WO2011155536A1

WO2011155536A1 - 蛋白質固定化用担体、固定化蛋白質及びそれらの製造方法

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Publication number: WO2011155536A1
Application number: PCT/JP2011/063160
Authority: WO
Inventors: 達朗角田; 貴幸奈良; 世吾小野; 千里関川; 水上　富士夫; 秀蔵小島; 直樹田原; 秀彰冨樫; 美紀江上
Original assignee: 日揮触媒化成株式会社; 独立行政法人産業技術総合研究所; 日揮株式会社
Priority date: 2010-06-09
Filing date: 2011-06-08
Publication date: 2011-12-15
Also published as: US20130109072A1; JP5734106B2; JP2012016351A; TW201204829A; EP2592140A4; EP2592140A1; TWI494429B

Abstract

　本発明は、多様な分子サイズの酵素の固定化に対応し、多孔質シリカ粒子の表面シラノール基の改質により、多様な酵素の固定化に対応するとともに、対応する非固定化酵素と同等の活性を示し且つ繰り返し使用にも耐えうる固定化酵素の設計を可能とする酵素固定化用担体及びその製造方法を提供することを課題とする。本発明は、内部に粒子間空隙構造を有する多孔質シリカ粒子からなり、該多孔質シリカ粒子が、特定の平均粒子径、比表面積、細孔容積、細孔径分布および空隙率を有し且つ表面に有機基又はアミノ基を含む置換基を有するものであることを特徴とする蛋白質固定化用担体、並びに、該蛋白質固定化用担体に蛋白質を固定化してなる固定化蛋白質を提供する。

Description

蛋白質固定化用担体、固定化蛋白質及びそれらの製造方法

　本発明は、メソ孔を有する多孔質シリカ粒子の表面に所定の有機基を有してなる蛋白質固定化用担体、該蛋白質固定化用担体の製造方法、該蛋白質固定化用担体に蛋白質を固定化してなる固定化蛋白質及び該固定化蛋白質の製造方法に関するものである。

　酵素による反応は、無機触媒と異なる基質特異性や立体特異性を示すことから、合成反応ルートの簡略化に寄与することが期待されている。しかしながら、酵素は、高コストで反復利用が容易ではない。また、必要な活性を維持できる環境（温度範囲又は対象となる基質の種類）が狭いといった問題が知られている。既に、担体物質への酵素の固定化によって、前記問題の解決が図れることが報告されている。

　しかし、酵素は基質特異性が高いため、反応毎に適した酵素を選択する必要がある。また、酵素が固定化する傾向は担体構造により影響されるため、酵素ひとつごとに担体への固定化方法又は新たな担体を開発する必要がある。

　これらの課題を解決する例として、界面活性剤等を用いて層状シリカの層構造を変化させることにより得られる多孔質シリカ粒子（ＦＳＭ）による内包型固体化法が実験室レベルにおいて報告されているが、機械的強度が弱く、工業化は困難であった。そこで、工業化が可能でＦＳＭ同様に様々な酵素を内包的に固定化できる担体が求められていた。

　一般に、酵素を用いたバイオマスの分解や、繊維、食品製造等の技術分野においては、従来、酵素を水に溶解させて用いる操作をすることが多い。しかし、この操作法では、蛋白質である酵素の溶解度に限界があり、ある一定濃度以上の酵素が存在すると、凝集を起こし、活性を失うことがしばしばである。一方、酵素反応を用いた反応系では、酵素の存在量が多いほど、反応速度、ひいては生成物の生産速度を高められることが予想されている。

　その一方で、多孔質シリカ粒子は、２～５０ｎｍの直径の細孔を有することを特徴としており、その細孔内部に酵素の導入又は酵素の固定が可能である。したがって、多孔質シリカ粒子は、数ｎｍから十数ｎｍの大きさを有する酵素、すなわち蛋白質の吸着又は固定に対して有効な表面を多く有している有望な担体材料と見なすことができる。

　多孔質シリカ粒子の例としては、例えば、特許文献１に直径が２ｍｍ以下の球体よりなり，多数の細孔を有するシリカ系多孔体であって，上記細孔の中心細孔直径Ｄは１～１０ｎｍの範囲内にあり，かつＤ－２．５～Ｄ＋２．５ｎｍの範囲内の細孔直径を有する細孔の合計細孔容積は全細孔容積の６０％以上であることを特徴とする球状メソ多孔体に関する発明が開示されている。

　特許文献２には、シリカを主成分とする平板状粒子の凝集体からなり、１２００ｍ²／ｇ以上の比表面積を有することを特徴とするメソ細孔無機多孔体に関する発明が開示されている。該メソ細孔無機多孔体の好適な条件として、比表面積が１４００ｍ²／ｇ以上、該平板状粒子のアスペクト比が５～１００の範囲内、該メソ細孔の細孔径分布のピーク半値幅がピーク細孔径（ｄ₀）の±３０％以内が挙げられている。

　また、特許文献３には、１ｎｍ以上の格子面間隔（ｄ）に対応する回折角（２θ／°）の範囲に１つ以上の回折線を有するＸ線回折パターンを示す多孔質シリカ球状一次粒子を集合してなる多孔質シリカ凝集粒子であって、前記多孔質シリカ球状一次粒子内に細孔を形成するとともに、これらの多孔質シリカ球状一次粒子間に空隙層を形成してなることを特徴とする多孔質シリカ凝集粒子に関する発明が開示されている。この発明は、特許文献２と同様に、シリカ微粒子（一次粒子）が凝集して多孔質シリカ粒子を形成している点で共通するものといえる。

　粒子の凝集体からなる多孔質粒子からなるメソ多孔体の例として、この他に特許文献４には、材質がアルミナではあるが、中心細孔径がメソ細孔領域の２～１００ｎｍの範囲内にあるアルミナ系多孔体であり、該細孔の分布は、メソ細孔容積（細孔径２～１００ｎｍの領域にある細孔の容積）の７０％以上が、メソ細孔領域に存在する細孔の中心細孔径の±５ｎｍ以内の領域にあり、細孔の少なくとも一部は、三次元の網目状に連通し、該連通経路がランダムで三次元網目構造を有し、かつ実質的に繊維状構造を有しない酸化物多孔体であり、しかも、該酸化物多孔体は、アスペクト比が３以下の粒子が凝集してなる酸化物多孔体であって、該粒子間の間隙に細孔を有することを特徴とする酸化物多孔体を開示しており、その用途のひとつとして酵素用担体がある旨が記載されている。

　多孔質シリカ粒子を酵素の固定化のための担体として用いた場合、高密度に存在する酵素の凝集を防ぐことが可能となり、活性を有する酵素の高集積化が可能となると考えられる。このことは、酵素を用いた反応系において、溶液においては凝集を起こしてしまう量を越えて、酵素を存在させることが可能になることが期待される。

　担体に酵素を固定化して用いることは、従前より行われてきたことであるが、その目的は、酵素の分離、及び再利用に関するものがほとんどである。例えば、従来の酵素を用いたバイオマスの分解や、繊維、食品製造等の技術分野においては、酵素を水に溶解させて用いる操作をすることが多く、この操作法では、生成物と酵素の分離操作が必要不可欠であり、また、分離された酵素は廃棄されることが一般的である。この酵素の分離工程を省く目的で、酵素を担体に固定化して用いるための酵素の固定化技術が盛んに研究、開発されている。

　酵素の固定化法としては、例えば、樹脂ビーズ等に直接固定化する方法や、ポリマーの被覆によるマイクロカプセル化、酵素タンパク質表面を修飾して安定化させる表面修飾法等が提案されている。しかしながら、これらの方法は、酵素が固定化担体の表面上に固定されているだけで、酵素の固定化に対する担体の表面積が大きなものではなく、酵素の高集積化や固定化による酵素機能の向上を目指したものではないのが実情である。

　酵素の再利用を目的とした酵素の固定化も検討されている。この場合も、分離工程の排除を目的とした方法と大きな差はなく、各種担体表面への単純な固定を行っているものが多い。高分子発泡体に固定化する方法も用いられており、この場合は、発泡体を圧縮することにより、生成物を含む溶液を分離すること等の操作が行われている。

　酵素の固定化法の開発により、酵素を用いた生産プロセスにおいて、反応後の酵素の分離回収や、その再利用が可能となり、生産プロセスの効率化に貢献していることは事実である。しかし、酵素の固定化による、一層の酵素の高集積化や酵素機能そのものの向上が求められている。

　特許文献５には、シリカ系メソ多孔体の細孔内部にヘム蛋白質を備えるヘム蛋白質内包複合体であって、（１）前記ヘム蛋白質は、前記細孔内部で多量体を形成している、（２）該多量体は、高密度集積した蛋白質として、前記シリカ系メソ多孔体の細孔内壁に吸着されていることを特徴とするヘム蛋白質複合体に関する発明が開示されている。この発明は、酵素、すなわち蛋白質のシリカ系メソ多孔体の細孔内への固定による蛋白質の熱安定性向上や有機溶媒耐性の向上を見出したものである。

　シリカ系メソ多孔体としては、一般に、ＭＣＭ、ＦＳＭ、ＳＢＡタイプ等の材料系が知られている。これらのシリカ系メソ多孔体は、２～５０ｎｍの直径の細孔を有することを特徴としている。酵素、すなわちタンパク質は、数ｎｍから十数ｎｍの大きさを有しており、シリカ系メソ多孔体の有する細孔径と同程度の大きさの分布を有している。このことから、シリカ系メソ多孔体を酵素の固定化担体として用いた場合、酵素を表面のみならず、細孔内にも固定化することができると考えられる。

　シリカ系メソ多孔体は、その酵素の固定化に対する有効な表面積が、従来の技術によるものより極めて大きく、大量の酵素を固定化することができる。例えば、特許文献６に記載されているように、シリカ系メソ多孔体－セルロース乃至ヘミセルロースの加水分解酵素複合体においても、その細孔内に酵素を固定化することが可能であり、また、集積化することも可能である。

　酵素等の蛋白質を吸着させるためのシリカ径メソ多孔体として、例えば、特許文献７に、平均粒径が０．０１～３μｍであり、中心細孔直径が１ｎｍ以上の放射状細孔を有する球状シリカ系メソ多孔体であって、前記球状シリカ系メソ多孔体がシアノ基又はカルボキシル基を含有する有機官能基で修飾されていることを特徴とする球状シリカ系メソ多孔体に関する発明が開示されており、このような有機修飾されたシリカ径メソ多孔体は、塩基性色素、蛋白質、金属等に高度な吸着特性を示す旨の記載がある。

　特許文献８には、水銀ポロシメーターで測定した最頻細孔径が４５～７０オングストローム、平均細孔径が５０～１００オングストローム、最頻細孔径の±１０％の範囲に存在する細孔の容積が０．４０ｍｌ／ｇ以上であることを特徴とする多孔質球状シリカの発明が開示されている。また、当該多孔質状シリカは、ＢＥＴ比表面積が４００ｍ²／ｇ以上、細孔容積が０．９ｍｌ／ｇ以下である多孔質球状シリカ前駆体を６００℃以上の温度で焼成することによって製造できることが開示されている。当該多孔質状シリカは、触媒、酵素又は微生物固定化するための固定化担体として有用であることが記載されている。

　特許文献９には、澱粉の加水分解を行う酵素と該澱粉の加水分解酵素を固定化させたシリカ系メソ多孔体との複合体であって、シリカ系メソ多孔体へ固定化された酵素が澱粉の加水分解を触媒する活性を有していることを特徴とするシリカ系メソ多孔体－澱粉の加水分解酵素複合体に関する発明が開示されている。該シリカ系メソ多孔体として、ＭＣＭ、ＦＳＭ、又はＳＢＡタイプのシリカ系メソ多孔体が、好適であること、シリカ系メソ多孔体の特徴として、細孔直径２～５０ｎｍ、全細孔容積０．１～３．５ｍｌ／ｇの範囲及び比表面積２００～１５００ｍ²／ｇの範囲が好適であることが記載されている。

　特許文献１０には、多孔質シリカ粒子多孔体への酵素の固定化方法として、酵素直径の１．２倍以上の内径を備え構造安定性を有する多孔質シリカ粒子多孔体における細孔構造ユニットに酵素を固定化した後、前記構造ユニットの開口部及び／又は内部空隙にゾルゲル法によるゲル化物質の網状構造を形成して固定化酵素の安定性を向上させることを特徴とする酵素の固定化方法に関する発明が開示されている。

　特許文献１１には、酸化酵素に対して、その酵素機能に関与する内部構造を不安定な特定アミノ酸の変換等の手段により安定化させ、かつ、該酸化酵素を構造安定性を備えた所定の内径を有する多孔質シリカ粒子多孔体における細孔構造ユニット中に固定化して、酵素表面をも安定化させてなる酵素の固定化方法に関する発明が開示されている。

特開平１０－３２８５５８号公報特開２００６－２３２５９４号公報特開２００９－７３６８１号公報特開２００１－１７０５００号公報特開２００７－５１０７６号公報特開２００９－１２５００６号公報特開２００８－２４５６７号公報特開２００７－７６９４１号公報特開２００９－１５３４４８号公報特開２００１－１７８４５７号公報特開２００２－２６２８６３号公報

　従来技術に係る多孔質シリカ粒子担体に酵素の固定化を図る場合、固定化される酵素の種類、分子の大きさ及び／又は等電点に応じて、適した特徴（細孔径分布又は細孔径など）を有する多孔質シリカ粒子を用いる必要があった。対象とする酵素の固定化に適さない多孔質シリカ粒子を担体に用いた場合、多孔質シリカ粒子担体からの酵素の脱離により、酵素の繰り返し利用に支障が生じることがあった。また、そのような酵素の脱離が生じない場合でも、酵素としての性能（(i) 基質との反応温度に対する耐性、(ii) 基質に対する反応活性、(iii) 基質との反応時に用いる溶媒に対する耐性、(iv) 基質との反応に関する反復利用性）を充分に示すことができない場合があった。

　また、特定の酵素に対して、固定化に適した多孔質シリカ粒子担体をその都度、設計し開発することは、大きな負担となっていた。

　本発明に係る酵素固定化用担体は、前記問題点を解決するために開発されたものである。具体的には次の課題を解決したものである。

　（１）酵素固定化用担体の開発にあたり、酵素の種類毎に担体の基本構成を改めることなく、原料となるシリカ粒子の粒径等の選択又は表面処理段階の調整等で対応が可能となるような酵素固定化用担体及びその製造方法を提供することを課題とする。より具体的には、分子サイズが異なり、等電点も異なる多様な酵素の固定化に適した酵素固定化用担体を提供することを目的として、多孔質シリカ粒子の細孔径、細孔径分布、細孔容積又は細孔構造を最適化し、多様な分子サイズの酵素の固定化に対応し、多孔質シリカ粒子の表面シラノール基の改質により、多様な酵素の固定化に対応することを課題とする。

