JP2006084351A - 検体浮遊液組成物、キット及び検査方法 - Google Patents
検体浮遊液組成物、キット及び検査方法 Download PDFInfo
- Publication number
- JP2006084351A JP2006084351A JP2004270265A JP2004270265A JP2006084351A JP 2006084351 A JP2006084351 A JP 2006084351A JP 2004270265 A JP2004270265 A JP 2004270265A JP 2004270265 A JP2004270265 A JP 2004270265A JP 2006084351 A JP2006084351 A JP 2006084351A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- specimen
- suspension composition
- membrane
- specimen suspension
- antibody
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Abstract
【課題】 コロイド凝集法を用いた検体の検査方法において、偽陽性の発生を防止し、被測定物の精度の高い検出を可能にする検体浮遊液組成物、これを含む被測定物の検出キット、及び被測定物を検出する方法を提供すること。
【解決手段】 コロイド物質を標識物質として使用し、被検試料中の被測定物を検出するアッセイ法に用いる検体浮遊液組成物であって、界面活性剤を含み、ｐＨが３〜８であることを特徴とする検体浮遊液組成物、これを含む被測定物の検出キット、及び被測定物を検出する方法。
【解決手段】 コロイド物質を標識物質として使用し、被検試料中の被測定物を検出するアッセイ法に用いる検体浮遊液組成物であって、界面活性剤を含み、ｐＨが３〜８であることを特徴とする検体浮遊液組成物、これを含む被測定物の検出キット、及び被測定物を検出する方法。
Description
本発明はコロイド物質を標識物質として用いる測定法に使用する検体浮遊液組成物、それを用いた被測定物の検出キット、及び被測定物の検出方法に関する。
最近、抗原抗体反応や酵素反応等を利用した、ウイルスや細菌等の病原体への感染、妊娠の有無、血糖値など様々な測定項目を数分から数十分の短時間で検出あるいは定量する簡易検査試薬またはキットが開発されている。病原体構成蛋白質、ヒト繊毛性ゴナドトロピン（ｈＣＧ）、血糖等が検出あるいは定量の対象である。簡易検査試薬の多くは、特別な設備を必要とせず操作も簡単で安価であるという特徴を有しており、例えば、妊娠診断のための簡易検査試薬はＯＴＣとして一般薬局で販売されている。また病原体への感染を測定する簡易検査試薬の一部は、他の検査試薬と異なり、大病院や医療検査センター以外にも一般の病院や診療所で広く使用されている。これらの施設は患者が最初に訪れる医療機関である場合が多く、患者から採取した検体についてその場で感染の有無が判明すれば、症状が早期のうちに治療措置を施すことができるため、簡易検査試薬の医療における重要性は益々高まってきている。
現在、簡易検査方法として、免疫測定法、すなわち免疫凝集法やイムノメンブレンアッセイ法、特にニトロセルロース等の膜やフィルター等のメンブレンを用いたアッセイ方法が一般に知られており、これらはフロースルー式とラテラルフロー式メンブレンアッセイ法に大別される。前者は被測定物を含む溶液を被測定物に対する検出用物質が塗布された膜を垂直方向に通過させるものであり、後者は水平方向に展開させるものである。いずれの場合も被測定物に特異的に結合する膜固相物質、被測定物、被測定物に特異的に結合する標識物質の複合体を膜上に形成させて、標識を検出あるいは定量することで、被測定物の検出あるいは定量を行うという点で共通している。
標識物質としてはアルカリフォスファターゼや西洋ワサビペルオキシダーゼのような酵素、金コロイドのような金属コロイド及び着色ラテックスがよく用いられる。酵素を用いる場合には被測定物が存在すると酵素の作用により基質分子の構造の一部が変化して着色するので、この着色を測定する。一方、金属コロイドや着色ラテックスを用いる場合には、これらの標識物質が凝集することによって着色が生じるので、この着色を測定する。酵素を用いる場合には、測定ステップの中に基質を添加する工程及び酵素と基質の反応を停止させる工程が必要なのに対して、金属コロイドや着色ラテックスを用いる場合にはそのような工程を必要としない。近年、インフルエンザなど流行期に大量の検査数が発生する項目では臨床現場での迅速測定が行われている。この目的に使用される簡易検査試薬は現場の医師、看護婦、臨床検査技師等によって扱われるケースが多いため、測定ステップを一層簡略化することが求められている。これに答えるためには金属コロイドや着色ラテックスを用いる方が便利な場合が多い。金属コロイドとしては金コロイド、白金コロイド、銀コロイドやセレニウムコロイド等が用いられるが、特に金コロイドは以前より作製法、物性が研究されており、抗体や抗原のような生体関連物質の標識物質として多用されている。着色ラテックスではポリスチレン粒子等がよく用いられる。
しかし、このような簡易検査方法では、患者から実際に採取された検体の分析において、被測定物が検体中に存在しないにも係わらず陽性と判定してしまう、いわゆる偽陽性が生じることがある。病原体の感染を測定する際に偽陽性反応が発生すると、疾患に関して誤った情報を与えるため、原因特定を遅らせるばかりでなく、不適切な措置を講じることになり病状がより重篤になる等の重大な結果をもたらすこともあり得る。したがって偽陽性を抑えることは簡易検査方法の主要な使用目的から見て、極めて重要な課題である。従来、この問題を解決するため、検体を浮遊あるいは希釈させる緩衝液として界面活性剤を含有する緩衝液を用いたりするなどの工夫がなされてきたが、必ずしも満足のゆくものではなかった。特に金属コロイドや着色ラテックスのようなコロイド物質を標識物質として用いた場合には、これらはもともと凝集しやすい性質を有しているため、偽陽性も発生しやすい傾向にあった。
本発明の目的は、コロイド物質を標識物質として用いる検体の簡易な検査方法において、偽陽性の発生を防止し、被測定物の精度の高い検出あるいは定量を可能にする検体浮遊液組成物及びその検体浮遊液組成物を用いた被測定物の検出キット、被測定物を検出する方法を提供することである。
コロイド物質を標識物質として用いる被測定物の検出・定量法を行うにあたり、被測定物を含有する可能性がある検体を浮遊あるいは希釈するのに用いる検体浮遊液組成物として、界面活性剤を含み、ｐＨが３〜８である検体浮遊液組成物を用いることにより、感度が保たれつつ偽陽性の発生が大きく抑制されることが見出された。本発明はこの知見に基づいて完成されたものであり、以下の検体浮遊液、被測定物の検出キット及び被測定物の検出方法を提供するものである。
１．コロイド物質を標識物質として使用し、被検試料中の被測定物を検出するイムノアッセイ法に用いる検体浮遊液組成物であって、界面活性剤を含み、ｐＨが３〜８であることを特徴とする検体浮遊液組成物。
２．さらに塩基性アミノ酸を含む上記１記載の検体浮遊液組成物。
３．塩基性アミノ酸がアルギニン、リジン、及びヒスチジンからなる群から選ばれる少なくとも１種であり、その濃度が０．１〜３０（Ｗ／Ｖ）％である上記２記載の検体浮遊液組成物。
４．界面活性剤の濃度が０．０１〜２０（Ｗ／Ｖ）％である上記１〜３のいずれか１項記載の検体浮遊液組成物。
５．界面活性剤が非イオン性界面活性剤である上記１〜４のいずれか１項記載の検体浮遊液組成物。
６．さらに２００ｍＭ未満の無機塩類を含む上記１〜５のいずれか１項記載の検体浮遊液組成物。
７．アッセイ法がイムノアッセイ法である上記１〜６のいずれか１項記載の検体浮遊液組成物。
８．アッセイ法が被測定物と特異的に結合する物質を感作（接触、付着）した担体を用いる上記１〜７のいずれか１項記載の検体浮遊液組成物。
９．アッセイ法がメンブレンアッセイ法である上記１〜８のいずれか１項記載の検体浮遊液組成物。
１０．被測定物がウイルスである上記１〜９のいずれか１項記載の検体浮遊液組成物。
１１．上記１〜１０のいずれか１項記載の検体浮遊液組成物を備えた被測定物の検出キット。
１２．上記１〜１０のいずれか１項記載の検体浮遊液組成物又は上記１１記載の検出キットを用いることを特徴とする被測定物の検出方法。
２．さらに塩基性アミノ酸を含む上記１記載の検体浮遊液組成物。
３．塩基性アミノ酸がアルギニン、リジン、及びヒスチジンからなる群から選ばれる少なくとも１種であり、その濃度が０．１〜３０（Ｗ／Ｖ）％である上記２記載の検体浮遊液組成物。
４．界面活性剤の濃度が０．０１〜２０（Ｗ／Ｖ）％である上記１〜３のいずれか１項記載の検体浮遊液組成物。
５．界面活性剤が非イオン性界面活性剤である上記１〜４のいずれか１項記載の検体浮遊液組成物。
６．さらに２００ｍＭ未満の無機塩類を含む上記１〜５のいずれか１項記載の検体浮遊液組成物。
７．アッセイ法がイムノアッセイ法である上記１〜６のいずれか１項記載の検体浮遊液組成物。
８．アッセイ法が被測定物と特異的に結合する物質を感作（接触、付着）した担体を用いる上記１〜７のいずれか１項記載の検体浮遊液組成物。
９．アッセイ法がメンブレンアッセイ法である上記１〜８のいずれか１項記載の検体浮遊液組成物。
１０．被測定物がウイルスである上記１〜９のいずれか１項記載の検体浮遊液組成物。
１１．上記１〜１０のいずれか１項記載の検体浮遊液組成物を備えた被測定物の検出キット。
１２．上記１〜１０のいずれか１項記載の検体浮遊液組成物又は上記１１記載の検出キットを用いることを特徴とする被測定物の検出方法。
本発明は、コロイド物質を標識物質として用いる被測定物の検出・定量法を行うにあたり、被測定物を含有する可能性がある検体を浮遊あるいは希釈するのに用いる検体浮遊液組成物であって、界面活性剤を含み、ｐＨが３〜８であることを特徴とするものである。
本発明の検体浮遊液組成物はさらに塩基性アミノ酸、２００ｍＭ未満の無機塩類を含有することが好ましい。
本発明の検出キットは、コロイド物質を標識物質として用いた、検体試料中の被測定物の存在を検査するための簡易メンブレンアッセイキットであり、上記検体浮遊液組成物、及び被測定物を捕捉するための捕捉試薬が結合したメンブレンを備えていることが好ましい。
本発明の検体浮遊液組成物はさらに塩基性アミノ酸、２００ｍＭ未満の無機塩類を含有することが好ましい。
本発明の検出キットは、コロイド物質を標識物質として用いた、検体試料中の被測定物の存在を検査するための簡易メンブレンアッセイキットであり、上記検体浮遊液組成物、及び被測定物を捕捉するための捕捉試薬が結合したメンブレンを備えていることが好ましい。
本発明の検体浮遊液組成物、キット、これを用いた方法により、偽陽性の発生を効果的に防止ないし低減することができる。
