して、37℃、正常酸素条件下で培養した。6日目以降、2～3日に1度同じ条件の培地に交換した。
（2）RNAトランスフェクション
　分化誘導開始から15日目の胚様体を、100 μg/ml Liberase (ROCHE)で1時間処理し、D-PBS(-)溶液（Wako社）でwash後、TrypLE select (Thermo Fisher Scientific)で10分間処理した。その後、1%Ｌ－グルタミン、トランスフェリン150 μg/mL、アスコルビン酸50 μg/mL(sigma）、モノチオグリセロール4×10-4 Mおよび5 ng/mL VEGFを添加したStemFit AK03NからC液を除いた培地(AJINOMOTO AK03NのA液400 ｍLおよびB液100 ｍLの計500 ｍL)を等量加え、ピペッティングによりシングルセルへと解離した。遠心分離(1,000 rpm, 5 min)により培地を除去し、得られた細胞を1x106 cells/mlになるよう1%Ｌ－グルタミン、トランスフェリン150 μg/mL、アスコルビン酸50 μg/mL(sigma）、モノチオグリセロール4×10-4 Mおよび5 ng/mL VEGFを添加したStemFit AK03NからC液を除いた培地(AJINOMOTO AK03NのA液400 ｍLおよびB液100 ｍLの計500 ｍL)に懸濁し調整した。細胞懸濁液をフィブロネクチン(Sigma)コートした12 well plateに1 ml/wellで播種した。
　Lipofectamine（登録商標）MessengerMAX（Thermo Fisher Scientific）に添付されているプロトコルに従い、Opti-MEM培地（Thermo Fisher Scientific）にLipofectamine MessengerMAX reagent、GFP mRNA(TriLink)を混合し、上記12 well plateの細胞懸濁液に添加して混合し、インキュベーターにて、37℃、正常酸素条件下で1日培養した。
　前述したようにして、調製例８、調製例１０および調製例１１において、それぞれ合成例８、合成例１０、または合成例１１の化合物（カチオン性脂質）を用いて調製された、mRNA(TriLink)を含有するLNPについても同様に、上記12 well plateの細胞懸濁液に添加して混合し、インキュベーターにて、37℃、正常酸素条件下で1日培養した。
（3）mRNA導入細胞の解析
　トランスフェクション翌日、顕微鏡(Keyence, BZ-X710)にてGFP発現の観察を行った（図１)。続いて導入効率を解析するために、細胞をトリプシン/EDTA(Thermo Fisher Scientific)で3～4分処理し、50% FBS(Thermo Fisher Scientific)入りIMDM(Thermo Fisher Scientific)溶液を等量加えて、軽くピペッティングした後、15 mL遠沈管に回収して遠心分離した(1,000 rpm, 5 min)。上清を除去後、2% FBS(Thermo Fisher Scientific)入りD-PBS(-)溶液（Wako社）に懸濁し、フローサイトメトリー（BD, FACS Aria Fusion）を用いてGFP陽性細胞の割合を確認した（図２)。
　本発明による、特定の化合物（本発明の化合物）、構造脂質および核酸を含む組成物を使用するトランスフェクション方法により、心筋細胞に対して効率的に核酸を導入することが可能となる。そのような本発明のトランスフェクション方法は、例えば心筋細胞を含む細胞集団において心筋細胞を精製するための方法、換言すれば心筋細胞の純度が高い細胞集団を製造するための方法に応用することができる。これらの方法により得られる心筋細胞の純度の高い細胞集団は、例えば、心不全、虚血性心疾患、心筋梗塞、心筋症、心筋炎、肥大型心筋症、拡張相肥大型心筋症、拡張型心筋症などの心疾患の治療のために使用することができる。
　配列番号１６：配列番号１で表されるhas-miR-1に対応する、標準的な心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列である。
　配列番号１７：配列番号２で表されるhas-miR-22-5pに対応する、標準的な心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列である。
　配列番号１８：配列番号３で表されるhas-miR-133aに対応する、標準的な心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列である。
　配列番号１９：配列番号４で表されるhas-miR-133bに対応する、標準的な心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列である。
　配列番号２０：配列番号５で表されるhas-miR-143-3pに対応する、標準的な心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列である。
　配列番号２１：配列番号６で表されるhas-miR-145-3pに対応する、標準的な心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列である。
　配列番号２２：配列番号７で表されるhas-miR-208a-3pに対応する、標準的な心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列である。
　配列番号２３：配列番号８で表されるhas-miR-208b-3pに対応する、標準的な心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列である。
　配列番号２４：配列番号９で表されるhas-miR-490-3pに対応する、標準的な心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列である。
　配列番号２５：配列番号１０で表されるhas-miR-490-5pに対応する、標準的な心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列である。
　配列番号２６：配列番号１１で表されるhas-miR-499a-5pに対応する、標準的な心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列である。
　配列番号２７：配列番号１２で表されるhas-miR-1271-5pに対応する、標準的な心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列である。
　配列番号２８：配列番号１３で表されるhas-miR-3907に対応する、標準的な心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列である。
　配列番号２９：配列番号１４で表されるhas-miR-4324に対応する、標準的な心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列である。
　配列番号３０：配列番号１５で表されるhas-let-7e-5pに対応する、標準的な心筋細胞特異的ｍｉＲＮＡ認識配列である。

