WO2012018057A1 - イムノクロマトグラフィー用試薬組成物およびそれを用いた測定方法 - Google Patents

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久彦 岩本
雄広 ▲榊▼原
暁 中嶋
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田中貴金属工業株式会社
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    • G01N33/553Metal or metal coated

Definitions

  • the present invention relates to a high-performance and high-sensitivity reagent composition for immunochromatography that does not cause a nonspecific reaction, a specimen treatment solution for immunochromatography, a developing solvent for immunochromatography, and a measurement method using the same.
  • Immunochromatographic reagents labeled with an insoluble carrier are generally used because they are easy to operate and test can be completed in a short time. Generally, however, the sensitivity is low compared to EIA, and positive. In this case, the observed line is not clear.
  • a method in which a sugar or a water-soluble polymer compound is present in a developing solvent as in Patent Document 1 has been proposed, but it is applied to an immunochromatography method in which an antibody is labeled with an insoluble carrier.
  • aggregation of the insoluble carrier may occur, nonspecific reaction may occur, and problems such as a slow development speed cannot be solved. (See Patent Document 1)
  • Patent Document 3 In a simple specimen inspection method using a membrane assay method, a specimen sample filtration method that can prevent false positives and clogging while maintaining sensitivity has been proposed.
  • MES buffer Good
  • Buffer Triton X-100 (nonionic surfactant)
  • a suspension containing a protein such as bovine serum albumin or casein.
  • a sample treatment solution for treating a sample selected from a nasal cavity or a pharyngeal wiping solution or a nasal aspirate is used as an interface.
  • a treatment solution containing an activator (NP40, etc.), a reducing agent (2-mercaptoethylamine hydrochloride, etc.), a thiocyanic acid compound, a chelating agent, and a Good buffer (PIPES, etc.) is used.
  • Patent Document 5 As a sample treatment reagent composition, a nonionic surfactant (such as Nonion MN-811), bovine serum albumin, and Tris are used. -A non-specific reaction is suppressed by using a treatment solution containing an HCl buffer solution. (See Patent Document 5)
  • Patent Document 6 as a specimen suspension composition, a nonionic surfactant (Triton X-100 or the like), a basic amino acid, a protein (such as bovine serum albumin) for stabilizing the analyte, and a pH of 3 Generation of false positives is prevented by using a treatment solution containing a buffer solution (Tris-HC1 or the like) for maintaining at ⁇ 8.
  • a nonionic surfactant Triton X-100 or the like
  • a basic amino acid such as bovine serum albumin
  • a protein such as bovine serum albumin
  • a pH of 3 Generation of false positives is prevented by using a treatment solution containing a buffer solution (Tris-HC1 or the like) for maintaining at ⁇ 8.
  • the object of the present invention is to improve the sample processing solution or developing solvent used in the immunochromatographic test reagent, thereby enabling a high-performance, high-sensitivity test for immunochromatography that does not cause a non-specific reaction compared to the prior art.
  • an object of the present invention is to provide a test agent that does not cause aggregation of antibody-immobilized gold colloid and has a high development speed by improving the sample treatment solution or the developing solvent used in the immunochromatographic test agent.
  • a sample for example, a sample collected from a patient with a respiratory disease, in particular, nasal discharge, nasal wiping solution, sputum, etc.
  • a sample for example, a sample collected from a patient with a respiratory disease, in particular, nasal discharge, nasal wiping solution, sputum, etc.
  • an immunochromatography apparatus capable of examining the antigens (for example, viruses such as influenza virus, adenovirus, and RS virus). More specifically, a detection sample treated with a sample treatment solution or a developing solvent is dropped on the sample addition site of the detection kit to react specifically with an antigen in the sample without causing a non-specific reaction. It is an object of the present invention to provide a detection kit that can perform a specimen test quickly, simply and with high accuracy.
  • the present invention relates to an immunochromatographic reagent composition used as an immunochromatographic test agent when detecting a specimen by an immunochromatography apparatus, specifically, a specimen treatment liquid or a developing solvent, the composition of which is N, N-bis (2-hydroxyethyl) glycine (one of the Good buffers, hereinafter referred to as “Bicine”), a nonionic surfactant and casein.
  • a specimen treatment liquid or a developing solvent the composition of which is N, N-bis (2-hydroxyethyl) glycine (one of the Good buffers, hereinafter referred to as “Bicine”), a nonionic surfactant and casein.
  • the present inventors have used an immunochromatographic reagent composition containing Bicine, a nonionic surfactant and casein as a sample treatment solution or developing solvent used in an immunochromatographic test reagent, thereby providing an antibody-immobilized gold colloid. It has been found for the first time that it is possible to provide a test agent having a rapid development speed without causing aggregation.
  • the present invention provides an immunochromatography apparatus that can test non-specific reactions for antigens (eg, viruses such as influenza virus, adenovirus, RS virus, etc.) in a rapid, simple and highly accurate manner. is there.
  • the present invention also provides a non-specific method by dropping a detection sample treated with an immunochromatographic sample treatment solution or developing solvent containing Bicine, a nonionic surfactant and casein onto a sample addition site of a detection kit.
  • the present invention provides a detection kit that suppresses a reaction and reacts specifically with an antigen in a sample to perform a sample test quickly, simply, and with high accuracy.
  • the present invention includes the following immunochromatographic reagent compositions (a) to (h), a sample treatment solution and an developing solution for immunochromatography using the same, an immunochromatography device using the same, a detection kit using the same, And an immunochromatography method using the same.
  • a first feature of the present invention resides in an immunochromatographic reagent composition comprising a nonionic surfactant, N, N-bis (2-hydroxyethyl) glycine buffer and casein.
  • a second feature of the present invention resides in the reagent composition for immunochromatography as described in (a), wherein the nonionic surfactant is polyoxyethylene (23) lauryl ether.
  • a third feature of the present invention resides in the reagent composition for immunochromatography as described in (a), which is used in a detection system that uses gold nanoparticles as a labeling substance.
  • a fourth feature of the present invention resides in an immunochromatographic sample treatment solution comprising the immunochromatographic reagent composition according to any one of (a) to (c).
  • the fifth feature of the present invention resides in the sample processing solution for immunochromatography described in (d), wherein the sample is nasal discharge, nasal wiping solution, throat wiping solution or sputum.
  • a sixth feature of the present invention resides in a detection kit comprising a sample treatment solution for immunochromatography containing a nonionic surfactant, N, N-bis (2-hydroxyethyl) glycine buffer and casein .
  • a seventh feature of the present invention is an immunochromatography used for detecting a detection target in a sample, which contains a nonionic surfactant, N, N-bis (2-hydroxyethyl) glycine buffer, and casein. It is in the developing solution for graphy.
  • An eighth feature of the present invention is that a developing solution for immunochromatography containing a nonionic surfactant, N, N-bis (2-hydroxyethyl) glycine buffer and casein is used as a developing solution constituting a mobile phase. As an immunochromatographic method.
  • the reagent composition for immunochromatography of the present invention contains Bicine, a nonionic surfactant and casein, and the reagent composition for immunochromatography using these three components is used as a sample treatment solution and a developing solution for immunochromatography. As a result, it is possible to provide a test agent that does not cause aggregation of antibody-immobilized gold colloid and has a high development speed.
  • a reagent composition for immunochromatography containing Bicine, a nonionic surfactant and casein for example, a specimen collected from a patient with respiratory diseases (particularly, nasal discharge, nasal wipes)
  • an immunochromatography apparatus capable of examining antigens eg, viruses such as influenza virus, adenovirus, RS virus, etc.
  • antigens eg, viruses such as influenza virus, adenovirus, RS virus, etc.
  • the detection kit of the present invention is non-specific by dropping a detection sample treated with a sample treatment solution for immunochromatography containing Bicine, a nonionic surfactant and casein on the sample addition site of the detection kit. Without inducing a reaction, the sample reacts specifically with the antigen in the sample and has the advantage that the sample test can be performed quickly, simply and with high accuracy.
  • the present invention has a feature that a rapid and simple test can be performed by using a developing solution for immunochromatography containing Bicine, a nonionic surfactant and casein as a developing solution constituting a mobile phase.
  • An embodiment of the present invention is an antigen-antibody reaction in which a binding substance (antibody) that specifically binds various labels to a detection target (antigen) that is a substance to be detected in various specimens is reacted on a chromatographic material.
  • a binding substance antibody
  • an antigen that is a substance to be detected in various specimens
  • an immunochromatography method or a detection method applying it, in which a complex is formed by the above, and the immunochromatography medium is developed in the direction of the absorption site and confirmed by various detection means.
  • an antibody that reacts and binds most specifically to the antigen for example, a monoclonal antibody and a polyclonal antibody that bind specifically to the antigen, or other known antibodies can be arbitrarily used.
  • an enzyme, a coloring substance, a fluorescent substance, or a radioactive substance can be arbitrarily used. However, it is easy to operate and shortens the assay time. It may be determined in consideration of the type of antigen.
