WO2015137530A1 - 면역글로불린의 정제방법 - Google Patents

면역글로불린의 정제방법 Download PDF

Info

Publication number
WO2015137530A1
WO2015137530A1 PCT/KR2014/002020 KR2014002020W WO2015137530A1 WO 2015137530 A1 WO2015137530 A1 WO 2015137530A1 KR 2014002020 W KR2014002020 W KR 2014002020W WO 2015137530 A1 WO2015137530 A1 WO 2015137530A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
immunoglobulin
exchange chromatography
cation exchange
fraction
concentration
Prior art date
Application number
PCT/KR2014/002020
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
손기환
강용
박동환
최성민
서강윤
김기용
Original Assignee
주식회사 녹십자홀딩스
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 주식회사 녹십자홀딩스 filed Critical 주식회사 녹십자홀딩스
Priority to PCT/KR2014/002020 priority Critical patent/WO2015137530A1/ko
Priority to CA2941230A priority patent/CA2941230C/en
Priority to KR1020167024070A priority patent/KR101917196B1/ko
Priority to EP14885531.5A priority patent/EP3118209B1/en
Priority to CN201480078651.0A priority patent/CN106459140B/zh
Priority to ES14885531T priority patent/ES2785375T3/es
Priority to US15/123,869 priority patent/US10287315B2/en
Publication of WO2015137530A1 publication Critical patent/WO2015137530A1/ko

Links

Images

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K1/00—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/14—Extraction; Separation; Purification
    • C07K1/36—Extraction; Separation; Purification by a combination of two or more processes of different types
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K1/00—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/107—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length by chemical modification of precursor peptides
    • C07K1/113—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length by chemical modification of precursor peptides without change of the primary structure
    • C07K1/1136—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length by chemical modification of precursor peptides without change of the primary structure by reversible modification of the secondary, tertiary or quarternary structure, e.g. using denaturating or stabilising agents
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K1/00—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/14—Extraction; Separation; Purification
    • C07K1/16—Extraction; Separation; Purification by chromatography
    • C07K1/18—Ion-exchange chromatography
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K1/00—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/14—Extraction; Separation; Purification
    • C07K1/30—Extraction; Separation; Purification by precipitation
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K1/00—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/14—Extraction; Separation; Purification
    • C07K1/34—Extraction; Separation; Purification by filtration, ultrafiltration or reverse osmosis
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K16/00—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/06—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies from serum
    • C07K16/065—Purification, fragmentation