以下に本発明を詳しく説明する。
（検体浮遊液組成物）
検体浮遊液組成物とは、患者や環境等から採取した被測定物を含む可能性がある検体を浮遊または懸濁するための溶液であり、該検体を浮遊または懸濁した浮遊液はアッセイ装置に滴下されて、アッセイに供される。
採取検体には被測定物以外にも様々な物質が含まれている。例えば、病原体感染測定のため、人から検体を採取する際には鼻腔や咽頭より綿棒等で採取することが多いが、この検体中には患者由来の組織片や分泌物の他、被測定物である病原体の組織が含まれている場合がある。これらの一部は検体浮遊液組成物中に凝集物として存在し、一部は検体浮遊液組成物中に溶解した状態で存在する。これらを含んだ状態で検体浮遊液組成物をアッセイ装置に滴下すると、非特異反応により偽陽性が発生する場合がある。凝集物を除去するためにはアッセイ装置に滴下する前に濾過用のメンブレンを通過させて濾過する方法が有効であるが、溶解物の場合、濾過により除去することはできないので、偽陽性を発生させない様な組成の検体浮遊液組成物が必要である。本発明の検体浮遊液組成物はような偽陽性の発生を防止ないし低減するために使用するものである。
（検体浮遊液組成物）
検体浮遊液組成物とは、患者や環境等から採取した被測定物を含む可能性がある検体を浮遊または懸濁するための溶液であり、該検体を浮遊または懸濁した浮遊液はアッセイ装置に滴下されて、アッセイに供される。
採取検体には被測定物以外にも様々な物質が含まれている。例えば、病原体感染測定のため、人から検体を採取する際には鼻腔や咽頭より綿棒等で採取することが多いが、この検体中には患者由来の組織片や分泌物の他、被測定物である病原体の組織が含まれている場合がある。これらの一部は検体浮遊液組成物中に凝集物として存在し、一部は検体浮遊液組成物中に溶解した状態で存在する。これらを含んだ状態で検体浮遊液組成物をアッセイ装置に滴下すると、非特異反応により偽陽性が発生する場合がある。凝集物を除去するためにはアッセイ装置に滴下する前に濾過用のメンブレンを通過させて濾過する方法が有効であるが、溶解物の場合、濾過により除去することはできないので、偽陽性を発生させない様な組成の検体浮遊液組成物が必要である。本発明の検体浮遊液組成物はような偽陽性の発生を防止ないし低減するために使用するものである。
本発明の検体浮遊液組成物を用いる、被測定物を含む可能性がある検体の測定原理の例としては、ラテックス凝集反応法、金属コロイド凝集反応等が挙げられる。標識物質としてコロイド物質を用い、被測定物を捕捉するための捕捉試薬が結合したメンブレンを備えたアッセイ装置に検体浮遊液組成物を滴下して、前記液中の被測定物の存在を検出あるいは定量する簡易メンブレンアッセイ法に対しては特に効果的である。
（界面活性剤）
本発明の検体浮遊液組成物に使用する界面活性剤としては、非イオン性界面活性剤、陽イオン性界面活性剤、陰イオン性界面活性剤、両性界面活性剤等、任意の界面活性剤を使用できるが、少なくとも一種類の非イオン性界面活性剤が含まれていることがより好ましい。特に特異的（抗原抗体）反応への影響の少ない非イオン性界面活性剤が好ましい。
非イオン性界面活性剤としてはポリアルキレンオキサイド基を分子中に有するポリアルキレンオキサイド誘導体が挙げられる。ポリアルキレンオキサイド基としては、ポリオキシエチレン、ポリオキシプロピレン、ポリオキシブチレン等が挙げられる。ポリアルキレンオキサイド基のアルキレンオキサイドの繰り返し数は、通常６〜２０程度であり、６〜１２が更に好ましい。ポリアルキレンオキサイド誘導体としては、具体的には、例えば、ポリオキシエチレンラウリルエーテル、ポリオキシエチレンセチルエーテル、ポリオキシエチレンステアリルエーテル等のポリオキシエチレンアルキルエーテル類、ポリオキシエチレンフェニルエーテル、ポリオキシエチレンナフチルエーテル等のポリオキシエチレンアリールエーテル類、ポリオキシエチレンメチルフェニルエーテル、ポリオキシエチレンオクチルフェニルエーテル、ポリオキシエチレンノニルフェニルエーテル等のポリオキシエチレンアルキルアリールエーテル、ポリ・オキシエチレン−ポリ・プロピレン縮合物が挙げられる。特に好ましいポリアルキレンオキサイド誘導体としては、特異的反応への影響が少ないポリオキシエチレンアルキルアリールエーテルが挙げられる。
本発明の検体浮遊液組成物に使用する界面活性剤としては、非イオン性界面活性剤、陽イオン性界面活性剤、陰イオン性界面活性剤、両性界面活性剤等、任意の界面活性剤を使用できるが、少なくとも一種類の非イオン性界面活性剤が含まれていることがより好ましい。特に特異的（抗原抗体）反応への影響の少ない非イオン性界面活性剤が好ましい。
非イオン性界面活性剤としてはポリアルキレンオキサイド基を分子中に有するポリアルキレンオキサイド誘導体が挙げられる。ポリアルキレンオキサイド基としては、ポリオキシエチレン、ポリオキシプロピレン、ポリオキシブチレン等が挙げられる。ポリアルキレンオキサイド基のアルキレンオキサイドの繰り返し数は、通常６〜２０程度であり、６〜１２が更に好ましい。ポリアルキレンオキサイド誘導体としては、具体的には、例えば、ポリオキシエチレンラウリルエーテル、ポリオキシエチレンセチルエーテル、ポリオキシエチレンステアリルエーテル等のポリオキシエチレンアルキルエーテル類、ポリオキシエチレンフェニルエーテル、ポリオキシエチレンナフチルエーテル等のポリオキシエチレンアリールエーテル類、ポリオキシエチレンメチルフェニルエーテル、ポリオキシエチレンオクチルフェニルエーテル、ポリオキシエチレンノニルフェニルエーテル等のポリオキシエチレンアルキルアリールエーテル、ポリ・オキシエチレン−ポリ・プロピレン縮合物が挙げられる。特に好ましいポリアルキレンオキサイド誘導体としては、特異的反応への影響が少ないポリオキシエチレンアルキルアリールエーテルが挙げられる。
本発明の検体浮遊液組成物中の界面活性剤の濃度は、０．０１（ｗ／ｖ）％〜２０（ｗ／ｖ）％が好ましく、０．２（ｗ／ｖ）％〜５（ｗ／ｖ）％がより好ましい。この濃度範囲が好ましい理由は、濃度が低いと期待される効果が十分に得られない場合があり、また濃度が高いと特異的（抗原抗体）反応を阻害したり、逆に非特異的反応を誘発・促進する場合があるからである。
本発明の検体浮遊液組成物のｐＨは、３〜８であり、好ましくは５〜８である。
ｐＨが３未満又は８超では、偽陽性の発生率が高くなり、本発明の所期の目的が達成されない。また、浮遊液中の被測定物の安定性が損なわれるおそれがある。
ｐＨを３〜８に保つための緩衝剤としては、例えば酢酸緩衝液、クエン酸緩衝液、リン酸緩衝液、トリス緩衝剤、グッドの緩衝剤等が好適に使用できるがそれらに限定されない。本発明の検体浮遊液組成物中の緩衝剤の濃度は通常、１０〜５０ｍＭが適当である。
ｐＨが３未満又は８超では、偽陽性の発生率が高くなり、本発明の所期の目的が達成されない。また、浮遊液中の被測定物の安定性が損なわれるおそれがある。
ｐＨを３〜８に保つための緩衝剤としては、例えば酢酸緩衝液、クエン酸緩衝液、リン酸緩衝液、トリス緩衝剤、グッドの緩衝剤等が好適に使用できるがそれらに限定されない。本発明の検体浮遊液組成物中の緩衝剤の濃度は通常、１０〜５０ｍＭが適当である。
（塩基性アミノ酸）
本発明の検体浮遊液組成物は塩基性アミノ酸を含むことが好ましい。本明細書において、塩基性アミノ酸とは、塩基性側鎖を有するアミノ酸を意味する。好ましい塩基性アミノ酸としてはアルギニン、リジン、ヒスチジン、オルニチンまたはシトルリン等が挙げられる。本発明の検体浮遊液組成物はアルギニン、リジン、及びヒスチジンからなる群から選ばれる少なくとも１種を含むことが好ましく、アルギニンを含むことがさらに好ましい。
本発明の検体浮遊液組成物は塩基性アミノ酸を含むことが好ましい。本明細書において、塩基性アミノ酸とは、塩基性側鎖を有するアミノ酸を意味する。好ましい塩基性アミノ酸としてはアルギニン、リジン、ヒスチジン、オルニチンまたはシトルリン等が挙げられる。本発明の検体浮遊液組成物はアルギニン、リジン、及びヒスチジンからなる群から選ばれる少なくとも１種を含むことが好ましく、アルギニンを含むことがさらに好ましい。
検体の種類（例えば、患者由来の脱離・剥離細胞等、あるいはそれら細胞から放出された細胞成分を含むような検体）によっては反応中に不要な凝集塊（凝集物）が形成され、これが非特異的な反応の原因となる場合があるが、塩基性アミノ酸はこれら凝集を抑制する凝集抑制剤としての作用も期待できる。従って、このような検体の検出を行う場合には、本発明の検体浮遊液組成物においても塩基性アミノ酸を含むことがより好ましい。
本発明の検体浮遊液組成物中の塩基性アミノ酸の濃度は、０．１〜３０（Ｗ／Ｖ）％であることが好ましく、１〜１０（Ｗ／Ｖ）％であることがさらに好ましい。
０．１（Ｗ／Ｖ）％未満では本発明の所期の効果が達成されない場合があり、３０（Ｗ／Ｖ）％超では、特異的（抗原抗体）反応を阻害する場合がある。
本発明の検体浮遊液組成物中の塩基性アミノ酸の濃度は、０．１〜３０（Ｗ／Ｖ）％であることが好ましく、１〜１０（Ｗ／Ｖ）％であることがさらに好ましい。
０．１（Ｗ／Ｖ）％未満では本発明の所期の効果が達成されない場合があり、３０（Ｗ／Ｖ）％超では、特異的（抗原抗体）反応を阻害する場合がある。
（無機塩類）
本発明の検体浮遊液組成物は、さらに無機塩類を含むことが好ましい。無機塩類を含むことにより、非特異反応が低減されるという効果が奏される。
無機塩類としては、ナトリウム化合物、カリウム化合物、セシウム化合物、マグネシウム化合物、カルシウム化合物、ストロンチウム化合物等の無機化合物のうち水溶性のもの及びそれらを組み合わせたものが好適に用いられるがそれらに限定されない。塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化リチウム等が好ましく、塩化ナトリウムが特に好ましい。
本発明の検体浮遊液組成物中の、無機塩類の濃度は好ましくは２００ｍＭ未満であり、より好ましくは１０〜１００ｍＭである。２００ｍＭを超えると偽陽性の発生率が高くなり、１０ｍＭ未満でも、２００ｍＭを超えた場合と同様、偽陽性の発生率が高くなるという傾向がある。
本発明の検体浮遊液組成物は、さらに無機塩類を含むことが好ましい。無機塩類を含むことにより、非特異反応が低減されるという効果が奏される。
無機塩類としては、ナトリウム化合物、カリウム化合物、セシウム化合物、マグネシウム化合物、カルシウム化合物、ストロンチウム化合物等の無機化合物のうち水溶性のもの及びそれらを組み合わせたものが好適に用いられるがそれらに限定されない。塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化リチウム等が好ましく、塩化ナトリウムが特に好ましい。
本発明の検体浮遊液組成物中の、無機塩類の濃度は好ましくは２００ｍＭ未満であり、より好ましくは１０〜１００ｍＭである。２００ｍＭを超えると偽陽性の発生率が高くなり、１０ｍＭ未満でも、２００ｍＭを超えた場合と同様、偽陽性の発生率が高くなるという傾向がある。