  • the detection means is characterized in that it is easy to operate and can be judged in a relatively short time. In order to represent the feature of the immunochromatography method, it has the ability to be judged accurately by visual judgment. However, when time, accuracy, etc. are required, various detection means such as spectrophotometric detection and radiation detection can be attached for detection.
  • the present inventors have the effect of suppressing side reactions based on biological affinity or canceling hydrophobic bonds and electrical interactions in an immunochromatography detection method using a developing solution containing a pH buffer or the like.
  • Substances such as surfactants, ammonium salts, and pH buffers, and various additives for suppressing non-specific reactions, such as proteins for promoting antigen-antibody reactions or suppressing non-specific reactions, etc.
  • specimens collected from patients with respiratory diseases especially nasal discharge, nasal wipes
  • a reagent composition containing Bicine, a nonionic surfactant and casein as a reagent composition for immunochromatography.
  • Fluid or sputum etc. antigens (eg influenza virus, adenovirus, RS virus etc.)
  • the detection mechanism is unknown, but side reactions based on biological affinity and non-specific reactions (noise) based on hydrophobic binding and electrical interaction are suppressed, It was the first time that the antigen-antibody reaction was promoted to enhance the signal, and that the antibody-immobilized gold colloid did not agglutinate and was completed.
  • the reagent composition of the present invention when used in an immunochromatographic detection method, aggregation due to non-specific binding between labeled substances, or between a labeled substance and a chromatographic medium, which occurs via a highly viscous protein contained in a specimen such as nasal discharge. Samples are not reduced, and the development speed is not reduced due to clogging of the chromatographic pores. Furthermore, the increase in viscosity due to highly viscous proteins is also suppressed, so that high-speed development is possible without a reduction in sensitivity. Enable detection.
  • Nonionic surfactants that can be used in the reagent composition for immunochromatography of the present invention include polyoxyethylene alkyl ether, polyoxyethylene / polyoxypropylene alkyl ether, polyoxyethylene sorbitan fatty acid ester (trade name “Tween”). Series), polyoxyethylene pt-octylphenyl ether (trade name “Triton” series), polyoxyethylene pt-nonylphenyl ether (trade name “Triton N” series), alkylpolyglucoside, fatty acid diethanolamide, alkyl And monoglyceryl ether.
  • polyoxyethylene alkyl ether is preferable, and polyoxyethylene (23) lauryl ether (trade name “Brij35”) and polyoxyethylene (20) cetyl ether (trade name “Brij58”) are preferably used.
  • polyoxyethylene (23) lauryl ether (trade name “Brij35”), which substantially contains a nonionic surfactant other than polyoxyethylene (23) lauryl ether (trade name “Brij35”). It is desirable not to.
  • other nonionic surfactants, ionic surfactants, and the like can be blended and used within a range that does not have an adverse effect.
  • the content of the nonionic surfactant used in the immunochromatographic reagent composition of the present invention is preferably in the range of 0.01 to 10% by weight with respect to the total weight of the immunochromatographic reagent composition. May be contained in the range of 0.05 to 5% by weight. If it is less than 0.01% by weight, for example, 0.005% by weight cannot be accurately determined. If it is less than 0.05% by weight, a nonspecific reaction cannot be suppressed and an accurate determination tends to be somewhat difficult. When it becomes 10% by weight or more, for example, 12% by weight or 18% by weight, the concentration becomes higher than necessary, and it does not have a favorable influence on the suppression of non-specific reaction, and it becomes technically meaningless and economical. It is not a waste.
  • Typical salts used in the immunochromatographic reagent composition such as the extract developing solution of the present invention include sodium chloride, potassium chloride, calcium chloride, magnesium chloride and the like. Sodium chloride is preferred.
  • the concentration of the salt used in the immunochromatographic reagent composition such as the extract developing solution of the present invention is in the range of 1 mM to 500 mM, and in the range of 5 mM to 200 mM, with respect to the whole immunochromatographic reagent composition. A range of 10 mM to 50 mM is more preferable. When the concentration is lower than 1 mM, for example, when the concentration is as low as 0.1 mM, the protein extraction action becomes insufficient.
  • a salt used in the reagent composition for immunochromatography of the present invention not only one kind but also two or more kinds can be blended and used.
  • the concentration of Bicine buffer which is one component in the immunochromatography reagent composition of the present invention, is preferably in the range of 10 to 200 mM, more preferably in the range of 10 to 100 mM, with respect to the whole immunochromatography reagent composition. A range of 30 to 100 mM is more preferable.
  • concentration is lower than 10 mM, the buffering action is insufficient, and the aggregation suppression of the labeled particles is also insufficient. If it is 200 mM or more, the concentration becomes higher than necessary, which is not economical and wasteful. Also, it is optimal to make a buffer having a pH range of 7.7 to 9.1.
  • the reagent composition for immunochromatography of the present invention desirably contains substantially no buffer other than Bicine. However, other buffering agents can be blended and used within a range not adversely affecting.
  • Casein which is one component in the immunochromatography reagent composition of the present invention, is preferably casein alone, but may also be a reagent containing casein, such as skim milk powder.
  • the concentration of casein is preferably in the range of 0.01 to 20% by weight, more preferably in the range of 0.1 to 10% by weight, more preferably 0.5 to 5% by weight, based on the total weight of the reagent composition for immunochromatography The range of is more preferable. If it is less than 0.01% by weight, a non-specific reaction cannot be suppressed and an accurate determination cannot be made. If it is 20% by weight or more, the concentration becomes higher than necessary, which is not economical and wasteful.
  • the reagent composition for immunochromatography of the present invention includes additives known to suppress side reactions based on biological affinity or to suppress nonspecific reactions, such as promotion of antigen-antibody reaction or nonspecificity.
  • Proteins eg, bovine serum albumin, gelatin, etc.
  • polymer compounds eg, polyethylene glycol, methylcellulose, polyvinylpyrrolidone, polyvinyl alcohol, dextran, etc.
  • ionic surfactants or polyanions eg, It is possible and effective to add one or two or more of dextran sulfate, heparin, polystyrene sulfonate, chondroitin sulfate, etc.
  • antibacterial agents etc., and this does not interfere with it.
  • one or more of proteins, polymer compounds, ionic surfactants or polyanions, antibacterial agents, etc. for promoting these antigen-antibody reactions or suppressing nonspecific reactions are added to the stationary phase. It is possible and effective to keep it on the mobile phase of the mobile phase of the chromatographic medium to be constructed, and it does not prevent anything.
  • the method for using the immunochromatographic reagent composition of the present invention can be optimally used as a developing solution, and can also be suitably used as a treatment solution for a specimen sample. Furthermore, it is not limited to said usage method, It can also be used in the aspect which provides the component of the reagent composition for immunochromatography on the movement path
  • a developing solution water is usually used as a solvent, and Bicine buffer, casein, and a nonionic surfactant are added thereto. The order of addition is not particularly specified, and they can be added simultaneously.
  • the sample to be detected (specimen sample) and the developing solution mixed in advance can be supplied and dropped on the sample pad (sample added portion) for development.
  • the developing solution may be supplied / dropping on the sample pad (sample addition portion) for development.
  • a specimen sample treatment liquid a treatment liquid obtained by diluting a specimen sample with a treatment liquid in advance can be used as it is supplied and dropped on a sample pad (sample addition portion) as a developing liquid.
  • the method may be, for example, a sample pad (sample addition part) in an immunochromatography apparatus. ) After being applied or impregnated into the sample pad, it can be supported or held in the sample pad by a drying method.
  • an additive holding part is provided at an arbitrary position between the end part of the sample addition part and the absorption part. , It can be a mode to be held there. For example, it can be on a sample addition part, a labeling substance holding part or an immunochromatography medium. Among these, it is possible to adopt a mode in which the sample is added or held only at the sample addition portion and / or the labeling substance holding site.
  • sample (specimen) containing the detection target of the present invention are mainly biological samples, that is, blood, serum, blood purple, urine, saliva, spinal fluid, sweat, tears, amniotic fluid, nipple discharge, nasal discharge, sputum Nasal or pharyngeal wiping fluid, exudates from skin, extracts from tissues, cells and feces, and the like.
  • the detection target of the present invention is not particularly limited as long as a substance that specifically binds to it, such as an antigen-antibody reaction, exists or can be produced. Even if the object to be detected is an antigenic substance such as a complete antigen, or an antigenic substance such as a hapten (incomplete antigen) is not an antigenic substance, it can be made to be antigenic by making it a chemically modified product. It may be something that you have. Any substance that specifically binds to or can be produced by these detection targets may be used, and a monoclonal antibody or a polyclonal antibody can be used.
  • Examples of the detection target of the present invention include peptide hormones (growth hormone (GH), adrenocorticotropic hormone (ACTH), melamine cell stimulating hormone (MSH), prolactin, thyroid stimulating hormone (TSH), luteinizing hormone (LH).
