WO2013147307A1 - 赤血球含有サンプル中の対象物を検出するためのイムノクロマトグラフィー用テストストリップおよびイムノクロマトグラフィーを利用した検出方法 - Google Patents

赤血球含有サンプル中の対象物を検出するためのイムノクロマトグラフィー用テストストリップおよびイムノクロマトグラフィーを利用した検出方法 Download PDF

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光章 山本
伸也 横川
知 清水
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Definitions

  • the present invention relates to an immunochromatographic test strip for detecting an object in a red blood cell-containing sample and a detection method using immunochromatography. More specifically, the present invention relates to a test slip treated with a specific buffer so that a gold colloid conjugate as a detection reagent does not aggregate even when a hemagglutinating agent is used, and a detection method using the buffer.
  • POCT point out care testing
  • An immunochromatographic test strip is generally a membrane composed of a porous body having a sample supply section, a development section, and a detection section, and the labeled antibody against the detection target passes through the development section after contacting the sample.
  • the structure is configured so that it can be eluted at the development start site of the development part, and the immobilized antibody is immobilized on a part of the development part to constitute the detection part.
  • the detection target when the sample is dropped onto the sample supply unit, if the detection target is contained in the sample, the detection target in the sample specifically binds to the labeled antibody to form a complex, The complex develops the development part in the downstream direction and further binds to the immobilized antibody.
  • the detection target can be qualitatively or quantitatively analyzed by detecting the labeled antibody, the detection target, and the sandwich complex of the immobilized antibody in the antibody-immobilized portion.
  • An example of a label that constitutes a detection reagent (conjugate) such as a labeled antibody is colloidal gold particles, and qualitative detection is possible by a color reaction using colloidal gold particles. Furthermore, it is possible to quantitatively detect the detection target in the sample based on the degree of coloration.
  • red blood cells in the whole blood cannot move in the membrane which is a porous body, clogging the pores of the membrane and hindering the development of the sample. . Therefore, when using whole blood as a sample, it is necessary to separate and remove red blood cells from the whole blood in advance. Examples of such methods include a method of removing red blood cells by sedimentation prior to measurement, Alternatively, a method is known in which red blood cells are aggregated with a red blood cell separating agent at the start of measurement and removed by filtration.
  • Patent Documents 1, 2, and 3 polybrene is known as an erythrocyte separating agent
  • Patent Document 1 mentions polybrene as an example of a blood coagulant made of a synthetic water-soluble polymer.
  • Patent Document 2 describes a glass fiber blood cell separation membrane for chromatography containing polybrene as a hemagglutinating substance. Since polybrene alone is accompanied by hemolysis when blood passes through the blood cell separation membrane, a technique for coating the blood cell separation membrane with PVA to avoid the hemolysis has been disclosed.
  • Patent Document 3 discloses a technique for preventing such aggregation of metal conjugates. That is, an immunochromatographic assay device is disclosed in which a polycation such as polybrene is bound upstream of a chromatography carrier as a blood cell separating agent and a polyanion for neutralizing the polycation is bound downstream thereof. According to the present technology, since the charge of the polycation is neutralized by the polyanion, the aggregation of the metal conjugate composed of selenium could be prevented.
  • the gold colloid conjugate is disclosed in accordance with the disclosure of Patent Document 3 above. Attempts were made to neutralize the positive charge of polybrene by adding a polyanion to prevent the aggregation of polybrene. However, although aggregation and separation / removal of erythrocytes in whole blood could be performed, aggregation of the gold colloid conjugate could not be prevented. The reason for this is not clear, but it may be due to the difference between the selenium conjugate and the gold colloid conjugate disclosed in Patent Document 3, the type of polyanion, and the like.
  • the present inventors reviewed the reagent configuration itself so far, from a completely different viewpoint, rather than selecting the type and amount of the polycation that is the cause of the problem, As a result of diligently examining the components of the present invention, surprisingly, it has been found that there is a buffer having an ability to suppress aggregation of the colloidal gold conjugate by polybrene, and by using the buffer, a polycation by a polyanion is found. The inventors have found that the aggregation of the colloidal gold conjugate can be suppressed without neutralization, and have completed the present invention. That is, the present invention has the following configuration. [1] A test strip for immunochromatography, having the following configuration.
  • It has a membrane made of a porous body having at least a sample supply unit, a developing unit, and a detecting unit, and an anti-detection target antibody conjugate labeled with colloidal gold elutes in a part of the developing unit.
  • a buffer component for suppressing aggregation of the conjugate by polybrene is included at least partially up to the upstream side of the holding site so as to be able to come into contact with polybrene which is a blood aggregating agent provided through the sample supply unit.
  • the buffer component is selected from the group consisting of Bis-Tris, MES, and citric acid.
  • a detection method using immunochromatography (A) having a membrane made of a porous body provided with at least a sample supply unit, a development unit and a detection unit; A conjugate containing gold colloid sensitized with an antibody against the target is retained in a part of the development part so that it can be eluted, and is further immobilized on the downstream part of the conjugate holding part.
  • a test strip having a detection part on which the antibody is immobilized (B) A step of supplying a sample to the sample supply unit (B) In the sample supply unit or upstream of the sample supply unit, contacting the sample with polybrene to agglutinate blood-derived components in the sample (C) (B The step (D) of separating the aggregate from the sample obtained by the step (D) and the sample component obtained by the step (C) from which the aggregate has been separated and removed are brought into contact with the conjugate containing the colloidal gold.
  • a combination of an object and a conjugate in a sample component obtained by the steps (E) and (D) performed in the presence of a buffer having an ability to suppress aggregation of the conjugate by polybrene.
  • a gold colloid is obtained by using a buffer having an ability to suppress aggregation of gold colloid conjugate due to polybrene.
  • Red blood cells can be aggregated and removed from the sample without aggregating the conjugate, and the colloidal gold conjugate can serve as the original detection reagent, so that the detection target in the sample can be accurately detected. It became possible to detect and measure.
  • the addition of a polyanion as a polycation neutralizing agent is not an essential condition, so the reagent structure can be made extremely simple and unpredictable for immune reactions and development of detection objects on the strip. It has the merit that it also leads to reducing the factor which brings about an effect
  • FIG. 1 is a schematic structural diagram of a test strip for immunochromatography of the present invention.
  • the immunochromatographic test strip of the present invention is a membrane comprising a porous body having at least a “sample supply part”, a “development part”, and a “detection part”, and a labeled antibody against a detection target is a sample and In order to reach the detection part after passing through the development part, a structure that is held so that it can be eluted at the development start site of the development part and the immobilized antibody is immobilized on a part of the development part constitutes the detection part.
  • a structure that is held so that it can be eluted at the development start site of the development part and the immobilized antibody is immobilized on a part of the development part constitutes the detection part.
  • a typical immunochromatographic test strip of the present invention has the following configuration. (1) Sample pad to which a sample is supplied (2) Conjugate pad (3) Conjugate which is arranged downstream of the sample pad and in which a conjugate sensitized with the first antibody is held on the colloidal gold surface An insoluble membrane placed downstream of the gate pad and immobilized with a second antibody that binds to the conjugate-conjugate complex.
  • each of the sample pad, conjugate pad, and insoluble membrane is a separate carrier. Or two may constitute one carrier, and any aspect is included as long as it is composed of a sample pad, a conjugate pad, and an insoluble membrane in this order from upstream to downstream.
  • the immunochromatographic test strip includes one having at least one of an absorption pad and a 3rd pad arranged and mounted.
  • the test strip is usually arranged on a solid support such as a plastic adhesive sheet. It is obvious that the solid support is made of a material that does not hinder the capillary flow of the sample, and the adhesive component is a material that does not hinder the capillary flow of the sample. It is also possible to laminate a polyester film or the like for the purpose of increasing the mechanical strength of the antibody-immobilized membrane and preventing evaporation (drying) of moisture during the assay.
  • the blood aggregating agent used in the present invention is preferably polybrene.
  • Polybrene whose chemical name is called hexadimethrine bromide, is a kind of cationic polymer.
  • polybrene is used to agglutinate red blood cells in the whole blood sample.
  • Polybrene can be used in addition to adding polybrene to the diluent for diluting the sample, adding polybrene directly to the sample, or including polybrene in the sample supply section (sample pad) of the immunochromatographic strip. it can. According to such a use mode, polybrene comes into contact with whole blood, and red blood cells in the whole blood are aggregated.
  • the erythrocyte aggregate is removed from the sample by some kind of filtration, but in the immunochromatographic strip, when the sample passes through the filter constituting the sample supply unit, most of the erythrocyte aggregate remains on the sample supply unit.
  • a 3rd pad blood cell separation membrane
  • the amount of polybrene added is not limited so long as the red blood cells of the whole blood can be aggregated and removed so that the detection target in the whole blood sample can be developed as desired.
  • the polybrene may be added to the sample pad.
  • the concentration is preferably 0.25% or more, more preferably 0.25 to 2% with respect to the amount of the sample liquid when the sample is dropped. From the viewpoint of manufacturing a sample pad, the concentration in the solution to be immersed in the pad is preferably 0.5% or more, and more preferably 0.5 to 4%. Further, in the present invention, as in Patent Document 3, a polyanion as a neutralizing agent for neutralizing a polybrene cation as a blood aggregating agent is not included, but does not depart from the object of the present invention. It does not exclude the presence of a polyanion that is usually used as required, as long as it does not affect the reaction system.
  • a blood aggregating agent (polybrene) is used for the purpose of agglutinating red blood cells in a whole blood sample.
  • polybrene has a problem that it aggregates not only to red blood cells but also to a gold colloid conjugate.
  • the buffer used in the present invention at least one selected from the group consisting of Bis-Tris, MES, and citric acid is essential.
  • Bis-Tris or MES has the ability to inhibit the aggregation of colloidal gold by polybrene at a pH lower than pKa, and citric acid inhibits the aggregation of colloidal gold by polybrene at a wide pH range of 4 to 6.5. Has the ability to suppress. This is suitable not only from the viewpoint of suppressing aggregation by polybrene, but also from the viewpoint of a buffer in immunoassay. Although not limited to a specific theory, it is considered that any buffer component is effective at a pH of pKa or less and is derived from an effect other than the buffer capacity.
  • the amount of these buffer components added in the buffer solution may be any amount that can suppress aggregation of the gold colloid conjugate by polybrene, and can be set experimentally.
  • the concentration is 20 mmol / L or more, preferably 20 to 100 mmol / L in the solution soaked in the pad. If the concentration of the buffer component is unnecessarily high, hemolysis (red blood cell destruction) may occur, which is not only inconvenient for immunochromatography, but also does not meet the object of the present invention.
  • any mode can be used as long as it can suppress aggregation of the colloidal gold conjugate by polybrene which is a blood aggregating agent, and it is developed from a sample supply section in a test strip for immunochromatography. It is sufficient that at least a part of the part up to the conjugate holding part is impregnated so as to be in contact with the polybrene component. Therefore, only the sample supply unit or all the parts from the sample supply unit to the development unit may be used.
  • the buffer solution is impregnated in the pad and then dried to be buffered.
  • a mode in which the liquid component adheres to the pad in a dry state is also included.
  • the specific buffer of the present invention can also be used as a sample diluent. In the present invention, as described above, it is necessary to use a specific buffer in a specific usage mode, but for other purposes, it is used in another buffer other than the above or in another usage mode other than the above. It does not prevent it.