（タンパク質）
本発明の検体浮遊液組成物にはその他、浮遊液中の被測定物の安定化を目的として、ウシ血清アルブミン、ゼラチン等のタンパク質を含有させることも可能である。その濃度は通常、０．１〜５（Ｗ／Ｖ）％が適当である。
本発明の検体浮遊液組成物にはその他、浮遊液中の被測定物の安定化を目的として、ウシ血清アルブミン、ゼラチン等のタンパク質を含有させることも可能である。その濃度は通常、０．１〜５（Ｗ／Ｖ）％が適当である。
（コロイド標識化検出試薬）
本明細書において、検出試薬とは、被測定物に特異的に結合し、被測定物と複合体を形成しうるものである。また、コロイド標識化検出試薬とは、被測定物と複合体を形成した後にコロイド状物質で検出可能なように標識された検出試薬を意味する。例えば、被測定物がウイルス等の抗原物質である場合には、そのウイルスに対する抗体であって、金コロイド等で標識化された抗体が挙げられる。標識化される前の検出試薬としては、捕捉試薬について後述するものと同じものが挙げられる。標識物質には、金コロイド、白金コロイド、銀コロイド、セレニウムコロイド等の金属コロイドや着色ポリスチレン等の着色ラテックス等が挙げられる。
本明細書において、検出試薬とは、被測定物に特異的に結合し、被測定物と複合体を形成しうるものである。また、コロイド標識化検出試薬とは、被測定物と複合体を形成した後にコロイド状物質で検出可能なように標識された検出試薬を意味する。例えば、被測定物がウイルス等の抗原物質である場合には、そのウイルスに対する抗体であって、金コロイド等で標識化された抗体が挙げられる。標識化される前の検出試薬としては、捕捉試薬について後述するものと同じものが挙げられる。標識物質には、金コロイド、白金コロイド、銀コロイド、セレニウムコロイド等の金属コロイドや着色ポリスチレン等の着色ラテックス等が挙げられる。
（被測定物）
本明細書にいう被測定物にはインフルエンザウイルス抗原、アデノウイルス抗原、ＲＳウイルス抗原、ＨＡ抗原、ＨＢｃ抗原、ＨＣＶ抗原、ＨＩＶ抗原、ＥＢＶ抗原、ＮＬＶ抗原等のウイルス抗原、クラミジア・トラコマティス抗原、溶連菌抗原、百日咳菌抗原、ヘリコバクター・ピロリ抗原、レプトスピラ抗原、トレポネーマ・パリダム抗原、トキソプラズマ・ゴンディ抗原、ボレリア抗原、炭疽菌抗原、MRSA抗原等の細菌抗原、マイコプラズマ脂質抗原、ヒト繊毛性ゴナドトロピン等のペプチドホルモン、ステロイドホルモン等のステロイド、エピネフリンやモルヒネ等の生理活性アミン類、ビタミンＢ類等のビタミン類、プロスタグランジン類、テトラサイクリン等の抗生物質、細菌等が産生する毒素、各種腫瘍マーカー、農薬、抗大腸菌抗体、抗サルモネラ抗体、抗ブドウ球菌抗体、抗カンピロバクター抗体、抗ウェルシュ菌抗体、抗腸炎ビブリオ菌抗体、抗ベロトキシン抗体、抗ヒトトランスフェリン抗体、抗ヒトアルブミン抗体、抗ヒト免疫グロブリン抗体、抗マイクログロブリン抗体、抗ＣＲＰ抗体、抗トロポニン抗体、抗ＨＣＧ抗体、抗クラミジア・トラコマティス抗体、抗ストレプトリジンO抗体、抗ヘリコバクター・ピロリ抗体、抗β-グルカン抗体、抗ＨＢｅ抗体、抗ＨＢｓ抗体、抗アデノウイルス抗体、抗ＨＩＶ抗体、抗ロタウイルス抗体、抗インフルエンザウイルス抗体、抗パルボウイルス抗体、抗ＲＳウイルス抗体、抗ＲＦ抗体、病原微生物に由来する核酸成分に相補的なヌクレオチド等を挙げることができるが、これらに限定されない。
本明細書にいう被測定物にはインフルエンザウイルス抗原、アデノウイルス抗原、ＲＳウイルス抗原、ＨＡ抗原、ＨＢｃ抗原、ＨＣＶ抗原、ＨＩＶ抗原、ＥＢＶ抗原、ＮＬＶ抗原等のウイルス抗原、クラミジア・トラコマティス抗原、溶連菌抗原、百日咳菌抗原、ヘリコバクター・ピロリ抗原、レプトスピラ抗原、トレポネーマ・パリダム抗原、トキソプラズマ・ゴンディ抗原、ボレリア抗原、炭疽菌抗原、MRSA抗原等の細菌抗原、マイコプラズマ脂質抗原、ヒト繊毛性ゴナドトロピン等のペプチドホルモン、ステロイドホルモン等のステロイド、エピネフリンやモルヒネ等の生理活性アミン類、ビタミンＢ類等のビタミン類、プロスタグランジン類、テトラサイクリン等の抗生物質、細菌等が産生する毒素、各種腫瘍マーカー、農薬、抗大腸菌抗体、抗サルモネラ抗体、抗ブドウ球菌抗体、抗カンピロバクター抗体、抗ウェルシュ菌抗体、抗腸炎ビブリオ菌抗体、抗ベロトキシン抗体、抗ヒトトランスフェリン抗体、抗ヒトアルブミン抗体、抗ヒト免疫グロブリン抗体、抗マイクログロブリン抗体、抗ＣＲＰ抗体、抗トロポニン抗体、抗ＨＣＧ抗体、抗クラミジア・トラコマティス抗体、抗ストレプトリジンO抗体、抗ヘリコバクター・ピロリ抗体、抗β-グルカン抗体、抗ＨＢｅ抗体、抗ＨＢｓ抗体、抗アデノウイルス抗体、抗ＨＩＶ抗体、抗ロタウイルス抗体、抗インフルエンザウイルス抗体、抗パルボウイルス抗体、抗ＲＳウイルス抗体、抗ＲＦ抗体、病原微生物に由来する核酸成分に相補的なヌクレオチド等を挙げることができるが、これらに限定されない。
本発明の検査方法により分析するための検体試料は、咽頭あるいは鼻腔拭い液を本発明の検体浮遊液組成物に浮遊させた溶液、鼻腔吸引液、便懸濁液、血漿、血清、尿、唾液、羊水、髄液、膿、臓器抽出液、各種組織抽出液等の生体試料、食品抽出液、培養上清、上水、下水、湖水、河川水、海水、土壌抽出液、汚泥抽出液等を本発明の検体浮遊液組成物に浮遊させた溶液又は本発明の検体浮遊液組成物で希釈した溶液を用いることができる。
（簡易メンブレンアッセイ法）
本明細書において“簡易メンブレンアッセイ法”とは、被測定物に特異的に結合する捕捉試薬が固相化されたメンブレンを含むアッセイ装置を用いて検体試料中の被測定物の存在の有無を短時間に簡便に検査する方法である。典型的には、被測定物と、捕捉試薬及び標識化検出試薬を反応させてサンドイッチ状の複合体をメンブレン上に形成させ、前記標識物を検出することによりこの複合体の存在を検出する方法である。被測定物と捕捉試薬及び標識化検出試薬との反応としては、抗原抗体反応、その他の受容体とレセプターの反応、ビオチンとアビジンの特異的結合反応、相補的配列を持つＤＮＡ同士の反応等が挙げられる。また、本発明の簡易検査方法は、このような方法に用いるものであれば、被測定物、メンブレンの種類について限定されるものではない。
本明細書において“簡易メンブレンアッセイ法”とは、被測定物に特異的に結合する捕捉試薬が固相化されたメンブレンを含むアッセイ装置を用いて検体試料中の被測定物の存在の有無を短時間に簡便に検査する方法である。典型的には、被測定物と、捕捉試薬及び標識化検出試薬を反応させてサンドイッチ状の複合体をメンブレン上に形成させ、前記標識物を検出することによりこの複合体の存在を検出する方法である。被測定物と捕捉試薬及び標識化検出試薬との反応としては、抗原抗体反応、その他の受容体とレセプターの反応、ビオチンとアビジンの特異的結合反応、相補的配列を持つＤＮＡ同士の反応等が挙げられる。また、本発明の簡易検査方法は、このような方法に用いるものであれば、被測定物、メンブレンの種類について限定されるものではない。
本発明を適用するメンブレンアッセイ法は、２種類のメンブレンイムノクロマトグラフ法、すなわちフロースルー式メンブレンアッセイ法またはラテラルフロー式メンブレンアッセイ法を利用するものであることが、簡便かつ迅速であるため好ましい。フロースルー式メンブレンアッセイ法は被測定物を含む溶液を、被測定物と特異的に結合する捕捉試薬や検出用物質が塗布されたメンブレンに対して垂直方向に通過させるものであり、被測定物に特異的に結合する捕捉試薬、被測定物、被測定物に特異的に結合する標識物質の複合体を膜上に形成させて、標識を検出あるいは定量することで、被測定物の検出あるいは定量を行う。ラテラルフロー式メンブレンアッセイ法は、同様なメンブレンを用いて、メンブレンに対して被測定物を含む溶液を水平方向に展開させる点でフロースルー式メンブレンアッセイ法と異なるが、被測定物の検出原理は同様である。
メンブレンアッセイ装置中のメンブレンとしては、紙やニトロセルロースなどの多孔質物質、または繊維状マトリクス、薄層クロマトグラフに用いられるシリカ、微細顆粒セルロース、ナイロン６，６などの一定の粒子径の粒子を捕捉できる担体を挙げることができる。好ましい多孔質物質としては、微多孔質セルロースエステル、たとえばアルカンカルボン酸などの脂肪族カルボン酸とのセルロースエステルが挙げられ、特に好ましくはニトロセルロースから作られた微多孔質物質が挙げられる。また、前記セルロースエステルとニトロセルロースの混合物も好適に用いることができる。上記メンブレンは孔径０．３〜１５μｍのものが用いられることが多い。メンブレンの厚さは、通常、１００〜２００μｍ程度である。
（捕捉試薬）
被測定物を捕捉するための捕捉試薬は、被測定物と、抗原抗体反応のような特異的反応により結合して、複合体を形成する物質である。従って、被測定物により使用する捕捉試薬が異なることは当然であるが、一般には被測定物が細菌、ウイルス、ホルモン、その他臨床マーカー等の場合には、これらに対し特異的に反応して結合するポリクローナル抗体、モノクローナル抗体等が挙げられる。そのほか、ウイルス抗原、ウイルス中空粒子、遺伝子組換え大腸菌発現タンパク質、遺伝子組換え酵母発現タンパク質等が挙げられる。このような捕捉試薬を上述したメンブレン表面に結合させる方法としては、物理的吸着であってもよく、または化学的な結合によるものであってもよい。捕捉試薬が結合したメンブレンの調製は、例えば、捕捉試薬を緩衝液等に希釈した溶液をメンブレンに吸着してその後乾燥することにより行われる。
被測定物を捕捉するための捕捉試薬は、被測定物と、抗原抗体反応のような特異的反応により結合して、複合体を形成する物質である。従って、被測定物により使用する捕捉試薬が異なることは当然であるが、一般には被測定物が細菌、ウイルス、ホルモン、その他臨床マーカー等の場合には、これらに対し特異的に反応して結合するポリクローナル抗体、モノクローナル抗体等が挙げられる。そのほか、ウイルス抗原、ウイルス中空粒子、遺伝子組換え大腸菌発現タンパク質、遺伝子組換え酵母発現タンパク質等が挙げられる。このような捕捉試薬を上述したメンブレン表面に結合させる方法としては、物理的吸着であってもよく、または化学的な結合によるものであってもよい。捕捉試薬が結合したメンブレンの調製は、例えば、捕捉試薬を緩衝液等に希釈した溶液をメンブレンに吸着してその後乾燥することにより行われる。
（簡易メンブレンアッセイキット）
本発明を適用可能な簡易メンブレンアッセイキットは、上述した本発明の簡易メンブレンアッセイ法に用いるキットである。本発明の簡易メンブレンアッセイキットは少なくとも以下のイ、ロ、ハを含む。
イ．検体浮遊液組成物
ロ．コロイド標識化検出試薬、及び
ハ．被測定物を捕捉するための捕捉試薬が結合したメンブレン。
