RU2667425C2 - Микроорганизм Corynebacterium sp. с повышенной способностью продуцировать L-лизин и способ получения L-лизина с его помощью - Google Patents

Микроорганизм Corynebacterium sp. с повышенной способностью продуцировать L-лизин и способ получения L-лизина с его помощью Download PDF

Info

Publication number
RU2667425C2
RU2667425C2 RU2016114418A RU2016114418A RU2667425C2 RU 2667425 C2 RU2667425 C2 RU 2667425C2 RU 2016114418 A RU2016114418 A RU 2016114418A RU 2016114418 A RU2016114418 A RU 2016114418A RU 2667425 C2 RU2667425 C2 RU 2667425C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
lysine
gene
microorganism
promoter
vector
Prior art date
Application number
RU2016114418A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2016114418A (ru
Inventor
Сан Хи ПАРК
Джун Ок МУН
Хьюн Вон БЭ
Кван Хо ЛИ
Original Assignee
СиДжей ЧеилДжеданг Корп.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by СиДжей ЧеилДжеданг Корп. filed Critical СиДжей ЧеилДжеданг Корп.
Publication of RU2016114418A publication Critical patent/RU2016114418A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2667425C2 publication Critical patent/RU2667425C2/ru

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/04Alpha- or beta- amino acids
    • C12P13/08Lysine; Diaminopimelic acid; Threonine; Valine
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Группа изобретений относится к области биотехнологии. Предложен микроорганизм рода Corynebacterium, продуцирующий L-лизин, с улучшенной экспрессией полинуклеотида, кодирующего ген NCgl0862 Corynebacterium glutamicum. Предложен способ получения L-лизина, с использованием указанного модифицированного микроорганизма. Группа изобретений позволяет повысить продукцию L-лизина по сравнению с родительским штаммом. 2 н. и 3 з.п. ф-лы, 6 табл., 9 пр.