　（２）酵素固定化用担体の製造方法及び固定化酵素の製造方法（酵素の固定化方法）として、工業的に量産が可能な方法を提供することを課題とする。

　（３）酵素固定化用担体に固定化された酵素の基質に対する反応活性が、固定化前の反応活性に較べて、同等又はそれ以上となることを目的として、担体への酵素の固定化により、反応活性が低下する主原因となる酵素の立体構造の変化を抑制し、また、固定化酵素の反応活性向上に必要とされる微小な酵素反応空間を確保できるような酵素固定化用担体を設計することを課題とする。

　（４）固定化酵素を繰り返し使用しても、反応活性が実用的な水準を維持し、繰り返し使用に耐え得る機械強度を示すことを目的として、酵素固定化用担体からの酵素の脱離を抑制することを目的とする多孔質シリカ粒子担体の表面処理と、固定化酵素の繰り返し使用で、劣化又は崩壊し難い多孔質シリカ粒子の構造を設計することを課題とする。

　（５）固定化酵素と基質が反応する時の反応温度又は反応に用いる溶媒に対する耐性に優れた固定化酵素を提供することを課題とする。

　本発明の課題は、下記［１］～［１７］の手段により達成される。

　［１］　内部に粒子間空隙構造を有する多孔質シリカ粒子からなり、
　該多孔質シリカ粒子が、下記(１)～(６)を満たし且つ表面にシラノール基、陰イオン交換基又は陽イオン交換基を有するものである
ことを特徴とする蛋白質固定化用担体：
　(１) 平均粒子径（Ｄａ）が０．５～１００μｍの範囲；
　(２) 比表面積が１０～２５０ｍ²／ｇの範囲；
　(３) 細孔容積（Ｐｖ）が０．１０～０．３２ｍｌ／ｇの範囲；
　(４) 細孔径分布（Ｘ軸：細孔径［Ｐｓ］、Ｙ軸：細孔容積を細孔径で微分した値）におけるピーク値の細孔径（Ｐｍｓ）が２～２００ｎｍの範囲；
　(５)（Ｐｍｓ）×０．７５～（Ｐｍｓ）×１．２５ｎｍの範囲内の細孔径を有する細孔の合計細孔容積が、全細孔容積の７０％以上；
　(６) 空隙率が５～５０％の範囲。

　［２］　前記多孔質シリカ粒子が、
　平均粒子径（Ｄｂ）１０～５００ｎｍ、真球度０．９～１の範囲、粒子径変動係数（ＣＶ値）が２～１０％の範囲にある球状シリカ微粒子であって、粒子径分布が単分散相を示す球状シリカ微粒子が集合した球状集合体からなる前記［１］に記載の蛋白質固定化用担体。

　［３］　内部に粒子間空隙構造を有する多孔質シリカ粒子からなり、
　該多孔質シリカ粒子が、下記(１)～(６)を満たし且つ表面にシラノール基、陰イオン交換基又は陽イオン交換基を有するものである
ことを特徴とする蛋白質固定化用担体：
　(１) 平均粒子径（Ｄａ）が０．５～５０μｍの範囲；
　(２) 比表面積が１０～２５０ｍ²／ｇの範囲；
　(３) 細孔容積（Ｐｖ）が０．１０～０．３２ｍｌ／ｇの範囲；
　(４) 細孔径分布（Ｘ軸：細孔径［Ｐｓ］、Ｙ軸：細孔容積を細孔径で微分した値）におけるピーク値の細孔径（Ｐｍｓ）が２～５０ｎｍの範囲；
　(５)（Ｐｍｓ）×０．７５～（Ｐｍｓ）×１．２５ｎｍの範囲内の細孔径を有する細孔の合計細孔容積が、全細孔容積の８０％以上；
　(６) 空隙率が５～５０％の範囲。

　［４］　前記多孔質シリカ粒子が、
　平均粒子径（Ｄｂ）１０～５０ｎｍ、真球度０．９～１の範囲、粒子径変動係数（ＣＶ値）が２～１０％の範囲にある球状シリカ微粒子であって、粒子径分布が単分散相を示す球状シリカ微粒子が集合した球状集合体からなることを特徴とする前記［３］に記載の蛋白質固定化用担体。

　［５］　前記陰イオン交換基が、アミノ基又は第４級アンモニウム基を構造中に含む置換基であることを特徴とする前記［１］～［４］の何れかに記載の蛋白質固定化用担体。

　［６］　前記陽イオン交換基が、カルボキシル基、リン酸基及びスルホキシル基から選ばれる何れかの基を構造中に含む置換基であることを特徴とする前記［１］～［４］の何れかに記載の蛋白質固定化用担体。
　［７］　前記多孔質シリカ粒子が、シランカップリング剤又は有機酸で表面処理されたものであることを特徴とする前記［１］～［６］の何れかに記載の蛋白質固定化用担体。

　［８］　前記多孔質シリカ粒子が、アミノ基含有シランカップリング剤で処理された多孔質シリカ粒子を、さらに有機酸で表面処理したものであることを特徴とする前記［１］～［７］の何れかに記載の蛋白質固定化用担体。

　［９］　酵素の固定化に用いられる前記［１］～［８］の何れかに記載の蛋白質固定化用担体。

　［１０］　複合酵素の固定化に用いられる前記［１］～［８］の何れかに記載の蛋白質固定化用担体。

　［１１］　前記［１］～［８］の何れかに記載の蛋白質固定化用担体に、蛋白質を固定化してなる固定化蛋白質。

　［１２］　前記蛋白質が酵素である、前記［１１］に記載の固定化蛋白質。

　［１３］　前記酵素がラセマーゼである前記［１２］に記載の固定化蛋白質。

　［１４］　前記酵素がデオキシリボアルドラーゼである前記［１２］に記載の固定化蛋白質。

　［１５］　前記［１］～［８］の何れかに記載の蛋白質固定化用担体に、蛋白質を吸着させる工程を含む固定化蛋白質の製造方法。

　［１６］　前記蛋白質が酵素である、前記［１５］に記載の固定化蛋白質の製造方法。

　［１７］　バッファー溶液中にて、４～２５℃の範囲で、蛋白質固定化用担体に蛋白質を吸着させることを特徴とする前記［１５］又は［１６］に記載の固定化蛋白質の製造方法。

　本発明に係る蛋白質固定化用担体は、内部に粒子間空隙構造を有し且つ細孔径の均一性が高い多孔質シリカ粒子であって、その表面にシラノール基、陰イオン交換基又は陽イオン交換基を有するものである。特に細孔径の均一性が高いので、蛋白質、特に酵素の分子サイズに適した細孔径を有する蛋白質固定化用担体を選ぶことにより、当該蛋白質は該酵素固定化担体に均一に固定化される。また、蛋白質固定化用担体表面の置換基の種類を酵素などの蛋白質の種類に応じて選択することにより、当該蛋白質は酵素固定化用担体に安定に固定化される。

　本発明に係る蛋白質固定化用担体は、通常、球状シリカ微粒子の球状集合体である。該球状シリカ微粒子の粒子径分布は単分散相を示すものであり、このことにより、本発明に係る蛋白質固定化用担体の細孔径の均一性が達成されるものといえる。本発明に係る蛋白質固定化用担体が、劣化又は崩壊し難いことは、蛋白質固定化用担体が均一な球状シリカ微粒子の集合体からなる安定な構造をとることによるものである。また、本発明に係る蛋白質固定化用担体は、その製造段階において、前記球状シリカ微粒子の粒径を選択するだけで、多様な分子サイズの蛋白質、特に酵素の固定化に適応することが可能となる。

　本発明に係る蛋白質固定化用担体の好適な態様では、蛋白質固定化用担体を構成する多孔質シリカ粒子の表面に陰イオン交換基または陽イオン交換基を有している。特に、陰イオン交換基として、アミノ基又は第４級アンモニウム基を構造中に含む置換基を有しているか、あるいは、陽イオン交換基として、カルボキシル基、リン酸基及びスルホキシル基から選ばれる何れかの基を構造中に含む置換基を有していると、蛋白質、特に酵素の固定化を、共有結合などの強固な結合を介して行うことができるので有利である。このような置換基は、典型的には多孔質シリカ粒子をシランカップリング剤で処理し、その表面のシラノール基を改質したものである。本発明に係る蛋白質固定化用担体は、その製造段階において、球状シリカ微粒子の粒径の選択に加えて、シランカップリング剤等の薬剤により導入される置換基の選択を行うことにより、蛋白質の種類に応じて最適な蛋白質固定化用担体とすることができる。

　本発明に係る固定化蛋白質は、蛋白質の固定化に用いる蛋白質固定化用担体が均一性の高い球状シリカ微粒子の球状集合体であることから構造的に安定であり、細孔径分布の均一性も高い。また、蛋白質の表面電荷に応じた置換基を蛋白質固定化用担体の表面に有するので、蛋白質固定化用担体に吸着した蛋白質は安定に存在することができる。これらの特徴により、本発明に係る固定化蛋白質は、その設計の範囲内で、細孔径と表面置換基の種類を選択することにより、多様な蛋白質の固定化に供することが可能である。また、本発明に係る固定化蛋白質は、その構造の安定性により、繰返し使用によっても劣化又は崩壊を招き難く、基質との反応の際の温度による影響又は溶媒による影響を受け難いものとなる。

　本発明に係る固定化蛋白質は、このような優れた特徴を有するため、蛋白質として酵素を採用してなる固定化酵素では、固定化前の酵素同等またはそれ以上の反応活性を示すことができる。

　また、本発明に係る固定化酵素の製造方法は、実用性が高く、管理すべき条件も少ないので、大量生産にも適したものと言える。

　第１の本発明に係る蛋白質固定化用担体は、内部に粒子間空隙構造を有し且つ細孔径の均一性が高い多孔質シリカ粒子であって、その表面にシラノール基、陰イオン交換基又は陽イオン交換基を有するものである。特に細孔径の均一性が高いので、蛋白質、特に酵素の分子サイズに適した細孔径を有する蛋白質固定化用担体を選ぶことにより、蛋白質は該蛋白質固定化担体に均一に固定化される。また、蛋白質固定化用担体表面の置換基の種類を蛋白質の種類に応じて選択することにより、蛋白質は蛋白質固定化用担体に安定に固定化される。このような蛋白質固定化用担体を、例えば、新たな固定化蛋白質、特に固定化酵素の開発に適用した場合、次のような利点がある。

　(１)様々な酵素を担体に固定化することが可能である。

　(２)酵素の固定化方法が容易なものである。

　(３)フリーの酵素と同等以上の反応活性を維持した状態で酵素を固定化することが可能である。

　(４)酵素固定化用担体が多孔質シリカ粒子を原料としており、かつ安定な構造をとるので、固定化酵素の機械的強度が高く、繰り返し使用が容易である。

　(５)固定化酵素の工業的な大量生産が可能である。

　(６)開発対象酵素の固定化に関する開発期間を短縮し、容易に工業化に結び付けることができる。

　(７)固定化後の活性が高いため、固定化による酵素の損失を抑制できる。

　(８)例えば、多孔質シリカ粒子の表面を水酸基、アミノ基、カルボシキル基又はフェニルアミノ基などで修飾することにより、酸性、塩基性、中性又は疎水性の何れの酵素も固定化可能である。

　また、第２の本発明に係る固定化蛋白質は、上記蛋白質固定化用担体に蛋白質を固定化したものである。このような固定化蛋白質は、例えば、次のような利点がある。

　（ａ）固定化酵素として用いたときに、フリーの酵素と同等又は同等以上の反応活性を示すことができる。

　（ｂ）機械的強度が高く、繰り返し使用が容易である。

　（ｃ）工業的な大量生産が可能である。

　（ｄ）固定化酵素として用いたときに、活性が高いため、固定化による酵素のロスを抑制できる。

　（ｅ）固定化酵素として用いたときに、固定化酵素と基質との反応時において、耐熱性及び耐溶剤性に優れる。

　（ｆ）特にラセマーゼ、グルコアミラーゼ、アミラーゼ又はラッカーゼから選ばれる酵素が固定化されてなる固定化蛋白質は、耐熱性に優れる。

　（ｇ）特にＤＥＲＡが固定化されてなる固定化蛋白質は、耐基質性及び平衡のシフトに優れる。

各種蛋白質固定化用担体に固定化したラセマーゼの比活性を示す図。繰り返し利用による各種固定化ラセマーゼにおける比活性の変化を示す図。繰り返し利用による各種固定化ラセマーゼにおける比活性の変化を示す図。デオキシリボアルドラーゼ（ＤＥＲＡ）が介在する反応を示した模式図。タンデムアルドール反応によるラクトン合成反応を示した模式図。各種蛋白質固定化用担体に固定化したＤＥＲＡについての、順反応に対する比活性を示す図。アセトアルデヒド中における、固定化ＤＥＲＡの順反応に対する比活性の経時変化をフリーのＤＥＲＡと比較して示す図。アセトアルデヒド中における、固定化ＤＥＲＡの逆反応生成物量の経時変化をフリーのＤＥＲＡと比較して示す図。固定化ＤＥＲＡについてのラクトン生成量をフリーのＤＥＲＡと比較して示す図。各種蛋白質固定化用担体に固定化したニトリルヒドラーゼ（ＮＨａｓｅ）の比活性を示す図。本発明の固定化酵素を含む各種酵素についての等電点と分子量の分布を示す図。各種蛋白質固定化用担体の細孔径分布を示す図（丸印を結ぶカーブは、窒素吸着法により測定した細孔径分布を示し、三角印を結ぶカーブは、水銀圧入法により測定した細孔径分布を示す。各カーブのピーク付近に記した値は、蛋白質固定化用担体の細孔径を表す。）

　本発明は、微小粒子の集合体からなり、メソ孔を有する多孔質シリカ粒子、あるいは、該多孔質シリカ粒子の表面にシランカップリング剤等を用いて所定の官能基を付与する処理を施した多孔質シリカ粒子への蛋白質の吸着現象を、該蛋白質の固定化法として利用し、多孔質シリカ粒子の細孔内若しくは表面に蛋白質を安定に固定して、固定化された蛋白質の機能を充分に発揮できるようにしたものである。