本発明のキットはさらに必要により、濾過フィルター、洗浄液組成物を含んでいてもよい。また、必要に応じて、キットの活性を検査するためのバッファーのみからなる陰性コントロール液、抗原性物質などの被測定物を含むバッファーからなる陽性コントロール液を含んでいてもよい。さらに、滅菌綿棒等の検体採取器具を含んでいてもよい。
本発明を適用可能な簡易メンブレンアッセイキットは、上述した本発明の簡易メンブレンアッセイ法に用いるキットである。本発明の簡易メンブレンアッセイキットは少なくとも以下のイ、ロ、ハを含む。
イ．検体浮遊液組成物
ロ．コロイド標識化検出試薬、及び
ハ．被測定物を捕捉するための捕捉試薬が結合したメンブレン。
本発明のキットはさらに必要により、濾過フィルター、洗浄液組成物を含んでいてもよい。また、必要に応じて、キットの活性を検査するためのバッファーのみからなる陰性コントロール液、抗原性物質などの被測定物を含むバッファーからなる陽性コントロール液を含んでいてもよい。さらに、滅菌綿棒等の検体採取器具を含んでいてもよい。
以下に、本発明の方法についてメンブレンアッセイを例に挙げ、より具体的な手順を示し、本発明を説明するが、本発明の適用可能範囲はこの限りではない。
１．フロースルー式メンブレンアッセイ
（１）ウイルスや細菌等に感染した患者の咽頭あるいは鼻腔等から検体試料を採取する。拭い液を採取する場合には滅菌綿棒等を用いると便利である。また、鼻腔吸引液等は吸引カテーテルを用いることが多い。
（２）採取した検体試料を本発明の検体浮遊液組成物に浮遊あるいは希釈する。検体浮遊液組成物はポリエチレン、ポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）等のフレキシブルな材質からなる滴下用チューブに入れると便利である。
（３）前記浮遊液又は希釈液（以下、単に「浮遊液」ともいう）を、被測定物に特異的に結合する標識化検出試薬と混合し、捕捉試薬／被測定物の複合体を形成させる。次に前記複合体を含む浮遊液を、メンブレンを備えたアッセイ装置中の被測定物に特異的に結合して被測定物を捕捉する捕捉試薬が結合したメンブレンに滴下して、被測定物／標識化検出試薬の複合体をメンブレン上に捕捉させる。この結果、メンブレン上に、捕捉試薬／被測定物／標識化検出試薬の複合体が形成される。
あるいは、被測定物を前記メンブレンに滴下して、捕捉試薬／被測定物の複合体をメンブレン上に形成させた後、標識化検出試薬を滴下して、捕捉試薬／被測定物／標識化検出試薬の複合体を形成させてもよい。
または、標識化検出試薬を乾燥状態にして、メンブレン上に配置し、前記浮遊液がメンブレンに滴下されると溶け出すようにしておけば、被測定物と標識化検出試薬は複合体を形成しながら、前記メンブレン上に捕捉され、メンブレン上で捕捉試薬／被測定物／標識化検出試薬の複合体が形成される。
いずれの場合においても、試料中に含まれる凝集物等を除去するため、前記滴下用チューブの先端等に濾過フィルターを装着してメンブレンに滴下前に濾過してもよい。
（４）前記複合体中の標識化検出試薬により、複合体の存在を検出することで、検体試料中の被測定物の有無を測定する。
１．フロースルー式メンブレンアッセイ
（１）ウイルスや細菌等に感染した患者の咽頭あるいは鼻腔等から検体試料を採取する。拭い液を採取する場合には滅菌綿棒等を用いると便利である。また、鼻腔吸引液等は吸引カテーテルを用いることが多い。
（２）採取した検体試料を本発明の検体浮遊液組成物に浮遊あるいは希釈する。検体浮遊液組成物はポリエチレン、ポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）等のフレキシブルな材質からなる滴下用チューブに入れると便利である。
（３）前記浮遊液又は希釈液（以下、単に「浮遊液」ともいう）を、被測定物に特異的に結合する標識化検出試薬と混合し、捕捉試薬／被測定物の複合体を形成させる。次に前記複合体を含む浮遊液を、メンブレンを備えたアッセイ装置中の被測定物に特異的に結合して被測定物を捕捉する捕捉試薬が結合したメンブレンに滴下して、被測定物／標識化検出試薬の複合体をメンブレン上に捕捉させる。この結果、メンブレン上に、捕捉試薬／被測定物／標識化検出試薬の複合体が形成される。
あるいは、被測定物を前記メンブレンに滴下して、捕捉試薬／被測定物の複合体をメンブレン上に形成させた後、標識化検出試薬を滴下して、捕捉試薬／被測定物／標識化検出試薬の複合体を形成させてもよい。
または、標識化検出試薬を乾燥状態にして、メンブレン上に配置し、前記浮遊液がメンブレンに滴下されると溶け出すようにしておけば、被測定物と標識化検出試薬は複合体を形成しながら、前記メンブレン上に捕捉され、メンブレン上で捕捉試薬／被測定物／標識化検出試薬の複合体が形成される。
いずれの場合においても、試料中に含まれる凝集物等を除去するため、前記滴下用チューブの先端等に濾過フィルターを装着してメンブレンに滴下前に濾過してもよい。
（４）前記複合体中の標識化検出試薬により、複合体の存在を検出することで、検体試料中の被測定物の有無を測定する。
２．ラテラルフロー式メンブレンアッセイ
（１）ウイルスや細菌等に感染した患者の咽頭あるいは鼻腔等から検体試料を採取する。拭い液を採取する場合には滅菌綿棒等を用いると便利である。また、鼻腔吸引液等は吸引カテーテルを用いることが多い。
（２）採取した検体試料を本発明の検体浮遊液組成物に浮遊あるいは希釈する。検体浮遊液組成物はポリエチレン、ポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）等のフレキシブルな材質からなる滴下用チューブに入れると便利である。
（３）前記浮遊液を、被測定物に特異的に結合する標識化検出試薬と混合し、捕捉試薬／被測定物の複合体を形成させる。次に前記複合体を含む浮遊液を、被測定物に特異的に結合して被測定物を捕捉する捕捉試薬がライン状に結合したメンブレンを備えたアッセイ装置中のメンブレンの捕捉試薬結合ラインから離れた場所に滴下する。被測定物／標識化検出試薬の複合体を含む浮遊液はメンブレン上を水平方向に展開してゆき、捕捉試薬の結合ラインに達するとそのライン上に、捕捉試薬／被測定物／標識化検出試薬の複合体が形成される。
あるいは、前記浮遊液と標識化検出試薬を個々に前記アッセイ装置中のメンブレンの捕捉試薬結合ラインから離れた場所に滴下してもよい。その際、滴下位置は同じでも別々でも構わない。
いずれの場合においても、試料中に含まれる凝集物等を除去するため、滴下用チューブの先端等に濾過フィルターを装着してメンブレンに滴下前に濾過してもよい。
（４）前記複合体中の標識化検出試薬により、複合体の存在を検出することで、検体試料中の被測定物の有無を測定する。
（１）ウイルスや細菌等に感染した患者の咽頭あるいは鼻腔等から検体試料を採取する。拭い液を採取する場合には滅菌綿棒等を用いると便利である。また、鼻腔吸引液等は吸引カテーテルを用いることが多い。
（２）採取した検体試料を本発明の検体浮遊液組成物に浮遊あるいは希釈する。検体浮遊液組成物はポリエチレン、ポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）等のフレキシブルな材質からなる滴下用チューブに入れると便利である。
（３）前記浮遊液を、被測定物に特異的に結合する標識化検出試薬と混合し、捕捉試薬／被測定物の複合体を形成させる。次に前記複合体を含む浮遊液を、被測定物に特異的に結合して被測定物を捕捉する捕捉試薬がライン状に結合したメンブレンを備えたアッセイ装置中のメンブレンの捕捉試薬結合ラインから離れた場所に滴下する。被測定物／標識化検出試薬の複合体を含む浮遊液はメンブレン上を水平方向に展開してゆき、捕捉試薬の結合ラインに達するとそのライン上に、捕捉試薬／被測定物／標識化検出試薬の複合体が形成される。
あるいは、前記浮遊液と標識化検出試薬を個々に前記アッセイ装置中のメンブレンの捕捉試薬結合ラインから離れた場所に滴下してもよい。その際、滴下位置は同じでも別々でも構わない。
いずれの場合においても、試料中に含まれる凝集物等を除去するため、滴下用チューブの先端等に濾過フィルターを装着してメンブレンに滴下前に濾過してもよい。
（４）前記複合体中の標識化検出試薬により、複合体の存在を検出することで、検体試料中の被測定物の有無を測定する。
［実施例１、比較例１］
フロースルー式イムノクロマトアッセイによるインフルエンザウイルスの検出
１．モノクローナル抗体の作製
（１）抗Ａ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体（マウス）の作製
精製Ａ型インフルエンザウイルス抗原を免疫し、一定期間維持したＢＡＬＢ／ｃマウスから脾臓を摘出し、ケラーらの方法（Kohler et al., Nature, vol.256, p.495-497(1975)）によりマウスミエローマ細胞（Ｐ３×６３）と融合した。
得られた融合細胞（ハイブリドーマ）を、３７℃インキュベーター中で維持し、Ａ型インフルエンザウイルスＮＰ抗原固相プレートを用いたＥＬＩＳＡにより上清の抗体活性を確認しながら細胞の純化（単クローン化）を行った。取得した該細胞２株をそれぞれプリスタン処理したＢＡＬＢ／ｃマウスに腹腔投与し、約２週間後、抗体含有腹水を採取した。得られた腹水からそれぞれ硫安分画法によってＩｇＧを精製し、２種類の精製抗Ａ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体を得た。
フロースルー式イムノクロマトアッセイによるインフルエンザウイルスの検出
１．モノクローナル抗体の作製
（１）抗Ａ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体（マウス）の作製
精製Ａ型インフルエンザウイルス抗原を免疫し、一定期間維持したＢＡＬＢ／ｃマウスから脾臓を摘出し、ケラーらの方法（Kohler et al., Nature, vol.256, p.495-497(1975)）によりマウスミエローマ細胞（Ｐ３×６３）と融合した。
得られた融合細胞（ハイブリドーマ）を、３７℃インキュベーター中で維持し、Ａ型インフルエンザウイルスＮＰ抗原固相プレートを用いたＥＬＩＳＡにより上清の抗体活性を確認しながら細胞の純化（単クローン化）を行った。取得した該細胞２株をそれぞれプリスタン処理したＢＡＬＢ／ｃマウスに腹腔投与し、約２週間後、抗体含有腹水を採取した。得られた腹水からそれぞれ硫安分画法によってＩｇＧを精製し、２種類の精製抗Ａ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体を得た。
（２）抗Ｂ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体（マウス）
