RU2755532C1 - Микрокапсулы, содержащие пробиотики и обеспечивающие поддержание активности их штаммов, и способ их получения - Google Patents

Микрокапсулы, содержащие пробиотики и обеспечивающие поддержание активности их штаммов, и способ их получения Download PDF

Info

Publication number
RU2755532C1
RU2755532C1 RU2020127014A RU2020127014A RU2755532C1 RU 2755532 C1 RU2755532 C1 RU 2755532C1 RU 2020127014 A RU2020127014 A RU 2020127014A RU 2020127014 A RU2020127014 A RU 2020127014A RU 2755532 C1 RU2755532 C1 RU 2755532C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
polysaccharide
wall material
probiotics
solution
temperature
Prior art date
Application number
RU2020127014A
Other languages
English (en)
Inventor
Фухуай ЦЗЯ
Ган Тао
Юань ЮАНЬ
Хунцзянь ТУ
Цайся ВАН
Цзюнь ВАН
Фэйфэй СЮН.
Лэй ЛЭЙ
Луюнь СЮЙ
Original Assignee
Нинбо Юйфантан Байолоджикал Сайенс Энд Текнолоджи Ко., Лтд.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Нинбо Юйфантан Байолоджикал Сайенс Энд Текнолоджи Ко., Лтд. filed Critical Нинбо Юйфантан Байолоджикал Сайенс Энд Текнолоджи Ко., Лтд.
Application granted granted Critical
Publication of RU2755532C1 publication Critical patent/RU2755532C1/ru

Links

Images

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23LFOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L33/00Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof
    • A23L33/10Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof using additives
    • A23L33/135Bacteria or derivatives thereof, e.g. probiotics
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23LFOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L29/00Foods or foodstuffs containing additives; Preparation or treatment thereof
    • A23L29/20Foods or foodstuffs containing additives; Preparation or treatment thereof containing gelling or thickening agents
    • A23L29/206Foods or foodstuffs containing additives; Preparation or treatment thereof containing gelling or thickening agents of vegetable origin
    • A23L29/231Pectin; Derivatives thereof
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23LFOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L29/00Foods or foodstuffs containing additives; Preparation or treatment thereof
    • A23L29/20Foods or foodstuffs containing additives; Preparation or treatment thereof containing gelling or thickening agents
    • A23L29/206Foods or foodstuffs containing additives; Preparation or treatment thereof containing gelling or thickening agents of vegetable origin
    • A23L29/238Foods or foodstuffs containing additives; Preparation or treatment thereof containing gelling or thickening agents of vegetable origin from seeds, e.g. locust bean gum or guar gum
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23LFOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L33/00Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof
    • A23L33/10Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof using additives
    • A23L33/105Plant extracts, their artificial duplicates or their derivatives
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23LFOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L33/00Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof
    • A23L33/10Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof using additives
    • A23L33/125Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof using additives containing carbohydrate syrups; containing sugars; containing sugar alcohols; containing starch hydrolysates
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23LFOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L33/00Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof
    • A23L33/10Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof using additives
    • A23L33/17Amino acids, peptides or proteins
    • A23L33/19Dairy proteins
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23LFOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L33/00Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof
    • A23L33/20Reducing nutritive value; Dietetic products with reduced nutritive value
    • A23L33/21Addition of substantially indigestible substances, e.g. dietary fibres
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23PSHAPING OR WORKING OF FOODSTUFFS, NOT FULLY COVERED BY A SINGLE OTHER SUBCLASS
    • A23P10/00Shaping or working of foodstuffs characterised by the products
    • A23P10/30Encapsulation of particles, e.g. foodstuff additives
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/66Microorganisms or materials therefrom
    • A61K35/74Bacteria
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K47/00Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
    • A61K47/30Macromolecular organic or inorganic compounds, e.g. inorganic polyphosphates
    • A61K47/36Polysaccharides; Derivatives thereof, e.g. gums, starch, alginate, dextrin, hyaluronic acid, chitosan, inulin, agar or pectin
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/48Preparations in capsules, e.g. of gelatin, of chocolate
    • A61K9/50Microcapsules having a gas, liquid or semi-solid filling; Solid microparticles or pellets surrounded by a distinct coating layer, e.g. coated microspheres, coated drug crystals
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23VINDEXING SCHEME RELATING TO FOODS, FOODSTUFFS OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES AND LACTIC OR PROPIONIC ACID BACTERIA USED IN FOODSTUFFS OR FOOD PREPARATION
    • A23V2002/00Food compositions, function of food ingredients or processes for food or foodstuffs

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Nutrition Science (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Inorganic Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Coloring Foods And Improving Nutritive Qualities (AREA)

Abstract

Группа изобретений относится к биотехнологии. Предложена микрокапсула, содержащая пробиотики и обеспечивающая поддержание их активности, и способ ее получения. Микрокапсула содержит пробиотики. При этом первый материал стенки микрокапсулы содержит казеин, мальц-экстракт и ксилоолигосахарид. Второй материал стенки содержит полисахарид Tremella fuciformis, полисахарид Bletilla striata, полисахарид Atractylodes macrocephala, гуаровую камедь и пектин в заданных соотношениях. Способ получения микрокапсулы предусматривает центрифугирование культуральной среды, содержащей пробиотические бактерии, удаление супернатанта с получением пробиотических бактерий. Перемешивают казеин, мальц-экстракт, ксилоолигосахарид и воду в заданных количествах с получением смешанного раствора первого материала стенки. При этом пробиотические бактерии добавляют в смешанный раствор первого материала стенки и перемешивают с получением бактериальной суспензии. Полученную бактериальную суспензию медленно впрыскивают в раствор галловой кислоты, отстаивают в течение 5-20 мин, собирают преципитат в виде микрогранул и промывают собранные микрогранулы в стерилизованной воде. Добавляют полисахарид Tremella fuciformis, полисахарид Bletilla striata, полисахарид Atractylodes macrocephala, гуаровую камедь и пектин в воду и перемешивают с получением смешанного раствора второго материала стенки. В полученный раствор вводят микрогранулы и перемешивают с получением бактериальной суспензии. Затем бактериальную суспензию медленно впрыскивают в раствор лактата кальция при концентрации 0,05-0,5 моль/л с обеспечением отверждения, промывают и фильтруют с получением микрокапсул с последующей их сублимационной сушкой. Группа изобретений позволяет уменьшить отрицательное влияние окружающей среды на активность пробиотиков и повысить качество пробиотического препарата. 2 н. и 7 з.п. ф-лы, 3 ил., 1 табл., 6 пр.