　本発明において、多孔質シリカ粒子に固定化される蛋白質として、好適には酵素が選択されるため、本発明は、酵素固定化用担体又は固定化酵素を包含するものである。

　１．蛋白質固定化用担体
　本発明に係る蛋白質固定化用担体は、内部に粒子間空隙構造を有する特定の多孔質シリカ粒子からなるものである。ここで、本発明で用いられる多孔質シリカ粒子は、下記(１)～(６)を満たし、且つ表面にシラノール基、陰イオン交換基又は陽イオン交換基を有するものである：
　(１) 平均粒子径（Ｄａ）が０．５～１００μｍの範囲；
　(２) 比表面積が１０～２５０ｍ²／ｇの範囲；
　(３) 細孔容積（Ｐｖ）が０．１０～０．３２ｍｌ／ｇの範囲；
　(４) 細孔径分布（Ｘ軸：細孔径［Ｐｓ］、Ｙ軸：細孔容積を細孔径で微分した値）におけるピーク値の細孔径（Ｐｍｓ）が２～２００ｎｍの範囲；
　(５) （Ｐｍｓ）×０．７５～（Ｐｍｓ）×１．２５ｎｍの範囲内の細孔径を有する細孔の合計細孔容積が、全細孔容積の７０％以上；
　(６) 空隙率が５～５０％の範囲。

　本発明に係る蛋白質固定化用担体は、後述する固定化蛋白質において、蛋白質を固定化させるための担体として用いられるものである。本発明に係る蛋白質固定化用担体は、好適な態様においては酵素を固定化させるための担体として用いられることから、この側面を強調する意味で特に「酵素固定化用担体」と呼ばれることもある。

　１-１．多孔質シリカ粒子
　本発明における多孔質シリカ粒子は、内部に粒子間空隙構造を有する多孔質シリカ粒子であって、
　１）該多孔質シリカ粒子の平均粒子径（Ｄａ）が０．５～１００μｍの範囲；
　２）比表面積が１０～２５０ｍ²／ｇの範囲；
　３）細孔容積が０．１０～０．３２ｍｌ／ｇの範囲；
　４）細孔径分布（Ｘ軸：細孔径［Ｐｓ］、Ｙ軸：細孔容積を細孔径で微分した値）におけるピーク値の細孔径（Ｐｍｓ）が２～２００ｎｍの範囲；
　５）（Ｐｍｓ）×０．７５～（Ｐｍｓ）×１．２５ｎｍの範囲内の細孔径を有する細孔の合計細孔容積が、全細孔容積の７０％以上；
　６）空隙率が５～５０％の範囲
の要件を満たし、且つ
　表面にシラノール基、陰イオン交換基又は陽イオン交換基を有する
多孔質シリカ粒子である。

　本発明で用いられる多孔質シリカ粒子において、前記粒子間空隙構造は、通常、粒子の自己集積および／または自己組織化により構成されるものである。本発明で用いられる多孔質シリカ粒子は、通常、平均粒子径１０～５００ｎｍ、真球度０．９～１の範囲、好ましくは平均粒子径１０～５０ｎｍ、真球度０．９～１の範囲にあり、粒子径の均一性の高いる球状シリカ微粒子が集合してなる球状集合体からなるものである。

　本発明に係る多孔質シリカ粒子の粒子間空隙構造は、特に細孔径分布（Ｘ軸：細孔径、Ｙ軸：細孔容積を細孔径で微分した値）におけるピーク値の細孔径（Ｐｍｓ）が２～２００ｎｍの範囲、望ましくは２～５０ｎｍの範囲であり、さらに（Ｐｍｓ）×０．７５～（Ｐｍｓ）×１．２５ｎｍの範囲内の細孔径を有する細孔の合計細孔容積が、全細孔容積の７０％以上、好ましくは８０％以上をとるものである。これにより、触媒等が充分に分散して多孔質シリカ粒子に担持する傾向が促進される。また、触媒が担持した触媒担体に反応選択性を付与することができる。これについては、細孔を形成する粒子の形状が真球状で、かつ、粒子径が均一であり、形成される細孔も、細孔径が均一で、分散した状態で存在することが原因するものと推察される。

　本発明に係る多孔質シリカ粒子の平均粒子径（Ｄａ）については、０．５～１００μｍの範囲が好ましく、０．５～５０μｍの範囲がより好ましい。後で述べる本発明の製造方法によれば、この範囲であれば、球状で均一な多孔質シリカ粒子を得ることが可能である。平均粒子径が０．５μｍ未満の多孔質シリカ粒子については、本発明の製造方法によれば、調製することが容易ではない。平均粒子径が５０μｍを超える場合、特に平均粒子径が１００μｍを超える場合は、本発明の製造方法によれば、異形粒子が発生し易くなるため望ましくない。なお、多孔質シリカ粒子の平均粒子径については、好適には５～５０μｍの範囲、特に５～３０μｍの範囲が推奨される。前記多孔質シリカ粒子の平均粒子径については、遠心沈降法により測定されるものであり、具体的な測定方法については、実施例の［各種物性の測定方法］中、１．（Ｂ）「遠心沈降法による平均粒子径の測定方法」に記した。

　本発明に係る多孔質シリカ粒子の比表面積については、１０～２５０ｍ²／ｇの範囲が好ましい。比表面積が３０ｍ²／ｇ未満の場合、特に１０ｍ²／ｇ未満の場合は担体として使用する場合には、多くの場合、大量に担体を使用する必要があり、経済的に不利である。また、比表面積が２５０ｍ²／ｇを越える場合は反応生成物の再吸着などが起こり反応効率が低下する恐れがあり、また、球状集合体の強度が不充分となるため好ましくない。比表面積のより好ましい範囲としては、３０～２５０ｍ²／ｇの範囲が推奨される。

　本発明に係る多孔質シリカ粒子は、０．１０～０．３２ｍｌ／ｇの範囲の細孔容積を有している。細孔容積が０．１０ｍｌ／ｇ未満の場合には、担体として使用した場合、触媒としてはたらく金属微粒子などの担持量が少なくなるため、多くの場合、担体を大量に使用する必要があり、経済的に不利である。細孔容積が０．３２ｍｌ／ｇを越えると、球状集合体の強度が不充分となる場合がある。細孔容積の好ましい範囲は、０．１０～０．２５ｍｌ／ｇ、より好ましくは０．１２～０．２０ｍｌ／ｇである。

　なお、当該細孔容積は、窒素を用いた定容量式ガス吸着法により、また、細孔分布、細孔径（ピーク値）は　BJH法によって求めることができる。また、これらの値を測定する方法として、水銀圧入法を用いることもできる。

　本発明に係る多孔質シリカ粒子においては、本発明に係る多孔質シリカ粒子の粒子間空隙構造は、特に細孔径分布（Ｘ軸：細孔径［Ｐｓ］、Ｙ軸：細孔容積を細孔径で微分した値）におけるピーク値の細孔径（Ｐｍｓ）が２～２００ｎｍの範囲であり、さらに（Ｐｍｓ）×０．７５～（Ｐｍｓ）×１．２５ｎｍの範囲内の細孔径を有する細孔の合計細孔容積が、全細孔容積の７０％以上であることが必要である。

　前記細孔径（Ｐｍｓ）が２ｎｍ未満の場合、必要な細孔容積を確保することが容易ではない。細孔径（Ｐｍｓ）が２５ｎｍを超える場合、特に２００ｎｍを超える場合は、粒子強度の低下が実用上問題となる場合がある。細孔径（Ｐｍｓ）の範囲については、望ましくは２～５０ｎｍの範囲が推奨される。また、更に望ましくは、３～１５ｎｍの範囲が推奨される。

　（Ｐｍｓ）×０．７５～（Ｐｍｓ）×１．２５ｎｍの範囲内の細孔径を有する細孔の合計細孔容積が、全細孔容積の８０％未満の場合、特に７０％未満の場合は、細孔径分布が不均一であり、応力が比較的大きな細孔に集中し、実用上強度が弱くなるなどの問題が生じ易くなる。前記全細孔容積に対する合計細孔容積の好ましい割合は８０％以上であり、更に好適な割合として８５％以上が推奨される。

　本発明で用いられる多孔質シリカ粒子は、その空隙率が５～５０％の範囲にあるものが好ましい。本発明の多孔質シリカ粒子は、この範囲の空隙率であっても、優れた粒子破壊強度を示すことができる。空隙率が５％未満では、担持できる物質の量が僅かとなり、実用的ではない。空隙率が５０％を超える場合は、粒子の強度を保てなくなる場合があり、望ましくない。空隙率については、望ましくは１０～３０％の範囲が推奨される。

　球状集合体
　本発明に係る多孔質シリカ粒子は、前記の通り球状シリカ微粒子の球状集合体から構成される。ここで球状シリカ微粒子の平均粒子径（Ｄｂ）としては、１０～５００ｎｍの範囲が好適である。平均粒子径が１０ｎｍ未満の場合は、粒子径が小さすぎて無機シリカ微粒子の間隙による細孔容積が低下し、担持用粒子としては、実用性が低下する。平均粒子径が５０ｎｍを超える場合、特に平均粒子径が５００ｎｍを越えると、細孔容積は大きくなるものの、微粒子同士の結合力が弱く、球状シリカ微粒子の集合体が得られ難い。球状シリカ微粒子の更に好ましい平均粒子径は１０～３００ｎｍの範囲である。また、より好ましくは平均粒子径１０～５０ｎｍの範囲、特に好ましくは平均粒子径１０～４８ｎｍの範囲が推奨される。

　なお、本願において、球状シリカ微粒子の平均粒子径については、動的光散乱法により測定された平均粒子径または画像解析法により測定された平均粒子径を意味する。

　また、後記の「球状シリカ微粒子（ａ）」および「球状シリカ微粒子（ｂ）」の場合も同様である。画像解析法による平均粒子径測定方法については、実施例の［各種物性の測定方法］中「５．粒度分布の測定」にて記載した平均粒子径の測定方法により測定した。

　前記球状シリカ微粒子は、棒状、勾玉状、細長い形状、数珠状、卵状などの異形粒子を含まず、真球度が高いものであることが必要である。本発明において球状とは、真球度が０．９０～１．００の範囲にあるものを言う。ここで真球度とは、透過型電子顕微鏡により写真撮影して得られる写真投影図における任意の５０個の粒子について、それぞれその最大径（ＤＬ）と、これと直交する短径（ＤＳ）との比（ＤＳ／ＤＬ）の平均値を意味する。真球度が０．９０未満の場合は、微粒子が球状であるとは云えず、前記の異形粒子に該当するものを含む場合が生じる。

　球状シリカ微粒子として真球度が０．９０～１．００の球状シリカ微粒子を使用してなる本発明の多孔質シリカ粒子は、優れた粒子破壊強度を示すことが可能となる。特に球状シリカ微粒子の真球度を０．９０以上で揃えることは多孔質シリカ粒子の強度に大きな影響を与えるものとなる。

　球状シリカ微粒子としては、例えば、特開平５－１３２３０９号公報等に開示した酸化物ゾルなどのシリカ微粒子、特開平１０－４５４０４３号公報に開示された有機基を含む複合シリカ微粒子、特開平７－１３３１０５号公報に開示された粒子内部に空隙を有した複合シリカ微粒子などを適用することが可能であるが、前記真球度に満たない場合は、いわゆる水熱処理を行って、真球度を０．９０～１．００の範囲に調整してから、球状シリカ微粒子として使用することができる。水熱処理の条件としては、温度１００～２００℃にて、１～２４時間の処理を行う方法を挙げることができる。また、水熱処理には、オートクレーブを使用することも推奨される。

　球状シリカ微粒子の粒子径分布が単分散である場合については、望ましくは球状シリカ微粒子の粒子径変動係数（ＣＶ値）が２～１０％の範囲にあることが推奨される。粒子径変動係数２％未満の場合は、本発明にとってより望ましいものの、そのレベルの粒子径分布の球状シリカ微粒子を得ることは容易ではない。粒子径変動係数が１０％を超える場合は単分散の程度が低下するため、本発明の効果が低下する。粒子変動係数の範囲については、好適には２～７％の範囲が推奨される。

　このような球状シリカ微粒子の球状集合体の製造方法としては、従来公知の方法を採用することができ、例えば、マイクロカプセル法、乳化法、オイル法、噴霧法などが挙げられる。中でも本願出願人の出願による特公平３－４３２０１号公報、特公平２－６１４０６号公報等に開示した真球状微粒子粉末の製造方法は、出発無機シリカ微粒子が球状で無い場合であっても真球状の無機シリカ微粒子集合体が得られ、製造工程が複雑でなく経済性にも優れている。この好ましい製造方法については後述する。

　官能基
　本発明で用いられる多孔質シリカ粒子は、その表面の官能基として、シラノール基、陰イオン交換基又は陽イオン交換基を有している。

　すなわち、本発明の蛋白質固定化用担体において、一つの態様では多孔質シリカ粒子としてシラノール基を有するものが用いられる。ここで、多孔質シリカ粒子は、その表面にシラノール基を有するものなので、前記多孔質シリカ粒子は本発明に係る蛋白質固定化用担体に含まれるものと言える。

　また、別の態様では、多孔質シリカ粒子として陰イオン交換基または陽イオン交換基を有するものが用いられる。本発明で「陰イオン交換基を有する」または「陽イオン交換基を有する」というときには、多孔質シリカ粒子において、表面の官能基に陰イオン交換基又は陽イオン交換基が含まれているということを意味し、すべてのシラノール基が陰イオン交換基又は陽イオン交換基で修飾されていることまでを要するものではない。

　したがって、本発明の蛋白質固定化用担体における多孔質シリカ粒子の態様としては、(i) シラノール基は含むが、陰イオン交換基も陽イオン交換基も含まないもの、(ii) 陰イオン交換基を含み、陽イオン交換基を含まないもの、(iii) 陽イオン交換基を含み、陰イオン交換基を含まないものが主として挙げられ、場合によっては、(iv) 陰イオン交換基と陽イオン交換基を両方含むものも挙げることができる。

