WO2012140296A1 - Anticuerpo, kit y metodo para la determinacion de peptidos amiloides - Google Patents

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Definitions

  • the invention relates to the field of immunoassays that allow the detection of ⁇ 17 peptides by virtue of the use of an anti-Api7 antibody and a kit and a method using said antibody.
  • the invention also relates to a method for diagnosing or distinguishing between different phases of a neurodegenerative disease. BACKGROUND OF THE INVENTION
  • AD Alzheimer's disease
  • a progressive degenerative disease of the central nervous system characterized by progressive and increasing memory loss, followed by loss of limb control and bodily functions and final death. It is by far the most common cause of dementia that affects 1 to 6% of people over 65 years of age and between 10 and 20% of those over 80.
  • AD Alzheimer's disease
  • the plaques have central nuclei of amyloid deposits formed primarily by fibrils of a 40-42 amino acid peptide called ⁇ -amyloid peptide ( ⁇ ) surrounded by degenerated axons and glia cells. This peptide results from the proteolytic processing of a precursor protein called ⁇ -amyloid ( ⁇ ) precursor protein.
  • NINCDS National Institute of Neurological and Communication Disorders and Stroke
  • ADRDA Association of Alzheimer's Disease and Related Disorders
  • Definitive Alzheimer's disease The patient meets the criteria for probable Alzheimer's disease and has histopathological evidence of AD by autopsy or biopsy.
  • Probable or prodromal Alzheimer's disease Dementia has been established by clinical and neuropsychological examination. Cognitive deficiencies also have to be progressive and be present in two or more areas of knowledge. The onset of deficiencies has been between the ages of 40 and 90 years and finally there must be an absence of other diseases capable of producing a dementia syndrome.
  • Alzheimer's disease There is a dementia syndrome with an atypical onset, presentation or evolution, and without a known etiology; but it is not believed that comorbid diseases capable of producing dementia are at the origin of it.
  • the patient has a dementia syndrome with a sudden onset, focal neurological signs or seizures or early gait disorder in the course of the disease.
  • Mild cognitive impairment also known as incipient dementia or isolated memory impairment
  • MCI Mild cognitive impairment
  • incipient dementia is a diagnosis given to individuals who have cognitive impairments beyond what is expected for their age and education, but that does not significantly interfere with their daily activities (Petersen RC et al. (1999) Arch. Neurol. 56 (3): 303-8). It is considered to be the limit or transitional phase between normal aging and dementia.
  • DCL can occur with a variety of symptoms, when memory loss is the predominant symptom it is called “amnesic DCL” and is often seen as a risk factor for Alzheimer's disease (Grundman M et al. (2004 ) Arch. Neurol. 61 (1): 59-66).
  • amyloid plaques are a defining characteristic of the neuropathology of Alzheimer's disease, and ⁇ can be detected in plasma, its measurement is a compelling candidate biomarker for Alzheimer's disease.
  • AD Alzheimer's disease
  • diagnosis of AD is carried out using clinical criteria based on the presence of typical clinical signs and the exclusion of other types of dementia using neuroimaging techniques and blood tests.
  • the diagnostic reliability is acceptable although, according to studies done using brain autopsy, between 10-20% of patients diagnosed with AD suffered from a different disease.
  • current diagnostic methods can only be carried out when the neurodegenerative process is so advanced that the patient suffers from severe dementia and brain damage is so extensive that the number of therapeutic measures is limited.
  • the definitive diagnosis requires pathological examination of post-mortem brain tissue.
  • WO200646644 describes an electrochemiluminescent sandwich (ECL) assay in which Acm 21F12 (which recognizes amino acids 33-42 of ⁇ 42) is coupled to magnetic balls, which are then used to capture the ⁇ 42 peptide in the sample containing ⁇ 42 and they also contact the Acm 3D6 coupled to a ruthenium complex. The amount of 3D6 antibody bound by the luminescence emitted by the ruthenium complex is then detected when electrical energy is applied. Using this assay, the inventors are able to detect as little as 0.5 pg / ml of a ⁇ 42 standard.
  • ECL electrochemiluminescent sandwich
  • WO2009015696 describes a high sensitivity sandwich ELISA assay in which the detection antibody is contacted with a biotin-labeled reagent that shows specificity for said antibody. The reagent contacts streptavidin that is coupled to peroxidase. The peroxidase activity is then detected by colorimetry using TMB or fluorescently using QuantaBlue.
  • WO2006053251 describes a method for the determination of beta amyloid peptide species in a sample comprising contacting a sample with a denaturing agent, extracting the set of peptides from the sample-denaturing agent mixture, separating the beta amyloid peptide species. from the set and determine the amount of amyloid beta peptide species. This method requires a step of separation of the peptides before the determination, which produces an increased processing time and increased costs.
  • Biomarkers suitable for AD described in the prior art and which can be detected in plasma include (i) amyloid plaque derived markers, (ii) autoantibodies against ⁇ or ⁇ , (iii) inflammatory markers such as IL-6, their receptor or gpl30, C-reactive protein or oxidative stress (isoprostanes), (iv) markers of lipid metabolism (apoE, oxysterols) and (v) markers of vascular disease (homocysteine, lipoprotein b Clq) (Scheuner D et al. (1996 ) Nature Med 2, 864-870).
  • the anti-AP monoclonal antibody (1-17) (6E10) is an antibody directed towards the N-terminal region of the ⁇ peptide, generated against the ⁇ (1-17) peptide (Kim KS, et al. Neurosci. Res. Comm. 7; 1988) and which recognizes the ⁇ peptides that include said region or the monoclonal antibody generated against the ⁇ peptide (1-28) (Pierce).
  • the invention relates to an antibody that specifically binds to the ⁇ peptide (1-17).
  • the invention relates to a kit for the detection of the ⁇ peptide (1-17), comprising:
  • the invention relates to a method for determining or detecting the ⁇ peptide (1-17) in a sample comprising the steps of
  • step (ii) contacting the immune complexes formed in step (i) with a second antibody, wherein said second antibody is as defined in any one of claims 1 to 4 and wherein said second antibody recognizes a different region than the first antibody and is coupled to a first member of a binding pair;
  • step (iii) contacting the complexes formed in step (ii) with a second member of a binding pair that is coupled to a detectable label, and (iv) detecting or determining the activity or amount of the detectable label.
  • the invention relates to a method for monitoring a neurodegenerative disease in a subject, comprising:
  • the invention relates to a method for determining whether a subject suffers from mild Alzheimer's disease which comprises determining the value of one or more parameters selected from the group consisting of:
  • the invention relates to a method for determining whether a subject suffers from MCI with prodromal Alzheimer's disease which comprises determining the value of one or more of the parameters selected from the group of:
  • the invention relates to a method for determining whether a subject suffers from MCI with prodromal Alzheimer's disease which comprises determining the value of one or more parameters selected from the group of:
  • the invention relates to a method for determining whether a subject suffers from mild Alzheimer's disease which comprises determining the value of one or more parameters selected from the group of:
  • the invention relates to a method for determining whether a subject suffers from mild Alzheimer's disease which comprises determining the value of one or more parameters selected from the group of:
  • Figure 1 Result of a stain transfer test carried out using the polyclonal anti-A ⁇ antibody (1-17) and different ⁇ peptides adsorbed to a membrane.
  • the secondary antibody used in the assay was a goat anti-rabbit-HRP antibody.
  • the blot transfer was revealed with ECL with SNAP technology at 1 minute and 3 minutes of exposure.
  • Figure 2 shows the mass spectrometry analysis for a CSF sample (2A) and a plasma sample (2B), where the ⁇ 17 peak is indicated by an arrow.
  • Figure 3 shows the mean values of some of the markers in different patient groups.
  • LP libre ⁇ free in plasma
  • TP total ⁇ in plasma
  • UC unido ⁇ bound to cells
  • CES whole in blood (total ⁇ in plasma + ⁇ bound to cells).
  • TO Concentration in pg / ml of the ⁇ markers obtained in a sandwich ELISA for the different groups: CS> 65 (healthy subjects over 65), possible DCL (subjects with mild cognitive impairment with possible or non-prodromal AD), probable DCL ( subjects with mild cognitive impairment with probable or prodromal AD) and mild AD (subjects with mild Alzheimer's disease).
  • B and (C): graphs that represent the absorbance obtained in ELISA for several markers in the different groups.
  • Figure 4 shows the mean values of some of the markers in different patient groups.
  • LP libre ⁇ free in plasma
  • TP total ⁇ in plasma
  • UC unido ⁇ bound to cells
  • CES whole in blood (total ⁇ in plasma + ⁇ bound to cells).
  • A Concentration ratios (in pg / ml) of the ⁇ markers obtained in a sandwich ELISA for the different groups: CS> 65 (healthy subject over 65), possible DCL (possible mild cognitive impairment or non-prodromal) , Probable DCL (probable or prodromal mild cognitive impairment) and mild AD (mild Alzheimer's disease).
  • B Graphs representing the absorbance obtained in ELISA for various markers in the different groups.
  • Figure 5 shows the mean values of some of the markers in different patient groups.
  • LP libre ⁇ free in plasma
  • TP total ⁇ in plasma
  • UC unido ⁇ bound to cells
  • CES whole in blood (total ⁇ in plasma + ⁇ bound to cells).
  • A Quotients of the concentrations in pg / ml of the ⁇ markers obtained in a sandwich ELISA for the different groups: CS> 65 (healthy subject over 65), possible DCL (possible mild cognitive impairment or non-prodromal), DCL probable (probable or prodromal mild cognitive impairment) and mild AD (mild Alzheimer's disease).
  • B Graph representing the absorbance obtained in ELISA for several markers in the different groups.
  • Figure 6 shows the ratio between free ⁇ 17 in plasma (LP) and ⁇ 17 bound to cells (UC) for the distinction between different groups.
  • A concentration in pg / ml of the ⁇ markers obtained in a sandwich ELISA for the different groups: CS> 65 (healthy subject over 65), possible DCL (possible mild cognitive impairment or non-prodromal), probable DCL (deterioration mild cognitive likely or prodromal) and mild AD (mild Alzheimer's disease).
  • B Graph representing the absorbance obtained in ELISA for said marker in the different groups.
  • Figure 1 shows that the antibody recognizes ⁇ 17 in a specific manner without showing substantial cross-reactivity towards other ⁇ species such as ⁇ 15, ⁇ 16, ⁇ 38, ⁇ 40 or ⁇ 42. They have also designed a kit for the detection of the ⁇ 17 peptide which allows a reliable quantification of said molecular species in any sample in any subject and, in particular, in the plasma of subjects suspected of suffering from AD. Likewise, the authors have shown that it is possible to distinguish between different groups of subjects: healthy subjects, with prodromal AD, with mild non-prodromal cognitive impairment and with mild AD measuring the level of different parameters.
  • the invention relates to an antibody, hereinafter the antibody of the invention, which specifically binds to the ⁇ peptide (1-17) (SEQ ID NO: 1).
  • the term "specifically binds”, as used herein, refers to an antibody that binds to the ⁇ 17 peptide without giving any substantial cross-reaction with other ⁇ peptides.
  • the specificity for the ⁇ 17 peptide is greater than 50%, greater than 60%, greater than 70%, greater than 80% or greater than 90%. More preferably, the specificity of the antibody for the ⁇ 17 peptide is greater than 95%.
  • the inventors have tested the specificity of the anti-A ⁇ l7 antibody and have shown that it is very specific for the ⁇ 17 peptide and does not show any substantial cross-reactivity towards other ( ⁇ ( ⁇ 15, ⁇ 16, peptides) ⁇ 38, ⁇ 40 and ⁇ 42).
  • the antibody of the invention does not show substantial cross-reactivity towards a ⁇ peptide selected from the group consisting of ⁇ 15, ⁇ 16, ⁇ 38, ⁇ 40, ⁇ 42 and a combination of one or more of them.
  • suitable antibody molecules include: - "intact" antibodies comprising a variable region of antigen binding as well as a constant domain the light chain (CL) and constant domains of the heavy chain, CHl, CH2 and CH3,
  • Fab fragments containing the constant domain of the light chain and the first constant domain (CHl) of the heavy chain and having an antigen binding site only.
  • Fab 'fragments are differentiated from Fab fragments by the addition of a few residues at the carboxy end of the CHl domain of the heavy chain including one or more cisterns from the hinge region of the antibody,
  • Fv is the minimum antibody fragment that contains a complete antigen recognition and antigen binding site.
  • This region consists of a dimer of a variable domain of the heavy chain and one of the light chain in close association, not covalent. It is in this configuration that the three hypervariable regions (CDR) of each variable domain interact to define an antigen binding site on the surface of the VH-VL dimer.
  • CDR hypervariable regions
  • - FV single chain or "scFv” antibody fragments comprise the VL and VH domains of the antibody, where these domains are present in a single polypeptide chain.
  • the VL and VH regions are joined by a polypeptide linker that allows the "scFv” to form desired structures for antigen binding.
  • “Diabodies” comprise a heavy chain variable domain (VH) linked to a light chain variable domain (VL) in the same chain polypeptide (VH-VL) joined by a peptide linker that is too short to allow pairing between the two domains in the same chain. This forces pairing with the complementary domains of another chain and encourages the assembly of a dimeric molecule with two functional antigen binding sites.
  • Bospecific antibodies are individual, divalent antibodies (or immunotherapeutically effective fragments thereof) that have two differently specific antigen binding sites.
  • the two antigen sites may be coupled chemically or by genetic engineering methods known in the art.
  • All of these antibody fragments can be further modified using conventional techniques known in the art, for example, using deletion (s), insertion (s), addition (s) of amino acids and / or recombination (and / or any other modification (s) (for example, posttranslational and chemical modifications, such as glycosylation and phosphorylation) known in the art, alone or in combination.
  • deletion (s), insertion (s), addition (s) of amino acids and / or recombination (and / or any other modification (s) for example, posttranslational and chemical modifications, such as glycosylation and phosphorylation
  • Methods for introducing such modifications into the DNA sequence underlying the amino acid sequence of a immunoglobulin chain are well known to skilled in the art, see for example Sambrook et al .; Molecular Clonning: a Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2nd edition 1989 and 3rd edition 2001.
  • Suitable antibodies for the present invention include both polyclonal and monoclonal antibodies.
  • various hosts can be immunized including goats, rabbits, rats, mice, sheep, dogs, camels, dromedaries, llamas, humans, birds and others by injection with the peptide corresponding to the ⁇ 17 fragment that has properties immunogenic
  • various adjuvants can be used to increase the immune response.
  • adjuvants include, but are not limited to, Freund's mineral gels such as aluminum hydroxide, surfactants such as lisolecithin, polyanions, peptides, oil emulsions, KLH and dinitrophenol.
  • the adjuvants used in humans are Freund's complete adjuvant, Freund's incomplete adjuvant and Imjet alum.
  • Useful proteins for conjugation with the peptide are, without limitation, California limpet hemocyanin (KLH), Blue Carrier (hemocyanin isolated from Concholepas concholepas), bovine thyroglobulin or soy trypsin inhibitor, using a bifunctional or derivative agent, for example , maleimidobenzoyl ester and sulfosuccinimide (conjugation through cysteine residues), N-hydroxysuccinimide (through lysine residues), glute aldehyde, succinic anhydride or SOCl 2 .
  • KLH California limpet hemocyanin
  • Blue Carrier hemocyanin isolated from Concholepas concholepas
  • bovine thyroglobulin or soy trypsin inhibitor using a bifunctional or derivative agent, for example , maleimidobenzoyl ester and sulfosuccinimide (conjugation through cysteine residues), N-hydroxysuccinimide
  • the protein used for conjugation is KLH.
  • the conjugation between the peptide and KLH is carried out by means of the NHS-PEG 4 -maleimide crosslinker and the peptides have a cysteine in the N-terminal to perform the conjugation of the peptide to KLH.
  • monoclonal antibodies For the production of monoclonal antibodies, conventional techniques can be used. For example, monoclonal antibodies can be made using the hybridoma method first described by Kohler et al., Nature, 256: 495 (1975) using the procedure described in detail in units 11.4 to 11.11 of Ausubel, FM et al. . (Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons Inc .; ring bound edition, 2003). Alternatively, monoclonal antibodies can be isolated by recombinant DNA methods from phage antibody libraries generated using the techniques described in McCafferty et al., Nature 348: 552-554 (1990).
  • polyclonal antibodies can be used directly as an antiserum obtained from hosts immunized after bleeding and removal of the fibrin clot.
  • Monoclonal antibodies can be used directly as a hybridoma culture supernatant or as ascites fluid after hybridoma implantation in the peritoneal cavity of a suitable host.
  • the polyclonal or monoclonal immunoglobulin molecules can be purified before use by conventional methods such as affinity purification using ⁇ 17 derived peptides, non-denaturing gel purification, HPLC or RP-HPLC, molecular exclusion, column purification of protein A, or any combination of these techniques.
  • the antibody of the invention is a polyclonal antibody.
  • the method for generating the antibody of the invention includes the following steps:
  • I at dose Immunization of a rabbit with 100 ⁇ g of the peptide using Freund's complete adjuvant as an adjuvant.
  • 2nd dose Immunization of rabbit with 100 .mu.g of the peptide using Freund 's incomplete adjuvant adjuvant.
  • the region of the ⁇ peptide or immunogen used to generate the antibody of the invention is selected from the group consisting of ⁇ peptide (12-17), corresponding to the sequence VHHQKL (SEQ ID NO: 2) and of the ⁇ peptide (11-17), corresponding to the sequence EVHHQKL (SEQ ID NO: 3).
  • kit of the invention relates to a kit for the detection or for the determination of the ⁇ peptide (1-17), hereinafter kit of the invention, comprising:
  • beta amyloid peptide is used interchangeably herein with ⁇ , beta amyloid protein, "A beta”, “beta AP”, “beta A peptide”, or “beta A peptide” and refers to a family of peptides that are the main chemical constituent of senile plaques and vascular amyloid deposits (amyloid angiopathy) found in the brains of patients with Alzheimer's disease (AD), Down syndrome and hereditary brain hemorrhage with Dutch amyloidosis (HCHWA) -D).
  • AD Alzheimer's disease
  • HSHWA hereditary brain hemorrhage with Dutch amyloidosis
  • the beta amyloid peptide is a fragment of beta-amyloid precursor protein (APP) comprising a variable number of amino acids that is produced by sequential proteolytic cutting of the amyloid precursor protein by the ⁇ and ⁇ secretases or for ⁇ and a secretases.
  • APP beta-amyloid precursor protein
  • Beta amyloid peptides are commonly expressed as wherein x represents the amino acid number of the amino terminus of the beta amyloid peptide and y represents the amino acid number of the carboxy terminus.
  • ⁇ (1-17) or “ ⁇ 17”, as used herein, refers to a 17 amino acid peptide corresponding to amino acids 672 to 688 (SEQ ID NO: 1) of the amyloid precursor protein and which is produced by the sequential proteolytic cut of the amyloid precursor protein (SEQ ID NO: 4) by ⁇ and a secretases.
  • the "capture antibody” is the antibody that is used to recover from a sample all molecular species to which the antibody specifically binds.
  • the type of antibody that can be used as a capture antibody there is virtually no limitation on the type of antibody that can be used as a capture antibody as long as it contains at least one antigen binding site specific for ⁇ 17.
  • any antibody specific for the ⁇ 17 peptide can be used as a capture antibody.
  • the capture antibody binds to a different region than the second antibody.
  • the capture antibody is directed against an epitope in the N-terminal region of the ⁇ 17 peptide.
  • epitopes to which the capture antibody can be directed include epitopes located at amino acids 1 to 10 of ⁇ 17.
  • the capture antibody is a monoclonal antibody.
  • the capture antibody recognizes a region. corresponding to amino acids 1-16 of the ⁇ peptide.
  • the monoclonal antibody used as a capture antibody is Acm 6E10 as described in Kim, KS (Neuroscience Res. Comm. 1988, 2: 121-130).
  • the second component of the kit of the invention corresponds to the antibody of the invention, already described previously in the present invention.
  • the "detection antibody” is the antibody that will be used to detect the amount of antigen that the capture antibody has retained.
  • the first antibody recognizes a different region than the second antibody, because it must bind to a region of the antigen that is not covered by the capture antibody.
  • the first and second antibodies can be used interchangeably in the kit of the invention as capture and detection antibodies.
  • One of the two antibodies may be coupled to a first member of a binding pair, so as to allow detection of the antibody that binds to the antigen captured by the capture antibody.
  • the antibody to be coupled will act as a detection antibody and may be the first or second antibody.
  • the kit further comprises an antibody or combination of antibodies that specifically bind ⁇ 40 and / or ⁇ 42.
  • the kit would be useful for the detection of the ⁇ 17 peptide and the ⁇ 40 and / or ⁇ 42 peptide (s).
  • 42 ⁇ 42 refers to a 42 amino acid peptide that corresponds to amino acids 672 to 713 (SEQ ID NO: 5) and is produced by sequential proteolytic cutting of the amyloid precursor protein (SEQ ID NO : 4) by ⁇ and ⁇ secretases.
  • 40 ⁇ 40 refers to a 40 amino acid peptide corresponding to amino acids 672 to 711 (SEQ ID NO: 6) and which is produced by sequential proteolytic cutting of the amyloid precursor protein (SEQ ID NO : 7) by ⁇ and ⁇ secretases.
  • the first or second antibody is coupled to a first member of a binding pair. If this is the case, a second member of a coupling pair coupled to is also included in the kit A detectable tag.
  • the detectable label that is coupled to the second member of the binding pair is an enzymatic label, then the kit further comprises a substrate that can convert said enzyme into a detectable product.
  • Suitable first and second members of binding pairs include, without limitation:
  • ⁇ hapten or antigen / antibody for example, digoxin and anti-digoxin antibodies
  • biotin or biotin analogues for example, aminobiotin, iminobiotin or destiobiotin
  • avidin or streptavidin for example, aminobiotin, iminobiotin or destiobiotin
  • nucleic acid or nucleic acid analog / complementary nucleic acid ⁇ nucleic acid or nucleic acid analog / complementary nucleic acid
  • ⁇ receptor / ligand for example, steroid hormone / steroid hormone receptor
  • first and second member of a union pair is relative and that each of the previous members can be seen as the first or second member of the union pair.
  • first member of a binding pair is biotin or a functionally equivalent variant thereof and the second member of the binding pair is avidin, streptavidin or a functionally equivalent variant thereof.
  • the second member of the binding pair is streptavidin.
  • Suitable detectable labels include, without limitation, fluorescent groups (e.g., fluorescein, rhodamine, phycoerythrin, coumarin, oxazine, resorufin, cyanine and derivatives thereof), luminescent groups (e.g., the Qdot TM nanoparticles supplied by Quantum Dot Corporation , Palo Alto, CA). If the detectable label is an enzyme, then this enzyme must be able to generate a detectable signal, for example, after the addition of an activator, substrate, agent amplifier and similar. Enzymes that are suitable as detectable labels for the present invention and their corresponding substrates include:
  • Chromogenic substrates substrates based on p-nitrophenyl phosphate (p-NPP), 5-bromo-4-chloro-3-indolyl phosphate / tetrazolium nitro blue (BCIP / NBT), Fast-Red / Naphthol-AS phosphate -TS
  • o Fluorogenic substrates 4-methylumbelliferyl phosphate (4-MUP), 2- (5'-chloro-2'-phosphoryloxyphenyl) -6-chloro-4- (3H) -quinazolinone (CPPCQ), 3.6- diphosphate fluorescein (3,6-FDP), diazonic salts of Fast Blue BB, Fast Red TR, or Fast Red Violet LB.
  • ABTS 2,2-azinobis (3- ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid)
  • OPT o-phenylenediamine
  • TMB 3,3 ', 5,5'-tetramethylbenzidine
  • DMAB 3-dimethylaminobenzoic acid
  • MBTH 3-methyl-2- benzothiazolinehydrazone
  • AEC 3-amino-9-ethylcarbazole
  • DAB diaminobenzidine tetrahydrochloride
  • o Fluorogenic substrates 4-hydroxy-3-methoxyphenylacetic acid, reduced phenoxazines and reduced benzothiazines, including the Amplex® Red reagent, Amplex UltraRed and reduced dihydroxanthenes.
  • o Chromogenic substrates o-nitrophenyl-P-D-galactoside (o-NPG), p-nitrophenyl-P-D-galactoside and 4-methylumbelliphenyl-P-D-galactoside (MUG) for ⁇ -D-galactosidase.
  • Fluorogenic substrates ⁇ -D-galactopyranoside resorufin, fluorescein digalactoside (FDG), fluorescein diglucuronide, 4- methylumbelliphenyl-P-D-galactopyranoside, carboxybimbiferiferyl-P-D-galactopyranoside and ⁇ -D-fluoroside.
  • Luminescent substrates luciferin.
  • the detectable label is a fluorescent molecule, a luminescent molecule or an enzyme.
  • the detectable label is horseradish peroxidase and the detection reagent is TMB.
  • the kit further comprises a solid support.
  • support or “surface” refers to a solid phase that is a water-insoluble porous or non-porous material that can have any of a number of shapes, such as a strip, rod, particles, including latex particles, magnetic particles, microparticles, balls, membranes, microtiter wells and plastic tubes.
  • any material is suitable as a solid support as long as it is capable of binding sufficient amounts of capture antibody.
  • the choice of the solid phase material is determined based on the performance characteristics of the desired assay format.
  • Suitable materials for the solid support include polymeric materials, particularly cellulose materials and cellulose derived materials, such as fiber-containing papers, for example, filter paper, chromatographic paper, fiberglass paper, etc .; Modified synthetic or natural polymers, such as nitrocellulose, cellulose acetate, polyvinyl chloride, polyacrylamide, crosslinked dextran, agarose, polyacrylate, polyethylene, polypropylene, poly (4-methylbutene), polystyrene, polymethacrylate, poly (ethylene terephthalate ), nylon, poly (vinyl butyrate), etc .; used by themselves or together with other materials; glass such as, for example, glass available as bioglass, ceramics, metals, and the like.
  • Non-crosslinked polymers of styrene and carboxylated styrene or styrene functionalized with other active groups such as amino, hydroxyl, halo and the like are preferred.
  • copolymers of dienes substituted with dienes such as butadiene will be used.
  • the antibody that is not coupled to the first member of a binding pair is attached to the solid support, which may be the first or second antibody.
  • the solid support and the first or second antibody can be provided separately in the kit or, alternatively, the support can already be distributed precoated with the antibody. In this case, the support may have been treated with a blocking solution after antibody binding. If the support is precoated, it is preferred that the support is treated with a concentrated solution of trehalose and allowed to dry, in which case the dried trehalose forms a halo in the support.
  • These supports containing dry trehalose are exceptionally stable and can be stored for up to two years if kept at 4 ° C in the dark.
  • Additional kit components may include:
  • Means for maintaining the peptides in an unfolded state eg, concentrated guanidino hydrochloride.
  • the immobilization of the antibody on the solid support can be carried out before the binding of the target polypeptide to be detected or once the peptide / protein binds to the antibody. In any case, if a solid support is used, it is convenient to block excess protein binding sites in the support before adding the sample containing the target polypeptide to be determined.
  • blocking or termination of peptide binding sites in the support is carried out using the same buffer that is used to wash the complexes after each binding reaction (eg, 50 mM Tris-HCl, pH 8, PBS or TBS optionally with Tween 20) supplemented with a macromolecular compound (eg, bovine serum albumin, skimmed milk powder, immunoblotting reagent, casein, albumin lacto, ovalbumin) at concentrations from about 0.05% to 10%, preferably from 1% to 5%, more preferably about 3%.
  • a macromolecular compound eg, bovine serum albumin, skimmed milk powder, immunoblotting reagent, casein, albumin lacto, ovalbumin
  • the support comprising the immobilized capture antibody should be stored for some time, it is preferred that the support be treated with a Concentrated trehalose solution and allowed to dry, in which case the dried trehalose forms a halo in the support.
  • These supports containing dry trehalose are exceptionally stable and can be stored for up to two years when kept at 4 ° C in the dark.
  • the kit of the invention allows the detection or determination with high sensitivity and specificity of the peptide or peptides that are specifically recognized by the first and second antibody components of the kit.
  • the invention relates to the use of a kit of the invention to detect the ⁇ 17 peptide in a sample.
  • the kit is used to optionally detect the ⁇ 40 and / or ⁇ 42 peptides and the combination thereof in a sample.
  • kits of the invention In view of the ability of the kit of the invention to provide a determination with high sensitivity and specificity of the ⁇ 17 peptide in any sample, it can be used for the diagnosis of any disease where there is an altered concentration of any of this peptide in any cellular liquid or tissue, in particular, degenerative diseases and, more particularly, neurodegenerative diseases.
  • degenerative diseases Non-limiting examples of degenerative diseases that can be diagnosed based on the appearance of altered levels of ⁇ 17 or altered levels of ⁇ 40 and / or ⁇ 42 include:
  • Degenerative bone disorders such as osteopenia, osteomalacia, osteoporosis, osteomyeloma, osteodystrophy, Paget's disease, osteogenesis imperfecta, bone sclerosis, aplastic bone disorder, humoral hypercalcemic myeloma, multiple myeloma and bone thinning after metastasis.
  • degenerative muscle diseases such as muscular dystrophy, muscular atrophy, congestive obstructive pulmonary disease, progressive muscular atrophy, sarcopenia, cachexia.
  • Degenerative diseases of the heart including cardiac cell death due to ischemia, tissue and organ death due to transplant rejection, hearing loss due to autotoxicity.
  • degenerative disorders of the retina such as retinitis pigmentosa,
  • degenerative diseases of the nervous system such as Alexander's disease, Alper's disease, Alzheimer's disease, amyotrophic lateral sclerosis, telangiectasia ataxia, Batten's disease, bovine spongiform encephalopathy (BSE), Canavan's disease, Cockayne's syndrome, corticobasal degeneration, disease of Creutzfeldt-Jakob, Huntington's disease, HIV-associated dementia, Kennedy's disease, Krabbe's disease, dementia with Lewy body, Machado-Joseph's disease (spinocerebelar ataxia type 3), multiple sclerosis, multiple systemic atrophy, neuroborreliosis, disease of Parkinson's, Pelizaeus-Merzbacher disease, Pick's disease, primary lateral sclerosis, prion diseases, Refsum disease, Sandhoff's disease, Schilder's disease, schizophrenia, Spielmeyer-Vogt-Sjogren-Batten disease (also known as Bat
  • the kit of the invention allows to carry out a method to determine or detect the ⁇ 17 peptide in a sample.