Description

Область техники
Настоящее изобретение относится к области биотехнологии и, в частности, к микрокапсулам, содержащим пробиотики и обеспечивающим поддержание их активности, и к способу их получения.
Предпосылки изобретения
Кишечник представляет собой самый большой из органов пищеварения и органов выведения токсинов в организме человека; состояние кишечника определяет цвет лица и красоту человека. В развернутом состоянии площадь желудочно-кишечного тракта организма человека по величине соответствует площади теннисного корта, при этом тонкая кишка в длину составляет приблизительно 4-6 метров, а толстая кишка в длину составляет приблизительно 1,5 метра. Кишечник также является наибольшим органом иммунной системы в организме человека, содержит наибольшую микроэкологическую систему в организме человека и обеспечивает приблизительно 80% иммунитета, при этом вес нормальной микрофлоры в нем составляет приблизительно 1,5 кг, количество микроорганизмов достигает 100 триллионов, а количество видов микрофлоры составляет 500-1000. Кишечник организма человека фактически представляет собой органическую структуру, основанную на симбиозе самих органов с находящимися в них популяциями микроорганизмов, при этом в кишечнике сохраняется динамическое равновесие полезной микрофлоры и вредной микрофлоры, что может способствовать перевариванию пищи, возникновению иммунных факторов и усилению аутоиммунной реакции организма; способствовать синтезу некоторых витаминов, улучшать усвоение лактозы, оберегать организм человека от вредного воздействия патогенных микроорганизмов, содействовать перистальтике кишечника и тормозить гниение внутри кишечника. Кишечный барьер является важным биологическим барьером организма человека; дисбаланс микрофлоры кишечника приводит к повреждению кишечного барьера, и сквозь него проникают вредные бактерии или эндотоксины, что вызывает воспалительную реакцию и разного рода недомогания. Результаты современных медицинских исследований говорят нам, что «старение начинается с кишечника» и «рак кишечника, рак молочной железы, пороки сердца, гипертония, старческое слабоумие и другие серьезные заболевания у взрослых тесно связаны со здоровьем кишечника».
По мере развития общества образ жизни и структура питания людей претерпевают колоссальные изменения; длительное использование компьютеров, мобильных телефонов и других электронных устройств, большое давление на работе, позднее засыпание при работе сверхурочно, очень редкие занятия спортом или физическими упражнениями, регулярное употребление сырой, холодной, острой и прочей вызывающей раздражение пищи, нерегулярное питание или чрезмерное употребление алкоголя будут приводить к недостаточному кровоснабжению желудочно-кишечного тракта, снижению иммунитета и уменьшению численности полезной микрофлоры кишечника, что вызовет ухудшение состояния здоровья.
Пробиотики представляют собой полезные микроорганизмы, обладающие биологической активностью; после приема в достаточном количестве они могут улучшать микроэкологическое равновесие в кишечнике хозяина и, кроме того, оказывать на здоровье хозяина благотворное влияние. В последние годы отрасль производства пробиотиков стремительно развивается, и они уже применяются в лекарственных средствах, пищевых продуктах, продуктах для поддержания здоровья и во многих других областях. В области медицины пробиотики в основном применяют для лечения диареи, запора, вагинита и других заболеваний; в пищевой промышленности пробиотики широко применяются с целью обеспечения брожения для получения пищевых продуктов с особым вкусом, например традиционных йогуртов, кисломолочных напитков, маринадов, столового уксуса, китайской водки и т. п.; в промышленности по производству продуктов для поддержания здоровья пробиотики производят в виде таблеток, капсул, гранул, порошков и т. п. для реализации разнообразных функций в отношении поддержания здоровья.
Чтобы пробиотики полностью выполняли свои функции по поддержанию здоровья и обеспечивали пробиотические функции, при потреблении человеком, они должны сохранять достаточную биологическую активность, при этом количество потребляемых живых клеток пробиотиков должно составлять 106 КОЕ/г, а согласно официальному стандарту, предложенному Всемирной организацией по продовольствию, по меньшей мере 106-107 КОЕ/г. Сегодня живые пробиотические бактерии, находящиеся в жидкой среде, при температуре 4°С или ниже могут храниться 3-14 дней; при применении традиционного способа инкапсулирования пробиотических бактерий в сухое обезжиренное молоко их срок хранения при температуре 4°С обычно составляет 42 дня, и очень трудно добиться явного улучшения. В качестве пробиотиков широко применяют лактобактерии (например, Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus casei, Lactobacillus bulgaricus и т. п.), стрептококки (например, Streptococcus thermophilus и т. п.) и бифидобактерии (например, Bifidobacterium bifidum, Bifidobacterium infantis, Bifidobacterium longum, Bifidobacterium breve, Bifidobacterium adolescentis и т. п.), которые при хранении легко поддаются воздействию внешней среды и инактивируются, поэтому то, как поддерживать активность соответствующих штаммов и увеличить срок хранения, стало технически тяжелой задачей, общепризнанной в отношении подобной продукции.
Суть изобретения
Техническая задача, решаемая с помощью настоящего изобретения, заключается в предоставлении с учетом предшествующего уровня техники микрокапсул, содержащих пробиотики, которые могут обеспечивать уменьшение отрицательного влияния факторов среды на активность пробиотиков и более длительное поддержание активности соответствующих штаммов, и как следствие повышают качество пробиотического препарата.
Еще одна техническая задача, решаемая с помощью настоящего изобретения, заключается в предоставлении с учетом предшествующего уровня техники способа получения указанных микрокапсул, содержащих пробиотики, которые могут обеспечивать уменьшение отрицательного влияния факторов среды на активность пробиотиков и более длительное поддержание активности соответствующих штаммов, и как следствие повышают качество пробиотического препарата.
Техническое решение, применяемое согласно настоящему изобретению для решения указанных технических задач, является следующим: микрокапсулы, содержащие пробиотики и обеспечивающие поддержание их активности, которые содержат содержимое и материал стенки, покрывающий содержимое снаружи, при этом указанный содержимое представляет собой пробиотики, характеризующиеся тем, что указанный материал стенки содержит первый материал стенки, покрывающий содержимое снаружи, и второй материал стенки, покрывающий первый материал стенки снаружи.
Указанный первый материал стенки содержит следующие компоненты: казеин, мальц-экстракт и ксилоолигосахарид;
указанный второй материал стенки содержит следующие компоненты: полисахарид Tremella fuciformis, полисахарид Bletilla striata, полисахарид Atractylodes macrocephala, гуаровую камедь и пектин.
После разбавления указанных первого и второго материалов стенки стерилизованной водой в качестве растворителя, где количество воды в 3-5 раз больше массы материалов стенки, с получением смешанных растворов осуществляют инкапсулирование.
В указанном решении массовое соотношение указанных пробиотиков и первого материала стенки составляет 1:(0,5-2); по весу в указанном первом материале стенки казеин составляет 5-15 частей, мальц-экстракт составляет 1-6 частей и ксилоолигосахарид составляет 0,5-3 части. Массовое соотношение указанных пробиотиков и второго материала стенки составляет 1:(0,5-1,5); по весу в указанном втором материале стенки полисахарид Tremella fuciformis составляет 2-8 частей, полисахарид Bletilla striata составляет 2-5 частей, полисахарид Atractylodes macrocephala составляет 3-6 частей, гуаровая камедь составляет 0,2-0,6 части и пектин составляет 0,6-1,2 части. Согласно настоящему изобретению за счет лучшего регулирования массового соотношения пробиотических бактерий и первого материала стенки и второго материала стенки, а также соотношения компонентов в каждом из материалов стенки, обеспечивается хорошая биологическая активность соответствующих штаммов в полученных микрокапсулах, возможность полного покрытия пробиотиков материалом стенки и предотвращение уменьшения количества живых бактерий или их напрасного расхода; в то же время повышается стабильность микрокапсул при сублимационной сушке, хранении в условиях высокой температуры и в процессе производственной обработки, повышается выживаемость содержащихся в них штаммов, улучшается активность штаммов, а также снижаются напрасные расходы и объем полученной некондиционной продукции. Размер частиц у микрокапсул, содержащих пробиотики, полученных указанным способом получения, составляет 75-150 мкм; распределение частиц по размерам является равномерным, а массу можно регулировать; степень инкапсулирования в микрокапсулы больше чем 96%.
Предпочтительно указанные пробиотики представляют собой одно или более из лактобактерий, бифидобактерий и стрептококков, при этом лактобактерии могут представлять собой Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus casei, Lactobacillus bulgaricus и другие штаммы; стрептококки могут представлять собой Streptococcus thermophilus и другие штаммы; бифидобактерии могут представлять собой Bifidobacterium bifidum, Bifidobacterium infantis, Bifidobacterium longum, Bifidobacterium breve, Bifidobacterium adolescentis и другие штаммы.
Способ получения указанных микрокапсул, содержащих пробиотики и обеспечивающих поддержание их активности, который характеризуется тем, что включает следующие этапы, на которых
(1) культуральную среду с активированной обогатительной культурой пробиотических бактерий подвергают обработке центрифугированием и после обработки удаляют супернатант с получением пробиотических бактерий;
(2) казеин, мальц-экстракт и ксилоолигосахарид добавляют в воду и перемешивают с получением смешанного раствора первого материала стенки; указанные пробиотические бактерии добавляют в смешанный раствор первого материала стенки и перемешивают с получением бактериальной суспензии; бактериальную суспензию с помощью распылителя медленно впрыскивают в раствор галловой кислоты с pH, равным 3,0-5,0, отстаивают 5-20 мин, собирают преципитат в виде микрогранул и промывают собранные микрогранулы в стерилизованной воде с pH 3,8-4,2;
(3) полисахарид Tremella fuciformis, полисахарид Bletilla striata, полисахарид Atractylodes macrocephala, гуаровую камедь и пектин добавляют в воду и перемешивают с получением смешанного раствора второго материала стенки, и полученные на этапе (2) микрогранулы вводят в смешанный раствор второго материала стенки и перемешивают с получением бактериальной суспензии; затем бактериальную суспензию с помощью распылителя медленно впрыскивают в раствор лактата кальция при концентрации 0,05-0,5 моль/л с обеспечением отверждения, промывают и фильтруют с получением микрокапсул;
(4) указанные микрокапсулы подвергают сублимационной сушке под вакуумом с получением сухого порошка, состоящего из микрокапсул, содержащих пробиотики.
Культуральная среда, используемая для указанной культуральной среды для пробиотических бактерий, представляет собой жидкую культуральную среду MRS, при этом температура культивирования составляет 36-40°С, время культивирования составляет 24-36 ч, температура при центрифугировании составляет 0-10°С, скорость вращения при центрифугировании составляет 4000-6000 об./мин, а время центрифугирования составляет 5-12 мин.
Растворитель, используемый для указанных смешанных растворов и промывочной жидкости, представляет собой стерилизованную воду; указанные культуральную среду MRS, смешанные растворы материалов стенки, раствор галловой кислоты и раствор лактата кальция подвергают высокотемпературной стерилизации влажным теплом, при этом температура стерилизации составляет 115-125°С, и время стерилизации составляет 15-30 мин.
Размер частиц у микрокапсул, содержащих пробиотики, полученных указанным способом получения, составляет 75-150 мкм; распределение частиц по размерам является равномерным, а массу можно регулировать, при этом степень инкапсулирования в микрокапсулы больше чем 92%, поэтому полученные микрокапсулы характеризуются отличной активностью штамма, могут выдерживать изменения многочисленных факторов среды, таких как свет, тепло, кислород, ионы металлов, величина pH и т. п., и обладают хорошей стабильностью.
Предпочтительно для указанной обработки центрифугированием на этапе (1) скорость вращения при центрифугировании составляет 4000-6000 об./мин, а время центрифугирования составляет 5-12 мин.
Предпочтительно для указанной сублимационной сушки под вакуумом на этапе (4) начальная температура предварительного замораживания составляет от -30 до -40°С, а скорость предварительного замораживания составляет 0,4-0,8°С/мин; конечная температура предварительного замораживания составляет -60°С; давление в сушильной камере составляет 40-100 Па; температура нагревательной плиты составляет 30-40°С; время сушки составляет 12-20 ч.
Предпочтительно способ получения указанного мальц-экстракта включает следующее:
(a) измельчение: проросший ячмень или высушенный ячмень измельчают с помощью технологии сверхтонкого измельчения в ультратонкий порошок проросшего ячменя или порошок высушенного ячменя с размером частиц 90-110 мкм;
(b) смешивание: порошок проросшего ячменя или высушенного ячменя в определенных пропорциях смешивают с дистиллированной водой с получением белковой дисперсии и pH дисперсии доводят до 6-7;
(c) ферментативное расщепление: дисперсию нагревают и поддерживают ее температуру в диапазоне 40-50°С; затем в дисперсию соответственно добавляют α-амилазу, β-амилазу и диспазу и после равномерного перемешивания подвергают ферментативному расщеплению продолжительностью от 2 ч до 4 ч, при этом α-амилазу добавляют в количестве, составляющем от 0,3% до 0,5% от содержания субстрата, β-амилазу добавляют в количестве, составляющем от 0,1% до 0,3% от содержания субстрата, и диспазу добавляют в количестве, составляющем от 0,2 до 0,4% от содержания субстрата; после завершения ферментативного расщепления выполняют высокотемпературную инактивацию ферментов;