Definitions

  • the present invention relates to a method for purifying immunoglobulins, and more particularly, to dialysis and concentrate the plasma protein fraction II paste containing immunoglobulins, and then to form a thrombus generating material through a ceramic cation exchange resin purification technique.
  • the present invention relates to a method for purifying immunoglobulins, which is characterized in that the polymer content is kept low by removing and maintaining a constant salt concentration during elution.
  • Immunoglobulins are plasma proteins that contain antibodies against various viruses and bacteria, and are used to prevent and treat diseases by administering them to people with innate antibody deficiencies or those who require artificial replenishment of antibodies due to viral or bacterial diseases. It is a medicine.
  • immunoglobulin G immunoglobulin G
  • the content is low, 4) the antibody value of globulin by the protease at the injection site is reduced, and 5) the maximum blood concentration reaching time takes 24 hours or more.
  • Intravenous injection of immunoglobulin has been attempted to solve the problem of intramuscular injection.
  • intravenous administration of immunoglobulin preparations results in anaphylactic reactions due to aggregates with anticomplementary activity. Severe and a variety of immediate side effects from shortness of breath to circulatory shock. The above symptoms were mainly seen in patients with immunoglobulin deficiency, and especially side effects of severe hypersensitivity symptoms were observed in patients with antibodies to IgA.
  • intravenous injection is not possible due to the above problem, development of intravenous preparations has been required, and methods have been developed that can remove such aggregates and / or prevent aggregate formation during the manufacturing process. Treated with proteolytic enzymes such as pepsin, papain, plasmin, or chemicals such as beta-propiolactone and altered the structure to prevent or destroy the formation of aggregates. Intravenous injections were made possible by lowering anticomplement activity.
  • proteolytic enzymes such as pepsin, papain, plasmin, or chemicals such as beta-propiolactone
  • IVIG Intravenous Immunoglobulin
  • pepsin on the starting material (conn fraction II) to remove immunoglobulin aggregates.
  • the process does not include a column chromatography step, and the manufactured product is lyophilized to remain stable for a suitable period of time, and used by dissolving immediately before use.
  • some manufacturers' IVIG products have been shown to cause infections of viruses such as viral hepatitis C, which further includes one or more known virus inactivation and / or removal steps in the manufacturing process. Thereafter, a second generation IVIG with low anticomplement activity and higher stability was initiated in the mid 80s, which was purified through several chromatographic steps.
  • Intravenous injections resolved the limitations of intramuscular immunoglobulin dosage, pain relief at the injection site, and reduced proglobin antibodies by protease. It became.
  • the semen-injected immunoglobulin changes the structure and there is almost no inherent IgG with antibody ability, and thus the complement binding ability is reduced or the blood half-life is short as 4-12 days, which is satisfactory for the prevention and treatment of the disease.
  • the first and second generation IVIG prepared in lyophilized powder form, requires further dissolution, and because of the slow dissolution rate, liquid IVIG products have been developed and improved to obtain more stable and pure IVIG products. A process was required.
  • the method (3rd generation IVIG) introduced in German Patent No. 2,604,759 and US Patent No. 4.124,576 has a unique inherent ability to antibody using a nonionic surfactant such as polyethylene glycol, unlike gamma globulin for intravenous injection.
  • a nonionic surfactant such as polyethylene glycol
  • the development of a method of obtaining IgG of the present invention has the ability of complement binding and has a long half-life in blood concentration, which is effective in preventing and treating diseases.However, these preparations prepared by polyethylene glycol treatment also have anti-complementary aggregates. It is difficult to completely remove the (anti-complement value is about 0.02 units / mg) there is a problem that the occurrence of side effects remain.
  • Korean Patent Publication No. 1983-0007083 also prepared an immunoglobulin for intravenous injection through polyethylene glycol treatment from cohn fraction II or fraction II + III isolated from human plasma, but the process was complicated and the yield was low. have.
  • the present inventors endeavored to solve the above-described problems.
  • the present inventors concentrated the dialysis concentrate of the fraction II paste separated from plasma, and then purified using anion exchange chromatography and cation exchange chromatography, and cation exchange chromatography and By adjusting the salt concentration during elution, it was confirmed that the thrombus generating substance present in the plasma was efficiently removed and the stability of the product was improved and the present invention was completed.
  • An object of the present invention is to provide a method for purifying immunoglobulins that can efficiently remove impurities and thrombogenic substances in order to produce stable and high purity immunoglobulins.
  • Figure 1 is a schematic diagram showing the manufacturing process of the intravenous immunoglobulin according to the present invention.
  • Figure 2 is the result of measuring the purity (Thrombin / IgG) of the production stage immunoglobulin.
  • Figure 3 is the result of measuring the concentration of FXI (Human Coagulation Factor XI) contained in the filtrate or precipitate for each step by SDS-PAGE.
  • FXI Human Coagulation Factor XI
  • Immunoglobulin-containing plasma protein refers to cryoprecipitate-free plasma, various cones, from which various plasma proteins such as Factor IX and antithrombin are removed from human plasma or human placenta derived plasma. cohn) fractions and ammonium sulfate or PEG (Polson et al., Biochem Biophys Acta, 82: 463, 1964); Polson and Ruiz-Bravo, Vox Sang, 23: 107. Fractions obtained through precipitation by 1972).
  • the plasma protein fraction is corn fraction II, but corn fractions I, II and III or corn fraction II + III can likewise be used.
  • fraction II paste obtained from human plasma was used, and was prepared according to a conventional corn plasma fractionation method. Subsequent purification processes were performed to remove various lipoproteins, fibrinogen, ⁇ -globulin, ⁇ -globulin and various coagulation factors contained in the Fraction II paste.
  • human plasma is a nucleic acid amplification test (NAT; Nucleic Acid Amplification Test for human immunodeficiency virus (HIV), hepatitis C virus (HCV), hepatitis B virus (HBV) and parvovirus B19 (parvovirus B19)
  • NAT nucleic acid amplification test
  • HCV human immunodeficiency virus
  • HCV hepatitis C virus
  • HBV hepatitis B virus
  • parvovirus B19 parvovirus B19
  • red cross-derived plasma approved by the FDA through a biotest including serological tests. Plasma stored at -20 ° C or lower was stored in a jacketed vessel at 1 to 6 ° C. Reaction was dissolved for 72 hours.
  • the plasma is melted, and thus cryoprecipitate containing fibrinogen and coagulation factors is generated.
  • the cryoprecipitation plasma is removed through centrifugation, and the frozen deficiency in which the cryopreserved plasma is removed. Cryopoor plasma was recovered. Thereafter, the precipitation and filtration processes were repeated to obtain a fraction II paste.
  • Filtration process to separate the plasma containing immunoglobulin was added by mixing with a filter aid, and then separated from the supernatant and sediment using a filter press, the filter aid is Celite (STD), Harbolite (Expanded perlite product), etc. Was used.
  • the dissolution of the plasma protein fraction II paste of step (a) is characterized in that it is carried out by adding a sodium chloride solution to 2 to 10 times the volume of the plasma protein fraction.
  • the plasma protein fraction is preferably suspended (dissolved) in water and / or buffer at substantially non-denaturing temperatures and pH.
  • substantially unmodified means that the above-mentioned conditions do not cause a substantially irreversible loss of functional activity of immunoglobulin molecules, such as loss of antigen binding activity and / or biological Fc-action.
  • the plasma protein fraction is dissolved in water acidified with one or more undenatured buffers in a volume of 2 to 5, preferably 3 to 4 times the volume of the plasma protein fraction, and the pH of the immunoglobulin-containing suspension is In order to ensure an optimal solubility of, it is preferably kept below pH 6.0, more preferably from 4.0 to 6.0, most preferably from 4.9 to 5.1.
  • Any acid known in the art may be used as the acid buffer, but preferably sodium phosphate, sodium acetate, sodium chloride, acetic acid, hydrochloric acid, water (distilled water), and the like, and sodium chloride solution is used in the present invention.
  • Immunoglobulin suspensions are maintained at low temperatures to prevent protein denaturation and minimize protease activity, and the immunoglobulin suspensions and water or buffers added are preferably 0-12 ° C., more preferably 0-7 ° C., most preferred. Preferably in the range of 1 to 4 ° C.
  • the filtration of step (a) is a step for obtaining a fraction II solution, characterized in that the filtration (clarifying filtration), characterized in that performed by adjusting the pH to 4.5 to 5.5. .
  • the pH is 4.9 to 5.1.
  • the fraction II paste is transferred to a jacketed vessel of 10 ° C. or lower, and dissolved by adding 0.6% sodium chloride solution of 4 times the fraction II paste volume, and then the pH is dissolved in the dissolved solution. 1 M acetic acid was added to 5.0 ⁇ 1. The solution was then clarified filtration using a deep filtration cartridge to yield a fraction II solution.
  • the dialysis and / or concentration of the step (b) is characterized in that using the ultrafiltration / diafiltration (Ultrafiltration / Diafiltration; UF / DF) system, the osmotic pressure of the dialysis concentrate is carried out to 10mOsmol / kg or less Then, the pH is adjusted to 5.5 to 6.5, preferably adjusted to 5.9 to 6.1.
  • Ultrafiltration / Diafiltration Ultrafiltration / Diafiltration; UF / DF
  • Diafiltration is a method of dialysis and ultrafiltration that removes some solutes from a fluid containing two or more solutes of different solvents and molecular sizes. And, compared to the general dialysis method has the advantage of saving time and money.
  • the fraction II solution was filtered to 10 mOsmol / kg or less using an ultrafiltration / diafiltration (UF / DF) system, and 1M sodium acetate (5.0) was added to the filtrate. It was added to ⁇ 1.0 mM and the pH was adjusted to 6.0 ⁇ 0.1 to obtain an aqueous solution containing dialysis and / or concentrated immunoglobulin.
  • UF / DF ultrafiltration / diafiltration
  • the anion exchange chromatography of step (b) is carried out under the conditions of pH 5.5 to 6.5, flow rate of 95 to 145cm / hr, loading the fraction not attached to the anion exchange chromatography 1.5 to 2.0 loading volume (Loading Volume; LV).
  • the anion exchange resin used in the anion exchange chromatography step may be substituted with diethylaminoethyl (DEAE) or quaternary ammonium groups, but is not limited thereto.
  • DEAE diethylaminoethyl
  • quaternary ammonium groups but is not limited thereto.
  • either one of a group having a strong basic quaternary ammonium group or an anion exchange resin having a weakly basic diethylaminoethyl (DEAE) group is used.
  • strong basic anion exchange groups include Q Sepharose Fast Flow, Q Sepharose High Performance, Resource Q, Source 15Q, Source 30Q, Mono Q, Mini Q, Capto Q, Capto Q ImpRes, Q HyperCel, Q Cermic HyperD F , Nuvia Q, UNOsphere Q, Macro-Prep High Q, Macro-Prep 25 Q, Fractogel EMD TMAE (S), Fractogel EMD TMAE Hicap (M), Fractogel EMD TMAE (M), Eshmono Q, Toyopearl QAE-550C, Toyopearl SuperQ-650C, Toyopearl GigaCap Q-650M, Toyopearl Q-600C AR, Toyopearl SuperQ-650M, Toyopearl SuperQ-650S, TSKgel SuperQ-5PW 30, TSKgel SuperQ-5PW 20, TSKgel SuperQ-5PW etc.
  • the present invention is not limited thereto, and an anion exchange
  • the appropriate volume of resin used in anion exchange chromatography is reflected by the column dimensions, ie the diameter of the column and the height of the resin, and depends, for example, on the amount of immunoglobulin solution in the solution applied and the binding performance of the resin used.
  • the ion exchange resin Prior to ion exchange chromatography, the ion exchange resin is preferably equilibrated with a buffer so that the resin can bind to its counter ions.
  • DEAE Sepharose gel was used as the anion exchange resin, and as column buffer, an equalization buffer and wash buffer known in the art such as sodium phosphate buffer, citric acid buffer and acetic acid buffer. And elution buffers.
  • the step (c) is to inactivate a virus such as a lipid enveloped virus in a solution containing an immunoglobulin and, after inactivation, to remove a substance used for inactivation.
  • virus-inactivating agents preferably solvents and / or detergents, most preferably solvent-cleaner mixtures, can be used.
  • step (c) potential lipid enveloped viruses such as HIV1 and HIV2, hepatitis type C and non ABC, HTLV1 and 2, herpes virus group, CMV and Epstein Barr virus can be inactivated, thereby enhancing the safety of the final product.
  • HIV1 and HIV2 hepatitis type C and non ABC, HTLV1 and 2, herpes virus group, CMV and Epstein Barr virus
  • CMV and Epstein Barr virus can be inactivated, thereby enhancing the safety of the final product. have.
  • Solvents and cleaning agents that can be used in step (c) can be used without limitation as long as they have properties that can inactivate viruses, particularly lipid enveloped viruses.
  • the detergent may be selected from the group consisting of nonionic and ionic detergents, preferably substantially unmodified.
  • a nonionic detergent is preferred, and the solvent is most preferably tri-n-butyl phosphate (TNBP) as disclosed in US Pat. No. 4,764,369, but It is not limited.
  • TNBP tri-n-butyl phosphate
  • virus-inactivating agents for carrying out the present invention are, but are not limited to, mixtures of one or more selected from TNBP and polysorbate 80 (Tween 80), Triton X-100 and Triton X-45. .
  • Preferred solvent / detergent mixtures are added such that the concentration of TNBP in the immunoglobulin containing solution is within 0.2 to 0.6% by weight, preferably 0.24 to 0.36% by weight, and the concentration of Tween 80 is within the range of 0.8 to 1.5% by weight, preferably Add to the concentration of 0.8 to 1.2% by weight.
  • the virus-inactivation step is performed under conditions that inactivate the lipid envelope virus, resulting in an immunoglobulin containing solution that is substantially free of virus risk.