  • the invention relates to a method for determining or detecting the ⁇ (1-17) peptide in a sample, hereinafter method for the detection of the invention, comprising the steps of:
  • step (ii) contacting the immune complexes formed in step (i) with a second antibody, wherein said second antibody is as defined in any of claims 1 to 4 and wherein said second antibody recognizes a different region than the first antibody and is coupled to a first member of a binding pair;
  • step (iii) contacting the complexes formed in step (ii) with a second member of a binding pair that is coupled to a detectable label, and (iv) detect or determine the activity or amount of the detectable label.
  • sample includes any tissue culture, plasma, serum, saliva, semen, sputum, cerebrospinal fluid (CSF), tears, mucus, sweat, milk, brain or peripheral tissue extracts and the like
  • the sample is selected from the group of blood, serum, plasma and CSF.
  • the sample is a plasma sample.
  • the peptides that are detected correspond to non-oligomeric forms of said peptide, more preferably, monomeric forms of Api7.
  • the sample containing the ⁇ 17 peptide is contacted with a first antibody to form first immune complex.
  • the first antibody is a monoclonal antibody.
  • the monoclonal antibody is the 6E10 antibody.
  • wash buffers that can be used in the context of the present invention include any buffer with a pH close to physiological (e.g., 50 mM Tris-HCl) that optionally comprises salts (e.g., 150 mM NaCl) and that optionally it comprises low concentrations of a detergent (for example, 0.05% Tween-20).
  • a pH close to physiological e.g., 50 mM Tris-HCl
  • salts e.g., 150 mM NaCl
  • a detergent for example, 0.05% Tween-20
  • the complexes formed between the capture antibody and the ⁇ peptide in the sample are contacted with the second antibody so that a "sandwich type" immune complex is formed.
  • the first antibody and the second antibody will bind to different regions of the ⁇ 17 peptide, so that there is no interference between them.
  • the first and second step of the present method can be exchanged and the capture of the ⁇ 17 peptide can be performed by the second antibody (the antibody of the invention).
  • the complex is then contacted with the first antibody, which will bind in a different region like the second antibody.
  • One of the two antibodies will be coupled to a first member of a binding pair, which will correspond to the antibody that is not used in the capture step.
  • the immune complexes can be washed to remove the nonspecifically bound antibodies using essentially the same buffers and procedures as described above.
  • the method of the invention involves contacting the complexes formed between the capuro-antigen antibody and the detection antibody coupled with a first member of a binding pair with a second member of a binding pair that It is attached to a detectable label.
  • the first member of a binding pair is biotin and the second member of a binding pair is avidin, streptavidin or a functionally equivalent variant thereof.
  • the method involves detecting the detectable label.
  • the detection and / or quantification of the detectable label depends on the nature of the label and are methods known in the art.
  • the detection can be by visual observation in a UV transilluminator, or by using camera detection system with a UV interconnected load device (CCD), a gel scanner laser, a camera detection system with CCD with xenon arc, a Polaroid camera combined with a UV transilluminator as well as a variety of other devices used for the detection of luminescence.
  • CCD UV interconnected load device
  • the fourth step of the method according to the invention involves exposing the labeled labeled immunocomplexes (eg, the captured peptide, the detection antibody and the reagent labeled with the detectable label) to activators, substrates or amplifying agents of the enzyme used as a detectable label.
  • labeled labeled immunocomplexes eg, the captured peptide, the detection antibody and the reagent labeled with the detectable label
  • Well-known detectable tags capable of generating a detectable signal include enzyme labeled antibodies. Examples of well-known enzymes for this purpose include radish peroxidase, alkaline phosphatase and glycosidases, including ⁇ -galactosidase, ⁇ -glucosidase and ⁇ -glucuronidase.
  • a reagent that specifically binds to the antibody of Detection may be labeled with horseradish peroxidase.
  • detection can be performed using any of a wide range of known substrates for the enzyme used as a detectable label.
  • the detectable label is a fluorescent molecule, a luminescent molecule or an enzyme.
  • the detection method of the invention further comprises the detection of ⁇ 40 and / or ⁇ 42 peptides.
  • the invention in another aspect, relates to a method for monitoring a neurodegenerative disease in a subject, hereinafter the method of monitoring the invention, which comprises determining in a sample at a first time point the level of the free un ⁇ 17 peptide in plasma and the level of the ⁇ 17 peptide bound to cells in a sample of said subject and compare the levels with said levels at a second time point; wherein if the ratio of free ⁇ 17 peptide in plasma and ⁇ 17 peptide bound to cells increases at the second time point with respect to the first time point, it is indicative of worsening of Alzheimer's disease in the subject.
  • neurodegenerative disease refers to a condition or disorder in which neuronal cells are lost due to cell death, which causes a deterioration of cognitive functions or causes damage, dysfunction or complications. which can be characterized by neurological, neurodegenerative, physiological, psychological or behavioral anomalies.
  • Suitable neurodegenerative diseases that can be diagnosed with the methods of the invention include, without limitation, senile macular degeneration, Creutzfeldt-Jakob disease, Alzheimer's disease, cerebral angiopathy with amyloidosis, vascular dementia, radiotherapy-induced dementia, axon injury, depression Acute propagated cortical, alpha-synucleinopathies, cerebral ischemia, Huntington's disease, permanent focal cerebral ischemia, peripheral nerve regeneration, model after epilepsy status, spinal cord injury, sporadic amyotrophic lateral sclerosis and transmissible spongiform encephalopathy.
  • the neurodegenerative disease that is followed according to the method of the invention is Alzheimer's disease or prodromal forms thereof including mild cognitive impairment, mild cognitive impairment with probable Alzheimer's disease or mild cognitive impairment with disease of Alzheimer's possible.
  • the method of monitoring the invention is useful for the evaluation of the evolution of Alzheimer's disease in a subject.
  • the authors of the invention have shown that an increase in the ratio of the level of free ⁇ 17 peptide in plasma / level of ⁇ 17 peptide bound to cells is indicative of a worsening of AD.
  • the method for monitoring the invention comprises the following steps:
  • the chosen time points must be determined by the person skilled in the art, according to the subject.
  • the term "worsening of Alzheimer's disease”, as used herein, means that the disease evolves at a later stage with respect to the first measured time point phase.
  • the person skilled in the art will recognize and confirm if the evolution of the disease is worse by also analyzing other indicative characteristics.
  • the characteristics or indications that appear at a later stage, and that are indicative of a disease progression are, without limitation, the appearance of Amyloid plaques and neurofibrillar clews and faster deterioration in cognitive functions.
  • the ratio of plasma free libre ⁇ 17 peptide level / unido ⁇ 17 peptide level bound to cells increases at the second time point with respect to the first time point, it is indicative of higher rates of cognitive impairment of the subject.
  • the higher level of free ⁇ 17 peptide in plasma is therefore indicative of greater cognitive impairment.
  • the concentration of beta amyloid peptide can be determined using one or more techniques of immunoblotting, immunoprecipitation, adsorption enzyme immunoassay (ELISA), surface plasmon resonance, precipitin reaction, gel diffusion immunodiffusion assay, radioimmunoassay (RIA), fluorescence activated cell separation (FACS), two-dimensional gel electrophoresis, capillary electrophoresis, mass spectroscopy (MS), laser-assisted-time-ionization laser desorption / ionization (MALDI-TOF), desorption / surface-time laser-enhanced ionization (SELDI-TOF), high resolution liquid chromatography (HPLC), fast protein liquid chromatography (FPLC), multidimensional liquid chromatography (LC) followed by mass spectrometry in tandem (MS / MS), thin layer chromatography, expression analysis with protein chips and laser densitometry.
  • ELISA adsorption enzyme immunoassay
  • RIA radioimmunoassay
  • ⁇ 17 LP plasma free 17 ⁇ 17 peptide
  • ⁇ 17 LP refers to the level of beta amyloid peptides that are not associated with any component of the biological sample and that are readily available for binding to a specific antibody. This peptide can be determined by conventional immunological techniques by contacting the biological sample with an antibody specific for said peptide. In a preferred embodiment, the level of free amyloid peptide is determined in plasma.
  • ⁇ 17 UC unido ⁇ 17 cell-bound peptide level
  • ⁇ 17 UC refers to beta amyloid peptides that are non-covalently associated with the surface of the present cells.
  • the beta amyloid peptide is associated with red blood cells, white blood cells, including neutrophils, eosinophils, basophils, lymphocytes and monocytes, and platelets.
  • the amount of beta amyloid peptide associated with cells in a given sample can be determined and this value can be used alone or in combination with other parameters related to beta amyloid peptides in the methods of the invention.
  • it is first required to isolate the cell fraction from the biological sample. This can be done using any technique known to the expert such as centrifugation, sedimentation, filtration and the like. Once the cell fraction has been isolated from a biological sample, the cells are contacted with a protein solubilizing agent.
  • the amount of beta amyloid peptide associated with cells in a given sample can be determined and this value can be used alone or in combination with other parameters related to beta amyloid peptides in the methods of the invention.
  • it is first required to isolate the cell fraction from the biological sample. This can be done using any technique known to the expert such as centrifugation, sedimentation, filtration and the like. Once the cell fraction has been isolated from a biological sample, the cells are contacted with a protein solubilizing agent.
  • the subject's sample is selected from the group of blood, serum, plasma and CSF.
  • the sample is a plasma sample.
  • the authors of the present invention have identified that the levels of certain populations of beta amyloid peptides, determined directly or by applying certain calculations between them, can be used to determine if a patient suffers from disease.
  • mild Alzheimer's disease to determine whether a subject suffers from prodromal Alzheimer's disease, to distinguish a subject suffering from mild non-prodromal cognitive impairment from a subject suffering from prodromal Alzheimer's disease, to distinguish a subject suffering from mild non-prodromal cognitive impairment from a subject suffering from mild Alzheimer's disease or to distinguish a subject suffering from prodromal Alzheimer's disease from a subject suffering from mild Alzheimer's disease.
  • the invention relates to a method for determining if a subject suffers from mild Alzheimer's disease which comprises determining the value of one or more parameters selected from the group consisting of:
  • the parameters to be measured for the distinction of a healthy subject from a subject suffering from mild Alzheimer's disease are the following:
  • a method to determine if a subject suffers from DCL with prodromal Alzheimer's disease which comprises determining the value of one or more of the parameters selected from the group of:
  • the quotient value between two parameters wherein the first parameter corresponds to the added values of the total ⁇ 17 peptide level in a plasma sample of said subject and the ⁇ 17 peptide level bound to cells in a blood sample and the second parameter corresponds to the added value of the total ⁇ 40 and ⁇ 42 peptides in a plasma sample and the levels of ⁇ 40 and ⁇ 42 peptides bound to cells in a blood sample; wherein if the value of one or more of the parameters (a), (b) or (c) increases and / or the value of one or more of the parameters (d), (e), (f) or (g ) decreases with respect to the value in a reference sample of a healthy subject, the subject suffers from mild Alzheimer's disease.
  • the parameters to be measured for the distinction of a healthy subject from a subject suffering from DCL with prodromal Alzheimer's disease are the following:
  • the invention relates to a method for distinguishing a subject suffering from DCL with non-prodromal Alzheimer's disease from a subject suffering from DCL with prodromal Alzheimer's disease comprising determining the value of one or more parameters selected from the group of:
  • the parameters to be measured that allow the distinction between a subject suffering from DCL with non-prodromal Alzheimer's disease and a subject suffering from DCL with prodromal Alzheimer's disease are the following:
  • the invention relates to a method for distinguishing a subject suffering from DCL with non-prodromal Alzheimer's disease from a subject suffering from mild Alzheimer's disease which comprises determining the value of one or more parameters selected from the group of:
  • the parameters to be measured for the distinction of a subject suffering from MCI with non-prodromal Alzheimer's disease of a subject suffering from mild Alzheimer's disease are the following:
  • the invention relates to a method for distinguishing a subject suffering from DCL with prodromal Alzheimer's disease from a subject suffering from mild Alzheimer's disease which comprises determining the value of one or more parameters selected from the group of:
  • the parameters to be measured for the distinction between a subject suffering from MCI with prodromal Alzheimer's disease and a subject suffering from mild Alzheimer's disease are the following:
  • diagnosis includes the assessment of the susceptibility of a subject to a disease, the determination of whether a subject currently has the disease and also the prognosis of a subject affected by the disease. As those skilled in the art will understand, such an evaluation may not be correct for 100% of the subjects to be diagnosed, although it is preferably correct. However, the term requires that a statistically significant part of the subjects can be identified as suffering from the disease or having a predisposition to it. If a part is statistically significant, it can be determined easily by the person skilled in the art using several well-known statistical evaluation tools, for example, the determination of confidence intervals, the determination of p values, the Student's t-test, the Mann-Whitney test, etc.
  • Preferred confidence intervals are at least 50%, at least 60%, at least 70%, at least 80 %, at least 90%, at least 95%. P values are preferably 0.2, 0.1 or 0.05.
  • the term "subject” refers to all animals classified as mammals and includes but is not limited to farm and domestic animals, primates and humans, for example humans, nonhuman primates, cows, horses, pigs, sheep, goats, dogs, cats or rodents. Preferably, the subject is a human being male or female of any age or race.
  • the term "Alzheimer's disease” (or “senile dementia”) refers to a mental impairment associated with specific degenerative brain disease characterized by senile plaques, neuritic tangles and progressive neuronal loss that manifests clinically in progressive memory impairments, confusion , behavioral problems, inability to take care of oneself, gradual physical deterioration and, ultimately, death.
  • Alzheimer's disease in the context of the present invention, refers to an early stage of Alzheimer's disease, where the subject experiences:
  • RDA 1, MMSE between 16 and 24 points and medial temporal atrophy (determined by MRI)> 3 points on the Scheltens scale.
  • DCL cognitive impairment
  • RDA Mayo Clinic
  • PET-FDG 18-fluorodeoxyglucose
  • DCL with probable Alzheimer's disease refers to patients who show DCL and are considered to show high risk of conversion to Alzheimer's disease.
  • the criteria to identify a patient as probable AD are those defined by the NINCDS-ADRDA criteria (McKhann G. et al., 1984, Neurology, 34: 939-44), that is, dementia established by clinical and neuropsychological examination, deterioration progressive cognitive present in two or more areas of knowledge, beginning of deficiencies between the ages of 40 and 90 years and absence of other diseases capable of producing a dementia syndrome.
  • non-prodromal Alzheimer's disease also known as “DCL with possible Alzheimer's disease” refers to patients who show DCL and who are considered to be at low risk of conversion to Alzheimer's disease.
  • the criteria to identify a patient as possible AD are those defined by the NINCDS-ADRDA criteria (McKhann G. et al., 1984, Neurology, 34: 939-44), that is, dementia syndrome with an onset, presentation or Atypical evolution without known etiology but it is believed that in their origin they are not comorbid diseases capable of producing dementia.
  • healthy subject refers to a subject in good health. In a preferred embodiment, said subject is over 65 years of age. It corresponds to a subject who does not suffer from a neurodegenerative disease or without a history of neurodegenerative disease. Preferably, healthy subjects are patients who show an absence of memory symptoms, normal performance in neuropsychological tests and absence of structural alterations in MRI. A healthy subject may be healthy and not have another disease or may have diseases other than DCL and EA.
  • the term "distinguish a healthy subject from a subject suffering from prodromal Alzheimer's disease” refers to the ability to discriminate between a subject who has no symptoms of Alzheimer's disease (AD) and a subject suffering from prodromal Alzheimer's disease.
  • the term "distinguish a healthy subject from a subject suffering from mild Alzheimer's disease” refers to the ability to discriminate between a subject who has no symptoms of Alzheimer's disease (AD) and a subject in the initial stages of AD (disease mild Alzheimer's).
  • the term "distinguish a subject suffering from non-prodromal DCL from a subject suffering from prodromal Alzheimer's disease” refers to the ability to discriminate between a subject who has non-prodromal DCL symptoms and a subject suffering from prodromal Alzheimer's disease.
  • the term "distinguish a subject suffering from non-prodromal DCL from a subject suffering from mild Alzheimer's disease” refers to the ability to discriminate between a subject who has symptoms of non-prodromal DCL and a subject in the early stages of AD (mild Alzheimer's disease).
  • the term "distinguish a subject suffering from prodromal AD from a subject suffering from mild Alzheimer's disease” refers to the ability to discriminate between a subject who has symptoms of prodromal AD and a subject in the early stages of AD (Alzheimer's disease mild).
  • plasma refers to the liquid component of the blood. Depending on the method of separation used, the plasma may be completely free of cellular components or may contain various amounts of platelets and / or small amounts of other cellular components.
  • ⁇ 17 UC, ⁇ 40 UC or ⁇ 42 UC refers to beta amyloid peptides that are non-covalently associated with the surface of the cells present in the biological sample and which is not available for binding to antibodies added to the sample and therefore immunologically detectable.
  • the beta amyloid peptide is associated with red blood cells, white blood cells, including neutrophils, eosinophils, basophils, lymphocytes and monocytes, and platelets.
  • the amount of beta amyloid peptide associated with cells in a given sample can be determined and this value can be used alone or in combination with other parameters related to beta amyloid peptides in the methods of the invention.
  • it is first required to isolate the cell fraction from the biological sample. This can be done using any technique known to the expert such as centrifugation, sedimentation, filtration and the like. Once the cell fraction has been isolated from a biological sample, the cells are contacted with a protein solubilizing agent.
  • the amount of beta amyloid peptide associated with cells in a given sample can be determined and this value can be used alone or in combination with other parameters related to beta amyloid peptides in the methods of the invention.
  • it is first required to isolate the cell fraction from the biological sample. This can be done using any technique known to the expert such as centrifugation, sedimentation, filtration and the like. Once I know has isolated the fraction of cells from a biological sample, the cells are contacted with a protein solubilizing agent.
  • Suitable protein solubilizing agents include detergents, chaotropic agents and reducing agents as defined below and are usually provided in a buffer solution at a suitable concentration. Agents, buffer solutions and concentrations of suitable agents in the buffer solution are described below. The step of contacting is carried out essentially as explained later in the method for releasing the amyloid peptide that is bound to components (proteins and lipids) of the biological sample.
  • the protein solubilizing agent is a detergent.
  • the detergent is Tween 20. Suitable concentrations of Tween 20 for use as a protein solubilizing agent are as defined above, that is, between 0.004-0.02%, more preferably of the 0.005-0.01% (w / v).
  • the step of contacting is preferably carried out at a low temperature in order to inhibit proteolytic activities present in the sample. Suitable temperatures are about 0-10 ° C, preferably about 3-5 ° C, for example, about 4 ° C.
  • the step of contacting is carried out by resuspending the cell fraction in the biological sample with the solution comprising the protein solubilizing agent.
  • Said resuspension can be carried out by gently pipetting up and down, stirring, preferably by stirring, more preferably by high speed stirring, most preferably by vortexing) for at least 5 seconds, preferably for at least 10 seconds, more preferably for at least 15 seconds (for example, for 15-50 seconds).
  • Advantageous speeds for said mixing, stirring, stirring, high speed stirring or vortexing comprise a speed of at least 250 rpm, preferably at least 500 rpm, more preferably at least 1,000 rpm, most preferably about 2,000-2,500 rpm
  • the step of contacting is carried out under conditions suitable to achieve partial or, preferably, complete dissociation of the beta amyloid peptide from the cells present in the biological sample.
  • a person skilled in the art can determine suitably the conditions controlling the amount of beta amyloid peptide that is detectable before the contacting step and progressively at different times after the contacting step has taken place.
  • total ⁇ peptide in plasma refers to "plasma free ⁇ peptide” plus the “component-associated amyloid beta peptide” macromolecular.
  • beta amyloid peptide associated with macromolecular components refers to beta amyloid peptide that is non-covalently bound or linked to molecules found in the biological sample under study. Typically, this peptide is not readily accessible for immunological detection and, therefore, requires a pretreatment of the biological sample in order to achieve separation of the peptide from the components.
  • the beta amyloid peptide bound to macromolecular components will be released from said components and will be available for immunological detection using specific antibodies. Since the biological sample already contains a certain amount of free beta amyloid peptide, the total amount of free amyloid peptide after contacting the sample with the protein solubilizing agent will be the aggregate level of the free beta amyloid peptide originally present and the level beta amyloid peptide that has been released after treatment with the protein solubilizing agent.
  • beta amyloid peptide associated with macromolecular components present in the biological sample this can usually be done by determining the level of free beta amyloid peptide before treatment with the protein solubilization agent and the level of Free beta amyloid peptide after treatment with the protein solubilization agent and subtracting the first value from the second value.
  • the parameter that is usually determined when the sample is treated so that the amyloid peptide is dissociated from macromolecular components corresponds to the addition of the free peptide present in the sample and the peptide associated with macromolecular components.
  • the macromolecular components of the sample that can bind to beta amyloid peptides and that contribute to the set of beta amyloid peptide associated with macromolecular components include both proteins and lipids.
  • the macromolecular components include, without limitation, proteins and blood lipids.
  • Exemplary blood proteins include albumin, immunoglobulin G, immunoglobulin E, immunoglobulin M, immunoglobulin A, fibrinogen (fibrin and degradation products thereof), alpha-1-antitrypsin, prealbumin, alpha-1- antitrypsin, alpha glycoprotein -1 acid, alpha-1-fetopro teine, alpha-2-haptoglobin, macroglobulin, ceruloplasmin, transferrin, beta-2-microglobulin C3 / C4, beta-lipoprotein, alpha, beta and gamma-globulins, C-reactive protein (CRP) , prothrombin, thyroxine binding protein, transthyretin and the like.
  • Exemplary blood lipids include free fatty acids, cholesterol, triglycerides, phospholipids, sphingolipids and the like.
  • the amount of beta amyloid peptide associated with macromolecular components can be determined by contacting a cell-free sample of the biological sample with a protein solubilizing agent under suitable conditions to induce the release of said beta amyloid peptides from the macromolecular components.
  • contacting it is meant herein to add to the sample a sufficient amount of a solution comprising the protein solubilizing agent so that the concentration of the protein solubilizing agent in the mixture is sufficient to solubilize so effective the beta amyloid peptide that is bound to the proteins and cells in the sample.
  • the protein solubilization agent is in solution in a buffer solution so that the addition of the protein solubilization agent does not produce a substantial change in the pH of the sample.
  • protein solubilizing agent refers to any compound of composition capable of altering the secondary, tertiary and / or quaternary structure of the polypeptides while leaving the primary structure intact. Under these properties, protein solubilizing agents can increase the solubility of proteins in a sample as well as prevent intermolecular and intramolecular aggregation of proteins. Protein solubilizing agents suitable for use in the present invention include, without limitation, detergents, chaotropic agents, reducing agents and mixtures thereof.
  • detergent is a synonym used for surfactants in general, and refers to amphipathic surfactants that, when added to a liquid, reduce the surface tension of the liquid as compared to it. liquid in the absence of detergent. Detergents can also prevent the aggregation of proteins and prevent the non-specific binding or interaction of contaminants to a protein of interest. Detergents suitable for use in the present invention include, without limitation, nonionic (neutral), ammonium, cationic or dipolar detergents.
  • non-ionic or neutral detergents include, without limitation, Tween series detergents, such as Tween® 20, Tween® 21, Tween® 40, Tween® 60, Tween® 61, Tween® 65, Tween® 80, Tween ® 81, Tween® 85, Span® series detergents, such as Span® 20; Tergitol series detergents, such as Tergitol type 15-S-12; Brij® series detergents, such as Brij® 35, Brij® 56, Brij® 72, Brij® 76, Brij® 92V, Brij® 97, Brij® 58P; Tween series detergents, such as Tween® 20, Tween® 21, Tween® 40, Tween® 60, Tween® 61, Tween® 65, Tween® 80, Tween® 81, Tween® 85; Triton® series detergents, such as Triton® X-100, Triton® X-114, Tri
  • anionic detergents include, without limitation, colic acid and derivatives thereof, taurocolic acid, Triton X-200, Triton W-30, Triton-30, Triton-770, dioctyl sulfosuccinate, NsN-dimethyldodecylamine N-oxide, 1- Sodium alkyl sulfonates, N-lauroylsarcosine or fatty acid salts.
  • cationic detergents include, without limitation, fatty mono and dimethylamines, alkyltrimethylammonium salts, dialkyl dimethylammonium salts, alkylamine acetates, trialkylammonium acetates, alkyldimethylbenzylammonium salts, dialkylmethylbenzylammonium salts, alkylpyridinium halide and alkyl (substituted alkyl) pyridinium salts, alkylthiomethylpyridinium salts, alkylamidomethylpyridinium salts, alkylquinolinium salts, alkylisoquinolinium salts, N, N- alkylmethylpyrimidinium diallyl salts, of 4,4-dialkyltriamorpholinium, salts of 1-oxide of 4,4-dialkylthiamorpholinium, methyl bis-alkylsulfate (alkylethyl) -2-alkylimidazolinium (and other salts),
  • dipolar detergents include, without limitation, 3 - [(3- colamidopropyl) dimethylammonium] -l-propanesulfonate (CHAPS); 3 - [(3- colamidopropyl) dimethylammonium] -2-hydroxy-l-propanesulfonate (CHAPSO); N- (C10-C16 alkyl) -N, N-dimethylglycine betaine (EMPIGEN BB); caprililsulfobeta ⁇ na (SB3-10); 3- [N, N-dimethyl (3-myristoylaminopropyl) ammonium] propanesulfonate (amidosulfobetaine-14; ASB-14); N-tetradecyl-N, N-dimethyl-3-ammonium-l-propanesulfonate (detergent 3-14; ZWITTERGENT); N-dodecyl-N, N'-dimethyl-3-ammonium-1-propa
  • the protein solubilization reagent is a detergent.
  • the detergent is Tween 20.
  • Tween 20 is used at a concentration of 0.5%.
  • a “chaotropic agent,” as used herein, refers to a compound or mixture of compounds that breaks hydrogen bonds and hydrophobic interactions both within and within proteins. When used at high concentrations, chaotropic agents break the secondary structure of the protein and dissolve proteins that are otherwise not soluble. Suitable chaotropic agents include, without limitation, urea, guanidinium isothiocyanate, sodium thiocyanate (NaSCN), guanidine HC1, guanidinium chloride, guanidinium thiocyanate, lithium tetrachloroacetate, sodium perchlorate, rubidium tetrachloroacetate, potassium iodide or cesium trifluoroacetate.
  • reducing agent refers to any compound or material that maintains the sulfhydryl groups in a reduced state and reduces intra or intermolecular disulfide bridges.
  • suitable reducing agents for the method of the present invention include both sulfhydryl and phosphine reducing agents.
  • sulfhydryl reducing agents include dithiothreitol (DTT), dithioerythritol (DTE) and ⁇ -mercaptoethanol.
  • phosphine reducing agents include tributylphosphine (TBP) and triscarboxyethylphosphine (TCEP).
  • the biological sample is treated first to remove the cell fraction.
  • the sample without cells is then contacted with the protein solubilizing agent.
  • the sample is diluted using a buffer comprising the protein solubilizing agent. Normally, the sample is diluted 5 times in a buffer solution comprising Tween 20.
  • a "buffer solution” is any substance or mixture of compounds in solution that can neutralize both acids and bases without appreciably changing the original acidity or alkalinity of the solution.
  • Suitable buffer solutions to be used in the method of the invention include, without limitation, Tris buffer solution, phosphate buffer solution, borate buffer solution, carbonate buffer solution, sodium glycine hydroxide buffer solution or the like.
  • the buffer solution is a phosphate buffer solution such as phosphate buffered saline or PBS.
  • the amount of solution comprising the protein solubilizing agent that is added to the biological sample is not essential as long as sufficient dissociation of the amyloid beta peptide is achieved.
  • the biological liquid can be diluted in the solution comprising the protein solubilizing agent at a dilution of at least 1/2 (v / v), 1/3 (v / v), 1/4 (v / v), 1/5 (v / v), 1/6 (v / v), 1/7 (v / v), 1/8 (v / v), 1/9 (v / v), 1 / 10 (v / v), 1/20 (v / v), 1/50 (v / v), 1/60 (v / v), 1/80 (v / v), 1/90 (v / v), 1/100 (v / v) or more.
  • the solution containing the protein solubilization agent may comprise said selected protein solubilization agent (s) at a concentration ranging from 0.001% to 0.5% (w / v ).
  • said biological liquid normally contains said surfactant (s) at less than 0.1% (w / v), preferably less than 0.6% (p / v), more preferably no more than 0.5% (w / v), most preferably no more than 0.45% (w / v) and even more preferably 0.5%.
  • Buffer systems suitable for use in the present invention include Tris-HCl buffers that include a salt such as NaCl or KC1 and, optionally, BSA.
  • Particular buffer systems include, without limitation,
  • Tris-HC1 pH 8 50 mM Tris-HC1 pH 8, 0.5 M NaCl; 0.05% BSA, 0.05% Triton X-100
  • Tris- HC1 pH 8 50 mM Tris- HC1 pH 8, 0.5 M KC1, 0.05% BSA, 0.05% Triton X-100
  • the preferred concentration is 0.004-0.02%, more preferably 0.005-0.01% (w / v).
  • the step of contacting is preferably carried out at a low temperature in order to inhibit proteolytic activities present in the sample. Suitable temperatures are about 0-10 ° C, preferably about 3-5 ° C, for example, about 4 ° C.
  • both liquids can be mixed.
  • Mixing can be carried out by stirring, preferably by stirring, more preferably by high speed stirring, most preferably by vortexing) for at least 5 seconds, preferably for at least 10 seconds, more preferably for at least 15 seconds (for example, for 15-50 seconds).