(d) центробежную фильтрацию: прошедший инактивацию ферментов жидкий продукт ферментативного расщепления подвергают центрифугированию для удаления примесей, при этом поддерживают скорость вращения при центрифугировании 12000-16000 об./мин, а скорость подачи материала перистальтическим насосом составляет 1,5-3,5 л/мин; собирают супернатант, включают устройство мембранной фильтрации и подвергают супернатант фильтрации через микропористую фильтрующую мембрану, при этом толщина фильтрующей мембраны составляет 90-150 мкм, размер выделяемых частиц составляет 4-8 мкм, и рабочее давление составляет 0,01-0,2 МПа; обеспечивают прозрачность фильтрата путем отстаивания и удаляют остаток;
(e) концентрирование под вакуумом: фильтрат подвергают концентрированию под вакуумом, при этом температура концентрирования составляет 65-85°С, а степень вакуума составляет от -0,07 до -0,09 МПа, с получением концентрированного раствора, при этом относительная плотность удерживается в диапазоне 1,04-1,08;
(f) распылительную сушку: указанный концентрированный раствор подвергают распылительной сушке, при этом технологические параметры являются следующими: температура форсунок составляет 175-190°С, температура на выходе составляет 80-95°С, а скорость подачи материала составляет 1,5-3,5 л/мин; с получением указанного мальц-экстракта.
В качестве сырья для указанного мальц-экстракта отбирают высококачественный проросший ячмень/высушенный ячмень, из которого путем измельчения, смешивания и ферментативного расщепления получают сусло, а затем подвергают таким технологическим операциям, как центробежная фильтрация, концентрирование под вакуумом и распылительная сушка, с получением высококачественного мальц-экстракта. Поскольку в степень ферментативного расщепления мальц-экстракта достигает 90% или более, повышается энергоэффективность усвоения и использования организмом указанного экстракта, вплоть до того что переваривание не нужно или оно происходит в незначительной степени, и усвоение может происходить сразу.
Предпочтительно указанный полисахарид Bletilla striata/полисахарид Atractylodes macrocephala получают посредством следующих этапов:
(a) динамическая противоточная экстракция: измельченные Bletilla striata/Atractylodes macrocephala добавляют в воду, количество которой в 8-10 раз превышает вес сырья, и при 90-100°С проводят динамическую противоточную экстракцию с получением экстракта, при этом экстракцию проводят 1-3 раза, и продолжительность каждой экстракции составляет 1-3 часа;
(b) центрифугирование: экстракт подвергают центрифугированию с получением осветленного раствора;
(c) осаждение спиртом после концентрирования: осветленный раствор подвергают концентрированию под вакуумом, при этом относительная плотность удерживается в диапазоне 1,10-1,20; в концентрированный раствор добавляют пищевой спирт, при этом содержание спирта в смеси достигает 40-80%, тщательно и равномерно перемешивают и отстаивают в течение ночи; из супернатанта рекуперируют растворитель; и осадок сохраняют для последующего использования;
(d) ионный обмен: полисахарид, полученный с помощью осаждения спиртом, растворяют в 4-8-кратном количестве дистиллированной воды и после тщательного перемешивания и растворения фильтруют; полученный после фильтрования фильтрат пропускают через ионообменную колонку и колонку с активированным углем, проводят обработку для удаления примесей и обесцвечивания;
(e) концентрирование под вакуумом: раствор, полученный после осуществления ионного обмена, подвергают концентрированию под вакуумом, при этом температура концентрирования составляет 60-80°С, а степень вакуума составляет от -0,07 до -0,09 МПа, с получением концентрированного раствора полисахарида, при этом относительная плотность удерживается в диапазоне 1,03-1,06;
(f) распылительная сушка: концентрированный раствор полисахарида после стерилизации и фильтрования подвергают распылительной сушке, при этом технологические параметры являются следующими: температура форсунок составляет 170-185°С, температура на выходе составляет 75-95°С, а скорость подачи материала составляет 2,0-4,0 л/мин, с получением указанного полисахарида Bletilla striata/полисахарида Atractylodes macrocephala.
Степень экстракции полисахарида в случае полисахарида Bletilla striata/полисахарида Atractylodes macrocephala соответственно составляет 35% и 8% или более. Полисахарид Bletilla striata/полисахарид Atractylodes macrocephala получают путем осуществления в отношении Bletilla striata/Atractylodes macrocephala таких технологических операций, как измельчение, динамическая противоточная экстракция, центрифугирование, осаждение спиртом после концентрирования, ионный обмен, концентрирование под вакуумом и распылительная сушка. Динамическая противоточная экстракция делает возможным полное использование градиента концентрации жидкой и твердой фаз; постепенно активные составляющие распространяются в экстракт, у которого начальная концентрация сравнительно низкая, и экстракт выходного продукта достигает сравнительно высокой равновесной концентрации; можно как обеспечить определенную степень экстракции экстрагируемого вещества, так и экономить источники энергии, сократить время экстракции и значительно уменьшить объем работы и потребление энергии, связанные с последующей операцией концентрирования, чем можно полностью решить проблему периодически останавливаемой экстракции в одном резервуаре, широко используемой сегодня.
Предпочтительно указанный полисахарид Tremella fuciformis получают посредством следующих этапов:
(a) ферментативное расщепление: с помощью технологии сверхтонкого измельчения Tremella fuciformis измельчают с получением ультратонкого порошка Tremella fuciformis с размером частиц 90-110 мкм; добавляют воду, количество которой в 30-50 раз превышает вес сырья, и 0,5-2% пектиназы; проводят ферментативное расщепление при постоянной температуре 40-50°С в течение 30-90 мин; нагревают до 95°С или больше для инактивации ферментов;
(b) экстракция: проводят экстракцию при поддержании температуры в диапазоне 95-100°С; фильтруют через сито 500 меш с получением экстракта полисахарида Tremella fuciformis, при этом экстракцию проводят 1-2 раза и продолжительность каждой экстракции составляет 1-3 часа;
(c) ионный обмен: полученный после фильтрования экстракт полисахарида Tremella fuciformis пропускают через ионообменную колонку и колонку с активированным углем, проводят обработку для удаления примесей и обесцвечивания;
(d) концентрирование под вакуумом: раствор, полученный после осуществления ионного обмена, подвергают концентрированию под вакуумом, при этом температура концентрирования составляет 60-80°С, а степень вакуума составляет от -0,07 до -0,09 МПа, с получением концентрированного раствора полисахарида Tremella fuciformis, при этом относительная плотность удерживается в диапазоне 1,02-1,04;
(e) сублимационная сушка под вакуумом: из концентрированного раствора полисахарида Tremella fuciformis с помощью технологии сублимационной сушки под вакуумом получают порошок полисахарида Tremella fuciformis, при этом начальная температура предварительного замораживания составляет от -35 до -45°С, скорость предварительного замораживания составляет 0,2-0,5°С/мин; конечная температура предварительного замораживания составляет -65°С; давление в сушильной камере составляет 50-120 Па; температура нагревательной плиты составляет 30-40°С; и время сушки составляет 16-24 ч.
указанный полисахарид Tremella fuciformis получают путем проведения в отношении Tremella fuciformis таких технологических операций, как измельчение, ферментативное расщепление, экстракция, ионный обмен, концентрирование под вакуумом и сублимационная сушка под вакуумом. Степень экстракции полисахарида в случае полисахарида Tremella fuciformis достигает 36% или больше.
По сравнению с аналогами, известными из уровня техники, преимущества настоящего изобретения заключаются в том, что в микрокапсулах, содержащих пробиотики и обеспечивающих поддержание их активности, согласно настоящему изобретению применяется структура из комбинированного материала стенки, образованного первым материалом стенки и вторым материалом стенки; при этом первый материал стенки представляет собой полисахаридный комплексный гель с белками растительного происхождения, полученный из казеина, мальц-экстракта и ксилоолигосахарида, что может хорошо предотвращать повреждение содержимого светом, теплом, кислородом, ионами металлов и т. п. и активно способствовать стабильности инкапсулированных веществ; второй материал стенки представляет собой соединение на основе растительных полисахаридов, полученное из полисахарида Tremella fuciformis, полисахарида Bletilla striata, полисахарида Atractylodes macrocephala, гуаровой камеди и пектина, что может в значительной степени уменьшать влияние технологии обработки сублимационной сушкой под вакуумом на биологическую активность штамма пробиотиков в качестве содержимого; в то же время, когда первый материал стенки снаружи покрыт вторым материалом стенки, первый материал стенки, содержащий большое количество белков, может усиливать эффект второго материала стенки в отношении образования пленки и инкапсулирования и тем самым в целом повышать эксплуатационные качества комбинированного материала стенки, чтобы комбинированный материал стенки обеспечивал лучшую защиту активности содержимого и значительно повышал стабильность содержимого, чтобы полученные микрокапсулы обладали высокой кислотоустойчивостью и за счет этого могли выдерживать испытание с использованием желудочной кислоты, а бактерии могли высвобождаться и размножаться в определенных участках кишечника, что повышало бы биодоступность пробиотиков.
В способе получения согласно настоящему изобретению применяют динамическую противоточную экстракцию, концентрирование под вакуумом, ферментативное расщепление для отделения и очистки, ионный обмен, микроинкапсуляцию, сублимационную сушку под вакуумом с получением микрокапсул, содержащих пробиотики; за счет того, что для получения микрокапсул одновременно используют натуральное сырье и пробиотики, возможно максимальное сохранение биологической активности пробиотиков, улучшение эксплуатационных качеств пробиотиков и увеличение срока их хранения. Во многих традиционных способах инкапсулирования пробиотиков в микрокапсулы в качестве материала стенки капсулы применяют аравийскую камедь, полиамид, поливиниловый спирт, полиэтиленгликоль, альгинат натрия и карбоксиметилцеллюлозу натрия, при этом такие материалы для инкапсулирования характеризуются высокой механической прочностью и низкими массообменными характеристиками, и, в частности, некоторые из таких сырьевых материалов обладают определенной токсичностью, поэтому существует риск в отношении безопасности определенных пищевых продуктов, тогда как применение натурального сырья согласно настоящему изобретению улучшает условия хранения пробиотиков, и тем самым реализуются цели по поддержанию активности штамма и улучшению работы желудочно-кишечного тракта.
В частности, Bletilla striata представляет собой сушеный клубень растения, который богат на вязкий полисахарид, горький, сладкий, терпкий, слегка охлаждающий на вкус, и ассоциирована с меридианами легких, печени и желудка. Ее действие заключается в сдерживании и остановке кровотечения, снятии отека и способствовании восстановлению тканей, поэтому она применяется при внешних и внутренних кровоточащих ранах, нарывах и язвах, растрескивании кожи. Она обладает хорошим лечебным действием в отношении повреждений желудочно-кишечного тракта и язвы желудка и может защищать слизистую оболочку желудка и обеспечивать ее восстановление. Atractylodes macrocephala представляет собой сушеный корень растения, который богат на полисахарид, горький, сладкий, теплый на вкус, и ассоциирован с меридианом селезенки и желудка. Его действие заключается в укреплении селезенки, осушении сырости, устранении задержки жидкости, подавлении потоотделения и предотвращении выкидыша. Применяется при недостаточности селезенки, снижении аппетита, вздутии живота, диарее, функциональной диспепсии, учащенном сердцебиении, водянке, потливости, беспокойстве зародыша и может укреплять селезенку и желудок. Tremella fuciformis представляет собой плодовое тело Tremella fuciformis, гриба из отдела базидиомицетов, который богат на вязкий полисахаридный компонент, имеет сладкий и легкий на вкус, по природе является неядовитым и как тонизирует почки, является полезным для органов пищеварения, укрепляет желудок, так и благотворно действует на ци и кровь, подкрепляет инь легких и приводит в порядок кожу лица, а также может укреплять иммунитет организма человека и повышать переносимость радио- и химиотерапии у больных раком. Казеин представляет собой белок, связывающий фосфор и кальций, и в большом количестве содержится в молоке млекопитающих, в том числе в коровьем, козьем и женском; казеин является как источником аминокислот, так и источником кальция и фосфора; при переваривании в желудке казеин образует сгустки. Казеин можно применять для лечения зубного кариеса, лечения и профилактики остеопороза и рахита, регулирования кровяного давления, лечения железодефицитной анемии, невритов, вызванных дефицитом магния, и обеспечивать другие физиологические действия, и он может способствовать высокоэффективному усваиванию организмом человека минералов и микроэлементов. Мальц-экстракт представляет собой натуральный пищевой продукт, для которого в качестве сырья отбирается высококачественный проросший ячмень (высушенный ячмень) и который изготавливается целиком из зерновых культур, содержит витамины, минералы и растворимые пищевые волокна, богат на глюкозу, мальтозу, олигосахариды, низкомолекулярные белковые пептиды, различные незаменимые для организма человека аминокислоты и заменимые аминокислоты, а также содержит активные полисахариды, представляющие собой β-декстран, которые являются натуральными питательными веществами. ксилоолигосахарид представляет собой пребиотик, функциональный углеводный полимер, образованный из 2-7 молекул ксилозы путем их соединения β-1,4-гликозидными связями; ксилоолигосахарид очень трудно расщепляется пищеварительными ферментами организма человека, и он снижает количество возникающих токсичных продуктов ферментации и ферментов вредных бактерий, подавляет патогенные микроорганизмы и диарею, защищает печень, снижает уровень холестерина в сыворотке крови, снижает кровяное давление, укрепляет иммунитет организма, стимулирует перистальтику кишечника с обеспечением предотвращения запора, способствует размножению полезных бактерий в желудочно-кишечном тракте животных и обеспечивает улучшение в отношении равновесия бактериальной флоры. Гуаровая камедь представляет собой высокоочищенный природный полисахарид, экстрагированный из выращиваемого в большом количестве бобового растения гуар. Гуаровая камедь представляет собой природный высокомолекулярный гидроколлоид и принадлежит к природным галактоманнанам, природным загустителям. Пектины в большом количестве присутствуют в плодах, корнях и листьях растений и являются компонентами клеточной стенки. Пектины после растворения в воде образуют молочно-белый, вязкий коллоидный раствор, проявляют слабую кислотность, высокую теплостойкость и могут образовывать обладающий упругостью гель.