  • the reaction temperature in the above conditions is preferably 4 to 30 °C, more preferably 19 to 28 °C, most preferably 24 to 26 °C, the reaction time is preferably 1 to 24 hours, more preferably 4 to 12 hours, most preferably about 8 hours, sufficient to ensure virus inactivation.
  • the cation exchange chromatography of step (c) is characterized in that the pH is carried out under conditions of 4.5 to 5.5, flow rate 110 to 130cm / hr, preferably the pH is adjusted to 4.9 to 5.1 do.
  • the immunoglobulin loaded into the cation exchange resin is 90 to 130 mg per ml cation exchange resin, more preferably 95 to 105 mg per ml resin. Immunoglobulins are adsorbed and then washed with equilibration buffer.
  • the equilibration buffer used for washing in the above conditions can be washed using a volume of at least 3 times, preferably at least 5 times the volume of the column, and after washing the immunoglobulin with at least 8 times the elution buffer of the column volume. Elution.
  • the cation exchange resin may be Sephadex, Sepharose, HyperCell, or Source, but is not limited thereto, and cation exchange resins known in the art may be used. .
  • a ceramic series CM hyper D gel was used as the cation exchange resin, and as the column buffer, an equalization buffer known in the art such as sodium phosphate buffer, citric acid buffer, acetic acid buffer, Washing buffer and elution buffer were used.
  • Elution of the immunoglobulin from the cation exchange resin is performed with a substantially non-denaturing buffer with sufficient pH and ionic strength to cause efficient elution of the immunoglobulin to recover the immunoglobulin containing eluate.
  • Efficient elution means that at least 75%, at least 80%, and the like, such as at least 85%, of the immunoglobulin solution loaded on the cation exchange resin are eluted from the cation exchange resin.
  • the cation exchange chromatography of step (c) may be carried out at a salt concentration of the elution buffer high enough to replace the immunoglobulin in the cation exchange resin, salt concentration of 400 to 600 mM, preferably It can be carried out at a salt concentration of 500mM.
  • the cation exchange chromatography eluate is added to the calculated dialysis concentrate in order to maintain the polymer content during the dialysis and / or concentration of step (d), and the salt concentration is maintained at 50 to 150 mM. Preferably a salt concentration of 100 mM or less.
  • the elution method of maintaining a low salt in the protein elution step can minimize the polymer content of the immunoglobulin to purify the immunoglobulin of improved quality.
  • step (d) is performed using an ultrafiltration / diafiltration (UF / DF) system, the osmotic pressure is performed at 10 mOsmol / kg or less, and then the pH is 4.0. It is characterized by adjusting to 5.0.
  • UF / DF ultrafiltration / diafiltration
  • diafiltration was performed to remove low molecular ions from the cation exchange chromatography eluate, and the osmotic pressure of the UF / DF system was 10 mOsmol / kg or less. Thereafter, hydrochloric acid (HCl) was added to the filtrate to adjust the pH to 4.5 ⁇ 0.1.
  • HCl hydrochloric acid
  • the filtration of the step (e) using a nanofiltration (nanofiltration) system characterized in that carried out at 1.5 to 2.5 bar pressure conditions.
  • step (e) it may further comprise the step of preparing an intravenous immunoglobulin by adding a stabilizer.
  • one or more protein stabilizers that may be further added include various sugar alcohols, sugars (sorbitol, mannose, glucose, trehalose, maltose), proteins (albumin, etc.), amino acids (known in the art) Lysine, glycine and the like) and organic agents (such as PEG and Tween 80).
  • the additional stabilizer is characterized in that at least one selected from sugar alcohol, maltose, sorbitol, mannose, glucose, trehalose, albumin, lysine, glycine PEG and Tween 80 , Preferably maltose is used.
  • the stabilizer is characterized in that the final concentration is added to 90 to 110g / l, after adding the stabilizer, characterized in that to adjust the pH to 3.5 to 4.0, preferably to pH 3.7 to 3.9
  • an acid preferably sulfuric acid or hydrochloric acid.
  • Nanofiltration is an important virus removal step, in which the dialysis-enriched immunoglobulin solution is filtered through a Pall DVD pre-filter and a DV20 virus filter not to be greater than 2.0 ⁇ 0.5 bar pressure into the immunoglobulin solution. The virus contained was removed. Then, maltose (maltose) was added and mixed to the nanofiltered filtrate for stabilization of immunoglobulin to a final concentration of 100 g / l, and hydrochloric acid was added to obtain a pH of 3.8 ⁇ 0.1. Further control and sterilization with a 0.2 ⁇ m filter were stored.
  • maltose maltose
  • the sterilized intravenous immunoglobulin preparation is characterized in that the protein concentration (purified immunoglobulin) is diluted or concentrated to 1 to 30% by weight of the total volume, in the present invention, the protein concentration is 40 to 60 g / L , Preferably diluted with WFI or concentrated by ultrafiltration to 45 to 55 g / l, more preferably 49.5 to 50.5 g / l, then maltose is added to a final concentration of 100 g / l and completely After mixing, the final formulation of the intravenous immunoglobulin formulation was prepared by measuring the pH of the stabilized immunoglobulin formulation and adjusting the addition of hydrochloric acid to bring the pH to 3.8 ⁇ 0.1.
  • the immunoglobulin solution having a purity of 99% or higher as a result of measuring the purity (Thrombin / IgG) of the immunoglobulin solution at each stage of preparation and the concentration of Human Coagulation Factor XI (FXI) included in the filtrate or precipitate at each stage of preparation. It was confirmed that the purified (FIG. 2), it was confirmed that most of the thrombocoagulant FXI was also removed (Table 2 and Figure 3).
  • Biotest Biotest is made, including the use of FDA approved plasma.
  • red cross-derived plasma (Batch No. 600A9008) was used, and the plasma was stored at ⁇ 20 ° C. or lower until use.
  • the bottle containing plasma was opened with a bottle cutting machine and reacted for 12 to 72 hours in a jacketed vessel at 1 to 6 ° C. to dissolve the plasma.
  • the plasma is melted, thereby producing cryoprecipitate containing fibrinogen and coagulation factors.
  • the cryoprecipitate is removed by centrifugation (condition description), and the frozen sedimentation plasma is formed.
  • the frozen cryopoor plasma was recovered.
  • Precipitation II + III was performed to precipitate the immunoglobulin (Immunoglpbulin) contained in the supernatant recovered in Example 1-2.
  • the supernatant was named supernatant I + II + III (or II + III) and the precipitate was named fraction I + II + IIIw (or II + IIIw) (w; wash).
  • Fraction I + II + IIIw (or II + IIIw) is used immediately or stored below ⁇ 20 ° C.
  • Precipitation III to remove additional albumin, lipoprotein, thrombin and other unwanted proteins from fraction I + II + IIIw (or II + IIIw) containing immunoglobulins Steps were performed.
  • Fractions I + II + IIIw (or II + IIIw) recovered in Example 1-3 were dissolved in cold distilled water, and then partly sampled and stored for total viable count. . 96% ethanol was added to the fraction I + II + IIIw (or II + IIIw) dissolved in distilled water so that the final ethanol concentration was 18 ⁇ 1.8% at ⁇ 5 ⁇ 1.0 ° C., and the acetate buffer prepared at ⁇ 6 ° C. acetate buffer) was used to adjust the pH to 5.2 ⁇ 0.1.
  • the mixture was separated from the supernatant and precipitate using a filter press (DG800K).
  • the supernatant was named filtrate I + III (or III) and the precipitate was named fraction I + III (or III).
  • Fraction I + III (or III) was discarded and filtrate I + III (or III) was sampled and stored for later total viable count.
  • Precipitation II was performed to precipitate immunoglobulins in Filtrates I + III (or III) of Examples 1-4.
  • the mixture was separated from the supernatant and precipitate using a filter press (DG800K).
  • the precipitate was named fraction II paste, and some samples were stored for later determination of bacterial endotoxin, protein content and composition.
  • fraction II paste containing the immunoglobulin isolated in Example 1-5 was dissolved and adjusted to have conditions suitable for the dialysis process. Fraction II paste was transferred to a jacketed vessel at 10 ° C. or lower, dissolved by the addition of a fraction II paste volume of 4 times 0.6% sodium chloride solution, and some sampling to determine protein content and composition. was stored.
  • Ethanol and low molecular ions were removed from the fraction II solution containing the immunoglobulin obtained in Examples 1-6, and the pH was adjusted to have suitable conditions for anion exchange chromatography.
  • Fraction II solution containing immunoglobulin was subjected to diafiltration using ultrafiltration / Diafiltration (Millipore Pellicon 2 (50K)) system at 10mOsmol / kg or less. And some samples were stored to measure live bacteria.
  • Anion exchange chromatography was performed to remove polymer and other plasma proteins contained in the dialysis and / or concentrated immunoglobulin solutions obtained in Examples 1-7.
  • the anion exchange resin was filled with a DEAE Sepharose gel (GE Healthcare, Catalog No. 17-0709) to the column and equilibrated to pH 6.0 ⁇ 0.1 using an equalization buffer. Thereafter, the dialysis and / or concentrated immunoglobulin solution obtained in Example 1-7 was loaded on the column at a flow rate of 120 ⁇ 25 cm / hr, and the fractions not attached to anion exchange chromatography were loaded with 1.5 to 2.0 loading volumes. Volume; LV).
  • DEAE Sepharose gel GE Healthcare, Catalog No. 17-0709
  • a step of treating the solvent and detergent was performed to inactivate the potential envelope envelope virus of the solution containing the immunoglobulin.
  • the pH was adjusted to 5.0 ⁇ 0.1 by adding acetic acid to the fraction which was not attached to the anion exchange chromatography recovered in Example 1-8, and tri (n-butyl) -phosphate (Tri (n-butyl)- phosphate (TNBP) and Polysorbate 80 (Polysorbate 80; Tween 80) were added at a concentration of 0.3 ⁇ 0.06% and 1 ⁇ 0.2%, respectively, and then stirred at 200 ⁇ 50 RPM for 20-30 minutes. A portion of the TNBP and Tween 80 in the solution was homogeneously mixed and sampled to confirm that thereafter, stirring was continued at 200 ⁇ 50 RPM for 8 hours at 25 ⁇ 1.0 ° C. After stirring was complete, the solution containing the immunoglobulin was transferred via hard pipe line to another tank, which is a virtual secure area (VSA).
  • VSA virtual secure area
  • TNBP 1,3-bis(trimethyl)-2-aminoethyl-N-(trimethyl)-2-aminoethyl-N-(trimethyl)-2-aminoethyl-N-(trimethyl)-2-aminoethyl-N-(trimethyl)-2-aminoethyl-N-(trimethyl)-2-aminoethyl-N-(trimethyl)-2-aminoethyl-N-(trimethyl)-2-aminoethyl-N-(trimethyl)-2-aminoethyl-N-(trimethyl)-2-aminoethyl-N-(trimethyl)-2-aminoethyl-N-(trimethyl)-2-aminoethyl-N-(trimethyl)-2-aminoethyl-N
  • the cation exchange resin was filled with CM Hyper D gel (Pall Corporation; Catalog No. 20050), a ceramic material, and equilibrated to pH 5.0 ⁇ 0.1 using an equalization buffer. Thereafter, the solvent / detergent treated immunoglobulin solution of Example 1-9 was loaded onto the column at a flow rate of 120 ⁇ 10 cm / hr. Thereafter, the mixture was washed with a 5-fold volume of the washing buffer, and then eluted with an elution buffer (elution buffer composition: 20 mM NaOAc pH 4.5 w / 0.5 M NaCl) to recover the immunoglobulin. (Adsorption rate: 100 mg of immunoglobulin per 1 ml of cation exchange resin)
  • Diafiltration was performed to remove low molecular ions from the cation exchange chromatography eluate.
  • Example 1-10 The eluate obtained in Example 1-10 was subjected to diafiltration at 10 mOsmol / kg or less using the ultrafiltration / Diafiltration (Millipore Pellicon 2 (50K)) system, and the UF / DF system maintained the polymer content. To this end, a cation exchange chromatography eluate was added to the calculated dialysis concentrate to maintain the concentration below 100 mM sodium chloride.
  • the filtrate obtained was sampled and stored for later measurement of protein content, composition and live bacteria, and pH was adjusted to 4.5 ⁇ 0.1 by adding hydrochloric acid (HCl) to the remaining filtrate.
  • HCl hydrochloric acid
  • Nanofiltration is an important virus removal step, in which the immunoglobulin solution concentrated in dialysis in Examples 1-11 is filtered with a prefilter (Florodyne II prefilter, AB1DJL7PH4), and through a virus filter (DV20, AB3DV207PH4) under 2.0 ⁇ 0.5 bar pressure. Filtration removed the virus contained in the immunoglobulin solution.
  • a prefilter Frodyne II prefilter, AB1DJL7PH4
  • DV20, AB3DV207PH4 a virus filter
  • the filtrate was then sterilized using a 0.2 ⁇ m filter and transferred to a stainless steel storage tank.
  • Intravenous immunoglobulin preparations were diluted with WFI to a protein concentration of 50 ⁇ 1 g / l or concentrated by ultrafiltration, then maltose was added to a final concentration of 100 g / l and mixed thoroughly. Thereafter, the pH of the stabilized immunoglobulin preparation was measured and hydrochloric acid was added to adjust the pH to 3.8 ⁇ 0.1.
  • Immunoglobulin formulations were sterilized after pH adjustment, transferred to a filling room for filling, and prepared at product, then stored at 2-8 ° C.
  • Example 2 Thromboembolic risk measurement in immunoglobulin solution according to preparation step (Generated Thrombin / IgG)
  • Thromboembolic risk (Generated Thrombin / IgG) of the immunoglobulin preparations sampled by the preparation step of Example 1 was measured.
  • Thromboembolic risk in the immunoglobulin solution according to the preparation step of Example 1 in the present invention is carried out according to the Thrombin Generation protocol (CBER_Thrombin_Generation_protocol_01_Experiment_ (100916) a) of CBER (Center for Biologics Evaluation and Research), one of six analytical organizations under FDA. It was.
  • the immunoglobulin purification process of the present invention is accompanied by a cone plasma fractionation method and an ion chromatography purification method, and as shown in FIG. 2 and Table 1, in the case of cation exchange resin chromatography in the chromatography purification method, a thrombus generating material is used. It was confirmed that the amount of generated thrombin is effectively removed to about 95% compared to the initial stage.
  • the concentration of Human Coagulation Factor XI (FXI) included in the filtrate or precipitate of each step of preparation of Example 1 was measured using an ELISA (AsayMax Human Factor XI (FXI) ELISA Kit; ssaypro, Catalog No. EF1011-1) and SDS-PAGE.
  • ELISA AssayMax Human Factor XI (FXI) ELISA Kit; ssaypro, Catalog No. EF1011-1) and SDS-PAGE.
  • the removal efficiency of impurities and thrombus products can be increased, and the polymer content can be maintained, thereby producing stable and improved immunoglobulins.