　本発明で、陰イオン交換基とは、陰イオンを吸着可能であるか、酸と反応して陰イオン化して、親水性を発現することが可能な基のことであり、陽イオン性の基か、塩基性の基のことを言う。このような例としては、アミノ基を構造中に含む基又は第４級アンモニウム基を構造中に含む基を挙げることができる。アミノ基を構造中に含む基の例としては、－ＣＨ₂ＣＨ₂ＣＨ₂ＮＨ₂、－ＣＨ₂ＣＨ₂ＣＨ₂ＣＨ₂ＮＨ₂その他のアミノアルキル基に代表される第１級アミノ基を含む基；フェニルアミノ基など第２級アミノ基を含む基；－ＣＨ₂Ｎ（ＣＨ₃）₂、－ＣＨ₂ＣＨ₂Ｎ（ＣＨ₃）₂、－ＣＨ₂ＣＨ₂Ｎ（ＣＨ₂ＣＨ₂）₂、－ＣＨ₂ＣＨ₂ＣＨ₂Ｎ（ＣＨ₂ＣＨ₂）₂など第３級アミノ基を含む基；並びに、－ＣＨ₂Ｎ⁺（ＣＨ₃）₃、－ＣＨ₂ＣＨ₂Ｎ⁺（ＣＨ₃）₃、－ＣＨ₂ＣＨ₂Ｎ⁺（ＣＨ₂ＣＨ₂）₃、－ＣＨ₂ＣＨ₂ＣＨ₂Ｎ⁺（ＣＨ₂ＣＨ₂）₃、－ＣＨ₂ＣＨ₂Ｎ⁺（ＣＨ₂ＣＨ₃）₂ＣＨ₂ＣＨ（ＯＨ）ＣＨ₃、－Ｎ⁺（ＣＨ₃）₃など第４級アンモニウム基を含む基を挙げることができるが、これらに限定されるものではない。

　一方、陽イオン交換基とは、陽イオンを吸着可能であるか、塩基と反応して陽イオン化して、親水性を発現することが可能な基のことであり、陰イオン性の基か、酸性基が挙げられる。ここで、シラノール基も陽イオンを吸着する可能性があるものの、本発明で「陽イオン交換基」というときは、厳密にはシラノール基以外の陽イオン交換基を意味する。このような陽イオン交換基の例としては、カルボキシル基、リン酸基又はスルホキシル基から選ばれる基を構造中に含む基を挙げることができる。カルボキシル基を構造中に含む基の例として、－ＣＨ₂ＣＯＯＨ、－ＣＨ₂ＣＨ₂ＣＯＯＨ、－ＣＨ₂ＣＨ₂ＣＨ₂ＣＯＯＨ、－ＣＨ₂ＣＨ₂ＣＨ₂ＣＨ₂ＣＯＯＨなどのカルボキシアルキル基、－リン酸基の例としては、―ＰＯ₄Ｈ₂、スルホキシル基の例として、－ＣＨ₂ＣＨ₂ＳＯ₃Ｈ、－ＣＨ₂ＣＨ₂ＣＨ₂ＳＯ₃Ｈ、などのスルホアルキル基がそれぞれ挙げられるが、これらに限定されるものではない。

　本発明の蛋白質固定化用担体においては、これらの陰イオン交換基及び陽イオン交換基は、通常、多孔質シリカ粒子への結合性官能基を介して、多孔性シリカ粒子の表面に導入されている。典型的な場合において、上記陰イオン交換基及び陽イオン交換基は、多孔質シリカ粒子表面のシラノール基をシランカップリング剤又は有機酸で処理することにより、多孔質シリカ粒子表面に結合する。ここで、シランカップリング剤で処理した場合は、多孔質シリカ粒子の表面シラノール基とシランカップリング剤との加水分解反応によって所望の陰イオン交換基及び陽イオン交換基が導入され、その場合は、陰イオン交換基及び陽イオン交換基が、シランカップリング剤の珪素原子を介して多孔質シリカ粒子表面と結合することになる。

　なお、本明細書では、「陰イオン交換基」及び「陽イオン交換基」という語を、結合性官能基を含めた部分分子構造について用いることがある。例えば、「アミノ基を構造中に含む基」を、－Ｓｉ－ＣＨ₂ＣＨ₂Ｎ（ＣＨ₃）₂などのようにシリルカップリング剤由来の結合性官能基を含めた意味で用いることがある。

　なお、本発明で用いられる多孔質シリカ粒子は、その表面の官能基として、シラノール基、陰イオン交換基又は陽イオン交換基が望ましいが、この他に疎水性の有機基も好適に使用することができる。このような疎水性の有機基としては、メチル基、γ-メタクリロキシプロピル基等を挙げることができるが、これらに限定されるものではない。

　表面処理
　本発明で用いられる多孔質シリカ粒子は、上記「官能基」の導入とは別に、前記球状シリカ微粒子が集合してなる球状集合体が、所望により、さらに表面処理されていても構わない。表面処理については、前記細孔容積範囲、細孔径範囲を維持できる範囲で行われる必要がある。この様な表面処理により、粒子の強度を向上させることができる。担体として使用する場合には、担持する物質との親和性を高め、担持力を高める効果がある。

　球状シリカ微粒子に酸またはアルカリと下記一般式で表される有機ケイ素化合物および／またはその部分加水分解物を添加して、表面処理した場合は、有機官能基を有するシリカ系被覆層が形成される。

　一般式：　Ｒ_nＳｉ（ＯＲ′）_4-n
〔但し、ＲおよびＲ′は、炭素数１～１８のアルキル基、炭素数１～１８のアリール基、ビニル基またはアクリル基から選ばれる炭化水素基であり、ｎは０、１、２または３の整数である。〕
　１-２．多孔質シリカ粒子の製造方法
　本発明で用いられる多孔質シリカ粒子の製造方法は、本発明の目的が達せられ、かつ所期の作用・効果を得ることができる限り特に制限されるわけではない。しかし、本発明で用いられる多孔質シリカ粒子は、球状多孔質粒子として製造されることが好ましく、これにあたり、通常、以下に述べる方法により製造される。

　このような多孔質シリカ粒子の製造方法は、球状多孔質粒子の製造方法として、以下に述べる（Ａ）、（Ｂ）および（Ｃ）の各工程を含むことを特徴とする。

　（Ａ）遠心分離処理
　平均粒子径１０～５００ｎｍ、好ましくは平均粒子径１０～５０ｎｍの球状シリカ微粒子の分散液を調製し、遠心分離処理を行って、粗大粒子を分離し、粒子径変動係数（ＣＶ値）を２～１０％の範囲に調整することにより、粒子径分布が単分散相を示す球状シリカ微粒子分散液を調製する。

　遠心分離処理条件については、通常は、球状シリカ微粒子分散液の固形分濃度が１～５０質量％で、遠心力が５００～２００００×ｇの範囲が推奨される。ここで、単位「×ｇ」は、地球の重力加速度との比で表した相対遠心加速度（ＲＣＦ：Ｒｅｒａｔｉｖｅ　Ｃｅｎｔｒｉｆｕｇａｌ　Ｆｏｒｃｅ）を表し、「Ｇ」で表記される場合もある。

　なお、予め粒子径変動係数（ＣＶ値）が２～１０％の範囲にあり、粒子径分布が単分散相である球状シリカ微粒子分散液を原料として入手して使用する場合においては、省略可能となる。

　（Ｂ）球状シリカ微粒子集合体の調製
　球状シリカ微粒子分散液を含む噴霧液を気流中に噴霧して球状シリカ微粒子集合体を調製する。該球状シリカ微粒子分散液の溶媒については、水または有機溶媒が使用される。有機溶媒としては、エタノール、プロパノール、ブタノールなどの１価アルコール、エチレングリコール等の多価アルコール等を用いることができる。

　前記噴霧液については、前記球状シリカ微粒子分散液の他に、所望により珪酸液を含んでいても良い。噴霧液として、前記球状シリカ微粒子分散液に珪酸液を添加することにより、粒子の強度が増加する効果がある。珪酸液の添加量については、［球状シリカ微粒子の質量］／珪酸液（シリカ換算）で、１．３以上が望ましい。１．３未満では、珪酸液に由来するシリカの割合が過剰になり空隙率が低下する傾向が強まる。

　前記噴霧液の濃度については、固形分換算で２～６０重量％、特に、４～５０重量％の範囲にあることが好ましい。噴霧液の固形分濃度が２重量％未満の場合は、集合体が得られ難い。噴霧液の濃度が６０重量％を越えると、噴霧液が不安定になり球状の集合体が得難くなる。また、後述する噴霧乾燥を連続的に行えず、集合体の収率が低下する。

　前記噴霧液の噴霧乾燥方法としては、前記した集合体が得られれば特に制限はなく、回転ディスク法、加圧ノズル法、２流体ノズル法など従来公知の方法を採用することができる。特に、特公平２－６１４０６号公報に開示された２流体ノズル方法は、粒子径分布の均一な球状シリカ微粒子集合体を得ることができ、また平均粒子径をコントロールすることが容易であるので好ましい。

　このときの乾燥温度は、球状シリカ微粒子分散液の濃度、処理速度等によっても異なるが、スプレードライヤーを使用する場合、例えば、スプレードライヤーの入口温度としては１００～３００℃、出口温度４０～１００℃などの条件が好ましい。また、更に好適には、入口温度２１０～２５０℃、出口温度５０～５５℃の範囲が推奨される。

　噴霧速度については、噴霧装置の形状またはスケールにも依存するが、例えば、０．１Ｌ／時間～３Ｌ／時間の範囲で行われる。

　（Ｃ）球状シリカ微粒子集合体の加熱処理
　（Ｂ）工程で得られた球状シリカ微粒子集合体を、球状シリカ微粒子同士またはゲル成分との結合力を高めるために、１５０～６００℃の温度範囲で加熱処理する。加熱処理温度が１５０℃未満では結合力の向上効果が認められない場合がある。一方、６００℃を越えると球状シリカ微粒子集合体が収縮するおそれがあり、最終的に得られる球状多孔質粒子の空隙が小さくなる場合があり、好ましくない。

　前記（Ａ）、（Ｂ）および（Ｃ）工程に続いて、所望により以下の（Ｄ）、（Ｅ）および（Ｆ）工程による処理を行っても構わない。

　（Ｄ）球状シリカ微粒子集合体分散液の調製
　　（Ｃ）工程で得られた球状シリカ微粒子集合体を、室温～４０℃まで放冷または冷却し、水および／または有機溶媒に分散させてその分散液を調製する。有機溶媒としては、エタノール、プロパノール、ブタノールなどの１価アルコール、エチレングリコール等の多価アルコール等を用いることができる。分散液の濃度は、球状シリカ微粒子集合体を酸化物に換算した濃度で０．１～４０重量％、特に０．５～２０重量％の範囲にあることが好ましい。他方、濃度が４０重量％を越えると（Ｄ）工程において集合体同士が凝集し易くなるので好ましくない。

　（Ｅ）表面処理
　（Ｄ）工程で得られた集合体分散液に、次のｉ）またはｉｉ）を添加して球状シリカ微粒子集合体の外表面の表面処理を行う。

　ｉ）　酸またはアルカリ
　ｉｉ）　酸またはアルカリと次の一般式で表される有機ケイ素化合物および／またはその部分加水分解物
　一般式：　Ｒ_nＳｉ（ＯＲ′）_4-n
〔但し、ＲおよびＲ′は、炭素数１～１８のアルキル基、炭素数１～１８のアリール基、ビニル基またはアクリル基から選ばれる、イオン交換性基を含まない基で置換されていても良い炭化水素基であり、ｎは０、１、２または３の整数である。〕
　前記ｉ）の場合の酸またはアルカリについては、通常は酸またはアルカリの水溶液が使用される。ここで、前記ｉ）で用いられる「酸」は、後述する蛋白質固定化用担体の製造に用いられる有機酸とは異なり、球状シリカ微粒子集合体の外表面に陽イオン交換性基を導入しないものが用いられる。酸またはアルカリの種類については格別制限されるものではないが、塩酸水溶液、ホウ酸水溶液、アンモニウム水溶液などを挙げることができる。

　前記ｉｉ）の場合の酸またはアルカリについては、ｉ）の場合と同様に定義される。ここで、前記ｉｉ）で用いられる「有機ケイ素化合物」は、後述する蛋白質固定化用担体の製造に用いられるシランカップリング剤とは異なり、球状シリカ微粒子集合体の外表面に陰イオン交換基や陽イオン交換性基を導入しないものが用いられる。前記一般式で表される有機ケイ素化合物としては、具体的に、テトラメトキシシラン、テトラエトキシシラン、テトライソプロポキシシラン、メチルトリメトキシシラン、ジメチルジメトキシシラン、フェニルトリメトキシシラン、ジフェニルジメトキシシラン、メチルトリエトキシシラン、ジメチルジエトキシシラン、フェニルトリエトキシシラン、ジフェニルジエトキシシラン、イソブチルトリメトキシシラン、ビニルトリメトキシシラン、ビニルトリエトキシシラン、ビニルトリス（βメトキシエトキシ）シラン、３，３，３－トリフルオロプロピルトリメトキシシラン、メチル－３，３，３－トリフルオロプロピルジメトキシシラン、β－（３，４エポキシシクロヘキシル）エチルトリメトキシシラン、γ－グリシドキシトリプロピルトリメトキシシラン、γ－グリシドキシプロピルメチルジエトキシシラン、γ－グリシドキシプロピルトリエトキシシラン、γ－メタクリロキシプロピルメチルジメトキシシラン、γ－メタクリロキシプロピルトリメトキシシラン、γ－メタクリロキシプロピルメチルジエトキシシラン、γ－メタクリロキシプロピルトリエトキシシラン、トリメチルシラノール、メチルトリクロロシラン、メチルジクロロシラン、ジメチルジクロロシラン、トリメチルクロロシラン、フェニルトリクロロシラン、ジフェニルジクロロシラン、ビニルトリクロルシラン、トリメチルブロモシラン、ジエチルシラン等が挙げられる。

　なお、有機ケイ素化合物および／またはその部分加水分解物と共に添加される酸またはアルカリは、加水分解のための触媒としても機能するが、所望により加水分解用の触媒を添加しても良い。加水分解触媒として、アルカリ金属の水酸化物や、アンモニア水、アミン等の塩基性のものを用いた場合、加水分解後これらの塩基性触媒を除去して、酸性溶液にして用いることもできる。また、有機酸や無機酸などの酸性触媒を用いて加水分解物を調製した場合、加水分解後、イオン交換等によって酸性触媒を除去することが好ましい。なお、得られた有機ケイ素化合物の加水分解物は、水溶液の形態で使用することが望ましい。ここで水溶液とは加水分解物がゲルとして白濁した状態になく透明性を有している状態を意味する。

　なお、有機ケイ素化合物でｎが０の化合物はそのまま用いることができるが、ｎが１～３の化合物は親水性に乏しいので、予め加水分解しておくことにより、反応系に均一に混合できるようにすることが好ましい。加水分解には、これら有機ケイ素化合物の加水分解法として周知の方法を採用することができる。