В настоящем изобретении применяются лекарственные средства китайской медицины, подкрепляющие инь легких, благотворно влияющие на органы пищеварения и укрепляющие желудок, такие как Tremella fuciformis, Bletilla striata, Atractylodes macrocephala и т. д.; в сочетании с казеином, мальц-экстрактом, ксилоолигосахаридом, а также пектином, гуаровой камедью и прочим сырьем природного происхождения они могут обеспечивать хорошую микроинкапсуляцию, что существенно повышает активность штамма пробиотиков, увеличивает срок хранения и повышает устойчивость пробиотиков к действию желудочной кислоты, могут обеспечивать беспрепятственную доставку в кишечник с последующим высвобождением; одновременно с обеспечением улучшения в отношении экологического равновесия в кишечнике и желудке белки и активные полисахариды в материалах стенки могут предоставлять пробиотикам достаточно питательных веществ, что может дополнительно благотворно влиять на органы пищеварения и укреплять желудок.
Настоящее изобретение за счет применения технологии инкапсулирования в двухслойные микрокапсулы из натурального сырья оставляет позади традиционные технологии, в которых инкапсулирование выполняют в однослойные микрокапсулы для пробиотиков. Сначала пробиотические бактерии покрывают белками, ксилоолигосахаридом, мальц-экстрактом и др. с получением стабильного ядра конденсации; затем осуществляют второе инкапсулирование, нанося на указанное ядро конденсации натуральные растительные полисахариды и натуральные высокомолекулярные соединения; с помощью технологии отверждения снаружи пробиотиков можно получить стабильную оболочку микрокапсулы. Микрокапсулы, содержащие пробиотики, полученные с помощью указанной технологии инкапсулирования в двухслойные микрокапсулы, характеризуются очень стабильной биологической активностью штамма и могут выдерживать разъедающее действие желудочной кислоты; после повышения величины pH в кишечнике оболочки капсул естественным образом полностью и быстро растворяются с высвобождением большого количества пробиотиков, при этом степень высвобождения в кишечном соке достигает 86% или более, и в кишечник доставляется достаточно питательных веществ. Пробиотики после инкапсулирования в микрокапсулы характеризуются стабильной биологической активностью и продолжительным сохранением жизнеспособности, при этом в отношении стойкости к высокой температуре, стойкости к замораживанию, стойкости к действию света и стойкости к высокой активности кислорода их характеристики являются еще более замечательными, и по сравнению с продукцией в виде пробиотиков, которые не были инкапсулированы в микрокапсулы, их срок хранения увеличивается в 2,5 раза или более.
Согласно настоящему изобретению в материале стенки капсулы применяется полисахарид Bletilla striata, полисахарид Tremella fuciformis, полисахарид Atractylodes macrocephala и ксилоолигосахарид, которые в качестве комплекса полисахаридов вводятся в систему материала стенки, при этом вязкий полисахарид Bletilla striata может сдерживать и останавливать кровотечение, снимать отек, защищать и восстанавливать слизистую оболочку желудочно-кишечного тракта; полисахарид Tremella fuciformis благотворно действует на ци и кровь, тонизирует почки, полезен для органов пищеварения и укрепляет желудок; полисахарид Atractylodes macrocephala может укреплять селезенку и желудок; экстракт из этих лекарственных средств китайской медицины комбинируется с сильнодействующим пребиотиком в виде ксилоолигосахарида и одновременно с поддержанием активности штамма в микрокапсулах, содержащих пробиотики, также может защищать желудочно-кишечный тракт, способствовать быстрому размножению пробиотиков, что в большей степени повышает реальное действие и биодоступность указанных микрокапсул.
Способ получения микрокапсул, содержащих пробиотики, согласно настоящему изобретению характеризуется довольно широкой применимостью и подходит для производства микрокапсул, содержащих одно или более из таких пробиотиков, как лактобактерии, бифидобактерии и стрептококки, при этом операции выполняются просто и легко, процесс простой и стабильный, массу можно регулировать, эффективность производства высокая и экономическая добавленная стоимость высокая, поэтому он является подходящим для крупномасштабного промышленного производства.
Описание прилагаемых графических материалов
На фиг. 1 представлен график изменения количества живых пробиотических бактерий в йогурте в пределах срока хранения в примере осуществления 6 настоящего изобретения;
На фиг. 2 представлен график изменения выживаемости в кислой среде пробиотических бактерий и живых бактерий в порошке, состоящем из микрокапсул, согласно настоящему изобретению;
На фиг. 3 представлен график результатов ускоренного испытания активности пробиотических бактерий и штамма в порошке, состоящем из микрокапсул, согласно настоящему изобретению.
Конкретные примеры осуществления
Ниже со ссылками на прилагаемые графические материалы настоящее изобретение описано более подробно с помощью примеров осуществления.
Пример осуществления 1
В этом примере осуществления микрокапсулы, содержащие пробиотики и обеспечивающие поддержание их активности, содержали содержимое и материал стенки, покрывающий содержимое снаружи, при этом содержимое представлял собой пробиотики; материал стенки содержал первый материал стенки, покрывающий содержимое снаружи, и второй материал стенки, покрывающий первый материал стенки снаружи; первый материал стенки содержал следующие компоненты: казеин, мальц-экстракт и ксилоолигосахарид; второй материал стенки содержал следующие компоненты: полисахарид Tremella fuciformis, полисахарид Bletilla striata, полисахарид Atractylodes macrocephala, гуаровую камедь и пектин; пробиотики представляли собой Lactobacillus acidophilus; после 4-кратного разбавления указанных первого и второго материалов стенки стерилизованной водой в качестве растворителя с получением смешанных растворов, осуществляли инкапсулирование. Массовое соотношение бактерий Lactobacillus acidophilus и первого материала стенки составляло 1:1; в первом материале стенки казеин составлял 12 частей, мальц-экстракт составлял 6 частей, ксилоолигосахарид составлял 0,5 части. Массовое соотношение бактерий Lactobacillus acidophilus и второго материала стенки составляло 1:1,5; во втором материале стенки полисахарид Tremella fuciformis составлял 3 части, полисахарид Bletilla striata составлял 5 частей, полисахарид Atractylodes macrocephala составлял 3 части, гуаровая камедь составляла 0,2 части, пектин составлял 1 часть.
В этом примере осуществления мальц-экстракт получали путем проведения в отношении проросшего ячменя (высушенного ячменя) таких технологических операций, как измельчение, смешивание, ферментативное расщепление, центробежная фильтрация, концентрирование под вакуумом и распылительная сушка, при этом конкретные этапы получения являются следующими:
(a) измельчение: проросший ячмень или высушенный ячмень с помощью технологии сверхтонкого измельчения измельчали в ультратонкий порошок с размером частиц приблизительно 100 мкм;
(b) смешивание: порошок проросшего ячменя или порошок высушенного ячменя в определенных пропорциях смешивали с дистиллированной водой с получением белковой дисперсии и pH дисперсии доводят до 6,5;
(c) ферментативное расщепление: осуществляли нагревание и поддерживали температуру равной 45°С; затем в дисперсию соответственно добавляли α-амилазу, β-амилазу и диспазу и после равномерного перемешивания подвергали ферментативному расщеплению продолжительностью 2 ч, при этом α-амилазу добавляли в количестве, составляющем 0,3% от содержания субстрата, β-амилазу добавляли в количестве, составляющем 0,3% от содержания субстрата, и диспазу добавляли в количестве, составляющем 0,2% от содержания субстрата; после завершения ферментативного расщепления выполняли высокотемпературную инактивацию ферментов;
(d) центробежная фильтрация: прошедший инактивацию ферментов жидкий продукт ферментативного расщепления подвергали центрифугированию для удаления примесей, при этом поддерживали скорость вращения при центрифугировании 14000 об./мин, а скорость подачи материала перистальтическим насосом составляла 2,5 л/мин; собирали супернатант, включали устройство мембранной фильтрации и подвергали супернатант фильтрации через микропористую фильтрующую мембрану, при этом толщина фильтрующей мембраны составляла 90 мкм, размер выделяемых частиц составлял 8 мкм, и рабочее давление составляло 0,1 МПа; обеспечивали прозрачность фильтрата путем отстаивания и удаляли остаток;
(e) концентрирование под вакуумом: фильтрат подвергали концентрированию под вакуумом, при этом температура концентрирования составляла 75°С, а степень вакуума составляла -0,08 МПа, с получением концентрированного раствора, при этом относительная плотность удерживалась равной 1,04;
(f) распылительная сушка: указанный концентрированный раствор подвергали распылительной сушке, при этом технологические параметры являлись следующими: температура форсунок составляла 175°С, температура на выходе составляла 90°С, а скорость подачи материала составляла 2,5 л/мин, с получением мальц-экстракта, соответствующего требованиям качества.
Поскольку степень ферментативного расщепления указанного мальц-экстракта достигает 90% или более, повышается энергоэффективность усвоения и использования организмом указанного экстракта, вплоть до того что переваривание не нужно или оно происходит в незначительной степени, и усвоение может происходить сразу.
В этом примере осуществления полисахарид Bletilla striata и полисахарид Atractylodes macrocephala получали одинаковым способом получения, в котором Bletilla striata/Atractylodes macrocephala подвергали таким технологическим операциям, как измельчение, динамическая противоточная экстракция, центрифугирование, осаждение спиртом после концентрирования, ионный обмен, концентрирование под вакуумом и распылительная сушка. Конкретный процесс получения являлся следующим:
(a) динамическая противоточная экстракция: измельченные Bletilla striata или Atractylodes macrocephala, добавляли в воду, количество которой в 10 раз превышало вес сырья, и при 95°С проводили динамическую противоточную экстракцию с получением экстракта, при этом экстракцию проводили 2 раза и продолжительность каждой экстракции составляла 2 часа;
(b) центрифугирование: экстракт подвергали центрифугированию с получением осветленного раствора;
(c) осаждение спиртом после концентрирования: осветленный раствор подвергали концентрированию под вакуумом, при этом относительная плотность удерживалась равной 1,12; в концентрированный раствор добавляли пищевой спирт, при этом содержание спирта в смеси достигало 50%, тщательно и равномерно перемешивали и отстаивали в течение ночи; из супернатанта рекуперировали растворитель; осадок сохраняли для последующего использования;
(d) ионный обмен: полисахарид, полученный с помощью осаждения спиртом, растворяли в 6-кратном количестве дистиллированной воды и после тщательного перемешивания и растворения фильтровали; полученный после фильтрования фильтрат пропускали через ионообменную колонку и колонку с активированным углем, проводили обработку для удаления примесей и обесцвечивания;
(e) концентрирование под вакуумом: раствор, полученный после осуществления ионного обмена, подвергали концентрированию под вакуумом, при этом температура концентрирования составляла 60°С, а степень вакуума составляла -0,09 МПа, с получением концентрированного раствора полисахарида, при этом относительная плотность удерживалась на уровне 1,04;
(f) распылительная сушка: концентрированный раствор полисахарида после стерилизации и фильтрования подвергали распылительной сушке, при этом технологические параметры являлись следующими: температура форсунок составляла 180°С, температура на выходе составляла 85°С, а скорость подачи материала составляла 2,0 л/мин, с получением полисахарида Bletilla striata или полисахарида Atractylodes macrocephala.
Степень экстракции полисахарида в случае полисахарида Bletilla striata и полисахарида Atractylodes macrocephala соответственно составляла 35,2% и 8,28%.