  • Advantageous speeds for said mixing, stirring, stirring, high speed stirring or vortexing comprise a speed of at least 250 rpm, preferably at least 500 rpm, more preferably at least 1,000 rpm, most preferably about 2,000-2,500 rpm
  • the step of contacting is carried out under conditions suitable to achieve partial or, preferably, complete dissolution of the beta amyloid peptide of the proteins and lipids present in the biological sample.
  • One skilled in the art can adequately determine the conditions by following the amount of beta amyloid peptide that can be detected before the step of contacting and progressively at different time points after the step of contacting has taken place.
  • the experiment of temporal evolution can be determined as described in the example of the experimental part.
  • the level of beta amyloid peptide is determined by diluting a biological sample with a buffer containing the protein solubilization reagent, the level of free beta amyloid peptide obtained by the Immune determination will have to be corrected in order to take into account the dilution factor previously applied to the biological sample.
  • peptides ⁇ 17, ⁇ 40 or ⁇ 42 free in plasma refers to beta amyloid peptides that are not associated to any component of the biological sample and that are readily available for binding to a specific antibody.
  • This peptide can be determined by conventional immunological techniques by contacting the biological sample with an antibody specific for said peptide.
  • the level of free amyloid peptide is determined in plasma.
  • reference value refers to a parameter value that is used for comparison and that has been determined in a subject who does not suffer from a neurodegenerative disease or has no history of neurodegenerative disease.
  • the subjects from which the reference values are obtained for the different parameters and parameters calculated are patients who show an absence of memory symptoms, normal performance in neuropsychological tests and absence of structural alterations in MRI.
  • reference values are selected that allow a sensitivity greater than 85% and a specificity greater than 75%.
  • the reference values are selected so that a sensitivity greater than 70% and a specificity greater than 70% is obtained.
  • the reference values allow to obtain a prediction with an accuracy or precision of at least 80%.
  • the determination is made of whether a subject suffers from mild Alzheimer's disease when there is an alteration in the value of the parameter or in the value of the parameter calculated with respect to the reference value.
  • the concentration of beta amyloid peptide can be determined using one or more techniques of immunoblotting, immunoprecipitation, adsorption enzyme immunoassay (ELISA), surface plasmon resonance, precipitin reaction, gel diffusion immunodiffusion assay, radioimmunoassay.
  • ELISA adsorption enzyme immunoassay
  • surface plasmon resonance adsorption enzyme immunoassay
  • precipitin reaction a gel diffusion immunodiffusion assay
  • radioimmunoassay radioimmunoassay.
  • RIA fluorescence activated cell separation
  • FACS fluorescence activated cell separation
  • MS mass spectroscopy
  • MALDI-TOF matrix-time-flight-EM
  • SELDI-TOF surface-time laser-enhanced desorption / ionization flight
  • HPLC high resolution liquid chromatography
  • FPLC rapid protein liquid chromatography
  • LC multidimensional liquid chromatography
  • MS / MS tandem mass spectrometry
  • the determination of the method of the invention is carried out by an immunological method.
  • immunological method when applied to a determination, refers to any method that involves the use of one or more specific antibodies to a target substance in order to determine the amount / concentration of said target substance excluding other substances found in the sample. Suitable immunological methods include, without limitation, immunoblotting, immunoprecipitation, adsorption enzyme immunoassay (ELISA), surface plasmon resonance, radioimmunoassay (RIA).
  • ELISA adsorption enzyme immunoassay
  • RIA radioimmunoassay
  • the determination or detection of the beta amyloid peptide is carried out by ELISA.
  • any type of antibody is suitable for performing the immunological detection methods according to the invention provided that the antibody is specific enough to effectively differentiate beta amyloid peptide species in the sample from other substances.
  • ELISA means adsorption enzyme immunoassay and refers to an assay whereby an unknown amount of target substance (the beta amyloid peptide) is fixed to a surface, and then washed with a specific antibody on the surface so that it can bind to the antigen. This antibody is bound to an enzyme, and in the final step a substance is added that the enzyme can convert into some detectable signal.
  • target substance the beta amyloid peptide
  • This antibody is bound to an enzyme, and in the final step a substance is added that the enzyme can convert into some detectable signal.
  • Different types of ELISA assays are known and can be applied to the method of the invention, including direct ELISA, sandwich ELISA, competitive ELISA and inverse ELISA method and device (ELISA-R m & d).
  • Direct ELISA is carried out by contacting the test sample comprising the beta amyloid peptide with a solid support that has been previously coated with a concentrated solution of a protein or a non-interacting reagent (bovine serum albumin, casein).
  • a protein or a non-interacting reagent bovine serum albumin, casein.
  • an antibody specific for the beta amyloid peptide is added under conditions suitable for binding to the beta amyloid peptide.
  • the antibody that binds is then detected with a secondary antibody that is coupled to a detectable label or a substrate modifying enzyme.
  • the signal resulting from the detectable label or the substrate is then proportional to the amount of antibody bound to the support which, in turn, correlates directly with the amount of amyloid beta peptide in the sample.
  • the competitive ELISA assay includes a first step in which the test sample comprising an unknown amount of beta amyloid peptide is contacted with a first antibody as defined above. Antibody-antigen complexes are added to an antigen coated well. Once the support has been washed to remove any specifically unbound complex, the amount of first antibody is detected with a second antibody that is coupled to a detectable group. In this type of assay, the higher the concentration of the original antigen, the weaker the final signal will be.
  • An alternative competitive ELISA assay is one that includes an enzyme-linked antigen instead of an enzyme-linked antibody. The labeled antigen competes for the binding sites of the primary antibody with the antigen in the sample (unlabeled). Using this type of assays, the concentration of antigen in the sample is inversely correlated with the amount of labeled antigen retained in the well and, consequently, in a weaker signal.
  • the ELISA method and reverse device uses an innovative solid phase consisting of an immunoabsorbent polystyrene rod with 4-12 prominent warheads; The entire device is suitable for insertion into a test tube containing the collected sample and the following steps (washing, conjugate incubation and chromogen incubation) are easily carried out by immersing the ogives in conventional microplate microwells preloaded with reagents, sealed and stored until use.
  • the ELISA is a sandwich ELISA.
  • the sandwich ELISA assay involves coating a support with a first antibody specific for the beta amyloid peptide, applying the sample containing the beta amyloid peptide, which will cause the binding of the beta amyloid peptide to the first antibody, and applying a second antibody also specific for the beta amyloid peptide, wherein said second antibody is usually coupled to a detectable label or to a substrate modifying enzyme.
  • the signal generated by the tag or by the converted substrate is proportional to the amount of antigen in the sample.
  • a standard curve for the ⁇ 17 peptide should be prepared using increasing concentrations to determine the concentrations of the parameters mentioned above.
  • the standard curve serves the dual purpose of (i) establishing the concentration range where the signal increases linearly with the concentration of the target peptide and (ii) determining the concentration of the peptides in the test sample by interpolation of the signal obtained with test or standard samples on the curve to obtain concentration values.
  • the preferred concentrations of the test samples are, for example, 3,125; 6.25; 12.5; 25; fifty; 100 and 200 pg / ml. It will be appreciated that the concentrations of the samples used to obtain the standard curve will vary for each test substrate. However, the determination of the linear range of the test can be determined by the person skilled in the art by conventional means.
  • alteration refers to a statistically significant increase or decrease in the value of the parameter under consideration with respect to the reference value.
  • statically significant refers to a statistical analysis of the probability that there is a non-random association between two or more outcomes, assessment criteria or outcomes, that is, that there is a certain degree of mathematical certainty that the value of the parameter be associated with a particular patient population with respect to the reference value.
  • the statistical significance of the alteration in the values can be determined using the value of p. For example, when the value of p is used, a parameter is identified that shows a significant alteration when the value of p is less than 0.1, preferably less than 0.05, more preferably less than 0.01, even more preferably less than 0.005, most preferably less than 0.001.
  • the value of the parameter under consideration can be assigned as being “increased” when the value above the reference value is at least 1.1 times, 1.5 times, 5 times, 10 times, 20 times, 30 times , 40 times, 50 times, 60 times, 70 times, 80 times, 90 times, 100 times or even more compared to the reference value.
  • a parameter value can be considered as being “decreased” when it is at least 0.9 times, 0.75 times, 0.2 times, 0.1 times, 0.05 times, 0.025 times, 0, 02 times, 0.01 times, 0.005 times or even less compared to the reference value.
  • the alteration in the value of the parameter or in the value of the parameter calculated with respect to the reference value is an increase.
  • Kit according to [6] further comprising a second member of said union pair wherein said second member of the union pair is coupled to a detectable label.
  • Kit as defined in [7] where, if the detectable label that is coupled to the second member of the binding pair is an enzymatic label, then the kit further comprises a substrate that can be converted into said product into a detectable product.
  • Kit as defined in any of [5] to [8] further comprising an antibody or a combination of antibodies that specifically bind ⁇ 40 and / or ⁇ 42.
  • Kit as defined in [10] wherein the antibody that is not coupled to a first member of a binding pair is previously bound to the solid support.
  • a method for determining or detecting the ⁇ peptide (1-17) in a sample comprising the steps of:
  • step (ii) contacting the immune complexes formed in step (i) with a second antibody, wherein said second antibody is as defined in any of [1] to [4] and wherein said second antibody recognizes a different region that the first antibody and is coupled to a first member of a binding pair;
  • step (iii) contacting the complexes formed in step (ii) with a second member of a binding pair that is coupled to a detectable label and
  • the first antibody is a monoclonal antibody.
  • a method for monitoring a neurodegenerative disease in a subject comprising: (a) determining in a sample of said subject at a first time point the level of the free ⁇ 17 peptide in a plasma sample and the level of the ⁇ 17 peptide bound to cells in a blood sample in a sample of said subject;
  • a method to determine if a subject suffers from mild Alzheimer's disease which comprises determining the value of one or more parameters selected from the group consisting of:
  • a method to determine if a subject suffers from DCL with prodromal Alzheimer's disease which comprises determining the value of one or more parameters selected from the group of:
  • a method to distinguish a subject suffering from DCL with non-prodromal Alzheimer's disease from a subject suffering from DCL with prodromal Alzheimer's disease comprising determining the value of one or more parameters selected from the group of:
  • a method to distinguish a subject suffering from DCL with non-prodromal Alzheimer's disease from a subject suffering from mild Alzheimer's disease which comprises determining the value of one or more parameters selected from the group of:
  • a method to distinguish a subject suffering from DCL with prodromal Alzheimer's disease from a subject suffering from mild Alzheimer's disease which comprises determining the value of one or more parameters selected from the group of:
  • the support used for conjugation was Californian Barnacle Hemocyanin (KLH) (Pierce, ref. 77600).
  • the conjugation was carried out with the NHS-PEG 4- Malimida crosslinker (Pierce, ref. 22104).
  • As adjuvants three types were used: complete Freund's adjuvant (Sigma, ref. F5881), incomplete Freund's adjuvant (Sigma, ref. F5506) and Imjet alum (Pierce, ref. 77161).
  • the immunization protocol was as follows:
  • the four rabbits were immunized every week with 100 ⁇ g of the peptides.
  • the first dose was administered using complete Freund's adjuvant as an adjuvant, followed by another dose with incomplete Freund's adjuvant and a third dose with alum.
  • the antibody titer obtained was too low to allow purification. Therefore, the dose was increased to 200 ⁇ g of the peptides in three more administrations, alternating adjuvants: incomplete Freund's adjuvant - incomplete Freund's adjuvant.
  • the antibody titers obtained for the four rabbits were very high and purification was performed by affinity chromatography (with the con ⁇ 17 peptide.
  • a blot transfer was carried out to determine the specificity of the anti-Api7 antibody, where other ⁇ peptides were included (Figure 1).
  • the anti-Api7 antibody was added in two dilutions (1: 1000 and 1: 2000) and the antibody Secondary used was goat anti-rabbit-HRP 1: 2000. 500 ng of each peptide was loaded in 2.5 ⁇ .
  • the blot transfer was revealed with ECL with SNAP technology at an exposure of 1 minute and 3 minutes. As shown in said figure, the antibody is very specific for the ⁇ 17 peptide and does not specifically recognize ⁇ 15, ⁇ 16, ⁇ 38, ⁇ 40 ⁇ 42.
  • Formic acid sodium chloride, a-cyano-4-hydroxycinnamic acid (a-CHCA), trifluoroacetic acid (TFA), DL-dithiothreitol (DTT), triethanolamine, Tris and bovine serum albumin (BSA) were from Sigma (Steimheim, Germany ).
  • Acetonitrile was purchased from Carlo-Erba (Rhone, MI, Italy).
  • Dimethyl-2HCl pimelimidate (DMP) was purchased from Pierce (Rockford, IL, USA).
  • Tricine loading buffer was purchased from Bio-Rad (Hercules, CA, USA).
  • IP-MALDI The IP-MALDI procedure was carried out as described by Portelius et al.
  • the balls were incubated with different amounts of antibody, washed and then the antibodies were eluted by boiling the balls in tricine loading buffer with DTT. The saturation amount of each antibody was determined by immunoblot.
  • the time (1 hour and overnight) and temperature (4 ° C, room temperature and 37 ° C) of incubation of the balls with the antibody and the antibody-ball complexes with the samples were also optimized.
  • Another optimized parameter was the elution condition (0.5, 2.5 and 5% formic acid, as well as various percentages of organic solvents, such as nitrile aceto).
  • the first is basically based on the manufacturer's instructions with the optimized parameters: an aliquot of the anticuerpo ⁇ specific antibody (4 ⁇ g of 6E10 or 8 ⁇ g of 4G8 or 6 ⁇ g of SAR2) was incubated with 50 ⁇ of Dynabeads G protein for 1 hour at room temperature on a rotary shaker. After that, three washes were carried out with phosphate buffered saline (PBS: NaH 2 P0 4 H 2 0 lmM, Na 2 HP0 4 -2 H 2 0 5 mM, NaCl 138mM). 1 ml of CSF was added and incubated overnight at room temperature on a rotary shaker.
  • PBS phosphate buffered saline
  • the CSF was removed from the balls after incubation, with the help of a magnet (DynaMag-2 or DynaMag-15, Invitrogen Dynal AS, Oslo, Norway) and discarded.
  • the eluate was incubated 5 minutes at room temperature in a thermomixer.
  • the eluted compounds were desalted with ZipTip C 18 tips (Millipore, Billerica, MA, USA).
  • the ZipTip C 18 protocol consists of several steps: solvation of the tips with acetonitrile, conditioning with 0.1% TFA (repeating this step several times), loading of the sample (pipetting up and down several times), one step of Wash with 0.1% TFA and the final elution with 3 ⁇ of a-CHCA (5 mg / ml).
  • the cross-linked balls were washed three times with 1 ml of PBS containing 0.1% BSA.
  • 1 ml of combined human CSF was added and incubated overnight at room temperature.
  • the supernatants were discarded and the balls were washed several times with PBS.
  • the ⁇ species were eluted with 25 ⁇ of 5% formic acid.
  • the eluted compounds were desalted with ZipTip C 18 using the same protocol described above.
  • the potential difference of the mirror 2 towards the source 1 remained constant at a quotient value of 1.105.
  • the potential difference from source 1 was maintained at 8 kV and the laser value was adjusted 1000 units higher than in EM experiments.
  • Precursor ions were selected for fragmentation by means of a time-regulated ion selector at a resolution value of 250 (full amplitude to maximum). The selected ions were decelerated before arrival at the collision chamber in the deceleration cell and dissociated after the collisions with air at a kinetic energy of 1 keV (high energy collision induced dissociation). The fragmented ions were accelerated again in the second source to 15 kV after a short delay.
  • the metastable suppressor was activated in all MS / MS experiments to avoid ion detection remaining precursors and undesirable metastable decay fragments.
  • Data Explorer software was used for spectral treatment (smoothing and / or noise filtering). Only monoisotopic m / z ratios are described.
  • Monoclonal capture antibody specific for the NH 2 end of the human ⁇ peptide (6E10 antibody).
  • Chromium stabilized TMB gene Chromium stabilized TMB gene.
  • Blocking buffer 50 mM Tris, 0.2% Tween20, 0.5% BSA, pH 8.0.
  • Preservative solution trehalose 20 mg / ml, 50 mM Tris, pH 8.0.
  • Antibody diluent 50 mM Tris, 0.05% BSA, 0.5 M NaCl, 0.05% Twwen20, pH 8.0.
  • the plate was coated using the 6E10 capture monoclonal antibody that recognizes amino acids 1-17 in the ⁇ -amyloid peptide.
  • the concentration used was determined according to the saturation concentration of the antibody, so that it was not the limiting factor in the antigen-antibody reaction.
  • absorbance at 450 nm was related to the concentration of antibody in each well by controlling the antibody adsorbed to the well with an HRP-conjugated anti-mouse IgG antibody incubated for 1 hour with stirring at room temperature and an incubation step with the chromogenic substrate followed by a reaction stop.
  • the concentration at which the signal did not increase with the antibody concentration was chosen.
  • the microplates were coated with 100 ⁇ of capture antibody in coating buffer and incubated overnight (ON) at 4 ° C for approximately 20 hours.
  • the plates were then washed 5 times with the wash buffer and 300 ⁇ were added per well of blocking buffer. The plates were incubated for 3 hours at room temperature.
  • the plates were then washed 5 times with the wash buffer and 100 ⁇ of the preservative solution was added. The plates were allowed to evaporate until a characteristic white halo of trehalose appears (2-3 days at room temperature). The plates so treated could be kept at 4 ° C covered with aluminum foil and are stable for two years.
  • Samples can be used undiluted or diluted from 1: 2 to 1: 10 in sample diluent / standard. 1: 3 dilution is recommended for plasma samples and 1: 5 for blood cell samples. To ensure accurate quantification, the standard and white curves must be generated in the same diluents or buffers as the samples.
  • Samples of the human ⁇ 17 standard curve (1 ⁇ 17) were prepared from a stock solution of 200 pg / ml of ⁇ 17 peptides in plates coated with Acm 6E10 and treated with trehalose. 1: 2 serial dilutions were made in sample / standard diluent from these solutions. Dilutions were made so that give the concentrations of 200, 100, 50, 25, 12.5, 6.25 and 3,125 pg / ml. 100 ⁇ of each sample is added and incubated overnight at 4 ° C (or for 2 hours at 37 ° C).
  • the detection antibody is a biotin-conjugated polyclonal antibody against the human ⁇ peptide that terminates at amino acid 17.
  • the conjugation of the biotin antibody takes place after an activation step and overnight incubation at room temperature in the dark. The excess biotin is inactivated in an additional step.
  • the detection antibody was added diluted in antibody diluent. 100 ⁇ are added to each well and then incubated for 1 hour with stirring at room temperature. Then, 100 ⁇ of a 1/50 dilution in HRP-coupled streptavidin antibody diluent (from SIGMA) was added to each well and incubated for 1 hour with stirring at room temperature.
  • TMB TMB gene chromium substrate
  • ZEU Immunotec 100 ⁇ of the TMB gene chromium substrate (ZEU Immunotec). TMB was added and incubated in the dark for 45 minutes. 50 ⁇ of stop solution per well was added. The absorbance at 450 nm was read on a Synergy HT (BioTek Instruments) plate reader.
  • results can be calculated using any software package for immunoassays.
  • the method used to adjust the curve is linear regression and the concentration of ⁇ 17 was calculated as follows:
  • intraplate variability To analyze the reproducibility of the immunoassay, intraplate variability, intraassay variability, inter-assay variability in plasma samples and inter-assay variability in cell samples were measured.
  • Intraplate variability was calculated by analyzing the differences between the wells in triplicate, in samples, standard samples and reference samples on the same plate. In intra-assay reproducibility, the concentration obtained for 4 reference plasma samples analyzed on 11 different plates in the same assay was compared. In the inter-assay variability in plasma samples, the differences obtained in concentration were measured when two plasma samples were analyzed in two different and independent assays. Inter-assay variability in cell samples refers to the comparison of ⁇ 17 levels between two different independent determinations of 8 cell control samples.
  • the detection limit (LD) and quantification limit (LC) were calculated by two different methods:
  • the levels of ⁇ 17, ⁇ 40 and ⁇ 42 were determined using the sandwich ELISA assay described in example 1 in plasma samples from a cohort of healthy control subjects (CS> 65 or HC> 65) over 65 years (19 subjects), of a cohort of subjects suffering from mild Alzheimer's disease (mild AD) (17 subjects), from a cohort of subjects who had prodromal or probable mild cognitive impairment (DCL) (16 subjects), and from a cohort of subjects who had mild cognitive impairment ( DCL) non-prodromal or possible (16 subjects).
  • the concentrations in pg / ml obtained for the peptides are shown in the tables of Figure 3A, Figure 4A, Figure 5A and Figure 6A.
  • CES (17 + 40 + 42) total plasma peptide + cell-bound peptide
  • TP40 + UC40 The levels of total ⁇ 40 peptide in plasma + levels of ⁇ 40 peptide bound to cells. As shown in Figure 3, the levels of these markers are higher in subjects with probable DCL and mild AD than in subjects with possible and healthy DCL. And it is possible to distinguish with high significance between possible DCL and mild EA.
  • the ratio between ⁇ 17 peptide levels linked to cells and ⁇ 40 and ⁇ 42 peptide levels linked to cells can distinguish between healthy subjects or subjects with possible DCL and probable DCL and between healthy subjects and mild EA (Figure 5).
  • the ratio between levels of total ⁇ 17 peptide in plasma + levels of ⁇ 17 peptide bound to cells and levels of ⁇ 40 and ⁇ 42 total plasma peptide (CES (40 + 42)) can distinguish between healthy subjects or subjects with possible DCL of probable DCL (figure 5).

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Abstract

La invención se refiere al campo de los inmunoensayos que permiten la detección de péptidos Aβ17 en virtud del uso de un anticuerpo anti-Aβ17 y un kit y un método que usan dicho anticuerpo. La invención también se refiere a un método para diagnosticar o distinguir entre diferentes fases de una enfermedad neurodegenerativa.

Description

ANTICUERPO, KIT Y MÉTODO PARA LA DETERMINACIÓN DE
PÉPTIDOS AMILOIDES
CAMPO TÉCNICO
La invención se refiere al campo de los inmunoensayos que permiten la detección de péptidos Αβ17 en virtud del uso de un anticuerpo anti-Api7 y un kit y un método que usa dicho anticuerpo. La invención también se refiere a un método para diagnosticar o distinguir entre diferentes fases de una enfermedad neurodegenerativa. ANTECEDENTES DE LA INVENCIÓN
La enfermedad de Alzheimer (EA) es una enfermedad degenerativa progresiva del sistema nervioso central caracterizada por la pérdida progresiva y creciente de memoria, seguida por la pérdida del control de las extremidades y funciones corporales y muerte final. Es con mucho la causa más común de demencia que afecta del 1 al 6% de las personas de más de 65 años de edad y entre el 10 y el 20% de los de más de 80.
La EA se distingue de otros tipos de demencia por varias características patológicas, incluyendo la aparición progresiva en el cerebro de los pacientes de placas seniles en el espacio extracelular entre neuronas. Las placas tienen núcleos centrales de depósitos amiloides formados principalmente por fibrillas de un péptido de 40-42 aminoácidos denominado péptido β amiloide (Αβ) rodeado por axones degenerados y células de glía. Este péptido resulta del procesamiento proteolítico de una proteína precursora llamada pro teína precursora de β amiloide (βΑΡΡ).
El Instituto Nacional de Trastornos Neurológicos y Comunicativos y Accidentes cerebrovasculares (NINCDS, por sus siglas en inglés) y la Asociación de Enfermedad de Alzheimer y Trastornos Relacionados (ADRDA, por sus siglas en inglés) establecieron los criterios de Alzheimer MINCDS-ADRDA más comúnmente usados para el diagnóstico en 1984. Según el MINCDS/ADRDA estos criterios son los siguientes:
• Enfermedad de Alzheimer definitiva: El paciente cumple los criterios para enfermedad de Alzheimer probable y tiene evidencia histopatológica de EA mediante autopsia o biopsia. • Enfermedad de Alzheimer probable o prodrómica: Se ha establecido demencia mediante examen clínico y neuropsicológico. Las deficiencias cognitivas también tienen que ser progresivas y estar presentes en dos o más áreas de conocimiento. El inicio de las deficiencias ha sido entre las edades de 40 y 90 años y por último debe haber una ausencia de otras enfermedades capaces de producir un síndrome de demencia.
• Enfermedad de Alzheimer posible o no prodrómica: Hay un síndrome de demencia con un inicio, presentación o evolución atípicos, y sin una etiología conocida; pero no se cree que enfermedades comórbidas capaces de producir demencia estén en el origen de la misma.
• Enfermedad de Alzheimer improbable: El paciente presenta un síndrome de demencia con un inicio repentino, signos neurológicos focales o convulsiones o trastorno en la marcha temprano en el curso de la enfermedad.
El deterioro cognitivo leve (DCL, también conocido como demencia incipiente o deterioro de memoria aislado) es un diagnóstico dado a individuos que tienen deterioros cognitivos más allá de lo esperado para su edad y educación, pero que no interfiere significativamente con sus actividades diarias (Petersen RC et al. (1999) Arch. Neurol. 56 (3): 303-8). Se considera que es la fase límite o transicional entre envejecimiento normal y demencia. Aunque el DCL se puede presentar con una variedad de síntomas, cuando la pérdida de memoria es el síntoma predominante se denomina "DCL amnésico" y con frecuencia se ve como un factor de riesgo para la enfermedad de Alzheimer (Grundman M et al. (2004). Arch. Neurol. 61 (1): 59-66). Hay estudios que sugieren que estos individuos tienen a evolucionar a enfermedad de Alzheimer probable o prodrómica a una tasa de aproximadamente el 10% al 15% por año (Grundman M et al ad supra). Además, cuando los individuos tienen deterioros en dominios diferentes de la memoria se clasifica como DCL no amnésico de dominio único o múltiple y se cree que estos individuos es más probable que se conviertan a otras demencias (Tabert MH et al. (2006). Arch. Gen. Psychiatry 63 (8): 916-24.
El diagnóstico de DCL requiere considerable juicio clínico, y como tal una evaluación clínica amplia incluyendo observación clínica, imágenes neurológicas, pruebas sanguíneas y pruebas neuropsicológicas son las mejores para descartar un diagnóstico alternativo. Normalmente se da una evaluación similar para diagnosticar la enfermedad de Alzheimer. Se diagnostica DCL cuando hay (Morris JC et al. (2001). Arch. Neurol. 58 (3): 397-405):
Evidencia de deterioro de memoria.
Conservación de capacidades cognitiva general y funcionales
- Ausencia de demencia diagnosticada.
En la última década, se han realizado varios intentos para identificar marcadores periféricos usando plasma, suero o células circulantes. En particular, puesto que las placas amiloides son una característica definitoria de la neuropatología de enfermedad de Alzheimer, y Αβ se puede detectar en plasma, su medida es un convincente biomarcador candidato para la enfermedad de Alzheimer.
En la práctica clínica, el diagnóstico de EA se lleva a cabo usando criterios clínicos basados en la presencia de distintivos clínicos típicos y la exclusión de otros tipos de demencia usando técnicas de neuroimagen y análisis de sangre. Usando estos criterios, la fiabilidad de diagnóstico es aceptable aunque, según estudios hechos usando autopsia de cerebro, entre el 10-20% de los pacientes diagnosticados con EA padecían una enfermedad diferente. Además, los métodos de diagnóstico actuales solo se pueden llevar a cabo cuando el proceso neurodegenerativo está tan avanzado que el paciente padece demencia grave y los daños cerebrales son tan extensos que el número de medidas terapéuticas es limitado. El diagnóstico definitivo requiere examen patológico de tejido cerebral post-mortem.
En vista del hecho de que Αβ se acumula en el cerebro de pacientes de EA y es un elemento central en la patogénesis de la EA, esta proteína se ha considerado como el candidato más adecuado como biomarcador de EA. Sin embargo, el uso de Αβ como biomarcador plasmático para EA se enfrenta al problema de que las concentraciones de los péptidos Αβ (Αβ(1-40) y Αβ(1-42)) en suero son extremadamente bajas, de modo que no hay ensayos que sean lo suficientemente sensibles para permitir una detección fiable de dichas especies de péptidos.
Se han usado muchos ensayos diferentes para determinar los niveles de péptidos beta amiloides en muestras biológicas (véanse, por ejemplo los métodos descritos por Scheuner et al (Nature Med., 1996, 2:864-870); Tamaoka A et al. (J Neurol Sci., 1996, 141, 65-68); Suzuki, N. et al. (Science, 1994, 264: 1336-1340); WO200722015, Vanderstichele H et al. (Amyloid, 2000, 7, 245-258); Fukomoto y col. (Arch. Neurol. 2003, 60, 958-964); Mehta et al. (Arch. Neurol. 57, 2000, 100-105); Mayeux, R. et al. (Ann Neurol. 1999, 46, 412-416); Lanz, T.A y Schacthter, J.B. (J. Neuroscience Methods, 2006, 157:71-81), WO200750359, WO0162801, WO0315617, WO0246237, WO0413172. Sin embargo, todos los ensayos basados en ELISA conocidos hasta ahora tienen un límite de detección inferior que no está en el intervalo pg/ml de un único dígito como máximo, que es suficiente para detectar Αβ40 y Αβ42 en LCR así como para detectar dichas especies en plasma de pacientes que padecen EA familiar, pero son inapropiados para detectar Αβ42 en el plasma de pacientes que padecen EA esporádica, en donde la concentración de Αβ42 es mucho menor.
Hasta la fecha, los únicos ensayos de péptido Αβ que muestran un límite de detección inferior menor pg/ml de único dígito corresponden a los ensayos descritos en los documentos WO200646644 y WO2009015696.