  • the specific buffer solution of the present invention may be impregnated from the sample supply unit to the conjugate immobilization site of the development unit, and the antibody immobilization site of the development unit may be impregnated with a buffer solution other than the above. Needless to say, it is included in the inside.
  • the colloidal gold as a label used in the present invention can be sensitized (immobilized) with an antibody to form a conjugate, and is labeled in a method of detecting an object (antigen) in a sample by contacting with the sample.
  • Any gold colloid that can play a role as a body may be used.
  • a platinum colloid is also included in the gold colloid of the present invention. It is known that the particle size of colloidal gold particles has a great influence on detection sensitivity. For example, when used while being held on a test strip for immunochromatography, the particle size of colloidal gold particles is 20 to 60 nm.
  • the gold colloid can be produced by a generally known method, for example, by dropping and stirring a trisodium citrate aqueous solution or a triammonium citrate aqueous solution into a heated tetrachlorogold (III) acid aqueous solution.
  • colloidal gold is sometimes referred to as colloidal gold particle, but it is synonymous.
  • Sensitization of the antibody to the colloidal gold to the detection target is usually performed by immobilization such as physical adsorption.
  • the antibody concentration is preferably adjusted to a concentration of 1 to 5 ⁇ g / mL buffer.
  • the type and pH of the buffer are preferably 2 mmol / L phosphate buffer (pH 6.5-8) or 2-10 mmol / L Tris buffer (pH 7-9), more preferably 2-10 mmol / L Tris buffer. (PH 7 to 7.5), but is not limited to this, including the use of other buffers.
  • conjuggate the above-described gold colloid sensitized with an antibody against a detection target and a control antibody (or antigen) is referred to as “conjugate”.
  • the conjugate of the present invention can also block a region where antibodies are not bound on the gold colloid surface with a blocking agent.
  • Biological components are generally used as the blocking agent for the colloidal gold conjugate, and any biological component may be used as long as it is a component derived from living organisms and has a blocking action, such as animal proteins and animals. Peptides derived from sex proteins.
  • bovine serum albumin BSA microorganism-derived Blocking Peptide Fragment (manufactured by TOYOBO), silk protein-derived (sericin hydrolyzate) NEO PROTEIN SAVER (manufactured by TOYOBO), StartingBlock TM (PBS) Blocking Examples include Buffer (manufactured by PIERCE), Stabil Coat TM (manufactured by SurModics), and Casein. What is necessary is just to determine suitably as a density
  • an antibody solution is added to and mixed with a colloidal gold solution adjusted to 1 OD / mL, and then the biological component is added to the mixture in a final concentration of 0.1 to 10% for blocking. More preferably, it is used in the range of 0.2 to 5%.
  • a mixture of both non-biological components and biological components can be used as a blocking agent for colloidal gold.
  • the “detection reagent” is specifically a solution containing at least a conjugate.
  • the detection reagent keeps the conjugate stable and promotes the specific reaction of the antibody immobilized on the conjugate with the detection target when mixed with the sample, or makes the conjugate fast and effective.
  • one or more stabilizers, solubilizing agents, and the like may be included for the purpose of dissolution and fluidization.
  • the stabilizer and solubilizing agent include bovine serum albumin (BSA), sucrose, casein, amino acids and the like.
  • the detection reagent may contain a known sensitizer such as 2-methacryloyloxyethyl phosphorylcholine as needed for the purpose of improving detection sensitivity.
  • the detection reagent may contain EDTA or EGTA, which is a chelating agent for Ca 2+ ions, if necessary.
  • the term “detection” or “measurement” must be interpreted in the broadest sense including proof and / or quantification of the existence of the detection target, and is limitedly interpreted in any sense. must not.
  • a diluent may be used when the sample needs to be diluted depending on the concentration of the detection target in the sample. Diluted solution significantly inhibits the antigen-antibody reaction, or conversely promotes the reaction to cause hyperaggregation of the labeled body, resulting in poor development in capillary action, or signal detection of the antigen-antibody reaction depending on the antigen concentration As long as this is not impossible, a diluent of any composition may be used.
  • the diluting solution having such an action examples include purified water, physiological saline, a buffer solution having a low concentration of pH 6.0 to 10.0, such as 10 to 20 mmol / L phosphate buffer or 10 to 20 mmol / L. Tris-HCl buffer, 10-20 mmol / L Bis-Tris buffer. It is also possible to add a surfactant to these diluents for the purpose of controlling the rate of development of the sample strip.
  • the dilute solution of the present invention can contain polybrene as a blood coagulant.
  • the diluent of the present invention may contain a buffer component having an ability to suppress aggregation of polybrene with respect to the gold colloid conjugate. In this case, the buffer solution of the present invention is used as a diluent instead of the buffer solution.
  • sample pad is a part that bears a sample supply unit that receives a sample, absorbs a liquid sample in a state of being molded in the pad, and allows the liquid and the component of the detection object to pass through. Any substance and form are included.
  • the sample pad of the present invention may contain a blood aggregating agent. In that case, it should just be contained in at least one part of a sample pad, and can also be contained in all.
  • the sample pad of the present invention may contain a specific buffer component as described above. In that case, it should just be contained in at least one part of a sample pad, and can also be contained in all.
  • both the blood aggregating agent and the specific buffer solution are included in the sample pad of the present invention, both can be included in the same part of the sample pad, and not to coexist. It can also be included in different parts. Moreover, both can also be included in the whole sample pad. Specific examples of materials suitable for the sample pad include, but are not limited to, glass fiber (glass fiber), acrylic fiber, hydrophilic polyethylene material, dry paper, paper pulp, and fabric. Preferably, a fiberglass pad is used.
  • the sample pad can also have the function of a conjugate pad described later.
  • the sample pad may contain a blocking reagent that is usually used as necessary without departing from the object of the present invention and without affecting the reaction system.
  • the “conjugate pad” is obtained by impregnating a detection reagent that specifically reacts with a detection target with a material suitable for a conjugate pad described later and drying it.
  • the conjugate pad has a function of forming a complex between the detection reagent and the detection target when the sample passes through the conjugate pad.
  • the conjugate pad may be arranged so as to contact the antibody-immobilized membrane alone.
  • another pad that is placed in contact with the sample pad and that has passed through the sample pad by capillary flow and subsequently contacts the sample by a capillary flow on a surface different from the contact surface with the sample pad (hereinafter referred to as a pad) , Sometimes referred to as “3rd Pad”).
  • the conjugate pad of the present invention may contain a specific buffer component as described above. In that case, it should just be contained in the part including the upstream of the site
  • Suitable materials for the conjugate pad include, but are not limited to, paper, cellulose blend, nitrocellulose, polyester, acrylonitrile copolymer, glass fiber or non-woven fiber such as rayon.
  • a fiberglass pad is used.
  • the conjugate pad may include a “control reagent” for ensuring the reliability of immunochromatography, for example, an antibody that does not react with a sample component labeled with a label or a KLH labeled with a label.
  • a control reagent for ensuring the reliability of immunochromatography, for example, an antibody that does not react with a sample component labeled with a label or a KLH labeled with a label.
  • High antigenic proteins such as (Scacia hemocyanin) can be included.
  • These control reagents are components (substances) that are unlikely to exist in the sample, and can be appropriately selected.
  • 3rd Pad removes components that are unnecessary for detection of the detection target from the reaction components of the sample and the detection reagent, and the components necessary for the reaction smooth the insoluble membrane on which the antibody is immobilized. It can be arranged for the purpose of enabling development. For example, it is desirable to remove blood cells, insoluble blood cell fragments and the like as components unnecessary for detection.
  • the 3rd Pad also has an additional effect of removing in advance aggregates that have moved to the antibody-immobilized membrane and cannot be smoothly developed out of the aggregates generated by the antigen-antibody reaction. It is also possible to 3rd Pad includes any substance and form that allows the liquid and the component to be detected to pass through.
  • a blood cell separation membrane in order to more reliably separate and remove blood cells that could not be removed only by the blood aggregating agent and the sample pad.
  • Immobilization of an antibody against an object to be detected in the immunochromatography reagent of the present invention on an insoluble membrane can be generally performed by a well-known method.
  • the above-mentioned antibody is prepared to a predetermined concentration, and the solution is applied to an insoluble membrane in a certain amount, a specific symbol such as a dot or +.
  • an antibody against the control reagent can be immobilized at a position different from that of the antibody against the detection target to form a “control line”.
  • the above-mentioned antibody is prepared to a predetermined concentration, and a device having a mechanism capable of moving the solution in a horizontal direction while discharging the liquid from the nozzle at a constant speed is used to form a line.
  • the antibody concentration is preferably 0.1 to 5 mg / mL, and more preferably 0.5 to 3 mg / mL.
  • the amount of antibody immobilized on the insoluble membrane can be optimized by adjusting the amount applied to the insoluble membrane in the case of the flow-through type, and from the nozzle of the above apparatus in the case of the lateral flow type. It can be optimized by adjusting the discharge speed.
  • the term “flow-through membrane assay” refers to a method in which a sample solution or the like is developed so as to pass perpendicularly to an insoluble membrane
  • the term “lateral flow membrane assay” This refers to a method of spreading so that the liquid or the like moves in the parallel direction with respect to the insoluble membrane.
  • the position of the antibody to be applied to the insoluble membrane on the target object is lateral flow type, and the detection reagent is developed from the conjugate pad by capillary action, and each antibody is applied. What is necessary is just to arrange
  • the line to which the antibody to the detection target is applied is upstream, and the line to which the control antibody is applied is preferably positioned downstream. At this time, it is desirable that the distance between the lines is sufficiently long so that the signal of the label can be detected. Even in the case of the flow-through type, the position where the antibody is applied to the object may be arranged so that the signal of the label can be detected.
  • the antibody solution to be applied to the above insoluble membrane can usually be prepared using a predetermined buffer solution.
  • the buffer solution include a buffer solution usually used such as a phosphate buffer solution, a Tris buffer solution, and a Good buffer solution.
  • the pH of the buffer is preferably in the range of 6.0 to 9.5, and may be set as appropriate according to the nature of the antibody used. For example, a buffer solution having a pH of 7.2 can be used for the anti-H-FABP monoclonal antibody described later.
  • the buffer may further contain salts such as NaCl, stabilizers such as sucrose, preservatives, preservatives such as procrine, and the like.
  • salts such as NaCl that are added to adjust the ionic strength salts such as sodium hydroxide that are added in the step of adjusting the pH of the buffer solution are also included.
  • blocking can also be carried out by coating a portion other than the antibody immobilization site with a commonly used blocking agent in the form of a solution or vapor.
  • the insoluble membrane on which the antibody is immobilized as described above may be referred to as “antibody-immobilized membrane”.
  • an insoluble membrane in the present invention, can be made of any material.
  • examples thereof include, but are not limited to, polyethylene, polyethylene terephthalate, nylons, glass, polysaccharides such as cellulose and cellulose derivatives, and ceramics. Specific examples include glass fiber filter paper and cellulose filter paper sold by Merck, Toyo Roshi, Whatman and the like.
  • the pore size and structure of the insoluble membrane it is possible to control the speed at which the immune complex of the colloidal gold labeled antibody and the target flows through the membrane.