В этом примере осуществления полисахарид Tremella fuciformis получали путем проведения в отношении Tremella fuciformis таких технологических операций, как измельчение, ферментативное расщепление, экстракция, ионный обмен, концентрирование под вакуумом и сублимационная сушка под вакуумом. Конкретный процесс получения являлся следующим:
(a) ферментативное расщепление: в ультратонкий порошок измельченной Tremella fuciformis добавляли воду, количество которой в 50 раз превышало вес сырья, и 0,5% пектиназы; проводили ферментативное расщепление при постоянной температуре 50°С в течение 60 мин; нагревали до 95°С или больше для инактивации ферментов;
(b) экстракция: проводили экстракцию при поддержании температуры равной 95°С; фильтровали через сито 500 меш с получением экстракта полисахарида Tremella fuciformis, при этом экстракцию проводили 2 раза и продолжительность каждой экстракции составляла 2 часа;
(c) ионный обмен: полученный после фильтрования экстракт полисахарида Tremella fuciformis пропускают через ионообменную колонку и колонку с активированным углем, проводят обработку для удаления примесей и обесцвечивания;
(d) концентрирование под вакуумом: раствор, полученный после осуществления ионного обмена, подвергали концентрированию под вакуумом, при этом температура концентрирования составляла 65°С, а степень вакуума составляла -0,09 МПа, с получением концентрированного раствора полисахарида Tremella fuciformis, при этом относительная плотность удерживалась на уровне 1,02;
(e) сублимационная сушка под вакуумом: из концентрированного раствора полисахарида Tremella fuciformis с помощью технологии сублимационной сушки под вакуумом получали порошок полисахарида Tremella fuciformis, при этом начальная температура предварительного замораживания составляла -45°С, скорость предварительного замораживания составляла 0,2°С/мин; конечная температура предварительного замораживания составляла -65°С; давление в сушильной камере составляло 50 Па; температура нагревательной плиты составляла 30°С; время сушки составляло 24 ч.
Степень экстракции полисахарида в случае полисахарида Tremella fuciformis достигала 37,4%.
В этом примере осуществления способ получения микрокапсул, содержащих пробиотики и обеспечивающих поддержание их активности, являлся следующим.
(1) Культивирование и выделение штамма: штамм Lactobacillus acidophilus высевали в жидкую культуральную среду MRS для активации обогатительной культуры, при этом температура культивирования составляла 37°С, а время культивирования составляло 24 ч указанную культуральную среду подвергали низкотемпературной обработке центрифугированием, удаляли супернатант и собирали полученные бактерии Lactobacillus acidophilus, при этом температура при центрифугировании составляла 4°С, скорость вращения при центрифугировании составляла 5000 об./мин, а время центрифугирования составляло 10 мин.
(2) Покрытие первым материалом стенки: указанные бактерии Lactobacillus acidophilus добавляли в смешанный раствор первого материала стенки и тщательно перемешивали с получением бактериальной суспензии, при этом время перемешивания составляло 8 мин; затем указанную бактериальную суспензию с помощью центробежного распылителя медленно впрыскивали в раствор галловой кислоты с pH 4,0; отстаивали 15 мин, собирали преципитат в виде микрогранул и несколько раз промывали стерилизованной водой, pH которой был отрегулирован до 4,0.
(3) Покрытие вторым материалом стенки: указанные микрогранулы вводили в смешанный раствор второго материала стенки, равномерно перемешивали в течение 5 мин с получением бактериальной суспензии; затем указанную бактериальную суспензию с помощью центробежного распылителя медленно впрыскивали в 0,2 моль/л раствор лактата кальция, оставляли с обеспечением отверждения на 30 мин, промывали и фильтровали с получением микрокапсул.
(4) Сублимационная сушка под вакуумом: указанные микрокапсулы подвергали сублимационной сушке под вакуумом с получением сухого порошка, состоящего из микрокапсул с Lactobacillus acidophilus, при этом начальная температура предварительного замораживания составляла -35°С, скорость предварительного замораживания составляла 0,6°С/мин; конечная температура предварительного замораживания составляла -60°С; давление в сушильной камере составляло 60 Па; температура нагревательной плиты составляла 35°С; время сушки составляло 18 ч.
Растворитель, используемый для указанных смешанных растворов и промывочной жидкости, представлял собой стерилизованную воду; указанные культуральную среду MRS, смешанные растворы материалов стенки, раствор галловой кислоты и раствор лактата кальция подвергали высокотемпературной стерилизации влажным теплом, при этом температура стерилизации составляла 121°С, и время стерилизации составляло 20 мин. В полученном указанным способом получения сухом порошке, состоящем из микрокапсул с Lactobacillus acidophilus, количество живых бактерий составляло 1,92×1011 КОЕ/мл, размер частиц составлял 100 мкм, распределение частиц по размерам являлось равномерным, а массу можно было регулировать, при этом степень инкапсулирования в микрокапсулы составляла больше 92%, поэтому полученные микрокапсулы характеризовались отличной активностью штамма, могли выдерживать изменения многочисленных факторов среды, таких как свет, тепло, кислород, ионы металлов, величина pH и т. п., и обладали хорошей стабильностью.
Пример осуществления 2. В этом примере осуществления способ получения микрокапсул, содержащих пробиотики и обеспечивающих поддержание их активности, является таким же, как и в примере осуществления 1, и разница заключается в том, что в этом примере осуществления пробиотики представляли собой Bifidobacterium longum; после 5-кратного разбавления указанных первого и второго материалов стенки стерилизованной водой в качестве растворителя с получением смешанных растворов, осуществляли инкапсулирование. Массовое соотношение пробиотиков и первого материала стенки составляло 1:0,75; в первом материале стенки казеин составлял 15 частей, мальц-экстракт составлял 6 частей, ксилоолигосахарид составлял 3 части. Массовое соотношение пробиотиков и второго материала стенки составляло 1: 1,2; во втором материале стенки полисахарид Tremella fuciformis составлял 8 частей, полисахарид Bletilla striata составлял 5 частей, полисахарид Atractylodes macrocephala составлял 6 частей, гуаровая камедь составляла 0,6 части, пектин составлял 1,2 части.
В этом примере осуществления мальц-экстракт получали путем проведения в отношении проросшего ячменя (высушенного ячменя) таких технологических операций, как измельчение, смешивание, ферментативное расщепление, центробежная фильтрация, концентрирование под вакуумом и распылительная сушка, при этом конкретные этапы получения являются следующими:
(a) измельчение: проросший ячмень или высушенный ячмень с помощью технологии сверхтонкого измельчения измельчали в ультратонкий порошок с размером частиц приблизительно 110 мкм;
(b) смешивание: порошок проросшего ячменя или порошок высушенного ячменя в определенных пропорциях смешивали с дистиллированной водой с получением белковой дисперсии и pH дисперсии доводят до 6,0;
(c) ферментативное расщепление: осуществляли нагревание и поддерживали температуру равной 40°С; затем в дисперсию соответственно добавляли α-амилазу, β-амилазу и диспазу и после равномерного перемешивания подвергали ферментативному расщеплению продолжительностью 2 ч, при этом α-амилазу добавляли в количестве, составляющем 0,4% от содержания субстрата, β-амилазу добавляли в количестве, составляющем 0,2% от содержания субстрата, и диспазу добавляли в количестве, составляющем 0,3% от содержания субстрата; после завершения ферментативного расщепления выполняли высокотемпературную инактивацию ферментов;
(d) центробежная фильтрация: прошедший инактивацию ферментов жидкий продукт ферментативного расщепления подвергали центрифугированию для удаления примесей, при этом поддерживали скорость вращения при центрифугировании 14000 об./мин, а скорость подачи материала перистальтическим насосом составляла 3,0 л/мин; собирали супернатант, включали устройство мембранной фильтрации и подвергали супернатант фильтрации через микропористую фильтрующую мембрану, при этом толщина фильтрующей мембраны составляла 90 мкм, размер выделяемых частиц составлял 6 мкм, и рабочее давление составляло 0,15 МПа; обеспечивали прозрачность фильтрата путем отстаивания и удаляли остаток;
(e) концентрирование под вакуумом: фильтрат подвергали концентрированию под вакуумом, при этом температура концентрирования составляла 80°С, а степень вакуума составляла -0,08 МПа, с получением концентрированного раствора, при этом относительная плотность удерживалась равной 1,05;
(f) распылительная сушка: указанный концентрированный раствор подвергали распылительной сушке, при этом технологические параметры являлись следующими: температура форсунок составляла 180°С, температура на выходе составляла 85°С, а скорость подачи материала составляла 2,0 л/мин, с получением мальц-экстракта, соответствующего требованиям качества.
Поскольку степень ферментативного расщепления указанного мальц-экстракта достигает 90% или более, повышается энергоэффективность усвоения и использования организмом указанного экстракта, вплоть до того что переваривание не нужно или оно происходит в незначительной степени, и усвоение может происходить сразу.
В этом примере осуществления полисахарид Bletilla striata и полисахарид Atractylodes macrocephala получали одинаковым способом получения, в котором Bletilla striata/Atractylodes macrocephala подвергали таким технологическим операциям, как измельчение, динамическая противоточная экстракция, центрифугирование, осаждение спиртом после концентрирования, ионный обмен, концентрирование под вакуумом и распылительная сушка. Конкретный процесс получения являлся следующим:
(a) динамическая противоточная экстракция: измельченные Bletilla striata или Atractylodes macrocephala добавляли в воду, количество которой в 9 раз превышало вес сырья, и при 95°С проводили динамическую противоточную экстракцию с получением экстракта, при этом экстракцию проводили 2 раза и продолжительность каждой экстракции составляла 1,5 часа;
(b) центрифугирование: экстракт подвергают центрифугированию с получением осветленного раствора;
(c) осаждение спиртом после концентрирования: осветленный раствор подвергали концентрированию под вакуумом, при этом относительная плотность удерживалась равной 1,10; в концентрированный раствор добавляли пищевой спирт, при этом содержание спирта в смеси достигало 60%, тщательно и равномерно перемешивали и отстаивали в течение ночи; из супернатанта рекуперировали растворитель; осадок сохраняли для последующего использования;
(d) ионный обмен: полисахарид, полученный с помощью осаждения спиртом, растворяли в 6-кратном количестве дистиллированной воды и после тщательного перемешивания и растворения фильтровали; полученный после фильтрования фильтрат пропускали через ионообменную колонку и колонку с активированным углем, проводили обработку для удаления примесей и обесцвечивания;
(e) концентрирование под вакуумом: раствор, полученный после осуществления ионного обмена, подвергали концентрированию под вакуумом, при этом температура концентрирования составляла 70°С, а степень вакуума составляла -0,09 МПа, с получением концентрированного раствора полисахарида, при этом относительная плотность удерживалась на уровне 1,03;
(f) распылительная сушка: концентрированный раствор полисахарида после стерилизации и фильтрования подвергали распылительной сушке, при этом технологические параметры являлись следующими: температура форсунок составляла 180°С, температура на выходе составляла 85°С, а скорость подачи материала составляла 2,0 л/мин, с получением полисахарида Bletilla striata или полисахарида Atractylodes macrocephala.
Степень экстракции полисахарида в случае полисахарида Bletilla striata и полисахарида Atractylodes macrocephala соответственно составляла 35,4% и 8,24%.
В этом примере осуществления полисахарид Tremella fuciformis получали путем проведения в отношении Tremella fuciformis таких технологических операций, как измельчение, ферментативное расщепление, экстракция, ионный обмен, концентрирование под вакуумом и сублимационная сушка под вакуумом. Конкретный процесс получения являлся следующим:
(a) ферментативное расщепление: в ультратонкий порошок измельченной Tremella fuciformis добавляли воду, количество которой в 50 раз превышало вес сырья, и 1% пектиназы; проводили ферментативное расщепление при постоянной температуре 50°С в течение 80 мин; нагревали до 95°С или больше для инактивации ферментов;
(b) экстракция: проводили экстракцию при поддержании температуры равной 95°С; фильтровали через сито 500 меш с получением экстракта полисахарида Tremella fuciformis, при этом экстракцию проводили 2 раза и продолжительность каждой экстракции составляла 2 часа;
(c) ионный обмен: полученный после фильтрования экстракт полисахарида Tremella fuciformis пропускают через ионообменную колонку и колонку с активированным углем, проводят обработку для удаления примесей и обесцвечивания;
(d) концентрирование под вакуумом: раствор, полученный после осуществления ионного обмена, подвергали концентрированию под вакуумом, при этом температура концентрирования составляла 65°С, а степень вакуума составляла -0,09 МПа, с получением концентрированного раствора полисахарида Tremella fuciformis, при этом относительная плотность удерживалась на уровне 1,02;
(e) сублимационная сушка под вакуумом: из концентрированного раствора полисахарида Tremella fuciformis с помощью технологии сублимационной сушки под вакуумом получали порошок полисахарида Tremella fuciformis, при этом начальная температура предварительного замораживания составляла -40°С, скорость предварительного замораживания составляла 0,3°С/мин; конечная температура предварительного замораживания составляла -65°С; давление в сушильной камере составляло 50 Па; температура нагревательной плиты составляла 35°С; время сушки составляло 24 ч.