  • GH growth hormone
  • ACTH adrenocorticotropic hormone
  • MSH melamine cell stimulating hormone
  • TSH thyroid stimulating hormone
  • LH luteinizing hormone
  • Follicle stimulating hormone FSH
  • pituitary hormone calcium metabolism regulating hormone, camphor hormone, gastrointestinal hormone, vasoactive hormone, placental hormone such as human crest gonadotropin (hCG)), prostatic acid phosphatase ( PAP), prostate specific antigen (PSA), alkaline phosphatase, transaminase, trypsin, pepsinogen, ⁇ -fetoprotein (AFP), cancer specific substance such as carcinoembryonic antigen (CEA), serum protein component such as immunoglobulin G (IgG) , Rheumatoid factor, se Bacterial antigens such as follicular hormones such as tonin, urokinase, ferritin, substance P, estrone, fecal occult blood, syphilis antibody, influenza virus, adenovirus, RS virus, rotavirus, HBs antigen, HBs antibody, chlamydia antigen, group A
  • the optimal specimen of the present invention is nasal discharge, nasal wipe, pharyngeal wipe or sputum.
  • antigens collected from patients with respiratory diseases (viruses: mainly influenza viruses, adenoviruses, RS viruses) are accurately detected. Can be detected.
  • An immunochromatography apparatus for detecting a substance to be detected in a specimen has a known structure and operation / detection technique (see, for example, Patent Document 5).
  • a sample obtained by diluting a sample in advance using the sample treatment liquid of the present invention is dropped into a sample pad of a conventional immunochromatography apparatus, and the sample is developed on the immunochromatography medium in the direction of the absorption site.
  • an immunochromatography apparatus includes a sample addition site (1) (also referred to as “sample pad”), a labeling substance holding site (2), a chromatography medium (3), and a detection site (4) (also referred to as “determination unit”). It is comprised from the absorption site
  • the sample addition site (1) is composed of a porous sheet such as glass paper that has a property that the sample is rapidly absorbed but the holding power is weak and the sample quickly moves to the reaction part. ing. Furthermore, if necessary, either in the sample pad (1) or between the end of the sample pad (1) and the absorption part (5) in order to more effectively suppress non-specific reactions.
  • the region portion may be preliminarily coated or impregnated with an immunochromatographic reagent composition containing three components of Bicine, casein, and nonionic surfactant according to the present invention, and then held or supported by drying. Is possible.
  • the labeling substance holding site (2) holds a labeling reagent in which the reagent component is labeled with the labeling component.
  • the labeling component include metal colloid particles, latex particles, enzymes, fluorescent compounds, and the like, and metal colloid particles are most suitable.
  • the reagent component is a particle or molecule capable of recognizing an analyte, preferably a monoclonal antibody, a polyclonal antibody or a fragment thereof (second reagent).
  • the metal colloidal particles single particles and composite particles of noble metals such as silver, platinum, germanium, rhodium and palladium can be preferably used. Gold is particularly suitable because it is sensitive to changes in hue.
  • the average particle size is 1 to 500 nm, preferably 10 to 250 nm, more preferably about 35 to 100 nm, and 0.0001 to 0.08% by weight, preferably Those containing a concentration of about 0.002 to 0.06% by weight are preferably used.
  • the gold nanoparticles of the present invention refer to various gold colloidal particles having such an average particle diameter and having a gold nano diameter.
  • the colloidal gold particles are supported on the surface of the gold colloid particles to obtain gold colloid composite particles. It can be used to increase the usefulness as a label for measurement and as a protein stain.
  • the measurement sensitivity can be increased.
  • these various precious metal nanocolloids can be obtained, for example, by a conventional technique of adding a known reducing agent to an aqueous solution of a precious metal chloride, precious metal nitrate or precious metal nitrate.
  • it can measure by various conventional methods, such as calculating
  • metal colloid particles used in the present invention various commercially available metal colloid particles or metal colloid particle suspensions can be used, for example, gold colloid suspension (manufactured by Tanaka Kikinzoku Kogyo Co., Ltd .: LC 40 nm) can be used. is there.
  • the chromatographic medium (3) is one in which the detection site (4) is created on the membrane carrier.
  • the membrane carrier is not particularly limited as long as it can absorb and move the sample specimen by capillary action.
  • nitrocellulose, cellulose acetate, nylon, polyethersulfone, polyvinyl alcohol, polyester, glass fiber, polyolefin, cellulose, or an artificial polymer composed of a mixed fiber thereof is selected.
  • a monoclonal antibody or a polyclonal antibody or a fragment thereof is supported and fixed on a nitrocellulose sheet.
  • the packing sheet (6) is a base material. By applying an adhesive on one side or sticking an adhesive tape, one side has adhesiveness, and the sample addition site (1), labeling substance holding site (2), chromatography medium (3 ), A detection site (4), and a part or all of the absorption site (5) are provided in close contact with each other.
  • the packing sheet (6) is not particularly limited as long as it is impermeable and moisture impermeable to the sample solution by the adhesive.
  • One or both of the reagent component (first reagent) used for the detection site (4) and the reagent component (second reagent) used for the labeling reagent may be a monoclonal antibody or a polyclonal antibody.
  • the reagent component (second reagent) used for the labeling reagent is preferably a monoclonal antibody having high specificity in terms of measurement sensitivity and the like.
  • the reagent component (first reagent) used for the detection site (4) may be a monoclonal antibody or a polyclonal antibody.
  • Monoclonal antibodies and polyclonal antibodies or fragments thereof are known and available, and can be prepared by known methods. Examples of antibody-producing animal species include humans, mice, rats, rabbits, goats, and the like.
  • the immunoglobulin may be IgG, IgM, IgA, IgE, or IgD.
  • a monoclonal antibody is produced from a hybridoma produced by hybridizing mouse spleen cells and myeloma cells immunized with an antigen (for example, influenza A virus) according to a conventional method, and producing a target antibody. Obtain the monoclonal antibody that comes. See, for example, the Koehler and Milstein technique (Nature 256 (1975) 495-497).
  • Polyclonal antibodies are prepared by subjecting a target antibody from antiserum obtained by immunizing an animal (eg, human, mouse, rat, rabbit, goat, horse, etc.) with an antigen (eg, influenza A virus) by a conventional method. It is obtained by separating.
  • an animal eg, human, mouse, rat, rabbit, goat, horse, etc.
  • an antigen eg, influenza A virus
  • a mouse-derived anti-influenza A monoclonal antibody is used as a reagent component (second reagent) used for a labeling reagent, and a mouse is used as a reagent component (first reagent) used for a detection site (4).
  • second reagent used for a labeling reagent
  • first reagent used for a detection site
  • mouse-derived anti-influenza A monoclonal antibody is used as a reagent component (second reagent) used for a labeling reagent
  • first reagent used for a detection site
  • a predetermined amount (usually 0.1 to 2 ml) of a specimen sample (a specimen that has been diluted with a specimen treatment solution) is dropped onto the sample pad (1).
  • the specimen sample is rapidly absorbed by the sample pad (1), but starts to move together with the specimen.
  • the immunochromatographic reagent composition is impregnated in the sample pad (1), the impregnated immunochromatographic reagent composition dissolves in the moisture of the specimen sample and starts moving together with the specimen sample.
  • the specimen sample first moves to the labeling substance holding site (2). When the specimen sample passes through here, the labeling reagent (second reagent) held in the labeling substance holding site (2) is dissolved in the moisture of the sample and moves together with the sample.
  • the labeling reagent dissolved in the moisture of the specimen sample passes through the detection site (4) on the chromatography medium (3).
  • the non-specific binding reaction is suppressed by the immunochromatographic reagent composition dissolved in the specimen sample, and the target substance (for example, antigen) is detected in the specimen sample by the antigen-antibody specific binding reaction.
  • the detection site (4) is colored by specifically reacting and binding so as to be sandwiched between the antibody supported and immobilized on the detection site (4) and the labeling reagent.
  • the analyte for example, antigen
  • the labeled reagent dissolved in the sample water will bind specifically even if it passes through the detection site (4) on the chromatography medium (3).
  • the detection site (4) is not colored. 4). Finally, the moisture in the sample moves to the absorption site (5). In this way, the presence or absence of a substance to be detected (for example, an antigen) in the specimen sample can be accurately determined.
  • a substance to be detected for example, an antigen
  • the labeling substance solution was prepared by the above procedure.
  • the presence or absence of influenza A virus in the sample was measured by the following method. That is, one tube of the suction trap was inserted into the suction pump, and the other tube was inserted into the back of the nasal cavity of a person who was not infected with influenza, and the nasal discharge was collected using the suction pump as a negative pressure. The collected nasal discharge was diluted 20-fold with the above-described sample treatment reagent and used as a negative sample sample. Moreover, what added commercially inactivated influenza A virus so that protein concentration might be 25 ng / mL and 50 ng / mL to the negative sample sample was made into the positive sample sample.
  • Example 2 Tween 20
  • the measurement was performed in the same manner as in Example 1, except that polyoxyethylene (20) -sorbitan monolaurate (Tween 20 (trade name)) was used instead of Brij 35 in Example 1.
  • the results are shown in Table 1.