　なお、上記機ケイ素化合物および／またはその部分加水分解物あるいは珪酸液と共に、前述した酸化物以外の無機酸化物の前駆体金属塩を添加して酸化物と酸化物以外の無機酸化物とからなる酸化物系層を形成することもできる。酸化物以外の無機酸化物の原料としては、アルカリ可溶の無機化合物を用いることが好ましく、前記した金属または非金属のオキソ酸のアルカリ金属塩またはアルカリ土類金属塩、アンモニウム塩、第４級アンモニウム塩を挙げることができる。

　（Ｆ）加熱処理
　さらに（Ｅ）工程で得られた球状シリカ微粒子集合体の分散液から、球状シリカ微粒子集合体分離し、乾燥した後、大気圧下または減圧下、１００～３００℃で加熱処理して、多孔質シリカ粒子を得る。

　１-３．蛋白質固定化用担体の製造方法
　シラノール基を表面に有する多孔質シリカ粒子からなる蛋白質固定化用担体は、上記１-２．で上述した方法により製造された多孔質シリカ粒子をそのまま使用することができる。このうち特に前記（Ａ）、（Ｂ）及び（Ｃ）工程から得られた多孔質シリカ粒子が好ましい。このような多孔質シリカ粒子は、本来的にその表面にシラノール基を有するものである。言い換えれば、このような多孔質シリカ粒子は、本発明の蛋白質固定化用担体として、酵素などの蛋白質の固定化に用いることができる。

　一方、陰イオン交換基または陽イオン交換基を表面に有する多孔質シリカ粒子からなる蛋白質固定化用担体は、上記１-２．で上述した方法により製造された多孔質シリカ粒子に対して、陰イオン交換基または陽イオン交換基を導入することにより製造される。なお、好適には、陰イオン交換基又は陽イオン交換基を表面に有する多孔質シリカ粒子は、前記（Ａ）、（Ｂ）及び（Ｃ）工程から得られた表面にシラノール基を有する多孔質シリカ粒子をシランカップリング剤又は有機酸で処理することにより得られる。なお、ここで使用するシランカップリング剤又は有機酸としては、陰イオン交換基又は陽イオン交換基を有するものが使用される。

　また、疎水性の有機基を表面に有する多孔質シリカ粒子からなる蛋白質固定化用担体は、前記（Ａ）、（Ｂ）及び（Ｃ）工程から得られた多孔質シリカ粒子をシランカップリング剤（疎水性の有機基を有するもの）で処理することにより得られる。

　本発明に係る蛋白質固定化用担体の製造方法において、使用されるシランカップリング剤としては、３-アミノプロピルトリメトキシシラン、３-アミノプロピルトリエトキシシラン、３-アミノプロピルトリブトキシシラン、４-アミノブチルトリエトキシシラン等のアミノアルキル基を有するシランカップリング剤；Ｎ-フェニル-３-アミノプロピルトリメトキシシラン等のフェニルアルキル基を有するシランカップリング剤；ジエチルアミノメチルトリエトキシシラン、（Ｎ，Ｎ-ジエチル-３-アミノプロピル）トリメトキシシラン等のジアルキルアミノアルキル基を有するシランカップリング剤；塩化Ｎ-トリメトキシシリルプロピル-Ｎ，Ｎ，Ｎ-トリメチルアンモニウム等の４級アンモニウム基を有するシランカップリング剤；カルボキシエチルシラントリオール、トリエトキシシリルプロピルマレアミン酸、Ｎ-（トリメトキシシリルプロピル）エチレンジアミン三酢酸等のカルボキシル基を有するシランカップリング剤；３-（トリヒドロキシシリル）-１-プロパンスルホン酸等のスルホキシル基を有するシランカップリング剤などが挙げられる。

　シランカップリング剤による多孔質シリカ粒子の処理については、格別制限されるものではなく、公知の処理方法を適用することができる。例えば、粉体状の多孔質シリカ粒子に、所要のシランカップリング剤を加え、必要に応じて加熱しながら攪拌し、その後濾過・乾燥等することにより、蛋白質固定化用担体を得ることができる。

　ここで、アミノ基や４級アンモニウム基など陰イオン交換基を含むシランカップリング剤による処理に際してはアンモニア水等の適当な塩基を、処理反応における反応混合液に加えても良い。また、カルボキシル基など陽イオン交換基を含むシランカップリング剤による処理に際しては酢酸等の適当な酸を、それぞれ処理反応における反応混合液に加えても良い。

　また、原料の多孔質シリカ粒子は、一旦エタノール等の適当な極性溶媒に分散させた状態で処理に用いてもよい。このような多孔質シリカ粒子の処理にあたっては、多くの場合空気中で行うことができるが、必要に応じて不活性気体雰囲気下で処理を行うことを妨げるものではない。加熱温度、処理時間などの諸条件について、多孔質シリカ粒子や有機酸の性状に応じて適宜設定することができる。

　処理の態様としては、多孔質シリカ粒子の水系分散液にシランカップリング剤と、必要な場合に酸又は塩基とを加えても良いし、あるいは、必要に応じて酸又は塩基を添加したシランカップリング剤含有水溶液に、多孔質シリカ粒子もしくはその分散液を加えても良い。

　また、本発明に係る蛋白質固定化用担体の製造方法において、使用される有機酸としては、アジピン酸、コハク酸、グルタル酸、ピメリン酸、スベリン酸、アゼライン酸、セバシン酸などのジカルボン酸などを挙げることができる。

　有機酸による多孔質シリカ粒子の処理については、格別制限されるものではなく、公知の処理方法を適用することができる。例えば、適当な水系溶媒に分散させた表面にアミノ基を有する多孔質シリカ粒子（粉体状）に、所要の有機酸を加え、必要に応じて加熱しながら攪拌し、その後濾過・乾燥等することにより、蛋白質固定化用担体を得ることができる。ここで原料の多孔質シリカ粒子は、一旦エタノール等の適当な極性溶媒に分散させた状態で処理に用いてもよい。なお、前記表面にアミノ基を有する多孔質シリカ粒子は、表面にシラノール基を有する多孔質シリカ粒子をアミノ基を有するシランカップリング剤で処理することにより得られる。このような多孔質シリカ粒子の処理にあたっては、多くの場合空気中で行うことができるが、必要に応じて不活性気体雰囲気下で処理を行うことを妨げるものではない。加熱温度、処理時間などの諸条件について、多孔質シリカ粒子や有機酸の性状に応じて適宜設定することができる。

　２．固定化蛋白質
　２-１．固定化蛋白質
　本発明において、上記蛋白質固定化用担体は、蛋白質を固定化させて固定化蛋白質の形で用いられる。すなわち、本発明に係る固定化蛋白質は、上述した蛋白質固定化用担体に、蛋白質を固定化してなるものである。

　本発明の好適な態様では、この固定化蛋白質は、蛋白質として酵素が固定化されている固定化酵素である。ただ、このことは、固定化酵素を構成する蛋白質が酵素に限定されることを意味するものではなく、例えば抗体など他の種類の蛋白質を上記蛋白質固定化用担体に固定してなる固定化蛋白質であっても良い。

　蛋白質
　本発明に係る固定化蛋白質に用いられる蛋白質は、特にその種類に限りがあるわけでない。ただ、触媒反応での使用など工業的な用途への適用という観点からは、好適な蛋白質として酵素が挙げられる。

　本発明に係る固定化蛋白質に適用する酵素としては、例えば、酸化還元反応を触媒するオキシドレダクターゼ、官能基あるいは原子団を分子間で転移するトランスフェラーゼ、加水分解反応を触媒するヒドロラーゼ、脱離反応あるいは付加反応を触媒するリアーゼ、異性体の構造転換を触媒するイソメラーゼ、アデノシン三リン酸の加水分解エネルギーを利用して２つの分子を結合させるリガーゼなどを挙げることがでるが、これらに限定されるものではない。

　オキシドレダクターゼの例としては、アルコールからアルデヒドへの反応に関与するアルコールデヒドロゲナーゼ、アルデヒドからカルボン酸への反応に関与するアルデヒドデヒドロゲナーゼ及びアルデヒドオキシダーゼ、一酸化炭素から二酸化炭素への反応に関与する一酸化炭素デヒドロゲナーゼ、Ｌ-アミノ酸と2-オキソ酸との相互変換に関与するL-アミノ酸オキシダーゼ、アルドースから糖アルコールへの反応に関与するアルドースレダクターゼ等、各種オキシダーゼ及びレダクターゼが挙げられる。

　トランスフェラーゼの例としては、メチル基の転位に関与するメチルトランスフェラーゼ、カルボキシル基の転位に関与するカルボキシルトランスフェラーゼ、アルデヒド基・ケト基の転位に関与するトランスアルドラーゼ、アシル基の転位に関与するアシルトランスフェラーゼ、グリコシル基の転位に関与するグリコシルトランスフェラーゼ、アミノ基の転位に関与するアミノトランスフェラーゼ、リン酸基の転位に関与するホスホトランスフェラーゼ、硫黄基の転位に関与するスルホトランスフェラーゼなどが挙げられる。

　ヒドロラーゼの例としては、エステルの加水分解に関与するエステラーゼ、ペプチド結合の加水分解に関与するプロテアーゼ、糖類の加水分解に関与するグリコシダーゼなどが挙げられる。ここで、エステラーゼの代表例としてリパーゼが挙げられ、グリコシダーゼの代表例として、アミラーゼ、ラクターゼ、マルターゼ、サッカラーゼ、リゾチームなどが挙げられる。

　リアーゼの例としては、カルボキシル基の付加または脱離に関与するカルボキシラーゼあるいはデカルボキシラーゼ、アルドール縮合およびその逆反応に関与するアルデヒドリアーゼ、およびデヒドラターゼなどが挙げられる。ここで、アルデヒドリアーゼの例としては、デオキシリボアルドラーゼなどが挙げられる。

　イソメラーゼの例としては、基質内の不斉中心の異性化に関与するエピメラーゼおよびラセマーゼなどが挙げられる。ここで、ラセマーゼの代表例としてＬ-アミノ酸とＤ-アミノ酸との相互間の変換に関与するアミノ酸ラセマーゼが挙げられる。

　リガーゼの例としては、L-アスパラギン酸とアンモニアからL-アスパラギンを合成する反応に関与するアスパラギンシンテターゼなどが挙げられる。

　また、本発明に係る蛋白質固定化用担体において固定化されている蛋白質は、上記酵素のほかに、抗体など他の種類の蛋白質であっても良い。また、複数のポリペプチド鎖から構成される複合酵素であっても良い。このような複合酵素の例としては、プロテアソーム、セルロソームなどを挙げることができるが、これらに限定されるものではない。

　本発明に係る蛋白質固定化用担体は、公知の蛋白質又は酵素が固定化可能である。しかしながら、前記のとおり蛋白質固定化用担体は、その細孔径分布におけるピーク値の細孔径が２～２００ｎｍの範囲、好ましくは２～５０ｎｍの範囲にあるので、固定化される蛋白質又は酵素の大きさもこの範囲内であるものがより好ましい。また、更に好適には３～９０ｎｍの範囲、より好ましくは３～４５ｎｍの範囲のものが推奨される。

　また、本発明に係る蛋白質固定化用担体又は酵素固定化用担体の表面がシラノール基又は陽イオン交換基を有する場合は、該蛋白質固定化用担体又は酵素固定化用担体は酸性側にあるので、蛋白質の総電荷とｐＨとの相関図で表される該蛋白質固有の荷電曲線における該蛋白質の等電点（総電荷が０になるｐＨ）より酸性のｐＨ環境における蛋白質又は酵素の固定化に特に好適である。

　他方、本発明に係る蛋白質固定化用担体又は酵素固定化用担体の表面が陰イオン交換基を有する場合は、該蛋白質固定化用担体又は酵素固定化用担体は塩基性側にあるので、該蛋白質の等電点より塩基性のｐＨ環境における、蛋白質又は酵素の固定化に特に好適である。

　また、本発明に係る蛋白質固定化用担体又は酵素固定化用担体の表面が疎水性の有機基を有する場合は、疎水性の高い蛋白質又は酵素の固定化に好適である。

　２-２．固定化蛋白質の製造方法
　本発明に係る固定化蛋白質の製造方法としては、本発明の目的が達せられる限り、特に制限があるわけではないが、通常は、上記蛋白質固定化用担体に所要の蛋白質を固定化させることにより製造することができる。

　その好適な方法において、本発明に係る固定化蛋白質は、上記蛋白質固定化用担体に、蛋白質を吸着させることによって製造することができる。この方法によれば、最も単純な手順で蛋白質の固定化を行うことができるので、工業的な量産が可能であり、また、蛋白質固定化用担体表面に存在する官能基として幅広い種類の官能基を用いうるため、多様な種類の蛋白質固定化に対応できる利点がある。典型的には、適当なバッファー溶液中で、蛋白質固定化用担体に、蛋白質を吸着させることによって製造することができる。このときｐＨや温度などの反応条件は、蛋白質、および蛋白質固定化用担体を構成する多孔質シリカ粒子の性状に応じて適宜調整することができる。例えば、温度については、蛋白質の変質を最小限に抑える観点から０～１０℃、例えば４℃付近であっても良いし、蛋白質の変性が生じない範囲で反応を速やかに行う観点から、２０～４０℃、例えば、３０～３７℃付近であっても良い。ただ、多くの場合、蛋白質固定化用担体への蛋白質の吸着は常温付近で行われ、典型的には４～２５℃の範囲で行われる。

　ここで、「吸着」とあるのは、水素結合、静電的相互作用、アフィニティが関係する相互作用その他の非共有結合的相互作用による固定化も含まれうることを示す概念である。

　ここで、本発明の固定化蛋白質においては、おそらく蛋白質固定化用担体表面のシラノール基と蛋白質との間に水素結合が介在するため固定化が行われていると考えられるが、陰イオン交換基または陽イオン交換基を表面に有する多孔質シリカ粒子からなる場合には、蛋白質の固定化にあたり静電的相互作用をも利用することができるので、有利である。

　一方、蛋白質固定化用担体が、アミノ基やカルボキシル基など蛋白質と共有結合の形成が可能であるような官能基を表面に有する多孔質シリカ粒子からなる場合には、さらに強固な固定化がなされるよう、蛋白質の機能を害さない範囲で、常法により共有結合を形成させることにより蛋白質を蛋白質固定化用担体に固定化させても良い。