精製Ｂ型インフルエンザウイルス抗原を免疫し、一定期間維持したＢＡＬＢ／ｃマウスから脾臓を摘出し、ケラーらの方法（Kohler et al., Nature, vol.256, p.495-497(1975)）によりマウスミエローマ細胞（Ｐ３×６３）と融合した。 得られた融合細胞（ハイブリドーマ）は、３７℃インキュベーター中で維持し、Ｂ型インフルエンザウイルスＮＰ抗原固相プレートを用いたＥＬＩＳＡにより上清の抗体活性を確認しながら細胞の純化（単クローン化）を行った。取得した該細胞２株をそれぞれプリスタン処理したＢＡＬＢ／ｃマウスに腹腔投与し、約２週間後、抗体含有腹水を採取した。得られた腹水から硫安分画法によってＩｇＧを精製し、２種類の精製抗Ｂ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体を得た。
精製Ｂ型インフルエンザウイルス抗原を免疫し、一定期間維持したＢＡＬＢ／ｃマウスから脾臓を摘出し、ケラーらの方法（Kohler et al., Nature, vol.256, p.495-497(1975)）によりマウスミエローマ細胞（Ｐ３×６３）と融合した。 得られた融合細胞（ハイブリドーマ）は、３７℃インキュベーター中で維持し、Ｂ型インフルエンザウイルスＮＰ抗原固相プレートを用いたＥＬＩＳＡにより上清の抗体活性を確認しながら細胞の純化（単クローン化）を行った。取得した該細胞２株をそれぞれプリスタン処理したＢＡＬＢ／ｃマウスに腹腔投与し、約２週間後、抗体含有腹水を採取した。得られた腹水から硫安分画法によってＩｇＧを精製し、２種類の精製抗Ｂ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体を得た。
２．標識抗インフルエンザ抗体の作製
（１）金コロイド標識抗Ａ型インフルエンザ抗体の調製
１０ｍＬの金コロイドを取り、１００ｍＭ炭酸カリウムでｐＨを７．０に調製した。抗Ａ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体のうち１種類を２ｍＭホウ酸溶液で透析、遠心分離し精製後、２ｍＭホウ酸溶液で１００μｇ／ｍＬの濃度になるように調製した。調製した抗Ａ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体の最終濃度が１０μｇ／ｍＬとなる量を十分撹拌させながら金コロイドに加えた。５分後１０％ＢＳＡを１ｍＬ加え、穏やかに１０分間ローテーターで撹拌した。全量を遠心管に移し、１４０００ｒｐｍ、３０分、４℃で遠心した。遠心後上清を吸引廃棄し、沈殿している金コロイドと抗Ａ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体の感作されたものに、最終濃度が１０ｍＭトリス塩酸緩衝液、１％ＢＳＡ、１５０ｍＭ塩化ナトリウムを含む溶液１ｍＬで浮遊した。
（１）金コロイド標識抗Ａ型インフルエンザ抗体の調製
１０ｍＬの金コロイドを取り、１００ｍＭ炭酸カリウムでｐＨを７．０に調製した。抗Ａ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体のうち１種類を２ｍＭホウ酸溶液で透析、遠心分離し精製後、２ｍＭホウ酸溶液で１００μｇ／ｍＬの濃度になるように調製した。調製した抗Ａ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体の最終濃度が１０μｇ／ｍＬとなる量を十分撹拌させながら金コロイドに加えた。５分後１０％ＢＳＡを１ｍＬ加え、穏やかに１０分間ローテーターで撹拌した。全量を遠心管に移し、１４０００ｒｐｍ、３０分、４℃で遠心した。遠心後上清を吸引廃棄し、沈殿している金コロイドと抗Ａ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体の感作されたものに、最終濃度が１０ｍＭトリス塩酸緩衝液、１％ＢＳＡ、１５０ｍＭ塩化ナトリウムを含む溶液１ｍＬで浮遊した。
（２）金コロイド標識抗Ｂ型インフルエンザ抗体の調製
１０ｍＬの金コロイドを取り、１００ｍＭ炭酸カリウムでｐＨを７．０に調製した。抗Ｂ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体のうち１種類を２ｍＭホウ酸溶液で透析、遠心分離し精製し後、２ｍＭホウ酸溶液で１００μｇ／ｍＬの濃度になるように調製した。調製した抗Ｂ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体の最終濃度が１０μｇ／ｍＬとなる量を十分撹拌させながら金コロイドに加えた。５分後１０％ＢＳＡを１ｍＬ加え、穏やかに１０分間ローテーターで撹拌した。全量を遠心管に移し、１４０００ｒｐｍ、３０分、４℃で遠心した。遠心後上清を吸引廃棄し、沈殿している金コロイドと抗Ｂ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体の感作されたものに、最終濃度が１０ｍＭトリス塩酸緩衝液、１％ＢＳＡ、１５０ｍＭ塩化ナトリウムを含む溶液１ｍＬで浮遊した。
１０ｍＬの金コロイドを取り、１００ｍＭ炭酸カリウムでｐＨを７．０に調製した。抗Ｂ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体のうち１種類を２ｍＭホウ酸溶液で透析、遠心分離し精製し後、２ｍＭホウ酸溶液で１００μｇ／ｍＬの濃度になるように調製した。調製した抗Ｂ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体の最終濃度が１０μｇ／ｍＬとなる量を十分撹拌させながら金コロイドに加えた。５分後１０％ＢＳＡを１ｍＬ加え、穏やかに１０分間ローテーターで撹拌した。全量を遠心管に移し、１４０００ｒｐｍ、３０分、４℃で遠心した。遠心後上清を吸引廃棄し、沈殿している金コロイドと抗Ｂ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体の感作されたものに、最終濃度が１０ｍＭトリス塩酸緩衝液、１％ＢＳＡ、１５０ｍＭ塩化ナトリウムを含む溶液１ｍＬで浮遊した。
３．金コロイド標識抗体の乾燥化
（１）金コロイド標識抗Ａ型インフルエンザ抗体の乾燥化
２．（１）で作製した金コロイド抗体を陽圧噴霧装置（ＢｉｏＤｏｔ社製、ＢｉｏＪｅｔ）を用いて８．０ＯＤ520、１０μＬ／ｃｍの濃度、及び速度で１０ｍｍｘ３００ｍｍのポリスチレン不織布に噴霧した。次いで減圧装置内で１時間減圧乾燥し、乾燥抗Ａ型金コロイド抗体パッドとした。使用時には１０ｍｍｘ７ｍｍ間隔で裁断して用いた。
（１）金コロイド標識抗Ａ型インフルエンザ抗体の乾燥化
２．（１）で作製した金コロイド抗体を陽圧噴霧装置（ＢｉｏＤｏｔ社製、ＢｉｏＪｅｔ）を用いて８．０ＯＤ520、１０μＬ／ｃｍの濃度、及び速度で１０ｍｍｘ３００ｍｍのポリスチレン不織布に噴霧した。次いで減圧装置内で１時間減圧乾燥し、乾燥抗Ａ型金コロイド抗体パッドとした。使用時には１０ｍｍｘ７ｍｍ間隔で裁断して用いた。
（２）金コロイド標識抗Ｂ型インフルエンザ抗体の乾燥化
２．（２）で作製した金コロイド抗体を陽圧噴霧装置（ＢｉｏＤｏｔ社製、ＢｉｏＪｅｔ）を用いて８．０ＯＤ520、１０μＬ／ｃｍの濃度、及び速度で１０ｍｍｘ３００ｍｍのポリスチレン不織布に噴霧した。次いで減圧装置内で１時間減圧乾燥し、乾燥抗Ｂ型金コロイド抗体パッドとした。使用時には１０ｍｍｘ７ｍｍ間隔で裁断して用いた。
２．（２）で作製した金コロイド抗体を陽圧噴霧装置（ＢｉｏＤｏｔ社製、ＢｉｏＪｅｔ）を用いて８．０ＯＤ520、１０μＬ／ｃｍの濃度、及び速度で１０ｍｍｘ３００ｍｍのポリスチレン不織布に噴霧した。次いで減圧装置内で１時間減圧乾燥し、乾燥抗Ｂ型金コロイド抗体パッドとした。使用時には１０ｍｍｘ７ｍｍ間隔で裁断して用いた。
４．メンブレンアッセイ装置の作製
ＡホールとＢホールを有するメンブレンアッセイ装置を使用した。メンブレンとしては、孔径０．４５μｍを有するニトロセルロースメンブレン（サイズ２×３ｃｍ、厚さ１２５μｍ）を用いた。
２種の抗体溶液をニトロセルロースメンブランヘスポットして固定した。装置のＡホールには精製抗Ａ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体のうち標識に用いなかったもの０．２ｍｇ／ｍＬが含まれる溶液を１２μＬ、Ｂホールには精製抗Ｂ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体のうち標識に用いなかったもの１ｍｇ／ｍＬが含まれる溶液１２μＬを０．２２μｍ孔径の濾過フィルターで濾過し、それぞれスポットした。抗体を希釈する緩衝液は１０ｍＭクエン酸緩衝液（ｐＨ４．５）を用いた。スポット後、４５℃の乾燥室で４０分間乾燥を行った。
次に、乾燥後のメンブレンアッセイ装置にＡホールとＢホールを有するアダプターを装着した。アダプターのAホールとBホールはそれぞれ、メンブレンアッセイ装置のAホールとBホールの形状に適合する形状になっており、底部はメンブレンに接触する。また、アダプターの底部のうち上記抗体がスポットされている位置に接する部分を除去し、開口部を設置した。アダプターのＡホールに３．（１）で作製した乾燥抗Ａ型金コロイド抗体パッド１枚を挿入し、Ｂホールに３．（２）で作製した乾燥抗Ｂ型金コロイド抗体パッド１枚を挿入し、インフルエンザウイルス検出用メンブレンアッセイ装置を作製した。
ＡホールとＢホールを有するメンブレンアッセイ装置を使用した。メンブレンとしては、孔径０．４５μｍを有するニトロセルロースメンブレン（サイズ２×３ｃｍ、厚さ１２５μｍ）を用いた。
２種の抗体溶液をニトロセルロースメンブランヘスポットして固定した。装置のＡホールには精製抗Ａ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体のうち標識に用いなかったもの０．２ｍｇ／ｍＬが含まれる溶液を１２μＬ、Ｂホールには精製抗Ｂ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体のうち標識に用いなかったもの１ｍｇ／ｍＬが含まれる溶液１２μＬを０．２２μｍ孔径の濾過フィルターで濾過し、それぞれスポットした。抗体を希釈する緩衝液は１０ｍＭクエン酸緩衝液（ｐＨ４．５）を用いた。スポット後、４５℃の乾燥室で４０分間乾燥を行った。
次に、乾燥後のメンブレンアッセイ装置にＡホールとＢホールを有するアダプターを装着した。アダプターのAホールとBホールはそれぞれ、メンブレンアッセイ装置のAホールとBホールの形状に適合する形状になっており、底部はメンブレンに接触する。また、アダプターの底部のうち上記抗体がスポットされている位置に接する部分を除去し、開口部を設置した。アダプターのＡホールに３．（１）で作製した乾燥抗Ａ型金コロイド抗体パッド１枚を挿入し、Ｂホールに３．（２）で作製した乾燥抗Ｂ型金コロイド抗体パッド１枚を挿入し、インフルエンザウイルス検出用メンブレンアッセイ装置を作製した。
５．インフルエンザウイルスの検出
（１）メンブレンアッセイ法による検出