  • Example 3 Triton X-100
  • the measurement was performed in the same manner as in Example 1 except that polyoxyethylene (10) -pt-octylphenyl ether (Triton X-100 (trade name)) was used instead of Brij35 in Example 1. It was. The results are shown in Table 1.
  • the antibody-sensitized gold colloid is obtained by using the specimen treatment reagent composition containing Bicine, casein, and a nonionic surfactant (Brij35, Tween20, TritonX-100).
  • a nonionic surfactant Brij35, Tween20, TritonX-100.
  • Example 1 when the measurement was performed by the same method as in Example 1 except that Tricine was used instead of Bicine as a buffering agent (Comparative Example 1), a positive specimen sample having a concentration of 25 ng / mL was used. The red line is visible, but the color is very light. Further, aggregation of the antibody-sensitized gold colloid occurred, which was not satisfactory as a test kit.
  • Examples 4 to 5 specimen treatment solutions containing various concentrations of Bicine were prepared, and influenza virus detection measurement was performed (Examples 4 to 5). This measurement was performed in the same manner as in Example 1 except for the concentration of Bicine used for the preparation of the sample processing reagent. The results are shown in Table 2.

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Abstract

 イムノクロマトグラフィー法により検体中の検出対象物を検出する際に、非イオン界面活性剤、N,N-ビス(2-ヒドロキシエチル)グリシン緩衝剤およびカゼインを含むイムノクロマトグラフィー用試薬組成物を、検体処理液または展開液として用いることによって、イムノクロマトグラフィー装置を用いて検出対象物を検出する従来技術に比して、非特異的反応を抑制し、抗体固定金コロイドの凝集が起こらず、かつ展開速度の速いイムノクロマトグラフィー用試薬組成物の提供、およびそれを用いた、高性能、高感度なイムノクロマトグラフィー法ならびに迅速、簡便なウィルス検査ができる検出キットを提供する。

Description

イムノクロマトグラフィー用試薬組成物およびそれを用いた測定方法
 本発明は、非特異的反応が惹起しない高性能、高感度なイムノクロマトグラフィー用試薬組成物、イムノクロマトグラフィー用検体処理液、イムノクロマトグラフィー用展開溶媒およびそれを用いた測定方法に関する。
 近年、イムノクロマトグラフィー用ストリップ形式のイムノアッセイは、抗体の持つ特異的反応性を利用して、試料液中の抗原を検出する簡便な体外診断キットもしくは携帯用診断装置として重要性が高まっている。特に、妊娠検査キットは、一般用医薬品としても販売されている身近なイムノクロマトグラフィー装置である。また、最近では、インフルエンザウィルスや細菌といった病原体に対する感染の有無を検査するためのイムノクロマトグラフィー法に基づく簡便な検査具についても研究開発が進められてきた。
 不溶性担体で抗体を標識したイムノクロマトグラフィー法検査薬は、操作が簡便であり、検査も短時間で終わることから汎用的に使われているが、一般的にEIAと比較して感度が低く、陽性の場合に観察されるラインが明瞭でない等の問題点があった。
 かかる問題点を解決するために、特許文献1のように、展開溶媒に糖または水溶性高分子化合物を存在させる方法が提案されているが、不溶性担体で抗体を標識したイムノクロマトグラフィー法に応用しても、該不溶性担体の凝集が起き、非特異反応が起きることがあり、展開速度が遅い等の問題点は解決できなかった。(特許文献1参照)
 そのため、不溶性担体で抗体を標識したイムノクロマトグラフィー法に応用しても、不溶性担体の凝集が起きず、非特異反応が起きることがなく、展開速度が速い検査薬が切望されていた。
 例えば、着色ラテックス粒子を用いるメンブレンアッセイ法より検体中の複数の被検出物を簡易に検査する方法において、2種類以上の被検出物に対してそれぞれに対応した異なる色調を有する着色ラテックス粒子を用いることにより行う方法が提案されている。特に偽陽性を生じ易い被検出物に対して有効であり、中でも2種類以上の被検出物が、A型インフルエンザウィルス、B型インフルエンザウィルス、およびRSウィルスから選ばれる2種類以上である場合には特に有効であるとしている。(特許文献2参照)
 メンブレンアッセイ法を用いた検体の簡易な検査方法において、感度を保ちながら偽陽性や詰まりを防止できる検体試料のろ過法が提案されている。(特許文献3参照)
 特許文献2,3では、メンブレンアッセイ法により検出を行う際、鼻腔または咽頭拭い液、鼻腔吸引液等の生体試料が検体である場合に、検体を浮遊させる検体浮遊液として、MES緩衝液(グッドバッファー)、TritonX-100(非イオン界面活性剤)、及びタンパク質、例えばウシ血清アルブミンもしくはカゼイン等を含む浮遊液を用いている。
 また、特許文献4では、イムノクロマトグラフィー法による試験具を用いた呼吸器感染症の検査方法において、鼻腔または咽頭拭い液、鼻腔吸引液から選択される検体を処理するための検体処理液として、界面活性剤(NP40等)、還元剤(2-メルカプトエチルアミン塩酸塩等)、チオシアン酸化合物、キレート剤、およびGood緩衝剤(PIPES等々)等を含有する処理液を用いている。(特許文献4参照)
 しかしながら、特許文献2~4に記載された発明においては、標識試薬としては主に着色ラテックス粒子を用いており、さらに、検体処理液としては従来から普通に用いられているものであって、検体処理液に着目したものではなかった。
 メンブレンアッセイ法により検出を行う際、検体処理液に着目したものとして、特許文献5では、検体処理試薬組成物として、非イオン界面活性剤(ノニオンMN-811等)、およびウシ血清アルブミン、さらにTris-HCl緩衝液を含む処理液を用いることにより、非特異反応の抑制を図っている。(特許文献5参照)
 また、特許文献6では、検体浮遊液組成物として、非イオン界面活性剤(TritonX-100等)、塩基性アミノ酸、被測定物を安定化するためのタンパク質(ウシ血清アルブミン等)、pHを3~8に保つための緩衝液(Tris-HC1等)を含む処理液を用いることにより、偽陽性の発生を防止している。(特許文献6参照)
 しかしながら、特許文献2~6に記載された検体処理液や展開溶媒にあっては、不溶性担体の凝集や非特異反応の惹起が、十分に抑制できないという課題が依然としてあった。そのため、展開速度が速い検査薬として十分満足できるものとはいえず、さらなる改良が切望されていた。
日本国特開2000-329767号公報 日本国特開2008-014751号公報 日本国特開2008-122372号公報 日本国特開2008-164403号公報 日本国特開2009-186359号公報 日本国特開2006-084351号公報
 本発明の目的は、イムノクロマトグラフィー法検査薬で使用する検体処理液または展開溶媒を改良することによって、従来技術に比して、非特異的反応を惹起しない高性能、高感度なイムノクロマトグラフィー用検査薬を提供することにある。特に、イムノクロマトグラフィー法検査薬で使用する検体処理液または展開溶媒を改良することによって、抗体固定金コロイドの凝集を起こすことなく、且つ、展開速度の速い検査薬を提供することにある。また、従来技術に比して、非特異的反応が惹起しない、迅速、簡便および高精度に検体(例えば、呼吸器疾患患者から採取される検体、特に、鼻汁、鼻腔拭い液または痰等)中の抗原(例えば、インフルエンザウィルス、アデノウィルス、RSウィルス等々のウィルス)を検査できるイムノクロマトグラフィー装置を提供することにある。