Description

ОБЛАСТЬ ТЕХНИКИ
Настоящее изобретение относится к микроорганизму, принадлежащему к роду Corynebacterium, с повышенной способностью продуцировать L-лизин и к способу получения L-лизина с применением этого микроорганизма.
УРОВЕНЬ ТЕХНИКИ
L-лизин является типичным представителем незаменимых аминокислот и применяется в областях, связанных с питанием, медициной и кормами. В основном, L-лизин получают в результате прямого ферментирования с помощью такого микроорганизма, как Escherichia coli или Corynebacterium, и в этом отношении улучшения способности продуцировать L-лизин путем разработок с целью получения продуцирующих штаммов с улучшенными выходами или усовершенствованием процесса ферментации может в результате дать существенные экономические результаты.
В отношении способа улучшения эффективности продукции лизина применяли способ усиления гена, вовлеченного в путь биосинтеза лизина, или модификации промотора этого гена с целью увеличения активности ферментов, вовлеченных в путь биосинтеза лизина. К тому же, с целью повышения способности продуцировать лизин непрерывно продолжались исследование генов, отличных от вовлеченных в путь биосинтеза лизина.
Авторы настоящего изобретения попытались создать и изучить библиотеку ДНК дикого типа Corynebacterium glutamicum с целью обнаружения признаков, которые относятся к способности продуцировать лизин. В результате было подтверждено, что при повышенной экспрессии гена NCgl0862 лизин эффективно продуцируется, что, таким образом, позволяет реализовать настоящее изобретение. До этого времени еще не было публикаций исследований. посвященных микроорганизмам, принадлежащим к роду Corynebacterium, способным продуцировать L-лизин вследствие дополнительного введения в них гена NCgl0862, полученного из Corynebacterium.
ПОДРОБНОЕ ОПИСАНИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯ
ТЕХНИЧЕСКАЯ ЗАДАЧА
Настоящее изобретение относится к микроорганизму, принадлежащему к роду Corynebacterium, у которого усилена экспрессия полинуклеотида. кодирующего аминокислотную последовательность SEQ ID NO: 1.
Настоящее изобретение относится к способу получения L-лизина с использованием этого микроорганизма.
ТЕХНИЧЕСКОЕ РЕШЕНИЕ
Один аспект настоящего изобретения относится к микроорганизму, принадлежащему к роду Corynebacterium, у которого усилена экспрессия полинуклеотида, кодирующего аминокислотную последовательность SEQ ID NO: 1.
Полинуклеотид может кодировать аминокислотную последовательность, которая характеризуется приблизительно 70% или более высокой, приблизительно 75% или более высокой, приблизительно 80% или более высокой, приблизительно 85% или более высокой, приблизительно 90% или более высокой, приблизительно 92% или более высокой, приблизительно 95% или более высокой, приблизительно 97% или более высокой, приблизительно 98% или более высокой или приблизительно 99% или более высокой гомологией последовательности с аминокислотной последовательностью SEQ ID NO: 1. Термин "гомология", используемый в данном документе, относится к проценту идентичности между двумя полинуклеотидами или двумя полипептидными фрагментами. Гомологию последовательностей между одним фрагментом и другим фрагментом можно определить с помощью способов, известных в данной области. Например, такую гомологию последовательностей можно определять с помощью алгоритма BLAST, который раскрыт в литературе [см. Karlin and Altschul, Pro. Natl. Acad. Sci. USA, 90, 5873 (опубликовано в 1993 году)] или алгоритма FASTA по Пирсону [см. Methods Enzymol., 183, 63 (опубликовано в 1990 году)]. На основе алгоритма BLAST также разработаны программы под названием BLASTN или BLASTX [см. www.ncbi.nlm.nih.gov].
Экспрессию полинуклеотида можно усиливать путем модификации последовательности, регулирующей экспрессию, с помощью замены или мутации, мутации, внесенной в полинуклеотидную последовательность, изменения в стартовом кодоне, повышения числа копий полинуклеотида путем внесения хромосомной вставки или вектора или их комбинаций.
Последовательность, регулирующую экспрессию полинуклеотида. можно модифицировать. Последовательность, регулирующая экспрессию. управляет экспрессией функционально связанного с ней полинуклеотида и, к примеру, может охватывать промотор, терминатор, энхансер, сайленсер и последовательность Шайна-Дальгарно. Полинуклеотид может иметь замены в стартовом кодоне. Стартовый кодон. который состоит из TTG или GTG, может быть заменен на ATG с тем, чтобы могла быть увеличена ферментативная активность продукта соответствующего гена. Полинуклеотид может быть встроен в конкретный сайт хромосом в целях повышения, таким образом, числа копий. В этом случае конкретный сайт может включать в себя, например, транспозонный сайт или сайт между генами. К тому же, полинуклеотид может быть встроен в экспрессирующий вектор, который вводят в клетку-хозяина с повышением, таким образом, числа копий.
Полинуклеотид может включать в себя, к примеру, нуклеотидную последовательность SEQ ID NO: 2.
Термин "функционально связанный", используемый в данном документе, относится к функциональной связи между регуляторной последовательностью и полинуклеотидной последовательностью, где регуляторная последовательность управляет транскрипцией и/или трансляцией полинуклеотидной последовательности. Регуляторная последовательность может быть сильным промотором, который может повышать уровень экспрессии полинуклеотида. Регуляторная последовательность может представлять собой промотор, полученный из микроорганизма, принадлежащего к роду Corynebacterium. или может представлять собой промотор, полученный из других микроорганизмов. Промотор может представлять собой, к примеру, промотор trc, промотор gap, промотор tac, промотор Т7, промотор lac, промотор trp, промотор araBAD или промотор cj7. Регуляторную последовательность можно модифицировать таким образом, чтобы, к примеру, промоторная последовательность главного гена, вовлеченного в путь биосинтеза лизина, проявляла более усиленную промоторную активность у микроорганизма, принадлежащего к роду Corynebacterium. Регуляторная последовательность может представлять собой, к примеру, промотор lysCP1. Термин "промотор lysCP1". используемый в данном документе, относится к сильному промотору, ферментативная активность продукта гена которого усилена примерно в 5 раз по сравнению с диким типом путем увеличения уровня экспрессии гена, кодирующего аспартаткиназу, где уровень экспрессии увеличен путем замены последовательностей в промоторном сайте генов, каждый из которых кодирует аспартаткиназу и дегидрогеназу полуальдегида аспарагиновой кислоты (корейский патент №10-0930203).