Claims (12)

  1. 　１）式（Ｉ）：
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
     ［式中、ｎ１は２～６の整数を、ｎ２は０～２の整数を、ｎ３は０～２の整数を、
    Ｌは、－Ｃ（Ｏ）Ｏ－または－ＮＨＣ（Ｏ）Ｏ－を、
    Ｒａは、直鎖状Ｃ５－１３アルキル基、直鎖状Ｃ１３－１７アルケニル基または直鎖状Ｃ１７アルカジエニル基を、
    Ｒｂは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
    Ｒｃは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
    Ｒｄは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
    Ｒｅは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
    Ｒｆは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を示す。］
    で表される化合物又はその塩、
    　２）構造脂質、および
    　３）核酸
    を含む組成物と、心筋細胞を含む細胞集団とを接触させる工程を含む、心筋細胞への核酸のトランスフェクション方法。
  2. 　前記核酸が、ｍＲＮＡである、請求項１記載の方法。
  3. 　前記ｍＲＮＡが、
    　（ｉ）心筋細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡによって特異的に認識される塩基配列、および機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含む、心筋細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡ、および／または
    　（ｉｉ）機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含むｍＲＮＡ
    を含む、請求項２記載の方法。
  4. 　前記ｍＲＮＡが、
    　（ｉ）心室筋細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡによって特異的に認識される塩基配列、および機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含む、心室筋細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡ、および／または
    　（ｉｉ）機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含むｍＲＮＡ
    を含む、請求項２記載の方法。
  5. 　前記（ｉ）および（ｉｉ）の機能的な遺伝子が、それぞれ独立して、薬剤耐性遺伝子、蛍光タンパク質をコードする遺伝子、アポトーシス誘導遺伝子および自殺遺伝子からなる群から選択される１またはそれ以上の遺伝子である、請求項３または４記載の方法。
  6. 　心筋細胞を含む細胞集団が、人工多能性幹細胞、胚性幹細胞またはその他の幹細胞から分化誘導された心筋細胞を含む細胞集団である、請求項１記載の方法。
  7. 　１）式（Ｉ）：
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000002
     ［式中、ｎ１は２～６の整数を、ｎ２は０～２の整数を、ｎ３は０～２の整数を、
    Ｌは、－Ｃ（Ｏ）Ｏ－または－ＮＨＣ（Ｏ）Ｏ－を、
    Ｒａは、直鎖状Ｃ５－１３アルキル基、直鎖状Ｃ１３－１７アルケニル基または直鎖状Ｃ１７アルカジエニル基を、
    Ｒｂは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
    Ｒｃは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
    Ｒｄは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
    Ｒｅは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
    Ｒｆは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を示す。］
    で表される化合物又はその塩、
    　２）構造脂質、および
    　３）ｍＲＮＡ
    を含む組成物と、心筋細胞を含む細胞集団とを接触させる工程を含む、心筋細胞の精製方法であって、ここで該ｍＲＮＡが、
    　（ｉ）心筋細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡによって特異的に認識される塩基配列、および機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含む、心筋細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡ、および／または
    　（ｉｉ）機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含むｍＲＮＡ
    を含む、心筋細胞の精製方法。
  8. 　１）式（Ｉ）：
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000003
     ［式中、ｎ１は２～６の整数を、ｎ２は０～２の整数を、ｎ３は０～２の整数を、
    Ｌは、－Ｃ（Ｏ）Ｏ－または－ＮＨＣ（Ｏ）Ｏ－を、
    Ｒａは、直鎖状Ｃ５－１３アルキル基、直鎖状Ｃ１３－１７アルケニル基または直鎖状Ｃ１７アルカジエニル基を、
    Ｒｂは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
    Ｒｃは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
    Ｒｄは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
    Ｒｅは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
    Ｒｆは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を示す。］
    で表される化合物又はその塩、
    　２）構造脂質、および
    　３）ｍＲＮＡ
    を含む組成物と、心室筋細胞を含む細胞集団とを接触させる工程を含む、心室筋細胞の精製方法であって、ここで該ｍＲＮＡが、
    　（ｉ）心室筋細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡによって特異的に認識される塩基配列、および機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含む、心室筋細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡ、および／または