  • the amount of labeled antibody that binds to the antibody immobilized on the membrane can be adjusted by controlling the flow rate in the membrane, the pore size and structure of the membrane can be adjusted to other configurations of the immunochromatographic test strip of the present invention. It is desirable to optimize considering the combination with the material.
  • the absorption pad is a part having liquid absorbency that controls the development of the sample by absorbing the sample that has moved and passed through the insoluble membrane.
  • the absorbent pad for example, filter paper can be used, but is not limited thereto.
  • Whatman 740-E or the like is used.
  • test strip for immunochromatography of the present invention is stored in an appropriate container (housing) considering the strip size, sample addition method / position, antibody immobilization position on the antibody immobilization membrane, signal detection method, etc. It can be mounted and used, and the state stored and mounted in this way is called a “device”.
  • insoluble membrane is “solid phase”, and antigen or antibody is physically or chemically supported on the insoluble membrane or the state in which it is supported is “fixed”, “immobilized”, “solid phased” ”,“ Sensitization ”, and“ adsorption ”.
  • the “sample” containing the detection target is a liquid containing a particulate component having a number of negative charges on the surface
  • a biological sample can include those containing red blood cells, Particularly, whole blood, erythrocytes separated by centrifugation and the like can be mentioned.
  • the detection target of the present invention is a substance present in a biological sample such as blood (whole blood), red blood cells, serum, plasma, urine, saliva or sputum, such as CRP (C-reactive protein), IgA, IgG.
  • a biological sample such as blood (whole blood), red blood cells, serum, plasma, urine, saliva or sputum, such as CRP (C-reactive protein), IgA, IgG.
  • Inflammation-related markers such as IgM, fibrin degradation products (eg D-dimer), soluble fibrin, TAT (thrombin-antithrombin complex), PIC (plasmin-plasmin inhibitor complex) and other coagulation / fibrinolytic markers, oxidized LDL, Circulation-related markers such as BNP (brain natriuretic peptide), H-FABP (cardiac fatty acid binding protein), metabolism-related markers such as adiponectin, CEA (carcinoembryonic antigen), AFP ( ⁇ -fetoprotein), CA19-9, Tumor markers such as CA125, PSA (prostate specific antigen), HBV ( Hepatitis virus), HCV (C hepatitis virus), Chlamydia trachomatis, infections associated markers, such as Neisseria gonorrhoeae, allergen-specific IgE (immunoglobulin E), hormones, such as a drug is exemplified.
  • DNP
  • the antibody to the detection target used in the present invention is not limited in any way as long as it is an antibody that reacts specifically with the detection target, and even a polyclonal antibody is a monoclonal antibody. May be.
  • a hybridoma producing the antibody is a myeloma of the same kind as the spleen cell of an animal immunized with the detection target as an immunogen according to the method of Kohler and Milstein (see Nature, Vol. 256, page 495 (1975)). Cells (myeloma cells) can be produced by cell fusion.
  • the antibody used in the measurement method for detecting the detection target by forming a so-called sandwich is a monoclonal antibody, an antibody for immobilizing a labeled body (first antibody) and an antibody for immobilizing an insoluble membrane (second antibody) ),
  • the first antibody epitope is monovalent
  • the second antibody epitope is different from the first antibody
  • the first antibody epitope is multivalent.
  • the epitope of the antibody may be the same as or different from the first antibody.
  • an anti-H-FABP monoclonal antibody is used.
  • the preparation method of the anti-H-FABP monoclonal antibody used in the present invention is as shown in the next section, but the present invention is not limited to this, and a commercially available anti-H-FABP monoclonal antibody may be used.
  • Examples of commercially available anti-H-FABP monoclonal antibodies include Hytest's clone # 5B5, # 10E1, etc., Fitzgerald's clone # M79188, # 79189, and the like. May be represented by the clone name.
  • the fused cells were suspended as spleen cells in HAT medium so as to have a concentration of 2.5 ⁇ 10 6 / mL, and dispensed into a 96-well culture plate (CORNING) by 0.2 mL. This was cultured at 37 ° C. in a 5% CO 2 incubator, and after about 1 week, a strain producing an antibody that reacts with H-FABP was detected from the culture supernatant of the well in which the hybridoma had grown using the ELISA method. Selected.
  • IgG in each culture supernatant was immobilized on a microplate (manufactured by NUNC) via a goat anti-mouse IgG (Fc) antibody (manufactured by JACKSON), and then reacted with H-FABP. It was. Subsequently, biotin-labeled anti-H-FABP rabbit polyclonal antibody (manufactured by Proteintech Group) was reacted, and peroxidase-labeled streptavidin (manufactured by PIERCE) was further reacted. Thereafter, a peroxidase substrate solution containing orthophenylenediamine (manufactured by Tokyo Chemical Industry Co., Ltd.) was added to cause color development.
  • Fc goat anti-mouse IgG
  • hybridomas were cloned by limiting dilution, and 10 types of anti-H-FABP monoclonal antibody-producing hybridomas were established.
  • the filtrate was passed through a protein A column (manufactured by GE Healthcare) equilibrated with an adsorption buffer, and the antibody in the filtrate was adsorbed to the column, and then 0.1 mol / L citrate buffer (pH 3.0).
  • the antibody was eluted from the column with 1 and the anti-H-FABP monoclonal antibodies (Clone # 87203 and Clone # 87212) were purified.
  • the detection method using the immunochromatography of the present invention is a method having at least the following steps (A) to (E), and is typically a detection method using the above-described immunochromatographic test strip. .
  • (A) having a membrane made of a porous body provided with at least a sample supply unit, a development unit and a detection unit; An antibody (conjugate) against the detection target labeled with colloidal gold is held in a part of the development part so that it can be eluted, and is further immobilized on the downstream part of the conjugate holding part.
  • Steps (D) and (C) for separating and removing the aggregates from the sample.
  • Example 1 Measurement using buffer solution of the present invention
  • (1) Preparation of immunochromatographic device of the present invention 1) Preparation of colloidal gold-labeled anti-H-FABP monoclonal antibody (anti-H-FABP antibody conjugate)
  • i Preparation of colloidal gold solution
  • 500 mL of purified water heated to 73 ° C 1 mL of 5% (w / v) aqueous triammonium citrate solution was added and mixed with stirring. Subsequently, 1 mL of 5% (w / v) tetrachlorogold (III) aqueous solution was added and reacted for 10 minutes with stirring, and then the reaction solution was boiled.
  • conjugate pad 2.5% NEO PROTEIN SAVER so that the anti-H-FABP antibody conjugate prepared in 1) above is 16 OD / mL and the KLH conjugate is 4.5 OD / mL, respectively.
  • a conjugate solution is prepared by mixing with purified water containing 4% lactose or the following buffer solution, and a fixed volume of glass fiber pad (Nippon Pole, No. 8964) is 1.2 times the volume of the pad. I didn't. The conjugate pad was dried by heating in a dry oven at 70 ° C. for 45 minutes. Moreover, when adding additives, such as a sensitizer, as needed, after adding a required quantity to the said conjugate solution, what is necessary is just to perform the same operation.
  • additives such as a sensitizer
  • sample pad A glass fiber pad (Lydall) was appropriately cut to the required size, and the same buffer solution (or purified water) as the conjugate pad containing 1% polybrene was added to 1.15 of the pad volume. The sample pad was immersed in a double volume and dried in a dry oven at 70 ° C. for 45 minutes.
  • test strip for immunochromatography The above antibody-immobilized membrane (b) is attached to a plastic adhesive sheet (a), and an anti-H-FABP antibody (c) is then placed on the upstream side of the development, followed by anti-KLH antibody (d).
  • the application part was arrange
  • conjugate pad (f) prepared in 2) above is placed and mounted, and the sample pad (g) prepared in 4) above is placed and mounted so as to overlap this conjugate pad, and the opposite end is placed on the opposite end.
  • An absorbent pad (h) was placed and mounted.
  • the test strip for immunochromatography was produced by cutting each structural element into a superposed structure.
  • FIG. 1 shows a schematic configuration diagram of an immunochromatographic test strip.
  • Example 2 Measurement using the buffer of the present invention (2) The buffer component of Example 1 was tested using a material different from that of Example 1. 1. Preparation of immunochromatographic device of the present invention (2) 1) Preparation of colloidal gold labeled anti-D dimer monoclonal antibody (anti-D dimer antibody conjugate) (i) Preparation of gold colloid solution (2) Purification of 500 mL heated to 65 ° C 0.7 mL of an aqueous solution in which triammonium citrate and trisodium citrate dihydrate were both dissolved at a ratio of 7% (w / v) was added to water, and mixed with stirring.
  • conjugate pad Purification containing 1.5% Blocking Peptide Fragment and 2.4% lactose solution of the anti-D dimer monoclonal antibody-sensitized conjugate prepared in 1) above, respectively, at 22 OD / mL
  • a conjugate solution was prepared by mixing with water or the following buffer solution, and a fixed volume of glass fiber pad (Nippon Pole Co., No. 8964) was impregnated with 1.2 times the pad volume.
  • the conjugate pad was dried by heating in a dry oven at 70 ° C. for 45 minutes.
  • additives such as a sensitizer
  • a nitrocellulose membrane (Millipore, HF180, 260 mm ⁇ 25 mm), an anti-D-dimer monoclonal antibody at a position inside one end of the short side, and a fibrin degradation product at an interval of about 5 mm, an immunochromatographic dispenser “XYZ3050”. (BIO D was set to be 0.8 ⁇ L / cm using T Corp.) was applied in a line shape. The membrane was dried in a dry oven at 40 ° C. for 45 minutes to obtain an antibody-immobilized membrane.
  • the “fibrin degradation product” is prepared by hydrolysis of stabilized fibrin with plasmin, and the conjugate sensitized with anti-D dimer monoclonal antibody is colored by binding to the fibrin degradation product, ensuring the performance of the immunochromatographic reagent. Presents a control line for
  • test strip for immunochromatography was prepared in the same manner as in Example 1. Note that (c) is read as an anti-D dimer antibody, and (d) is read as a fibrin degradation product.