Abstract

본 발명은 면역글로불린의 정제방법에 관한 것으로, 더욱 자세하게는 면역글로불린을 함유하는 혈장단백질 분획 Ⅱ 페이스트(fraction Ⅱ paste)를 투석 농축시킨 다음, 세라믹 재질의 양이온 교환수지 정제기법을 통해 혈전 생성 물질을 제거하고, 용출시 염 농도를 일정하게 유지함으로써 중합체의 함량을 낮게 유지시키는 것을 특징으로 하는 면역글로불린의 정제방법에 관한 것이다. 본 발명에 따른 면역글로불린의 정제방법을 이용하면, 불순물 및 혈전 생성물질을 제거효율을 높이고, 중합체 함량을 유지할 수 있으므로, 안정적이고 향상된 품질의 면역글로불린의 생산이 가능하다.

Description

면역글로불린의 정제방법
본 발명은 면역글로불린의 정제방법에 관한 것으로, 더욱 자세하게는 면역글로불린을 함유하는 혈장단백질 분획 Ⅱ 페이스트(fraction II paste)를 투석 농축시킨 다음, 세라믹 재질의 양이온 교환수지 정제기법을 통해 혈전 생성 물질을 제거하고, 용출시 염 농도를 일정하게 유지함으로써 중합체의 함량을 낮게 유지시키는 것을 특징으로 하는 면역글로불린의 정제방법에 관한 것이다.
면역글로불린은 여러 가지 바이러스 및 세균에 대한 항체를 함유하고 있는 혈장 단백으로서 선천적인 항체 결핍자 또는 바이러스성이나 세균성 질환으로 말미암아 항체의 인위적인 보충을 필요로 하는 환자에게 투여함으로써 질환의 예방과 치료에 사용되는 약제이다.
이러한 면역글로불린을 약제로 사용하기 위해 콘 및 온클레이(Cohn ＆ Oncley)에 따른 냉에탄올 분획법(Cohn E. et al., J. Am. Chem. Soc., 68:459, 1946) 및 키슬러 및 니츠만에 따른 변형법(Kistler P, Nitschmann HS, Vox Sang, 7:414. 1952)으로 피하 및 근육 주사용 면역글로불린이 제조되었다.
하지만, 근육 주사용 면역글로불린은 1) 투여량이 제한되어 대량 투여가 불가능하며, 2) 주사시 주사부위에 동통현상이 나타나고, 3) 항체능력을 가진 고유의 면역글로불린 G(Immunoglobulin G ; Ig G) 함량이 적으며, 4) 주사부위의 단백분해효소에 의한 글로불린의 항체가가 감소되고, 5) 최대혈중농도 도달시간은 24시간 이상이 소요되는 문제점이 있다.
근육 주사의 문제점을 해결하기 위해 정맥 주사를 통한 면역글로불린의 투여가 시도되었으나, 면역글로불린 제제를 정맥으로 투여할 경우 항보체활성(Anticomplementary activity)이 있는 응집체(Aggregate)에 기인하는 부작용(Anaphylacticreaction)이 심각하여 호흡 곤란 현상에서부터 순환계 쇼크까지의 다양한 즉각적인 부작용이 나타났다. 상기의 증상은 주로 면역글로불린이 결핍된 환자들에게서 보였으며, 특히 심각한 과민성 증상의 부작용은 IgA에 대한 항체가 나타난 환자들에서 관찰되었다.
따라서, 상기 문제로 인해 정맥주사가 불가능함에 따라, 정맥주사용 제제의 개발이 요구되었으며, 제조 공정 동안에 이러한 응집체를 제거하고, 및/또는 응집체 형성을 방지할 수 있는 방법들이 개발되었다. 펩신(pepsin), 파페인(papain), 플라스민(Plasmin)등 단백분해 효소나 베타프로 피오락톤(β-propiolactone)등의 화학물질로 처리하고 구조를 변화시켜 응집체의 생성을 저지하거나 파괴하여 항보체 활성을 저하시켜 줌으로써 정맥주사가 가능하게 되었다.
제1세대 정맥주사용 면역글로불린(Intravenous Immunoglobulin; IVIG)은 면역글로불린 응집체를 제거하기 위해 출발물질(콘 분획 Ⅱ)에 펩신을 처리하였다. 상기 공정에는 컬럼 크로마토그래피 단계가 포함되어 있지 않으며, 제조된 제품은 적당한 기간 동안 안정하게 유지되도록 동결건조시키고, 사용직전에 용해시켜 사용하였다. 하지만, 일부 제조사의 IVIG 제품에서 바이러스성 간염 C등의 바이러스의 감염을 유발시키는 것으로 밝혀졌으며, 이에 제조 공정에 하나 이상의 공지의 바이러스 비활성화 및/또는 제거 단계가 추가로 포함되었다. 이후, 낮은 항보체 활성과 좀더 높은 안정성을 가지는 제2세대 IVIG가 80년대 중반에 개시되었으며, 상기 IVIG는 여러 단계의 크로마토그래피 단계들을 거쳐 정제되었다.
이러한 제제들은 정맥 주사함에 따라 근육주사용 면역글로불린의 단점이었던 투여량의 제한, 주사부위의 동통 현상, 단백분해 효소에 의한 글로불린의 항체가 감소 등이 해결되었으며 최대 혈중농도 도달시간도 수시간 이내로 단축되었다.
그러나, 상기 정액주사용 면역글로불린은 구조를 변화시켜 항체능력을 가진 고유의 IgG는 거의 없어 보체결합능력이 저하되거나 없고, 혈중농도 반감기도 4-12일 정도로 짧아 질병의 예방과 치료에 만족할 만한 효과를 거두지 못하고 있다. 또한, 동결건조된 분말 형태로 제조된 상기 제1 및 2세대 IVIG는 추가로 용해시키는 작업이 필요하며, 용해속도가 느리기 때문에 액상 IVIG 제품들이 개발되었으며, 좀더 안정하고 순수한 IVIG 제품을 얻을 수 있도록 향상된 공정이 요구되었다.
이에 대하여 독일특허 제 2,604,759호 및 미국특허 제 4.124,576호 등에 소개된 방법(제3세대 IVIG)은 상기 정맥 주사용 감마글로불린과는 달리 폴리에틸렌글리콜 등 비이온성 계면활성제를 사용하여 항체 능력을 가진 고유의 IgG를 얻는 방법이 개발됨으로써 보체결합 능력이 있고 혈중농도 반감기가 일정도로 길어져서 질병의 예방과 치료에 좋은 효과를 거둘 수가 있게 되었으나, 폴리에틸렌글리콜 처리로 제조된 이들 제제도 항보체 활성이 있는 응집체를 완전히 제거하기가 어려워(항보체가가 0.02단위/mg 정도를 나타냄) 부작용의 발생 소지가 남아있는 문제점이 있다.
또한, 한국공개특허 제1983-0007083호 역시, 사람 혈장으로부터 분리된 콘(cohn) 분획 Ⅱ 또는 분획 II＋III로부터 폴리에틸렌글리콜 처리를 통해 정맥주사용 면역글로불린을 제조하였으나, 공정이 복잡하며 수율이 낮은 문제점이 있다.
이에 본 발명자들은 상기와 같은 기존의 문제를 해결하기 위하여 노력한 결과, 혈장에서 분리한 분획 II 페이스트를 투석 농축시킨 다음, 음이온교환 크로마토그래피 및 양이온교환 크로마토그래피를 사용하여 정제하되, 양이온교환 크로마토그래피 및 용출시 염 농도를 조절함으로써, 혈장 내 존재하는 혈전생성물질이 효율적으로 제거되고, 제품의 안정성이 향상되는 것을 확인하고 본 발명을 완성하게 되었다.
발명의 요약
본 발명의 목적은 안정적이고 고순도의 면역글로불린을 생산하기 위해 불순물 및 혈전생성물질을 효율적으로 제거할 수 있는 면역글로불린의 정제방법을 제공하는데 있다.
상기 목적을 달성하기 위해서, 본 발명은
(a) 면역글로불린을 함유하는 혈장단백질 분획 II 페이스트(fraction II paste)를 용해시킨 다음, 여과하여 분획 II 용액을 수득하는 단계;
(b) 상기 수득된 분획 II 용액을 투석 및/또는 농축시킨 다음, 음이온교환 크로마토그래피를 수행하여 음이온교환 크로마토그래피 컬럼(수지)에 부착되지 않은 분획을 수득하는 단계;
(c) 바이러스 불활성화를 위하여 상기 수득된 분획에 용매 및/또는 세정제를 처리한 후, 용매 및/또는 세정제, 및 혈전 생성물질을 제거하기 위하여 양이온교환 크로마토그래피를 수행하는 단계;
(d) 상기 양이온교환 크로마토그래피 용출액을 투석 및/또는 농축시키는 단계; 및
(e) 상기 투석 및/또는 농축된 용액을 여과하여 정제된 면역글로불린을 수득하는 단계;를 포함하는 면역글로불린의 정제방법을 제공한다
도 1은 본 발명에 따른 정맥주사용 면역글로불린의 제조과정을 나타낸 모식도.
도 2는 제조 단계별 면역글로불린의 순도(Thrombin/IgG)를 측정한 결과.
도 3은 제조 단계별 여과액 또는 침전물에 포함된 FXI(Human Coagulation Factor XI)의 농도를 SDS-PAGE로 측정한 결과.
발명의 상세한 설명 및 바람직한 구현예
다른 식으로 정의되지 않는 한, 본 명세서에서 사용된 모든 기술적 및 과학적 용어들은 본 발명이 속하는 기술 분야에서 숙련된 전문가에 의해서 통상적으로 이해되는 것과 동일한 의미를 갖는다. 일반적으로 본 명세서에서 사용된 명명법은 본 기술 분야에서 잘 알려져 있고 통상적으로 사용되는 것이다.
본 발명의 “면역글로불린을 함유하는 혈장단백질”이라 함은 인간 혈장 또는 인간 태반 유래 혈장에서 Factor IX 및 항트롬빈과 같은 다양한 혈장 단백질이 제거된 무-저온침전물(cryoprecipitate-free) 혈장, 다양한 콘(cohn) 분획 및 암모늄 설페이트 또는 PEG(Polson et al., Biochem Biophys Acta, 82:463, 1964); Polson and Ruiz-Bravo, Vox Sang, 23:107. 1972)에 의한 침전법을 통해 얻어지는 분획들을 포함한다. 바람직하게 혈장 단백질 분획은 콘 분획 II 이나, 콘 분획 Ⅰ,II 및 III 또는 콘 분획 II+III도 마찬가지로 사용될 수 있다.
본 발명에서는 인간 혈장으로부터 얻어진 분획 II 페이스트(fraction II paste)를 사용하였으며, 통상적인 콘 혈장 분획법에 따라서 제조되었다. 분획 Ⅱ 페이스트에 포함된 다양한 리포프로테인류, 피브리노겐, α-글로불린, β-글로불린 및 다양한 응고인자들을 제거하기 위한 후속 정제공정을 수행하였다.
본 발명에서, 인간혈장은 인간 면역 결핍 바이러스(HIV), C형 간염바이러스(HCV), B형 간염바이러스(HBV) 및 파보바이러스 B19(parvovirus B19)에 대한 핵산증폭검사(NAT; Nucleic Acid Amplification Test) 및 혈청학적 검사를 포함하는 바이오테스트(Biotest)를 거쳐 FDA에서 승인된 적십자 유래 혈장을 사용하였으며, -20℃ 이하에서 보관되어 있던 혈장을 1 내지 6℃의 자켓식 반응기(jacketed vessel)에서 12 내지 72시간 동안 반응시켜 녹였다.
상기 조건에서 혈장이 녹으면서 피브리노겐(fibrinogen) 및 응고인자(coagulation factors)가 포함된 동결침강혈장(cryoprecipitate)이 생성되는데, 원심분리를 통해 동결침강혈장을 제거시키고, 동결침강혈장이 제거된 냉동 결핍성 혈장(cryopoor plasma)을 회수하였다. 그 후 침전과 여과 과정을 반복하여 최종적으로 분획 Ⅱ 페이스트(fraction II paste)를 수득하였다.
면역글로불린이 포함된 혈장을 분리하기 위한 여과과정은 필터 보조제를 첨가하여 혼합시킨 다음 필터 프레스를 사용하여 상층액과 침전물을 분리하였으며, 상기 필터 보조제는 Celite(STD), Harbolite(Expanded perlite product) 등을 사용하였다.
본 발명에 있어서, 상기 (a) 단계의 혈장단백질 분획 Ⅱ 페이스트의 용해는 혈장단백질분획 부피의 2 내지 10배가 되도록 염화나트륨(sodium chloride) 용액을 첨가하여 수행하는 것을 특징으로 한다.
혈장 단백질 분획은 실질적으로 비-변성 온도 및 pH에서 물 및/또는 완충액에 현탁액화(용해)되는 것이 바람직하다. “실질적으로 비변성”은 상기 언급된 조건이 면역글로불린분자들의 기능성 활성의 실질적으로 비가역적인 손실, 예컨대, 항원결합 활성 및/또는 생물학적 Fc-작용의 손실을 야기시키지 않는 것을 의미한다.
유리하게는, 혈장 단백질 분획은 플라즈마 단백질 분획 부피의 2 내지 5, 바람직하게는 3 내지 4배의 부피로 하나 이상의 비변성 완충제로 산성화된 물에 용해시키며, 면역글로불린-함유 현탁액의 pH는 면역글로불린의 최적의 용해도를 보장할 수 있도록, 바람직하게는 pH 6.0 이하로, 더 바람직하게는 4.0 내지 6.0으로, 가장 바람직하게는 4.9 내지 5.1이 되도록 유지한다. 산성 완충액으로 당업계에 공지된 어떠한 것도 사용될 수 있으나, 바람직하게는 인산나트륨, 아세트산나트륨, 염화나트륨, 아세트산, 염산, 물(증류수) 등을 사용할 수 있으며, 본 발명에서는 염화나트륨 용액을 사용하였다.
면역글로불린 현탁액은 단백질 변성을 방지하고 프로테아제 활성을 최소화 할 수 있도록 낮은 온도에서 유지시키며, 면역글로불린 현탁액과 물 또는 첨가되는 완충액은 바람직하게 0 내지 12℃, 더 바람직하게는 0 내지 7℃, 가장 바람직하게는 1 내지 4℃ 범위를 유지하도록 한다.
본 발명에 있어서, 상기 (a) 단계의 여과는 분획 Ⅱ 용액을 수득하기 위한 단계로서, 청정여과(clarifying filtration)인 것을 특징으로 하며, pH가 4.5 내지 5.5가 되도록 조절하여 수행되는 것을 특징으로 한다. 바람직하게는 pH가 4.9 내지 5.1이 되도록 한다.
본 발명에서는, 분획 II 페이스트를 10℃ 이하의 자켓식 반응기(jacketed vessel)로 옮기고, 분획 II 페이스트 볼륨 4배의 0.6% 염화나트륨(sodium chloride) 용액을 첨가하여 용해시킨 다음, 용해된 용액에 pH가 5.0±1이 되도록 1 M의 아세트산(acetic acid)을 첨가하였다. 그 다음, 용액을 심층여과 카트리지를 사용해 청정여과(clarifying filtration)하여 분획 II 용액(fraction II solution)을 수득하였다.
본 발명에 있어서, 상기 (b) 단계의 투석 및/또는 농축은 한외여과/투석여과(Ultrafiltration/Diafiltration; UF/DF) 시스템을 이용하는 것을 특징으로 하며, 투석농축액의 삼투압이 10mOsmol/kg 이하까지 수행한 다음, pH를 5.5 내지 6.5로 조절하는 것을 특징으로 하며, 바람직하게는 5.9 내지 6.1이 되도록 조절한다.
투석여과(diafiltration)는 투석(dialysis)과 한외여과(ultrafiltration)를 같이 수행하는 것으로, 용매와 분자크기가 다른 2가지 이상의 용질이 함유된 유체로부터 일부 용질만 제거하는 방법으로서 고분자 물질의 정제에 효과적이며, 일반 투석법에 비하여 시간과 경비가 절감되는 장점이 있다.
본 발명의 일 실시예에서는 한외여과/투석여과(Ultrafiltration/ Diafiltration; UF/DF) 시스템을 사용하여 10 mOsmol/kg 이하로 분획 II 용액을 여과하였으며, 여과액에 1M 아세트산나트륨(sodium acetate)을 5.0±1.0 mM이 되도록 첨가하고 pH를 6.0±0.1로 조절하여 투석 및/또는 농축된 면역글로불린이 포함된 수용액을 수득하였다.
본 발명에 있어서, 상기 (b) 단계의 음이온교환 크로마토그래피는 pH 5.5 내지 6.5, 유속 95 내지 145cm/hr의 조건에서 수행하며, 음이온교환 크로마토그래피에 부착되지 않은 분획을 1.5 내지 2.0 로딩볼륨(Loading Volume; LV)으로 수득하는 것을 특징으로 한다.