    　（ｉｉ）機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含むｍＲＮＡ
    を含む、心室筋細胞の精製方法。
  9. 　１）式（Ｉ）：
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000004
     ［式中、ｎ１は２～６の整数を、ｎ２は０～２の整数を、ｎ３は０～２の整数を、
    Ｌは、－Ｃ（Ｏ）Ｏ－または－ＮＨＣ（Ｏ）Ｏ－を、
    Ｒａは、直鎖状Ｃ５－１３アルキル基、直鎖状Ｃ１３－１７アルケニル基または直鎖状Ｃ１７アルカジエニル基を、
    Ｒｂは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
    Ｒｃは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
    Ｒｄは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
    Ｒｅは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
    Ｒｆは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を示す。］
    で表される化合物又はその塩、
    　２）構造脂質、および
    　３）ｍＲＮＡ
    を含む組成物と、心筋細胞を含む細胞集団とを接触させる工程を含む、心筋細胞の製造方法であって、ここで該ｍＲＮＡが、
    　（ｉ）心筋細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡによって特異的に認識される塩基配列、および機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含む、心筋細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡ、および／または
    　（ｉｉ）機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含むｍＲＮＡ
    を含む、心筋細胞の製造方法。
  10. 　１）式（Ｉ）：
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000005
     ［式中、ｎ１は２～６の整数を、ｎ２は０～２の整数を、ｎ３は０～２の整数を、
    Ｌは、－Ｃ（Ｏ）Ｏ－または－ＮＨＣ（Ｏ）Ｏ－を、
    Ｒａは、直鎖状Ｃ５－１３アルキル基、直鎖状Ｃ１３－１７アルケニル基または直鎖状Ｃ１７アルカジエニル基を、
    Ｒｂは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
    Ｒｃは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
    Ｒｄは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
    Ｒｅは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
    Ｒｆは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を示す。］
    で表される化合物又はその塩、
    　２）構造脂質、および
    　３）ｍＲＮＡ
    を含む組成物と、心室筋細胞を含む細胞集団とを接触させる工程を含む、心室筋細胞の製造方法であって、ここで該ｍＲＮＡが、
    　（ｉ）心室筋細胞で特異的に発現しているｍｉＲＮＡによって特異的に認識される塩基配列、および機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含む、心室筋細胞特異的なｍｉＲＮＡ応答性ｍＲＮＡ、および／または
    　（ｉｉ）機能的な遺伝子をコードする塩基配列を含むｍＲＮＡ
    を含む、心室筋細胞の製造方法。
  11. 　１）式（Ｉ）：
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000006
     ［式中、ｎ１は２～６の整数を、ｎ２は０～２の整数を、ｎ３は０～２の整数を、
    Ｌは、－Ｃ（Ｏ）Ｏ－または－ＮＨＣ（Ｏ）Ｏ－を、
    Ｒａは、直鎖状Ｃ５－１３アルキル基、直鎖状Ｃ１３－１７アルケニル基または直鎖状Ｃ１７アルカジエニル基を、
    Ｒｂは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
    Ｒｃは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
    Ｒｄは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
    Ｒｅは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
    Ｒｆは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を示す。］
    で表される化合物又はその塩、
    　２）構造脂質、および
    　３）核酸
    を含む、心筋細胞への核酸のトランスフェクション用組成物。
  12. 　１）式（Ｉ）：
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000007
     ［式中、ｎ１は２～６の整数を、ｎ２は０～２の整数を、ｎ３は０～２の整数を、
    Ｌは、－Ｃ（Ｏ）Ｏ－または－ＮＨＣ（Ｏ）Ｏ－を、
    Ｒａは、直鎖状Ｃ５－１３アルキル基、直鎖状Ｃ１３－１７アルケニル基または直鎖状Ｃ１７アルカジエニル基を、
    Ｒｂは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
    Ｒｃは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
    Ｒｄは、水素原子または直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
    Ｒｅは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を、
    Ｒｆは、直鎖状Ｃ２－９アルキル基を示す。］
    で表される化合物又はその塩、
    　２）構造脂質、および
    　３）核酸
    を含む、心筋細胞への核酸のトランスフェクション用キット。
PCT/JP2019/031418 2018-08-10 2019-08-08 カチオン性脂質を用いた心筋細胞へのトランスフェクション方法 WO2020032185A1 (ja)