El documento WO200646644 describe un ensayo sándwich electroquimioluminiscente (ECL) en donde el Acm 21F12 (que reconoce los aminoácidos 33-42 de Αβ42) se acopla a bolas magnéticas, que se usan después para capturar el péptido Αβ42 en la muestra que contiene Αβ42 y se ponen en contacto además con el Acm 3D6 acoplado a un complejo de rutenio. Se detecta después la cantidad de anticuerpo 3D6 unido por la luminiscencia emitida por el complejo de rutenio cuando se aplica energía eléctrica. Usando este ensayo, los inventores son capaces de detectar tan poco como 0,5 pg/ml de un estándar de Αβ42. Sin embargo, cuando se usa el mismo ensayo para comparar Αβ42 en muestras de plasma de pacientes de EA y controles sanos, no se pudieron observar diferencias significativas entre dos conjuntos de pacientes, lo que llevó a los inventores a concluir que la cantidad de Αβ42 intacto en suero es muy baja debido a la degradación y se volvieron a un ensayo ELISA competitivo usando el Acm 21F12 que proporciona niveles de sensibilidad menores en el intervalo de ng/ml.
El documento WO2009015696 describe un ensayo ELISA sándwich de alta sensibilidad en donde el anticuerpo de detección se pone en contacto con un reactivo marcado con biotina que muestra especificidad para dicho anticuerpo. El reactivo se pone en contacto con estreptavidina que se acopla a peroxidasa. Se detecta después la actividad peroxidasa por colorimetría usando TMB o fluorescentemente usando QuantaBlue. El documento WO2006053251 describe un método para la determinación de especies de péptido beta amiloide en un amuestra que comprende poner en contacto una muestra con un agente desnaturalizante, extraer el conjunto de péptidos de la mezcla muestra-agente desnaturalizante, separar las especies de péptido beta amiloide del conjunto y determinar la cantidad de especies de péptido beta amiloide. Este método requiere un paso de separación de los péptidos antes de la determinación, lo que produce un tiempo de procesamiento aumentado y costes aumentados.
En la técnica anterior se conocen métodos para diagnosticar la EA detectando los niveles de biomarcadores presentes en el cerebro o LCR de pacientes. Se han caracterizado diferentes biomarcadores cuya determinación se lleva a cabo en LCR. El LCR refleja directamente la composición del espacio extracelular del sistema nervioso central y así, proporciona concentraciones más altas como biomarcadores. Sin embargo, el LCR solo se puede recuperar mediante punción lumbar, que no es un método de diagnóstico rutinario aceptado fácilmente por los pacientes que padecen demencia, por no mencionar pacientes con trastornos de memoria. Por tanto, hay una necesidad para biomarcadores de EA que se puedan detectar en muestras que puedan ser obtenidas de forma no agresiva del cuerpo.
Los biomarcadores adecuados para la EA descritos en la técnica anterior y que se pueden detectar en plasma incluyen (i) marcadores derivados de la placa amiloide, (ii) autoanticuerpos contra Αβ o βΑΡΡ, (iii) marcadores inflamatorios tales como IL-6, su receptor o gpl30, la proteína C reactiva o estrés oxidativo (isoprostanos), (iv) marcadores de metabolismo lipídico (apoE, oxiesteroles) y (v) marcadores de enfermedad vascular (homocisteína, lipoproteína b Clq) (Scheuner D et al. (1996) Nature Med 2, 864-870).
Sin embargo, en vista del hecho que Αβ se acumula en el cerebro de pacientes con EA y es un elemento central en la patogénesis de EA, esta proteína se ha considerado como el candidato más adecuado como biomarcador de EA. Sin embargo, el uso de Αβ como un biomarcador de plasma para la EA se enfrenta al problema de que las concentraciones de los péptidos Αβ (Αβ(1-40) y Αβ(1-42)) en suero son extremadamente bajas, de modo que no hay ensayos que sean lo suficientemente sensibles para permitir un detección fiable de dichas especies de péptidos. Además, se han descrito varios anticuerpos para detectar péptidos Αβ y para ser usados en ensayos inmunológicos. Por ejemplo, el anticuerpo monoclonal anti-AP(l-17) (6E10) es un anticuerpo dirigido hacia la región N-terminal del péptido Αβ, generado contra el péptido Αβ(1-17) (Kim KS, et al. Neurosci. Res. Comm. 7; 1988) y que reconoce los péptidos Αβ que incluyen dicha región o el anticuerpo monoclonal generado contra el péptido Αβ(1-28) (Pierce).
Sin embargo, hay una necesidad en la técnica de ensayos y kits inmunológicos mejorados para detectar péptidos derivados de Αβ que salven los problemas de los métodos y kits conocidos en la técnica, en particular, que sean suficientemente sensibles para detectar péptidos Αβ de una forma fiable en plasma de pacientes que padecen EA esporádica. También existe una necesidad para identificar biomarcadores para el diagnóstico temprano de la EA que sean sensibles y específicos y que permitan distinguir el deterioro cognitivo debido a la edad de los asociados con los primeros síntomas del proceso, así como para distinguir cambio debidos a EA y debidos a otras afecciones degenerativas. Según Growdon et al., (Neurobiol. Aging 1998, 19: 109-116), el marcador ideal para la EA debe satisfacer los siguientes requerimientos:
- Debe detectar una característica fundamental de la neuropatología
- Debe ser validado en casos de la enfermedad confirmados neuropatológicamente
- Debe mostrar un sensibilidad de al menos el 80% para detectar EA
- Debe mostrar una especificidad de al menos el 80% para distinguir EA de otros tipos de demencia y
- Debe ser fiable, reproducible, no agresivo, sencillo de realizar y económico.
COMPENDIO DE LA INVENCIÓN
En un aspecto, la invención se refiere a un anticuerpo que específicamente se une al péptido Αβ(1-17).
En un segundo aspecto, la invención se refiere a un kit para la detección del péptido Αβ(1-17), que comprende:
(i) un primer anticuerpo que es un anticuerpo como se define en cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3 y
(ii) un segundo anticuerpo que reconoce una región del péptido Αβ(1-17) diferente de la región que es reconocida por el primer anticuerpo. En un tercer aspecto, la invención se refiere a un método para determinar o detectar el péptido Αβ(1-17) en una muestra que comprende los pasos de
(i) capturar el péptido Αβ(1-17) presente en la muestra con un primer anticuerpo que se une específicamente a dicho péptido,
(ii) poner en contacto los complejos inmunes formados en el paso (i) con un segundo anticuerpo, en donde dicho segundo anticuerpo se como se define en cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4 y en donde dicho segundo anticuerpo reconoce una región diferente que el primer anticuerpo y está acoplado a un primer miembro de un par de unión;
(iii) poner en contacto los complejos formados en el paso (ii) con un segundo miembro de un par de unión que está acoplado a una etiqueta detectable, y (iv) detectar o determinar la actividad o cantidad de la etiqueta detectable.
En otro aspecto, la invención se refiere a un método para el seguimiento de una enfermedad neurodegenerativa en un sujeto, que comprende:
(a) determinar en una muestra de dicho sujeto en un primer punto temporal el nivel del péptido Αβ17 libre en una muestra de plasma y el nivel del péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre en una muestra de dicho sujeto;
(b) determinar en una muestra de dicho sujeto en un segundo punto temporal el nivel del péptido Αβ17 libre en una muestra de plasma y el nivel del péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre en una muestra de dicho sujeto y
(c) comparar el cociente del nivel del péptido Αβ17 libre en una muestra de plasma y el nivel del péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre en dichos primer y segundo puntos temporales;
en donde si dicho cociente aumenta en el segundo punto temporal con respecto al primer punto temporal, es indicativo de un empeoramiento de la enfermedad de Alzheimer en el sujeto entre dichos primer y segundo puntos temporales.
En otro aspecto, la invención se refiere a un método para determinar si un sujeto padece enfermedad de Alzheimer leve que comprende determinar el valor de uno o más parámetros seleccionados del grupo que consiste en:
(a) los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre de dicha muestra del sujeto; (b) los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 totales en una muestra de plasma de dicho sujeto y los niveles de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre de dicho sujeto;
(c) el valor añadido del nivel de péptido Αβ42 total en una muestra de plasma del sujeto y el nivel de péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre del sujeto,
(d) los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 totales en una muestra de plasma del sujeto y los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre del sujeto; y
(e) el valor cociente entre el nivel de Αβ17 libre en una muestra de plasma de dicho sujeto y el péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre del sujeto; en donde si el valor de uno o más de dichos parámetros aumenta con respecto al valor de dichos parámetros en una muestra de referencia en un sujeto sano, entonces el sujeto padece enfermedad de Alzheimer leve.
En otro aspecto, la invención se refiere a un método para determinar si un sujeto padece DCL con enfermedad de Alzheimer prodrómica que comprende determinar el valor de uno o más de los parámetros seleccionados del grupo de:
(a) los valores añadidos del nivel de péptido Αβ42 total en una muestra de plasma de dicho sujeto y el nivel de péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre de dicho sujeto;
(b) los valores añadidos del nivel de péptidos Αβ40 y Αβ42 totales en una muestra de plasma del sujeto y los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre de dicho sujeto;
(c) el valor cociente entre el nivel del péptido Αβ17 libre en una muestra de plasma del sujeto y el nivel péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre de dicho sujeto;
(d) el valor cociente entre el nivel de Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el nivel del péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre;
(e) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde a los niveles añadidos de péptido Αβ17 total en una muestra de plasma y el nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el segundo parámetro corresponde a los niveles añadidos de péptido Αβ42 total en una muestra de plasma y el nivel de péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre;
(f) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde al nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el segundo parámetro corresponde a los valores añadidos de los niveles de péptido Αβ40 unido a células en una muestra de sangre y de péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre; y
(g) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde a los valores añadidos del nivel de péptido Αβ17 total en una muestra de plasma de dicho sujeto y el nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el segundo parámetro corresponde al valor añadido de los péptidos Αβ40 y Αβ42 totales en una muestra de plasma y los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre;
en donde si el valor de uno o más de los parámetros (a), (b) o (c) aumenta y/o el valor de uno o más de los parámetros (d), (e), (f) o (g) disminuye con respecto al valor en una muestra de referencia de un sujeto sano, el sujeto padece DCL con enfermedad de Alzheimer prodrómica.
En otro aspecto, la invención se refiere a un método para determinar si un sujeto padece DCL con enfermedad de Alzheimer prodrómica que comprende determinar el valor de uno o más parámetros seleccionados del grupo de:
(a) los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre de dicha muestra del sujeto;
(b) el valor cociente entre el nivel del péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre del sujeto y el nivel del péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre de dicho sujeto;
(c) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde a los valores añadidos del nivel de péptido Αβ17 total en una muestra de plasma de dicho sujeto y el nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el segundo parámetro corresponde a los valores añadidos del nivel de péptido Αβ42 total en una muestra de plasma de dicho sujeto y el nivel de péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre; (d) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde al nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el segundo parámetro corresponde a los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre;
(e) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde a los valores añadidos del nivel de péptido Αβ17 total en una muestra de plasma de dicho sujeto y el nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el segundo parámetro corresponde a los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 totales en una muestra de plasma y los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre;
en donde si el valor de (a) aumenta y/o el valor de uno o más de dichos parámetros (b), (c), (d) y (e) disminuye con respecto al valor de una muestra de referencia en un sujeto que padece DCL con enfermedad de Alzheimer no prodrómica, el sujeto padece DCL con enfermedad de Alzheimer prodrómica.
En otro aspecto, la invención se refiere a un método para determinar si un sujeto padece enfermedad de Alzheimer leve que comprende determinar el valor de uno o más parámetros seleccionados del grupo de:
(a) los valores añadidos de niveles de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre;
(b) los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 totales en una muestra de plasma y los niveles de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre;
(c) los valores añadidos de péptido Αβ42 total en una muestra de plasma y el nivel de péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre;
(d) los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 totales en una muestra de plasma y los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre;
(e) los valores añadidos del nivel de péptido Αβ40 total en una muestra de plasma y el nivel de péptido Αβ40 unido a células en una muestra de sangre;
(f) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde al nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el segundo parámetro corresponde a los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre; y
(g) el valor cociente entre el nivel del péptido Αβ17 libre en una muestra de plasma y el nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre;
en donde si el valor de uno o más de dichos parámetros aumenta con respecto al valor de una nuestra de referencia en un sujeto que tiene DCL con enfermedad de Alzheimer no prodrómica, el sujeto padece de enfermedad de Alzheimer leve.
En otro aspecto, la invención se refiere a un método para determinar si un sujeto padece enfermedad de Alzheimer leve que comprende determinar el valor de uno o más parámetros seleccionados del grupo de:
(a) el valor cociente entre el nivel del péptido Αβ17 libre en una muestra de plasma y el nivel del péptido Αβ40 libre en una muestra de plasma; y
(b) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde al nivel de péptido Αβ17 libre en una muestra de plasma y el segundo parámetro corresponde a los niveles añadidos de los péptidos Αβ40 y
Αβ42 libres en una muestra de plasma;
en donde si el valor de uno o más de dichos parámetros aumenta con respecto al valor de una muestra de referencia en un sujeto con deterioro cognitivo leve prodrómico, el sujeto padece enfermedad de Alzheimer leve.
BREVE DESCRIPCIÓN DE LAS FIGURAS
Figura 1: Resultado de un ensayo de transferencia de manchas llevado a cabo usando el anticuerpo policlonal anti-Aβ(l-17) y diferentes péptidos Αβ adsorbidos a una membrana. El anticuerpo secundario usado en el ensayo fue un anticuerpo de cabra anti- conejo-HRP. La transferencia de mancha se reveló con ECL con la tecnología SNAP a 1 minuto y 3 minutos de exposición.
La figura 2 muestra el análisis de espectrometría de masas para una muestra de LCR (2A) y una muestra de plasma (2B), en donde el pico de Αβ17 se indica con una flecha.
La figura 3 muestra los valores medios de algunos de los marcadores en diferentes grupos de pacientes. LP: Αβ libre en plasma; TP: Αβ total en plasma; UC: Αβ unido a células; CES: conjunto en sangre (Αβ total en plasma + Αβ unido a células). (A) Concentración en pg/ml de los marcadores de Αβ obtenida en un ELISA sándwich para los diferentes grupos: CS>65 (sujetos sanos mayores de 65), DCL posible (sujetos con deterioro cognitivo leve con EA posible o no prodrómica), DCL probable (sujetos con deterioro cognitivo leve con EA probable o prodrómica) y EA leve (sujetos con enfermedad de Alzheimer leve). (B) y (C): gráficas que representan la absorbancia obtenida en ELISA para varios marcadores en los diferentes grupos.
La figura 4 muestra los valores medios de algunos de los marcadores en diferentes grupos de pacientes. LP: Αβ libre en plasma; TP: Αβ total en plasma; UC: Αβ unido a células; CES: conjunto en sangre (Αβ total en plasma + Αβ unido a células). (A) Cocientes de las concentraciones (en pg/ml) de los marcadores de Αβ obtenidos en un ELISA sándwich para los diferentes grupos: CS>65 (sujeto sano mayor de 65), DCL posible (deterioro cognitivo leve posible o no prodrómico), DCL probable (deterioro cognitivo leve probable o prodrómico) y EA leve (enfermedad de Alzheimer leve). (B) Gráficas que representan la absorbancia obtenida en ELISA para varios marcadores en los diferentes grupos.
La figura 5 muestra los valores medios de algunos de los marcadores en diferentes grupos de pacientes. LP: Αβ libre en plasma; TP: Αβ total en plasma; UC: Αβ unido a células; CES: conjunto en sangre (Αβ total en plasma + Αβ unido a células). (A) Cocientes de las concentraciones en pg/ml de los marcadores de Αβ obtenidos en un ELISA sándwich para los diferentes grupos: CS>65 (sujeto sano mayor de 65), DCL posible (deterioro cognitivo leve posible o no prodrómico), DCL probable (deterioro cognitivo leve probable o prodrómico) y EA leve (enfermedad de Alzheimer leve). (B) Gráfica que representa la absorbancia obtenida en ELISA para varios marcadores en los diferentes grupos.
La figura 6 muestra el cociente entre Αβ17 libre en plasma (LP) y Αβ17 unido a células (UC) para la distinción entre los diferentes grupos. (A) concentración en pg/ml de los marcadores de Αβ obtenidos en un ELISA sándwich para los diferentes grupos: CS>65 (sujeto sano mayor de 65), DCL posible (deterioro cognitivo leve posible o no prodrómico), DCL probable (deterioro cognitivo leve probable o prodrómico) y EA leve (enfermedad de Alzheimer leve). (B) Gráfica que representa la absorbancia obtenida en ELISA para dicho marcador en los diferentes grupos. DESCRIPCIÓN DETALLADA DE LA INVENCIÓN
Los autores de la presente invención han generado un anticuerpo muy específico para el péptido Αβ17, que no reconoce otras especies de Αβ. Por ejemplo, la figura 1 muestra que el anticuerpo reconoce Αβ17 de una manera específica sin mostrar reactividad cruzada sustancial hacia otras especies de Αβ tales como Αβ15, Αβ16, Αβ38, Αβ40 o Αβ42. También han diseñado un kit para la detección del péptido Αβ17 lo que permite una cuantificación fiable de dicha especie molecular en cualquier muestra en cualquier sujeto y, en particular, en el plasma de sujetos que se sospecha que padecen EA. Asimismo, los autores han mostrado que es posible distinguir entre diferentes grupos de sujetos: sujetos sanos, con EA prodrómica, con deterioro cognitivo leve no prodrómico y con EA leve midiendo el nivel de diferentes parámetros.
ANTICUERPO DE LA INVENCIÓN
En un primer aspecto, la invención se refiere a un anticuerpo, de aquí en adelante el anticuerpo de la invención, que se une específicamente al péptido Αβ(1-17) (SEQ ID NO: 1).
El término "se une específicamente", como se usa aquí, se refiere a un anticuerpo que se une al péptido Αβ17 sin dar ninguna reacción cruzada sustancial con otros péptidos Αβ. En una forma de realización particular, la especificidad para el péptido Αβ17 es mayor del 50%, mayor del 60%, mayor del 70%, mayor del 80% o mayor del 90%. Más preferiblemente, la especificidad del anticuerpo por el péptido Αβ17 es mayor del 95%. Como se puede ver en la figura 1, los autores de la invención han ensayado la especificidad del anticuerpo anti-Aβl7 y han mostrado que es muy específico para el péptido Αβ17 y no muestra ninguna reactividad cruzada sustancial hacia otros péptidos Αβ (Αβ15, Αβ16, Αβ38, Αβ40 y Αβ42). De esta manera, en una forma de realización particular, el anticuerpo de la invención no muestra reactividad cruzada sustancial hacia un péptido Αβ seleccionado del grupo que consiste en Αβ15, Αβ16, Αβ38, Αβ40, Αβ42 y una combinación de uno o más de ellos.
No hay prácticamente limitación con respecto al tipo de anticuerpo según la presente invención, siempre que contenga al menos un sitio de unión al antígeno específico para Αβ17. Por tanto, las moléculas de anticuerpo adecuadas incluyen: - anticuerpos "intactos" que comprenden una región variable de unión al antígeno así como un dominio constante la cadena ligera (CL) y dominios constantes de la cadena pesada, CHl, CH2 y CH3,
- fragmentos "Fab" resultantes de la digestión con papaína de un anticuerpo intacto y que comprenden un único sitio de unión a antígeno y una región CL y una CHl,
- fragmentos "F(ab')2" resultantes de la digestión con tripsina de un anticuerpo intacto y que contienen dos sitios de unión a antígeno,
- fragmentos "Fab"' que contienen el dominio constante de la cadena ligera y el primer dominio constante (CHl) de la cadena pesada y que tienen un sitio de unión a antígeno solamente. Los fragmentos Fab' se diferencian de los fragmentos Fab por la adición de unos pocos residuos en el extremo carboxi del dominio CHl de la cadena pesada incluyendo una o más cisternas de la región bisagra del anticuerpo,
- "Fv" es el fragmento mínimo de anticuerpo que contiene un sitio completo de reconocimiento de antígeno y de unión a antígeno. Esta región consiste en un dímero de un domino variable de la cadena pesada y uno de la cadena ligera en asociación estrecha, no covalente. Es en esta configuración que las tres regiones hipervariables (CDR) de cada dominio variable interaccionan para definir un sitio de unión a antígeno en la superficie del dímero VH-VL. Colectivamente, las seis regiones hipervariables confieren al anticuerpo especificidad de unión a antígeno. Sin embargo, incluso un solo dominio variable (o la mitad de un Fv que comprende solo tres regiones hipervariables específicas para un antígeno) tiene la capacidad de reconocer y unir al antígeno, aunque con una afinidad menor que el sitio de unión entero.
- Los fragmentos de anticuerpo FV de cadena sencilla o "scFv" comprenden los dominios VL y VH del anticuerpo, en donde estos dominios están presentes en una única cadena polipeptídica. Preferiblemente, las regiones VL y VH están unidas por un enlazador polipeptídico que permite al "scFv" formar estructuras deseadas para la unión al antígeno.
- Los "diacuerpos" comprenden un dominio variable de la cadena pesada (VH) unido a un dominio variable de la cadena ligera (VL) en la misma cadena polipeptídica (VH-VL) unidos por un enlazador peptídico que es demasiado corto para permitir el emparejamiento entre los dos dominios en la misma cadena. Esto fuerza el emparejamiento con los dominios complementarios de otra cadena y fomenta el ensamblaje de una molécula dimérica con dos sitios de unión a antígeno funcionales.
- Los "anticuerpos biespecíficos" (AcB) son anticuerpos individuales, divalentes (o fragmentos inmunoterapéuticamente efectivos de los mismos) que tienen dos sitios de unión a antígeno diferentemente específicos. Los dos sitios de antígeno pueden estar acoplados químicamente o por métodos de ingeniería genética conocidos en la técnica.
Todos estos fragmentos de anticuerpos se pueden modificar adicionalmente utilizando técnicas convencionales conocidas en la técnica, por ejemplo, utilizando deleción(es), inserción(es), sustitución(es), adición(es) de aminoácidos y/o recombinación (y/o cualquier otra modificación(es) (por ejemplo, modificaciones postraduccionales y químicas, tales como glicosilación y fosforilación) conocidas en la técnica, solas o en combinación. Los métodos para introducir tales modificaciones en la secuencia de ADN subyacente a la secuencia de aminoácidos de una cadena de inmunoglobulina los conoce bien el experto en la materia; véase, por ejemplo Sambrook et al.; Molecular Clonning: A Laboratory Manual; Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2a edición 1989 y 3a edición 2001.
Los anticuerpos adecuados para la presente invención incluyen anticuerpos tanto policlonales como monoclonales. Para la producción de anticuerpos policlonales, se pueden inmunizar diversos huéspedes incluyendo cabras, conejos, ratas, ratones, ovejas, perros, camellos, dromedarios, llamas, seres humanos, aves y otros mediante inyección con el péptido correspondiente al fragmento de Αβ17 que tiene propiedades inmunogénicas. Dependiendo de la especie del huésped, se pueden utilizar diversos adyuvantes para aumentar la respuesta inmunológica. Dichos adyuvantes incluyen, pero no están limitados a, de Freund, geles minerales como hidróxido de aluminio, sustancias tensioactivas tales como lisolecitina, polianiones, péptidos, emulsiones de aceite, KLH y dinitrofenol. Entre los adyuvantes utilizados en seres humanos el BCG (bacilo de Calmette-Guerin) y Corynebacterium parvum son especialmente preferidos. En una forma de realización preferida, los adyuvantes usados para la generación del anticuerpo de la invención son adyuvante completo de Freund, adyuvante incompleto de Freund y alumbre Imjet.
Puede ser útil conjugar el antígeno a una proteína que sea inmunogénica en la especie que va a inmunizarse. Proteínas útiles para la conjugación con el péptido son, sin limitación, hemocianina de lapa californiana (KLH), Blue Carrier (hemocianina aislada de Concholepas concholepas), tiroglobulina bovina o inhibidor de tripsina de soja, utilizando un agente bifuncional o de derivación, por ejemplo, éster de maleimidobenzoilo y sulfosuccinimida (conjugación a través de residuos de cisteína), N-hidroxisuccinimida (a través de residuos de lisina), glutar aldehido, anhídrido succínico o SOCl2. En una forma de realización preferida, la proteína usada para conjugación es KLH. En una forma de realización preferida, la conjugación entre el péptido y KLH se lleva a cabo mediante el entrecruzador NHS-PEG4-maleimida y los péptidos tienen una cisteína en el N-terminal para realizar la conjugación del péptido a KLH.
Para la producción de anticuerpos monoclonales, se pueden utilizar técnicas convencionales. Por ejemplo, los anticuerpos monoclonales se pueden hacer utilizando el método del hibridoma descrito por primera vez por Kohler et al., Nature, 256: 495 (1975) utilizando el procedimiento descrito en detalle en las unidades 11.4 a 11.11 de Ausubel, F.M. et al. (Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons Inc.; edición encuadernada en anillas, 2003). Alternativamente, los anticuerpos monoclonales se pueden aislar mediante procedimientos de ADN recombinante de bibliotecas de anticuerpos en fagos generados utilizando las técnicas descritas en McCafferty et al., Nature 348: 552-554 (1990). Clacksoii et al., Nature, 352: 624-628 (1991) y Marks et al., J. Mol. Biol., 222: 581-597 (1991) describen el aislamiento de anticuerpos murinos y humanos, respectivamente, utilizando bibliotecas de fagos. Publicaciones posteriores describen la producción de anticuerpos humanos de alta afinidad (en el intervalo nM) mediante mezcla de cadenas (Marks et al., Bio/Technology, 10: 779-783 (1992)), así como infección combinatoria y recombinación in vivo como estrategia para construir bibliotecas muy grandes de fagos (Waterhouse et al., Nucí. Acids Res., 21: 2265-2266 (1993)). De este modo, estas técnicas son alternativas viables a las técnicas tradicionales de hibridomas de anticuerpos monoclonales para el aislamiento de anticuerpos monoclonales. Los anticuerpos policlonales se pueden usar directamente como un antisuero obtenido de huéspedes inmunizados después del sangrado y la eliminación del coagulo de fibrina. Los anticuerpos monoclonales se pueden utilizar directamente como sobrenadante del cultivo de hibridoma o como líquido ascítico después de la implantación del hibridoma en la cavidad peritoneal de un huésped adecuado. Alternativamente, las moléculas de inmunoglobulina, policlonales o monoclonales, se pueden purificar antes de su uso mediante métodos convencionales tales como purificación de afinidad utilizando péptidos derivados de Αβ17, purificación en gel no desnaturalizante, HPLC o RP-HPLC, exclusión molecular, purificación en columna de proteína A, o cualquier combinación de estas técnicas.
En una forma de realización preferida, el anticuerpo de la invención es un anticuerpo policlonal. En una forma de realización preferida, el método para la generación del anticuerpo de la invención incluye los siguientes pasos:
Ia dosis: Inmunización de un conejo con 100 μg del péptido usando adyuvante completo de Freund como adyuvante.
2a dosis: Inmunización de un conejo con 100 μg del péptido usando adyuvante incompleto de Freund como adyuvante.
3a dosis: Inmunización de un conejo con 100 μg del péptido usando alumbre como adyuvante.
- 3 dosis más con 200 μg del péptido alternando los adyuvantes; adyuvante incompleto de Freund-alumbre-adyuvante incompleto de Freund.
En una forma de realización preferida la región del péptido Αβ o inmunógeno usado para generar el anticuerpo de la invención se selecciona del grupo que consiste en péptido Αβ(12-17), correspondiente a la secuencia VHHQKL (SEQ ID NO: 2) y del péptido Αβ (11-17), correspondiente a la secuencia EVHHQKL (SEQ ID NO: 3).
KIT DE LA INVENCIÓN
En un segundo aspecto, la invención se refiere a un kit para la detección o para la determinación del péptido Αβ(1-17), de aquí en adelante kit de la invención, que comprende:
(i) un primer anticuerpo que es el anticuerpo específico para Αβ(1-17) según la invención y (ii) un segundo anticuerpo que reconoce una región del péptido Αβ(1-17) diferente de la región que es reconocida por el primer anticuerpo.
El término "péptido beta amiloide" se usa en el presente documento de manera intercambiable con Αβ, proteína beta amiloide, "A beta", "beta AP", "péptido A beta", o "péptido A beta" y se refiere a una familia de péptidos que son el constituyente químico principal de las placas seniles y los depósitos amiloides vasculares (angiopatía amiloide) encontrados en el cerebro de pacientes con enfermedad de Alzheimer (EA), síndrome de Down y hemorragia cerebral hereditaria con amiloidosis de tipo holandés (HCHWA-D). En cualquier forma, el péptido beta amiloide es un fragmento de pro teína precursora de beta- amiloide (APP) que comprende un número variable de aminoácidos que se produce por el corte proteolítico secuencial de la proteína precursora de amiloide por las secretasas β y γ o por las secretasas β y a.
Los péptidos beta amiloides se expresan comúnmente como
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en donde x representa el número de aminoácido del extremo amino del péptido beta amiloide e y representa el número de aminoácido del extremo carboxi. "Αβ(1-17)" o "Αβ17", como se usan aquí, se refiere a un péptido de 17 aminoácidos que corresponde a los aminoácidos 672 a 688 (SEQ ID NO: 1) de la proteína precursora de amiloide y que se produce por el corte proteolítico secuencial de la proteína precursora de amiloide (SEQ ID NO: 4) por las secretasas β y a.
En el contexto de la presente invención, el "anticuerpo de captura" es el anticuerpo que se usa para recuperar de una muestra todas las especies moleculares a las que se une específicamente el anticuerpo. No hay prácticamente limitación respecto al tipo de anticuerpo que se puede usar como anticuerpo de captura siempre que contenga al menos un sitio de unión a antígeno específico para Αβ17. E principio, cualquier anticuerpo específico para el péptido Αβ17 se puede usar como anticuerpo de captura. El anticuerpo de captura se une a una región diferente que el segundo anticuerpo. En una forma de realización preferida, el anticuerpo de captura se dirige contra un epítopo en la región N-terminal del péptido Αβ17. En una forma de realización aún más preferida, los epítopos a los que se puede dirigir el anticuerpo de captura incluyen epítopos localizados en los aminoácidos 1 a 10 de Αβ17. En aún otra forma de realización preferida, el anticuerpo de captura es un anticuerpo monoclonal. En una forma de realización aún más preferida, el anticuerpo de captura reconoce una región correspondiente a los aminoácidos 1-16 del péptido Αβ. En una forma de realización aún más preferida, el anticuerpo monoclonal usado como anticuerpo de captura es el Acm 6E10 como se ha descrito en Kim, K.S. (Neuroscience Res. Comm. 1988, 2: 121- 130).