  • a specific buffer is used to agglutinate the red blood cells without aggregating the gold colloid. Since it can be agglomerated and separated and removed from the sample, the object in the sample can be accurately detected and measured. Since the addition of polyanion as a neutralizing agent is not an indispensable condition, it is possible to make the reagent configuration extremely simple, which is unpredictable for immune reactions and development of objects on the strip. It has the merit that it also leads to reducing the factor which brings about an effect
  • A Plastic adhesive sheet
  • B Antibody-immobilized membrane
  • c Anti-H-FABP antibody
  • d Anti-KLH antibody
  • e Blood cell separation membrane (3rd Pad)
  • F Conjugate pad
  • g Sample pad
  • h Absorption pad

Abstract

 本発明は、血液凝集剤としてポリブレン、検出試薬として金コロイドコンジュゲートを用いた場合に、全血中の赤血球を凝集させて分離除去しつつ、金コロイドの凝集を起こさないようなイムノクロマトグラフィー用テストストリップおよびイムノクロマトグラフィーを利用した検出方法の提供を課題とする。 本発明者らは、上記課題を解決すべく、ポリアニオンの種類や量の選定ではなく、全く異なる観点から、これまでの試薬構成そのものを見直し、それぞれの要素について鋭意検討を加えた結果、おどろくべきことに、特定の緩衝液を用いることでポリアニオンの中和によることなく、金コロイドの凝集を抑制することができることを見出した。

Description

赤血球含有サンプル中の対象物を検出するためのイムノクロマトグラフィー用テストストリップおよびイムノクロマトグラフィーを利用した検出方法
 本発明は、赤血球含有サンプル中の対象物を検出するためのイムノクロマトグラフィー用テストストリップおよびイムノクロマトグラフィーを利用した検出方法に関する。さらに詳しくは、赤血球凝集剤を使用した場合であっても検出試薬である金コロイドコンジュゲートが凝集しないように特定の緩衝液で処理されたテストスリップおよび当該緩衝液を使用した検出方法に関する。
 近年、診療所や小規模病院において、「患者を診察している間に検査を実施して、その結果を知りたい」、というニーズが増加し、従来の外注検査から、Point of Care Testing(POCT)が行われるようになってきている。POCTとは一般に、診察室、病棟などの「患者の近く」で行われる検査の総称であり、医師が検査結果を迅速に判断し、処置を施すことができることから、診療の質の向上に大きく役立つものである。このようなPOCTの普及に伴いラテラルフロー式のイムノクロマトグラフィー用テストストリップを格納したデバイスなどが商品として市場に流通している。
 イムノクロマトグラフィー用テストストリップは、検査の際に試薬の調製を必要とせず、血液や尿などの被検査試料(サンプル)を当該テストストリップ上に直接滴下するなどの簡単な操作のみで、サンプル中の対象物を検出することが可能なものであり、検出対象物を簡便かつ迅速に分析するのに非常に有用であるため、POCT向けに多数実用化されている。
 イムノクロマトグラフィー用テストストリップは、一般に、サンプル供給部、展開部、検出部とを備えた多孔質体からなるメンブレンであって、検出対象物に対する標識抗体が、サンプルとの接触後に展開部を通過して検出部に到達できるよう、展開部の展開開始部位に溶出可能に保持され、さらに固定化抗体が展開部の一部に固定化され検出部を構成する構造となっている。ここで、サンプルがサンプル供給部に滴下されると、サンプル中に検出対象物が含まれていた場合、サンプル中の検出対象物が標識抗体と特異的に結合して複合体を形成し、該複合体は、展開部を下流方向に向かって展開して行き、さらに固定化抗体に結合する。したがって、抗体固定化部分において、標識抗体、検出対象物及び固定化抗体によるサンドイッチ型複合体を検出することで、検出対象物を定性または定量分析することが可能である。標識抗体などの検出試薬(コンジュゲート)を構成する標識物の一例は金コロイド粒子であり、金コロイド粒子による呈色反応によって定性的な検出が可能となる。さらに、その呈色度合いに基づいて、サンプル中における検出対象物を定量的に検出することも可能である。
 ところで、サンプルが全血の場合、全血中の赤血球が多孔質体であるメンブレン中を移動することができずに、メンブレンの孔を詰まらせ、サンプルの展開を妨害してしまうという問題がある。そこで、全血をサンプルとする場合には、全血から赤血球をあらかじめ分離除去する必要があり、そのような方法としては、測定に先立ち遠心分離によって赤血球を沈降させて取り除く方法や、測定に先立ちあるいは測定開始時に赤血球分離剤により赤血球を凝集させて濾過することにより除去する方法が知られている。
 ここで、赤血球分離剤として、たとえばポリブレンが知られている(特許文献1,2,3)。
 特許文献1には、合成の水溶性ポリマーからなる血液凝集剤の一例としてポリブレンが挙げられている。 特許文献2には、赤血球凝集化物質としてポリブレンを含むクロマトグラフィー用のガラス繊維製血球分離膜が記載されている。そして、ポリブレン単独では血液が血球分離膜を通過する際に溶血を伴うために、該溶血を避けるため前記血球分離膜をPVAで被覆する技術が開示されている。
 このように血液凝集剤としてポリブレンが一般的に知られているものの、ポリブレンを金属コンジュゲートを検出試薬として採用しているイムノクロマトグラフィーに使用した場合には、全血中の赤血球を凝集させるだけではなく、金属コンジュゲートをも凝集させてしまうという問題があった(特許文献3)。
 特許文献3には、そのような金属コンジュゲートの凝集を防止するための技術が開示されている。すなわち、血球分離剤としてポリブレンなどのポリカチオンをクロマトグラフィー担体の上流に結合させ、その下流にポリカチオンを中和するためのポリアニオンを結合させたイムノクロマトグラフィーアッセイデバイスが開示されている。本技術によれば、ポリカチオンの電荷がポリアニオンにより中和されるために、セレンからなる金属コンジュゲートの凝集を防止することができたというものである。
特開平3-205563号公報 特開平5-099918号公報 特表2002-509254号公報
本発明者らは、全血をサンプルとし、血液凝集剤としてポリブレン、検出試薬として金コロイドコンジュゲートを採用して、イムノクロマトグラフィーを利用する場合において、上記特許文献3の開示に従い、金コロイドコンジュゲートの凝集を防止すべくポリアニオン添加によりポリブレンの正の電荷の中和を試みた。しかし、全血中の赤血球の凝集および分離除去は出来たが、金コロイドコンジュゲートの凝集を防止することはできなかった。この理由は定かではないが、特許文献3のセレンコンジュゲートと金コロイドコンジュゲートの違いや、ポリアニオンの種類などに起因するのかもしれない。
本発明は、血液凝集剤としてポリブレン、検出試薬として金コロイドコンジュゲートを用いた場合に、血液中の赤血球を凝集させて分離除去しつつ、金コロイドコンジュゲートの凝集を起こさないようなイムノクロマトグラフィー用テストストリップおよびイムノクロマトグラフィーを利用した検出方法の提供を課題とする。
本発明者らは、上記課題を解決するための方法を検討するにあたり、課題の原因物質たるポリカチオンの種類や量の選定ではなく、全く異なる観点から、これまでの試薬構成そのものを見直し、それぞれの構成要素について鋭意検討を加えた結果、おどろくべきことに、ポリブレンによる金コロイドコンジュゲートの凝集を抑制する能力を有する緩衝液が存在することを見出し、該緩衝液を用いることでポリアニオンによるポリカチオンの中和によることなく、金コロイドコンジュゲートの凝集を抑制することができることを見出し本発明を完成するに至った。すなわち、本発明は以下の構成を有する。
〔1〕イムノクロマトグラフィー用テストストリップであって、以下の構成を有するテストストリップ。
(1)少なくともサンプル供給部、展開部および検出部とを備えた多孔質体からなるメンブレンを有し、展開部の一部には、金コロイドで標識された抗検出対象物抗体コンジュゲートが溶出可能に保持され、さらに展開部の一部であって前記コンジュゲート保持部分より下流側に、固定化抗体が固定化されている検出部を有する
(2)サンプル供給部から、展開部のコンジュゲート保持部位の上流側まで、のすくなくとも一部にポリブレンによる前記コンジュゲートの凝集を抑制するための緩衝液成分が、サンプル供給部を通過して提供される血液凝集剤であるポリブレンと接触可能に含まれている
ここで、前記緩衝液成分は、Bis-Tris、MES、クエン酸、からなる群より選ばれるものである。
〔2〕サンプル供給部にポリブレンが含まれている前記〔1〕に記載のテストストリップ。
〔3〕サンプル供給部にポリブレンによる前記コンジュゲートの凝集を抑制するための緩衝液成分が含まれている前記〔1〕又〔2〕に記載のテストストリップ。
〔4〕血液凝集剤としてのポリブレンのカチオンを中和するための、中和剤としてのポリアニオンを含まない前記〔1〕~〔3〕のいずれかに記載のテストストリップ。
〔5〕イムノクロマトグラフィーを利用した検出方法であって、
(A)少なくともサンプル供給部、展開部および検出部とを備えた多孔質体からなるメンブレンを有し、
展開部の一部には、対象物に対する抗体が感作された金コロイドを含むコンジュゲートが溶出可能に保持され、さらに展開部の一部であってコンジュゲート保持部分より下流側に、固定化抗体が固定化されている検出部を有する、テストストリップ、
のサンプル供給部にサンプルを供給する工程
(B)サンプル供給部において、または、サンプル供給部の上流において、ポリブレンとサンプルを接触させて、サンプル中の血液由来成分を凝集させる工程
(C)(B)の工程により得られた、凝集物をサンプルより分離除去する工程
(D)(C)の工程により得られた、凝集物が分離除去されたサンプル成分、を金コロイドを含むコンジュゲートと接触させる工程であって、ポリブレンによる前記コンジュゲートの凝集を抑制する能力を有する緩衝液の存在下に行う工程
(E)(D)の工程により得られた、サンプル成分中の対象物とコンジュゲートの複合体、を検出部において検出する工程
ここで、前記緩衝液成分は、Bis-Tris、MES、クエン酸、からなる群より選ばれるものである。
〔6〕サンプル供給部にポリブレンが含まれている前記〔5〕に記載の検出方法。
〔7〕サンプル供給部にポリブレンによる前記コンジュゲートの凝集を抑制するための緩衝液成分が含まれている前記〔5〕又は〔6〕に記載の検出方法。
〔8〕血液凝集剤としてのポリブレンのカチオンを中和するための、中和剤としてのポリアニオンを含まない前記〔5〕~〔7〕のいずれかに記載の検出方法。