臨床的にインフルエンザウイルス感染が疑われる患者６２人の鼻腔より一人の患者につき２本ずつ滅菌綿棒を用いて拭い液を採取し、１本をチューブに入れた浮遊液Ａ（実施例１）１．５ｍＬ中に、もう１本を他のチューブに入れた浮遊液Ｂ（比較例１）１．５ｍＬ中に浮遊し、試験用試料を作製した。
（浮遊液Ａの組成）
２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ６．０）
５０ｍＭ塩化ナトリウム
４（Ｗ／Ｖ）％ ＴｒｉｔｏｎＸ−１００
５（Ｗ／Ｖ）％ アルギニン塩酸塩
１．０（Ｗ／Ｖ）％ウシ血清アルブミン
（浮遊液Ｂの組成）
２０ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ８．５）
３００ｍＭ塩化ナトリウム
４（Ｗ／Ｖ）％ ＴｒｉｔｏｎＸ−１００
５（Ｗ／Ｖ）％ アルギニン塩酸塩
１．０（Ｗ／Ｖ）％ウシ血清アルブミン
（１）メンブレンアッセイ法による検出
臨床的にインフルエンザウイルス感染が疑われる患者６２人の鼻腔より一人の患者につき２本ずつ滅菌綿棒を用いて拭い液を採取し、１本をチューブに入れた浮遊液Ａ（実施例１）１．５ｍＬ中に、もう１本を他のチューブに入れた浮遊液Ｂ（比較例１）１．５ｍＬ中に浮遊し、試験用試料を作製した。
（浮遊液Ａの組成）
２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ６．０）
５０ｍＭ塩化ナトリウム
４（Ｗ／Ｖ）％ ＴｒｉｔｏｎＸ−１００
５（Ｗ／Ｖ）％ アルギニン塩酸塩
１．０（Ｗ／Ｖ）％ウシ血清アルブミン
（浮遊液Ｂの組成）
２０ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ８．５）
３００ｍＭ塩化ナトリウム
４（Ｗ／Ｖ）％ ＴｒｉｔｏｎＸ−１００
５（Ｗ／Ｖ）％ アルギニン塩酸塩
１．０（Ｗ／Ｖ）％ウシ血清アルブミン
試料をそれぞれよく懸濁させた後、それぞれのチューブの先端に孔径０．４５μｍのＰＶＤＦメンブレン及び保留粒子径０．６μｍのガラス濾紙メンブレンを積層してなるフィルターを有するろ過用ノズルを装着した。
検体試料をろ過用ノズルを通過して濾過した後、４．で作成したメンブレンアッセイ装置のアダプターのＡホールとＢホールにそれぞれ３５０μＬずつ滴加し、アダプターの底部の開口部を通じてニトロセルロースメンブレンの下部に備えられた液体吸収部材に試料が完全に吸収されるまで放置した。次にアダプターを除去し、装置のＡホールとＢホールを鉛直上方から観察し、Ａホールにのみ発色が認められた場合にはＡ型インフルエンザウイルス陽性、Ｂホールにのみ発色が認められた場合にはＢ型インフルエンザウイルス陽性、ＡＢ両ホールに発色が認められた場合にはＡ型及びＢ型インフルエンザウイルス陽性、ＡＢ両ホールとも発色が認められない場合は陰性と判定した。
検体試料をろ過用ノズルを通過して濾過した後、４．で作成したメンブレンアッセイ装置のアダプターのＡホールとＢホールにそれぞれ３５０μＬずつ滴加し、アダプターの底部の開口部を通じてニトロセルロースメンブレンの下部に備えられた液体吸収部材に試料が完全に吸収されるまで放置した。次にアダプターを除去し、装置のＡホールとＢホールを鉛直上方から観察し、Ａホールにのみ発色が認められた場合にはＡ型インフルエンザウイルス陽性、Ｂホールにのみ発色が認められた場合にはＢ型インフルエンザウイルス陽性、ＡＢ両ホールに発色が認められた場合にはＡ型及びＢ型インフルエンザウイルス陽性、ＡＢ両ホールとも発色が認められない場合は陰性と判定した。
（２）ＲＴ−ＰＣＲ法による検出
５−（１）で作製した試験用試料の残りを用いてＲＴ−ＰＣＲ法により検体中にインフルエンザウイルス遺伝子が存在するかを確認した。ＲＴ−ＰＣＲ法は、清水の方法（感染症学雑誌、第７１巻、第６号、ｐ．５２２−５２６）で実施した。
（３）簡易メンブレンアッセイ法とＲＴ−ＰＣＲ法の比較
本発明の簡易メンブレンアッセイ法と上述したＲＴ−ＰＣＲ法の判定結果を表１及び表２に示す。ＲＴ−ＰＣＲ法は感度及び特異性が極めて高い測定法であることが知られており、ＲＴ−ＰＣＲ法の結果と異なる判定となった場合に偽陽性または偽陰性とみなした。
５−（１）で作製した試験用試料の残りを用いてＲＴ−ＰＣＲ法により検体中にインフルエンザウイルス遺伝子が存在するかを確認した。ＲＴ−ＰＣＲ法は、清水の方法（感染症学雑誌、第７１巻、第６号、ｐ．５２２−５２６）で実施した。
（３）簡易メンブレンアッセイ法とＲＴ−ＰＣＲ法の比較
本発明の簡易メンブレンアッセイ法と上述したＲＴ−ＰＣＲ法の判定結果を表１及び表２に示す。ＲＴ−ＰＣＲ法は感度及び特異性が極めて高い測定法であることが知られており、ＲＴ−ＰＣＲ法の結果と異なる判定となった場合に偽陽性または偽陰性とみなした。
表１ 浮遊液Ａを用いた場合の比較（実施例１）
※表内の数値は該当する検体数を示す。
表２ 浮遊液Ｂを用いた場合の比較（比較例１）
※表内の数値は該当する検体数を示す。
浮遊液Ａを用いた場合（実施例１）にはＲＴ−ＰＣＲ法による判定と比較すると偽陰性発生率は４．８％（６２検体中３検体）であったが、偽陽性は見られなかった。
浮遊液Ｂを用いた場合（比較例１）は偽陰性発生率は４．８％（６２検体中３検体）で浮遊液Ａを用いた場合と変わらなかったが、偽陽性発生率が１２．９％（６２検体中８検体）であった（下線部分）。
浮遊液Ｂを用いた場合（比較例１）は偽陰性発生率は４．８％（６２検体中３検体）で浮遊液Ａを用いた場合と変わらなかったが、偽陽性発生率が１２．９％（６２検体中８検体）であった（下線部分）。
［実施例２、比較例２］
ラテラルフロー式イムノクロマトアッセイによるインフルエンザウイルスの検出
１．モノクローナル抗体の作製
（１）抗Ａ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体（マウス）の作製
［実施例１、比較例１］１．（１）記載の方法と同様に作製した。
（２）抗Ｂ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体（マウス）
［実施例１、比較例１］１．（２）記載の方法と同様に作製した。
２．標識抗インフルエンザ抗体の作製
（１）金コロイド標識抗Ａ型インフルエンザ抗体の調製
［実施例１、比較例１］２．（１）記載の方法と同様に作製した。
（２）金コロイド標識抗Ｂ型インフルエンザ抗体の調製
［実施例１、比較例１］２．（２）記載の方法と同様に作製した。
ラテラルフロー式イムノクロマトアッセイによるインフルエンザウイルスの検出
１．モノクローナル抗体の作製
（１）抗Ａ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体（マウス）の作製
［実施例１、比較例１］１．（１）記載の方法と同様に作製した。
（２）抗Ｂ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体（マウス）
［実施例１、比較例１］１．（２）記載の方法と同様に作製した。
２．標識抗インフルエンザ抗体の作製
（１）金コロイド標識抗Ａ型インフルエンザ抗体の調製
［実施例１、比較例１］２．（１）記載の方法と同様に作製した。
（２）金コロイド標識抗Ｂ型インフルエンザ抗体の調製
［実施例１、比較例１］２．（２）記載の方法と同様に作製した。
３．インフルエンザウイルス検出用ラテラルフロー式メンブレンアッセイ装置の作製
インフルエンザウイルス検出用ラテラルフロー式メンブレンアッセイ装置のメンブレンｆは、孔径５μｍを有するニトロセルロースメンブレン（ＰｕｒａＢｉｎｄ、ワットマン社製、サイズ５×５０ｍｍ、厚さ２００μｍ）から成り、その一端（この端を下流端とする）から１５ｍｍ離れたｇの位置に精製抗Ｂ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体のうち標識に用いなかったもの１ｍｇ／ｍｌが含まれる溶液２．０μＬをライン状（幅１．０ｍｍ）に塗布し、２０ｍｍ離れたｈの位置に精製抗Ａ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体のうち標識に用いなかったもの０．２ｍｇ／ｍｌが含まれる溶液２．０μＬを、ライン状（幅１．０ｍｍ）に塗布した。その際、固相抗体を希釈する緩衝液には１０ｍＭクエン酸緩衝液（ｐＨ４．０）を用い、固相化する直前に０．２２μｍろ過を行った。塗布後、４５℃の乾燥室で４０分間乾燥を行った。
次に、部材を固定し、かつ強度を増すため、メンブレンの抗体塗布面の反対側にプラスチック製バッキングシートｉ（ＢｉｏＤｏｔ社製）を接着した。
次に、セルロース／ガラス繊維製パッド（ＷＦ１．５、ワットマン社製、７ｍｍ×１０ｍｍ、厚さ１．４ｍｍ）に、２．（１）で作製した標識抗Ａ型インフルエンザ抗体及び２．（２）で作製した標識抗Ｂ型インフルエンザ抗体をそれぞれ、２μｇ／ｍＬ濃度で１２μＬずつ滴下し、４５℃の乾燥室で４０分間乾燥を行った。このパッドを、メンブレンの下流端から２５ｍｍ離れた位置に貼って試料滴下パッドｄとした。
次に、メンブレンの下流端側５ｍｍが重なるようにセルロース／ガラス繊維製パッド（ＷＦ１．５、ワットマン社製、１０ｍｍ×２０ｍｍ、厚さ１．５ｍｍ）を貼って吸収パッドｅとした。
インフルエンザウイルス検出用ラテラルフロー式メンブレンアッセイ装置のメンブレンｆは、孔径５μｍを有するニトロセルロースメンブレン（ＰｕｒａＢｉｎｄ、ワットマン社製、サイズ５×５０ｍｍ、厚さ２００μｍ）から成り、その一端（この端を下流端とする）から１５ｍｍ離れたｇの位置に精製抗Ｂ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体のうち標識に用いなかったもの１ｍｇ／ｍｌが含まれる溶液２．０μＬをライン状（幅１．０ｍｍ）に塗布し、２０ｍｍ離れたｈの位置に精製抗Ａ型インフルエンザウイルスＮＰモノクローナル抗体のうち標識に用いなかったもの０．２ｍｇ／ｍｌが含まれる溶液２．０μＬを、ライン状（幅１．０ｍｍ）に塗布した。その際、固相抗体を希釈する緩衝液には１０ｍＭクエン酸緩衝液（ｐＨ４．０）を用い、固相化する直前に０．２２μｍろ過を行った。塗布後、４５℃の乾燥室で４０分間乾燥を行った。
次に、部材を固定し、かつ強度を増すため、メンブレンの抗体塗布面の反対側にプラスチック製バッキングシートｉ（ＢｉｏＤｏｔ社製）を接着した。
次に、セルロース／ガラス繊維製パッド（ＷＦ１．５、ワットマン社製、７ｍｍ×１０ｍｍ、厚さ１．４ｍｍ）に、２．（１）で作製した標識抗Ａ型インフルエンザ抗体及び２．（２）で作製した標識抗Ｂ型インフルエンザ抗体をそれぞれ、２μｇ／ｍＬ濃度で１２μＬずつ滴下し、４５℃の乾燥室で４０分間乾燥を行った。このパッドを、メンブレンの下流端から２５ｍｍ離れた位置に貼って試料滴下パッドｄとした。
次に、メンブレンの下流端側５ｍｍが重なるようにセルロース／ガラス繊維製パッド（ＷＦ１．５、ワットマン社製、１０ｍｍ×２０ｍｍ、厚さ１．５ｍｍ）を貼って吸収パッドｅとした。
４．インフルエンザウイルスの検出
（１）メンブレンアッセイ法による検出