El segundo componente del kit de la invención corresponde al anticuerpo de la invención, ya descrito previamente en la presente invención. En el contexto de la presente invención, el "anticuerpo de detección" es el anticuerpo que se usará para detectar la cantidad de antígeno que ha retenido el anticuerpo de captura. El primer anticuerpo reconoce una región diferente que el segundo anticuerpo, porque se debe unir a una región del antígeno que no esté cubierta por el anticuerpo de captura.
El primer y segundo anticuerpos se pueden usar en el kit de la invención indistintamente como anticuerpos de captura y detección.
Uno de los dos anticuerpos (el primer o el segundo anticuerpo) puede estar acoplado a un primer miembro de un par de unión, de modo que permita la detección del anticuerpo que se une al antígeno capturado por el anticuerpo de captura. El anticuerpo que se acoplará actuará como anticuerpo de detección y puede ser el primer o el segundo anticuerpo.
En una forma de realización particular, el kit comprende además un anticuerpo o combinación de anticuerpos que específicamente se unen a Αβ40 y/o Αβ42. De esta manera, en una forma de realización particular, el kit sería útil para la detección del péptido Αβ17 y el/los péptido(s) Αβ40 y/o Αβ42.
"Αβ42", como se usa aquí, se refiere a un péptido de 42 aminoácidos que corresponde a los aminoácidos 672 a 713 (SEQ ID NO: 5) y que se produce mediante corte proteolítico secuencial de la proteína precursora de amiloide (SEQ ID NO: 4) por las secretasas β y γ.
"Αβ40", como se usa aquí, se refiere a un péptido de 40 aminoácidos que corresponde a los aminoácidos 672 a 711 (SEQ ID NO: 6) y que se produce mediante corte proteolítico secuencial de la proteína precursora de amiloide (SEQ ID NO: 7) por las secretasas β y γ.
En una forma de realización preferida, el primer o segundo anticuerpo, como pueda ser el caso, está acoplado a un primer miembro de un par de unión. Si este es el caso, también está incluido en el kit un segundo miembro de un par de unión acoplado a una etiqueta detectable. En una forma de realización particular, si la etiqueta detectable que está acoplada al segundo miembro del par de unión es una etiqueta enzimática, entonces el kit comprende además un sustrato que pueda convertir dicha enzima en un producto detectable.
Primer y segundo miembros adecuados de pares de unión incluyen, sin limitación:
■ hapteno o antígeno/anticuerpo, por ejemplo, digoxina y anticuerpos anti- digoxina,
■ biotina o análogos de biotina (por ejemplo, aminobiotina, iminobiotina o destiobiotina)/avidina o estreptavidina,
■ azúcar/lecitina,
■ enzima y cofactor
■ ácido fólico/folato
■ oligonucleótidos bicatenarios que se unen selectivamente a proteínas/factores de transcripción,
■ ácido nucleico o análogo de ácido nucleico/ácido nucleico complementario, y
■ receptor/ligando, por ejemplo, receptor de hormona esteroidea/hormona esteroidea
Se entenderá que el término "primer" y "segundo" miembro de un par de unión es relativo y que cada uno de los miembros anteriores se puede ver como primer o segundo miembro del par de unión. En una forma de realización preferida, el primer miembro de un par de unión es biotina o una variante funcionalmente equivalente de la misma y el segundo miembro del par de unión es avidina, estreptavidina o una variante funcionalmente equivalente de la misma. En una forma de realización preferida, el segundo miembro del par de unión es estreptavidina.
Las etiquetas detectables adecuadas incluyen, sin limitación, grupos fluorescentes (por ejemplo, fluoresceína, rodamina, ficoeritrina, cumarina, oxazina, resorufina, cianina y derivados de los mismos), grupos luminiscentes (por ejemplo, las nanopartículas Qdot™ suministradas por Quantum Dot Corporation, Palo Alto, CA). Si la etiqueta detectable es una enzima, entonces esta enzima debe ser capaz de generar una señal detectable, por ejemplo, tras la adición de un activador, sustrato, agente amplificador y similar. Las enzimas que son adecuadas como etiquetas detectables para la presente invención y sus sustratos correspondientes incluyen:
• Fosfatasa alcalina:
o Sustratos cromogénicos: sustratos basados en fosfato de p-nitrofenilo (p- NPP), fosfato de 5-bromo-4-cloro-3-indolilo /nitroazul de tetrazolio (BCIP/NBT), Fast-Red/fosfato de naftol-AS-TS
o Sustratos fluorogénicos: fosfato de 4-metilumbeliferilo (4-MUP), 2-(5'- cloro-2'-fosforiloxifenil)-6-cloro-4-(3H)-quinazolinona (CPPCQ), difosfato de 3,6-fluoresceína (3,6-FDP), sales diazónicas de Fast Blue BB, Fast Red TR, o Fast Red Violet LB.
• Peroxidasas:
o Sustratos cromogénicos basados en 2,2-azinobis(ácido 3- etilbenzotiazolina-6-sulfónico) (ABTS), o-fenilenediamina (OPT), 3,3',5,5'-tetrametilbencidina (TMB), o-dianisidina, ácido 5- aminosalicílico, ácido 3-dimetilaminobenzoico (DMAB) y 3-metil-2- benzotiazolinahidrazona (MBTH), 3-amino-9-etilcarbazol (AEC) y tetrahidrocloruro de 3,3,'-diaminobenzidina (DAB).
o Sustratos fluorogénicos: ácido 4-hidroxi-3-metoxifenilacético, fenoxazinas reducidas y benzotiazinas reducidas, incluyendo el reactivo Amplex® Red, Amplex UltraRed y dihidroxantenos reducidos.
• Glicosidasas:
o Sustratos cromogénicos: o-nitrofenil-P-D-galactósido (o-NPG), p- nitrofenil-P-D-galactósido y 4-metilumbelifenil-P-D-galactósido (MUG) para la β-D-galactosidasa.
o Sustratos fluorogénicos: resorufina β-D-galactopiranósido, digalactósido de fluoresceína (FDG), diglucurónido de fluoresceína, 4- metilumbelifenil-P-D-galactopiranósido, caroboxiumbeliferil-P-D- galactopiranósido y β-D-galactopiranósidos de cumarina fluorados.
• Oxidorreductasas (luciferasa):
o Sustratos luminiscentes: luciferina.
En una forma de realización particular, la etiqueta detectable es una molécula fluorescente, una molécula luminiscente o una enzima. En una forma de realización preferida, la etiqueta detectable es peroxidasa de rábano y el reactivo de detección es TMB.
En una forma de realización preferida, el kit comprende además un soporte sólido. Como se usa aquí, el término "soporte" o "superficie" se refiere a una fase sólida que es un material poroso o no poroso insoluble en agua que puede tener cualquiera de un número de formas, tal como una tira, varilla, partículas, incluyendo partículas de látex, partículas magnéticas, micropartículas, bolas, membranas, pocilios de microtitulación y tubos de plástico. En principio, cualquier material es adecuado como soporte sólido siempre que sea capaz de unir cantidades suficientes de anticuerpo de captura. Así, la elección del material de la fase sólida se determina en base a las características de realización del formato del ensayo deseado. Los materiales adecuados para el soporte sólido incluyen materiales poliméricos, particularmente materiales de celulosa y materiales derivados de celulosa, tales como papeles que contienen fibra, por ejemplo, papel de filtro, papel cromatográfico, papel de fibra de vidrio, etc.; polímeros sintéticos o naturales modificados, tales como nitrocelulosa, acetato de celulosa, poli(cloruro de vinilo), poliacrilamida, dextrano entrecruzado, agarosa, poliacrilato, polietileno, polipropileno, poli(4-metilbuteno), poliestireno, polimetacrilato, poli(tereftalato de etileno), nylon, poli(butirato de vinilo), etc.; usados por sí mismos o junto con otros materiales; vidrio tal como, por ejemplo, vidrio disponible como biovidrio, cerámica, metales, y similares. Se prefieren polímeros no entrecruzados de estireno y estireno carboxilado o estireno funcionalizado con otros grupos activos tales como amino, hidroxilo, halo y similares. En algunos casos, se usarán copolímeros de estírenos sustituidos con dienos tales como butadieno.
En una forma de realización particular, el anticuerpo que no está acoplado al primer miembro de un par de unión está preunido al soporte sólido, que puede ser el primer o segundo anticuerpo. El soporte sólido y el primer o segundo anticuerpo se pueden proporcionar por separado en el kit o, alternativamente, el soporte se puede distribuir ya precubierto con el anticuerpo. En este caso, el soporte puede haber sido tratado con una solución de bloqueo después de la unión del anticuerpo. Si el soporte está precubierto, se prefiere que el soporte se trate con una solución concentrada de trehalosa y se deje secar, en cuyo caso la trehalosa seca forma un halo en el soporte. Estos soportes que contienen la trehalosa seca son excepcionalmente estables y se pueden almacenar hasta dos años si se mantienen a 4°C en la oscuridad.
Los componentes adicionales del kit pueden incluir:
• Medios para retirar del paciente la muestra a analizar.
· Tampones y soluciones requeridas para preparar las curvas patrón de los péptidos diana.
• Tampones y soluciones para lavar y bloquear el soporte sólido durante el ensayo.
• Tampones y soluciones para recubrir el soporte sólido con el anticuerpo de recubrimiento.
• Reactivos para revelar la señal de color o fluorogénica de la etiqueta detectable.
• Reactivos para detener la formación del producto coloreado o fluorogénico de la etiqueta detectable (por ejemplo, H2S04 1N).
• Medios para mantener los péptidos en un estado desplegado (por ejemplo, clorhidrato de guanidino concentrado).
• Una muestra que contiene una disolución madre del péptido Αβ17 y adicionalmente de los péptidos Αβ40 y/o Αβ42 o una combinación de los mismos.
La inmovilización del anticuerpo en el soporte sólido se puede llevar a cabo antes de la unión del polipéptido diana que se va a detectar o una vez que el péptido/proteína se une al anticuerpo. En cualquier caso, si se usa un soporte sólido, es conveniente bloquear el exceso de sitios de unión de proteínas en el soporte antes de añadir la muestra que contiene el polipéptido diana que se va a determinar. Preferiblemente, el bloqueo o extinción de los sitios de unión de péptidos en el soporte se lleva a cabo utilizando el mismo tampón que se usa para lavar los complejos tras cada reacción de unión (por ejemplo, Tris-HCl 50 mM, pH 8, PBS o TBS opcionalmente con Tween 20) suplementado con un compuesto macromolecular (por ejemplo, seroalbúmina bovina, leche desnatada en polvo, reactivo de bloqueo de inmunotransferencia, caseína, lacto albúmina, ovoalbúmina) a concentraciones desde alrededor del 0,05% al 10%, preferiblemente del 1% al 5%, más preferiblemente alrededor del 3%. Si el soporte que comprende el anticuerpo de captura inmovilizado se debe almacenar durante algún tiempo, se prefiere que el soporte se trate con una solución concentrada de trehalosa y se deje secar, en cuyo caso la trehalosa seca forma un halo en el soporte. Estos soportes que contienen la trehalosa seca son excepcionalmente estables y se pueden almacenar hasta dos años cuando se mantienen a 4°C en la oscuridad.
El kit de la invención permite la detección o determinación con alta sensibilidad y especificidad del péptido o péptidos que son específicamente reconocidos por el primer y segundo anticuerpo componentes del kit. De esta manera, en un aspecto adicional, la invención se refiere al uso de un kit de la invención para detectar el péptido Αβ17 en una muestra. En una forma de realización particular, el kit se usa para detectar opcionalmente los péptidos Αβ40 y/o Αβ42 y la combinación de los mismos en una muestra.
En vista de la capacidad del kit de la invención para proporcionar una determinación con alta sensibilidad y especificidad del péptido Αβ17 en cualquier muestra, se puede usar para el diagnóstico de cualquier enfermedad en donde haya una concentración alterada de cualquiera de este péptido en cualquier líquido celular o tejido, en particular, enfermedades degenerativas y, más particularmente, enfermedades neurodegenerativas. Los ejemplos no limitantes de enfermedades degenerativas que se pueden diagnosticar basadas en la aparición de niveles alterados de Αβ17 o de niveles alterados de Αβ40 y/o Αβ42 incluyen:
· trastornos degenerativos del hueso como osteopenia, osteomalacia, osteoporosis, osteomieloma, osteodistrofia, enfermedad de Paget, osteogénesis imperfecta, esclerosis ósea, trastorno aplásico del hueso, mieloma hipercalcémico humoral, mieloma múltiple y adelgazamiento del hueso después de metástasis.
• trastornos degenerativos del cartílago como en síndrome de Gorham-Stout, enfermedades artríticas; artrosis; artritis reumatoide; artritis psoriásica; enfermedad reumatoide; y osteogénesis imperfecta.
• enfermedades degenerativas del músculo tales como distrofia muscular, atrofia muscular, enfermedad pulmonar obstructiva congestiva, atrofia muscular progresiva, sarcopenia, caquexia.
· enfermedades degenerativas del corazón incluyendo la muerte celular cardiaca debido a isquemia, muerte de tejido y órgano debido al rechazo de trasplante, pérdida de oído debido a autotoxicidad. trastornos degenerativos de la retina como la retinitis pigmentosa,
enfermedades degenerativas del sistema nervioso como la enfermedad de Alexander, la enfermedad de Alper, enfermedad de Alzheimer, esclerosis lateral amiotrófica, ataxia telangiectasia, enfermedad de Batten, encefalopatía espongiforme bovina (EEB), enfermedad de Canavan, síndrome de Cockayne, degeneración corticobasal, enfermedad de Creutzfeldt-Jakob, enfermedad de Huntington, demencia asociada al VIH, enfermedad de Kennedy, enfermedad de Krabbe, demencia con cuerpo de Lewy, enfermedad de Machado-Joseph (ataxia espinocerebelar tipo 3), esclerosis múltiple, atrofia sistémica múltiple, neuroborreliosis, enfermedad de Parkinson, enfermedad de Pelizaeus- Merzbacher, enfermedad de Pick, esclerosis lateral primaria, enfermedades por priones, enfermedad Refsum, enfermedad de Sandhoff, enfermedad de Schilder, esquizofrenia, enfermedad de Spielmeyer-Vogt-Sjogren-Batten (también conocida como enfermedad de Batten), ataxia espinocerebelar, atrofia muscular espinal, enfermedad de Steele-Richardson-Olszewski, Tabes dorsal. En una forma de realización preferida, el trastorno neurodegenerativo que se diagnostica utilizando el kit de la invención es la enfermedad de Alzheimer.
MÉTODO PARA DETERMINAR O DETECTAR EL PÉPTIDO Αβ17
El kit de la invención permite llevar a cabo un método para determinar o detectar el péptido Αβ17 en una muestra. De esta manera, en otro aspecto, la invención se refiere a un método para determinar o detectar el péptido Αβ(1-17) en una muestra, de aquí en adelante método para la detección de la invención, que comprende los pasos de:
(i) capturar el péptido Αβ(1-17) presente en la muestra con un primer anticuerpo que se une específicamente a dicho péptido,
(ii) poner en contacto los complejos inmunes formados en el paso (i) con un segundo anticuerpo, en donde dicho segundo anticuerpo es como se define en cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4 y en donde dicho segundo anticuerpo reconoce una región diferente que el primer anticuerpo y está acoplado a un primer miembro de un par de unión;
(iii) poner en contacto los complejos formados en el paso (ii) con un segundo miembro de un par de unión que está acoplado a una etiqueta detectable, y (iv) detectar o determinar la actividad o cantidad de la etiqueta detectable.
Una "muestra", como se entiende en la presente invención, incluye cualquiera de cultivo de tejido, plasma, suero, saliva, semen, esputo, líquido cefalorraquídeo (LCR), lágrimas, moco, sudor, leche, cerebro o extractos de tejidos periféricos y similares. En una forma de realización preferida, la muestra se selecciona del grupo de sangre, suero, plasma y LCR. En una forma de realización más preferida, la muestra es una muestra de plasma.
En una forma de realización preferida, los péptidos que se detectan corresponden a formas no oligoméricas de dicho péptido, más preferiblemente, formas monoméricas de Api7.
Los reactivos y los anticuerpos usados en cada paso del método se han descrito en detalle anteriormente para el kit de la invención.
En el primer paso del método según la presente invención, la muestra que contiene el péptido Αβ17 se pone en contacto con un primer anticuerpo para formar primer complejo inmune. En una forma de realización preferida, el primer anticuerpo es un anticuerpo monoclonal. En una forma de realización más preferida el anticuerpo monoclonal es el anticuerpo 6E10.
Después de haber llevado a cabo el primer paso de unión, los complejos se pueden lavar para retirar cualquier exceso de proteína/péptido que se encuentra en la muestra original que no se haya unido al anticuerpo de captura. Los tampones preferidos de lavado que se pueden usar en el contexto de la presente invención incluyen cualquier tampón con un pH próximo al fisiológico (por ejemplo, Tris-HCl 50 mM) que opcionalmente comprende sales (por ejemplo, NaCl 150 mM) y que opcionalmente comprende concentraciones bajas de un detergente (por ejemplo, Tween- 20 al 0,05%).
En un segundo paso, los complejos formados entre el anticuerpo de captura y el péptido Αβ en la muestra se ponen en contacto con el segundo anticuerpo de modo que se forme un complejo inmune de "tipo sándwich". El primer anticuerpo y el segundo anticuerpo se unirán a diferentes regiones del péptido Αβ17, de modo que no haya interferencia entre ello s .
El primer y segundo paso del método presente se pueden intercambiar y la captura del péptido Αβ17 se puede realizar por el segundo anticuerpo (el anticuerpo de la invención). El complejo se pone luego en contacto con el primer anticuerpo, que se unirá en una región diferente como el segundo anticuerpo. Uno de los dos anticuerpos estará acoplado a un primer miembro de un par de unión, que corresponderá al anticuerpo que no se usa en el paso de captura.
Después de llevar a cabo el segundo paso, los complejos inmunes se pueden lavar para eliminar los anticuerpos unidos inespecíficamente utilizando esencialmente los mismos tampones y procedimientos que se han descrito anteriormente.
En un tercer paso, el método de la invención implica poner en contacto los complejos formados entre el anticuerpo de cap tura- antígeno y el anticuerpo de detección acoplado con un primer miembro de un par de unión con un segundo miembro de un par de unión que está acoplado a una etiqueta detectable. En una forma de realización preferida, el primer miembro de un par de unión es biotina y el segundo miembro de un par de unión es avidina, estreptavidina o una variante funcionalmente equivalente de la misma.
En el cuarto paso del método según la invención, el método implica detectar la etiqueta detectable. Se entenderá que la detección y/o la cuantific ación de la etiqueta detectable depende de la naturaleza de la etiqueta y son métodos conocidos en la técnica. Cuando un sustrato intacto o etiqueta detectable contiene un componente luminiscente o colorante, la detección puede ser mediante observación visual en un transiluminador de UV, o utilizando sistema de detección de cámara con un dispositivo de cargas interconectadas (CCD) de UV, un escáner de geles láser, un sistema de detección de cámara con CCD con arco de xenón, una cámara Polaroid combinada con un transiluminador de UV así como una variedad de otros dispositivos utilizados para la detección de luminiscencia. Cuando la etiqueta detectable es una enzima, el cuarto paso del método según la invención implica exponer los inmunocomplejos marcados con la etiqueta (por ejemplo, el péptido capturado, el anticuerpo de detección y el reactivo marcado con la etiqueta detectable) a activadores, sustratos o agentes amplificadores de la enzima utilizada como etiqueta detectable. Las etiquetas detectables bien conocidas capaces de generar una señal detectable incluyen anticuerpos marcados con enzimas. Ejemplos de enzimas bien conocidas para este propósito incluyen peroxidasa de rábano, fosfatasa alcalina y glicosidasas, incluyendo β-galactosidasa, β-glucosidasa y β- glucuronidasa. Como ejemplo, un reactivo que se une específicamente al anticuerpo de detección puede estar etiquetado con peroxidasa de rábano. Tras la formación un complejo grupo de captura-anticuerpo de detección-reactivo, la detección se puede realizar utilizando cualquiera de una amplia gama de sustratos conocidos para la enzima utilizada como etiqueta detectable. En una forma de realización preferida, la etiqueta detectable es una molécula fluorescente, una molécula luminiscente o una enzima.
En una forma de realización particular, el método de detección de la invención comprende además la detección de péptidos Αβ40 y/o Αβ42.
MÉTODO PARA SEGUIR LA EVOLUCIÓN DE UNA ENFERMEDAD NEURODEGENERATIVA
En otro aspecto, la invención se refiere a un método para el seguimiento de una enfermedad neurodegenerativa en un sujeto, de aquí en adelante método de seguimiento de la invención, que comprende determinar en un muestra en un primer punto temporal el nivel del péptido Αβ17 libre en plasma y el nivel del péptido Αβ17 unido a células en una muestra de dicho sujeto y comparar los niveles con dichos niveles en un segundo punto temporal; en donde si el cociente de péptido Αβ17 libre en plasma y péptido Αβ17 unido a células aumenta en el segundo punto temporal con respecto al primer punto temporal, es indicativo de un empeoramiento de la enfermedad de Alzheimer en el sujeto.
El término "enfermedad neurodegenerativa", como se usa en el presente documento, se refiere a una afección o trastorno en el que se pierden células neuronales debido a muerte celular, lo que provoca un deterioro de las funciones cognitivas o produce daño, disfunción o complicaciones que pueden caracterizarse por anomalías neurológicas, neurodegenerativas, fisiológicas, psicológicas o de comportamiento. Las enfermedades neurodegenerativas adecuadas que pueden diagnosticarse con los métodos de la invención incluyen, sin limitación, degeneración macular senil, enfermedad de Creutzfeldt-Jakob, enfermedad de Alzheimer, angiopatía cerebral con amiloidosis, demencia vascular, demencia inducida por radioterapia, lesión de axones, depresión cortical propagada aguda, alfa-sinucleinopatías, isquemia cerebral, enfermedad de Huntington, isquemia cerebral focal permanente, regeneración de nervios periféricos, modelo tras estado de epilepsia, lesión de la médula espinal, esclerosis lateral amiotrófica esporádica y encefalopatía espongiforme transmisible. En una forma de realización preferida, la enfermedad neurodegenerativa que se sigue según el método de la invención es la enfermedad de Alzheimer o formas prodrómicas de la misma incluyendo deterioro cognitivo leve, deterioro cognitivo leve con enfermedad de Alzheimer probable o deterioro cognitivo leve con enfermedad de Alzheimer posible.
El método de seguimiento de la invención es útil para la evaluación de la evolución de la enfermedad de Alzheimer en un sujeto. De esta manera, los autores de la invención han mostrado que un aumento en el cociente del nivel de péptido Αβ17 libre en plasma/nivel de péptido Αβ17 unido a células es indicativo de un empeoramiento de la EA.
En una forma de realización particular, el método para el seguimiento de la invención comprende los siguientes pasos:
(a) determinar la concentración del péptido Αβ17 libre en plasma y el nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de un sujeto, en un primer punto temporal (Αβ17 LP/ΑβΠ UC),
(b) determinar la concentración del péptido Αβ17 libre en plasma y el nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra del mismo sujeto, en un segundo punto temporal;
Los puntos temporales elegidos los debe determinar el experto en la materia, según el sujeto.
(c) comparar el cociente del nivel de péptido Αβ17 libre en plasma/nivel de péptido Αβ17 unido a células entre el primer punto temporal y el segundo punto temporal y
(d) si el cociente de dichos parámetros es mayor en el segundo punto temporal con respecto al primer punto temporal, es indicativo de un empeoramiento de la enfermedad de Alzheimer en el sujeto.
El término "empeoramiento de la enfermedad de Alzheimer", como se usa aquí, significa que la enfermedad evoluciona a una fase posterior con respecto a la fase en primer punto temporal medido. El experto en la materia reconocerá y confirmará si la evolución de la enfermedad es peor analizando también otras características indicativas. Las características o indicaciones que aparecen en una fase posterior, y que son indicativas de una progresión de la enfermedad son, sin limitación, la aparición de placas amiloides y ovillos neurofibrilares y un deterioro más rápido en las funciones cognitivas. En una forma de realización preferida, si el cociente del nivel de péptido Αβ17 libre en plasma/nivel de péptido Αβ17 unido a células aumenta en el segundo punto temporal con respecto al primer punto temporal, es indicativo de índices mayores de deterioro cognitivo del sujeto. El mayor nivel de péptido Αβ17 libre en plasma es por tanto indicativo de una mayor deterioro cognitivo.
Puede usarse cualquier método adecuado para la determinación de péptidos en la presente invención. A modo de ejemplo, la concentración de péptido beta amiloide puede determinarse usando una o más técnicas elegidas de inmunotransferencia, inmunoprecipitación, enzimoinmunoanálisis de adsorción (ELISA), resonancia de plasmón de superficie, reacción con precipitina, ensayo de inmunodifusión de difusión en gel, radioinmunoanálisis (RIA), separación de células activadas por fluorescencia (FACS), electroforesis en gel bidimensional, electroforesis capilar, espectroscopia de masas (EM), desorción/ionización por láser asistida por matriz-tiempo de vuelo-EM (MALDI-TOF), desorción/ionización potenciada por láser de superficie-tiempo de vuelo (SELDI-TOF), cromatografía de líquidos de alta resolución (HPLC), cromatografía de líquidos de proteínas rápida (FPLC), cromatografía de líquidos multidimensional (LC) seguida por espectrometría de masas en tándem (EM/EM), cromatografía en capa fina, análisis de expresión con chips de proteínas y densitometría láser. En una forma de realización particular, la determinación del nivel de dichos parámetros se determina por ELISA. En una forma de realización preferida, uno de los anticuerpos usados en el ELISA es el anticuerpo de la invención, dirigido contra la región C-terminal del péptido Αβ17.
El término "péptido Αβ17 libre en plasma" (de aquí en adelante conocido como Αβ17 LP), como se usa en el presente documento, se refiere al nivel de péptidos beta amiloides que no están asociados a ningún componente de la muestra biológica y que están fácilmente disponibles para su unión a un anticuerpo específico. Este péptido puede determinarse mediante técnicas inmunológicas convencionales poniendo en contacto la muestra biológica con un anticuerpo específico para dicho péptido. En una forma de realización preferida, el nivel de péptido amiloide libre se determina en plasma. El término "nivel de péptido Αβ17 unido a células" (de aquí en adelante conocido como Αβ17 UC), como se usa en el presente documento, se refiere a péptidos beta amiloides que están asociado de manera no covalente a la superficie de las células presentes en la muestra biológica y que no está disponible para su unión a anticuerpos añadidos a la muestra y por tanto, inmunológicamente detectable. Normalmente, si la muestra biológica es sangre, el péptido beta amiloide está asociado a glóbulos rojos, glóbulos blancos, incluyendo neutrófilos, eosinófilos, basófilos, linfocitos y monocitos, y plaquetas. La cantidad de péptido beta amiloide asociado a células en una muestra determinada puede determinarse y este valor puede usarse solo o en combinación con otros parámetros relacionados con péptidos beta amiloides en los métodos de la invención. Para este fin, se requiere en primer lugar aislar la fracción celular de la muestra biológica. Esto puede llevarse a cabo usando cualquier técnica que conoce el experto tal como centrifugación, sedimentación, filtración y similares. Una vez que se ha aislado la fracción de células de una muestra biológica, las células se ponen en contacto con un agente de solubilización de proteínas.
La cantidad de péptido beta amiloide asociado a células en una muestra determinada puede determinarse y este valor puede usarse solo o en combinación con otros parámetros relacionados con péptidos beta amiloides en los métodos de la invención. Para este fin, se requiere en primer lugar aislar la fracción celular de la muestra biológica. Esto puede llevarse a cabo usando cualquier técnica que conoce el experto tal como centrifugación, sedimentación, filtración y similares. Una vez que se ha aislado la fracción de células de una muestra biológica, las células se ponen en contacto con un agente de solubilización de proteínas.
En una forma de realización preferida, la muestra del sujeto se selecciona del grupo de sangre, suero, plasma y LCR. En una forma de realización más preferida, la muestra es una muestra de plasma.
MÉTODOS PARA DETERMINAR SI UN SUJETO PADECE ENFERMEDAD DE ALZHEIMER O FASES TEMPRANAS DE ENFERMEDAD DE ALZHEIMER
Los autores de la presente invención han identificado que los niveles de ciertas poblaciones de péptidos beta amiloides, determinados directamente o aplicando ciertos cálculos entre ellos, se pueden usar para determinar si un paciente padece enfermedad de Alzheimer leve, para determinar si un sujeto padece enfermedad de Alzheimer prodrómica, para distinguir un sujeto que padece deterioro cognitivo leve no prodrómico de un sujeto que padece enfermedad de Alzheimer prodrómica, para distinguir un sujeto que padece deterioro cognitivo leve no prodrómico de un sujeto que padece enfermedad de Alzheimer leve o para distinguir un sujeto que padece enfermedad de Alzheimer prodrómica de un sujeto que padece enfermedad de Alzheimer leve.
De esta manera, en otro aspecto, la invención se refiere a un método para determinar si un sujeto padece enfermedad de Alzheimer leve que comprende determinar el valor de uno o más parámetros seleccionados del grupo que consiste en:
(a) los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre de dicha muestra del sujeto;
(b) el valor añadido de los niveles de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 totales en una muestra de plasma de dicho sujeto y los niveles de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre de dicho sujeto;
(c) el valor añadido del nivel de péptido Αβ42 total en una muestra de plasma del sujeto y el nivel de péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre del sujeto,
(d) los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 totales en una muestra de plasma del sujeto y los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre del sujeto; y
(e) el valor cociente entre el nivel de Αβ17 libre en una muestra de plasma de dicho sujeto y el péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre del sujeto; en donde si el valor de uno o más de dichos parámetros aumenta con respecto al valor de una muestra de referencia en un sujeto sano, entonces el sujeto padece enfermedad de Alzheimer leve.