음이온교환 크로마토그래피 단계에서 사용하는 음이온교환수지는 디에틸아미노에틸(DEAE) 또는 사차 암모니움(Quaternary ammonium)기들로 치환된 것들을 사용할 수 있지만, 이에 제한되는 것은 아니다. 바람직하게는 강염기성의 사차 암모니움기를 가지는 그룹이나 또는 약염기성의 디에틸아미노에틸(DEAE) 그룹을 가지는 음이온 교환수지 중에서 어느 하나를 선택하여 사용한다.
예를 들면, 강염기성의 음이온교환 그룹으로는 Q Sepharose Fast Flow, Q Sepharose High Performance, Resource Q, Source 15Q, Source 30Q, Mono Q, Mini Q, Capto Q, Capto Q ImpRes, Q HyperCel, Q Cermic HyperD F, Nuvia Q, UNOsphere Q, Macro-Prep High Q, Macro-Prep 25 Q, Fractogel EMD TMAE(S), Fractogel EMD TMAE Hicap (M), Fractogel EMD TMAE (M), Eshmono Q, Toyopearl QAE-550C, Toyopearl SuperQ-650C, Toyopearl GigaCap Q-650M, Toyopearl Q-600C AR, Toyopearl SuperQ-650M, Toyopearl SuperQ-650S, TSKgel SuperQ-5PW (30), TSKgel SuperQ-5PW (20), TSKgel SuperQ-5PW 등을 사용할 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니며 당업계에 공지된 음이온교환수지를 사용할 수 있다.
음이온 교환 크로마토그래피에 사용되는 수지의 적절한 부피는 컬럼 치수, 즉, 컬럼의 직경과 수지의 높이에 의해 반영되고, 예컨대, 적용되는 용액의 면역글로불린 용액양과 사용되는 수지의 결합 성능에 따라 달라진다. 이온 교환 크로마토그래피를 수행하기 전에, 이온 교화 수지는 바람직하게는 완충액으로 평형화시켜, 수지가 그의 짝 이온과 결합할 수 있도록 한다.
본 발명에서는, 음이온교환 수지로 DEAE 세파로스 젤을 사용하였으며, 컬럼 완충액으로는 인산나트륨 완충액, 구연산 완충액, 아세트산 완충액 등 당업계에 공지된 이퀄리브레이션 버퍼(equilibration buffer), 세척버퍼(wash buffer) 및 용출버퍼(elution buffer)를 사용할 수 있다.
음이온교환 크로마토그래피에서 컬럼은 5±1.0mM 아세트산 나트륨 완충액(sodium acetate buffer)으로 pH가 6.0±0.1이 되도록 평형화시켰으며, 이동상의 유속은 95 내지 145cm/hr으로 조절하였다. 음이온교환 크로마토그래피에 부착되지 않은 분획을 1.5 내지 2.0 로딩볼륨(Loading Volume; LV)으로 회수하였다.
본 발명에 있어서, 상기 (c) 단계는 면역글로불린이 포함된 용액의 잠재적 지질외피바이러스(lipid enveloped virus) 등의 바이러스를 불활성시키고, 불활성화 이후, 불활성화를 위해 사용된 물질을 제거하기 위한 단계로서, 바이러스-비활성화제, 바람직하게는 용매 및/또는 세정제, 가장 바람직하게는 용매-세정제 혼합물을 이용한 용매 및 세정제 처리(Solvent ＆ Detergent Treatment)가 이용될 수 있다.
상기 (c) 단계를 통해 HIV1 및 HIV2, 간염 타입 C 및 non A-B-C, HTLV1 및 2, 헤르페스 바이러스군, CMV 및 엡스타인 바 바이러스 등의 잠재적 지질외피바이러스들이 불활성화되어, 최종 제품의 안전성이 제고될 수 있다.
상기 (c) 단계에서 사용될 수 있는 용매 및 세정제는 바이러스, 특히 지질외피바이러스를 불활성화시킬 수 있는 특성을 가진 것이라면 어느 것이나 제한 없이 사용가능하다. 세정제는 비이온성 및 이온성 세정제로 이루어진 군 중에서 선택될 수 있으며, 실질적으로 비변성인 것이 바람직하다. 특히, 제거의 용이성 측면에서, 비이온성 세정제가 바람직하며, 용매는 미국등록특허 제4,764,369 호에 개시된 바와 같이 트리(n-부틸)포스페이트(TNBP : Tri-n-butyl phosphate)이 가장 바람직하지만, 이에 한정되는 것은 아니다.
본 발명을 수행하는 데 특히 바람직한 바이러스-비활성화제는 TNBP 및 폴리소르베이트 80(트윈(Tween) 80), 트리톤 X-100 및 트리톤 X-45 중에서 선택되는 하나 이상인 것의 혼합물이지만, 이에 한정되는 것은 아니다.
바람직한 용매/세정제 혼합물은 면역글로불린 함유 용액 중 TNBP 농도가 0.2 내지 0.6 중량% 이내, 바람직하게는 0.24 내지 0.36 중량%가 되도록 첨가되며, 트윈 80의 농도는 0.8 내지 1.5중량% 범위 이내, 바람직하게는 0.8 내지 1.2중량%의 농도가 되도록 첨가한다.
바이러스-비활성화 단계는 지질외피바이러스를 비활성화시켜, 실질적으로 바이러스 위험성이 없는 면역글로불린 함유 용액을 생성시키는 조건 하에서 수행된다. 상기 조건에서 반응온도는 바람직하게는 4 내지 30℃, 더 바람직하게는 19 내지 28℃, 가장 바람직하게는 24 내지 26℃이며, 반응시간은 바람직하게는 1 내지 24시간, 더 바람직하게는 4 내지 12시간, 가장 바람직하게는 약 8시간이며, 바이러스 비활성화를 보장하기에 충분하다.
본 발명에 있어서, 상기 (c) 단계의 양이온교환 크로마토그래피는 pH 4.5 내지 5.5, 유속 110 내지 130cm/hr의 조건에서 수행하는 것을 특징으로 하며, 바람직하게 상기 pH는 4.9 내지 5.1이 되도록 조절하여 수행된다. 양이온교환 수지에 로딩되는 면역글로불린은 양이온교환 수지 ㎖당 90 내지 130㎎, 더 바람직하게는 수지 ㎖당 95 내지 105 ㎎이다. 면역글로불린을 흡착시킨 후 평형 버퍼(equilibration buffer)로 세척한다. 상기 조건에서 세척에 이용되는 평형 버퍼는 컬럼 볼륨의 3배 이상, 바람직하게는 5배 이상의 부피를 사용하여 세척할 수 있으며, 세척 후 컬럼부피의 8배 이상의 용출버퍼(elution buffer)로 면역글로불린을 용출한다.
양이온교환 수지는 세파덱스(Sephardex), 세파로즈(Sepharose), 하이퍼셀(HyperCell) 또는 소스(Source) 등을 사용할 수 있지만, 이에 한정되는 것은 아니며 다른 당업계에 공지된 양이온교환 수지를 사용할 수 있다. 본 발명에서는 바람직하게 세라믹 계열의 양이온교환 수지를 사용할 수 있다. 본 발명의 일 실시예에서는 양이온교환수지로 세라믹 계열인 CM 하이퍼 D겔을 사용하였으며, 컬럼 완충액으로는 인산나트륨 완충액, 구연산 완충액, 아세트산 완충액 등 당업계에 공지된 이퀄리브레이션 버퍼(equilibration buffer), 세척버퍼(wash buffer) 및 용출버퍼(elution buffer)를 사용하였다.
양이온교환 수지로부터 면역글로불린의 용출은 면역글로불린의 효율적인 용리를 야기시키기에 충분한 pH 및 이온 세기를 갖는 실질적으로 비-변성 완충액으로 수행하여 면역글로불린 함유 용출액을 회수한다. '효율적인 용리'는 양이온교환 수지에 로딩된 면역글로불린 용액의 75% 이상, 80% 이상 등, 예컨대, 85% 이상 등이 양이온 교환수지로부터 용출되는 것을 의미한다.
본 발명에 있어서, 상기 (c) 단계의 양이온교환 크로마토그래피는 양이온교환 수지에서 면역글로불린을 치환하기에 충분할 정도로 높은 용출 완충액의 염 농도에서 수행될 수 있으며, 400 내지 600 mM의 염농도, 바람직하게는 500mM의 염 농도에서 수행될 수 있다.
또한, 상기 (d) 단계의 투석 및/또는 농축시 중합체 함량을 유지하기 위하여 양이온교환 크로마토그래피 용출액을 계산된 투석농축액에 첨가하여 염 농도를 50 내지 150mM로 일정하게 유지시키는 것을 특징으로 하며, 바람직하게는 100mM 이하의 염농도를 유지하였다. 단백질 용출단계에서 낮은 염을 유지하는 용출방법을 통해 면역글로불린의 중합체 함량을 최소화하여 향상된 품질의 면역글로불린을 정제할 수 있다.
본 발명에 있어서, 상기 (d) 단계의 투석 및/또는 농축은 한외여과/투석여과(Ultrafiltration/Diafiltration; UF/DF) 시스템을 이용하며, 삼투압 10 mOsmol/kg 이하에서 수행한 다음, pH를 4.0 내지 5.0으로 조절하는 것을 특징으로 한다.
본 발명에서는 양이온교환 크로마토그래피 용출액에서 저분자 이온을 제거하기 위해 투석여과를 수행하였으며, UF/DF 시스템의 삼투압이 10mOsmol/kg 이하가 되도록 하였다. 그 후, 여과액에 염산(HCl)을 첨가하여 pH를 4.5±0.1로 조절하였다.
본 발명에 있어서, 상기 (e) 단계의 여과는 나노여과(nanofiltration) 시스템을 이용하며, 1.5 내지 2.5 bar 압력 조건에서 수행하는 것을 특징으로 한다.
본 발명에 있어서, 상기 (e) 단계를 마친 후 안정화제를 첨가하여 정맥주사용 면역글로불린을 제조하는 단계를 추가로 포함할 수 있다.
나노여과를 수행한 후, 추가로 첨가될 수 있는 하나 이상의 단백질 안정화제로는 당업계에 공지된 다양한 슈가 알콜, 당류(소르비톨, 만노스, 글루코스, 트레할로스, 말토스), 단백질(알부민 등), 아미노산(리신, 글리신 등) 및 유기 작용제(PEG 및 Tween 80 등)가 포함된다.
본 발명에 있어서, 상기 (e) 단계 후, 추가 첨가되는 안정화제는 슈가 알콜, 말토스, 소르비톨, 만노스, 글루코스, 트레할로스, 알부민, 리신, 글리신 PEG 및 Tween 80 중에서 선택되는 하나 이상인 것을 특징으로 하며, 바람직하게는 말토스를 사용한다.
상기 안정화제는 최종 농도가 90 내지 110ｇ/ℓ가 되도록 첨가하는 것을 특징으로 하며, 안정화제를 첨가한 후, pH를 3.5 내지 4.0으로 조절하는 것을 특징으로 하며, 바람직하게는 pH 3.7 내지 3.9가 되도록 산, 바람직하게는 황산 또는 염산을 첨가함으로써 이루어질 수 있다.
나노여과는 중요한 바이러스 제거단계로, 본 발명에서 투석 농축된 면역글로불린 용액을 2.0±0.5 bar 압력보다 크지 않게 폴 DVD 프리필터(Pall DVD pre-filter) 및 DV20 바이러스 필터를 통해 여과시켜 면역글로불린 용액 속에 포함된 바이러스를 제거하였다. 그 다음, 면역글로불린의 안정화를 위해 나노여과된 여과액에 말토스(maltose)를 최종 농도가 100ｇ/ℓ가 되도록 첨가하고 혼합시켰으며, 안정화된 면역글로불린 용액의 pH가 3.8±0.1이 되도록 염산을 추가해 조절하고, 0.2 μm 필터를 이용해 멸균시켜 보관하였다.
상기 멸균된 정맥주사용 면역글로불린 제제는 단백질 농도(정제된 면역글로불린)가 전체 부피의 1 내지 30중량%이 되도록 희석시키거나 농축시키는 것을 특징으로 하며, 본 발명에서는 단백질 농도가 40 내지 60ｇ/ℓ, 바람직하게는 45 내지 55ｇ/ℓ, 더 바람직하게는 49.5 내지 50.5ｇ/ℓ이 되도록 WFI로 희석하거나 한외여과로 농축시킨 다음, 말토스(maltose)를 최종 농도가 100ｇ/ℓ가 되도록 첨가하고 완전히 혼합시킨 뒤, 안정화된 면역글로불린 제제의 pH를 측정하고 pH가 3.8±0.1이 되도록 염산을 추가 첨가해 조절함으로서 정맥주사용 면역글로불린 제제의 최종 제형을 제조하였다.
본 발명의 실시예에서, 제조 단계별 면역글로불린 용액의 순도(Thrombin/IgG) 및 제조 단계별 여과액 또는 침전물에 포함된 FXI(Human Coagulation Factor XI)의 농도를 측정한 결과, 순도 99% 이상의 면역글로불린 용액을 정제한 것을 확인하였으며(도 2), 혈전응고제인 FXI도 대부분 제거된 것을 확인할 수 있었다 (표 2 및 도 3).
이하, 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 예시하기 위한 것으로서, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되는 것으로 해석되지 않는 것은 당업계에서 통상의 지식을 가진 자에 있어서 자명할 것이다.
실시예
실시예 1 : 정맥주사용 면역글로불린 제조
1-1 : 혈장(plasma)준비
혈장은 인간 면역 결핍 바이러스(HIV), C형 간염바이러스(HCV), B형 간염바이러스(HBV) 및 파보바이러스 B19(parvovirus B19)에 대한 핵산증폭검사(NAT; Nucleic Acid Amplification Test) 및 혈청학적 검사를 포함하는 바이오테스트(Biotest)가 이루어지고 FDA에서 승인된 혈장을 사용한다.
본 발명에서는 적십자 유래 혈장(Batch No. 600A9008)를 사용하였으며 혈장은 사용하기 전까지 -20℃ 이하에서 보관하였다. 혈장이 담겨져 있는 병은 커틀 기기(bottle cutting machine)로 오픈하고, 1 내지 6℃의 자켓식 반응기(jacketed vessel)에서 12 내지 72시간 동안 반응시켜 혈장을 녹였다.
상기 조건에서 혈장이 녹으면서 피브리노겐(fibrinogen) 및 응고인자(coagulation factors)이 포함된 동결침강혈장(cryoprecipitate)이 생성되는데, 원심분리(조건 설명)를 통해 동결침강혈장을 제거시키고, 동결침강혈장이 제거된 냉동 결핍성 혈장(cryopoor plasma)을 회수하였다.
1-2 : 침전(precipitation) I 단계
상기 냉동 결핍성 혈장에서 응고인자를 추가로 제거하기 위해, 침전(precipitation) I 단계를 수행하였다.
최종 에탄올 농도가 -3±1℃에서 8 ± 0.8%가 되도록 실시예 1-1에서 회수한 냉동 결핍성 혈장에 96% 에탄올(ethanol)을 첨가한 후, 아세테이트 버퍼(acetate buffer)를 사용하여 pH가 7.2±0.2가 되도록 조절하였다. 원심분리(조건)를 통해 침전물을 제거하고, 상층액(Addition I supernatant)을 회수하였으며, 추후 총 생균측정(total viable count)을 하기 위해 일부를 샘플링하여 보관하였다.
1-3 : 침전 II+III 단계 및 여과(filtration)
실시예 1-2에서 회수한 상층액에 포함된 면역글로불린(Immunoglpbulin)을 침전시키기 위해 침전 II+III 단계를 수행하였다.
최종 에탄올 농도가 -5±1.0℃에서 20±2%가 되도록 실시예 1-2에서 회수한 상층액에 96% 에탄올(ethanol)을 첨가한 후, 아세테이트 버퍼(acetate buffer)를 사용하여 pH가 6.9±0.1이 되도록 조절하였다.
그 후, 혈장 ㎏ 당 필터 보조제(Celite(STD), Harbolite(Expanded perlite product)) 0.0284㎏씩 첨가하고 30±10분 동안 혼합시켰다. 혼합물을 2 내지 8℃로 유지시킨 콜드룸(cold room)안에서 필터 프레스(filter press, DG800K)를 사용하여 상측액과 침전물을 분리시켰다.