臨床的にインフルエンザウイルス感染が疑われる患者５３人の鼻腔より一人の患者につき２本ずつ滅菌綿棒を用いて拭い液を採取し、１本をチューブに入れた、実施例１で使用した浮遊液Ａ：０．８ｍＬ中に、もう１本をチューブに入れた、比較例１で使用した浮遊液Ｂ：０．８ｍＬ中に浮遊し、試験用試料を作製した。試料をそれぞれよく懸濁させた後、それぞれのチューブの先端に孔径０．４５μｍのＰＶＤＦメンブレン及び保留粒子径０．６μｍのガラス濾紙メンブレンを積層してなるフィルターを有するろ過用ノズルを装着した。
検体試料をろ過用ノズルを通過して濾過した後、３．で作成したメンブレンアッセイ装置の試料滴下パッドｄに１５０μＬ滴下した。１０分後、ｊ及びｋの位置を鉛直上方から観察し、ｊの位置にのみ発色が認められた場合にはＢ型インフルエンザウイルス陽性、ｋの位置にのみ発色が認められた場合にはＡ型インフルエンザウイルス陽性、ｊ及びｋの両方の位置に発色が認められた場合にはＡ型及びＢ型インフルエンザウイルス陽性、ｊ、ｋの位置に両方とも発色が認められない場合は陰性と判定した。
（１）メンブレンアッセイ法による検出
臨床的にインフルエンザウイルス感染が疑われる患者５３人の鼻腔より一人の患者につき２本ずつ滅菌綿棒を用いて拭い液を採取し、１本をチューブに入れた、実施例１で使用した浮遊液Ａ：０．８ｍＬ中に、もう１本をチューブに入れた、比較例１で使用した浮遊液Ｂ：０．８ｍＬ中に浮遊し、試験用試料を作製した。試料をそれぞれよく懸濁させた後、それぞれのチューブの先端に孔径０．４５μｍのＰＶＤＦメンブレン及び保留粒子径０．６μｍのガラス濾紙メンブレンを積層してなるフィルターを有するろ過用ノズルを装着した。
検体試料をろ過用ノズルを通過して濾過した後、３．で作成したメンブレンアッセイ装置の試料滴下パッドｄに１５０μＬ滴下した。１０分後、ｊ及びｋの位置を鉛直上方から観察し、ｊの位置にのみ発色が認められた場合にはＢ型インフルエンザウイルス陽性、ｋの位置にのみ発色が認められた場合にはＡ型インフルエンザウイルス陽性、ｊ及びｋの両方の位置に発色が認められた場合にはＡ型及びＢ型インフルエンザウイルス陽性、ｊ、ｋの位置に両方とも発色が認められない場合は陰性と判定した。
（２）ＲＴ−ＰＣＲ法による検出
４−（１）で作製した試験用試料の残りを用いてＲＴ−ＰＣＲ法により検体中にインフルエンザウイルス遺伝子が存在するかを確認した。ＲＴ−ＰＣＲ法は、前述の清水の方法で実施した。
（３）メンブレンアッセイ法とＲＴ−ＰＣＲ法の比較
本発明のメンブレンアッセイ法と上述したＲＴ−ＰＣＲ法の判定結果を表３及び表４に示す。ＲＴ−ＰＣＲ法の結果と異なる判定となった場合に偽陽性または偽陰性とみなした。
４−（１）で作製した試験用試料の残りを用いてＲＴ−ＰＣＲ法により検体中にインフルエンザウイルス遺伝子が存在するかを確認した。ＲＴ−ＰＣＲ法は、前述の清水の方法で実施した。
（３）メンブレンアッセイ法とＲＴ−ＰＣＲ法の比較
本発明のメンブレンアッセイ法と上述したＲＴ−ＰＣＲ法の判定結果を表３及び表４に示す。ＲＴ−ＰＣＲ法の結果と異なる判定となった場合に偽陽性または偽陰性とみなした。
表３ 浮遊液Ａを用いた場合（実施例２）の比較
※表内の数値は該当する検体数を示す。
表４ 浮遊液Ｂを用いた場合（比較例２）の比較
※表内の数値は該当する検体数を示す。
浮遊液Ａを用いた場合（実施例２）にはＲＴ−ＰＣＲ法による判定と比較すると偽陰性発生率は５．７％（５３検体中３検体）であったが、偽陽性は見られなかった。
浮遊液Ｂを用いた場合（比較例２）は偽陰性発生率は５．７％（５３検体中３検体）で浮遊液Ａを用いた場合と変わらなかったが、偽陽性発生率が１１．３％（５３検体中６検体）であった（下線部分）。
浮遊液Ｂを用いた場合（比較例２）は偽陰性発生率は５．７％（５３検体中３検体）で浮遊液Ａを用いた場合と変わらなかったが、偽陽性発生率が１１．３％（５３検体中６検体）であった（下線部分）。
Claims (12)
- コロイド物質を標識物質として使用し、被検試料中の被測定物を検出するアッセイ法に用いる検体浮遊液組成物であって、界面活性剤を含み、ｐＨが３〜８であることを特徴とする検体浮遊液組成物。
- さらに塩基性アミノ酸を含む請求項１記載の検体浮遊液組成物。
- 塩基性アミノ酸がアルギニン、リジン、及びヒスチジンからなる群から選ばれる少なくとも１種であり、その濃度が０．１〜３０（Ｗ／Ｖ）％である請求項２記載の検体浮遊液組成物。
- 界面活性剤の濃度が０．０１〜２０（Ｗ／Ｖ）％である請求項１〜３のいずれか１項記載の検体浮遊液組成物。
- 界面活性剤が非イオン性界面活性剤である請求項１〜４のいずれか１項記載の検体浮遊液組成物。
- さらに２００ｍＭ未満の無機塩類を含む請求項１〜５のいずれか１項記載の検体浮遊液組成物。
- アッセイ法がイムノアッセイ法である請求項１〜６のいずれか１項記載の検体浮遊液組成物。
- アッセイ法が被測定物と特異的に結合する物質を感作した担体を用いる請求項１〜７のいずれか１項記載の検体浮遊液組成物。
- アッセイ法がメンブレンアッセイ法である請求項１〜８のいずれか１項記載の検体浮遊液組成物。
- 被測定物がウイルスである請求項１〜９のいずれか１項記載の検体浮遊液組成物。
- 請求項１〜１０のいずれか１項記載の検体浮遊液組成物を備えた被測定物の検出キット。
- 請求項１〜１０のいずれか１項記載の検体浮遊液組成物又は請求項１１記載の検出キットを用いることを特徴とする被測定物の検出方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2004270265A JP2006084351A (ja) | 2004-09-16 | 2004-09-16 | 検体浮遊液組成物、キット及び検査方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2004270265A JP2006084351A (ja) | 2004-09-16 | 2004-09-16 | 検体浮遊液組成物、キット及び検査方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2006084351A true JP2006084351A (ja) | 2006-03-30 |
Family
ID=36162975
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2004270265A Pending JP2006084351A (ja) | 2004-09-16 | 2004-09-16 | 検体浮遊液組成物、キット及び検査方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP2006084351A (ja) |
Cited By (9)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2008014752A (ja) * | 2006-07-05 | 2008-01-24 | Denka Seiken Co Ltd | 簡易イムノアッセイ用検体浮遊液およびアッセイ方法 |
| WO2011105537A1 (ja) * | 2010-02-26 | 2011-09-01 | 積水メディカル株式会社 | 偽陽性反応を抑制する検体抽出液 |
| WO2012018057A1 (ja) | 2010-08-03 | 2012-02-09 | 田中貴金属工業株式会社 | イムノクロマトグラフィー用試薬組成物およびそれを用いた測定方法 |
| JP2013533487A (ja) * | 2010-07-20 | 2013-08-22 | ベクトン・ディキンソン・アンド・カンパニー | 医療現場における迅速検査結果を試験所ベースの方法と関連づける方法 |
| JP2014167439A (ja) * | 2013-02-28 | 2014-09-11 | Asahi Kasei Corp | マイコプラズマ・ニューモニアの検出方法 |
| WO2015037635A1 (ja) * | 2013-09-10 | 2015-03-19 | デンカ生研株式会社 | インフルエンザウイルスの免疫測定における検体処理方法及び免疫測定法 |
| JP2015184125A (ja) * | 2014-03-24 | 2015-10-22 | 東ソー株式会社 | 非特異的反応を抑制した免疫学的測定方法 |
| US9958466B2 (en) | 2012-04-13 | 2018-05-01 | Becton, Dickinson And Company | Reflex testing of samples using residual materials from a prior test |
| CN110927386A (zh) * | 2019-11-05 | 2020-03-27 | 北京科跃中楷生物技术有限公司 | C-反应蛋白胶体金检测试剂卡及其制备方法 |
Citations (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH02138869A (ja) * | 1987-12-21 | 1990-05-28 | Syntex Usa Inc | 抗原検定法 |
| WO2002010744A1 (fr) * | 2000-08-01 | 2002-02-07 | International Reagents Corporation | Procede pour pretraiter un echantillon |
| JP2003279577A (ja) * | 2002-03-26 | 2003-10-02 | Denka Seiken Co Ltd | フロースルー式検査法用組成物、これを用いたキット及び検査法 |
| JP2003344408A (ja) * | 2002-05-27 | 2003-12-03 | Denka Seiken Co Ltd | フロースルーアッセイ方法、キット及び装置 |
| JP2004245831A (ja) * | 2003-01-21 | 2004-09-02 | Denka Seiken Co Ltd | メンブレンアッセイ法 |
-
2004
- 2004-09-16 JP JP2004270265A patent/JP2006084351A/ja active Pending
Patent Citations (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH02138869A (ja) * | 1987-12-21 | 1990-05-28 | Syntex Usa Inc | 抗原検定法 |
| WO2002010744A1 (fr) * | 2000-08-01 | 2002-02-07 | International Reagents Corporation | Procede pour pretraiter un echantillon |