Por tanto, los parámetros que se van medir para la distinción de un sujeto sano de un sujeto que padece enfermedad de Alzheimer leve son los siguientes:
(a) Αβ17 UC + Αβ40 UC + Αβ42 UC
(b) (Αβ17 UC + Αβ40 UC + Αβ42 UC) + (Αβ17 TP + Αβ40 TP + Αβ42 TP)
(c) Αβ42 TP + Αβ42 UC
(d) (Αβ40 TP + Αβ42 TP) + (Αβ40 TP + Αβ42 TP) (e) Αβ17 LP/ΑβΠ UC
Un método para determinar si un sujeto padece DCL con enfermedad de Alzheimer prodrómica que comprende determinar el valor de uno o más de los parámetros seleccionados del grupo de:
(a) los valores añadidos del nivel de péptido Αβ42 total en una muestra de plasma de dicho sujeto y el nivel de péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre de dicho sujeto;
(b) los valores añadidos del nivel de péptidos Αβ40 y Αβ42 totales en una muestra de plasma del sujeto y los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre de dicho sujeto;
(c) el valor cociente entre el nivel del péptido Αβ17 libre en una muestra de plasma del sujeto y el nivel péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre de dicho sujeto;
(d) el valor cociente entre el nivel del péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el nivel del péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre;
(e) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde a los niveles añadidos de péptido Αβ17 total en una muestra de plasma y el nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el segundo parámetro corresponde a los niveles añadidos de péptido Αβ42 total en una muestra de plasma y el nivel de péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre;
(f) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde al nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el segundo parámetro corresponde al valor añadido de los niveles de péptido Αβ40 unido a células en una muestra de sangre y de péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre; y
(g) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde a los valores añadidos del nivel de péptido Αβ17 total en una muestra de plasma de dicho sujeto y el nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el segundo parámetro corresponde al valor añadido de los péptidos Αβ40 y Αβ42 totales en una muestra de plasma y los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre; en donde si el valor de uno o más de los parámetros (a), (b) o (c) aumenta y/o el valor de uno o más de los parámetros (d), (e), (f) o (g) disminuye con respecto al valor en una muestra de referencia de un sujeto sano, el sujeto padece enfermedad de Alzheimer leve.
Por tanto, los parámetros que se van a medir para la distinción de un sujeto sano de un sujeto que padece DCL con enfermedad de Alzheimer prodrómica son los siguientes:
(a) Αβ42 TP + Αβ42 UC
(b) (Αβ40 TP + Αβ42 TP) + (Αβ40 UC + Αβ42 UC)
(c) Αβ17 LP/ΑβΠ UC
(d) Αβ17 υαΑβ42 UC
(e) (Αβ17 TP + Αβ17 υ€)/(Αβ42 TP + Αβ42 UC)
(f) Αβ17 UC/( Αβ40 UC + Αβ42 UC)
(g) (Αβ17 TP + Αβ17 υ€)/(Αβ40 TP + Αβ42 TP)+ (Αβ40 UC + Αβ42 UC)
En otro aspecto, la invención se refiere a un método para distinguir un sujeto que padece DCL con enfermedad de Alzheimer no prodrómica de un sujeto que padece DCL con enfermedad de Alzheimer prodrómica que comprende determinar el valor de uno o más parámetros seleccionados del grupo de:
(a) los valores añadidos de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre de dicha muestra del sujeto;
(b) el valor cociente entre el nivel del péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre del sujeto y el nivel del péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre de dicho sujeto;
(c) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde a los valores añadidos del nivel de péptido Αβ17 total en una muestra de plasma de dicho sujeto y el nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el segundo parámetro corresponde a los valores añadidos del nivel de péptido Αβ42 total en una muestra de plasma de dicho sujeto y el nivel de péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre;
(d) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde al nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el segundo parámetro corresponde a los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre;
(e) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde a los valores añadidos del nivel de péptido Αβ17 total en una muestra de plasma de dicho sujeto y el nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el segundo parámetro corresponde a los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 totales en una muestra de plasma y los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre;
en donde si el valor de (a) aumenta y/o el valor de uno o más de dichos parámetros (b), (c), (d) y (e) disminuye con respecto al valor de una muestra de referencia en un sujeto que padece DCL con enfermedad de Alzheimer no prodrómica, el sujeto padece DCL con enfermedad de Alzheimer prodrómica.
Por tanto, los parámetros que se van medir que permiten la distinción entre un sujeto que padece DCL con enfermedad de Alzheimer no prodrómica y un sujeto que padece DCL con enfermedad de Alzheimer prodrómica son los siguientes:
(a) Αβ17 UC + Αβ40 UC + Αβ42 UC
(b) Αβ17 υαΑβ42 UC
(c) (Αβ17 TP + Αβ17 UC)/(AP42 TP + Αβ42 UC)
(d) Αβ17 UC/(AP40 UC + Αβ42 UC)
(e) (Αβ17 TP + Αβ17 υ€)/(Αβ40 TP + Αβ42 ΤΡ)+(Αβ40 UC + Αβ42 UC)
En otro aspecto, la invención se refiere a un método para distinguir un sujeto que padece DCL con enfermedad de Alzheimer no prodrómica de un sujeto que padece enfermedad de Alzheimer leve que comprende determinar el valor de uno o más parámetros seleccionados del grupo de:
(a) los valores añadidos de niveles de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre;
(b) los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 totales en una muestra de plasma y los niveles de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre;
(c) los valores añadidos de péptido Αβ42 total en una muestra de plasma y el nivel de péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre; (d) los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 totales en una muestra de plasma y los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre;
(e) los valores añadidos del nivel de péptido Αβ40 total en una muestra de plasma y el nivel de péptido Αβ40 unido a células en una muestra de sangre;
(f) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde al nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el segundo parámetro corresponde a los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre; y
(g) el valor cociente entre el nivel del péptido Αβ17 libre en una muestra de plasma y el nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre;
en donde si el valor de uno o más de dichos parámetros aumenta con respecto al valor de una nuestra de referencia en un sujeto que tiene DCL con enfermedad de Alzheimer no prodrómica, el sujeto padece de enfermedad de Alzheimer leve.
Por tanto, los parámetros que se van a medir para la distinción de un sujeto que padece DCL con enfermedad de Alzheimer no prodrómica de un sujeto que padece enfermedad de Alzheimer leve son los siguientes:
(a) Αβ17 UC + Αβ40 UC + Αβ42 UC
(b) (Αβ17 TP + Αβ40 TP + Αβ42 TP)+ (Αβ17 UC + Αβ40 UC + Αβ42 UC)
(c) Αβ42 TP + Αβ42 UC
(d) (Αβ40 TP + Αβ42 ΤΡ)+(Αβ40 UC + Αβ42 UC)
(e) Αβ40 TP + Αβ40 UC
(f) Αβ17 UC/(AP40 UC + Αβ42 UC)
(g) Αβ17 LP/ΑβΠ UC
En otro aspecto, la invención se refiere a un método para distinguir un sujeto que padece DCL con enfermedad de Alzheimer prodrómica de un sujeto que padece enfermedad de Alzheimer leve que comprende determinar el valor de uno o más parámetros seleccionados del grupo de:
(a) el valor cociente entre el nivel del péptido Αβ17 libre en una muestra de plasma y el nivel péptido Αβ40 libre en una muestra de plasma; y
(b) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde al nivel de péptido Αβ17 libre en una muestra de plasma y el segundo parámetro corresponde a los niveles añadidos de los péptidos Αβ40 y Αβ42 libres en una muestra de plasma;
en donde si el valor de uno o más de dichos parámetros aumenta con respecto al valor de una muestra de referencia en un sujeto con DCL con enfermedad de Alzheimer prodrómica, el sujeto padece enfermedad de Alzheimer leve.
Por tanto, los parámetros que se van a medir para la distinción entre un sujeto que padece DCL con enfermedad de Alzheimer prodrómica y un sujeto que padece enfermedad de Alzheimer leve son los siguientes:
(a) Api7 LP/Ap40 LP
(b) Αβ17 LP/AP40 LP + Αβ42 LP
El término "diagnóstico" como se usa en el presente documento incluye la evaluación de la susceptibilidad de un sujeto a una enfermedad, la determinación de si un sujeto tiene actualmente la enfermedad y también el pronóstico de un sujeto afectado por la enfermedad. Tal como entenderán los expertos en la materia, tal evaluación normalmente puede no ser correcta para el 100% de los sujetos que van a diagnosticarse, aunque preferiblemente es correcta. Sin embargo, el término requiere que una parte estadísticamente significativa de los sujetos pueda identificarse como que padece la enfermedad o que tiene una predisposición a la misma. Si una parte es estadísticamente significativa puede determinarlo de manera sencilla el experto en la materia usando varias herramientas de evaluación estadísticas bien conocidas, por ejemplo, la determinación de intervalos de confianza, la determinación de valores de p, la prueba de la t de Student, la prueba de Mann-Whitney, etc. Se proporcionan detalles en Dowdy y Wearden, Statistics for Research, John Wiley & Sons, Nueva York 1983. Los intervalos de confianza preferidos son de al menos el 50%, al menos el 60%, al menos el 70%, al menos el 80%, al menos el 90%, al menos el 95%. Los valores de p son preferiblemente 0,2, 0,1 o 0,05.
Como se usa en el presente documento, el término "sujeto" se refiere a todos los animales clasificados como mamíferos e incluye pero no se limita a animales de granja y domésticos, primates y humanos, por ejemplo seres humanos, primates no humanos, vacas, caballos, cerdos, ovejas, cabras, perros, gatos o roedores. Preferiblemente, el sujeto es un ser humano hombre o mujer de cualquier edad o raza. La expresión "enfermedad de Alzheimer" (o "demencia senil") se refiere a un deterioro mental asociado con enfermedad cerebral degenerativa específica que se caracteriza por placas seniles, ovillos neuríticos y pérdida neuronal progresiva que se manifiesta clínicamente en deficiencias progresivas de memoria, confusión, problemas de comportamiento, incapacidad para cuidar de sí mismo, deterioro físico gradual y, en última instancia, muerte.
La expresión "enfermedad de Alzheimer leve", en el contexto de la presente invención, se refiere a una fase temprana de la enfermedad de Alzheimer, en donde el sujeto experimenta:
· Pérdida de memoria para hechos recientes.
• Dificultad resolviendo problemas, tareas complejas y juicios de sonido.
• Cambios en personalidad.
• Dificultad en organizar y expresar pensamientos.
• Perderse o extraviar pertenencias
Los pacientes que padecen enfermedad de Alzheimer leve se identifican usando los criterios de NINCD S - ADRD A (CDR = 1, MMSE entre 16 y 24 puntos y atrofia temporal medial (determinada mediante IRM) >3 puntos en la escala de Scheltens.
El término "deterioro cognitivo leve" o DCL se refiere a una fase de transición de deterioro cognitivo entre el envejecimiento normal y enfermedad de Alzheimer temprana. Los pacientes normalmente se identifican como que tienen DCL si cumplen los criterios de la Clínica Mayo (CDR = 0,5, muestran una atrofia temporal medial (determinada mediante IRM) que es superior a 3 puntos en la escala de Scheltens, muestran un patrón de hipometabolismo parietal y/o temporal en tomografía por emisión de positrones con 18-fluorodesoxiglucosa (PET-FDG) (indicativo de la EA).
La expresión "enfermedad de Alzheimer prodrómica", también conocida como
"DCL con enfermedad de Alzheimer probable" se refiere a pacientes que muestran DCL y que se considera que muestran alto riesgo de conversión a enfermedad de Alzheimer. Los criterios para identificar un paciente como EA probable son los definidos por los criterios del NINCDS-ADRDA (McKhann G. et al., 1984, Neurology, 34:939-44), es decir, demencia establecida por examen clínico y neuropsicológico, deterioro cognitivo progresivo presente en dos o más áreas de conocimiento, inicio de las deficiencias entre las edades de 40 y 90 años y ausencia de otras enfermedades capaces de producir un síndrome de demencia.
La expresión "enfermedad de Alzheimer no prodrómica", también conocida como "DCL con enfermedad de Alzheimer posible" se refiere a pacientes que muestran DCL y que se considera que muestran bajo riesgo de conversión a enfermedad de Alzheimer. Los criterios para identificar un paciente como EA posible son los definidos por los criterios del NINCDS-ADRDA (McKhann G. et al., 1984, Neurology, 34:939- 44), es decir, síndrome de demencia con un inicio, presentación o evolución atípicos y sin etiología conocida pero se cree que en su origen no estén enfermedades comórbidas capaces de producir demencia.
El término "sujeto sano", como se usa en la presente invención, se refiere a un sujeto con buena salud. En una forma de realización preferida, dicho sujeto es mayor de 65 años de edad. Corresponde a un sujeto que no padece una enfermedad neurodegenerativa o sin antecedentes de enfermedad neurodegenerativa. Preferiblemente, los sujetos sanos son pacientes que muestran una ausencia de síntomas de memoria, realización normal en pruebas neuropsicológicas y ausencia de alteraciones estructurales en RM. Un sujeto sano puede estar sano y no tener otra enfermedad o puede tener enfermedades diferentes de DCL y EA.
El término "distinguir un sujeto sano de un sujeto que padece enfermedad de Alzheimer prodrómica" se refiere a la capacidad de discriminar entre un sujeto que no tiene síntomas de la enfermedad de Alzheimer (EA) y un sujeto que padece enfermedad de Alzheimer prodrómica.
El término "distinguir un sujeto sano de un sujeto que padece enfermedad de Alzheimer leve" se refiere a la capacidad de discriminar entre un sujeto que no tiene síntomas de la enfermedad de Alzheimer (EA) y un sujeto en las fases iniciales de EA (enfermedad de Alzheimer leve).
El término "distinguir un sujeto que padece DCL no prodrómico de un sujeto que padece enfermedad de Alzheimer prodrómica" se refiere a la capacidad de discriminar entre un sujeto que tiene síntomas de DCL no prodrómico y un sujeto que padece enfermedad de Alzheimer prodrómica.
El término "distinguir un sujeto que padece DCL no prodrómico de un sujeto que padece enfermedad de Alzheimer leve" se refiere a la capacidad de discriminar entre un sujeto que tiene síntomas de DCL no prodrómico y un sujeto en las fases tempranas de la EA (enfermedad de Alzheimer leve).
El término "distinguir un sujeto que padece EA prodrómica de un sujeto que padece enfermedad de Alzheimer leve" se refiere a la capacidad de discriminar entre un sujeto que tiene síntomas de EA prodrómica y un sujeto en las fases tempranas de la EA (enfermedad de Alzheimer leve).
El término "plasma" se refiere al componente líquido de la sangre. Dependiendo del método de separación usado, el plasma puede estar completamente libre de componentes celulares o puede contener varias cantidades de plaquetas y/o pequeñas cantidades de otros componentes celulares.
Los términos "niveles de péptidos Αβ17, Αβ40 o Αβ42 unidos a células" (de aquí en adelante conocido como Αβ17 UC, Αβ40 UC o Αβ42 UC, respectivamente), como se usa en el presente documento, se refiere a péptidos beta amiloides que están asociados de manera no covalente a la superficie de las células presentes en la muestra biológica y que no está disponible para su unión a anticuerpos añadidos a la muestra y por tanto, inmunológicamente detectable. Normalmente, si la muestra biológica es sangre, el péptido beta amiloide está asociado a glóbulos rojos, glóbulos blancos, incluyendo neutrófilos, eosinófilos, basófilos, linfocitos y monocitos, y plaquetas. La cantidad de péptido beta amiloide asociado a células en una muestra determinada puede determinarse y este valor puede usarse solo o en combinación con otros parámetros relacionados con péptidos beta amiloides en los métodos de la invención. Para este fin, se requiere en primer lugar aislar la fracción celular de la muestra biológica. Esto puede llevarse a cabo usando cualquier técnica que conoce el experto tal como centrifugación, sedimentación, filtración y similares. Una vez que se ha aislado la fracción de células de una muestra biológica, las células se ponen en contacto con un agente de solubilización de proteínas.
La cantidad de péptido beta amiloide asociado a células en una muestra determinada puede determinarse y este valor puede usarse solo o en combinación con otros parámetros relacionados con péptidos beta amiloides en los métodos de la invención. Para este fin, se requiere en primer lugar aislar la fracción celular de la muestra biológica. Esto puede llevarse a cabo usando cualquier técnica que conoce el experto tal como centrifugación, sedimentación, filtración y similares. Una vez que se ha aislado la fracción de células de una muestra biológica, las células se ponen en contacto con un agente de solubilización de proteínas.
Los agentes de solubilización de proteínas adecuados incluyen detergentes, agentes caotrópicos y agentes reductores como se definen posteriormente y se proporcionan habitualmente en una solución tampón a una concentración adecuada. Se describen posteriormente agentes, disoluciones tampón y concentraciones de agentes adecuados en la disolución tampón. El paso de poner en contacto se lleva a cabo esencialmente como se explica posteriormente en el método para liberar el péptido amiloide que está unido a componentes (proteínas y lípidos) de la muestra biológica. En una forma de realización preferida, el agente de solubilización de proteínas es un detergente. En una forma de realización todavía más preferida, el detergente es Tween 20. Concentraciones adecuadas de Tween 20 para su uso como agente de solubilización de proteínas son como se definieron anteriormente, es decir, entre el 0,004-0,02%, más preferiblemente del 0,005-0,01% (p/v).
El paso de poner en contacto se lleva a cabo preferiblemente a una temperatura baja con el fin de inhibir actividades proteolíticas presentes en la muestra. Temperaturas adecuadas son de aproximadamente 0-10°C, preferiblemente de aproximadamente 3- 5°C, por ejemplo, aproximadamente 4°C.
Normalmente, el paso de poner en contacto se lleva a cabo resuspendiendo la fracción celular en la muestra biológica con la solución que comprende el agente de solubilización de proteínas. Dicha resuspensión puede llevarse a cabo pipeteando arriba y abajo de manera suave, removiendo, preferiblemente mediante agitación, más preferiblemente mediante agitación a alta velocidad, lo más preferiblemente mediante agitación con vórtex) durante al menos 5 segundos, preferiblemente durante al menos 10 segundos, más preferiblemente durante al menos 15 segundos (por ejemplo, durante 15-50 segundos). Velocidades ventajosas para dichos mezclado, removido, agitación, agitación a alta velocidad o agitación con vórtex comprenden una velocidad de al menos 250 rpm, preferiblemente de al menos 500 rpm, más preferiblemente de al menos 1.000 rpm, lo más preferiblemente de aproximadamente 2.000-2.500 rpm.
El paso de poner en contacto se lleva a cabo en condiciones adecuadas para lograr la disociación parcial o, preferiblemente, completa del péptido beta amiloide de las células presentes en la muestra biológica. Un experto en la materia puede determinar adecuadamente las condiciones controlando la cantidad de péptido beta amiloide que es detectable antes del paso de poner en contacto y progresivamente a diferentes tiempos tras haber tenido lugar el paso de poner en contacto.
El término "péptido Αβ total en plasma" (de aquí en adelante conocido como Αβ17 TP, Αβ40 TP o Αβ42 TP), como se usa aquí, se refiere a "péptido Αβ libre en plasma" más el "péptido beta amiloide asociado a componentes macromoleculares". El término "péptido beta amiloide asociado a componentes macromoleculares", como se usa aquí, se refiere al péptido beta amiloide que está unido o enlazado de manera no covalente a moléculas que se encuentran en la muestra biológica en estudio. Habitualmente, este péptido no es fácilmente accesible para la detección inmunológica y, por tanto, requiere un pretratamiento de la muestra biológica con el fin de lograr la separación del péptido de los componentes. En estas condiciones, el péptido beta amiloide unido a componentes macromoleculares se liberará de dichos componentes y estará disponible para su detección inmunológica usando anticuerpos específicos. Puesto que la muestra biológica contiene ya una cierta cantidad de péptido beta amiloide libre, la cantidad total de péptido amiloide libre tras poner en contacto la muestra con el agente de solubilización de proteínas será el nivel agregado del péptido beta amiloide libre originalmente presente y el nivel de péptido beta amiloide que se ha liberado tras el tratamiento con el agente de solubilización de proteínas. En el caso de que sea necesario determinar el nivel de péptido beta amiloide asociado a componentes macromoleculares presentes en la muestra biológica, esto puede realizarse normalmente determinando el nivel de péptido beta amiloide libre antes del tratamiento con el agente de solubilización de proteínas y el nivel de péptido beta amiloide libre tras el tratamiento con el agente de solubilización de proteínas y restando el primer valor del segundo valor. Para los fines de la presente invención, habitualmente es adecuado determinar el nivel agregado de péptidos beta amiloides libres que incluye los péptidos beta amiloides originalmente libres así como el nivel de péptidos beta amiloides que se han liberado de los componentes macromoleculares tras el tratamiento con el agente de solubilización de proteínas. Por tanto, el parámetro que se determina habitualmente cuando se trata la muestra de modo que se disocie el péptido amiloide de componentes macromoleculares corresponde a la adición del péptido libre presente en la muestra y el péptido asociado a componentes macromoleculares. Los componentes macromoleculares de la muestra que pueden unirse a péptidos beta amiloides y que contribuyen al conjunto de péptido beta amiloide asociado a componentes macromoleculares incluyen tanto proteínas como lípidos. En el caso particular de que el método se lleve a cabo en muestras de sangre o plasma, los componentes macromoleculares incluyen, sin limitación, proteínas y lípidos sanguíneos. Las proteínas sanguíneas a modo de ejemplo incluyen albúmina, inmunoglobulina G, inmunoglobulina E, inmunoglobulina M, inmunoglobulina A, fibrinógeno (fibrina y productos de degradación de la misma), alfa- 1 -antitripsina, prealbúmina, alfa-1- antitripsina, glicoproteína alfa-1 ácida, alfa- 1-fetopro teína, alfa-2-haptoglobina, macroglobulina, ceruloplasmina, transferrina, beta-2-microglobulina C3/C4, beta- lipoproteína, alfa, beta y gamma-globulinas, proteína C reactiva (CRP), protrombina, proteína de unión a tiroxina, transtiretina y similares. Los lípidos sanguíneos a modo de ejemplo incluyen ácidos grasos libres, colesterol, triglicéridos, fosfolípidos, esfingolípidos y similares.
La cantidad de péptido beta amiloide asociado a componentes macromoleculares puede determinarse poniendo en contacto una muestra sin células de la muestra biológica con un agente de solubilización de proteínas en condiciones adecuadas para inducir la liberación de dichos péptidos beta amiloides de los componentes macromoleculares .
Mediante poner en contacto, se quiere decir en el presente documento añadir a la muestra una cantidad suficiente de una solución que comprende el agente de solubilización de proteínas de modo que la concentración del agente de solubilización de proteínas en la mezcla sea suficiente para solubilizar de manera eficaz el péptido beta amiloide que está unido a las proteínas y células de la muestra. Preferiblemente, el agente de solubilización de proteínas se encuentra en disolución en una solución tampón de modo que la adición del agente de solubilización de proteínas no produce una modificación sustancial del pH de la muestra.
El término "agente de solubilización de proteínas", como se usa en el presente documento, se refiere a cualquier compuesto de composición capaz de alterar la estructura secundaria, terciaria y/o cuaternaria de los polipéptidos mientras deja la estructura primaria intacta. En virtud de estas propiedades, los agentes de solubilización de proteínas pueden aumentar la solubilidad de las proteínas en una muestra así como impedir la agregación ínter e intramolecular de las proteínas. Los agentes de solubilización de proteínas adecuados para su uso en la presente invención incluyen, sin limitación, detergentes, agentes caotrópicos, agentes reductores y mezclas de los mismos.
El término "detergente", como se usa en el presente documento, es un sinónimo usado para tensioactivos en general, y se refiere a agentes tensioactivos anfipáticos que, cuando se añaden a un líquido, reducen la tensión superficial del líquido en comparación con el mismo líquido en ausencia del detergente. Los detergentes también pueden impedir la agregación de proteínas e impedir la unión o interacción no específica de contaminantes a una proteína de interés. Los detergentes adecuados para su uso en la presente invención incluyen, sin limitación, detergentes no iónicos (neutros), amónicos, catiónicos o dipolares.
Los ejemplos de detergentes no iónicos o neutros incluyen, sin limitación, detergentes de la serie Tween, tales como Tween® 20, Tween® 21, Tween® 40, Tween® 60, Tween® 61, Tween® 65, Tween® 80, Tween® 81, Tween® 85, detergentes de la serie Span®, tal como Span® 20; detergentes de la serie Tergitol, tales como Tergitol tipo 15-S-12; detergentes de la serie Brij®, tales como Brij® 35, Brij® 56, Brij® 72, Brij® 76, Brij® 92V, Brij® 97, Brij® 58P; detergentes de la serie Tween, tales como Tween® 20, Tween® 21, Tween® 40, Tween® 60, Tween® 61, Tween® 65, Tween® 80, Tween® 81, Tween® 85; detergentes de la serie Tritón®, tales como Tritón® X-100, Tritón® X-114, Tritón® CF-21, Tritón® CF-32, Tritón® DF-12, Tritón® DF-16, Tritón® GR-5M, Tritón® X-102, Tritón® X-15, Tritón® X-151, Tritón® X-207, Tritón® X-165, Tritón® X-305, Tritón® X-405, Tritón® X-45, Tritón® X-705-70, o una variante conservadora no iónica de al menos uno de dichos detergentes.
Los ejemplos de detergentes aniónicos incluyen, sin limitación, ácido cólico y derivados del mismo, ácido taurocólico, Tritón X-200, Tritón W-30, Triton-30, Triton- 770, sulfosuccinato de dioctilo, N-óxido de NsN-dimetildodecilamina, 1- alquilsulfonatos de sodio, N-lauroilsarcosina o sales de ácidos grasos.
Los ejemplos de detergentes catiónicos incluyen, sin limitación, mono y dimetilaminas grasas, sales de alquiltrimetilamonio, sales de dialquildimetilamonio, acetatos de alquilamina, acetatos de trialquilamonio, sales de alquildimetilbencilamonio, sales de dialquilmetilbencilamonio, haluro de alquilpiridinio y sales de alquil(alquil sustituido)piridinio, sales de alquiltiometilpiridinio, sales de alquilamidometilpiridinio, sales de alquilquinolinio, sales de alquilisoquinolinio, sales de N,N- alquilmetilpirrolidinio, sales de 1,1-dialquilpiperidinio, sales de 4,4- dialquiltiamorfolinio, sales de 1 -óxido de 4,4-dialquiltiamorfolinio, metilsulfato de metil-bis(alquiletil)-2-alquilimidazolinio (y otras sales), metilsulfato de metil- bis(alquilamidoetil)-2-hidroxietilamonio (y otras sales), sales de alquilamidopropil- dimetilbencilamonio, sales de carboxialquil-alquildimetilamonio, óxidos de alquilamina, óxidos de alquildimetilamina, sales de poli(vinilmetilpiridinio), sales de poli(vinilpiridina), polietileniminas, bicarbonatos de trialquilfosfonio (y otras sales), sales de trialquilmetilfosfonio, sales de alquiletilmetilsulfonio y sales de alquildimetilsulfoxonio .
Los ejemplos de detergentes dipolares incluyen, sin limitación, 3-[(3- colamidopropil)dimetilamonio]-l-propanosulfonato (CHAPS); 3-[(3- colamidopropil)dimetilamonio]-2-hidroxi-l-propanosulfonato (CHAPSO); N-(alquil C10-C16)-N,N-dimetilglicinbetaína (EMPIGEN BB); caprililsulfobetaína (SB3-10); 3- [N,N-dimetil(3-miristoilaminopropil)amonio]propanosulfonato (amidosulfobetaína-14; ASB-14); N-tetradecil-N,N-dimetil-3-amonio-l-propanosulfonato (detergente 3-14; ZWITTERGENT); N-dodecil-N,N'-dimetil-3-amonio- 1-propanosulfonato; N- octadecil-N,N-dimetil-3-amonio- 1-propanosulfonato; N-decil-N,N-dimetil-3-amonio- 1-propanosulfonato; Mirataine CB; Mirataine BB; Mirataine CBR; Mirataine ACS; Miracare 2MHT y Miracare 2MCA.
En una forma de realización preferida, el reactivo de solubilización de proteínas es un detergente. En una forma de realización todavía más preferida, el detergente es Tween 20. En una forma de realización todavía más preferida, se usa Tween 20 a una concentración del 0,5%.
Un "agente caotrópico", como se usa en el presente documento, se refiere a un compuesto o mezcla de compuestos que rompe puentes de hidrógeno e interacciones hidrófobas tanto entre como dentro de las proteínas. Cuando se usan a altas concentraciones, los agentes caotrópicos rompen la estructura secundaria de la proteína y llevan a disolución proteínas que de otra forma no son solubles. Los agentes caotrópicos adecuados incluyen, sin limitación, urea, isotiocianato de guanidinio, tiocianato de sodio (NaSCN), guanidina HC1, cloruro de guanidinio, tiocianato de guanidinio, tetracloroacetato de litio, perclorato de sodio, tetracloroacetato de rubidio, yoduro de potasio o trifluoroacetato de cesio.
El término "agente reductor", como se usa en el presente documento, se refiere a cualquier compuesto o material que mantenga los grupos sulfhidrilo en estado reducido y reduzca los puentes disulfuro intra o intermoleculares. A modo de ejemplo, los agentes reductores adecuados para el método de la presente invención incluyen agentes reductores tanto de sulfhidrilo como de fosfina. Los ejemplos de agentes reductores de sulfhidrilo incluyen ditiotreitol (DTT), ditioeritritol (DTE) y β-mercaptoetanol. Los ejemplos de agentes reductores de fosfina incluyen tributilfosfina (TBP) y tris- carboxietilfosfina (TCEP).
Normalmente, la muestra biológica se trata en primer lugar para eliminar la fracción celular. Después, se pone en contacto la muestra sin células con el agente de solubilización de proteínas. En una forma de realización preferida, la muestra se diluye usando un tampón que comprende el agente de solubilización de proteínas. Normalmente, la muestra se diluye 5 veces en una disolución tampón que comprende Tween 20.