상층액은 상층액(supernatant) I+II+III (또는 II+III)으로 명명하고, 침전물은 분획(fraction) I+II+IIIw (또는 II+IIIw)로 명명하였다 (w; wash). 분획 I+II+IIIw (또는 II+IIIw)는 즉시 사용하거나 -20℃ 이하에서 보관한다.
1-4 : 침전 III 단계 및 여과(filtration)
면역글로불린이 포함된 분획 Ⅰ+II+IIIw (또는 II+IIIw)에서 추가로 알부민(albumin), 지단백(lipoprotein), 트롬빈(thrombin) 및 다른 원하지 않는 단백질(other unwanted proteins)을 제거하기 위해 침전 III 단계를 수행하였다.
실시예 1-3에서 회수한 분획 Ⅰ+II+IIIw (또는 II+IIIw)를 차가운 증류수(cold distilled water)에 녹인 후, 추후 총 생균측정(total viable count)을 하기 위해 일부를 샘플링하여 보관하였다. 상기 증류수에 녹인 분획 Ⅰ+II+IIIw (또는 II+IIIw)에 최종 에탄올 농도가 -5±1.0℃에서 18±1.8%이 되도록 96% 에탄올을 첨가하였으며, -6℃로 미리 준비해둔 아세테이트 버퍼(acetate buffer)를 사용하여 pH가 5.2±0.1이 되도록 조절하였다.
혼합물을 필터 프레스(filter press, DG800K)를 사용하여 상측액과 침전물을 분리시켰다. 상층액은 여과액(filtrate) Ⅰ+III (또는 III)로 명명하고, 침전물은 분획 Ⅰ+III (또는 III)로 명명하였다. 분획 Ⅰ+III (또는 III)는 폐기하고, 여과액 Ⅰ+III (또는 III)는 추후 총 생균측정(total viable count)을 하기 위해 일부를 샘플링하여 보관하였다.
1-5 : 침전 II 단계 및 여과(filtration)
실시예 1-4의 여과액 Ⅰ+III (또는 III)에서 면역글로불린을 침전시키기 위해 침전 Ⅱ단계를 수행하였다.
최종 에탄올 농도가 -10±2.0℃에서 25±2.5%가 되도록 여과액 Ⅰ+III (또는 III)에 96% 에탄올(ethanol)을 첨가하고, 1M 소듐 바이카보네이트(중탄산나트륨; sodium bicarbonate)를 사용하여 pH가 7.4±0.2가 되도록 조절하였다.
혼합물을 필터 프레스(filter press, DG800K)를 사용하여 상측액과 침전물을 분리시켰다. 침전물을 분획 II 페이스트(fraction II paste)로 명명하였으며, 추후 박테리아 엔도톡신, 단백질 함량 및 구성을 측정하기 위해 일부를 샘플링하여 보관하였다.
1-6 : 분획 II 페이스트 용해(dissolution) 및 청정여과(clarifying filtration)
혈장에서 분리한 면역글로불린의 함량을 높이고 혈전생성 물질을 제거하기 위한 분리 정제 과정을 수행하였다.
먼저, 실시예 1-5에서 분리한 면역글로불린이 포함된 분획 II 페이스트를 용해시켜 투석과정에 적합한 조건을 가지도록 조절하였다. 분획 II 페이스트는 10℃ 이하의 자켓식 반응기(jacketed vessel)로 옮기고, 분획 II 페이스트 볼륨 4배의 0.6% 염화나트륨(sodium chloride) 용액을 첨가하여 용해시켰으며, 단백질 함량 및 구성을 측정하기 위해 일부 샘플링하여 보관하였다.
그 다음, 1 M의 아세트산(acetic acid)을 사용하여 용해된 용액의 pH가 5.0±1이 되도록 조절한 후, 용액을 심층여과 카트리지(depth filter cartridges; BecodiskBP01)를 사용해 청정여과(clarifying filtration)하여 분획 II 용액(fraction Ⅱ solution)을 수득하였다.
1-7 : 투석여과(diafiltration)
실시예 1-6에서 수득한 면역글로불린이 포함된 분획 II 용액에서 에탄올과 저분자 이온을 제거하고, 음이온교환 크로마토그래피 과정에 적합한 조건을 가지도록 pH를 조절하였다.
면역글로불린이 포함된 분획 II 용액은 한외여과/투석여과(Ultrafiltration/Diafiltration; Millipore Pellicon2(50K)) 시스템을 사용하여 10mOsmol/kg 이하로 투석여과를 수행하였으며, 수득된 여과액은 추후 단백질 함량, 구성 및 생균을 측정하기 위해 일부를 샘플링하여 보관하였다.
상기 여과액에 1M 아세트산나트륨(sodium acetate)을 5.0±1.0 mM이 되도록 첨가하고 pH를 6.0±0.1로 조절하여 투석 및/또는 농축된 면역글로불린 용액을 수득하였다.
1-8 :음이온교환 크로마토그래피(anion exchange chromatography)
실시예 1-7에서 수득한 투석 및/또는 농축된 면역글로불린 용액 속에 포함된 폴리머(polymer) 및 다른 혈장 단백질을 제거하기 위해 음이온교환 크로마토그래피를 수행하였다.
음이온교환수지는 DEAE 세파로스 젤(DEAE Sepharose gel; GE Healthcare, Catalog No. 17-0709)을 컬럼에 충진한 후 이퀄리브레이션 버퍼(equilibration buffer)를 사용하여 pH가 6.0±0.1이 되도록 평형화시켰다. 이후 실시예 1-7에서 수득한 투석 및/또는 농축된 면역글로불린 용액을 유속 120±25 cm/hr이 되도록 컬럼에 로딩하였으며, 음이온교환 크로마토그래피에 부착되지 않은 분획을 1.5 내지 2.0 로딩볼륨(Loading Volume; LV)으로 회수하였다.
1-9 : 바이러스 불활성화를 위한 용매 및 세정제 처리(solvent/detergent Treatment)
면역글로불린이 포함된 용액의 잠재적 지질외피바이러스(lipid enveloped virus)를 불활성시키기 위해 용매 및 세제를 처리하는 단계를 수행하였다.
먼저, 실시예 1-8에서 회수한 음이온교환 크로마토그래피에 부착되지 않은 분획에 아세트산을 첨가하여 pH가 5.0±0.1이 되도록 조절하였으며, 트리(엔-부틸)-포스페이트(Tri(n-butyl)-phosphate; TNBP) 및 폴리소르베이트 80(Polysorbate 80 ; Tween 80)을 각각 0.3±0.06% 및 1±0.2%의 농도가 되도록 첨가한 후, 20분 내지 30분 동안 200±50 RPM으로 교반하였다. 용액 안의 TNBP 및 Tween 80가 균일하게 혼합되었는지 일부를 샘플링하여 확인하였으며, 그 후로 25±1.0℃에서 8시간 동안 200±50 RPM으로 지속적으로 교반하였다. 교반이 완료된 다음 면역글로불린이 포함된 용액은 하드파이프 라인을 통해 바이러스 안전영역(viral secure area ; VSA)인 다른 탱크로 옮겼다.
1-10 :양이온교환 크로마토그래피(cation exchange chromatography)
용매/세제 처리된 면역글로불린 용액에서 TNBP, Tween 80 및 응고인자 등이 다른 혈전생성물질을 제거하기 위해 양이온교환 크로마토그래피를 수행하였다.
양이온교환수지는 세라믹 재질인 CM 하이퍼 D겔(Pall Corporation ; Catalog No. 20050)을 컬럼에 충진한 후 이퀄리브레이션 버퍼(equilibration buffer)를 사용하여 pH가 5.0±0.1이 되도록 평형화시켰다. 이후 실시예 1-9의 용매/세제 처리된 면역글로불린 용액을 유속 120±10cm/hr이 되도록 컬럼에 로딩하였다. 그 후, 컬럼볼퓸의 5배 볼륨의 세척버퍼로 세척한 다음 용출 버퍼 (용출버퍼 조성 : 20mM NaOAc pH 4.5 w/ 0.5M NaCl)를 사용하여 면역글로불린을 용출시켜 회수하였다. (흡착율 : 양이온교환수지 1㎖당 100㎎의 면역글로불린)
1-11 : 투석여과(diafiltration)
양이온교환 크로마토그래피 용출액에서 저분자 이온을 제거하기 위해 투석여과를 수행하였다.
실시예 1-10에서 수득한 용출액은 한외여과/투석여과 (Ultrafiltration/Diafiltration; Millipore Pellicon2(50K)) 시스템을 사용하여 10mOsmol/kg 이하로 투석여과를 수행하였으며, UF/DF 시스템은 중합체 함량을 유지하기 위하여 양이온교환 크로마토그래피 용출액을 계산된 투석농축액에 첨가하여 100mM 염화나트륨 이하의 농도를 유지시키면서 연속적으로 진행하였다.
수득된 여과액은 추후 단백질 함량, 구성 및 생균을 측정하기 위해 일부를 샘플링하여 보관하고, 남은 여과액에 염산(HCl)을 첨가하여 pH를 4.5±0.1로 조절하였다.
1-12 : 나노여과(nanofiltration) 및 안정제(stabilizer) 추가
나노여과는 중요한 바이러스 제거단계로, 실시예 1-11에서 투석 농축된 면역글로불린 용액을 프리필터(FlorodyneⅡ prefilter, AB1DJL7PH4)로 여과하고, 2.0±0.5 bar 압력 조건하에서 바이러스 필터(DV20, AB3DV207PH4)를 통해 여과시켜 면역글로불린 용액 속에 포함된 바이러스를 제거하였다.
면역글로불린의 안정화를 위해 나노여과된 여과액에 말토스(maltose)를 최종 농도가 100ｇ/ℓ가 되도록 첨가하고 완전히 섞어주었다. 안정화된 면역글로불린 용액의 pH를 측정하고 pH가 3.8±0.1이 되도록 염산을 추가해 조절하였다.
그 다음, 여과액을 0.2 μm 필터를 이용해 멸균시키고, 스테인레스 스틸 저장탱크로 옮겨 보관하였다.
1-13 : 정맥주사용 면역글로불린 제제의 최종 제형 제조 및 무균 충전
정맥주사용 면역글로불린 제제의 단백질 농도가 50±1ｇ/ℓ이 되도록 WFI로 희석하거나 한외여과로 농축시킨 다음, 말토스(maltose)를 최종 농도가 100ｇ/ℓ가 되도록 첨가하고 완전히 혼합시켰다. 그 후, 안정화된 면역글로불린 제제의 pH를 측정하고 pH가 3.8±0.1이 되도록 염산을 추가해 조절하였다.
면역글로불린 제제는 pH 조정후 멸균시키며, 충전을 위해 충전룸으로 옮겨 제품을 제조한 뒤 2 내지 8℃에 보관하였다.
실시예 2 : 제조 단계별 면역글로불린 용액 내 Thromboembolic risk 측정 (Generated Thrombin/IgG)
상기 실시예 1의 제조 단계별로 샘플링한 면역글로불린 제제의 Thromboembolic risk (Generated Thrombin/IgG)를 측정하였다.
2-1. 실험 방법
본 발명에서 상기 실시예 1의 제조 단계별 면역글로불린 용액 내 Thromboembolic risk 측정은 FDA 산하 6개 분석기관의 하나인 CBER (Center for Biologics Evaluation and Research)의 Thrombin Generation protocol(CBER_Thrombin_Generation_protocol_01_Experiment_(100916)a)에 따라 실시하였다.
2-2. 실험 결과
본 발명의 면역글로불린 정제 공정은 콘 혈장분획 방법과 이온 크로마토그래피의 정제기법을 동반하고 있으며, 도 2 및 표 1에서 보는 바와 같이, 크로마토그래피 정제기법 중 양이온 교환수지 크로마토그래피의 경우 혈전생성 물질로 야기되는 Generated thrombin의 양이 초기 대비 약 95%로 효과적으로 제거되는 것을 확인할 수 있었다.
표 1 제조 공정 단계별 산물 분석표
제조 공정 단계 (process) 비고 배치 No.
654C13171 654C13172 654C13173 평균 표준편차
트롬빈(Thrombin) nM
1. 콘 II 페이스트 (Cohn II paste) 182.2 163.5 162.7 169.5 11.0
2. 투석여과 (Dia-filtration) 184.3 178.6 182.6 181.8 2.9
3. 음이온 교환 크로마토그래피(AEX chromatography) 로딩부분 185.7 182.2 186.0 184.6 2.1
통과액 부분 159.3 154.4 180.2 164.6 13.7
4. 바이러스 불활성화 (Virus inactivation) 190.6 187.3 204.9 194.3 9.4
5. 양이온 교환 크로마토그래피(CEX chromatography) 로딩부분 156.0 150.9 165.0 157.3 7.1
통과액 부분 6.3 7.5 8.9 7.6 1.3
6. 나노여과 (nanofilitration) 5.0 9.8 12.1 9.0 3.6
7. 크루드 용액 (crude solution) 14.1 10.7 16.5 13.8 2.9
이는 면역글로불린의 정맥주사로 야기될 수 있는 혈전생성을 최소화하여 혈전생성에 따른 혈전색전증을 효과적으로 방지하고, 이를 통해 면역글로불린의 안전성을 극대화할 수 있음을 보여준다.
실시예 3 : 제조 단계별 여과액 또는 침전물에 포함된 FXI(Human Coagulation Factor XI)의 농도 측정
혈전응고제의 제거 정도를 확인하기 위해, 상기 실시예 1의 제조 단계별 여과액 또는 침전물에 포함된 FXI(Human Coagulation Factor XI)의 농도를 ELISA( AssayMax Human Factor XI (FXI) ELISA Kit; ssaypro, Catalog No. EF1011-1) 및 SDS-PAGE로 측정하였다.
표 2 정제 공정 상물들의 FXI 함량
단계 (process) 비고 FXI(EIA)
(ng/mL)
1 콘 II 페이스트 (Cohn II paste) 2.32
2 투석여과 (Dia-filtration) 3.06
3 음이온 교환 크로마토그래피(AEX chromatography) 로딩부분 2.41
4 통과액 부분 2.56
5 양이온 교환 크로마토그래피(CEX chromatography) 로딩 부분 2.96
6 통과액 부분 N.D
7 용출 N.D
8 나노여과 (nanofilitration) N.D
9 크루드 용액 (crude solution) N.D
본 발명의 정제 공정의 산물들의 FXI 함량을 측정하기 위해 ELISA 및 SDS-PAGE으로 측정한 결과, 표 2 및 도 3에서 보는 바와 같이, 음이온 교환수지 크로마토그래피에서는 변화가 없었으나, 양이온 교환수지 크로마토그래피 공정의 용출액에서 측정 한계 이하로 검출되지 않으며, 해당 공정에서 FXI가 모두 제거되는 것을 확인할 수 있었다.
본 발명에 따른 면역글로불린의 정제방법을 이용하면, 불순물 및 혈전 생성물질을 제거효율을 높이고, 중합체 함량을 유지할 수 있으므로, 안정적이고 향상된 품질의 면역글로불린의 생산이 가능하다.
이상으로 본 발명 내용의 특정한 부분을 상세히 기술하였는바, 당업계의 통상의 지식을 가진 자에게 있어서, 이러한 구체적 기술은 단지 바람직한 실시양태일 뿐이며, 이에 의해 본 발명의 범위가 제한되는 것이 아닌 점은 명백할 것이다. 따라서 본 발명의 실질적인 범위는 첨부된 청구항들과 그것들의 등가물에 의하여 정의된다고 할 것이다.