 さらに詳しくは、検体処理液または展開溶媒により処理をした検出試料を、検出キットの試料添加部位に滴下することによって、非特異的反応を惹起せずに、検体中の抗原と特異的に反応して迅速、簡便、高精度に検体検査ができる検出キットを提供することにある。
 本発明は、イムノクロマトグラフィー装置により、検体を検出する際、イムノクロマトグラフィー法検査薬として使用するイムノクロマトグラフィー用試薬組成物、具体的には、検体処理液または展開溶媒に係り、その組成は、N,N-ビス(2-ヒドロキシエチル)グリシン(Good緩衝剤の1つであり、以下、「Bicine」という)、非イオン界面活性剤およびカゼインを含有するものである。
 本発明者等は、イムノクロマトグラフィー法検査薬で使用する検体処理液または展開溶媒として、Bicine、非イオン界面活性剤およびカゼインを含有するイムノクロマトグラフィー用試薬組成物を使用することによって、抗体固定金コロイドの凝集を起こすことなく、且つ、展開速度の速い検査薬を提供することができることを初めて知見したものである。
 本発明の検出系では、Bicine、非イオン界面活性剤およびカゼインを含有するイムノクロマトグラフィー用試薬組成物を使用することによって、例えば、呼吸器疾患患者から採取される検体(特に、鼻汁、鼻腔拭い液または痰等)中の抗原(例えば、インフルエンザウィルス、アデノウィルス、RSウィルス等々のウィルス)を、非特異的反応を抑制して、迅速、簡便および高精度に、検査できるイムノクロマトグラフィー装置を提供するものである。
 また、本発明は、Bicine、非イオン界面活性剤およびカゼインを含有するイムノクロマトグラフィー用検体処理液または展開溶媒により処理をした検出試料を、検出キットの試料添加部位に滴下することによって、非特異的反応を抑制して、検体中の抗原と特異的に反応して迅速、簡便、高精度に検体検査ができる検出キットを提供するものである。
 本発明は、下記の(a)~(h)のイムノクロマトグラフィー用試薬組成物、それを使用する検体処理液およびイムノクロマトグラフィー用展開液、それを使用するイムノクロマトグラフィー装置、それを使用する検出キット、およびそれを使用するイムノクロマトグラフィー法を提供するものである。
(a)本発明の第1の特徴は、非イオン界面活性剤、N,N一ビス(2-ヒドロキシエチル)グリシン緩衝剤およびカゼインを含むイムノクロマトグラフィー用試薬組成物にある。
(b)本発明の第2の特徴は、非イオン界面活性剤が、ポリオキシエチレン(23)ラウリルエーテルであることを特徴とする(a)に記載のイムノクロマトグラフィー用試薬組成物にある。
(c)本発明の第3の特徴は、金ナノ粒子を標識物質として使用する検出系で用いることを特徴とする(a)に記載のイムノクロマトグラフィー用試薬組成物にある。
(d)本発明の第4の特徴は、(a)~(c)のいずれかに記載のイムノクロマトグラフィー用試薬組成物を含むイムノクロマトグラフィー用検体処理液にある。
(e)本発明の第5の特徴は、検体が、鼻汁、鼻腔拭い液、咽頭拭い液または痰である、(d)に記載のイムノクロマトグラフィー用検体処理液にある。
(f)本発明の第6の特徴は、非イオン界面活性剤、N,N-ビス(2-ヒドロキシエチル)グリシン緩衝剤およびカゼインを含むイムノクロマトグラフィー用検体処理液を備えた、検出キットにある。
(g)本発明の第7の特徴は、非イオン界面活性剤、N,N一ビス(2-ヒドロキシエチル)グリシン緩衝剤およびカゼインを含む、検体中の検出対象物を検出するために用いるイムノクロマトグラフィー用展開液にある。
(h)本発明の第8の特徴は、非イオン界面活性剤、N,N-ビス(2-ヒドロキシエチル)グリシン緩衝剤およびカゼインを含むイムノクロマトグラフィー用展開液を、移動相を構成する展開液として使用するイムノクロマトグラフィー法にある。
 本発明のイムノクロマトグラフィー用試薬組成物は、Bicine、非イオン界面活性剤およびカゼインを含有するものであり、これらの3成分を使用するイムノクロマトグラフィー用試薬組成物を検体処理液およびイムノクロマトグラフィー用展開液として使用することにより、抗体固定金コロイドの凝集を起こすことなく、且つ、展開速度の速い検査薬を提供することができるものである。
 本発明の検出系では、Bicine、非イオン界面活性剤およびカゼインを含有するイムノクロマトグラフィー用試薬組成物を使用することによって、例えば、呼吸器疾患患者から採取される検体(特に、鼻汁、鼻腔拭い液または痰等)中の抗原(例えば、インフルエンザウィルス、アデノウィルス、RSウィルス等々のウィルス)を、非特異的反応を起こすことなく、迅速、簡便および高精度に、検査できるイムノクロマトグラフィー装置を提供するものである。その抑制機構の原理の詳細は不明であるが、鼻汁などの検体に含まれる高粘性タンパク質などを介して生じる標識物質間、あるいは標識物質とクロマトグラフ媒体間の非特異結合による凝集が抑制され、また標識物質とクロマトグラフ媒体上の検出試薬との非特異反応が惹起しないため、感度の低下がなく、正確に結果の判定が可能である。
 また、本発明の検出キットは、Bicine、非イオン界面活性剤およびカゼインを含有するイムノクロマトグラフィー用検体処理液により処理をした検出試料を、検出キットの試料添加部位に滴下することによって、非特異的反応を惹起することなく、検体中の抗原と特異的に反応して迅速、簡便、高精度に検体検査ができるという利点を有するものである。
 また、本発明では、Bicine、非イオン界面活性剤およびカゼインを含有するイムノクロマトグラフィー用展開液を、移動相を構成する展開液として使用することによって、迅速、簡便な検査ができるという特徴を有する。
 以下、本発明を詳細に説明する。
 本発明の実施形態は、各種検体中の被検出物質である検出対象物(抗原)に各種の標識をつけた特異的に結合する結合物質(抗体)を、クロマト材上で反応させる抗原抗体反応により複合体を形成させ、イムノクロマトグラフィー媒体上を吸収部位の方向へ展開させて、それを各種の検出手段により確認するという、イムノクロマトグラフィー法またはそれを応用した検出法に基づくものである。その抗原と最も特異的に反応して結合する抗体としては、それと特異的に結合する、例えばモノクローナル抗体およびポリクローナル抗体若しくはその他の公知の抗体を任意に使用することができる。
 その標識としては、酵素、発色物質、蛍光物質、または放射性物質などを任意に使用することができるが、操作が簡単で、検定時間も短くするという、イムノクロマトグラフィー法の特色を出す為や、抗体、抗原の種類を考慮して決めればよい。
 又、検出手段は、操作が簡単で、比較的短時間で判定できると言う、イムノクロマトグラフィー法の特色を表すためには、目視判定で、正確に判定できると言う性能を有することを特徴とするが、時間、精度などが要求される場合には、分光光度検出、放射線検出など、各種の検出手段を付帯させて、検出することができる。
 そのイムノクロマトグラフィー法による検出をする際に、検出の精度、非特異反応に非常に影響する展開液について検討した結果、次のような実施形態が最も適していることを知見したものである。
 即ち、本発明者等は、pH緩衝剤などを含む展開液を用いるイムノクロマトグラフィー検出方法において、生物学的親和性に基づく副反応を抑制したり、疎水結合や電気的相互作用を打ち消す効果のある物質、例えば界面活性剤、アンモニウム塩、およびpH緩衝剤、さらに非特異反応を抑制するために種々の添加剤、例えば、抗原抗体反応の促進あるいは非特異反応の抑制のための蛋白質等々について、鋭意研究を重ねた結果、イムノクロマトグラフィー用試薬組成物としてBicine、非イオン界面活性剤およびカゼインを含有するものを使用することにより、例えば、呼吸器疾患患者から採取される検体(特に、鼻汁、鼻腔拭い液または痰等)中の抗原(例えば、インフルエンザウィルス、アデノウィルス、RSウィルス等々のウィルス)を検出する際に、その抑制機構は不明であるが、生物学的親和性に基づく副反応や、疎水結合及び電気的相互作用に基づく非特異反応(ノイズ)を抑制し、一方で、抗原抗体反応を促進してシグナルを増強でき、抗体固定金コロイドの凝集が起こらないことを初めて知見し完成に至ったものである。また、本発明の試薬組成物をイムノクロマトグラフィー検出法に用いれば、鼻汁などの検体に含まれる高粘性タンパク質などを介して生じる標識物質間、あるいは標識物質とクロマトグラフ媒体間の非特異結合による凝集が抑制され、クロマト材の孔の目詰まりによる展開速度の低下を生じず、更に、高粘性タンパク質などによる粘度の増大も抑制するため、感度の低下を伴わず高速の展開が可能となり迅速な検体検出を可能とする。