Como se usa en el presente documento, una "disolución tampón" es cualquier sustancia o mezcla de compuestos en disolución que puede neutralizar tanto ácidos como bases sin cambiar apreciablemente la acidez o alcalinidad originales de la disolución. Las disoluciones tampón adecuadas que van a usarse en el método de la invención incluyen, sin limitación, disolución tampón Tris, disolución tampón fosfato, disolución tampón borato, disolución tampón carbonato, disolución tampón glicina- hidróxido de sodio o similares. Preferiblemente, la disolución tampón es una disolución tampón fosfato tal como solución salina tamponada con fosfato o PBS.
La cantidad de solución que comprende el agente de solubilización de proteínas que se añade a la muestra biológica no es esencial siempre que se logre suficiente disociación del péptido beta amiloide. A modo de ejemplo, el líquido biológico puede diluirse en la disolución que comprende el agente de solubilización de proteínas a una dilución de al menos 1/2 (v/v), 1/3 (v/v), 1/4 (v/v), 1/5 (v/v), 1/6 (v/v), 1/7 (v/v), 1/8 (v/v), 1/9 (v/v), 1/10 (v/v), 1/20 (v/v), 1/50 (v/v), 1/60 (v/v), 1/80 (v/v), 1/90 (v/v), 1/100 (v/v) o más. El experto apreciará que puede usarse cualquier combinación de dichas tasas de dilución y de dicha concentración de agente de solubilización de proteínas siempre que la concentración final del agente de solubilización de proteínas sea adecuada para lograr el efecto deseado. Por ejemplo, la disolución que contiene el agente de solubilización de proteínas puede comprender dicho(s) agente(s) de solubilización de proteínas seleccionado(s) a una concentración que varía desde el 0,001% hasta el 0,5% (p/v). Tras haberse diluido en dicha disolución que contiene el agente de solubilización de proteínas, dicho líquido biológico contiene normalmente dicho(s) tensioactivo(s) a menos del 0,1% (p/v), preferiblemente menos del 0,6% (p/v), más preferiblemente no más del 0,5% (p/v), lo más preferiblemente no más del 0,45% (p/v) e incluso lo más preferiblemente el 0,5%.
Los sistemas tampón adecuados para su uso en la presente invención incluyen tampones Tris-HCl que incluyen una sal tal como NaCl o KC1 y, opcionalmente, BSA. Los sistemas tampón particulares incluyen, sin limitación,
Tris- HCl 50 mM pH 8, NaCl 0,5 M, BSA al 0,05%, Tween-20 al 0,05%
Tris- -HC1 50 mM pH 8, NaCl 0,5 M, BSA al 0,05%, Tween-20 al 0,05%, GuHCl 1 M
Tris- -HC1 50 mM pH 8, KC1 0,5 M, BSA al 0,05%, Tween-20 al 0,05%
Tris- -HC1 50 mM pH 8, KC1 0,5 M, BSA al 0,05%, Tween-20 al 0,05%, GuHCl 1 M
Tris- -HC1 50 mM pH 8, NaCl 0,5 M, BSA al 0,05%, Tween-80 al 0,05%
Tris- -HC1 50 mM pH 8, KC1 0,5 M, BSA al 0,05%, Tween-80 al 0,05%
Tris- -HC1 50 mM pH 8, NaCl 0,5 M; BSA al 0,05%, Tritón X-100 al 0,05%
Tris- -HC1 50 mM pH 8, KC1 0,5 M, BSA al 0,05%, Tritón X-100 al 0,05%
Tris- -HC1 50 mM pH 8; BSA al 0,05%, Tween-20 al 0,05%
Tris- -HC1 50 mM pH 8, NaCl 0,5 M, BSA al 0,1%, Tween-20 al 0,05%
Tris- -HC1 50 mM pH 8, NaCl 0,5 M, BSA al 0,05%, Tween-20 al 0,1%
Tris- -HC1 50 mM pH 8, NaCl 0,5 M, BSA al 0,1%, Tween-20 al 0,1%
Tris- -HC1 50 mM pH 8, NaCl 1 M, BSA al 0,05%, Tween-20 al 0,05%
Tris- -HC1 50 mM pH 8, NaCl 1,5 M, BSA al 0,05%, Tween-20 al 0,05%
Tris- -HC1 50 mM pH 8, NaCl 2 M, BSA al 0,05%, Tween-20 al 0,05%
Tris- -HC1 50 mM pH 8, NaCl 2,5 M, BSA al 0,05%, Tween-20 al 0,05%
Tris- -HC1 50 mM pH 8, NaCl 3 M, BSA al 0,05%, Tween-20 al 0,05%
Tris- -HC1 50 mM pH 8, NaCl 0,5 M, BSA al 0,05%, Tween-20 al 0,05%, DMSO al 10%
Tris- -HC1 50 mM pH 8, NaCl 0,5 M, BSA al 0,05%, Tween-20 al 0,05%, GuHCl 0,5 M Tris-HCl 50 mM pH 6, NaCl 0,5 M, BSA al 0,05%, Tween-20 al 0,05%
Tris-HCl 50 mM pH 7, NaCl 0,5 M, BSA al 0,05%, Tween-20 al 0,05%
Tris-HCl 50 mM pH 9, NaCl 0,5 M, BSA al 0,05%, Tween-20 al 0,05%
Tris-HCl 50 mM pH 8, NaCl 0,5 M, BSA al 0,05%
Por ejemplo cuando se usa Tween 20 como agente de solubilización de proteínas, la concentración preferida es del 0,004-0,02%, más preferiblemente del 0,005-0,01% (p/v).
El paso de poner en contacto se lleva a cabo preferiblemente a una baja temperatura con el fin de inhibir actividades proteolíticas presentes en la muestra. Temperaturas adecuadas son de aproximadamente 0-10°C, preferiblemente de aproximadamente 3-5°C, por ejemplo, aproximadamente 4°C.
Una vez que el líquido biológico se ha puesto en contacto con la disolución que comprende el agente de solubilización de proteínas, ambos líquidos pueden mezclarse. El mezclado puede llevarse a cabo removiendo, preferiblemente mediante agitación, más preferiblemente mediante agitación a alta velocidad, lo más preferiblemente mediante agitación con vórtex) durante al menos 5 segundos, preferiblemente durante al menos 10 segundos, más preferiblemente durante al menos 15 segundos (por ejemplo, durante 15-50 segundos). Velocidades ventajosas para dicho mezclado, removido, agitación, agitación a alta velocidad o agitación con vórtex comprenden una velocidad de al menos 250 rpm, preferiblemente de al menos 500 rpm, más preferiblemente de al menos 1.000 rpm, lo más preferiblemente de aproximadamente 2.000-2.500 rpm.
El paso de poner en contacto se lleva a cabo en condiciones adecuadas para lograr la disolución parcial o, preferiblemente, completa del péptido beta amiloide de las proteínas y los lípidos presentes en la muestra biológica. Un experto en la materia puede determinar adecuadamente las condiciones siguiendo la cantidad de péptido beta amiloide que puede detectarse antes de la etapa de poner en contacto y progresivamente a diferentes puntos temporales tras haber tenido lugar el paso de poner en contacto. El experimento de evolución temporal puede determinarse tal como se describe en el ejemplo de la parte experimental.
El experto apreciará que cuando el nivel de péptido beta amiloide se determina diluyendo una muestra biológica con un tampón que contiene el reactivo de solubilización de proteínas, el nivel de péptido beta amiloide libre obtenido mediante la determinación inmunológica tendrá que corregirse con el fin de tener en cuenta el factor de dilución aplicado previamente a la muestra biológica.
Los términos "péptidos Αβ17, Αβ40 o Αβ42 libres en plasma" (de aquí en adelante conocidos como Αβ17 LP, Αβ40 LP o Αβ42 LP, respectivamente), como se usa en el presente documento, se refiere a los péptidos beta amiloides que no están asociados a ningún componente de la muestra biológica y que están fácilmente disponibles para su unión a un anticuerpo específico. Este péptido puede determinarse mediante técnicas inmunológicas convencionales poniendo en contacto la muestra biológica con un anticuerpo específico para dicho péptido. En una realización preferida, el nivel de péptido amiloide libre se determina en plasma.
El término "valor de referencia", como se usa en el presente documento, se refiere a un valor del parámetro que se usa para la comparación y que se ha determinado en un sujeto que no padece una enfermedad neurodegenerativa o sin antecedentes de enfermedad neurodegenerativa. Preferiblemente, los sujetos de los que se obtienen los valores de referencia para los diferentes parámetros y parámetros calculados son pacientes que muestran una ausencia de síntomas de memoria, rendimiento normal en pruebas neuropsicológicas y ausencia de alteraciones estructurales en IRM.
En particular, se seleccionan valores de referencia que permiten una sensibilidad superior al 85% y una especificidad superior al 75%. En otra realización preferida, los valores de referencia se seleccionan de modo que se obtenga una sensibilidad superior al 70% y una especificidad superior al 70%. Preferiblemente, los valores de referencia permiten obtener una predicción con una exactitud o precisión de al menos el 80%.
Una vez determinado el valor del parámetro, se lleva a cabo la determinación de si un sujeto padece de enfermedad de Alzheimer leve cuando hay una alteración en el valor del parámetro o en el valor del parámetro calculado con respecto al valor de referencia.
Puede usarse cualquier método adecuado para la determinación de péptidos en la presente invención. A modo de ejemplo, la concentración de péptido beta amiloide puede determinarse usando una o más técnicas elegidas de inmunotransferencia, inmunoprecipitación, enzimoinmunoanálisis de adsorción (ELISA), resonancia de plasmón de superficie, reacción con precipitina, ensayo de inmunodifusión de difusión en gel, radioinmunoanálisis (RIA), separación de células activadas por fluorescencia (FACS), electroforesis en gel bidimensional, electroforesis capilar, espectroscopia de masas (EM), desorción/ionización por láser asistida por matriz-tiempo de vuelo-EM (MALDI-TOF), desorción/ionización potenciada por láser de superficie-tiempo de vuelo (SELDI-TOF), cromatografía de líquidos de alta resolución (HPLC), cromatografía de líquidos de proteínas rápida (FPLC), cromatografía de líquidos multidimensional (LC) seguida por espectrometría de masas en tándem (EM/EM), cromatografía en capa fina, análisis de expresión con chips de proteínas y densitometría láser.
En una forma de realización preferida, la determinación del método de la invención se lleva a cabo mediante un método inmunológico. Como se usa en el presente documento, "método inmunológico", cuando se aplica a una determinación, se refiere a cualquier método que implica el uso de uno o más anticuerpos específicos para una sustancia diana con el fin de determinar la cantidad/concentración de dicha sustancia diana excluyendo otras sustancias encontradas en la muestra. Los métodos inmunológicos adecuados incluyen, sin limitación, inmunotransferencia, inmunoprecipitación, enzimoinmunoanálisis de adsorción (ELISA), resonancia de plasmón de superficie, radioinmunoanálisis (RIA). En una forma de realización preferida, la determinación o detección del péptido beta amiloide se lleva a cabo mediante ELISA.
El experto apreciará que cualquier tipo de anticuerpo es adecuado para realizar los métodos de detección inmunológicos según la invención siempre que el anticuerpo sea lo suficientemente específico para diferenciar eficazmente las especies de péptido beta amiloide en la muestra de otras sustancias.
El término "ELISA", como se usa en el presente documento, significa enzimoinmunoanálisis de adsorción y se refiere a un ensayo mediante el cual una cantidad desconocida de sustancia diana (el péptido beta amiloide) se fija a una superficie, y después se lava con un anticuerpo específico sobre la superficie de modo que pueda unirse al antígeno. Este anticuerpo está ligado a una enzima, y en el paso final se añade una sustancia que la enzima puede convertir en alguna señal detectable. Se conocen diferentes tipos de ensayos ELISA y pueden aplicarse al método de la invención, incluyendo ELISA directo, ELISA sándwich, ELISA competitivo y método y dispositivo inverso de ELISA (ELISA-R m&d). El ELISA directo se lleva a cabo poniendo en contacto la muestra de prueba que comprende el péptido beta amiloide con un soporte sólido que se ha recubierto previamente con una disolución concentrada de una proteína o un reactivo que no interacciona (seroalbúmina bovina, caseína). Una vez que se absorbe el péptido beta amiloide presente en la muestra de prueba sobre el soporte, se añade un anticuerpo específico para el péptido beta amiloide en condiciones adecuadas para su unión al péptido beta amiloide. El anticuerpo que se une se detecta después con un anticuerpo secundario que está acoplado a una etiqueta detectable o a una enzima modificadora de sustrato. La señal resultante de la etiqueta detectable o del sustrato es proporcional entonces a la cantidad de anticuerpo unido al soporte que, a su vez, se correlaciona directamente con la cantidad de péptido beta amiloide en la muestra.
El ensayo ELISA competitivo incluye un primer paso en el que la muestra de prueba que comprende una cantidad desconocida de péptido beta amiloide se pone en contacto con un primer anticuerpo como se definió anteriormente. Los complejos anticuerpo-antígeno se añaden a un pocilio recubierto con antígeno. Una vez lavado el soporte para eliminar cualquier complejo no unido específicamente, se detecta la cantidad de primer anticuerpo con un segundo anticuerpo que está acoplado a un grupo detectable. En este tipo de ensayos, cuanto mayor sea la concentración de antígeno original, más débil será la señal final. Un ensayo ELISA competitivo alternativo es el que incluye un antígeno ligado a enzima en vez de un anticuerpo ligado a enzima. El antígeno marcado compite por los sitios de unión del anticuerpo primario con el antígeno de la muestra (no marcado). Usando este tipo de ensayos, la concentración de antígeno en la muestra se correlaciona inversamente con la cantidad de antígeno marcado retenido en el pocilio y, por consiguiente, en una señal más débil.
El método y dispositivo inverso de ELISA (ELISA-R m&d) usa una fase sólida innovadora constituida por una varilla de poliestireno inmunoabsorbente con 4-12 ojivas prominentes; el dispositivo entero es adecuado para introducirlo en un tubo de ensayo que contiene la muestra recogida y los pasos siguientes (lavado, incubación en conjugado e incubación en cromógeno) se llevan a cabo fácilmente sumergiendo las ojivas en micropocillos de microplacas convencionales cargados previamente con reactivos, sellados y almacenados hasta su uso. En una forma de realización preferida, el ensayo ELISA es un ensayo ELISA sándwich. El ensayo ELISA sándwich implica recubrir un soporte con un primer anticuerpo específico para el péptido beta amiloide, aplicar la muestra que contiene el péptido beta amiloide, lo que producirá la unión del péptido beta amiloide al primer anticuerpo, y aplicar un segundo anticuerpo también específico para el péptido beta amiloide, en el que dicho segundo anticuerpo está acoplado habitualmente a una etiqueta detectable o a una enzima modificadora de sustrato. La señal generada por la etiqueta o por el sustrato convertido es proporcional a la cantidad de antígeno en la muestra.
Se prefiere llevar a cabo los diferentes pasos del método usando en paralelo las muestras que se van a determinar y un número de muestras de referencia que tienen concentraciones conocidas del compuesto que se va a determinar. Se debe preparar una curva patrón para el péptido Αβ17 usando concentraciones crecientes para determinar las concentraciones de los parámetros mencionados anteriormente. La curva patrón sirve al propósito dual de (i) establecer el intervalo de concentración en donde la señal aumenta linealmente con la concentración del péptido diana y (ii) determinar la concentración de los péptidos en la muestra de prueba por interpolación de la señal obtenida con las muestras de prueba o estándar en la curva para obtener valores de concentración. En vista de alta sensibilidad del ensayo de la invención, las concentraciones preferidas de las muestras de prueba son por ejemplo, 3,125; 6,25; 12,5; 25; 50; 100 y 200 pg/ml. Se apreciará que las concentraciones de las muestras usadas para obtener la curva patrón variarán para cada sustrato de prueba. Sin embargo, la determinación del intervalo lineal del ensayo la puede determinar facialmente el experto en la materia por medios convencionales.
El término "alteración" se refiere a un aumento o disminución estadísticamente significativos en el valor del parámetro en consideración con respecto al valor de referencia.
Mediante "estadísticamente significativo", como se usa en el presente documento, se refiere a un análisis estadístico de la probabilidad de que haya una asociación no aleatoria entre dos o más resultados, criterios de valoración o desenlaces, es decir, que haya un cierto grado de certeza matemática de que el valor del parámetro esté asociado con una población de pacientes particular con respecto al valor de referencia.
La significación estadística de la alteración en los valores puede determinarse usando el valor de p. Por ejemplo, cuando se usa el valor de p, se identifica un parámetro que muestra una alteración significativa cuando el valor de p es inferior a 0,1, preferiblemente inferior a 0,05, más preferiblemente inferior a 0,01, incluso más preferiblemente inferior a 0,005, lo más preferiblemente inferior a 0,001.
Normalmente, el valor del parámetro en consideración puede asignarse como que está "aumentado" cuando el valor por encima del valor de referencia es de al menos 1,1 veces, 1,5 veces, 5 veces, 10 veces, 20 veces, 30 veces, 40 veces, 50 veces, 60 veces, 70 veces, 80 veces, 90 veces, 100 veces o incluso más en comparación con el valor de referencia. Por otra parte, un valor del parámetro puede considerarse como que está "disminuido" cuando es al menos 0,9 veces, 0,75 veces, 0,2 veces, 0,1 veces, 0,05 veces, 0,025 veces, 0,02 veces, 0,01 veces, 0,005 veces o incluso menos en comparación con el valor de referencia. En una forma de realización particular, la alteración en el valor del parámetro o en el valor del parámetro calculado con respecto al valor de referencia es un aumento.
Formas de realización adicionales de la invención son las siguientes:
[1] Un anticuerpo que se une específicamente al péptido Αβ(1- 17).
[2] Un anticuerpo como se define en [1] que no muestra reactividad cruzada sustancial hacia un péptido Αβ seleccionado del grupo que consiste en Αβ(1-15), Αβ(1-16), Αβ(1-38), Αβ(1-40), Αβ(1-42) y una combinación de uno o más de ellos.
Un anticuerpo definido en [1] o [2] que es un anticuerpo policlonal.
Un anticuerpo como se define en cualquiera de [1] a [3] en donde dicho
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anticuerpo se ha obtenido usando como inmunógeno un péptido Αβ seleccionado del grupo que consiste en SEQ ID NO: 1 o SEQ ID NO: 2. [5] Un kit para la detección del péptido Αβ(1-17), que comprende:
(i) un primer anticuerpo que es un anticuerpo como se define en cualquiera de [1] a
[3] y
(ii) un segundo anticuerpo que reconoce una región del péptido Αβ(1-17) diferente de la región que es reconocida por el primer anticuerpo.
Kit según [5] en donde el primer o segundo anticuerpo está acoplado a un primer miembro de un par de unión. [7] Kit según [6] que comprende además un segundo miembro de dicho par de unión en donde dicho segundo miembro del par de unión está acoplado a una etiqueta detectable.
Kit como se define en [7] en donde, si la etiqueta detectable que está acoplada al segundo miembro del par de unión es una etiqueta enzimática, entonces el kit comprende además un sustrato que puede convertirse por dicha en un producto detectable.
Kit como se define en cualquiera de [5] a [8] que comprende además un anticuerpo o una combinación de anticuerpos que específicamente se unen a Αβ40 y/o Αβ42.
[10] Kit como se define en cualquiera de [5] a [9] que comprende además un soporte sólido.
[11] Kit como se define en [10] en donde el anticuerpo que no está acoplado a un primer miembro de un par de unión está unido previamente al soporte sólido.
[12] Kit como se define en cualquiera de [5] a [11] que comprende además una muestra que contiene péptidos Αβ17, Αβ40 y/o Αβ42. [13] Un método para determinar o detectar el péptido Αβ(1-17) en una muestra que comprende los pasos de:
(i) capturar el péptido Αβ(1-17) presente en la muestra con un primer anticuerpo que se une específicamente a dicho péptido,
(ii) poner en contacto los complejos inmunes formados en el paso (i) con un segundo anticuerpo, en donde dicho segundo anticuerpo es como se define en cualquiera de [1] a [4] y en donde dicho segundo anticuerpo reconoce una región diferente que el primer anticuerpo y está acoplado a un primer miembro de un par de unión;
(iii) poner en contacto los complejos formados en el paso (ii) con un segundo miembro de un par de unión que está acoplado a una etiqueta detectable y
(iv) detectar o determinar la actividad o cantidad de la etiqueta detectable.
[14] Un método como se define en cualquiera de [13] a [17] en donde la muestra biológica se selecciona del grupo de sangre, suero, plasma y LCR.
[15] Un kit como se define en cualquiera de [1] a [12] o un método como se define en
[13] o [14] en donde el primer anticuerpo es un anticuerpo monoclonal. [16] Un kit o método como se define en [15] en donde el anticuerpo monoclonal es el anticuerpo 6E10.
[17] Un kit o método como se define en cualquiera de [1] a [16] en donde dicho primer miembro de un par de unión es biotina y el segundo miembro de un par de unión es avidina, estreptavidina o una variante funcionalmente equivalente de las mismas.
[18] Un kit o método como se define en cualquiera de [1] a [17] en donde la etiqueta detectable es una molécula fluorescente, una molécula luminiscente o una enzima.
[19] Un método para el seguimiento de una enfermedad neurodegenerativa en un sujeto, que comprende: (a) determinar en una muestra de dicho sujeto en un primer punto temporal el nivel del péptido Αβ17 libre en una muestra de plasma y el nivel del péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre en una muestra de dicho sujeto;
(b) determinar en una muestra de dicho sujeto en un segundo punto temporal el nivel del péptido Αβ17 libre en una muestra de plasma y el nivel del péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre en una muestra de dicho sujeto y
(c) comparar el cociente de nivel de péptido Αβ17 libre en una muestra de plasma y el nivel del péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre en dichos primer y segundo puntos temporales;
en donde si dicho cociente aumenta en el segundo punto temporal con respecto al primer punto temporal, es indicativo de un empeoramiento de la enfermedad de Alzheimer en el sujeto entre dichos primer y segundo puntos temporales.
Método según [19] en donde la enfermedad neurodegenerativa es enfermedad de Alzheimer.
[21] Método según cualquiera de [19] o [20] en donde la determinación del nivel del péptido Αβ17 se lleva a cabo mediante ELISA.
[22] Método según [21] en donde la determinación del nivel del péptido Αβ17 se lleva a cabo usando un método como se define en cualquiera de [13] a [18]. [23] Un método para determinar si un sujeto padece enfermedad de Alzheimer leve que comprende determinar el valor de uno o más parámetros seleccionados del grupo que consiste en:
(a) los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre de dicha muestra del sujeto;
(b) el valor añadido de los niveles de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 totales en una muestra de plasma de dicho sujeto y los niveles de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre de dicho sujeto; (c) el valor añadido del nivel de péptido Αβ42 total en una muestra de plasma del sujeto y el nivel de péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre del sujeto;
(d) los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 totales en una muestra de plasma del sujeto y los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre del sujeto; y
(e) el valor cociente entre el nivel de Αβ17 libre en una muestra de plasma de dicho sujeto y el péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre del sujeto;
en donde si el valor de uno o más de dichos parámetros aumenta con respecto al valor de dichos parámetros en una muestra de referencia en un sujeto sano, entonces el sujeto padece enfermedad de Alzheimer leve.
Un método para determinar si un sujeto padece DCL con enfermedad de Alzheimer prodrómica que comprende determinar el valor de uno o más parámetros seleccionados del grupo de:
(a) los valores añadidos del nivel de péptido Αβ42 total en una muestra de plasma de dicho sujeto y el nivel de péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre de dicho sujeto;
(b) los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 totales en una muestra de plasma del sujeto y los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre de dicho sujeto;
(c) el valor cociente entre el nivel del péptido Αβ17 libre en una muestra de plasma del sujeto y el nivel péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre de dicho sujeto;
(d) el valor cociente entre el nivel del péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el nivel del péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre;
(e) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde a los niveles añadidos del péptido Αβ17 total en una muestra de plasma y el nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el segundo parámetro corresponde a los niveles añadidos del péptido Αβ42 total en una muestra de plasma y el nivel de péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre;
(f) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde al nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el segundo parámetro corresponde al valor añadido de los niveles de péptido Αβ40 unido a células en una muestra de sangre y de péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre; y
(g) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde a los valores añadidos del nivel de péptido Αβ17 total en una muestra de plasma de dicho sujeto y el nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el segundo parámetro corresponde al valor añadido de los péptidos Αβ40 y Αβ42 totales en una muestra de plasma y los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre;
en donde si el valor de uno o más de los parámetros (a), (b) o (c) aumenta y/o el valor de uno o más de los parámetros (d), (e), (f) o (g) disminuye con respecto al valor en una muestra de referencia de un sujeto sano, el sujeto padece DCL con enfermedad de Alzheimer prodrómica. [25] Un método para distinguir un sujeto que padece DCL con enfermedad de Alzheimer no prodrómica de un sujeto que padece DCL con enfermedad de Alzheimer prodrómica que comprende determinar el valor de uno o más parámetros seleccionados del grupo de:
(a) los valores añadidos de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre de dicha muestra del sujeto;
(b) el valor cociente entre el nivel del péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre del sujeto y el nivel del péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre de dicho sujeto;
(c) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde a los valores añadidos del nivel de péptido Αβ17 total en una muestra de plasma de dicho sujeto y el nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el segundo parámetro corresponde a los valores añadidos del nivel de péptido Αβ42 total en una muestra de plasma de dicho sujeto y el nivel de péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre;
(d) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde al nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el segundo parámetro corresponde a los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre;
(e) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde a los valores añadidos del nivel de péptido Αβ17 total en una muestra de plasma de dicho sujeto y el nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el segundo parámetro corresponde a los valores añadidos de los péptidos Αβ40 y Αβ42 totales en una muestra de plasma y los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre;
en donde si el valor de (a) aumenta y/o el valor de uno o más de dichos parámetros (b), (c), (d) y (e) disminuye con respecto al valor de una muestra de referencia en un sujeto que padece DCL con enfermedad de Alzheimer no prodrómica, el sujeto padece DCL con enfermedad de Alzheimer prodrómica. [26] Un método para distinguir un sujeto que padece DCL con enfermedad de Alzheimer no prodrómica de un sujeto que padece enfermedad de Alzheimer leve que comprende determinar el valor de uno o más parámetros seleccionados del grupo de:
(a) los valores añadidos de niveles de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre;
(b) los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 totales en una muestra de plasma y los niveles de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre;
(c) los valores añadidos de péptido Αβ42 total en una muestra de plasma y el nivel de péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre; (d) los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 totales en una muestra de plasma y los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre;
(e) los valores añadidos del nivel de péptido Αβ40 total en una muestra de plasma y el nivel de péptido Αβ40 unido a células en una muestra de sangre;
(f) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde al nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el segundo parámetro corresponde a los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre; y
(g) el valor cociente entre el nivel del péptido Αβ17 libre en una muestra de plasma y el nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre; en donde si el valor de uno o más de dichos parámetros aumenta con respecto al valor de una nuestra de referencia en un sujeto que tiene DCL con enfermedad de Alzheimer no prodrómica, el sujeto padece de enfermedad de Alzheimer leve.
Un método para distinguir un sujeto que padece DCL con enfermedad de Alzheimer prodrómica de un sujeto que padece enfermedad de Alzheimer leve que comprende determinar el valor de uno o más parámetros seleccionados del grupo de:
(a) el valor cociente entre el nivel del péptido Αβ17 libre en una muestra de plasma y el nivel péptido Αβ40 libre en una muestra de plasma; y
(b) el cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde al nivel de péptido Αβ17 libre en una muestra de plasma y el segundo parámetro corresponde a los niveles añadidos de los péptidos Αβ40 y Αβ42 libres en una muestra de plasma;
en donde si el valor de uno o más de dichos parámetros aumenta con respecto al valor de una muestra de referencia en un sujeto con deterioro cognitivo leve prodrómico, el sujeto padece enfermedad de Alzheimer leve.
Método según cualquiera de [23] a [27] en donde la determinación del nivel de uno o más de los péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 se determina mediante ELISA. Los siguientes ejemplos se proporcionan como ilustración y no se deben interpretar como limitantes del ámbito de la invención. EJEMPLOS EJEMPLO 1
Generación del anticuerpo anti-AB17
Se inmunizaron cuatro conejos con los siguientes péptidos VHHQKL, que corresponde a Αβ(12-17) (SEQ ID NO: 2) y EVHHQKL, que corresponde a Αβ(11-17) (SEQ ID NO: 3), dos de ellos con el primer péptido y dos conejos más con el segundo péptido. Ambos péptidos contenían en el extremo N un aminoácido adicional, una cisteína para conjugación.
El soporte usado para la conjugación fue hemocianina de lapa californiana (KLH) (Pierce, ref. 77600). La conjugación se llevó a cabo con el entrecruzador NHS- PEG4-Maleimida (Pierce, ref. 22104). Como adyuvantes se usaron tres tipos: adyuvante de Freund completo (Sigma, ref. F5881), adyuvante de Freund incompleto (Sigma, ref. F5506) y alumbre Imjet (Pierce, ref. 77161).
El protocolo de inmunización fue el siguiente:
Los cuatro conejos se inmunizaron cada semana con 100 μg de los péptidos. - La primera dosis se administró usando adyuvante de Freund completo como adyuvante, seguida por otra dosis con adyuvante de Freund incompleto y una tercera dosis con alumbre.
Después de las tres primeras administraciones, el título del anticuerpo obtenido era demasiado bajo para permitir la purificación. Por tanto, la dosis se aumentó a 200 μg de los péptidos en tres administraciones más, alternando los adyuvantes: adyuvante de Freund incompleto - alumbre- adyuvante de Freund incompleto. Los títulos de los anticuerpos obtenidos para los cuatro conejos fueron muy altos y se llevó a cabo la purificación por cromatografía de afinidad (con el péptido Αβ17.