 本発明によれば、ポリブレンを血液凝集剤として、検出試薬として金コロイドコンジュゲートを使用したイムノクロマトグラフィーにおいて、ポリブレンによる金コロイドコンジュゲート凝集を抑制する能力を有する緩衝液を使用することにより、金コロイドコンジュゲートを凝集させることなく、赤血球を凝集させてサンプル中から分離除去することができ、金コロイドコンジュゲートは本来の検出試薬としての役割を果たすことができるため、サンプル中の検出対象物を正確に検出および測定することが可能となった。そしてポリカチオン中和剤としてのポリアニオンの添加を必須条件としないことから試薬構成を極めてシンプルなものとすることができ、また、免疫反応やストリップ上の検出対象物の展開などに対して予測不能な作用をもたらす要因を低減することにもつながるというメリットを有する。
本発明のイムノクロマトグラフィー用テストストリップの模式構造図である。
(イムノクロマトグラフィー用テストストリップ)
 本発明のイムノクロマトグラフィー用テストストリップは、少なくとも「サンプル供給部」、「展開部」、「検出部」とを備えた多孔質体からなるメンブレンであって、検出対象物に対する標識抗体が、サンプルとの接触後に展開部を通過して検出部に到達できるよう、展開部の展開開始部位に溶出可能に保持され、さらに固定化抗体が展開部の一部に固定化され検出部を構成する構造を有している。
 これらを具現化する一例として、サンプル供給部を担うサンプルパッド、検出対象物に対する標識抗体が溶出可能に保持され、展開部を担うコンジュゲートパッド、固定化抗体が一部に固定化され、展開部および検出部を担う不溶性メンブレン、を含むテストストリップが挙げられる。すなわち、本発明の典型的なイムノクロマトグラフィー用テストストリップは以下の構成を有する。
(1)サンプルが供給されるサンプルパッド
(2)サンプルパッドの下流に配置され、金コロイド表面に第一の抗体が感作されたコンジュゲートが溶出可能に保持されたコンジュゲートパッド
(3)コンジュゲートパッドの下流に配置され、コンジュゲートと検出対象物との複合体と結合する第二の抗体が固定化された不溶性メンブレン
 ここで、サンプルパッド、コンジュゲートパッド、不溶性メンブレンはそれぞれが別々の担体を構成する場合、あるいは2つが1つの担体を構成する場合もあり、上流から下流に向かって、サンプルパッド、コンジュゲートパッド、不溶性メンブレンの順序で構成されるものであればいずれの態様も含まれる。
 イムノクロマトグラフィー用テストストリップは、上記構成のほかに、吸収パッド、3rdパッドのいずれか一以上をさらに配置装着されたものも含む。該テストストリップは、通常、プラスチック製粘着シートのような固相支持体上に配列させる。該固相支持体を、サンプルの毛管流を妨げない物質で構成することはもとより、接着剤の成分をサンプルの毛管流を妨げない物質とすることは明らかである。なお、抗体固定化メンブレンの機械的強度を上げ且つアッセイ中の水分の蒸発(乾燥)を防ぐ目的でポリエステルフィルムなどをラミネート加工することも可能である。
(血液凝集剤)
 本発明に用いられる血液凝集剤としては、ポリブレンが好ましい。ポリブレンは、その化学名を臭化ヘキサジメトリンといい、カチオン性ポリマーの1種である。
 本発明において、ポリブレンは、サンプルである全血中の赤血球を凝集させるために使用される。ポリブレンの使用態様としては、サンプルを希釈する希釈液にポリブレンを添加したり、サンプルに直接ポリブレンを添加する態様のほか、イムノクロマトストリップのサンプル供給部(サンプルパッド)にポリブレンを含ませておくことができる。このような使用態様により、ポリブレンは全血と接触し、全血中の赤血球が凝集される。赤血球凝集物は、何らかの濾過によりサンプルより除去されるが、イムノクロマトストリップにおいては、サンプル供給部を構成するフィルターをサンプルが通過する際にサンプル供給部上に大部分が残留することで除去される。本発明において、凝集物がサンプル供給部で除去され、展開部への供給をより確実に低減するためには、後述する3rd pad(血球分離膜)を併用することが望ましい。
 ポリブレンの添加量は、全血サンプル中の検出対象物が所望の展開をできるよう、全血の赤血球を凝集させて分離除去できる量であればよく、例えば、サンプルパッドに含ませておく場合には、サンプルが滴下された際のサンプルの液量に対して0.25%以上の濃度となることが好ましく、0.25~2%がさらに好適である。サンプルパッドを製造する場合の観点からは、パッドに浸み込ませる溶液中の濃度として0.5%以上が好ましく、0.5~4%がさらに好適である。
 また、本発明においては、特許文献3のように、血液凝集剤としてのポリブレンのカチオンを中和するための、中和剤としてのポリアニオンは含まれないが、本発明の目的を逸脱せず、反応系に影響のない範囲において、必要に応じ通常使用されるポリアニオンの存在を排除するものではない。
(特定の緩衝液)
 本発明において、全血サンプル中の赤血球を凝集する目的で血液凝集剤(ポリブレン)を使用するがポリブレンは、赤血球だけではなく、金コロイドコンジュゲートまで凝集してしまうという問題がある。本発明では、このような金コロイドコンジュゲートが凝集しないように緩衝液を用いる必要がある。
 本発明に用いられる緩衝液としては、Bis-Tris、MES、クエン酸、からなる群より選ばれる一以上の使用が必須である。Bis-TrisあるいはMESは、pKaより低いpHでポリブレンによる金コロイドコンジュゲート凝集を抑制する能力を有し、クエン酸は、pH4~6.5と広い範囲のpHでポリブレンによる金コロイドコンジュゲート凝集を抑制する能力を有する。このことは、ポリブレンによる凝集の抑制の観点だけでなく、イムノアッセイにおける緩衝液の観点からも好適である。なお、特定の理論に拘るわけではないが、いずれの緩衝液成分もpKa以下のpHで有効であり、緩衝能以外に由来する効果であることが考えられる。汎用される緩衝液成分が、金コロイドコンジュゲートと赤血球という2種類のポリアニオンが共存する状態で、一方のみを選択的に凝集させ、もう一方の凝集を抑制しうるという事実は、おどろくべきものである。
 これら緩衝液成分の緩衝液中の添加量は、ポリブレンによる金コロイドコンジュゲートの凝集を抑えることのできる量であればよく、実験的に設定することができる。例えばサンプルパッド、コンジュゲートパッド両方について、パッドに浸み込ませる溶液中に20mmol/L以上、好適には20~100mmol/Lである。緩衝液成分の濃度が不必要に高い場合、溶血(赤血球の破壊)を生じるおそれがあり、イムノクロマトグラフィーに不都合であるばかりでなく、本発明の目的にも合致しない。この点からも実験的に設定することが好ましい。
 本発明の特定の緩衝液の使用態様としては、血液凝集剤であるポリブレンによる金コロイドコンジュゲートの凝集を抑制できる態様であればいずれでもよく、イムノクロマトグラフィー用のテストストリップにおいてサンプル供給部から、展開部であってコンジュゲート保持部位まで、の少なくとも一部にポリブレン成分と接触可能に含浸されていればよい。したがって、サンプル供給部のみでもよく、またサンプル供給部から展開部までの全ての部位であってもよい。緩衝液をサンプル供給部および/またはコンジュゲートパッドに含ませた態様には、液状の緩衝液がパッドに含まれている態様のほかに、緩衝液をパッドに含浸させた後、乾燥させて緩衝液成分が乾燥状態でパッドに付着している態様も含まれる。
 また、本発明の特定の緩衝液はサンプル希釈液として使用することもできる。
 本発明において、上述のとおり、特定の緩衝液を特定の使用態様で使用することが必要であるが、その他の目的で上記以外の他の緩衝液または上記以外の他の使用態様にて使用することを妨げるものではない。例えば、サンプル供給部から展開部のコンジュゲート固定化部位まで本発明の特定緩衝液を含浸させ、展開部の抗体固定化部位は上記以外の緩衝液を含浸させる態様とすることも本発明の範囲内に含まれることは言うまでもない。
(金コロイド)
 本発明に用いる標識体としての金コロイドは、抗体を感作(固定化)させてコンジュゲートを構成することができ、サンプルと接触させてサンプル中の対象物(抗原)を検出する方法において標識体としての役割を担うことができるような金コロイドであればいずれでもよい。
 金コロイドとしては、金コロイドのほかに白金コロイドも本発明の金コロイドに含まれるものとする。
 金コロイド粒子の粒径は、検出感度に大きく影響することが知られているが、たとえば、イムノクロマトグラフィー用テストストリップに保持させて使用する場合、金コロイド粒子の粒径としては、20~60nmが好ましく、より好ましくは30~50nmであり、特に40nmが好ましい。上記の金コロイドは一般に知られている方法、例えば、加熱したテトラクロロ金(III)酸水溶液にクエン
酸三ナトリウム水溶液やクエン酸三アンモニウム水溶液を滴下攪拌することによって製造することができる。本明細書では金コロイドを金コロイド粒子と呼ぶこともあるが、同義である。
(金コロイドへの抗体の感作)
 検出対象物に対する抗体の金コロイドへの感作は、通常、物理吸着などの固定化によって行う。この際、抗体濃度は1~5μg/mL緩衝液の濃度に調製されるのが好ましい。緩衝液の種類とpHは、2mmol/Lリン酸緩衝液(pH6.5~8)または2~10mmol/L Tris緩衝液(pH7~9)が好ましく、さらに好ましくは2~10mmol/L Tris緩衝液(pH7~7.5)であるが、他の緩衝液の使用も含め、これに限定されるものではない。本明細書では、上記のような金コロイドに検出対象物に対する抗体、コントロール用抗体(あるいは抗原)が感作されたものを「コンジュゲート」という。
(ブロッキング)
 本発明のコンジュゲートは、金コロイド表面において抗体が結合していない領域をブロッキング剤によりブロッキングすることもできる。
 金コロイドコンジュゲートのブロッキング剤としては、生物由来成分が一般に用いられ、生物由来成分としては、生物に由来する成分であってブロッキング作用を有する成分であればいずれでもよく、たとえば動物性タンパクおよび動物性タンパク由来のペプチドが挙げられる。具体的には、牛血清アルブミンであるBSA、微生物由来であるBlocking Peptide Fragment(TOYOBO製)、絹タンパク質由来(セリシンの加水分解物)であるNEO PROTEIN SAVER(TOYOBO製)、StartingBlockTM(PBS)Blocking Buffer(PIERCE製)、Stabil CoatTM(SurModics社製)、Caseinが挙げられる。
 生物由来成分の濃度としては、使用する成分により適宜決定すれば良い。例えば、1OD/mLに調整した金コロイド溶液に抗体液を加えて混合した後、該混合液に前記の生物由来成分を、終濃度が0.1~10%の範囲で添加することによりブロッキングするものであり、より好ましくは0.2~5%の範囲で使用する。
 このほかに、非生物由来成分と生物由来成分の両者を混合したものを金コロイドのブロッキング剤として用いることもできる。
(検出試薬)
 本発明において、「検出試薬」とは具体的には少なくともコンジュゲートを含有する溶液である。
 検出試薬は、コンジュゲートを安定な状態に保ち、サンプルと混合されたときにコンジュゲートに固定化された抗体が検出対象物と特異的に反応するのを促進する、あるいはコンジュゲートを迅速かつ効果的に溶解、流動化する目的で、例えば1種類以上の安定化剤、溶解補助剤等を含み得る。該安定化剤、溶解補助剤等としては、例えばウシ血清アルブミン(BSA)、スクロース、カゼイン、アミノ酸類などをあげることができる。