Claims (17)

  1. 다음 단계를 포함하는 면역글로불린의 정제방법:
    (a) 면역글로불린을 함유하는 혈장단백질 분획 II 페이스트(fraction II paste)를 용해시킨 다음, 여과하여 분획 II 용액을 수득하는 단계;
    (b) 상기 수득된 분획 II 용액을 투석 및/또는 농축시킨 다음, 음이온교환 크로마토그래피를 수행하여 음이온교환 크로마토그래피 컬럼에 부착되지 않은 분획을 수득하는 단계;
    (c) 바이러스 불활성화를 위하여 상기 수득된 분획에 용매 및 세정제를 처리한 후, 용매 및/또는 세정제, 및 혈전 생성물질을 제거하기 위하여 양이온교환 크로마토그래피를 수행하는 단계;
    (d) 상기 양이온교환 크로마토그래피 용출액을 투석 및/또는 농축시키는 단계; 및
    (e) 상기 투석 및/또는 농축된 용액을 여과하여 정제된 면역글로불린을 수득하는 단계.
  2. 제1항에 있어서, 상기 (a) 단계의 분획 II 페이스트(fraction II paste)의 용해는 혈장단백질 분획 부피의 2 내지 10배가 되도록 염화나트륨(sodium chloride) 용액을 첨가하여 수행하는 것을 특징으로 하는 면역글로불린의 정제방법.
  3. 제1항에 있어서, 상기 (a) 단계의 여과는 청정여과(clarifying filtration)인 것을 특징으로 하며, pH가 4.5 내지 5.5가 되도록 조절하여 수행되는 것을 특징으로 하는 면역글로불린의 정제방법.
  4. 제1항에 있어서, 상기 (b) 단계의 투석 및/또는 농축은 한외여과/투석여과(ultrafiltration/diafiltration; UF/DF) 시스템을 이용하는 것을 특징으로 하며, 삼투압 10mOsmol/kg 이하에서 수행한 다음, pH를 5.5 내지 6.5로 조절하는 것을 특징으로 하는 면역글로불린의 정제방법.
  5. 제1항에 있어서, 상기 (b) 단계의 음이온교환 크로마토그래피는 pH 5.5 내지 6.5, 유속 95 내지 145cm/hr의 조건에서 수행하며, 음이온교환 크로마토그래피에 부착되지 않은 분획을 1.5 내지 2.0 로딩볼륨(Loading Volume; LV)으로 수득하는 것을 특징으로 하는 면역글로불린의 정제방법.
  6. 제1항에 있어서, 상기 (c) 단계의 용매는 트리(n-부틸)-포스페이트 (Tri(n-butyl)-phosphate; TNBP)인 것을 특징으로 하며, 세정제는 폴리소르베이트 80, 트리톤 X-100 및 트리톤 X-45 중에서 선택되는 하나 이상인 것을 특징으로 하는 면역글로불린의 정제방법.
  7. 제1항에 있어서, 상기 (c) 단계의 양이온교환 크로마토그래피는 400 내지 600 mM의 염 농도 조건에서 수행하는 것을 특징으로 하는 면역글로불린의 정제방법.
  8. 제1항에 있어서, 상기 (c) 단계의 양이온교환 크로마토그래피는 pH 4.5 내지 5.5, 유속 110 내지 130cm/hr의 조건에서 수행하는 것을 특징으로 하는 면역글로불린의 제조방법.
  9. 제1항에 있어서, 상기 (c) 단계의 양이온교환 크로마토그래피에 흡착되는 면역글로불린의 흡착량은 양이온교환 수지 ㎖당 90 내지 130㎎/㎖인 것을 특징으로 하는 면역글로불린의 정제방법.
  10. 제1항에 있어서, 상기 (c) 단계의 양이온교환 크로마토그래피는 세라믹 계열의 양이온교환 수지를 이용하는 것을 특징으로 하는 면역글로불린의 정제방법.
  11. 제1항에 있어서, 상기 (d) 단계의 투석 및/또는 농축 시 중합체 함량을 유지하기 위하여 상기 (c) 단계의 양이온교환 크로마토그래피 용출액의 염 농도를 50 내지 150mM로 유지시키는 것을 특징으로 하는 면역글로불린의 정제방법.
  12. 제1항에 있어서, 상기 (d) 단계의 투석 및/또는 농축은 한외여과/투석여과(ultrafiltration/Diafiltration; UF/DF) 시스템을 이용하며, 삼투압 10mOsmol/kg 이하에서 수행한 다음, pH를 4.0 내지 5.0으로 조절하는 것을 특징으로 하는 면역글로불린의 정제방법.
  13. 제1항에 있어서, 상기 (e) 단계의 여과는 나노여과(nanofiltration) 시스템을 이용하며, 1.5 내지 2.5 bar 압력 조건에서 수행하는 것을 특징으로 하는 면역글로불린의 정제방법.
  14. 제1항에 있어서, 상기 (e) 단계 이후, 안정화제를 첨가하여 정맥주사용 면역글로불린을 제조하는 단계가 추가로 포함되는 것을 특징으로 하는 면역글로불린의 정제방법.
  15. 제14항에 있어서, 상기 안정화제는 슈가 알콜, 말토스, 소르비톨, 만노스, 글루코스, 트레할로스, 알부민, 리신, 글리신, PEG 및 Tween 80 중에서 선택되는 하나 이상인 것을 특징으로 하는 면역글로불린의 정제방법.
  16. 제14항에 있어서, 상기 안정화제는 최종 농도가 90 내지 110ｇ/ℓ가 되도록 첨가하는 것을 특징으로 하는 면역글로불린의 정제방법.
  17. 제14항에 있어서, 상기 안정화제를 첨가한 후, pH를 3.5 내지 4.0으로 조절하는 것을 특징으로 하는 면역글로불린의 정제방법.
PCT/KR2014/002020 2014-03-11 2014-03-11 면역글로불린의 정제방법 WO2015137530A1 (ko)