Priority Applications (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US17/267,602 US20220145329A1 (en) 2018-08-10 2019-08-08 Method for transfection into cardiomyocytes using cationic lipid
JP2020535883A JP7436990B2 (ja) 2018-08-10 2019-08-08 カチオン性脂質を用いた心筋細胞へのトランスフェクション方法
CN201980052837.1A CN112639111B (zh) 2018-08-10 2019-08-08 使用阳离子性脂质的转染心肌细胞的方法
EP19846186.5A EP3842538A4 (en) 2018-08-10 2019-08-08 METHOD OF TRANSFECTION INTO CARDIOMYOCYTES USING CATIONIC LIPID

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2018151637 2018-08-10
JP2018-151637 2018-08-10

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2020032185A1 true WO2020032185A1 (ja) 2020-02-13

Family

ID=69414818

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/JP2019/031418 WO2020032185A1 (ja) 2018-08-10 2019-08-08 カチオン性脂質を用いた心筋細胞へのトランスフェクション方法

Country Status (5)

Country Link
US (1) US20220145329A1 (ja)
EP (1) EP3842538A4 (ja)
JP (1) JP7436990B2 (ja)
CN (1) CN112639111B (ja)
WO (1) WO2020032185A1 (ja)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AU2022421708A1 (en) * 2021-12-20 2024-06-20 Beam Therapeutics Inc. Nanomaterials comprising tetravalent lipid compounds
CN116553595B (zh) * 2023-07-10 2023-09-05 北京奇点势能科技有限公司 一种钐-氧/羟基团簇化合物及其制备方法和应用