 また、検出試薬は、検出感度の向上を目的とし必要に応じて、2-メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリン等の公知の増感剤を含み得る。
 更に検出試薬は、必要に応じてCa2+イオンのキレート剤であるEDTAやEGTAなども含み得る。
 なお、本明細書において、「検出」又は「測定」という用語は、検出対象の存在の証明及び/又は定量などを含めて最も広義に解釈する必要があり、いかなる意味においても限定的に解釈してはならない。
(希釈液)
本発明において、サンプル中の検出対象物の濃度に応じて、サンプルの希釈が必要な場合は、希釈液を用いることがある。希釈液は、抗原抗体反応を著しく阻害したり、または反対に著しく反応を促進して標識体が過凝集するために毛細管現象における展開不良を起こしたり、抗原濃度に応じた抗原抗体反応のシグナル検出が不可能にさえならなければ、いずれの組成の希釈液を用いても良い。
 このような作用を有する希釈液としては、例えば、精製水、生理食塩水、pH6.0~10.0の低濃度の緩衝液、例えば10~20mmol/Lリン酸緩衝液や10~20mmol/L Tris-HCl緩衝液、10~20mmol/L Bis-Tris緩衝液が挙げられる。また、サンプルのストリップでの展開速度を制御する目的で、これらの希釈液に界面活性剤を添加することも可能である。
 本発明の希釈液には、前述のとおり、血液凝集剤としてのポリブレンを含ませておくことができる。
 また、本発明の希釈液には、前述のとおり、ポリブレンの金コロイドコンジュゲートに対する凝集抑制能力を有する緩衝液成分を含ませておくこともできる。この場合、上記緩衝液に換えて本発明の緩衝液を希釈液として用いる。
(サンプルパッド)
 本発明において、「サンプルパッド」とは、サンプルを受け入れるサンプル供給部を担う部位であり、パッドに成型された状態で液体のサンプルを吸収し、液体と検出対象物の成分とが通り抜けることができる物質及び形態であればいずれのものをも含む。
 本発明のサンプルパッドには、前述のとおり、血液凝集剤を含ませておくことができる。その場合、サンプルパッドの少なくとも一部に含まれていればよく、全部に含ませておくこともできる。
 また、本発明のサンプルパッドには、前述のとおり、特定の緩衝液成分を含ませておくこともできる。その場合、サンプルパッドの少なくとも一部に含まれていればよく、全部に含ませることもできる。ここで、本発明のサンプルパッドに血液凝集剤および特定の緩衝液の両方を含ませておく場合には、両者をサンプルパッドの同じ部位に含ませておくこともできるし、共存しないようにそれぞれ異なる部位に含ませておくこともできる。また、サンプルパッドの全体に両者を含ませておくこともできる。
 サンプルパッドに適した材料の具体例として、ガラス繊維(グラスファイバー)、アクリル繊維、親水性ポリエチレン材、乾燥紙、紙パルプ、織物等が含まれるが、これらに限定されない。好適には、グラスファイバー製パッドが用いられる。該サンプルパッドには、後述するコンジュゲートパッドの機能を併せ持たせることも出来る。また、サンプルパッドには、本発明の目的を逸脱せず、反応系に影響のない範囲において、必要に応じ通常使用されるブロッキング試薬を含ませることもできる。
(コンジュゲートパッド)
 本発明において、「コンジュゲートパッド」とは、検出対象物と特異的に反応する検出試薬を後述のコンジュゲートパッドに適した材料に含浸させて乾燥させたものである。コンジュゲートパッドは、サンプルが該コンジュゲートパッドを通過する際、検出試薬と検出対象物とが複合体を形成する機能を有する。該コンジュゲートパッドは、それ単独で抗体固定化メンブレンに接するように配置されていてもよい。あるいは、前記サンプルパッドと接触して配置され、毛細管流によってサンプルパッドを通過したサンプルを受入れ、引き続き該サンプルを毛細管流によって前記サンプルパッドとの接触面とは異なる面で接触する別のパッド(以下、「3rd Pad」ということがある)に移送するように配置してもよい。なお、サンプルパッド、コンジュゲートパッドの一種以上の部位の選択や、選択された部位を抗体固定化メンブレンにどのように配置するかは、適宜に変更可能である。
 また、本発明のコンジュゲートパッドには、前述のとおり、特定の緩衝液成分を含ませておくこともできる。その場合、コンジュゲートパッドの少なくともコンジュゲートが固定化されている部位の上流を含む一部に含まれていればよく、全部に含ませることもできる。
 該コンジュゲートパッドに適した材料として、紙、セルロース混合物、ニトロセルロース、ポリエステル、アクリロニトリルコポリマー、ガラス繊維またはレーヨンのような不織繊維が挙げられるが、これらに限定されない。好適には、グラスファイバー製パッドが用いられる。
 該コンジュゲートパッドには、必要に応じて、イムノクロマトグラフィーの信頼性を担保するための「コントロール試薬」、例えば、標識体で標識されたサンプル成分とは反応しない抗体や標識体で標識されたKLH(スカシ貝ヘモシアニン)などの高抗原性タンパク質などを含み得る。これらのコントロール試薬は、サンプル中に存在する可能性が考えられない成分(物質)であり、適宜に選択可能である。
(3rd Pad)
 本発明において、3rd Padとは、サンプルと検出試薬との反応成分のうち、検出対象物の検出に不要な成分を除去し、反応に必要な成分が、抗体が固定化された不溶性メンブレンをスムーズに展開できるようにすることを目的として配置させることができる。例えば、血球や不溶性の血球破砕物などは、検出に不要な成分として除去されることが望ましい。また、この3rd Padには、抗原抗体反応により生成する凝集体のうち、抗体固定化メンブレンに移動し、スムーズに展開できない位に大きくなった凝集体をあらかじめ除去するという付加的な効果を併せ持たせることも可能である。3rd Padとしては、液体と検出対象の成分とが通り抜けることができるどんな物質及び形態をも含む。具体例として、ガラス繊維(グラスファイバー)、アクリル繊維、親水性ポリエチレン材、乾燥紙、紙パルプ、織物等が含まれるが、これらに限定されない。
 本発明において、前述の血液凝集剤とサンプルパッドのみでは除去しきれなかった血球をより確実に分離除去するため、血球分離膜を用いることが望ましい。
(抗体の不溶性メンブレンへの固定化)
 本発明のイムノクロマト試薬における検出対象物に対する抗体の不溶性メンブレンへの固定化は、一般に周知の方法で実施することができる。例えば、フロースルー式の場合、上記の抗体を所定の濃度に調製し、その液を一定量、点あるいは+など特定のシンボル状に、不溶性メンブレンに塗布する。またこの際、イムノクロマトグラフィーの信頼性を担保するため、コンジュゲートと結合できるタンパク質あるいは化合物を、検出対象物に対する抗体とは異なる位置に固定化して「コントロールライン」とすることが一般的である。また、前記のコントロール試薬に対する抗体を検出対象物に対する抗体とは異なる位置に固定化して「コントロールライン」とすることもできる。
 ラテラルフロー式の場合には、上記の抗体を所定の濃度に調製しその液をノズルから一定の速度で吐出しながら水平方向に移動させることのできる機構を有する装置などを用いて、ライン状に不溶性メンブレンに塗布することにより行われる。この際、抗体の濃度は0.1~5mg/mLが好ましく、0.5~3mg/mLがさらに好適である。また、抗体の不溶性メンブレンの固定化量は、フロースルー式の場合には不溶性メンブレンに滴下する塗付量を調節することによって最適化でき、ラテラルフロー式の場合には上記の装置のノズルからの吐出速度を調節することによって最適化できる。特に、ラテラルフロー式の場合、0.5~2μL/cmが好適である。なお、本発明において、「フロースルー式メンブレンアッセイ」という場合は、サンプル液等が不溶性メンブレンに対して垂直に通過するように展開する方式を指し、「ラテラルフロー式メンブレンアッセイ」という場合は、サンプル液等が不溶性メンブレンに対して並行方向に移動するように展開する方式を指す。
 また、本発明において、対象物に対する抗体の不溶性メンブレンへの塗付位置については、ラテラルフロー式の場合、コンジュゲートパッドから、上記検出試薬が毛細管現象によって展開し、それぞれの抗体が塗付されたラインを順に通過するように配置されれば良い。好ましくは検出対象物に対する抗体の塗付されたラインが上流にあり、コントロール抗体の塗付されたラインはその下流に位置するように配置するのが好ましい。この際、それぞれのライン間の距離は標識体のシグナル検出が可能であるように十分の距離をとることが望ましい。フロースルー式の場合にも、対象物に対する抗体の塗付位置は標識体のシグナル検出が可能であるように配置されていれば良い。
 上記の不溶性メンブレンへ塗付する抗体液は、通常所定の緩衝液を用いて調製することができる。その緩衝液の種類としては、リン酸緩衝液、Tris緩衝液、グッド緩衝液など通常使用される緩衝液を挙げることができる。緩衝液のpHは、6.0~9.5の範囲が好ましく、使用する抗体の性質に応じ適宜設定すれば良い。例えば、後述の抗H-FABPモノクローナル抗体ではpH7.2の緩衝液が使用できる。緩衝液には、さらにNaClなどの塩類、スクロースなどの安定剤や保存剤、プロクリンなどの防腐剤等を含んでもよい。塩類はNaClなどのようにイオン強度の調整のために含ませるもののほか、水酸化ナトリウムなど緩衝液のpHを調整する工程で添加するようになるものも含まれる。不溶性メンブレンに抗体を固定化した後、さらに、通常使用されるブロッキング剤を溶液あるいは蒸気状にして抗体固定化部位以外を被覆し、ブロッキングを行うこともできる。本明細書では、上記のように抗体が固定化された不溶性メンブレンを「抗体固定化メンブレン」ということがある。
(不溶性メンブレン)
 本発明において、不溶性メンブレン(以下、単にメンブレンと記載することがある)としては、任意の材質のものが使用できる。例えば、ポリエチレン、ポリエチレンテレフタレート、ナイロン類、ガラス、セルロースやセルロース誘導体などの多糖類あるいはセラミックス等が挙げられるがこれらに限定されない。具体的には、メルク社、東洋濾紙社、ワットマン社などより販売されているガラス繊維ろ紙やセルロースろ紙などをあげることができる。また、この不溶性メンブレンの孔径と構造を適宜選択することにより、金コロイド標識抗体と対象物との免疫複合体がメンブレン中を流れる速度を制御することが可能である。メンブレン中を流れる速度の制御により、メンブレンに固定化された上記抗体に結合する標識抗体量を調節することができるため、メンブレンの孔径と構造は、本発明のイムノクロマトグラフィー用テストストリップのほかの構成材料との組み合わせを考慮して最適化することが望ましい。
(吸収パッド)
 本発明において、吸収パッドとは、不溶性メンブレンを移動・通過したサンプルを吸収することにより、サンプルの展開を制御する液体吸収性を有する部位である。ラテラルフロー式においては、ストリップ構成の最下流に設ければよく、フロースルー式においては、例えば抗体固定化メンブレンの下部に設ければよい。該吸収パッドとしては、例えば、ろ紙を用いることができるが、これに限定されない。好適には、Whatman社の740-E等が用いられる。
(検出デバイス)
 本発明のイムノクロマトグラフィー用テストストリップは、ストリップの大きさや、サンプルの添加方法・位置、抗体固定化メンブレンにおける抗体の固定化位置、シグナルの検出方法などを考慮した適当な容器(ハウジング)に格納・搭載して使用することができ、このように格納・搭載された状態を「デバイス」という。
(その他)
 本明細書において、「不溶性メンブレン」を「固相」、抗原や抗体を不溶性メンブレンに物理的あるいは化学的に担持させることあるいは担持させた状態を「固定」、「固定化」、「固相化」、「感作」、「吸着」と表現することがある。