 本発明のイムノクロマトグラフィー用試薬組成物中に使用できる非イオン性界面活性剤としては、ポリオキシエチレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレン/ポリオキシプロピレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル(商品名「Tween」シリーズ)、ポリオキシエチレンp-t-オクチルフェニルエーテル(商品名「Triton」シリーズ)、ポリオキシエチレンp-t-ノニルフェニルエーテル(商品名「TritonN」シリーズ)、アルキルポリグルコシド、脂肪酸ジエタノールアミド、アルキルモノグリセリルエーテル等を挙げることができる。なかでも、ポリオキシエチレンアルキルエーテルが好ましく、ポリオキシエチレン(23)ラウリルエーテル(商品名「Brij35」)、ポリオキシエチレン(20)セチルエーテル(商品名「Brij58」)が好ましく用いられる。特に好ましくは、ポリオキシエチレン(23)ラウリルエーテル(商品名「Brij35」)であり、ポリオキシエチレン(23)ラウリルエーテル(商品名「Brij35」)以外の非イオン性界面活性剤を実質的に含有しないことが望ましい。しかしながら、悪影響を及ぼさない範囲内においてその他の非イオン性界面活性剤、イオン性界面活性剤などを配合して使用することも可能である。
 本発明のイムノクロマトグラフィー用試薬組成物中に使用する非イオン性界面活性剤の含有量としては、イムノクロマトグラフィー用試薬組成物全体重量に対して、0.01~10重量%の範囲であり、好ましくは0.05~5重量%の範囲で含有させることができる。0.01重量%未満では、例えば0.005重量%では正確な判定が行えない。0.05重量%未満では、非特異的反応を抑制できず正確な判定がやや難しくなる傾向を示す。10重量%以上、例えば12重量%、18重量%となると、必要以上の濃度となり、非特異的反応の抑制には好ましい影響を与えることがないばかりか、技術的に無意味になり、経済的でなく無駄となる。
 本発明の抽出展開液などのイムノクロマトグラフィー用試薬組成物中に使用される塩としては、代表的なものとしては塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化カルシウム、塩化マグネシウム等々が挙げられる。好ましくは塩化ナトリウムである。
 本発明の抽出展開液などのイムノクロマトグラフィー用試薬組成物中に使用される塩の濃度としては、イムノクロマトグラフィー用試薬組成物全体に対して、1mM~500mMの範囲であり、5mM~200mMの範囲が好ましく、10mM~50mMの範囲がより好ましい。濃度が1mMより低くなると、例えば0.1mMと少なくなるとタンパク質の抽出作用が不十分になる。500mM以上では、例えば、1M,2Mと多くなれば、技術的に無意味な量であり、必要以上の濃度となり経済的でなく無駄となる。
 本発明のイムノクロマトグラフィー用試薬組成物中に使用される塩としては、1種のみならず2種以上配合して使用することもできる。
 本発明のイムノクロマトグラフィー用試薬組成物中の1成分であるBicine緩衝剤の濃度としては、イムノクロマトグラフィー用試薬組成物全体に対して、10~200mMの範囲が好ましく、10~100mMの範囲がより好ましく、30~100mMの範囲がさらに好ましい。濃度が10mMより低くなると緩衝作用が不十分になり、標識粒子の凝集抑制も不十分となる。200mM以上では、必要以上の濃度となり経済的でなく無駄となる。また、緩衝液として、pH範囲7.7~9.1のものを作るのが最適である。
 本発明のイムノクロマトグラフィー用試薬組成物は、Bicine以外の緩衝剤を実質的に含有しないことが望ましい。しかしながら、悪影響を及ぼさない範囲内においてその他の緩衝剤を配合して使用することもできる。
 本発明のイムノクロマトグラフィー用試薬組成物中の1成分であるカゼインとしては、カゼイン単独が好ましいが、カゼインを含む試薬、例えば、脱脂粉乳であっても良い。カゼインの濃度としては、イムノクロマトグラフィー用試薬組成物全体重量に対して、0.01~20重量%の範囲が好ましく、0.1~10重量%の範囲がより好ましく、0.5~5重量%の範囲がさらに好ましい。0.01重量%未満では、非特異的反応を抑制できず正確な判定が行なえない。20重量%以上では、必要以上の濃度となり経済的でなく無駄となる。
 本発明のイムノクロマトグラフィー用試薬組成物には、生物学的親和性に基づく副反応を抑制したり、非特異的反応を抑制することが公知の添加剤、例えば、抗原抗体反応の促進あるいは非特異的反応を抑制するための蛋白質(例えば、牛血清アルブミン、ゼラチン等)、高分子化合物(例えば、ポリエチレングリコール、メチルセルロース、ポリビニルピロリドン、ポリビニルアルコール、デキストラン等)、イオン性界面活性剤又はポリアニオン(例えば、デキストラン硫酸、ヘパリン、ポリスチレンスルホン酸、コンドロイチン硫酸等)、あるいは、抗菌剤等々の1種もしくは2種以上を添加して使用することも可能かつ有効であって、何ら妨げるものではない。また、これらの抗原抗体反応の促進あるいは非特異的反応を抑制するための蛋白質、高分子化合物、イオン性界面活性剤又はポリアニオン、あるいは、抗菌剤等々の1種もしくは2種以上を、固定相を構成するクロマトグラフィー媒体上の、移動相の移動経路上に保持させておくことも可能かつ有効であって、何ら妨げるものではない。
 本発明のイムノクロマトグラフィー用試薬組成物の使用方法としては、展開液として最適に用いることができるものであり、また、検体試料の処理液としても好適に使用することができるものである。さらに、上記の使用方法に限定されるものではなく、イムノクロマトグラフィー用試薬組成物の成分をイムノクロマトグラフィー媒体上の、移動相の移動経路上に設ける態様で使用することもできる。展開液としては、通常、溶媒として水を用い、これにBicine緩衝液、カゼイン、および非イオン界面活性剤を加える。加える順序は特に特定されず、同時に加えても差支えない。展開液として用いる場合には、検出する試料(検体試料)と展開液を予め混合したものを、サンプルパッド(試料添加部分)上に供給・滴下して展開させることもできるし、先に試料をサンプルパッド(試料添加部分)上に供給・滴下して後、展開液をサンプルパッド(試料添加部分)上に供給・滴下して展開させてもよい。検体試料処理液として使用する場合には、検体試料を予め処理液で希釈処理した処理液を、そのまま展開液としてサンプルパッド(試料添加部分)上に供給・滴下することにより使用できる。
 本発明のイムノクロマトグラフィー用試薬組成物の成分をイムノクロマトグラフィー媒体上の、移動相の移動経路上に設けて使用する場合には、その方法としては、例えば、イムノクロマトグラフィー装置におけるサンプルパッド(試料添加部分)中へ塗布又は含浸させた後、乾燥させる方法により、サンプルパッド中へ担持または保持させる態様とすることができる。本発明のイムノクロマトグラフィー用試薬組成物をイムノクロマトグラフィー媒体上に保持または担持させる他の態様としては、試料添加部の端部と吸収部との間の任意の場所に、添加剤保持部を設けて、そこに保持させる態様とすることができる。 例えば、試料添加部分、標識物質保持部やイムノクロマトグラフィー媒体上とすることもできる。なかでも試料添加部分および/または標識物質保持部位のみに担持または保持させる態様とすることができる。
 本発明の検出対象物を含む試料(検体)としては、例えば、主として生体試料、即ち、血液、血清、血紫、尿、唾液、髄液、汗、涙、羊水、乳頭分泌液、鼻汁、痰、鼻腔又は咽頭拭い液、皮膚からの浸出液、組織や細胞及び糞便からの抽出物等々が挙げられる。
 本発明の検出対象物としては、それと特異的に結合する、例えば、抗原抗体反応のように特異的に結合する物質が存在するもしくは製造できるものであればよく、特に限定されない。検出対象物が完全抗原といったそれ自体が抗原性を有するものであっても、もしくはハプテン(不完全抗原)といったそれ自体が抗原性を有しなくても化学的変成物とすることにより抗原性を持つに至るものであってもよい。これらの検出対象物と特異的に結合する物質が存在するもしくは製造できるものであればよく、モノクローナル抗体若しくはポリクローナル抗体とすることができる。本発明の検出対象物を例示すれば、ペプチドホルモン(成長ホルモン(GH)、副腎皮質刺激ホルモン(ACTH)、メラミン細胞刺激ホルモン(MSH)、プロラクチン、甲状腺刺激ホルモン(TSH)、黄体形成ホルモン(LH)、卵胞刺激ホルモン(FSH)、下垂体ホルモン、カルシュウム代謝調節ホルモン、陣ホルモン、消化管ホルモン、血管作用ホルモン、ヒト紋毛性性腺刺激ホルモン(hCG)等の胎盤ホルモン)、前立腺性酸性フォスファターゼ(PAP)、前立腺特異抗原(PSA)、アルカリ性フォスファターゼ、トランスアミナーゼ、トリプシン、ペプシノーゲン、α一フェトプロテイン(AFP)、ガン胎児性抗原(CEA)等のガン特異物質、免疫グロブリンG(IgG)等の血清蛋白成分、リュウマチ因子、セロトニン、ウロキナーゼ、フェリチン、サブスタンP、エストロン等の卵胞ホルモン、便潜血、梅毒抗体、インフルエンザウィルス、アデノウィルス、RSウィルス、ロタウィルス、HBs抗原、HBs抗体、クラミジア抗原、A群β溶連菌抗原等の細菌抗原、プロゲストロン等の天然又は合成黄体ホルモン、テストステロン等の男性ホルモン、コルチゾール等の副腎皮質ホルモン、コレステロール、胆汁酸、強心性ステロイド、サポゲニン等のその他のステロイド類、エピネフリン、ドーパミン、生理活性アルカロイド類、アミノ基含有向精神薬類、TRH等の低分子ペプチド類、ジヨードサイロニン等の甲状腺ホルモン類、プロスタグランジン類、ビタミン類、ペニシリン等の抗生物質類、その他生体内成分、生体内投与薬物およびその代謝産物等が挙げられる。好ましい検出対象物としては、ウィルスに対して用いられ、特に、インフルエンザウィルス、アデノウィルス、RSウィルスに対して、より好ましく用いられる。