Степень экстракции полисахарида в случае полисахарида Tremella fuciformis достигала 36,9%.
В этом примере осуществления способ получения микрокапсул, содержащих пробиотики и обеспечивающих поддержание их активности, являлся следующим.
(1) Культивирование и выделение штамма: штамм Bifidobacterium longum высевали в жидкую культуральную среду MRS для активации обогатительной культуры, при этом температура культивирования составляла 36°С, а время культивирования составляло 36 ч. указанную культуральную среду подвергали низкотемпературной обработке центрифугированием, удаляли супернатант и собирали полученные бактерии Bifidobacterium longum, при этом температура при центрифугировании составляла 10°С, скорость вращения при центрифугировании составляла 4000 об./мин, а время центрифугирования составляло 8 мин.
(2) Покрытие первым материалом стенки: указанные бактерии Bifidobacterium longum добавляли в смешанный раствор первого материала стенки; время перемешивания составляло 10 мин; затем указанную бактериальную суспензию с помощью центробежного распылителя медленно впрыскивали в раствор галловой кислоты с pH 3,6; отстаивали 10 мин, собирали преципитат в виде микрогранул и несколько раз промывали стерилизованной водой, pH которой был отрегулирован до 4,0.
(3) Покрытие вторым материалом стенки: указанные микрогранулы вводили в смешанный раствор второго материала стенки, равномерно перемешивали в течение 8 мин с получением бактериальной суспензии; затем указанную бактериальную суспензию с помощью центробежного распылителя медленно впрыскивали в 0,15 моль/л раствор лактата кальция, оставляли с обеспечением отверждения на 50 мин, промывали и фильтровали с получением микрокапсул.
(4) Сублимационная сушка под вакуумом: указанные микрокапсулы подвергали сублимационной сушке под вакуумом с получением сухого порошка, состоящего из микрокапсул с Bifidobacterium longum, при этом начальная температура предварительного замораживания составляла -30°С, скорость предварительного замораживания составляла 0,8°С/мин; конечная температура предварительного замораживания составляла -60°С; давление в сушильной камере составляло 80 Па; температура нагревательной плиты составляла 30°С; время сушки составляло 20 ч.
Растворитель, используемый для указанных смешанных растворов и промывочной жидкости, представлял собой стерилизованную воду; указанные культуральную среду MRS, смешанные растворы материалов стенки, раствор галловой кислоты и раствор лактата кальция подвергали высокотемпературной стерилизации влажным теплом, при этом температура стерилизации составляла 125°С, и время стерилизации составляло 15 мин. В полученном указанным способом получения сухом порошке, состоящем из микрокапсул с Bifidobacterium longum, количество живых бактерий составляло 1,39×1011 КОЕ/мл, размер частиц составлял 80 мкм, распределение частиц по размерам являлось равномерным, а массу можно было регулировать, при этом степень инкапсулирования в микрокапсулы составляла более 92%, поэтому полученные микрокапсулы характеризовались отличной активностью штамма, могли выдерживать изменения многочисленных факторов среды, таких как свет, тепло, кислород, ионы металлов, величина pH и т. п., и обладали хорошей стабильностью.
Пример осуществления 3
В этом примере осуществления способ получения таблеток на основе микрокапсул, содержащих пробиотики, является следующим.
Полученные согласно указанным примерам осуществления 1 и 2 порошок, состоящий из микрокапсул с Lactobacillus acidophilus, и порошок, состоящий из микрокапсул с Bifidobacterium longum, перемешивали друг с другом в соотношении 2:1; отвешивали микрокристаллическую целлюлозу в количестве, составляющем 10% от общего веса указанного порошка, состоящего из микрокапсул, содержащих пробиотики; в указанную смесь вводили стеарат магния в количестве 1%, перемешивали в течение 5 мин и с применением этих частиц выполняли таблетирование из расчета 0,45 г/таблетка с получением таблеток на основе микрокапсул, содержащих пробиотики. После истечения срока хранения указанных таблеток, составляющего 2 года, общее количество живых бактерий составляло 31% от количества в момент производства, при этом активность штамма являлась хорошей, а выживаемость - сравнительно высокой.
Пример осуществления 4
В этом примере осуществления способ получения капсул на основе микрокапсул, содержащих пробиотики, является следующим.
Полученные согласно указанным примерам осуществления 1 и 2 порошок, состоящий из микрокапсул с Lactobacillus acidophilus, и порошок, состоящий из микрокапсул с Bifidobacterium longum, перемешивали друг с другом в соотношении 1:1; отвешивали мальтодекстрин в количестве, составляющем 15% от общего веса указанного порошка, состоящего из микрокапсул, содержащих пробиотики; в указанную смесь вводили стеарат магния в количестве 1,5%, перемешивали в течение 5 мин и этими частицами заполняли капсулы № 0 из расчета 0,35 г/капсула с получением капсул на основе микрокапсул, содержащих пробиотики. После истечения срока хранения указанных капсул, составляющего 2 года, общее количество живых бактерий составляло 34% от количества в момент производства, при этом активность штамма являлась хорошей, а выживаемость - сравнительно высокой.
Пример осуществления 5
В этом примере осуществления способ получения гранул на основе микрокапсул, содержащих пробиотики, является следующим:
полученные согласно указанным примерам осуществления 1 и 2 порошок, состоящий из микрокапсул с Lactobacillus acidophilus, и порошок, состоящий из микрокапсул с Bifidobacterium longum, перемешивали друг с другом в соотношении 3:1; отвешивали ксилоолигосахарид в количестве, составляющем 1% от общего веса указанного порошка, состоящего из микрокапсул, содержащих пробиотики, и мальтодекстрин в количестве 25%; в указанную смесь вводили диоксид кремния в количестве 1%, перемешивали в течение 5 мин и этими частицами заполняли упаковочные пакеты из алюминиевой фольги из расчета 5 г/мешочек с получением гранул на основе микрокапсул, содержащих пробиотики. После истечения срока хранения указанных гранул, составляющего 2 года, общее количество живых бактерий составляло 29% от количества в момент производства, при этом активность штамма являлась хорошей, а выживаемость — сравнительно высокой.
Пример осуществления 6
В этом примере осуществления способ получения йогурта с микрокапсулами, содержащими пробиотики, является следующим:
в приготовленный йогурт добавляли полученные согласно указанным примерам осуществления 1 и 2 порошок, состоящий из микрокапсул с Lactobacillus acidophilus, и порошок, состоящий из микрокапсул с Lactobacillus casei, при этом добавляемое количество каждого из них составляло 1% от веса йогурта, и равномерно перемешивали с получением йогурта с содержащими пробиотики микрокапсулами; осуществляли отбор образцов йогуртов в разные моменты срока хранения и определяли количество живых пробиотических бактерий двух видов, находящихся в них, что отображало изменение количества живых пробиотических бактерий в пределах срока хранения йогурта, в который были добавлены содержащие пробиотики микрокапсулы; из фиг. 1 можно понять, что количество живых бактерий Lactobacillus acidophilus и Lactobacillus casei демонстрировало тенденцию к изменению по времени.
pH йогурта является сравнительно низким и не подходит для выживаемости большинства пробиотиков; благодаря влиянию особого инкапсулирующего слоя микрокапсул согласно настоящему изобретению, микрокапсулы, содержащие пробиотики, в йогурте будут образовывать агрегат, обеспечивающий адекватную защиту находящихся внутри пробиотиков, вплоть до их попадания после питья в тонкую кишку, в которой pH значительно повышается, и явление агрегации постепенно исчезает, при этом оболочки капсул распадаются на белки, полисахариды и другие питательные вещества, и пробиотики полностью высвобождаются с обеспечением необходимого действия в кишечнике.
Начальное количество живых бактерий Lactobacillus acidophilus, составлявшее 1,86×109 КОЕ/мл, понижалось до 1,45×109 КОЕ/мл, то есть понижалось только на 22,1%. Начальное количество живых бактерий Lactobacillus casei, составлявшее 1,48×109 КОЕ/мл, понижалось до 1,1×109 КОЕ/мл, то есть понижалось только на 25,7%. Из приведенных выше данных можно понять, что выживаемость пробиотиков в пределах срока хранения йогурта являлась сравнительно высокой, и количество живых бактерий в нем не снижалось даже на один порядок.
Согласно настоящему изобретению, в отношении устойчивости к действию кислоты, устойчивости к длительному хранению и теплостойкости микрокапсул, содержащих пробиотики, полученных согласно примерам осуществления 1 и 2, также проводили следующие испытания.
1.1. Испытание микрокапсул, содержащих пробиотики, на устойчивость
Согласно настоящему изобретению основные компоненты оболочек микрокапсул, содержащих пробиотики, представляют собой белки и сложные растительные полисахариды, при этом образованные ими агрегатные структуры не растворяются в кислой среде и могут защищать пробиотики, составляющие содержимое, беспрепятственно проходить через желудочный сок и попадать в кишечник, в котором они растворяются с обеспечением колонизации; питательные вещества, высвобождающиеся из оболочек капсул, могут быстро обеспечивать пробиотические бактерии пищей, в результате чего пробиотики будут быстро размножаться. Поэтому цель инкапсулирования в микрокапсулы заключается в ограждении пробиотиков от прямого контакта с внешней неблагоприятной средой, контроле места и времени высвобождения пробиотиков, а также в возможности обеспечения пробиотиков источником питательных веществ, что в значительной степени способствует стабильному сохранению активности штамма и повышает биодоступность пробиотиков.
В этом испытании на устойчивость к действию кислоты в качестве материалов для испытания использовали бактерии Lactobacillus acidophilus, Bifidobacterium longum, Lactobacillus casei, не инкапсулированные в микрокапсулы, и сухой порошок, состоящий из микрокапсул; среда для проведения испытания материала представляла собой раствор искусственной желудочной кислоты (pH 2,1); акцент делали на исследовании влияния инкапсулирования в микрокапсулу на выживаемость штамма в кислой среде; результаты показаны на фиг. 2. Из фиг. 2 можно понять, что не инкапсулированные в микрокапсулы пробиотические бактерии в сильнокислой среде быстро погибают, и их выживаемость является очень низкой, тогда как инкапсулированные в микрокапсулы пробиотики характеризуются превосходной кислотоустойчивостью и сравнительно высокой выживаемостью. Из вышеприведенного можно понять, что инкапсулирование в микрокапсулы согласно настоящему изобретению может заметно улучшать кислотоустойчивость штамма, а также повышать выживаемость и активность штамма.
1.2. Испытание микрокапсул, содержащих пробиотики, на устойчивость к длительному хранению
В этом испытании на устойчивость к длительному хранению в качестве материалов для испытания использовали бактерии Lactobacillus acidophilus, Bifidobacterium longum, Lactobacillus casei, не инкапсулированные в микрокапсулы, и сухой порошок, состоящий из микрокапсул; акцент делали на исследовании влияния инкапсулирования в микрокапсулу на выживаемость штамма, помещенного в условия ускоренного испытания (40°С, влажность 75%) на 35 дней; результаты показаны на фиг. 3. Из фиг. 3 можно понять, что в случае трех порошков, состоящих из микрокапсул, содержащих пробиотики, после 5 недель в условиях ускоренного испытания количество живых бактерий соответствующего штамма снизилось только на 1 логарифмическую величину, и выживаемость штамма являлась сравнительно высокой, тогда как в случае не инкапсулированные в микрокапсулы трех видов пробиотических бактерий минимальные потери составили 5-6 логарифмических величин или более, и выживаемость штамма являлась сравнительно низкой. Из вышеприведенного можно понять, что инкапсулирование в микрокапсулы согласно настоящему изобретению может заметно повышать выживаемость штамма и поддерживать активность штамма.
1.3. Испытание микрокапсул, содержащих пробиотики, на теплостойкость
Настоящее изобретение, кроме того что характеризуется превосходной устойчивостью к действию кислоты и устойчивостью к длительному хранению, также обладает отличной устойчивостью к высокой температуре и характеризуется сравнительно хорошей теплоустойчивостью. В качестве материалов для испытания использовали порошок, состоящий из микрокапсул с Lactobacillus acidophilus, порошок, состоящий из микрокапсул с Bifidobacterium longum, и порошок, состоящий из микрокапсул с Lactobacillus casei; акцент делали на исследовании изменений выживаемости штамма в условиях разной температуры с течением времени; конкретные данные представлены в нижеследующей таблице 1.
Таблица1. Результаты испытания теплостойкости микрокапсул, содержащих пробиотики
Figure 00000001
Из данных в таблице 1 можно понять, что пробиотики после инкапсулирования в микрокапсулы характеризовались отличной устойчивостью к высокой температуре, и, после того как их подвергали жестким испытаниям согласно технологии производства, могли по-прежнему характеризоваться сравнительно высокой выживаемостью, при этом штамм характеризовался отличной активностью и хорошей теплоустойчивостью, и настоящее изобретение может иметь более широкие перспективы практического применения в промышленности.
Представленное выше представляет собой только предпочтительные примеры осуществления настоящего изобретения и поэтому вовсе не ограничивает объем заявленного изобретения; по той же причине любые эквивалентные изменения в конструкции или процессе, выполненные на основании содержания формулы настоящего изобретения, или усовершенствования и улучшения, внесенные без отклонения от принципов настоящего изобретения, или непосредственное либо опосредованное применение в других соответствующих областях техники входят в объем правовой охраны настоящего изобретения.