(サンプル)
 本発明の検出方法において検出対象物を含む「サンプル」とは、陰性荷電を表面に多数有する粒子状の成分が含まれる液体であり、生物サンプルとしては赤血球が含まれるものを挙げることができ、特に全血、遠心分離等により分離された赤血球等が挙げられる。
(検出対象物)
 本発明の検出対象物としては、血液(全血)、赤血球、血清、血漿、尿、唾液又は喀痰などの生物サンプル中に存在する物質で、例えば、CRP(C反応性タンパク)、IgA、IgG、IgMなどの炎症関係マーカー、フィブリン分解産物(例えばDダイマー)、可溶性フィブリン、TAT(トロンビン-アンチトロンビン複合体)、PIC(プラスミン-プラスミンインヒビター複合体)などの凝固・線溶マーカー、酸化LDL、BNP(脳性ナトリウム利尿ペプチド)、H-FABP(心臓型脂肪酸結合タンパク)などの循環関連マーカー、アディポネクチンなどの代謝関連マーカー、CEA(癌胎児性抗原)、AFP(α-フェトプロテイン)、CA19-9、CA125、PSA(前立腺特異抗原)などの腫瘍マーカー、HBV(B型肝炎ウイルス)、HCV(C型肝炎ウイルス)、クラミジアトラコマティス、淋菌などの感染症関連マーカー、アレルゲン特異IgE(免疫グロブリンE)、ホルモン、薬物などが例示される。これらの中でも、サンプルとして全血を使用したいとする要望が高い、Dダイマー、CRP、BNP、H-FABPなどがより好ましい。
(本発明で用いられる抗体)
 本発明に用いられる検出対象物に対する抗体は、検出対象物に対して特異的に反応する抗体であれば、作製する方法によって何ら限定されるものではなく、ポリクローナル抗体であってもモノクローナル抗体であってもよい。一般的に当該抗体を産生するハイブリドーマは、KohlerとMilsteinの方法(Nature、第256巻495頁(1975年)参照)に準じ、検出対象物を免疫原として免疫した動物の脾臓細胞と同種のミエローマ細胞(骨髄腫細胞)とを細胞融合して作製することができる。
 ここで、いわゆるサンドイッチの形成により検出対象物を検出する測定法において用いられる抗体がモノクローナル抗体の場合、標識体固定化用抗体(第一の抗体)と不溶性メンブレン固定化用抗体(第二の抗体)の関係は、第一の抗体のエピトープが一価の場合は第二の抗体のエピトープは第一の抗体と異なるものが用いられ、第一の抗体のエピトープが多価の場合は第二の抗体のエピトープは第一の抗体と同じであってもよいし、異なるものであってもよい。
 後述する実施例1では抗H-FABPモノクローナル抗体を使用している。本発明で使用した抗H-FABPモノクローナル抗体の調製方法は次項に示すとおりであるが、本発明はこれに限らず、市販の抗H-FABPモノクローナル抗体を用いてもよい。市販の抗H-FABPモノクローナル抗体の例としては、Hytest社のclone#5B5、#10E1等や、Fitzgerald社のclone#M79188、#79189などが挙げられる(尚、モノクローナル抗体は便宜上それぞれを産生するハイブリドーマのクローン名で表すことがある。以下同じ)。
(抗H-FABPモノクローナル抗体の調製例)
(1)ハイブリドーマの調製
 PBSに溶解したヒト精製H-FABP(Hytest 社製)を免疫原とした。この免疫原を完全フロイントアジュバンド(和光純薬工業社製)と1対1の液量で混和乳化してH-FABP濃度0.5mg/mLのエマルションを調製し、これを6週齢の雌BALB/Cマウスの皮下に100μL投与した。その後2ケ月半の間にH-FABP濃度0.2mg/mLのエマルション100μLを3回追加投与し、3回目の追加投与から10日後にPBSで溶解した0.2mg/mLのヒト精製H-FABP100μLを皮下に投与した。その3日後に脾臓、鼠頸部リンパ節および腸骨リンパ節を摘出し、得られた脾臓およびリンパ節細胞と骨髄腫細胞SP2/O-Ag14とを6対1の割合で混合し、50%ポリエチレングリコール1540(和光純薬工業社製)存在下にて細胞融合させた。融合細胞は脾臓細胞として2.5×106/mLになるようにHAT培地に懸濁し、96穴培養プレート(CORNING社製)に0.2mLずつ分注した。これを5%CO2インキュベーター中で37℃にて培養し、およそ1週間後に、ハイブリドーマの生育してきたウェルの培養上清について、ELISA法を用いてH-FABPに反応する抗体を産生する株を選択した。具体的には、まずマイクロプレート(NUNC社製)にヤギ抗マウスIgG(Fc)抗体(JACKSON社製)を介し、各培養上清中のIgGを固相化した後、H-FABPを反応させた。続いて、ビオチン標識抗H-FABPウサギポリクローナル抗体(Proteintech Group社製)を反応させ、さらにペルオキシダーゼ標識ストレプトアビジン(PIERCE社製)を反応性させた。その後、オルトフェニレンジアミン(東京化成社製)を含むペルオキシダーゼ基質溶液を加えて発色させ、1.5N硫酸を加え発色を停止した後、マイクロプレートリーダー(Abs.492nm)で測定し、H-FABPに対して高い反応性を示すハイブリドーマを選択した。選択されたハイブリドーマについて限界希釈法によるクローン化を行い、抗H-FABPモノクローナル抗体産生ハイブリドーマを10種類を確立した。
(2)モノクローナル抗体の調製
 2週間前にプリスタン0.5mLを腹腔内に注射しておいた12週齢の雌BALB/Cマウスに、上記(1)で得られたハイブリドーマを細胞数0.2×105個の量で腹腔内に投与した。約14日後に腹水を採取し、遠心処理して上清を得た。上清を等量の吸着用緩衝液(3mol/L NaCl-1.5mol/L Glycine-NaOH、pH8.5)と混和後、濾過した。この濾液を吸着用緩衝液で平衡化したプロテインAカラム(GEヘルスケア社製)に通して濾液中の抗体をカラムに吸着させた後、0.1mol/Lクエン酸緩衝液(pH3.0)でカラムより抗体を溶出させ、抗H-FABPモノクローナル抗体(Clone#87203、及びClone#87212)を精製した。
(測定)
 金コロイドに由来するシグナルを定量する方法としては、公知の方法に従って行えばよく、吸光度あるいは反射光強度を測定すればよい。この吸光度もしくは反射光強度の変化量を既知濃度のサンプルの検量線に外挿して、対象物の濃度を測定することもできる。
(イムノクロマトグラフィーを利用した検出方法)
 本発明のイムノクロマトグラフィーを利用した検出方法は、少なくとも以下の(A)~(E)の工程を有する方法であるが、典型的には、上述のイムノクロマトグラフィー用テストストリップを使用した検出方法である。
(A)少なくともサンプル供給部、展開部および検出部とを備えた多孔質体からなるメンブレンを有し、
展開部の一部には、金コロイドで標識された検出対象物に対する抗体(コンジュゲート)が溶出可能に保持され、さらに展開部の一部であってコンジュゲート保持部分より下流側に、固定化抗体が固定化されている検出部を有する、テストストリップ、のサンプル供給部にサンプルを供給する工程
(B)サンプル供給部において、または、サンプル供給部の上流において、ポリブレンとサンプルを接触させて、サンプル中の血液由来成分を凝集させる工程
(C)(B)の工程により得られた、凝集物をサンプルより分離除去する工程
(D)(C)の工程により得られた、凝集物が分離除去されたサンプル成分、を金コロイドを含むコンジュゲートと接触させる工程であって、ポリブレンによる前記コンジュゲートの凝集を抑制する能力を有する緩衝液の存在下に行う工程
(E)(D)の工程により得られた、サンプル成分中の対象物とコンジュゲートの複合体、を検出部において検出する工程
 次に実施例を挙げて本発明を具体的に説明するが、これらは本発明の範囲を限定するものではない。
〔実施例1〕本発明の緩衝液を使用した測定(1)
1.本発明のイムノクロマトデバイスの作製
1)金コロイド標識抗H-FABPモノクローナル抗体(抗H-FABP抗体コンジュゲート)の調製
(i)金コロイド溶液の調製
 73℃に加温した500mLの精製水に対し、5%(w/v)クエン酸三アンモニウム水溶液を1mL添加して攪拌混合した。続いて、5%(w/v)テトラクロロ金(III)水溶液を1mL添加し、攪拌しながら10分間反応させた後、反応液を沸騰させた。この後、氷水中で冷却し、平均粒子径が40nmの金コロイド溶液を調製した。この平均粒子径が40nmの金コロイド溶液を、20mmol/L Tris緩衝液(pH7.0)にて1OD/mLに調整した。
(ii)抗H-FABP抗体コンジュゲートの調製
 上記1OD/mLの金コロイド溶液(pH7.0)20mLに対し、2mmol/L Tris緩衝液(pH7.0)で46.2μL/mLに希釈した抗H-FABPモノクローナル抗体(Clone#87212)を1mL添加し、室温で10分間撹拌した。当該金コロイドと抗体との混合液に対し、0.2%(w/v)ブロッキング剤(NEO PROTEIN SAVER:東洋紡バイオケミカル社、No.NPS-301)を含む2mmol/L Tris緩衝液(pH7.0)を1mL添加し、室温で5分間攪拌した。その後、10℃にて、11900×gで45分間遠心した。上清を除去した後、得られた沈渣に、コンジュゲート希釈液(Conjugate Dilution Buffer:SCRIPPS社、No.B0221)を1mL添加してコンジュゲートを懸濁し、抗H-FABP抗体コンジュゲートを得た。
(iii)コントロールライン用金コロイド標識KLH(KLHコンジュゲート)の調製
 上記1OD/mLの金コロイド溶液(pH6.1)20mLに対し、2mmol/Lリン酸緩衝液(pH6.1)で620μg/mLとなるよう溶解したKLH(シグマ社製)を1mL添加し、室温で10分間撹拌した。当該金コロイドとKLHとの混合液に対し、10%ウシ血清アルブミン(BSA)水溶液を1mL添加し、室温で5分間攪拌した。その後、10℃にて、11900×gで45分間遠心した。上清を除去した後、得られた沈渣に、上記コンジュゲート希釈液を1mL添加してコンジュゲートを懸濁し、KLHコンジュゲートを得た。
2)コンジュゲートパッドの作製
 上記1)で調製した抗H-FABP抗体コンジュゲートを16OD/mL、KLHコンジュゲートを4.5OD/mLとなるように、それぞれ2.5%NEO PROTEIN SAVER、2.4%ラクトースを含む精製水又は下記緩衝液と混合してコンジュゲート溶液を作製し、一定体積のグラスファイバー製パッド(日本ポール社、No.8964)に該パッド体積の1.2倍容量滲みこませた。ドライオーブン内で70℃、45分間加温することにより乾燥させ、コンジュゲートパッドとした。また、必要に応じ、増感剤などの添加剤を添加する場合には、前記コンジュゲート溶液に必要量を添加した後、同様の操作を行えばよい。
3)抗H-FABPモノクローナル抗体固定化メンブレン(抗体固定化メンブレン)の作製
 抗H-FABPモノクローナル抗体(Clone#87203)を3mg/mLとなるように、2.5%スクロースを含む10mmol/Lリン酸緩衝液(pH7.2)で希釈調製し、また、コントロールラインの発色を目的として、ウサギ抗KLHポリクローナル抗体(Bethyl社製)を0.5mg/mLとなるように、2.5%スクロースを含む10mmol/Lリン酸緩衝液(pH7.2)にて希釈調製し、ニトロセルロースメンブレン(メルク社、HF180、260mmx25mm)の短辺の一端の内側の位置に上記抗H-FABPモノクローナル抗体、そこの位置から約5mmの間隔をあけて抗KLHポリクローナル抗体をイムノクロマト用ディスペンサー「XYZ3050」(BIO DOT社)を用いて1μL/cmとなるよう設定し、ライン状に塗布した。ドライオーブン内で70℃、45分乾燥し、抗体固定化メンブレンとした。
4)サンプルパッドの作製