 本発明の最適な検体は、鼻汁、鼻腔拭い液、咽頭拭い液又は痰である。これらの検体を本発明の検体処理液を使用して予め希釈処理することにより、呼吸器疾患患者から採取される抗原(ウィルス:主にインフルエンザウィルス、アデノウィルス、RSウィルス)を被検出物質として的確に検出することができる。
 検体中の被検出物質を検出するためのイムノクロマトグラフィー装置は、その構造およびその動作・検出手法は、公知である(例えば、特許文献5参照)。
 従来のイムノクロマトグラフィー装置のサンプルパッド中へ、本発明の検体処理液を使用して予め検体を希釈処理して得られた検体試料を滴下して、イムノクロマトグラフィー媒体上を吸収部位の方向へ展開させて、抗原抗体反応により検体中の被検出物質の同定・定量等の検査をすることができる。
 イムノクロマトグラフィー装置について、以下に説明をする。
 通常、イムノクロマトグラフィー装置は、試料添加部位(1)(「サンプルパッド」ともいう)、標識物質保持部位(2)、クロマトグラフィー媒体(3)、検出部位(4)(「判定部」ともいう)、吸収部位(5)およびパッキングシート(6)から構成されている。
 試料添加部位(1)は、試料が迅速に吸収されるが、保持力は弱く、速やかに反応部へと試料が移動していくような性質の、ガラス漉紙等の多孔質シートで構成されている。
 さらに必要に応じて、非特異的反応をより効果的に抑制するために、サンプルパッド(1)中に、もしくはサンプルパッド(1)の端部と吸収部(5)との間のいずれかの領域部に、本発明に係るBicine、カゼイン、および非イオン界面活性剤の3成分を含むイムノクロマトグラフィー用試薬組成物を予め塗布または含浸させて後、乾燥させることにより保持または担持させておくことも可能である。
 標識物質保持部位(2)には、標識成分によって試薬成分を標識した標識試薬を保持させてなる。標識成分としては、金属コロイド粒子、ラテックス粒子、酵素、蛍光化合物等々があり、なかでも金属コロイド粒子が最適である。試薬成分としては、分析物を認識する能力を有する粒子又は分子であり、好ましくはモノクローナル抗体又はポリクローナル抗体若しくはそのフラグメントである(第二試薬)。
 金属コロイド粒子とは、銀、白金、ゲルマニウム、ロジウム、パラジウムのような貴金属の単粒子、複合粒子が任意に好ましく使用できる。特に金が色相の変化に敏感であり、最も適している。金属コロイド粒子の状態を見れば、平均粒径は1~500nm、好ましくは10~250nm、より好ましくは35~100nm程度であり、媒体に対して、0.0001~0.08重量%、好ましくは0.002~0.06重量%程度の濃度で含むものが好適に使用される。本発明の金ナノ粒子とは、このような平均粒径を有する、金のナノ径の各種金コロイド粒子をさす。免疫学的測定においては、この金コロイドの粒径、粒度分布、色調などを考慮して、金コロイド粒子の表面に白金コロイド粒子を担持させた、金コロイド複合粒子とすることにより、免疫学的測定用の標識とすること、蛋白質の染色剤としての有用性を高める為に使用することができる。さらに、金属粒子表面に結合できる官能基と抗体と結合できる反応基を有するコロイド状金標識増幅剤のような、いわゆる増感剤を使用すれば測定感度を高めることができる。これらの各種貴金属のナノコロイドの入手法は、例えば、塩化貴金属酸、硝酸貴金属酸または硝酸貴金属酸の水溶液に公知の還元剤を添加するという慣用の手法で製造することができる。また、コロイドの粒度分布を動的光散乱法粒度分布計で測定した後の、平均粒径を求めるというような、各種慣用の方法で測定をすることができる。
 本発明に用いられる金属コロイド粒子としては、各種市販の金属コロイド粒子あるいは金属コロイド粒子懸濁液が利用可能であり、例えば、金コロイド懸濁液(田中貴金属工業社製:LC40nm)が使用可能である。
 クロマトグラフィー媒体(3)は、膜担体上に検出部位(4)を作成したものである。膜担体としては、毛細管現象により試料検体を吸収し移動させることができるものであれば、特に限定されるものではない。例えば、ニトロセルロース、酢酸セルロース、ナイロン、ポリエーテルスルホン、ポリビニルアルコール、ポリエステル、ガラス繊維、ポリオレフイン、セルロース、これらの混合繊維からなる人工ポリマーからなる群から選択される。
 検出部位(4)には、モノクローナル抗体又はポリクローナル抗体若しくはそのフラグメント(第一試薬)が、ニトロセルロースのシート上に担持固定されている。
 吸収部位(5)は、過剰の試料を迅速に吸収する能力を有する材料、ガラス源紙等が用いられる。
 パッキングシート(6)は、基材である。片面に粘着剤を塗布したり、粘着テープを貼り付けることにより、片面が粘着性を有し、該粘着面上に試料添加部位(1)、標識物質保持部位(2)、クロマトグラフィー媒体(3)、検出部位(4)、および吸収部位(5)の一部または全部が密着して設けられている。パッキングシート(6)は、粘着剤によって試料液に対して不透過性、非透湿性となるようなものであれば、基材としては、特に限定されない。
 検出部位(4)に用いる試薬成分(第一試薬)および標識試薬に用いる試薬成分(第二試薬)は、その一方又は両方がモノクローナル抗体であってもよいし、ポリクローナル抗体であってもよいが、標識試薬に用いる試薬成分(第二試薬)は、測定感度等の点から特異性の高いモノクローナル抗体が好ましい。検出部位(4)に用いる試薬成分(第一試薬)としては、モノクローナル抗体でもポリクローナル抗体でも良い。
 モノクローナル抗体およびポリクローナル抗体若しくはそのフラグメントは、公知であり、入手可能であり、公知の方法により調整することができる。抗体産生動物種としては、ヒト、マウス、ラット、ウサギ、ヤギ等々である。免疫グロブリンとしては、IgG、IgM,IgA、IgE、IgDのいずれでも良い。
 モノクローナル抗体は、常法に従って、抗原(例えば、インフルエンザAウイルス)で免疫したマウスの牌臓細胞と骨髄腫細胞をハイブリッドさせ、目的とする抗体を産生するハイブリドーマを選択し、このハイブリドーマから産生されてくるモノクローナル抗体を収得する。例えば、ケーラーとミルスタインの技法(Nature256(1975)495-497)を参照。
 ポリクローナル抗体は、常套手法により、抗原(例えば、インフルエンザAウイルス)を産生動物(例えば、ヒト、マウス、ラット、ウサギ、ヤギ、ウマ等)に免疫して得た抗血清中から目的とする抗体を分離することにより得られる。
 本発明の実施例においては、標識試薬に用いる試薬成分(第二試薬)としては、マウス由来抗インフルエンザAモノクローナル抗体を用い、検出部位(4)に用いる試薬成分(第一試薬)としては、マウス由来抗インフルエンザAモノクローナル抗体を用いた場合を記載しているが、これに限定されるものではない。マウス由来抗インフルエンザAポリクローナル抗体を用いることもできる。
 判定の原理を概説すると、
1.検体試料(検体を検体処理液で希釈処理したもの)を、サンプルパッド(1)上に、所定量(通常、0.1~2ml)滴下する。検体試料が滴下されると、検体試料はサンプルパッド(1)に迅速に吸収されるが、速やかに試料と共に移動を始める。サンプルパッド(1)中にイムノクロマトグラフィー用試薬組成物が含浸されていた場合には、含浸されていたイムノクロマトグラフィー用試薬組成物は、検体試料の水分に溶解し、検体試料と共に移動を始める。
2.検体試料は、まず標識物質保持部位(2)へと移動する。ここを検体試料が通過する際、標識物質保持部位(2)に保持されていた標識試薬(第二試薬)が試料の水分に溶解し、試料と共に移動する。
3.ついで、検体試料の水分に溶解した標識試薬は、クロマトグラフィー媒体(3)上の検出部位(4)を通過する。ここでは、検体試料中に溶解しているイムノクロマトグラフィー用試薬組成物により非特異的結合反応は抑制され、抗原・抗体の特異的結合反応により、検体試料中に被検出物質(例えば、抗原)が存在する場合には、検出部位(4)に担持固定されている抗体と標識試薬とによってサンドイッチ状に挟まれるように特異的に反応結合して、検出部位(4)が着色する。検体試料中に被検出物質(例えば、抗原)が存在しない場合には、試料の水分に溶解した標識試薬は、クロマトグラフィー媒体(3)上の検出部位(4)を通過しても特異的結合反応が起こらないので、検出部位(4)が着色しない。
4.最後に、試料の水分は、吸収部位(5)へと移動する。
 このように、検体試料中の被検出物質(例えば、抗原)の有無を正確に判定することができる。
 以下、本発明の有効性を実施例を挙げて説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。本発明において、特に断りの無い限り、比率、部およびパーセント等は重量にて 計算される。
[実施例1=Brij35]
(1)クロマトグラフィー媒体上への判定部の作製