Citations (18)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2003102150A2 (en) * 2002-05-31 2003-12-11 Genteric, Inc. Multi-functional polyamines for delivery of biologically-active polynucleotides
WO2005033298A1 (ja) 2003-10-03 2005-04-14 Keiichi Fukuda 幹細胞から心筋細胞を分化誘導する方法
WO2007002136A2 (en) 2005-06-22 2007-01-04 Geron Corporation Differentiation of primate pluripotent stem cells to cardiomyocyte-lineage cells
WO2007069666A1 (ja) 2005-12-13 2007-06-21 Kyoto University 核初期化因子
WO2007126077A1 (ja) 2006-04-28 2007-11-08 Asubio Pharma Co., Ltd. 多能性幹細胞から心筋細胞を分化誘導する方法
US20080236610A1 (en) 2004-04-10 2008-10-02 Holger Bartels Hair Rollers
WO2008118220A2 (en) 2006-11-28 2008-10-02 Veritainer Corporation Radiation detection unit for mounting a radiation sensor to a container crane
WO2008124133A1 (en) 2007-04-07 2008-10-16 Whitehead Institute For Biomedical Research Reprogramming of somatic cells
WO2008151058A2 (en) 2007-05-30 2008-12-11 The General Hospital Corporation Methods of generating pluripotent cells from somatic cells
JP2008307007A (ja) 2007-06-15 2008-12-25 Bayer Schering Pharma Ag 出生後のヒト組織由来未分化幹細胞から誘導したヒト多能性幹細胞
US20090047263A1 (en) 2005-12-13 2009-02-19 Kyoto University Nuclear reprogramming factor and induced pluripotent stem cells
WO2009118928A1 (en) 2008-03-26 2009-10-01 Kyoto University Efficient production and use of highly cardiogenic progenitors and cardiomyocytes from embryonic and induced pluripotent stem cells
JP2010158206A (ja) 2009-01-08 2010-07-22 National Institute Of Advanced Industrial Science & Technology ヒト心筋前駆細胞の選別方法
WO2015141827A1 (ja) 2014-03-20 2015-09-24 国立大学法人京都大学 心筋細胞の選別方法
WO2016021683A1 (ja) * 2014-08-07 2016-02-11 武田薬品工業株式会社 カチオン性脂質
WO2018062413A1 (ja) * 2016-09-28 2018-04-05 協和発酵キリン株式会社 核酸含有脂質ナノ粒子
WO2019131839A1 (ja) * 2017-12-28 2019-07-04 武田薬品工業株式会社 カチオン性脂質
WO2019131829A1 (ja) * 2017-12-28 2019-07-04 国立大学法人京都大学 標的遺伝子改変用組成物

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5981501A (en) 1995-06-07 1999-11-09 Inex Pharmaceuticals Corp. Methods for encapsulating plasmids in lipid bilayers
EP2823809B1 (en) 2002-06-28 2016-11-02 Protiva Biotherapeutics Inc. Method and apparatus for producing liposomes
KR101198715B1 (ko) 2010-05-14 2012-11-13 한국생명공학연구원 핵산 및 친수성 음이온 화합물의 고효율 포획을 위한 비대칭 리포솜 및 이의 제조방법
WO2012138453A1 (en) * 2011-04-03 2012-10-11 The General Hospital Corporation Efficient protein expression in vivo using modified rna (mod-rna)
CA2856737C (en) 2011-12-07 2023-09-26 Alnylam Pharmaceuticals, Inc. Branched alkyl and cycloalkyl terminated biodegradable lipids for the delivery of active agents
CN112533893B (zh) * 2018-08-10 2023-12-22 武田药品工业株式会社 阳离子性脂质