| JP2003279577A (ja) * | 2002-03-26 | 2003-10-02 | Denka Seiken Co Ltd | フロースルー式検査法用組成物、これを用いたキット及び検査法 |
| JP2003344408A (ja) * | 2002-05-27 | 2003-12-03 | Denka Seiken Co Ltd | フロースルーアッセイ方法、キット及び装置 |
| JP2004245831A (ja) * | 2003-01-21 | 2004-09-02 | Denka Seiken Co Ltd | メンブレンアッセイ法 |
Cited By (20)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2008014752A (ja) * | 2006-07-05 | 2008-01-24 | Denka Seiken Co Ltd | 簡易イムノアッセイ用検体浮遊液およびアッセイ方法 |
| WO2011105537A1 (ja) * | 2010-02-26 | 2011-09-01 | 積水メディカル株式会社 | 偽陽性反応を抑制する検体抽出液 |
| JP2012073270A (ja) * | 2010-02-26 | 2012-04-12 | Sekisui Medical Co Ltd | 偽陽性反応を抑制する検体抽出液 |
| JP4918627B2 (ja) * | 2010-02-26 | 2012-04-18 | 積水メディカル株式会社 | 偽陽性反応を抑制する検体抽出液 |
| JP2016029384A (ja) * | 2010-02-26 | 2016-03-03 | 積水メディカル株式会社 | 偽陽性反応を抑制する検体抽出液 |
| US9945855B2 (en) | 2010-07-20 | 2018-04-17 | Becton, Dickinson And Company | Method for linking point of care rapid diagnostic testing results to laboratory-based methods |
| JP2013533487A (ja) * | 2010-07-20 | 2013-08-22 | ベクトン・ディキンソン・アンド・カンパニー | 医療現場における迅速検査結果を試験所ベースの方法と関連づける方法 |
| WO2012018057A1 (ja) | 2010-08-03 | 2012-02-09 | 田中貴金属工業株式会社 | イムノクロマトグラフィー用試薬組成物およびそれを用いた測定方法 |
| US11835533B2 (en) | 2012-04-13 | 2023-12-05 | Becton, Dickinson And Company | Reflex testing of samples using residual materials from a prior test |
| US10782309B2 (en) | 2012-04-13 | 2020-09-22 | Becton, Dickinson And Company | Reflex testing of samples using residual materials from a prior test |
| US9958466B2 (en) | 2012-04-13 | 2018-05-01 | Becton, Dickinson And Company | Reflex testing of samples using residual materials from a prior test |
| JP2014167439A (ja) * | 2013-02-28 | 2014-09-11 | Asahi Kasei Corp | マイコプラズマ・ニューモニアの検出方法 |
| KR20160051817A (ko) * | 2013-09-10 | 2016-05-11 | 덴카 세이켄 가부시키가이샤 | 인플루엔자 바이러스의 면역 측정에 있어서의 검체 처리 방법 및 면역 측정법 |
| JPWO2015037635A1 (ja) * | 2013-09-10 | 2017-03-02 | デンカ生研株式会社 | インフルエンザウイルスの免疫測定における検体処理方法及び免疫測定法 |
| US10527618B2 (en) | 2013-09-10 | 2020-01-07 | Denka Seiken Co., Ltd. | Sample processing method for influenza virus immunoassay, and immunoassay method |
| KR102301851B1 (ko) * | 2013-09-10 | 2021-09-14 | 덴카 주식회사 | 인플루엔자 바이러스의 면역 측정에 있어서의 검체 처리 방법 및 면역 측정법 |
| WO2015037635A1 (ja) * | 2013-09-10 | 2015-03-19 | デンカ生研株式会社 | インフルエンザウイルスの免疫測定における検体処理方法及び免疫測定法 |
| JP2015184125A (ja) * | 2014-03-24 | 2015-10-22 | 東ソー株式会社 | 非特異的反応を抑制した免疫学的測定方法 |
| CN110927386A (zh) * | 2019-11-05 | 2020-03-27 | 北京科跃中楷生物技术有限公司 | C-反应蛋白胶体金检测试剂卡及其制备方法 |
| CN110927386B (zh) * | 2019-11-05 | 2022-12-13 | 北京科跃中楷生物技术有限公司 | C-反应蛋白胶体金检测试剂卡及其制备方法 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US8404479B2 (en) | Simple membrane assay method and kit | |
| JP4800739B2 (ja) | アッセイ用媒体及びアッセイ方法 | |
| JP2008014751A (ja) | 着色ラテックス粒子を用いるメンブレンアッセイ法およびキット | |
| JP4286157B2 (ja) | メンブレンアッセイ法 | |
| JP2008268043A (ja) | 検査デバイスの検出部の形成方法及びラテラルフロー免疫測定用検査デバイス | |
| JP4976068B2 (ja) | 簡易イムノアッセイ用検体浮遊液およびアッセイ方法 | |
| WO2006073153A1 (ja) | 複数の被検出物を検出する簡易アッセイ法 | |
| JP4115728B2 (ja) | フロースルー式検査法用組成物、これを用いたキット及び検査法 | |
| JP2006084351A (ja) | 検体浮遊液組成物、キット及び検査方法 | |
| WO2006043614A1 (ja) | メンブランエンザイムイムノアッセイ法 | |
| JP3848599B2 (ja) | 簡易メンブレンアッセイ法及びキット | |
| JP2014098715A (ja) | 着色ラテックス粒子を用いるメンブレンアッセイ法およびキット | |
| WO2022054821A1 (ja) | 偽陰性の抑制により特異性を改善した検査試薬 | |
| TW202219509A (zh) | 改善訊號降低之檢查試劑 | |
| JP6405339B2 (ja) | 簡易メンブレンアッセイ法及びキット | |
| JP2007121204A (ja) | 塩基性多糖類を含有する免疫測定法用検体処理液組成物及びキット、並びにこれらを用いる免疫測定法 | |
| JP5911404B2 (ja) | 簡易メンブレンアッセイ法及びキット | |
| JP2009002961A (ja) | 簡易メンブレンアッセイ法及びキット | |
| JP2012083370A (ja) | 着色ラテックス粒子を用いるメンブレンアッセイ法およびキット | |
| JP6405269B2 (ja) | 簡易メンブレンアッセイ法及びキット | |
| WO2022054822A1 (ja) | 偽陽性の抑制により特異性を改善した検査キット | |
| JP4276898B2 (ja) | メンブレンアッセイ法 | |
| JP2020046436A (ja) | 簡易メンブレンアッセイ法及びキット | |
| JP2010044094A (ja) | 簡易メンブレンアッセイ法及びキット | |
| JP2006215044A (ja) | 簡易メンブレンアッセイ法及びキット |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A621 | Written request for application examination |
Effective date: 20070914 Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 |
|
| A977 | Report on retrieval |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A971007 Effective date: 20091008 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Effective date: 20091019 Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 |
|
| A521 | Written amendment |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20091218 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Effective date: 20100823 Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Effective date: 20110704 Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 |
|
| A521 | Written amendment |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20110824 |
|
| A02 | Decision of refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A02 Effective date: 20120717 |