 メンブレンとしてニトロセルロースからなるシート(ミリポア社製、商品名:HF120,300mm×25mm)を用いた。5重量%のイソプロピルアルコールを含むリン酸緩衝液(pH7.4)で1.0mg/mlの濃度になるようにマウス由来抗インフルエンザAモノクローナル抗体(第一抗体)を希釈した。この溶液150μLをメンブラン上に1mmの幅で塗布し、50℃で30分間乾燥させ、室温で一晩乾燥させ、クロマトグラフィー媒体を作製した。
(2)標識物質溶液の作製
 金コロイド懸濁液(田中貴金属工業社製:LC40nm)0.5mlに、リン酸緩衝液(pH7.4)で0.05mg/mlの濃度になるように希釈したマウス由来抗インフルエンザAモノクローナル抗体(第二抗体)を0.1ml加え、室温で10分間静置した。 次いで、1重量%の牛血清アルブミン(BSA)を含むリン酸緩衝液(pH7.4)を0.1ml加え、更に室温で10分間静置した。その後、十分撹拝した後、8000×gで15分間遠心分離を行い、上清を除去した後、1重量%のBSAを含むリン酸緩衝液(pH7.4)を0.1ml加えた。以上の手順で標識物質溶液を作製した。
(3)イムノクロマトグラフィー用試験片の作製
 上記作製した標識物質溶液300μLに300μLの10重量%トレハロース水溶液と1.8mLの蒸留水を加えたものを15mm×300mmのグラスファイバーパッド(ミリポア社製)に均一になるように添加した後、真空乾燥機にて乾燥させ、標識保持部材を作製した。次に、パッキングシートから成る基材に、上記作製したクロマトグラフィー媒体、標識物質保持部材、試料を添加する部分に用いるサンプルパッド(ミリポア社製:300mm×30mm)、展開した試料や標識物質を吸収するための吸収パッドを貼り合わせた。そして、裁断機で幅が5mmとなるように裁断し、イムノクロマトグラフィー用試験片とした。
(4)検体処理試薬の作製
 2重量%カゼイン、25mMKCl,1重量%Brij35(タカラバイオ社製)、0.095%アジ化ナトリウムを含む50mMのBicine緩衝液(pH8.5)を調製し、鼻汁・痰・咽頭ぬぐい液等の検体を処理するための試薬とした。
(5)測定
 上記作製したイムノクロマトグラフィー用試験片を用いて、以下の方法で試料中のインフルエンザAウィルスの存在の有無を測定した。
 即ち、吸引トラップの片方の管を吸引ポンプに、もう片方の管をインフルエンザに感染していない人の鼻腔の奥部まで挿入し、吸引ポンプを陰圧にして鼻汁を採取した。採取した鼻汁を上記検体処理試薬で20倍に希釈し、これを陰性検体試料とした。また、陰性検体試料に、蛋白濃度が25ng/mL、50ng/mLとなるように市販の不活化インフルエンザAウィルスを加えたものを陽性検体試料とした。陰性検体試料、陽性検体試料とも150以Lをイムノクロマトグラフィー用試験片のサンプルパッド上に載せて展開させ、15分後に目視判定をした。テストラインの赤い線を確認できるものを「+」、赤い線は確認できるが、非常に色が薄いものを「±」、赤い線を確認できないものを「-」とした。表1に結果を示す。
[実施例2=Tween20]
 実施例1でBrij35の代わりに、ポリオキシエチレン(20)-ソルビタンモノラウリル酸エステル(Tween20(商品名))を使用したこと以外は、実施例1と同様の方法で測定を行った。結果を表1に示す。
[実施例3=TritonX-100]
 実施例1でBrij35の代わりに、ポリオキシエチレン(10)-p-t-オクチルフェニルエーテル(TritonX-100(商品名))を使用したこと以外は、実施例1と同様の方法で測定を行った。結果を表1に示す。
[比較例1=Tricine]
 実施例1でBicineの代わりに、二級アミンであるTricine(pH8.5)を使用したこと以外は、実施例1と同様の方法で測定を行った。結果を表1に示す。
[比較例2=BES]
 実施例1でBicineの代わりに、三級アミンである2-{N,N一ビス(2-ヒドロキシエチル)}アミノエタンスルフォニックアシッド(Good緩衝剤の1つであり,以下、「BES」という)(pH8.0)を使用したこと以外は、実施例1と同様の方法で測定を行った。結果を表1に示す。
[比較例3=BSA]
 実施例1でカゼインの代わりに、BSAを使用したこと以外は、実施例1と同様の方法で測定を行った。結果を表1に示す。
[比較例4=Brij35無]
 実施例1でBrij35を使用しなかったこと以外は、実施例1と同様の方法で測定を行った。結果を表1に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
 以上のように、実施例1~3においては、Bicine、カゼイン、非イオン性界面活性剤(Brij35、Tween20、TritonX-100)を含有する検体処理試薬組成物を用いることで、抗体感作金コロイドの凝集が起こらず、非特異反応もなく、展開速度の速い展開液が実現した。
 これに対して、緩衝剤としてBicineに代えてTricineを用いた以外は実施例1と同様の方法で測定を行った場合(比較例1)にあっては、25ng/mL濃度の陽性検体試料では、赤い線は確認できるが、非常に色が薄かった。また、抗体感作金コロイドの凝集が起こってしまい、検査キットとして満足できるものではなかった。
 Bicineの代わりに、BESを用いた以外は実施例1と同様の方法で測定を行った場合(比較例2)では、25ng/mL濃度の陽性検体試料では、赤い線は確認できず、50ng/mL濃度の陽性検体試料に対して、赤い線は確認できるが、非常に色が薄かった。また、抗体感作金コロイドの凝集が起こってしまい、展開速度も遅く、明確な判定ができず、検査キットとして望ましいものではなかった。
 カゼインの代わりに、BSAを使用したこと以外は、実施例1と同様の方法で測定を行った場合(比較例3)では、陰性検体試料に対して非特異反応が起き、また、抗体感作金コロイドの凝集が起きて、正確な判定ができなかった。
 Brij35を使用しなかったこと以外は、実施例1と同様の方法で測定を行った場合(比較例4)では、陰性検体試料に対して非特異反応が起き、また、抗体感作金コロイドの凝集が起き、さらに、展開速度も遅く、正確な判定ができなかった。
 これらの結果から、イムノクロマトグラフィー法による測定を行うにおいて、緩衝液としてBicine、抗原抗体反応を促進して非特異反応を抑制する蛋白質としてカゼイン、および非イオン性界面活性剤という3成分を含む試薬組成物を、検体処理液として用いることにより、抗体感作金コロイドの凝集が起きず、展開速度も速く、正確な判定ができるという顕著な効果を奏することが明らかとなった。
 次に、様々な濃度のBicineを含む検体処理液を作成し、インフルエンザウィルスの検出測定を行った(実施例4~5)。この測定において、検体処理試薬の作製に用いるBicineの濃度以外は実施例1と同様の方法で行った。結果を表2に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
 これらの結果から、実施例4~5においては、Bicineの濃度を、20mM、100mMに変えても、実施例1の場合と同様に、抗体感作金コロイドの凝集が起こらず、非特異反応がなく、展開速度の速い展開液であることが確認できた。
 本発明の展開溶媒もしくは検体処理液は、金ナノ粒子を標識物質として使用し、抗原抗体反応を利用して被検出物質を検出するイムノクロマトグラフィー法に使用した場合、抗体感作金コロイドの凝集が起きず、展開速度も速いという優れた利点を有するため、高感度で迅速な臨床検査を可能にするという、利用可能性を有する。
 本発明を詳細にまた特定の実施態様を参照して説明したが、本発明の精神と範囲を逸脱することなく様々な変更や修正を加えることができることは当業者にとって明らかである。
 本出願は、2010年8月3日出願の日本特許出願(特願2010-174930)に基づくものであり、その内容はここに参照として取り込まれる。すべての引用される参照は内容として取り込まれる。

Claims (8)

  1.  非イオン界面活性剤、N,N一ビス(2-ヒドロキシエチル)グリシン緩衝剤およびカゼインを含むイムノクロマトグラフィー用試薬組成物。
  2.  非イオン界面活性剤が、ポリオキシエチレン(23)ラウリルエーテルであることを特徴とする請求項1に記載のイムノクロマトグラフィー用試薬組成物。
  3.  金ナノ粒子を標識物質として使用する検出系で用いることを特徴とする請求項1に記載のイムノクロマトグラフィー用試薬組成物。
  4.  請求項1~3のいずれかに記載のイムノクロマトグラフィー用試薬組成物を含むイムノクロマトグラフィー用検体処理液。
  5.  検体が、鼻汁、鼻腔拭い液、咽頭拭い液または痰である請求項4に記載のイムノクロマトグラフィー用検体処理液。
  6.  非イオン界面活性剤、N,N-ビス(2-ヒドロキシエチル)グリシン緩衝剤およびカゼインを含むイムノクロマトグラフィー用検体処理液を備えた、検出キット。
  7.  非イオン界面活性剤、N,N-ビス(2-ヒドロキシエチル)グリシン緩衝剤およびカゼインを含む、検体中の検出対象物を検出するために用いるイムノクロマトグラフィー用展開液。
  8.  非イオン界面活性剤、N,N一ビス(2-ヒドロキシエチル)グリシン緩衝剤およびカゼインを含むイムノクロマトグラフィー用展開液を、移動相を構成する展開液として使用するイムノクロマトグラフィー法。
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