 グラスファイバー製パッド(Lydall社)を適宜必要な大きさにカットして1%ポリブレンを含むコンジュゲートパッドと同一の緩衝液(又は精製水)を該パッド体積の1.15倍容量浸み込ませ、ドライオーブン内で70℃、45分乾燥したものをサンプルパッドとして用いた。
5)イムノクロマトグラフィー用テストストリップの作製
 プラスチック製粘着シート(a)に上記抗体固定化メンブレン(b)を貼り、展開上流部側に抗H-FABP抗体(c)、次いで抗KLH抗体(d)の順に塗布部を配置し、さらに血球分離膜(3rd Pad)(e)を装着した。次いで、上記2)で作製したコンジュゲートパッド(f)を配置装着し、さらにこのコンジュゲートパッドに重なるように上記4)で作製したサンプルパッド(g)を配置装着し、反対側の端には吸収パッド(h)を配置装着した。このように各構成要素を重ね合わせた構造物に切断してイムノクロマトグラフィー用テストストリップを作製した。該テストストリップは、アッセイの際、プラスチック性の専用のハウジング(サンプル添加窓部及び検出窓部を有する、図1中図示せず)に格納・搭載し、イムノクロマトテストデバイスの形態にした。図1にイムノクロマトグラフィー用テストストリップの模式構成図を示した。
2.試験結果
サンプルパッドに適用する緩衝液の種類の検討
 上記の9種類の緩衝液又は精製水それぞれを含浸したサンプルパッド及びコンジュゲートパッドを用いた各イムノクロマトグラフィー用テストストリップにより、ポリブレンと接触後、所定時間の展開を完了したコンジュゲートの凝集の程度を測定した。サンプルとして、ポリブレンの金コロイドコンジュゲート凝集作用がより明瞭にわかるよう全血ではなくEDTA-2Na採血管(テルモ社)にて採取し遠心分離した血漿検体を用い、H-FABP抗原(Hytest社)を添加した。該検体120μLをテストデバイスのサンプルパッド窓部に添加し、10分後にテストデバイスの血球分離膜(e)と抗体固定化メンブレン(b)の重なり部分を露出させ、イムノクロマトリーダーICA-1000(浜松ホトニクス社)を用いての反射光強度を測定した。測定された反射光強度は凝集感度として示し、5mAbs.以下を「-」、5mAbs.を超えて10mAbs.以下を「±」、10mAbs.を超えたものを「+」と表示することとした。なお、10mAbs.以下の金コロイド粒子の凝集は目視では確認できない。
 実施例2の結果とあわせ結果を表1に示す。
〔実施例2〕本発明の緩衝液を使用した測定(2)
実施例1の緩衝液成分について、実施例1とは異なる材料を使用して試験を行った。
1.本発明のイムノクロマトデバイスの作製(2)1)金コロイド標識抗Dダイマーモノクローナル抗体(抗Dダイマー抗体コンジュゲート)の調製
(i)金コロイド溶液(2)の調製
 65℃に加温した500mLの精製水に、クエン酸三アンモニウムとクエン酸三ナトリウム二水和物をともに7%(w/v)の割合で溶解せしめた水溶液を0.7mL添加し、攪拌混合した。続いて、7%(w/v)テトラクロロ金(III)水溶液を1mL添加し、攪拌しながら10分間反応させた後、反応液を沸騰させた。この後、氷水中で冷却することにより、平均粒子径が30nmの金コロイド溶液を調製した。この平均粒子径が30nmの金コロイド溶液を、20mmol/L Tris緩衝液(pH7.5)にて1 OD/mLに調製した。
(ii)抗Dダイマー抗体コンジュゲートの調製
 1 OD/mLの金コロイド溶液(pH7.5)20mLに対し、10mmol/L Tris緩衝液(pH7.5)で60μL/mLに希釈した抗Dダイマーモノクローナル抗体(Clone#672102)を1mL添加し、室温で10分間撹拌した。当該金コロイドと抗体との混合液に対し、ブロッキング試薬N102(日油製)を1mL添加し、室温で5分間攪拌した。その後、5%(w/v)Blocking Peptide Fragment(TOYOBO製)を含む20mmol/LTris緩衝液を2mL添加し、更に5分間撹拌した後に10℃にて、11900×gで45分間遠心した。
 上清を除去した後、得られた沈渣に、コンジュゲート希釈液を800μL添加して懸濁し、抗Dダイマー抗体コンジュゲートを得た。
2)コンジュゲートパッドの作製
 上記1)で調製した抗Dダイマーモノクローナル抗体感作コンジュゲートを22 OD/mLとなるように、それぞれ1.5%Blocking Peptide Fragment、2.4%ラクトース溶液を含む精製水又は下記緩衝液と混合してコンジュゲート溶液を作製し、一定体積のグラスファイバー製パッド(日本ポール社、No.8964)に該パッド体積の1.2倍容量滲みこませた。ドライオーブン内で70℃、45分間加温することにより乾燥させ、コンジュゲートパッドとした。また、必要に応じ、増感剤などの添加剤を添加する場合には、前記コンジュゲート溶液に必要量を添加した後、同様の操作を行えばよい。
3)抗Dダイマー抗体固定化メンブレンの作製
 抗Dダイマーモノクローナル抗体(Clone# DD3B6、American Diagnostica社製)を1.5mg/mLとなるように2.5%スクロースを含む20mmol/L HEPES緩衝液(pH8.0)として調製し、また、コントロールラインの発色を目的として、フィブリン分解物を2.5mg/mLとなるように、2.5%スクロースを含む10mmol/L Tris緩衝液(pH7.5)にて希釈調製し、ニトロセルロースメンブレン(ミリポア社、HF180、260mmx25mm)の短辺の一端の内側の位置に抗Dダイマーモノクローナル抗体、約5mmの間隔をあけてフィブリン分解物をイムノクロマト用ディスペンサー「XYZ3050」(BIO DOT社)を用いて0.8μL/cmとなるよう設定し、ライン状に塗布した。ドライオーブン内で40℃、45分乾燥し、抗体固定化メンブレンとした。なお、「フィブリン分解物」とは安定化フィブリンをプラスミンによる加水分解で調製され、抗Dダイマーモノクローナル抗体を感作したコンジュゲートがフィブリン分解物と結合することで発色し、イムノクロマト試薬の性能を担保するためのコントロールラインを呈する。
4)サンプルパッドの作製
 実施例1と同様の操作にて作製した。
5)イムノクロマトグラフィー用テストストリップの作製
 実施例1と同様の操作にて作製した。なお、(c)を抗Dダイマー抗体、(d)をフィブリン分解物に読み替えることとする。
2.試験結果
サンプルパッドに適用する緩衝液の種類の検討
 上記の9種類の緩衝液又は精製水それぞれを含浸したサンプルパッド及びコンジュゲートパッドを用いた各イムノクロマトグラフィー用テストストリップにより、ポリブレンと接触後、所定時間の展開を完了したコンジュゲートの凝集の程度を測定した。サンプルとして、ポリブレンの金コロイドコンジュゲート凝集作用がより明瞭にわかるよう全血ではなくEDTA-2Na採血管(テルモ社)にて採取し遠心分離した血漿検体を用い、フィブリン分解物を添加した。該検体120μLをテストデバイスのサンプルパッド窓部に添加し、10分後にテストデバイスの血球分離膜(e)と抗体固定化メンブレン(b)の重なり部分を露出させ、イムノクロマトリーダーICA-1000(浜松ホトニクス社)を用いての反射光強度を測定した。判定基準は実施例1と同様である。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
 Bis-TrisあるいはMESを用いた場合、検討したpH範囲のうちpKaより低いpHで効果が確認された。クエン酸は、検討したpH範囲のいずれにおいても効果が確認された。
 これは、実施例1及び2で共通しており、異なる材料を用いた場合においても、同じ条
件で効果を発揮できることが確認された。
 本発明によれば、ポリブレンを血液凝集剤として、検出試薬として金コロイドコンジュゲートを使用したイムノクロマトグラフィー法において、特定の緩衝液を使用することにより、金コロイドを凝集することなく、かつ、赤血球を凝集させてサンプル中から分離除去することができるため、サンプル中の対象物を正確に検出および測定することが可能となった。そして中和剤としてのポリアニオンの添加を必須条件としないため試薬構成を極めてシンプルなものとすることが可能となったことから、免疫反応やストリップ上の対象物の展開などに対して予測不能な作用をもたらす要因を低減することにもつながるというメリットを有する。
(a)プラスチック製粘着シート
(b)抗体固定化メンブレン
(c)抗H-FABP抗体
(d)抗KLH抗体
(e)血球分離膜(3rd Pad)
(f)コンジュゲートパッド
(g)サンプルパッド
(h)吸収パッド

Claims (8)

  1. イムノクロマトグラフィー用テストストリップであって、以下の構成を有するテストストリップ。
    (1)少なくともサンプル供給部、展開部および検出部とを備えた多孔質体からなるメンブレンを有し、展開部の一部には、金コロイドで標識された抗検出対象物抗体コンジュゲートが溶出可能に保持され、さらに展開部の一部であって前記コンジュゲート保持部分より下流側に、固定化抗体が固定化されている検出部を有する
    (2)サンプル供給部から、展開部のコンジュゲート保持部位の上流側まで、のすくなくとも一部にポリブレンによる前記コンジュゲートの凝集を抑制するための緩衝液成分が、サンプル供給部を通過して提供される血液凝集剤であるポリブレンと接触可能に含まれている
    ここで、前記緩衝液成分は、Bis-Tris、MES、クエン酸、からなる群より選ばれるものである。
  2. サンプル供給部にポリブレンが含まれている請求項1に記載のテストストリップ。
  3. サンプル供給部にポリブレンによる前記コンジュゲートの凝集を抑制するための緩衝液成分が含まれている請求項1又2に記載のテストストリップ。
  4. 血液凝集剤としてのポリブレンのカチオンを中和するための、中和剤としてのポリアニオンを含まない請求項1~3のいずれかに記載のテストストリップ。
  5. イムノクロマトグラフィーを利用した検出方法であって、
    (A)少なくともサンプル供給部、展開部および検出部とを備えた多孔質体からなるメンブレンを有し、
    展開部の一部には、対象物に対する抗体が感作された金コロイドを含むコンジュゲートが溶出可能に保持され、さらに展開部の一部であってコンジュゲート保持部分より下流側に、固定化抗体が固定化されている検出部を有する、テストストリップ、
    のサンプル供給部にサンプルを供給する工程
    (B)サンプル供給部において、または、サンプル供給部の上流において、ポリブレンとサンプルを接触させて、サンプル中の血液由来成分を凝集させる工程
    (C)(B)の工程により得られた、凝集物をサンプルより分離除去する工程
    (D)(C)の工程により得られた、凝集物が分離除去されたサンプル成分、を金コロイドを含むコンジュゲートと接触させる工程であって、ポリブレンによる前記コンジュゲートの凝集を抑制する能力を有する緩衝液の存在下に行う工程
    (E)(D)の工程により得られた、サンプル成分中の対象物とコンジュゲートの複合体、を検出部において検出する工程
    ここで、前記緩衝液成分は、Bis-Tris、MES、クエン酸、からなる群より選ばれるものである。
  6. サンプル供給部にポリブレンが含まれている請求項5に記載の検出方法。
  7. サンプル供給部にポリブレンによる前記コンジュゲートの凝集を抑制するための緩衝液成分が含まれている請求項5又は6に記載の検出方法。
  8. 血液凝集剤としてのポリブレンのカチオンを中和するための、中和剤としてのポリアニオンを含まない請求項5~8のいずれかに記載の検出方法。
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