Claims (34)

1. Микрокапсула, содержащая пробиотики и обеспечивающая поддержание их активности, которая содержит содержимое и материал стенки, покрывающий содержимое снаружи, при этом указанное содержимое представляет собой пробиотики, где указанный материал стенки содержит первый материал стенки, покрывающий содержимое снаружи, и второй материал стенки, покрывающий первый материал стенки снаружи;
при этом указанный первый материал стенки содержит следующие компоненты: казеин, мальц-экстракт и ксилоолигосахарид;
указанный второй материал стенки содержит следующие компоненты: полисахарид Tremella fuciformis, полисахарид Bletilla striata, полисахарид Atractylodes macrocephala, гуаровую камедь и пектин;
при этом массовое соотношение указанных пробиотиков и указанного первого материала стенки составляет 1:(0,5-2), при этом по весу в указанном первом материале стенки казеин составляет 5-15 частей, мальц-экстракт составляет 1-6 частей, а ксилоолигосахарид составляет 0,5-3 части; массовое соотношение указанных пробиотиков и указанного второго материала стенки составляет 1:(0,5-1,5), при этом по весу в указанном втором материале стенки полисахарид Tremella fuciformis составляет 2-8 частей, полисахарид Bletilla striata составляет 2-5 частей, полисахарид Atractylodes macrocephala составляет 3-6 частей, гуаровая камедь составляет 0,2-0,6 части, а пектин составляет 0,6-1,2 части.
2. Микрокапсула по п. 1, изготовленная путем инкапсулирования в указанные первый и второй материалы стенки посредством их разбавления стерилизованной водой в качестве растворителя с получением смешанных растворов, при этом количество стерилизованной воды, используемой при разбавлении указанных первого и второго материалов стенки с получением смешанных растворов, в 3-5 раз превышает количество материалов стенки.
3. Микрокапсула по п. 1 или 2, где указанные пробиотики представляют собой одно или более из лактобактерий и бифидобактерий.
4. Способ получения микрокапсулы, содержащей пробиотики и обеспечивающей поддержание их активности, по любому из пп. 1-3, где способ включает следующие этапы, на которых
(1) культуральную среду с активированной обогатительной культурой пробиотических бактерий подвергают обработке центрифугированием и после обработки удаляют супернатант с получением пробиотических бактерий;
(2) казеин, мальц-экстракт и ксилоолигосахарид добавляют в воду и перемешивают с получением смешанного раствора первого материала стенки; при этом указанные пробиотические бактерии добавляют в смешанный раствор первого материала стенки и перемешивают с получением бактериальной суспензии; указанную бактериальную суспензию с помощью распылителя медленно впрыскивают в раствор галловой кислоты, pH которого составляет 3,0-5,0, отстаивают в течение 5-20 мин, собирают преципитат в виде микрогранул и промывают собранные микрогранулы в стерилизованной воде, pH которой составляет 3,8-4,2;
(3) полисахарид Tremella fuciformis, полисахарид Bletilla striata, полисахарид Atractylodes macrocephala, гуаровую камедь и пектин добавляют в воду и перемешивают с получением смешанного раствора второго материала стенки, и полученные на этапе (2) микрогранулы вводят в смешанный раствор второго материала стенки и перемешивают с получением бактериальной суспензии; затем бактериальную суспензию с помощью распылителя медленно впрыскивают в раствор лактата кальция при концентрации 0,05-0,5 моль/л с обеспечением отверждения, промывают и фильтруют с получением микрокапсул;
(4) указанные микрокапсулы подвергают сублимационной сушке под вакуумом с получением сухого порошка, состоящего из микрокапсул, содержащих пробиотики;
при этом массовое соотношение указанных пробиотиков и указанного первого материала стенки составляет 1:(0,5-2), при этом по весу в указанном первом материале стенки казеин составляет 5-15 частей, мальц-экстракт составляет 1-6 частей, а ксилоолигосахарид составляет 0,5-3 части; массовое соотношение указанных пробиотиков и указанного второго материала стенки составляет 1:(0,5-1,5), при этом по весу в указанном втором материале стенки полисахарид Tremella fuciformis составляет 2-8 частей, полисахарид Bletilla striata составляет 2-5 частей, полисахарид Atractylodes macrocephala составляет 3-6 частей, гуаровая камедь составляет 0,2-0,6 части, а пектин составляет 0,6-1,2 части.
5. Способ по п. 4, где для указанной обработки центрифугированием на этапе (1) скорость вращения при центрифугировании составляет 4000-6000 об/мин, а время центрифугирования составляет 5-12 мин.
6. Способ по п. 4, где для указанной сублимационной сушки под вакуумом на этапе (4) начальная температура предварительного замораживания составляет от -30 до -40°С, а скорость предварительного замораживания составляет 0,4-0,8°С/мин; конечная температура предварительного замораживания составляет -60°С; давление в сушильной камере составляет 40-100 Па; температура нагревательной плиты составляет 30-40°С; время сушки составляет 12-20 ч.
7. Способ по п. 4, где указанный мальц-экстракт получают посредством следующих этапов:
(a) измельчение: проросший ячмень или высушенный ячмень измельчают с помощью технологии сверхтонкого измельчения в ультратонкий порошок проросшего ячменя или высушенного ячменя с размером частиц 90-110 мкм;
(b) смешивание: порошок проросшего ячменя или высушенного ячменя смешивают с дистиллированной водой с получением белковой дисперсии, и pH дисперсии доводят до 6-7;
(c) ферментативное расщепление: дисперсию нагревают и поддерживают ее температуру в диапазоне 40-50°С; затем в дисперсию соответственно добавляют α-амилазу, β-амилазу и диспазу и после равномерного перемешивания подвергают ферментативному расщеплению продолжительностью от 2 ч до 4 ч, при этом α-амилазу добавляют в количестве, составляющем от 0,3% до 0,5% от содержания субстрата, β-амилазу добавляют в количестве, составляющем от 0,1% до 0,3% от содержания субстрата, и диспазу добавляют в количестве, составляющем от 0,2 до 0,4% от содержания субстрата; после завершения ферментативного расщепления выполняют высокотемпературную инактивацию ферментов;
(d) центробежная фильтрация: прошедший инактивацию ферментов жидкий продукт ферментативного расщепления подвергают центрифугированию для удаления примесей, при этом поддерживают скорость вращения при центрифугировании 12000-16000 об/мин, а скорость подачи материала перистальтическим насосом составляет 1,5-3,5 л/мин; собирают супернатант, включают устройство мембранной фильтрации и подвергают супернатант фильтрации через микропористую фильтрующую мембрану, при этом толщина фильтрующей мембраны составляет 90-150 мкм, размер выделяемых частиц составляет 4-8 мкм, и рабочее давление составляет 0,01-0,2 МПа; обеспечивают прозрачность фильтрата путем отстаивания и удаляют остаток;
(e) концентрирование под вакуумом: фильтрат подвергают концентрированию под вакуумом, при этом температура концентрирования составляет 65-85°С, а степень вакуума составляет от -0,07 до -0,09 МПа, с получением концентрированного раствора, при этом относительная плотность удерживается в диапазоне 1,04-1,08;
(f) распылительная сушка: указанный концентрированный раствор подвергают распылительной сушке, при этом технологические параметры являются следующими: температура форсунок составляет 175-190°С, температура на выходе составляет 80-95°С, а скорость подачи материала составляет 1,5-3,5 л/мин, с получением указанного мальц-экстракта.
8. Способ по п. 4, где указанный полисахарид Bletilla striata/полисахарид Atractylodes macrocephala получают посредством следующих этапов:
(a) динамическая противоточная экстракция: измельченные Bletilla striata/Atractylodes macrocephala добавляют в воду, количество которой в 8-10 раз превышает вес сырья, и при 90-100°С проводят динамическую противоточную экстракцию с получением экстракта, при этом экстракцию проводят 1-3 раза, и продолжительность каждой экстракции составляет 1-3 часа;
(b) центрифугирование: экстракт подвергают центрифугированию с получением осветленного раствора;
(c) осаждение спиртом после концентрирования: осветленный раствор подвергают концентрированию под вакуумом, при этом относительная плотность удерживается в диапазоне 1,10-1,20; в концентрированный раствор добавляют пищевой спирт, при этом содержание спирта в смеси достигает 40-80%, тщательно и равномерно перемешивают и отстаивают в течение ночи; из супернатанта рекуперируют растворитель; и осадок сохраняют для последующего использования;
(d) ионный обмен: полисахарид, полученный с помощью осаждения спиртом, растворяют в 4-8-кратном количестве дистиллированной воды и после тщательного перемешивания и растворения фильтруют; полученный после фильтрования фильтрат пропускают через ионообменную колонку и колонку с активированным углем, проводят обработку для удаления примесей и обесцвечивания;
(e) концентрирование под вакуумом: раствор, полученный после осуществления ионного обмена, подвергают концентрированию под вакуумом, при этом температура концентрирования составляет 60-80°С, а степень вакуума составляет от -0,07 до -0,09 МПа, с получением концентрированного раствора полисахарида, при этом относительная плотность удерживается в диапазоне 1,03-1,06;
(f) распылительная сушка: концентрированный раствор полисахарида после стерилизации и фильтрования подвергают распылительной сушке, при этом технологические параметры являются следующими: температура форсунок составляет 170-185°С, температура на выходе составляет 75-95°С, а скорость подачи материала составляет 2,0-4,0 л/мин, с получением указанного полисахарида Bletilla striata/полисахарида Atractylodes macrocephala.
9. Способ по п. 4, где указанный полисахарид Tremella fuciformis получают посредством следующих этапов:
(a) ферментативное расщепление: с помощью технологии сверхтонкого измельчения Tremella fuciformis измельчают с получением ультратонкого порошка Tremella fuciformis с размером частиц 90-110 мкм; добавляют воду, количество которой в 30-50 раз превышает вес сырья, и 0,5-2% пектиназы; проводят ферментативное расщепление при постоянной температуре 40-50°С в течение 30-90 мин; и нагревают до 95°С или больше для инактивации ферментов;
(b) экстракция: проводят экстракцию с поддержанием температуры в диапазоне 95-100°С; фильтруют через сито 500 меш с получением экстракта полисахарида Tremella fuciformis, при этом экстракцию проводят 1-2 раза и продолжительность каждой экстракции составляет 1-3 часа;
(c) ионный обмен: полученный после фильтрования экстракт полисахарида Tremella fuciformis пропускают через ионообменную колонку и колонку с активированным углем, проводят обработку для удаления примесей и обесцвечивания;
(d) концентрирование под вакуумом: раствор, полученный после осуществления ионного обмена, подвергают концентрированию под вакуумом, при этом температура концентрирования составляет 60-80°С, а степень вакуума составляет от -0,07 до -0,09 МПа, с получением концентрированного раствора полисахарида Tremella fuciformis, при этом относительная плотность удерживается в диапазоне 1,02-1,04;
(e) сублимационная сушка под вакуумом: из концентрированного раствора полисахарида Tremella fuciformis с помощью технологии сублимационной сушки под вакуумом получают порошок полисахарида Tremella fuciformis, при этом начальная температура предварительного замораживания составляет от -35 до -45°С, скорость предварительного замораживания составляет 0,2-0,5°С/мин; конечная температура предварительного замораживания составляет -65°С; давление в сушильной камере составляет 50-120 Па; температура нагревательной плиты составляет 30-40°С; и время сушки составляет 16-24 ч.
RU2020127014A 2018-04-16 2018-05-09 Микрокапсулы, содержащие пробиотики и обеспечивающие поддержание активности их штаммов, и способ их получения RU2755532C1 (ru)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201810339574.XA CN108618151B (zh) 2018-04-16 2018-04-16 一种保持菌种活性的益生菌微胶囊及其制备方法
CN201810339574.X 2018-04-16
PCT/CN2018/000171 WO2019200499A1 (zh) 2018-04-16 2018-05-09 一种保持菌种活性的益生菌微胶囊及其制备方法