　２－３．固定化蛋白質の使用
　本発明の固定化蛋白質は、主として固定化酵素として使用されるものである。ここで、本発明の固定化蛋白質を固定化酵素として用いたときの利点としては、基質に対する、固定化された酵素の反応活性が、対応するフリーの酵素、すなわち、対応する担持されていない遊離型の酵素と同等であり、また、繰り返し使用による活性の低下が、対応するフリーの酵素と比べて少ないことが挙げられる。

　ここで、固定化する蛋白質として酵素を用いたときには、対応する担持されていない遊離型の酵素（以下「フリーの酵素」という場合がある。）と同様の用途に用いられる。

　例えば、上記記載のオキシドレダクターゼ、トランスフェラーゼ、ヒドロラーゼ、リアーゼ、イソメラーゼ、リガーゼを固定化した固定化酵素として、工業的用途を含む各種用途に用いうる。例えば、ラセマーゼなどのイソメラーゼを固定化した固定化酵素として、アミノ酸などの異性化反応に用いることができるし、デオキシリボアルドラーゼなどのアルデヒドリアーゼを固定化した固定化酵素として、アルドール反応等に用いることができる。

　［各種物性の測定方法］
　１．平均粒径の測定方法
　（Ａ）　画像解析法による平均粒子径測定
　球状シリカ微粒子の平均粒子径については、「５．粒度分布の測定」の項で後述するように、走査型電子顕微鏡及び画像解析装置を用いて測定した。

　（Ｂ）　遠心沈降法による平均粒子径の測定方法
　多孔質シリカ粒子の平均粒子径については、まず、多孔質シリカ粒子の分散液（水または４０質量％グリセリン溶媒、固形分濃度０．１～５質量％）を超音波発生機（ｉｕｃｈ社製、US-2型）に５分間分散する。更に、水またはグリセリンを加えて適度に濃度を調節した分散液より、ガラスセル（長さ１０ｍｍ、幅１０ｍｍ、高さ４５ｃｍのサイズ）に当該分散液を取り、遠心沈降式粒度分布測定装置（堀場製作所製：ＣＡＰＡ－７００）を用いて平均粒子径を測定した。

　２．比重の測定方法
　多孔質シリカ粒子の比重については、以下の要領で測定を行った。

　まず、試料１０ｇをルツボに採取し、１１０℃で２時間乾燥させた。次いで、この乾燥試料を、デシケーターにて冷却後、２５ｍｌピクノメーターに３～４ｇ入れ、蒸留水を加えて懸濁し、６０ｍｍHgにて１時間真空脱気を行った後に、２５℃恒温槽にて温度調整した。ピクノメーターの標線まで蒸留水を加えて容量を調整し、ピクノメーターの容量（２５ｍｌ）と蒸留水の容量（ｍｌ）の差から試料の容量（ｍｌ）を算出した。加えた試料の重量（ｇ）とこのように算出された容量（ｍｌ）とから、比重を求めた。

　３．空隙率の測定方法
　多孔質シリカ粒子の空隙率については、前記２．で求めた比重と、シリカの比重（すなわち、内部にある空隙を考慮しない見かけ上のシリカの比重）とを用いて、以下の式から算出した。

　１００－［前記２．で求めた多孔質シリカ粒子の比重］/［シリカの比重］×１００＝空隙率（％）
　４．真球度の測定方法
　透過型電子顕微鏡（株式会社日立製作所製、Ｈ－８００）により、試料酸化物ゾルを倍率２５万倍で写真撮影して得られる写真投影図における、任意の５０個の粒子について、それぞれその最大径（ＤＬ）と、これと直交する短径（ＤＳ）との比（ＤＳ／ＤＬ）を測定し、それらの平均値を真球度とした。

　５．粒度分布の測定
　走査型電子顕微鏡（日本電子株式会社製、ＪＳＭ－５３００型）を用いて粒子を撮影（倍率２５０，０００倍）し、この画像の２５０個の粒子について、画像解析装置（旭化成株式会社製、ＩＰ－１０００）を用いて、平均粒子径を測定し、粒子径分布に関する変動係数（ＣＶ値）を算定した。具体的には、粒子２５０個について、それぞれの粒子径を測定し、その値から平均粒子径および粒子径の標準偏差を求め、下記式から算定した。

　変動係数（ＣＶ値）＝（粒子径標準偏差（σ）／平均粒子径（Ｄn））×１００（％）
　６．細孔容積・細孔径の測定方法
　多孔質シリカ粒子の細孔容積及び細孔径を測定する方法として、ガス吸着法と水銀圧入法を用いた。ここで、下記の各実施例、参考例および比較例において、特に別の記載がない限りガス吸着法を用いて測定を行った。

　ガス吸着法による細孔容積及び細孔径の測定は、以下の手順に従って行った。

　多孔質シリカ粒子の細孔容積については、試料１０ｇをルツボに取り、３００℃で１時間乾燥後、デシケーターに入れて室温まで冷却した。ガラスセルに０．１５ｇ採取し、Belsorp mini II（日本ベル株式会社製）を使用して真空脱気しながら試料に窒素ガスを吸着後、脱着させ、得られた吸着等温線から、相対圧0.990の点での細孔容積を求め、またBJH法により、細孔径（ピーク値）を算出した。

　また、水銀圧入法による細孔容積及び細孔径の測定については、試料１０ｇをルツボに取り、３００℃で１時間乾燥後、デシケーターに入れて室温まで冷却し、PM-33（QuantaChrome社製）を用いて行った。このとき、水銀を3.5ｋPa～231MPa（0.5～33000ｐｓｉ）で圧入し、圧力と細孔径と圧入量の関係から細孔分布を求めた。この方法によれば、約5.4nmから約5.4μmまでの細孔に水銀が圧入され、計測されるため、多孔質シリカ粒子の内部に存在する細孔と、多孔質シリカ粒子の粒子間の空隙の両方が計測される。多孔質シリカ粒子内部の細孔のみの容積は、細孔径200nmまでの細孔についての計測結果をもとに、細孔容積と細孔径を算出した。

　［原料多孔質シリカ粒子］
　本発明の実施例では、酵素固定化用担体の原料である多孔質シリカ粒子（以下、「原料多孔質シリカ粒子」）Ｐ１，Ｐ２，Ｐ３およびＰ４として、それぞれ日揮触媒化成株式会社製 SILICA MICRO BEAD　Ｐ－７Ｈ，Ｐ－１２Ｈ，Ｐ－４Ｈ，Ｐ－２０Ｈを使用した。

　ここで、原料多孔質シリカ粒子Ｐ１，Ｐ２，Ｐ３およびＰ４は、スプレードライ法により製造されたものである。

　これらの原料多孔質シリカ粒子は、以下の手順により製造されたものである。

　球状シリカ微粒子が水に分散してなる球状シリカ微粒子分散液（シリカ濃度３０質量％）を遠心分離し、粗大粒子を除去した球状シリカ微粒子分散液を調製した。この球状シリカ微粒子分散液の固形分濃度を１５質量％に調整し、噴霧液とした。そして、入口温度２２０℃、出口温度５０℃の条件下で噴霧乾燥して、原料多孔質シリカ粒子を得た。

　一方、原料多孔質シリカ粒子Ｇ１は、シリカを破砕後、スプレードライ法により微粒子化することにより製造されたものである。

　各原料多孔質シリカ粒子（Ｐ１～Ｐ４及びＧ１）の特徴を表１に記す。

　［実施例１］
　〔酵素固定化用担体（アミノ基修飾型）の調製〕
　１．酵素固定化用担体Ｐ-３Ｎの調製
　粉体状の多孔質シリカ粒子Ｐ３の４０ｇを空気中にて、エタノール１５５ｇに分散させ５分間攪拌後、純水１３ｇを加えてさらに３０分攪拌した。

　次に、空気中にて、シランカップリング剤（信越化学工業株式会社製「ＫＢＭ－９０３」（３－アミノプロピルトリメトキシシラン））を６ｇ加えて３０分攪拌した後、２９％アンモニア水を０．３６ｇ加えて３０分攪拌し、引き続いて５０℃に昇温し、５０℃で２０時間攪拌を続けた。その後、反応混合物を室温まで冷却し、濾過によって固体部分を回収し、この固体部分を１５０℃で２時間乾燥したところ、酵素固定化用担体Ｐ-３Ｎが約３５ｇ得られた。

　２．酵素固定化用担体Ｐ-１Ｎ、Ｐ-２Ｎ、Ｐ-４Ｎ及びＧ-１Ｎの調製
　酵素固定化用担体Ｐ-１Ｎ、Ｐ-２Ｎ、Ｐ-４Ｎ及びＧ-１Ｎの調製は、上記多孔質シリカ粒子Ｐ３に代えて、多孔質シリカ粒子Ｐ１、Ｐ２、Ｐ４及びＧ１を原料としてそれぞれ用いたことを除き、上記酵素固定化用担体Ｐ-３Ｎの調製の場合と同様の方法によって行った。

　調製した各酵素固定化用担体（Ｐ-１Ｎ，Ｐ-２Ｎ，Ｐ-３Ｎ，Ｐ-４Ｎ及びＧ-１Ｎ）の特徴を表１に記す。

　［実施例２］
　〔酵素固定化用担体（カルボキシル基修飾型）の調製〕
　１．酵素固定化用担体Ｐ-３Ｃの調製
　粉体状の多孔質シリカ粒子Ｐ-３Ｎの４０ｇを空気中にて、エタノール１５５ｇに分散させ５分間攪拌後、純水１３ｇを加えてさらに３０分攪拌した。

　次に、空気中にて、アジピン酸〔関東化学株式会社製〕を６ｇ加えて３０分攪拌し、引き続いて５０℃に昇温し、５０℃で２０時間攪拌を続けた。その後、反応混合物を室温まで冷却し、濾過によって固体部分を回収し、この固体部分を１５０℃で２時間乾燥したところ、酵素固定化用担体Ｐ-３Ｃが約３５ｇ得られた。

　２．酵素固定化用担体Ｐ-１Ｃ、Ｐ-２Ｃ、Ｐ-４Ｃ及びＧ-１Ｃの調製
　酵素固定化用担体Ｐ-１Ｃ、Ｐ-２Ｃ、Ｐ-４Ｃ及びＧ-１Ｃの調製は、上記多孔質シリカ粒子Ｐ３に代えて、多孔質シリカ粒子Ｐ１、Ｐ２、Ｐ４及びＧ１を原料としてそれぞれ用いたことを除き、上記酵素固定化用担体Ｐ－３Ｃの調製の場合と同様の方法によって行った。

　調製した各酵素固定化用担体（Ｐ-１Ｃ，Ｐ-２Ｃ，Ｐ-３Ｃ，Ｐ-４Ｃ及びＧ－１Ｃ）の特徴を表１に記す。

　［実施例３］
　〔酵素固定化用担体（フェニルアミノ基修飾型）の調製〕
　１．酵素固定化用担体Ｐ-３Ｐｈの調製
　粉体状の多孔質シリカ粒子Ｐ３の４０ｇを空気中にて、エタノール１５５ｇに分散させ５分間攪拌後、純水１３ｇを加えてさらに３０分攪拌した。

　次に、空気中にて、シランカップリング剤（信越化学工業株式会社製「ＫＢＭ-５７３」（Ｎ－フェニル-３-アミノプロピルトリメトキシシラン））を６ｇ加えて３０分攪拌した後、２９％アンモニア水を０．３６ｇ加えて、３０分攪拌し、引き続いて５０℃に昇温し、５０℃で２０時間攪拌を続けた。その後、反応混合物を室温まで冷却し、濾過によって固体部分を回収し、この固体部分を１５０℃で２時間乾燥したところ、酵素固定化用担体Ｐ-３Ｐｈが約３５ｇ得られた。

　２．酵素固定化用担体Ｐ-１Ｐｈ、Ｐ-２Ｐｈ、Ｐ-４Ｐｈ及びＧ-１Ｐｈの調製
　酵素固定化用担体Ｐ-１Ｐｈ、Ｐ-２Ｐｈ、Ｐ-４Ｐｈ及びＧ-１Ｐｈの調製は、上記多孔質シリカ粒子Ｐ３に代えて、多孔質シリカ粒子Ｐ１、Ｐ２、Ｐ４及びＧ１を原料としてそれぞれ用いたことを除き、上記酵素固定化用担体Ｐ－３Ｐｈの調製の場合と同様の方法によって行った。

　調製した各酵素固定化用担体（Ｐ-１Ｐｈ，Ｐ-２Ｐｈ，Ｐ-３Ｐｈ，Ｐ-４Ｐｈ及びＧ-１Ｐｈ）の特徴を表１に記す。

　［参考例１］
　〔酵素固定化用担体（シラノール基未処理型）〕
　シラノール基未処理型の酵素固定化用担体については、多孔質シリカ粒子Ｐ１、Ｐ２、Ｐ３、Ｐ４及びＧ１に対してシランカップリング剤等の薬剤による表面修飾処理を行うことなく、そのままの状態で、それぞれ酵素固定化用担体Ｐ-１、Ｐ-２、Ｐ-３、Ｐ-４及びＧ-１として用いた。

　［比較例１］
　比較例として使用したＦＳＭ型多孔質シリカ粒子については、文献公知の方法（例えば、特開２００４－８３５０１号公報に記載の方法）を用いて、δ－Ｎａ₂Ｓｉ₂Ｏ₅（カネマイト）の水系分散液に適当な界面活性剤（膨潤剤）を加えて加熱下反応させ、濾過後水洗し、風乾後焼成することにより調製した。ここで、細孔径が４．０ｎｍ、４．２ｎｍ、７．５ｎｍ、８．０ｎｍ、８．５ｎｍ、９．２ｎｍのＦＳＭ型多孔質シリカ粒子は、１， 3，5－トリイソプロピルベンゼンを膨潤剤として、それぞれ、０ｍｌ、０ｍｌ、４．５ｍｌ、５．５ｍｌ、６．０ｍｌ、１１．２ｍｌを用いることにより得られた。

　比較例として使用した各ＦＳＭ型多孔質シリカ粒子の特徴も表１に記す。これらのＦＳＭ型多孔質シリカ粒子は、特にシランカップリング剤等の薬剤による表面修飾処理を行うことなく、そのままの状態で、酵素固定化用担体として用いた。

　［実施例４］
　１．固定化酵素（ラセマーゼ吸着型）の調製及び酵素吸着量の測定
　バッファー溶液（２０ｍＭのリン酸カリウムと５０ｍＭの塩化カリウムの混合物、ｐＨ７．５）と、ラセマーゼをバッファー溶液に溶かしたラセマーゼ溶液（ラセマーゼ濃度は２ｍｇ／ｍｌ）を用意した。