Patent Citations (22)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2003102150A2 (en) * 2002-05-31 2003-12-11 Genteric, Inc. Multi-functional polyamines for delivery of biologically-active polynucleotides
WO2005033298A1 (ja) 2003-10-03 2005-04-14 Keiichi Fukuda 幹細胞から心筋細胞を分化誘導する方法
US20080236610A1 (en) 2004-04-10 2008-10-02 Holger Bartels Hair Rollers
WO2007002136A2 (en) 2005-06-22 2007-01-04 Geron Corporation Differentiation of primate pluripotent stem cells to cardiomyocyte-lineage cells
US20090047263A1 (en) 2005-12-13 2009-02-19 Kyoto University Nuclear reprogramming factor and induced pluripotent stem cells
WO2007069666A1 (ja) 2005-12-13 2007-06-21 Kyoto University 核初期化因子
JP2008283972A (ja) 2005-12-13 2008-11-27 Kyoto Univ 誘導多能性幹細胞の製造方法
WO2007126077A1 (ja) 2006-04-28 2007-11-08 Asubio Pharma Co., Ltd. 多能性幹細胞から心筋細胞を分化誘導する方法
WO2008118220A2 (en) 2006-11-28 2008-10-02 Veritainer Corporation Radiation detection unit for mounting a radiation sensor to a container crane
WO2008124133A1 (en) 2007-04-07 2008-10-16 Whitehead Institute For Biomedical Research Reprogramming of somatic cells
WO2008151058A2 (en) 2007-05-30 2008-12-11 The General Hospital Corporation Methods of generating pluripotent cells from somatic cells
JP2008307007A (ja) 2007-06-15 2008-12-25 Bayer Schering Pharma Ag 出生後のヒト組織由来未分化幹細胞から誘導したヒト多能性幹細胞
WO2009006997A1 (en) 2007-06-15 2009-01-15 Izumi Bio, Inc. Human pluripotent stem cells and their medical use
WO2009007852A2 (en) 2007-06-15 2009-01-15 Izumi Bio, Inc Multipotent/pluripotent cells and methods
WO2009006930A1 (en) 2007-06-15 2009-01-15 Izumi Bio, Inc. Human pluripotent stem cells induced from undifferentiated stem cells derived from a human postnatal tissue
WO2009118928A1 (en) 2008-03-26 2009-10-01 Kyoto University Efficient production and use of highly cardiogenic progenitors and cardiomyocytes from embryonic and induced pluripotent stem cells
JP2010158206A (ja) 2009-01-08 2010-07-22 National Institute Of Advanced Industrial Science & Technology ヒト心筋前駆細胞の選別方法
WO2015141827A1 (ja) 2014-03-20 2015-09-24 国立大学法人京都大学 心筋細胞の選別方法
WO2016021683A1 (ja) * 2014-08-07 2016-02-11 武田薬品工業株式会社 カチオン性脂質
WO2018062413A1 (ja) * 2016-09-28 2018-04-05 協和発酵キリン株式会社 核酸含有脂質ナノ粒子
WO2019131839A1 (ja) * 2017-12-28 2019-07-04 武田薬品工業株式会社 カチオン性脂質
WO2019131829A1 (ja) * 2017-12-28 2019-07-04 国立大学法人京都大学 標的遺伝子改変用組成物

Non-Patent Citations (22)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
"RNAi Method and Antisense Method", 2005, KODANSHA LTD.
ACC. CHEM. RES., vol. 32, 1999, pages 624
CELL ENGINEERING, vol. 16, 1997, pages 1463 - 1473
HUANGFU D.MELTON, DA. ET AL., NATURE BIOTECHNOLOGY, vol. 26, no. 7, 2008, pages 795 - 797
J. AM. CHEM. SOC., vol. 122, 2000, pages 6900
J. AM. CHEM. SOC., vol. 123, 2001, pages 4653
KIM JB.SCHOLER HR. ET AL., NATURE, vol. 454, 2008, pages 646 - 650
KIYOSHI TOMIOKA: "Modern Organic Synthesis in the Laboratory: A Collection of Standard Experimental Procedures", vol. I-VII, 1989, KAGAKU-DOJIN PUBLISHING COMPANY, INC.
L. F. TIETZETH. EICHER: "Shin Jikken Kagaku Koza (in Japanese, translated title: New Experimental Chemistry", vol. 14-15, NANKODO CO., LTD., article "Reaktionen und Synthesen im organisch-chemischen Praktikum und Forschungslaboratorium) Revised"
LAFLAMME MAMURRY CE, NATURE 2011, REVIEW, 2011
NUCLEIC ACID RESEARCH, vol. 32, 2004, pages e175
OKITA K ET AL., NAT. METHODS, vol. 8, no. 5, May 2011 (2011-05-01), pages 409 - 12
OKITA K ET AL., STEM CELLS, vol. 31, no. 3, pages 458 - 66
OKITA, K.ICHISAKA, T.YAMANAKA, S., NATURE, vol. 451, 2007, pages 141 - 146
P.J. KOCIENSKI: "Protecting Groups", 2004, THIEME MEDICAL PUBLISHERS
See also references of EP3842538A4
SHI Y.DING S. ET AL., CELL STEM CELL, vol. 3, no. 5, 2008, pages 568 - 574
TAKAHASHI KYAMANAKA S. ET AL., CELL, vol. 131, 2007, pages 861 - 872
TAKAHASHI KYAMANAKA S., CELL, vol. 126, 2006, pages 663 - 676
THEODORA W. GREENEPETER G. M. WUTS: "Protective Groups in Organic Synthesis", 2007, WILEY-INTERSCIENCE
YAN P ET AL., BIOCHEM BIOPHYS RES COMMUN., vol. 379, 2009, pages 115 - 20
YU J.THOMSON JA. ET AL., SCIENCE, vol. 318, 2007, pages 1917 - 1920