Se llevó a cabo una transferencia de mancha para determinar la especificidad de del anticuerpo anti-Api7, en donde se incluyeron otros péptidos Αβ (figura 1). El anticuerpo anti-Api7 se añadió en dos diluciones (1: 1000 y 1:2000) y el anticuerpo secundario usado fue de cabra anti-conejo-HRP 1:2000. Se cargaron 500 ng de cada péptido en 2,5 μΐ. La transferencia de mancha se reveló con ECL con la tecnología SNAP a una exposición de 1 minuto y 3 minutos. Como se muestra en dicha figura, el anticuerpo es muy específico para el péptido Αβ17 y no reconoce específicamente Αβ15, Αβ16, Αβ38, Αβ40 Αβ42.
EJEMPLO 2
Determinación de péptido Αβ17 en muestras (1) Determinación por espectrometría de masa
Reactivos
Ácido fórmico, cloruro de sodio, ácido a-ciano-4-hidroxicinámico (a-CHCA), ácido trifluoroacético (TFA), DL-ditiotreitol (DTT), trietanolamina, Tris y seroalbúmina bovina (BSA) eran de Sigma (Steimheim, Alemania). El acetonitrilo se adquirió de Carlo-Erba (Ródano, MI, Italia). El pimelimidato de dimetilo-2HCl (DMP) se adquirió de Pierce (Rockford, IL, EE UU). El tampón de carga de tricina se adquirió de Bio-Rad (Hercules, CA, EE UU).
Procedimiento de inmunoprecipitación (IP)
El procedimiento IP-MALDI se llevó a cabo como describen Portelius et al.
2007 (J. Proteome. Res. 6 (11), 4433-4439), con algunas modificaciones para adaptar el procedimiento al análisis de muestras de perro. En primer lugar, se usaron diferentes cantidades de anticuerpos específicos de Αβ (6E10 y 4G8 específicos para epítopos Αβ en los aminoácidos 4-9 y 18-22, respectivamente, Signet Laboratories, Inc., Dedham, MA, EE UU) y SAR2 (específico para el epítopo anti-Aβ40 carboxi terminal, Araclon Biotech S.L., Zaragoza, España) para determinar la cantidad óptima de cada anticuerpo mediante inmunotransferencia. El procedimiento de optimización implicaba diferentes pasos. Cada anticuerpo se añadió por separado a 50 μΐ de Dynabeads proteína G (Invitrogen Dynal AS, Oslo, Noruega) según la descripción del fabricante. Las bolas se incubaron con diferentes cantidades de anticuerpo, se lavaron y después se eluyeron los anticuerpos hirviendo las bolas en tampón de carga de tricina con DTT. Se determinó la cantidad de saturación de cada anticuerpo mediante inmunotransferencia. Además, también se optimizaron el tiempo (1 hora y durante la noche) y temperatura (4°C, temperatura ambiente y 37°C) de incubación de las bolas con el anticuerpo y los complejos bolas-anticuerpo con las muestras. Otro parámetro optimizado fue la condición de elución (ácido fórmico al 0,5, 2,5 y 5%, así como varios porcentajes de solventes orgánicos, tal como aceto nitrilo).
Se aplicaron dos protocolos diferentes durante este estudio. El primero se basa básicamente en las instrucciones del fabricante con los parámetros optimizados: se incubó una alícuota del anticuerpo específico de Αβ (4 μg de 6E10 o 8 μg de 4G8 o 6 μg de SAR2) con 50 μΐ de Dynabeads proteína G durante 1 hora a temperatura ambiente en un agitador rotatorio. Después de eso, se llevaron a cabo tres lavados con solución salina tamponada en fosfato (PBS: NaH2P04 H20 lmM, Na2HP04 -2 H20 5 mM, NaCl 138mM). Se añadió 1 mi de LCR y se incubó durante la noche a temperatura ambiente en un agitador rotatorio. El LCR se retiró de las bolas después de la incubación, con la ayuda de un imán (DynaMag-2 o DynaMag-15, Invitrogen Dynal AS, Oslo, Noruega) y se desechó. Las bolas se lavaron tres veces con 1 mi de Tris 100 mM pH=6,8 y por último se llevó a cabo la elución con 25 μΐ de ácido fórmico al 5%. El eluato se incubó 5 minutos a temperatura ambiente en un termomezclador. Los compuestos eluidos se desalaron con puntas ZipTip C18 (Millipore, Billerica, MA, EE UU). El protocolo de ZipTip C18 consiste en varios pasos: solvatación de las puntas con acetonitrilo, acondicionamiento con TFA al 0,1% (repitiendo este paso varias veces), carga de la muestra (pipeteando arriba y abajo varias veces), un paso de lavado con TFA al 0,1% y la elución final con 3 μΐ de a-CHCA (5 mg/ml).
En el segundo protocolo, se usó tampón citrato-fosfato, pH=5,0 (ácido cítrico 24,5 mM, Na2HP04-2 H20 52 mM) para los pasos de lavado y unión en lugar de PBS. Antes de la elución las bolas se lavaron con PBS en lugar de Tris 100 mM pH=6,8. Este segundo protocolo produjo espectros de masa con menos ruido de fondo y picos más intensos y se usó para el resto de los experimentos.
Para la inmunoprecipitación de muestras humanas, se usaron 50 μΐ de Dynabeads oveja anti-ratón (Invitrogen Dynal AS, Oslo, Noruega). Las bolas se lavaron tres veces con PBS y se incubaron con la cantidad optimizada del anticuerpo específico (8 μg para 6E10 u 8 μg para 4G8) durante 1 hora a temperatura ambiente en un agitador rotatorio. Después de eso, se eliminó el sobrenadante y las bolas se lavaron en 1 mi de trietanolamina 0,2 M pH=8,2. La reacción de entrecruzamiento tuvo lugar después de añadir 1 mi de DMP 20 mM (un agente de entrecruzamiento homobifuncional con grupos reactivos amina; Greg T Hermanson, 2010) en trietanolamina 0,2 M pH=8,2. Se incubaron bolas y anticuerpos durante 30 minutos a temperatura ambiente, después el sobrenadante se desechó y la reacción se paró añadiendo 1 mi de Tris 50 mM pH=7,5 durante 15 minutos en un agitador rotatorio. Las bolas entrecruzadas se lavaron tres veces con 1 mi de PBS que contenía BSA al 0,1%. Se añadió 1 mi de LCR humano reunido y se incubó durante la noche a temperatura ambiente. Los sobrenadantes se desecharon y las bolas se lavaron varias veces con PBS. Las especies Αβ se eluyeron con 25 μΐ de ácido fórmico al 5%. Los compuestos eluidos se desalaron con ZipTip C18 usando el mismo protocolo descrito anteriormente.
MALDI-TOF y MALDI-TOF/TOF -Espectrometría de masas (EM)
Se colocaron 0,7 μΐ de la muestra eluida directamente en la diana del MALDI hasta la evaporación completa. Todos los espectros se adquirieron con un espectrómetro de masa AB 14800 MALDI-TOF/TOF (AB/Sciex) equipado con un láser Nd:YAG (355 nm) de estado sólido con diodo bombeado que funciona a una tasa de repetición de 200 Hz. Para obtener los espectros de EM el instrumento se operó en modo reflector y todos los experimentos se llevaron a cabo en modo de ión positivo. 400 nanosegundos después de disparar el láser, se aplicó una diferencia de potencial de aceleración de 20 kV. Los iones se reenfocaron en el reflector de dos fases y por último se detectaron en el segundo detector. La diferencia de potencial del espejo 2 hacia la fuente 1 se mantuvo constante a un valor de cociente de 1,105. Para adquisiciones EM/EM la diferencia de potencial de la fuente 1 se mantuvo a 8 kV y el valor de láser se ajustó 1000 unidades mayor que en experimentos de EM. Se seleccionaron iones precursores para fragmentación por medio de un selector de iones regulado por tiempo a un valor de resolución de 250 (amplitud completa a semimáximo). Los iones seleccionados se desaceleraron antes de la llegada a la cámara de colisión en la pila de desaceleración y se disociaron tras las colisiones con aire a una energía cinética de 1 keV (disociación inducida por colisión de alta energía). Los iones fragmentados se volvieron a acelerar en la segunda fuente a 15 kV después un tiempo de retraso corto. El supresor metaestable se activó en todos los experimentos de EM/EM para evitar la detección de los iones precursores restantes y fragmentos de decaimiento metaestables no deseados. Se usó el software Data Explorer para el tratamiento espectral (alisamiento y/o filtrado de ruido). Solo se describen cocientes m/z monoisotópicos. El espectrómetro de masa se calibró externamente con una mezcla de péptidos suministrada por el fabricante, que cubría el intervalo de masa de 900-4000 Da. Cuando fue necesario, el instrumento se calibró con insulina (M+H+=5730,609 Da).
Los resultados de la espectrometría de masa se muestran en la figura 2, para una muestra de líquido cefalorraquídeo (LCR) y una muestra de plasma, en donde el pico correspondiente a Αβ17 se índice con una flecha.
(2) Determinación por ELISA
Reactivos y soluciones
Estándar de β-amiloide 1-17, origen humano. Solución madre de 20 ng/ml.
- Microplaca optimizada para adsorber anticuerpos a su superficie.
Anticuerpo monoclonal de captura específico para el extremo NH2 del péptido Αβ humano (anticuerpo 6E10).
Anticuerpo policlonal de detección conjugado a biotina que específicamente reconoce péptidos Αβ humanos que terminan en el aminoácido 17.
- Solución amplificadora de conjugado estreptavidina-HRP.
Cromó geno estabilizado TMB.
- Tampón de recubrimiento; Na2C03/NaHC03 100 mM pH 9,6.
- Tampón de lavado: Tris 50 mM, Tween20 al 0,05%, NaCl 150 mM, pH 8,0.
- Tampón de bloqueo: Tris 50 mM, Tween20 al 0,2%, BSA al 0,5%, pH 8,0.
- Solución conservante: trehalosa 20 mg/ml, Tris 50 mM, pH 8,0.
- Diluyente de anticuerpo: Tris 50 mM, BSA al 0,05%, NaCl 0,5 M, Twwen20 al 0,05%, pH 8,0.
- PBST: Na2HP04 80 mM, NaH2P04 20 mM, NaCl 100 mM, Tween20 al 0,5%, pH 7,5.
- Diluyente de estándar/muestra: reactivo de bloqueo sintético 1: 100 en PBST.
Solución de parada: H2S04 1 N. Método
La placa se recubrió usando el anticuerpo monoclonal de captura 6E10 que reconoce los aminoácidos 1-17 en el péptido amiloide Αβ. La concentración usada se determinó según la concentración de saturación del anticuerpo, de modo que no fuera el factor limitante en la reacción antígeno-anticuerpo. Para este fin, se relacionó la absorbancia a 450 nm con la concentración de anticuerpo en cada pocilio controlando el anticuerpo adsorbido al pocilio con un anticuerpo IgG anti-ratón conjugado a HRP incubado durante 1 hora con agitación a temperatura ambiente y un paso de incubación con el sustrato cromógeno seguido por una parada de la reacción. Se eligió la concentración a la que la señal no aumentó con la concentración de anticuerpo.
Una vez se ha seleccionado la concentración de saturación, las microplacas se recubrieron con 100 μΐ de anticuerpo de captura en tampón de recubrimiento y se incubó durante la noche (ON) a 4°C durante aproximadamente 20 horas.
Las placas se lavaron después 5 veces con el tampón de lavado y se añadieron 300 μΐ por pocilio de tampón de bloqueo. Las placas se incubaron durante 3 horas a temperatura ambiente.
Las placas se lavaron después 5 veces con el tampón de lavado y se añadieron 100 μΐ de la solución conservante. Las placas se dejaron evaporar hasta que aparece un halo blanco característico de trehalosa (2-3 días a temperatura ambiente). Las placas así tratadas se podrían mantener a 4°C cubiertas con papel de aluminio y son estables durante dos años.
Preparación de la muestra
Las muestras se pueden usar sin diluir o diluidas de 1:2 a 1: 10 en diluyente de muestra/estándar. Se recomienda la dilución 1:3 para muestras de plasma y 1:5 para muestras de células sanguíneas. Para asegurar la cuantificación precisa, se deben generar las curvas patrón y blancos en los mismos diluyentes o tampones que las muestras.
Las muestras de la curva patrón de Αβ17 humano (1ιΑβ17) se prepararon a partir de una solución madre de 200 pg/ml de los péptidos Αβ17 en placas recubiertas con el Acm 6E10 y tratadas con trehalosa. Se hicieron diluciones en serie 1:2 en diluyente de muestra/estándar a partir de estas soluciones. Las diluciones se hicieron de modo que dieran las concentraciones de 200, 100, 50, 25, 12,5, 6,25 y 3,125 pg/ml. Se añaden 100 μΐ de cada muestra y se incuba durante la noche a 4°C (o durante 2 horas a 37°C).
Paso de detección
El anticuerpo de detección es un anticuerpo policlonal conjugado a biotina contra el péptido Αβ humano que termina en el aminoácido 17. La conjugación del anticuerpo a biotina tiene lugar después de un paso de activación y una incubación durante la noche a temperatura ambiente en la oscuridad. El exceso de biotina se inactiva en un paso adicional. El anticuerpo de detección se añadió diluido en diluyente de anticuerpo. Se añaden 100 μΐ a cada pocilio y se incubaron después durante 1 hora con agitación a temperatura ambiente. Después, se añadieron a cada pocilio 100 μΐ de una dilución 1/50 en diluyente de anticuerpo de estreptavidina acoplada a HRP (de SIGMA) y se incubó durante 1 hora con agitación a temperatura ambiente. Para revelar la placa, 100 μΐ del sustrato cromo génico TMB (ZEU Inmunotec). Se añadió TMB y se incubó en la oscuridad durante 45 minutos. Se añadieron 50 μΐ de solución de parada por pocilio. Se leyó la absorbancia a 450 nm en un lector de placas Synergy HT (BioTek Instruments).
Cuantific ación de Αβΐ 7
Los resultados se pueden calcular usando cualquier paquete de software para inmunoensayos. El método usado para el ajuste de la curva es regresión lineal y la concentración de Αβ17 se calculó como sigue:
(i) Calcular la DO neta media para cada dilución de estándar y muestras como sigue: DO neta media (nm) = DO unida media (nm) - DO cero media (nm).
(ii) En papel milimetrado representar la DO neta media de la dilución del estándar (nm) contra la concentración (pg/ml) de Αβ para los estándares. Dibujar la mejor curva a través de estos puntos para construir la curva patrón.
(iii) Las concentraciones de Αβ en muestras desconocidas y controles se puede determinar por interpolación a partir de la curva patrón.
(iv) Multiplicar los valores obtenidos para las muestras por el factor de dilución de cada muestra. (v) Las muestras que produjeron señales mayores que el estándar de 200 pg/ml se diluyeron adicionalmente y se ensayaron.
EJEMPLO 3
Reproducibilidad y determinación del límite de detección y cuantificación
Para analizar la reproducibilidad del inmunoensayo, se midieron la variabilidad intraplaca, la variabilidad intraensayo, la variabilidad interensayo en muestras de plasma y la variabilidad interensayo en muestras celulares.
La variabilidad intraplaca se calculó analizando las diferencias entre los pocilios en triplicado, en muestras, muestras de estándar y muestras de referencia en la misma placa. En la reproducibilidad intraensayo, se comparó la concentración obtenida para 4 muestras de plasma de referencia analizadas en 11 placas diferentes en el mismo ensayo. En la variabilidad interensayo en muestras de plasma, se midieron las diferencias obtenidas en concentración cuando se analizaron dos muestras de plasma en dos ensayos diferentes e independientes. La variabilidad interensayo en muestras celulares se refiere a la comparación de los niveles de Αβ17 entre dos determinaciones diferentes e independientes de 8 muestras control de células.
Los resultados obtenidos se muestran en la tabla 1:
Variabilidad intraplaca (%) 5,11
Variabilidad intraensayo (%) 11,50
Variabilidad interensayo en muestras de plasma (%) 9,51
Variabilidad interensayo en muestras celulares (%) 21,55
Se calcularon el límite de detección (LD) y límite de cuantificación (LC) por dos métodos diferentes:
(a) Método 1:
LD = concentraciónbianco + 3abianco
LC = concentraciónbianco + 10abianco
(b) Método 2:
LD = 3,3abianco/m LC = lOabianco/m
en donde abianCo es la desviación estándar del blanco y m es la pendiente de la línea de calibración.
El límite de detección (LD) y límite de cuantificación (LC) obtenidos usando ambos métodos se muestran en la tabla 2:
Método 1 Método 2
Límite de detección (pg/ml) 21,883 2,914
Límite de cuantificación (pg/ml) 21,904 8,830
EJEMPLO 4
Correlación entre diagnóstico de EA y niveles de Αβ17/Αβ40/Αβ42
Se determinaron los niveles de Αβ17, Αβ40 y Αβ42 usando el ensayo ELISA sándwich descrito en ejemplo 1 en muestras de plasma de una cohorte de sujetos control sanos (CS>65 o HC>65) mayores de 65 años (19 sujetos), de una cohorte de sujetos que padecían enfermedad de Alzheimer leve (EA leve) (17 sujetos), de una cohorte de sujetos que tenían deterioro cognitivo leve (DCL) prodrómico o probable (16 sujetos) y de una cohorte de sujetos que tenían deterioro cognitivo leve (DCL) no prodrómico o posible (16 sujetos). Las concentraciones en pg/ml obtenidas para los péptidos se muestran en las tablas de la figura 3A, figura 4A, figura 5A y figura 6A.
Los niveles de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 en plasma (péptido total en plasma + péptido unido a células) (CES (17+40+42)) en EA leve difiere significativamente con respecto tanto a sujetos controles sanos como a sujetos con DCL posible o no prodrómico con respecto a sujetos con enfermedad de Alzheimer leve. Sin embargo, el marcador CES (17+40+42) no difiere entre sujetos HC>65 y DCL probable, mientras CES (40+42) lo hace con alta significancia (figura 3B).
Otros parámetros relevantes que se van a medir, que pueden distinguir entre grupos, son los siguientes (figuras 3, 4, 5 y 6):
- Los niveles de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 unidos a células (UC (17+40+42)). Como se muestra en la figura 3, los niveles de estos péptidos unidos a células son mayores en sujetos DCL probable y EA leve que en sujetos DCL posible y sanos. Y es posible distinguir con alta significancia entre sujetos sanos y EA leve, DCL posible y DCL probable y entre DCL posible y EA leve. - Los niveles de péptido Αβ42 total en plasma + niveles de péptido Αβ42 unido a células (TP42+UC42). Como se muestra en la figura 3, los niveles de estos marcadores son mayores en sujetos DCL probable y EA leve que en sujetos con DCL posible y sanos. Y es posible distinguir con alta significancia entre sujetos sanos y EA leve o DCL probable y entre DCL posible y EA leve.
- Los niveles de péptido Αβ40 total en plasma + niveles de péptido Αβ40 unido a células (TP40+UC40). Como se muestra en la figura 3, los niveles de estos marcadores son mayores en sujetos con DCL probable y EA leve que en sujetos con DCL posible y sanos. Y es posible distinguir con alta significancia entre DCL posible y EA leve.
- El cociente entre niveles de péptido Αβ17 libre en plasma y niveles de péptido Αβ40 libre en plasma (LP17/40) puede distinguir entre DCL probable y EA leve (figura 4).
- El cociente entre niveles de péptido Αβ17 unido a células y niveles de péptido Αβ42 unido a células (UC 17/42) puede distinguir entre sujetos sanos o sujetos con DCL posible y DCL probable (figura 4).
- El cociente entre niveles de péptido Αβ17 total en plasma + niveles de péptido Αβ17 unido a células y niveles de péptido Αβ42 total en plasma añadidos a los niveles de péptido Αβ42 unido a células (TP17+UC17/TP42+UC42) puede distinguir entre sujetos sanos o sujetos con DCL posible y DCL probable (figura 4).
- El cociente entre niveles de péptido Αβ17 libre en plasma y niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 libres en plasma (LP17/LP40+LP42) puede distinguir entre DCL probable y EA leve (figura 5).
- El cociente entre niveles de péptido Αβ17 unido a células y niveles de péptido Αβ40 y Αβ42 unidos a células (UC17/UC40+UC42) puede distinguir entre sujetos sanos o sujetos con DCL posible y DCL probable y entre sujetos sanos y EA leve (figura 5). - El cociente entre niveles de péptido Αβ17 total en plasma + niveles de péptido Αβ17 unido a células y niveles de péptido Αβ40 y Αβ42 total en plasma (CES (40+42)) puede distinguir entre sujetos sanos o sujetos con DCL posible de DCL probable (figura 5).
- El cociente entre niveles de péptido Αβ17 libre en plasma y niveles de péptido Αβ17 unido a células (LP17/UC17) puede distinguir entre sujetos sanos o sujetos con DCL posible de EA leve y entre sujetos sanos y DCL probable (figura 6). El análisis estadístico (prueba U de Mann-Whitney) con todos los cocientes de Αβ17 muestra diferencias estadísticamente significativas solo con el marcador de niveles de péptido Αβ17 libre en plasma/niveles de péptido Αβ17 unido a células (LP17/UC17) (véase la tabla 3).
Asimismo, hay una relación entre el cociente de niveles de péptido Αβ17 libre en plasma y niveles de péptido Αβ17 unido a células con la evolución de la EA. Cuanto más avanzado es el deterioro cognitivo, mayor es el nivel de péptido Αβ17 libre en plasma y por tanto, también es mayor el cociente de niveles de péptido Αβ17 libre en plasma y niveles de péptido Αβ17 unido a células (LP17/UB 17).
Tabla 3:
Figure imgf000072_0001

Claims

REIVINDICACIONES
1. Un anticuerpo policlonal que se une específicamente al péptido Αβ (1-17) que no muestra reactividad cruzada sustancial contra un péptido Αβ seleccionado del grupo que consiste en Αβ(1-15), Αβ(1-16), Αβ(1-38), Αβ(1-40), Αβ(1-42) y una combinación de uno o más de ellos.
2. Un kit para la detección del péptido Αβ(1-17), que comprende:
(i) un primer anticuerpo que es un anticuerpo como se define en la reivindicación i y
(ii) un segundo anticuerpo que reconoce una región del péptido Αβ(1-17) diferente de la región que es reconocida por el primer anticuerpo.
3. Kit según la reivindicación 2 en donde el primer o el segundo anticuerpo está acoplado a un primer miembro de un par de unión.
4. Kit según la reivindicación 3 que comprende además un segundo miembro de dicho par de unión en donde dicho segundo miembro del par de unión está acoplado a una etiqueta detectable.
5. Un método para determinar o detectar el péptido Αβ(1-17) en una muestra que comprende los pasos de:
(i) capturar el péptido Αβ(1-17) presente en la muestra con un primer anticuerpo que se une específicamente a dicho péptido,
(ii) poner en contacto los complejos inmunes formados en el paso (i) con un segundo anticuerpo, en donde dicho segundo anticuerpo es como se define en cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4 y en donde dicho segundo anticuerpo reconoce una región diferente que el primer anticuerpo y está acoplado a un primer miembro de un par de unión;
(iii) poner en contacto los complejos formados en el paso (ii) con un segundo miembro de un par de unión que está acoplado a una etiqueta detectable, y (iv) detectar o determinar la actividad o cantidad de la etiqueta detectable.
Método como se define en la reivindicación 5 en donde la muestra se selecciona del grupo de sangre, suero, plasma y LCR.
Un método de seguimiento de una enfermedad neurodegenerativa en un sujeto, que comprende:
(a) determinar en una muestra de dicho sujeto en un primer punto temporal el nivel del péptido Αβ17 libre en una muestra de plasma y el nivel del péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre en una muestra de dicho sujeto;
(b) determinar en una muestra de dicho sujeto en un segundo punto temporal el nivel del péptido Αβ17 libre en una muestra de plasma y el nivel del péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre en una muestra de dicho sujeto y
(c) comparar el cociente de nivel de péptido Αβ17 libre en una muestra de plasma y el nivel del péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre en dichos primer y segundo puntos temporales
en donde si dicho cociente aumenta en el segundo punto temporal con respecto al primer punto temporal, es indicativo de un empeoramiento de la enfermedad de Alzheimer en el sujeto entre dichos primer y segundo puntos temporales
Método según la reivindicación 7 en donde la enfermedad neurodegenerativa es enfermedad de Alzheimer.
Método según cualquiera de las reivindicaciones 7 u 8 en donde la determinación del nivel del péptido Αβ17 se lleva a cabo usando un método como se define en cualquiera de las reivindicaciones 5 o 6. 10. Un método para determinar si un sujeto padece enfermedad de Alzheimer leve que comprende determinar el valor de uno o más parámetros seleccionados del grupo que consiste en: (a) los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre de dicha muestra del sujeto;
(b) el valor añadido de los niveles de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 totales en una muestra de plasma de dicho sujeto y los niveles de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre de dicho sujeto;
(c) el valor añadido del nivel de péptido Αβ42 total en una muestra de plasma del sujeto y el nivel de péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre del sujeto;
(d) los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 totales en una muestra de plasma del sujeto y los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre del sujeto; y
(e) el valor cociente entre el nivel de Αβ17 libre en una muestra de plasma de dicho sujeto y el péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre del sujeto;
en donde si el valor de uno o más de dichos parámetros aumenta con respecto al valor de dichos parámetros en una muestra de referencia en un sujeto sano, entonces el sujeto padece enfermedad de Alzheimer leve.
Un método para determinar si un sujeto padece DCL con enfermedad de Alzheimer prodrómica que comprende determinar el valor de uno o más parámetros seleccionados del grupo de:
(a) los valores añadidos del nivel de péptido Αβ42 total en una muestra de plasma de dicho sujeto y el nivel de péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre de dicho sujeto;
(b) los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 totales en una muestra de plasma del sujeto y los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre de dicho sujeto;
(c) el valor cociente entre el nivel del péptido Αβ17 libre en una muestra de plasma del sujeto y el nivel péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre de dicho sujeto; (d) el valor cociente entre el nivel del péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el nivel del péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre;
(e) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde a los niveles añadidos del péptido Αβ17 total en una muestra de plasma y el nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el segundo parámetro corresponde a los niveles añadidos del péptido Αβ42 total en una muestra de plasma y el nivel de péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre;
(f) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde al nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el segundo parámetro corresponde a los valores añadidos de los niveles de péptido Αβ40 unido a células en una muestra de sangre y de péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre; y
(g) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde a los valores añadidos del nivel de péptido Αβ17 total en una muestra de plasma de dicho sujeto y el nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el segundo parámetro corresponde al valor añadido de los péptidos Αβ40 y Αβ42 totales en una muestra de plasma y los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre; en donde si el valor de uno o más de los parámetros (a), (b) o (c) aumenta y/o el valor de uno o más de los parámetros (d), (e), (f) o (g) disminuye con respecto al valor en una muestra de referencia de un sujeto sano, el sujeto padece DCL con enfermedad de Alzheimer prodrómica.
Un método para determinar si un sujeto padece DCL con enfermedad de Alzheimer prodrómica que comprende determinar el valor de uno o más parámetros seleccionados del grupo de:
(a) los valores añadidos de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre de dicha muestra del sujeto; (b) el valor cociente entre el nivel del péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre del sujeto y el nivel del péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre de dicho sujeto;
(c) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde a los valores añadidos del nivel de péptido Αβ17 total en una muestra de plasma de dicho sujeto y el nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el segundo parámetro corresponde a los valores añadidos del nivel de péptido Αβ42 total en una muestra de plasma de dicho sujeto y el nivel de péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre; (d) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde al nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el segundo parámetro corresponde a los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre; (e) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde a los valores añadidos del nivel de péptido Αβ17 total en una muestra de plasma de dicho sujeto y el nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el segundo parámetro corresponde a los valores añadidos de los péptidos Αβ40 y Αβ42 totales en una muestra de plasma y los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre; en donde si el valor de (a) aumenta y/o el valor de uno o más de dichos parámetros (b), (c), (d) y (e) disminuye con respecto al valor de una muestra de referencia en un sujeto que padece DCL con enfermedad de Alzheimer no prodrómica, el sujeto padece DCL con enfermedad de Alzheimer prodrómica.
Un método para determinar si un sujeto padece enfermedad de Alzheimer leve que comprende determinar el valor de uno o más parámetros seleccionados del grupo de:
(a) los valores añadidos de niveles de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre;
(b) los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 totales en una muestra de plasma y los niveles de péptidos Αβ17, Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre; (c) los valores añadidos de péptido Αβ42 total en una muestra de plasma y el nivel de péptido Αβ42 unido a células en una muestra de sangre;
(d) los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 totales en una muestra de plasma y los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre;
(e) los valores añadidos del nivel de péptido Αβ40 total en una muestra de plasma y el nivel de péptido Αβ40 unido a células en una muestra de sangre;
(f) el valor cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde al nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre y el segundo parámetro corresponde a los valores añadidos de los niveles de péptidos Αβ40 y Αβ42 unidos a células en una muestra de sangre; y
(g) el valor cociente entre el nivel del péptido Αβ17 libre en una muestra de plasma y el nivel de péptido Αβ17 unido a células en una muestra de sangre; en donde si el valor de uno o más de dichos parámetros aumenta con respecto al valor de una nuestra de referencia en un sujeto que tiene DCL con enfermedad de Alzheimer no prodrómica, el sujeto padece enfermedad de Alzheimer leve.
Un método para determinar si un sujeto padece enfermedad de Alzheimer leve que comprende determinar el valor de uno o más parámetros seleccionados del grupo de:
(a) el valor cociente entre el nivel del péptido Αβ17 libre en una muestra de plasma y el nivel péptido Αβ40 libre en una muestra de plasma; y
(b) el cociente entre dos parámetros, en donde el primer parámetro corresponde al nivel de péptido Αβ17 libre en una muestra de plasma y el segundo parámetro corresponde a los niveles añadidos de los péptidos Αβ40 y Αβ42 libres en una muestra de plasma;
en donde si el valor de uno o más de dichos parámetros aumenta con respecto al valor de una muestra de referencia en un sujeto con deterioro cognitivo leve prodrómico, el sujeto padece enfermedad de Alzheimer leve.
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