　次に、バッファー溶液１ｍｌ、ラセマーゼ溶液１ｍｌ及び酵素固定化用担体１０ｍｇを混合し、混合溶液とした。この混合溶液をインキュベータにて、温度４℃で２４時間保管することにより、酵素固定化用担体にラセマーゼが吸着してなる固定化酵素を調製した。

　続いて、この混合溶液を遠心分離処理装置［エッペンドルフ社製、品番：ｃｅｎｔｒｉｆｕｇｅ５４１７Ｒ］（２１０００Ｇ、１分間）にて遠心分離処理し、固定化酵素を沈殿させ、上澄み液中のラセマーゼ量をビシンコニン酸法（ＢＣＡ法）を用いて測定し、その値を未吸着のラセマーゼ量とした。そして、最初に投入したラセマーゼ量（２ｍｇ）から未吸着のラセマーゼ量を差し引いた値を酵素固定化用担体に吸着したラセマーゼ量とした。

　この実験を実施例１～３で調製した各酵素固定化用担体毎に行った。

　２．ビシンコニン酸法（ＢＣＡ法）による蛋白質の定量方法
　ラセマーゼの定量は、市販の定量試薬キット（サーモフィッシャーサイエンティフィック社、「ＢＣＡ　ＰＲＯＴＥＩＮ　ＡＳＳＡＹ　ＲＥＡＧＥＮＴ」）を使用して行った。

　３．固定化酵素(ラセマーゼ)の比活性試験
　〔試料〕
　固定化酵素（酵素固定化用担体に２μｇのラセマーゼを吸着してなる相当量）と、基質溶液（１０ｍＭ　Ｌ－アラニン、１０ｍＭ　リン酸カリウム、ｐＨ７．５）の２．５ｍｌとを試験管中にて混合し、温度３０℃の条件下で反応させ、透明な水溶液中にごく少量のシリカ粒子が浮遊している状態の懸濁液を得た。この懸濁液を試料とした。

　〔Ｌ―Ａｌａの円二色性の時間による変化率に基づく比活性の測定〕
　前記懸濁液からなる試料を１ｃｍ角の石英セルに入れ、円二色性分散計（日本分光株式会社製、「Ｊ－８２０」）にセットした。セル中の懸濁液はマグネティックスターラーによって攪拌し、セルはペルチェ式温度制御装置により３０℃に保った。

　次に円二色性分散計のＬ-アラニンの円偏光の波長２０４ｎｍにおける楕円率を１秒間隔で５分間測定した。Ｌ－アラニンのモル楕円率を２３ｍｄｅｇ／ｍＭとして懸濁液中のＬ－アラニン濃度を計測し、単位時間当たりに転換されるアラニン量から活性を計算した。比活性は次の式から求めた。

　比活性＝［メソポーラスシリカに固定化した酵素の活性］／［固定化前酵素の活性］
　各固定化酵素（Ｐ-２、Ｐ-４、Ｐ-２Ｎ、Ｐ-４Ｎ、Ｐ-１Ｎ、Ｐ-３Ｎ及びＧ-１Ｎ）についての比活性を図１に示す。

　また、図１には、比較例として、下記固定化酵素の比活性を併せて示した。なお、酵素固定化用担体に対するラセマーゼの吸着量をはじめ、前記と同様の条件で測定した。

　１）ラセマーゼをイオン交換法で担体（「ＤＥＡＥ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ」、ＧＥヘルスケア・ジャパン社製）に固定化させた固定化酵素（「ＤＥＡＥ」）。

　２）ラセマーゼを金属キレート法で担体（「ＮｉＳｅｐｈａｒｏｓｅ６ＦａｓｔＦｌｏｗ」、ＧＥヘルスケア・ジャパン社製）に固定化させた固定化酵素（「ＮｉＳｅｐｈ．」）。

　３）ラセマーゼを共有結合法で担体（「ＮＨＳ-ａｃｔｉｖａｔｅｄ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ４ＦａｓｔＦｌｏｗ」、ＧＥヘルスケア・ジャパン社製）に固定化させた固定化酵素（「ＮＨＳ」）。

　４）ラセマーゼを細孔径４．２ｎｍのＦＳＭに固定化させた固定化酵素（「ＦＳＭ-４．２」）。

　５）ラセマーゼを細孔径８．５ｎｍのＦＳＭに固定化させた固定化酵素（「ＦＳＭ-８．５」）。

　６）ラセマーゼを細孔径９．２ｎｍのＦＳＭに固定化させた固定化酵素（「ＦＳＭ-９．２」）。

　図１から、本発明に係る固定化酵素（Ｐ-２、Ｐ-４、Ｐ-２Ｎ、Ｐ-４Ｎ、Ｐ-１Ｎ、Ｐ-３Ｎ及びＧ-１Ｎは、何れも比較例の固定化酵素に比べて、同等又は同等以上の比活性を示していることがわかる。

　４．固定化酵素（ラセマーゼ）の繰返し利用時の比活性試験
　（１）固定化酵素（酵素固定化用担体３ｇにラセマーゼ２μｇを吸着させてなる）と、基質溶液（５ｍＭＬ－Ａｌａ、ｐＨ８．５）の１ｍｌを試験管中にて混合し、温度３０℃の条件下、ＤｅｅｐＷｅｌｌＭａｘｉｍｉｚｅｒ（タイテック株式会社製）にて１８００ｒｐｍで２分間懸濁反応させ、懸濁液を得た。

　続いて、この懸濁液を遠心分離処理装置［エッペンドルフ社製、品番：ｃｅｎｔｒｉｆｕｇｅ５４１７Ｒ］で遠心分離処理（２１０００Ｇ、１分間）し、固定化酵素を沈殿させ、上澄を除去し、さらに同じ条件で遠心分離処理して、上澄を完全に除去し、固定化酵素を回収した。

　回収した固定化酵素と前記と同様の基質溶液１ｍｌを試験管中で混合し、温度３０℃の条件下、ＤｅｅｐＷｅｌｌＭａｘｉｍｉｚｅｒ（タイテック株式会社製）にて１８００ｒｐｍで２分間懸濁反応させ、懸濁液を得た。

　続いて、この懸濁液を遠心分離処理装置で遠心分離処理（２１０００Ｇ、１分間）し、固定化酵素を沈殿させた。ここで上澄液を分離し、上澄液中のＤ－Ａｌａ量を測定し、活性を求めた。以上の操作を２０回繰返し行い、各固定化酵素の活性を測定し、比活性を算定し、その結果を図２に示した。

　その結果、本発明に係る固定化酵素（Ｐ-２Ｎ、Ｐ-４Ｎ、Ｐ-２、Ｐ-１Ｎ、Ｐ-１、Ｐ-４、Ｐ-３及びＰ-３Ｎ）は、繰返し利用によっても優れた比活性を維持できることが分かった。

　（２）固定化酵素の繰り返し活性を８０回まで観察した結果を図３に示す。比較例であるＦＳＭ８．５に比較し、繰り返し利用時の活性維持性が高いことが確認できた。これは、遠心分離時にＦＳＭ８．５が機械的に破壊されることに対して、本発明に係る固定化酵素では、そのような破壊が生じないため最終的に安定した活性が得られるものといえる。

　［実施例５］（ＫｐＤＥＲＡ吸着型の固定化酵素の性能試験）
　実施例４と同様に準備した担体に対して、デオキシリボアルドラーゼ（ＤＥＲＡ）を固定化した。ＤＥＲＡは図４に示す反応を介在する酵素である。

　ここで、２-デオキシリボース-５-リン酸(ＤＲ５Ｐ)をアセトアルデヒドとグリセロアルデヒド三リン酸(Ｇ３Ｐ)に転換する反応を順反応、Ｇ３ＰとアセトアルデヒドをＤＲ５Ｐに転換する反応を逆反応とする。なお、このＤＥＲＡは医薬中間体であるラクトンを図５に示すタンデムアルドール反応により合成する酵素として期待されている酵素でもある。しかしながら、アルデヒドによる失活のため、これまでに実用化されていない反応である。

　１．固定化酵素の調製
　バッファー溶液（５０ｍＭトリエタノールアミン、ｐＨ７．５）と、Klebsiella pneumoniae (Kp) 由来のデオキシリボアルドラーゼ（以下、「ＫｐＤＥＲＡ」）をバッファー溶液に溶かしたＫｐＤＥＲＡ溶液（ＫｐＤＥＲＡ濃度２ｍｇ／ｍｌ）を用意した。

　酵素固定化用担体Ｐ２の２０ｍｇに、それぞれバッファー溶液１ｍｌとＫｐＤＥＲＡ溶液１ｍｌを混合し、温度４℃で２４時間保管し、懸濁液からなる固定化酵素（ＫｐＤＥＲＡ／酵素固定化用担体系）を得た。なお、酵素固定化用担体として、Ｐ４又はＧ１Ｎについても、上記固定化酵素を調製した。

　比較例として、上記の酵素固定化用担体２０ｍｇをＦＳＭ-４．０の１０ｍｇに代えた他は上記と同様にして、懸濁液からなる固定化酵素（ＫｐＤＥＲＡ／ＦＳＭ系）を得た。
また、ＦＳＭ８．０、ＦＳＭ８．５又はＦＳＭ９．２についても同様に固定化酵素を調製した。

　２．固定化酵素における酵素吸着量の測定
　上記１．で得られた各固定化酵素（懸濁液）を遠心処理装置［メーカー：エッペンドルフ社、品番：ｃｅｎｔｒｉｆｕｇｅ５４１７Ｒ］（２１０００Ｇ、１分間）にて遠心分離処理し、固定化酵素を沈殿させ、上澄液中のＫｐＤＥＲＡ量を［ビシンコニン酸（ＢＣＡ）法］を用いて測定し、この値を未吸着のＫｐＤＥＲＡ量とした。ここで、最初に投入したＫｐＤＥＲＡ量（２ｍｇ）から未吸着のＫｐＤＥＲＡ量を差し引いた値を酵素固定化用担体に吸着したＫｐＤＥＲＡ量とした。

　３．固定化酵素と基質[ＤＲ５Ｐ]との反応
　固定化酵素（ＫｐＤＥＲＡの５μｇを酵素固定化用担体３７．５μｇに吸着させてなる）と、基質溶液（１ｍＭ　２－デオキシリボース－５－リン酸 [ＤＲ５Ｐ]）の２．０ｍｌを試験管中にて、温度３０℃で反応させ、反応液を得た。

　この反応液には、トリオースフォスフェートイソメラーゼとグリセルアルデヒド-３-リン酸デヒドロゲナーゼと０．２ｍＭのＮＡＤＨが含まれており、カップリング反応をＮＡＤＨの吸光度（波長３４０ｎｍ）変化から測定することで、間接的にＤＲ５Ｐの変化量を算出した（順反応）。１分間に１μモルの基質を分解する活性を１ユニットとした。

　吸光度の測定には、ＵＶ－Ｖｉｓ分光光度計（メーカー：島津製作所、型番：ＵＶ－２４５０）を用いた。

　４．固定化酵素と基質[ＤＧ３Ｐ]との反応
　固定化酵素（ＫｐＤＥＲＡの１．０５μｇを各酵素固定化用担体１８．４μｇに吸着させてなる）を、それぞれ３５０μｌの基質溶液〔１００ｍＭトリエタノールアミン(ｐＨ７．５)、１００ｍＭＤＬ-グリセロール三リン酸、３００ｍＭアセトアルデヒド〕と２５℃で２０分間反応させ、それぞれ反応液を得た。

　次に各反応液４０μｌを別のチューブに移し、遠心分離処理（２１０００Ｇ、２分間）して各固定化酵素を沈殿させた。

　上澄液２０μｌを新しいチューブに移し、８μｌの６０%過塩素酸を加え１０分間氷上で処理した。

　続いて、１３．４μｌの１Ｍ水酸化ナトリウムと１７９μｌの１Ｍトリエタノールアミン(ｐＨ７．５)を加えて中和後、生じたＤＲ５Ｐ量をシステインー硫酸法によって測定した（逆反応）。

　図６に示すようにＰ-４、Ｐ-２、Ｇ-１Ｎに固定化したＤＥＲＡは、順反応に対して各ＦＳＭの場合に比較し高い比活性を示した。一方、逆反応に対しては表２に示す通り、Ｐ-４は比較的高い比活性を維持しており、ＦＳＭ-９．２と比べてやや高い比活性を示した。

　５．固定化したＤＥＲＡのアセトアルデヒドに対する耐性の確認
　固定化したＤＥＲＡのアセトアルデヒドに対する耐性の向上を確認するため、まず、担体に担持されていないフリーの酵素（「Ｆｒｅｅ」）の順反応に対するアセトアルデヒドの影響を評価した。

　０．２ユニットのＫｐＤＥＲＡを３００ｍＭのアセトアルデヒドで４℃で、一定時間インキュベーションした。ＳｐｉｎＣｏｌｕｍｎ（サーモフィッシャーサイエンティフック）に通してアルデヒドを除いた後、残った活性を、順反応を測定することにより求めた。

　図７に示すように、アセトアルデヒド濃度３００ｍＭ以上では１時間でほぼ失活した。

　６．固定化酵素の順反応におけるアセトアルデヒドの影響の確認
　固定化酵素の順反応におけるアセトアルデヒドの影響を評価した。

　０．２ユニットのＫｐＤＥＲＡを吸着させた本発明に係る固定化酵素を３００ｍＭアセトアルデヒドで４℃、一定時間インキュベーションした。５０ｍＭのＴＥＡ（ｐＨ７．５）で担体を洗浄後、残った活性を、順反応を測定することにより求めた。

　図７に示すように、ＦＳＭ-９.２に固定化したＤＥＲＡ及びＰ-４に固定化したＤＥＲＡはともに、担体に担持されていないフリーのＤＥＲＡと比較してアセトアルデヒド耐性が向上した。

　７．固定化酵素の逆反応におけるアセトアルデヒドの影響の確認
　固定化酵素の逆反応におけるアセトアルデヒドの影響を評価した。

　０．２ユニットのＫｐＤＥＲＡを吸着させた本発明に係る固定化酵素を３５０μｌの基質溶液（１００ｍＭのトリエタノールアミン［ｐＨ７．５］、１００ｍＭのＤＬ－グリセロール三リン酸、３００ｍＭのアセトアルデヒド）と２５℃で一定反応させた。