Also Published As

Publication number Publication date
EP3842538A1 (en) 2021-06-30
TW202035697A (zh) 2020-10-01
US20220145329A1 (en) 2022-05-12
CN112639111A (zh) 2021-04-09
JPWO2020032185A1 (ja) 2021-08-26
JP7436990B2 (ja) 2024-02-22
CN112639111B (zh) 2023-07-21
EP3842538A4 (en) 2022-06-08

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR100860087B1 (ko) 인간 배아줄기세포에서 분리된 신규 ｍｉＲＮＡ
KR101774206B1 (ko) 유도된 다능성 줄기 세포의 효율적인 확립 방법
JP2018075017A (ja) 神経幹細胞および運動ニューロンの生成
JP2018529340A (ja) 核酸のエキソソームパッケージング
JP6339943B2 (ja) ３次元培養による細胞の再プログラミング
WO2011102444A1 (ja) 誘導多能性幹細胞の製造方法
JPWO2020032184A1 (ja) カチオン性脂質
JP7436990B2 (ja) カチオン性脂質を用いた心筋細胞へのトランスフェクション方法
WO2020080475A1 (ja) Ｔ細胞の活性化／増殖方法
ITRM20110685A1 (it) Microrna per la rigenerazione cardiaca attraverso l induzione della proliferazione dei miociti cardiaci
WO2016010119A1 (ja) 分化細胞の抽出方法
US20230287408A1 (en) Nucleic acid constructs for delivering polynucleotides into exosomes
TW201938202A (zh) 標的基因改變用組成物
Worsdorfer et al. Roadmap to cellular reprogramming–manipulating transcriptional networks with DNA, RNA, proteins and small molecules
TWI851592B (zh) 使用陽離子性脂質對心肌細胞進行轉染的方法
JP2017060498A (ja) ３次元培養による細胞の再プログラミング
WO2018203553A1 (ja) 分化細胞の品質改善方法
JP2016532445A (ja) 組換えタンパク質の生産のための哺乳動物生産細胞の生成のための手段及び方法
CN112601817A (zh) 抑制微小rna的非规范性靶标的诱导rna干扰的核酸及其用途
JP7432929B2 (ja) マイクロｒｎａの非正規標的を抑制するｒｎａ干渉誘導核酸およびその用途
KR102193864B1 (ko) 마이크로rna의 비정규 표적을 억제하는 rna 간섭 유도 핵산 및 그 용도
KR102193869B1 (ko) 마이크로rna의 비정규 표적을 억제하는 rna 간섭 유도 핵산 및 그 용도
Jung et al. Pluripotency and Early Cell Fate Decisions are Orchestrated by microRNAs
KR20200137636A (ko) 마이크로rna의 비정규 표적을 억제하는 rna 간섭 유도 핵산 및 그 용도
Chang et al. MicroRNAs in Development, Stem Cell Differentiation, and Regenerative Medicine

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 19846186

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2020535883

Country of ref document: JP

Kind code of ref document: A

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2019846186

Country of ref document: EP

Effective date: 20210310