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2755532C1 true RU2755532C1 (ru) 2021-09-17

Family

ID=63705337

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2020127014A RU2755532C1 (ru) 2018-04-16 2018-05-09 Микрокапсулы, содержащие пробиотики и обеспечивающие поддержание активности их штаммов, и способ их получения

Country Status (3)

Country Link
CN (1) CN108618151B (ru)
RU (1) RU2755532C1 (ru)
WO (1) WO2019200499A1 (ru)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN113826865A (zh) * 2021-09-27 2021-12-24 宁夏春升源生物科技有限公司 一种集成耐热微胶囊的制备方法
RU2782122C1 (ru) * 2021-12-24 2022-10-21 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарёва" Способ получения гелевых сферических частиц с иммобилизованными пробиотическими микроорганизмами и обогащенных дополнительно Модифиланом
CN115530377A (zh) * 2022-10-13 2022-12-30 扬州市扬大康源乳业有限公司 一种缓释益生菌及其制备方法
CN115969039A (zh) * 2022-12-15 2023-04-18 天津科技大学 一种基于w/g/w结构的益生菌微胶囊、制备方法和应用

Families Citing this family (29)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109497555A (zh) * 2018-11-27 2019-03-22 浙江华康药业股份有限公司 一种槐糖微胶囊及其制备方法和应用
CN109674061A (zh) * 2019-02-22 2019-04-26 山东探克生物科技股份有限公司 一种双层微囊化的益生元、益生菌组合物及其制备方法
CN109998011A (zh) * 2019-05-20 2019-07-12 味利岛(上海)企业管理有限公司 谷物粉益生菌冲饮配方
CN110973598A (zh) * 2019-12-18 2020-04-10 叶青 一种含有银耳和肠道益生菌的复合颗粒及其制备方法
CN111096416A (zh) * 2019-12-26 2020-05-05 宁波御坊堂生物科技有限公司 用于减肥代餐的断食组合物及其制备方法
CN111227257A (zh) * 2020-01-15 2020-06-05 润科生物工程(福建)有限公司 一种螺旋藻蛋白肽精制及喷雾干燥微胶囊化工业方法
CN111333200B (zh) * 2020-03-18 2022-07-05 运城学院 一种包埋固定化微生物颗粒、制备方法及污水处理方法
CN113455544B (zh) * 2020-03-31 2023-07-28 内蒙古伊利实业集团股份有限公司 一种含有乳酸菌的饮料及其制备方法
CN111317140A (zh) * 2020-05-06 2020-06-23 永安康健药业(武汉)有限公司 一种耐胆盐耐胃酸益生菌制剂及其制备方法和应用
CN111642788B (zh) * 2020-05-11 2022-11-08 重庆中烟工业有限责任公司 一种含蜡状芽孢杆菌的生物制剂胶囊
CN111728935A (zh) * 2020-07-08 2020-10-02 广州澳希亚实业有限公司 一种含益生菌微生态粒子及其制备方法和应用
CN112655966B (zh) * 2020-12-22 2023-04-07 吉林农业大学 一种奇亚籽油微胶囊及其制备方法
CN112741326A (zh) * 2021-01-13 2021-05-04 百康利医学科技(上海)有限公司 一种具有润肠通便作用的蓖麻油微囊粉及其制备方法
CN114794480A (zh) * 2021-01-29 2022-07-29 大连鑫玉龙海洋生物种业科技股份有限公司 一种海参肠卵油-dha胶囊及其制作方法
CN112957377B (zh) * 2021-02-04 2023-07-25 武汉大学 一种微生物生态系统微凝胶及其制备方法
CN112956698B (zh) * 2021-03-26 2023-06-16 四川农业大学 包埋益生菌微胶囊的爆爆珠及其制备方法
CN113303475B (zh) * 2021-06-18 2022-06-14 湖南营养树生物科技有限公司 一种功能性益生菌剂及其制备方法
CN113670845B (zh) * 2021-06-28 2024-05-17 湖南省中医药研究院 快速检测益生菌活性试剂盒及其检测方法
CN113647624B (zh) * 2021-08-18 2023-09-15 中国科学院烟台海岸带研究所 一种姜黄素微胶囊的制备方法
CN114009644A (zh) * 2021-09-27 2022-02-08 格乐瑞(无锡)营养科技有限公司 一种耐胃酸的养胃益生菌固体饮料及其制备方法
CN114027479A (zh) * 2021-11-18 2022-02-11 武汉自然萃创新科技有限公司 一种微胶囊化益生菌蜂蜜的制备方法
CN114522195B (zh) * 2022-01-27 2024-01-26 华南理工大学 一种板栗杏仁糖蛋白包载板栗果皮色素纳米肠道益生菌促进剂及其制备和应用
CN114601168B (zh) * 2022-03-24 2023-02-21 江南大学 一种用喷雾干燥制备含益生元的益生菌微胶囊的方法
CN114711435B (zh) * 2022-04-06 2023-05-09 深圳安馨堂生物科技有限公司 膳食纤维益生菌组合物及其制备方法
CN115251378A (zh) * 2022-08-08 2022-11-01 江西省农业科学院农产品加工研究所 一种铁皮石斛微胶囊及其制备方法
CN115104737B (zh) * 2022-08-08 2024-01-09 江苏德禧生物科技有限公司 益生菌冻干干燥及包埋联动工艺
CN115381871B (zh) * 2022-08-25 2024-03-22 郑州大学 一种果胶低聚糖益生菌复合物软胶囊及制备方法和应用
CN115369681B (zh) * 2022-08-26 2023-07-07 四川中烟工业有限责任公司 一种改善包灰性能的卷烟纸制备方法
CN116135047A (zh) * 2023-03-14 2023-05-19 河北新希望天香乳业有限公司 一种纯谷物益生菌组合物及其制备方法

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2107542C1 (ru) * 1996-10-08 1998-03-27 Ивановский государственный университет Способ получения микрокапсул
RU2538695C1 (ru) * 2014-01-27 2015-01-10 Александр Александрович Кролевец Способ инкапсуляции креатина, обладающего супрамолекулярными свойствами
RU2561586C1 (ru) * 2014-02-12 2015-08-27 Александр Александрович Кролевец Способ получения микрокапсул биопага-д в пектине
CN106723233A (zh) * 2016-11-28 2017-05-31 沈阳师范大学 以蛋白聚集体‑多糖为壁材的益生菌微胶囊及制备方法

Family Cites Families (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101269220B (zh) * 2008-04-25 2010-06-16 山东省眼科研究所 白芨胶为载体的雷帕霉素眼内植入型释药系统
CN102784181B (zh) * 2011-05-17 2016-06-15 天津天士力现代中药资源有限公司 一种红参多糖的制备方法
CN102827299B (zh) * 2012-08-27 2014-04-16 福建农林大学 一种金柑多糖的提取纯化方法
CN103054018B (zh) * 2012-12-25 2014-07-09 广东省农业科学院蚕业与农产品加工研究所 一种具有辅助改善记忆功能的颗粒制备方法
CN104887647B (zh) * 2014-03-08 2017-12-01 复旦大学 益生菌双层微胶囊及其制备方法
CN103981169A (zh) * 2014-05-09 2014-08-13 陕西科技大学 一种利用黄原胶∕壳聚糖∕黄原胶制备双歧杆菌微胶囊的方法及应用
CN104431370A (zh) * 2014-12-15 2015-03-25 南京优帆生物科技有限公司 一种高效益生菌微胶囊及其制备方法和应用
CN105961734A (zh) * 2016-06-21 2016-09-28 福建农林大学 一种猴头菇焦麦芽袋泡茶及其制备方法
CN106387967A (zh) * 2016-09-18 2017-02-15 浙江工商大学 一种含有益生菌和不饱和脂肪酸组合物的制备方法及该组合物的应用
CN106749737A (zh) * 2016-12-28 2017-05-31 古田县恒惠食用菌开发有限公司 一种银耳多糖的提取工艺

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2107542C1 (ru) * 1996-10-08 1998-03-27 Ивановский государственный университет Способ получения микрокапсул
RU2538695C1 (ru) * 2014-01-27 2015-01-10 Александр Александрович Кролевец Способ инкапсуляции креатина, обладающего супрамолекулярными свойствами
RU2561586C1 (ru) * 2014-02-12 2015-08-27 Александр Александрович Кролевец Способ получения микрокапсул биопага-д в пектине
CN106723233A (zh) * 2016-11-28 2017-05-31 沈阳师范大学 以蛋白聚集体‑多糖为壁材的益生菌微胶囊及制备方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
МУСАБАЕВА Б.Х. и др. Получение микрокапсул противотуберкулезных препаратов на основе биополимеров и полиэлектролитов, Фармация и фармакология, 2017 2(5), с. 164-175. *

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN113826865A (zh) * 2021-09-27 2021-12-24 宁夏春升源生物科技有限公司 一种集成耐热微胶囊的制备方法
RU2782122C1 (ru) * 2021-12-24 2022-10-21 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарёва" Способ получения гелевых сферических частиц с иммобилизованными пробиотическими микроорганизмами и обогащенных дополнительно Модифиланом
CN115530377A (zh) * 2022-10-13 2022-12-30 扬州市扬大康源乳业有限公司 一种缓释益生菌及其制备方法
CN115969039A (zh) * 2022-12-15 2023-04-18 天津科技大学 一种基于w/g/w结构的益生菌微胶囊、制备方法和应用

Also Published As

Publication number Publication date
CN108618151A (zh) 2018-10-09
CN108618151B (zh) 2021-07-06
WO2019200499A1 (zh) 2019-10-24

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2755532C1 (ru) Микрокапсулы, содержащие пробиотики и обеспечивающие поддержание активности их штаммов, и способ их получения
CN109717340A (zh) 一种结合复合酶解的两步式蛹虫草酵素的发酵制备方法
CN112244286A (zh) 一种钙果粉及其制备方法
CN108785331B (zh) 一种具有气血双补的组合物及其制备方法和应用
CN111602810A (zh) 一种益生菌黄皮微胶囊及其制备方法和应用
CN106072267A (zh) 一种高溶解性益生菌发酵花粉及其制备与应用
CN106551378A (zh) 一种益生菌发酵蛹虫草的组合物及其制备方法和应用
CN103830711B (zh) 一种利用益生菌发酵制备人工太岁及保健营养液的方法
CN109566933A (zh) 一种发酵复方饮品及其制备方法
CN106490360A (zh) 一种猪用绿色饲料添加剂及其制备方法
CN111436614A (zh) 基于香菇可溶性膳食纤维的益生菌递送微胶囊及制备方法
CN108030097B (zh) 一种增进儿童食欲的益生菌冻干粉
CN109527099A (zh) 一种枸杞复合益生菌羊奶片及其制备方法
CN106916862B (zh) 具有减肥功能的香蕉抗性淀粉酸奶的制作方法
CN113208077A (zh) 一种益生菌枸杞醋果冻的制备方法
KR20160126591A (ko) 인삼류 발효 추출물의 제조방법, 이의 방법으로 제조된 인삼류 발효 추출물 및 이를 포함하는 건강기능식품
CN110122868A (zh) 一种臭参酵素、臭参酵素饮品及制备方法
CN108064941A (zh) 一种百合莲子酸奶及其制备方法
CN109700014A (zh) 一种米糠益生菌酵素的制备方法
CN109169899A (zh) 一种含有猴头菇β-葡聚糖的护胃发酵乳的制备方法
CN108936154A (zh) 一种富含乳酸菌活菌的莲子发酵固体饮料的制备方法
JP5548393B2 (ja) ブドウ発酵物の製造方法
CN107927792A (zh) 一种利用牛蒡根干粉和奶粉包埋、生产益生菌粉的方法
CN113785985A (zh) 一种益生菌组合物、其制备方法及其应用
KR102545583B1 (ko) 진세노사이드 함량 및 보존성이 증진된 이중 코팅 홍삼 과립의 제조방법