Priority Applications (7)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PCT/KR2014/002020 WO2015137530A1 (ko) 2014-03-11 2014-03-11 면역글로불린의 정제방법
CA2941230A CA2941230C (en) 2014-03-11 2014-03-11 Method for purifying immunoglobulin
KR1020167024070A KR101917196B1 (ko) 2014-03-11 2014-03-11 면역글로불린의 정제방법
EP14885531.5A EP3118209B1 (en) 2014-03-11 2014-03-11 Method for purifying immunoglobulin
CN201480078651.0A CN106459140B (zh) 2014-03-11 2014-03-11 用于纯化免疫球蛋白的方法
ES14885531T ES2785375T3 (es) 2014-03-11 2014-03-11 Procedimiento de purificación de inmunoglobulina
US15/123,869 US10287315B2 (en) 2014-03-11 2014-03-11 Method for purifying immunoglobulin

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PCT/KR2014/002020 WO2015137530A1 (ko) 2014-03-11 2014-03-11 면역글로불린의 정제방법

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2015137530A1 true WO2015137530A1 (ko) 2015-09-17

Family

ID=54071961

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/KR2014/002020 WO2015137530A1 (ko) 2014-03-11 2014-03-11 면역글로불린의 정제방법

Country Status (7)

Country Link
US (1) US10287315B2 (ko)
EP (1) EP3118209B1 (ko)
KR (1) KR101917196B1 (ko)
CN (1) CN106459140B (ko)
CA (1) CA2941230C (ko)
ES (1) ES2785375T3 (ko)
WO (1) WO2015137530A1 (ko)

Families Citing this family (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2015057622A1 (en) 2013-10-16 2015-04-23 Momenta Pharmaceuticals, Inc. Sialylated glycoproteins
CA2941232C (en) * 2014-03-11 2020-08-25 Green Cross Holdings Corporation Method for purifying immunoglobulin
KR101941974B1 (ko) * 2016-11-18 2019-01-24 주식회사 녹십자 혈장 단백질 정제시 fxi의 제거방법
KR20190047376A (ko) 2017-10-27 2019-05-08 주식회사 녹십자 개선된 면역글로불린의 정제방법
CN113166200B (zh) * 2018-12-21 2024-03-01 上海药明生物技术有限公司 一种提高蛋白a层析法去除聚集体的方法
CN113474360A (zh) 2019-02-18 2021-10-01 伊莱利利公司 治疗性抗体制剂
CN112574296B (zh) * 2020-12-30 2023-05-19 中国医学科学院输血研究所 一种模拟IVIg的多人份混合人血浆IgG样品的分离纯化方法
WO2022169206A1 (ko) * 2021-02-04 2022-08-11 ㈜Gc녹십자 헤모펙신 및 합토글로빈의 정제 방법
CN116606370B (zh) * 2023-07-21 2023-09-19 南京松天盛科生物科技有限公司 一种天然IgM纯化的方法

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH07267997A (ja) * 1991-06-08 1995-10-17 Biotest Pharma Gmbh ＩｇＧ− モノクロナール抗体の精製方法及びその使用方法
KR20010052733A (ko) * 1998-06-09 2001-06-25 스태튼스 세룸 인스티튜트 정맥 주사용 면역글로불린의 제조 방법 및 그 외의면역글로불린 제품
KR20070009995A (ko) * 2004-01-30 2007-01-19 수오멘 푸나이넨 리스티 베리팔베루 바이러스 안전성 면역글로불린을 제조하는 방법
US20130058961A1 (en) * 2011-08-26 2013-03-07 Baxter Healthcare S.A. Method for reducing the thromboembolic potential of a plasma-derived immunoglobulin composition
KR20130069515A (ko) * 2011-12-15 2013-06-26 한화케미칼 주식회사 항체의 정제 방법

Family Cites Families (16)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE2604759C2 (de) 1976-02-07 1983-06-01 SCHURA Blutderivate GmbH & Co KG, 4150 Krefeld Verfahren zur Gewinnung von iv-verträglichen Γglobulinen
US4124576A (en) 1976-12-03 1978-11-07 Coval M L Method of producing intravenously injectable gamma globulin
KR830002739B1 (ko) 1981-12-05 1983-12-10 주식회사 녹십자 정맥주사용 감마글로블린의 제조방법
US4764369A (en) 1983-07-14 1988-08-16 New York Blood Center Inc. Undenatured virus-free biologically active protein derivatives
US4665159A (en) * 1985-11-07 1987-05-12 Miles Laboratories, Inc. High titer varicella-zoster immune globulin for intravenous administration
FR2706466B1 (fr) * 1993-06-14 1995-08-25 Aetsrn Concentré d'immunoglobulines G à usage thérapeutique et procédé de production dudit concentré.
ATE175979T1 (de) * 1993-12-27 1999-02-15 Rotkreuzstiftung Zentrallab Verfahren zur herstellung eines konzentrates von anti-d-immunoglobulin g und pharmazeutische zusammensetzung, die dieses enthält
TW541179B (en) * 1997-03-19 2003-07-11 Green Cross Corp Process for preparing immunoglobulin preparation
UA64742C2 (uk) 1997-12-24 2004-03-15 Альфа Терапевтик Корпорейшн СПОСІБ ОДЕРЖАННЯ РОЗЧИНУ <font face="Symbol">g</font>-ГЛОБУЛІНУ, ПРИЗНАЧЕНОГО ДЛЯ ВНУТРІШНЬОВЕННОГО ВВЕДЕННЯ, І ПРОДУКТ, ЩО ОДЕРЖУЄТЬСЯ У ЦЕЙ СПОСІБ (ВАРІАНТИ)
CA2375560A1 (en) * 1999-06-15 2000-12-21 Alpha Therapeutic Corporation Manufacturing method for intravenous immune globulin and resultant product
GB0304576D0 (en) * 2003-02-28 2003-04-02 Lonza Biologics Plc Protein a chromatography
JP2011507922A (ja) * 2007-12-28 2011-03-10 バイオインヴェント インターナショナル アーベー 配合物
IL212911A0 (en) * 2011-05-16 2011-07-31 Omrix Biopharmaceuticals Ltd Immunoglobulin reduced in thrombogenic contaminants and preparation thereof
DE102011105525B4 (de) * 2011-06-24 2015-03-26 Sartorius Stedim Biotech Gmbh Verfahren zur Abtrennung von Biopolymer-Aggregaten und Viren aus einem Fluid
AU2013203043B2 (en) * 2013-03-15 2016-10-06 Takeda Pharmaceutical Company Limited Methods to produce a human plasma-derived igg preparation enriched in brain disease-related natural iggs
KR101657690B1 (ko) * 2015-06-05 2016-09-19 주식회사 녹십자홀딩스 혈장 유래 b형 간염 사람 면역글로불린 제제의 제조방법

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH07267997A (ja) * 1991-06-08 1995-10-17 Biotest Pharma Gmbh ＩｇＧ− モノクロナール抗体の精製方法及びその使用方法
KR20010052733A (ko) * 1998-06-09 2001-06-25 스태튼스 세룸 인스티튜트 정맥 주사용 면역글로불린의 제조 방법 및 그 외의면역글로불린 제품
KR20070009995A (ko) * 2004-01-30 2007-01-19 수오멘 푸나이넨 리스티 베리팔베루 바이러스 안전성 면역글로불린을 제조하는 방법
US20130058961A1 (en) * 2011-08-26 2013-03-07 Baxter Healthcare S.A. Method for reducing the thromboembolic potential of a plasma-derived immunoglobulin composition
KR20130069515A (ko) * 2011-12-15 2013-06-26 한화케미칼 주식회사 항체의 정제 방법

Also Published As

Publication number Publication date
CN106459140A (zh) 2017-02-22
EP3118209A4 (en) 2017-11-08
CN106459140B (zh) 2019-12-10
US20170022248A1 (en) 2017-01-26
KR20160118298A (ko) 2016-10-11
CA2941230A1 (en) 2015-09-17
US10287315B2 (en) 2019-05-14
KR101917196B1 (ko) 2018-11-09
EP3118209B1 (en) 2020-02-19
CA2941230C (en) 2020-08-25
EP3118209A1 (en) 2017-01-18
ES2785375T3 (es) 2020-10-06

Similar Documents

Publication Publication Date Title
WO2015137530A1 (ko) 면역글로불린의 정제방법
WO2015137531A1 (ko) 면역글로불린의 정제방법
KR100501263B1 (ko) 정맥 주사용 면역글로불린의 제조 방법 및 그 외의 면역글로불린 제품
WO2016195387A1 (ko) 혈장 유래 b형 간염 사람 면역글로불린 제제의 제조방법
WO2019083318A2 (ko) 개선된 면역글로불린의 정제방법
KR101949553B1 (ko) 혈장 유래 면역글로빈 조성물의 혈전색전성 가능성을 감소시키는 방법
KR100188448B1 (ko) 바이러스 불활성 면역글로불린 용액 제조방법
KR20000075562A (ko) 정맥 면역 혈청 글로불린의 제조방법과 그 산물
KR20020019916A (ko) 이중으로 바이러스 비활성화 처리된 정맥투여용면역글로불린의 제조방법
WO2017123012A1 (ko) 피브리노겐의 정제방법
WO2018093049A1 (ko) 혈장 단백질 정제시 fxi의 제거방법
AU756071B2 (en) Manufacturing method for intravenous immune globulin and resultant product
WO2019083319A2 (ko) 본 빌리브란트 인자(vwf)의 함량 조절이 가능한 제8인자 및 본 빌리브란트 인자를 포함하는 조성물의 제조방법
WO2023204377A1 (ko) 면역글로불린 정제방법
TW201811815A (zh) 製備免疫球蛋白溶液的方法及其用途
MXPA99007835A (en) Production process for intravenous immune serum globulin and resultant product

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 14885531

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2941230

Country of ref document: CA

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 20167024070

Country of ref document: KR

Kind code of ref document: A

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 15123869

Country of ref document: US

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

REEP Request for entry into the european phase

Ref document number: 2014885531

Country of ref document: EP

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2014885531

Country of ref document: EP