　２５μｌの反応液を新しいチューブに移し、遠心（２１０００Ｇ、２分間）で担体を沈殿させた。２０μｌの上清を新しいチューブに移し、８μｌの６０％過塩素酸を加え１０分間氷上で処理した。１３．４μｌの１Ｍ水酸化ナトリウムと１７９μｌの１ＭトリエタノールアミンｐＨ７．５を加えて中和後、生じたＤＲ５Ｐ量をシステインー硫酸法によって測定した。

　図８に示すように、逆反応に対してはＰ-４における耐性の向上が顕著であった。

　８．ラクトン合成反応への適用
　ラクトンは医薬品中間体として重要な物質であり、合成ルート簡略化のため図２．２に示すＤＥＲＡによるタンデムアルドール合成反応によるラクトン合成が期待されているが、アルデヒドによる失活のため実用化されていない反応である。そこで、アセトアルデヒドからのタンデムアルドール反応によるラクトン前駆体（２，４，６－トリデオキシ－Ｄ－エリスロ－ヘキサピラノシド）生成量を比較した。

　５０μｇのＫｐＤＥＲＡを吸着させたＦＳＭまたは本発明に係る固定化酵素のメソポーラスシリカを１ｍｌの５００ｍＭのアセトアルデヒド溶液に加え、２５℃、２４時間反応させた。反応混合物を遠心分離（２１０００Ｇ、１分間）し、４μｌの上清を薄層クロマトグラフィープレート(Ｓｉｌｉｃａ　Ｇｅｌ６０、メルク)にスポットし、１－ブタノール：酢酸：水＝４：１：１（ｖｏｌ／ｖｏｌ／ｖｏｌ）で展開後、p-アニスアルデヒドエタノール液で発色した。その結果を図９に示す。

　Ｐ-４に固定化したＤＥＲＡを用いた系では、担体に担持されていないフリーのＤＥＲＡと比較して４倍量の２，４，６－トリデオキシ－Ｄ－エリスロ－ヘキサピラノシドを生成した。このことからＰ-４に固定化することにより基質であるアルデヒド耐性が向上することが確認できた。

　［実施例６］（ニトリルヒドラターゼ吸着型の固定化酵素の性能試験）
　１．固定化酵素の調製
　バッファー溶液（２０ｍＭのリン酸カリウムと５０ｍＭの塩化カリウムの混合物、ｐＨ７．５）と、ニトリルヒドラターゼ（ＮＨａｓｅ）をバッファー溶液に溶かしたニトリルヒドラターゼ溶液（ニトリルヒドラターゼ濃度は２ｍｇ／ｍｌ）を用意した。

　バッファー溶液１ｍｌ、ラセマーゼ溶液１ｍｌ及び酵素固定化用担体１０ｍｇを混合し、混合溶液とした。混合溶液をインキュベータにて、温度４℃で２４時間保管することにより、酵素固定化用担体にラセマーゼが吸着してなる固定化酵素を調製した。

　２．固定化酵素におけるニトリルヒドラターゼの比活性測定
　得られた固定化酵素を０．１Ｍのリン酸緩衝液(ｐＨ７．５)２ｍｌに懸濁した。次にメタクリロニトリル２０ｍＭを含むリン酸緩衝液（活性測定溶液）の２ｍｌを、石英製キュベットに入れ、紫外分光光度計にセットした。

　活性測定溶液に１０μｇ相当のニトリルヒドラターゼを含む担体懸濁液を添加するのと同時に、波長２２４ｎｍの吸光度増加の記録を開始した。生成されるメタクリルアミドの吸光係数をε＝２．５２ｍＭ^-1ｃｍ^-1、１分間に１μｍｏｌの基質を触媒する活性を１ユニットとして、１ｍｇのＮＨａｓｅが持つ比活性を計算した。各種担体に固定化したＮＨａｓｅの比活性を図１０に示す。

　Ｇ-１Ｎは、担体に担持されていないフリーの酵素（「free」）に相当する高い比活性を示した。

　実施例４～６の酵素、およびこれらの実施例に記載の方法と同様の手法により固定化されたラッカーゼ、グルコアミラーゼ、アミラーゼおよびプロテアーゼについて、他の酵素とともに、酵素の特性を示す指標である分子量と等電点でマッピングした図を図１１に示す。同図には酵素のサブユニットも数字で表現した。このように様々な酵素をすべて固定化し高い活性が得られることを確認できた。

　［実施例７］
　一次粒子の平均粒子径の大きさを変えて、それぞれ合成した各蛋白質固定化用担体（多孔質シリカ粒子）の細孔径分布を測定した。

　１．測定に用いた蛋白質固定化用担体（多孔質シリカ粒子）
　本実施例で細孔径分布の測定に使用した各蛋白質固定化用担体（多孔質シリカ粒子）の製造方法等を以下に記す。

　細孔径３４ｎｍの蛋白質固定化用担体（多孔質シリカ粒子「Ｘ１」）は、シリカゾル（日揮触媒化成（株）製「ＳI-８０P」、平均粒子径８０ｎｍ、濃度４０質量％）の水希釈品（シリカ濃度１５質量％）２０００ｇを陽イオン交換し、ｐＨ＝２．０に調整した後、珪酸液（シリカ濃度４．８質量％）を、［シリカゾル中のシリカ］／［珪酸液中のシリカ］＝９／１の比率になるように加え、攪拌してスラリーを調製した。この球状シリカ微粒子分散液の固形分濃度を１５質量％に調整し、噴霧液とした。そして、入口温度２２０℃、出口温度５０℃の条件下で噴霧乾燥して得た。

　細孔径５７ｎｍの蛋白質固定化用担体（多孔質シリカ粒子「Ｘ２」）は、シリカゾル（日揮触媒化成（株）製「ＳＳ-１６０」、平均粒子径１６０ｎｍ、濃度４０質量％）の水希釈品（シリカ濃度１５質量％）２０００ｇを陽イオン交換し、ｐＨ＝２．０に調整した後、珪酸液（シリカ濃度４．８質量％）を、［シリカゾル中のシリカ］／［珪酸液中のシリカ］＝９／１の比率になるように加え、攪拌してスラリーを調製した。この球状シリカ微粒子分散液の固形分濃度を１５質量％に調整し、噴霧液とした。そして、入口温度２２０℃、出口温度５０℃の条件下で噴霧乾燥して得た。

　細孔径９５ｎｍの蛋白質固定化用担体（多孔質シリカ粒子「Ｘ３」）は、シリカゾル（日揮触媒化成（株）製「ＳＳ-３００」、平均粒子径３００ｎｍ、濃度４０質量％）の水希釈品（シリカ濃度１５質量％）２０００ｇを陽イオン交換し、ｐＨ＝２．０に調整した後、珪酸液（シリカ濃度４．８質量％）を、［シリカゾル中のシリカ］／［珪酸液中のシリカ］＝９／１の比率になるように加え、攪拌してスラリーを調製した。この球状シリカ微粒子分散液の固形分濃度を１５質量％に調整し、噴霧液とした。そして、入口温度２２０℃、出口温度５０℃の条件下で噴霧乾燥して得た。

　得られた多孔質シリカ粒子Ｘ１、Ｘ２及びＸ３の特徴を表３に記す。

　また、細孔径が４ｎｍ，７ｎｍ，１２ｎｍおよび２０ｎｍの蛋白質固定化用担体（多孔質シリカ粒子）として、前記多孔質シリカ粒子P３，Ｐ１，Ｐ２およびＰ４をそれぞれ使用した。

　なお、前記多孔質シリカ粒子Ｘ１～Ｘ３及び前記多孔質シリカ粒子Ｐ１～Ｐ４は何れも粒子表面にシラノール基を有するものである。

　２．各多孔質シリカ粒子についての細孔径分布の測定
　上記蛋白質固定化用担体（多孔質シリカ粒子）Ｘ１～Ｘ３及びＰ１～Ｐ４について、それぞれ細孔径分布を測定した。ここで、細孔径が20nmまでの担体については窒素吸着法により細孔容積及び細孔径を測定し、細孔径が20nmより大きい担体については水銀圧入法により細孔容積及び細孔径を測定した。

　測定により得られた細孔径分布を図１２に示す。ここで、図１２において、丸印で表される点を結ぶ曲線として表される窒素吸着法による細孔分布は、Log微分細孔容積分布、すなわち、細孔径ｄ（ｎｍ）に対する微分窒素ガス吸着量ΔＶ/Δ（ｌｏｇ（ｄ））（図１２中では、便宜上「ｄＶ/ｄｌｏｇｄ」と表記している。ここで、Ｖは窒素ガス吸着容積を表す。）の関係によって示してある。また、三角印で表される点を結ぶ曲線として表される水銀圧入法による細孔分布は、細孔径ｄに対するΔＶｄ（図１２中では、便宜上「ｄＶｄ」と表記している。）の関係によって示してある。

　なお、図１２のグラフのピークに記した値は、各担体の細孔径の平均値である。

　大半の酵素分子は、細孔径20nm程度の細孔内に固定化することが可能である。しかし、多量体を形成して活性を発揮するタイプの酵素の中には、20nmを超える大きさのものもある。本発明の蛋白質固定化用担体は、上記のように、細孔径を20nmより大きくすることができるので、20nmを超える多量体を形成する酵素を固定化できる。したがって、上記結果は、本発明によって、これらの酵素の固定化に適した大きさの細孔を有する蛋白質固定化用担体（多孔質シリカ粒子）を提供できることを示すものである。

　本発明に係る蛋白質固定化用担体は、酵素などの担体として有用である。

　また、本発明に係る固定化蛋白質は、酵素を利用した合成反応、例えば、化学合成、ファインケミカルの合成、医薬品合成又は食品製造等の技術分野において、各種合成反応に適用した酵素の安定性又は耐久性の改善、目的生産物の生産性の向上、目的物質の連続生産の実現又は生産物からの酵素の分離工程の省略などを実現するものである。また、本発明に係る固定化蛋白質は、各種酵素に適用可能である。

Claims

　内部に粒子間空隙構造を有する多孔質シリカ粒子からなり、
　該多孔質シリカ粒子が、下記(１)～(６)を満たし且つ表面にシラノール基、陰イオン交換基又は陽イオン交換基を有するものである
ことを特徴とする蛋白質固定化用担体：
　(１) 平均粒子径（Ｄａ）が０．５～１００μｍの範囲；
　(２) 比表面積が１０～２５０ｍ²／ｇの範囲；
　(３) 細孔容積（Ｐｖ）が０．１０～０．３２ｍｌ／ｇの範囲；
　(４) 細孔径分布（Ｘ軸：細孔径［Ｐｓ］、Ｙ軸：細孔容積を細孔径で微分した値）におけるピーク値の細孔径（Ｐｍｓ）が２～２００ｎｍの範囲；
　(５)（Ｐｍｓ）×０．７５～（Ｐｍｓ）×１．２５ｎｍの範囲内の細孔径を有する細孔の合計細孔容積が、全細孔容積の７０％以上；
　(６) 空隙率が５～５０％の範囲。
　前記多孔質シリカ粒子が、
　平均粒子径（Ｄｂ）１０～５００ｎｍ、真球度０．９～１の範囲、粒子径変動係数（ＣＶ値）が２～１０％の範囲にある球状シリカ微粒子であって、粒子径分布が単分散相を示す球状シリカ微粒子が集合した球状集合体からなる請求項１に記載の蛋白質固定化用担体。
　内部に粒子間空隙構造を有する多孔質シリカ粒子からなり、
　該多孔質シリカ粒子が、下記(１)～(６)を満たし且つ表面にシラノール基、陰イオン交換基又は陽イオン交換基を有するものである
ことを特徴とする蛋白質固定化用担体：
　(１) 平均粒子径（Ｄａ）が０．５～５０μｍの範囲；
　(２) 比表面積が１０～２５０ｍ²／ｇの範囲；
　(３) 細孔容積（Ｐｖ）が０．１０～０．３２ｍｌ／ｇの範囲；
　(４) 細孔径分布（Ｘ軸：細孔径［Ｐｓ］、Ｙ軸：細孔容積を細孔径で微分した値）におけるピーク値の細孔径（Ｐｍｓ）が２～５０ｎｍの範囲；
　(５)（Ｐｍｓ）×０．７５～（Ｐｍｓ）×１．２５ｎｍの範囲内の細孔径を有する細孔の合計細孔容積が、全細孔容積の８０％以上；
　(６) 空隙率が５～５０％の範囲。
　前記多孔質シリカ粒子が、
　平均粒子径（Ｄｂ）１０～５０ｎｍ、真球度０．９～１の範囲、粒子径変動係数（ＣＶ値）が２～１０％の範囲にある球状シリカ微粒子であって、粒子径分布が単分散相を示す球状シリカ微粒子が集合した球状集合体からなることを特徴とする請求項３に記載の蛋白質固定化用担体。
　前記陰イオン交換基が、アミノ基又は第４級アンモニウム基を構造中に含む置換基であることを特徴とする請求項１～４の何れかに記載の蛋白質固定化用担体。
　前記陽イオン交換基が、カルボキシル基、リン酸基及びスルホキシル基から選ばれる何れかの基を構造中に含む置換基であることを特徴とする請求項１～４の何れかに記載の蛋白質固定化用担体。
　前記多孔質シリカ粒子が、シランカップリング剤又は有機酸で表面処理されたものであることを特徴とする請求項１～６の何れかに記載の蛋白質固定化用担体。
　前記多孔質シリカ粒子が、アミノ基含有シランカップリング剤で処理された多孔質シリカ粒子を、さらに有機酸で表面処理したものであることを特徴とする請求項１～７の何れかに記載の蛋白質固定化用担体。
　酵素の固定化に用いられる請求項１～８の何れかに記載の蛋白質固定化用担体。
　複合酵素の固定化に用いられる請求項１～８の何れかに記載の蛋白質固定化用担体。
　請求項１～８の何れかに記載の蛋白質固定化用担体に、蛋白質を固定化してなる固定化蛋白質。
　前記蛋白質が酵素である、請求項１１に記載の固定化蛋白質。
　前記酵素がラセマーゼである請求項１２に記載の固定化蛋白質。
　前記酵素がデオキシリボアルドラーゼである請求項１２に記載の固定化蛋白質。
　請求項１～８の何れかに記載の蛋白質固定化用担体に、蛋白質を吸着させる工程を含む固定化蛋白質の製造方法。
　前記蛋白質が酵素である、請求項１５に記載の固定化蛋白質の製造方法。
　バッファー溶液中にて、４～２５℃の範囲で、蛋白質固定化用担体に蛋白質を吸着させることを特徴とする請求項１５又は１６に記載の固定化蛋白質の製造方法。