Термин "вектор", используемый в данном документе, относится к полинуклеотидной конструкции, которая содержит регуляторную последовательность гена и последовательность гена и выполнена с возможностью экспрессии целевого гена в подходящей клетке-хозяине. Альтернативно, вектор может также относиться к полинуклеотидной конструкции, которая содержит последовательности, подходящие для гомологической рекомбинации, так что благодаря введению вектора в клетку-хозяина можно изменять регуляторную последовательность эндогенного гена в геноме клетки-хозяина или в конкретный сайт генома хозяина можно встроить целевой ген, который может экспрессироваться. В связи с этим вектор, применяемый в настоящем изобретении, может дополнительно содержать селективный маркер для определения введения вектора в клетку-хозяина или встраивания вектора в хромосому клетки-хозяина. Селективный маркер может включать маркер, придающий селектируемый фенотип, такой как устойчивость к лекарственным средствам, ауксотрофия, устойчивость к цитотоксическому средству или экспрессия поверхностного белка. Поскольку выживать или проявлять особенные стенотипические характеристики могут только клетки, экспрессирующие селективный маркер, в среде, обработанной таким селективным средством, можно произвести отбор трансформированных клеток.
Вектор, применяемый в настоящем изобретении, может представлять собой, к примеру, вектор pECCG122, который может самореплицироваться в обоих направлениях у бактерий Е. coli и коринебактерий (корейский патент №10-0057684), или вектор pDZ, применяемый для трансформации клетки-хозяина, обеспечивающий встраивание гена, который кодирует целевой белок, в хромосомы клетки-хозяина, при этом вектор pDZ не реплицируется у Corynebacterium glutamicum (корейский патент №10-0924065). Вдобавок, вектор в контексте данного документа может представлять собой, к примеру, вектор pDZTn, полученный из вектора pDZ и подходящий для встраивания гена в транспозонный сайт в хромосоме штаммов АТСС13032 Corynebacterium glutamicum (корейский патент №10-1126041). по вектор им не ограничен.
Термин "трансформация", используемый в данном документе, относится к введению полинуклеотида в клетку-хозяина так, чтобы полинуклеотид мог реплицироваться как внегеномный элемент или как встроенный в геном клетки-хозяина. Способ трансформации вектором, применяемым в настоящем изобретении, может включать способ введения нуклеиновой кислоты в клетку. Вдобавок, как раскрыто в предшествующем уровне техники, можно осуществлять способ с использованием электрического импульса в зависимости от клетки-хозяина.
Микроорганизм, принадлежащий к роду Corynebacterium, может представлять собой, к примеру, Corynebacterium glutamicum, Corynebacterium efficiens, Corynebacterium diphtheriae или Corynebacterium ammoniagenes.
Микроорганизм, принадлежащий к роду Corynebacterium. может обладать способностью продуцировать L-лизин. Микроорганизм может обладать улучшенной способностью продуцировать L-лизин в результате введения вышеописанного полинуклеотида в микроорганизм, принадлежащий к роду Corynebacterium. со способностью продуцировать L-лизин.
Термин "со способностью продуцировать L-лизин", используемый в данном документе, относится к наличию способности продуцировать и секретировать L-лизин в культуральную среду в процессе культивирования в ней микроорганизма. Микроорганизм может быть способен продуцировать и аккумулировать L-лизин в культуральной среде в больших количествах по сравнению со штаммом дикого типа или родительским штаммом.
Микроорганизм, принадлежащий к роду Corynebacterium, со способностью продуцировать L-лизин может иметь усиленную или сниженную экспрессию гена, связанного с выработкой NADPH, и/или гена, связанного с биосинтезом или секрецией L-лизина, или может иметь ген, замененный чужеродным геном. Ген, связанный с выработкой NADPH, может охватывать, к примеру, ген, кодирующий глюкозодегидрогеназу, ген, кодирующий глюконаткипазу. ген, кодирующий глицеральдегид-3-фосфатдегидрогеназу, ген, кодирующий глюкозо-6-фосфатдегидрогеназу, или ген, кодирующий 6-фосфоглюконатдегидрогеназу. Ген, связанный с биосинтезом L-лизина, может охватывать, к примеру, ген, кодирующий аспартатаминотрансферазу, ген, кодирующий аспартаткиназу. ген. кодирующий дегидрогеназу полуальдегида аспарагиновой кислоты, ген, кодирующий дегидродипиколинатсинтазу, ген, кодирующий дегидродипиколинатредуктазу, ген, кодирующий мезо-диаминопимелатдегидрогеназу, или ген, кодирующий диаминодипимелатдекарбоксилазу. Ген, связанный с секрецией L-лизина. может включать lysE, который является геном носителя, участвующего в экспорте лизина. Микроорганизм, принадлежащий к роду Corynebacterium, со способностью продуцировать L-лизин может также приобретать такую способность продуцировать L-лизин благодаря применению ксилозы как источника углерода.
В одном варианте осуществления микроорганизм, принадлежащий к роду Corynebacterium, может представлять собой КССМ11016Р (KFCC10881) Corynebacterium glutamicum (корейский патент №10-0159812).
В другом варианте осуществления в микроорганизм, принадлежащий к роду Corynebacterium, может быть введен полинуклеотид. кодирующий аспартатаминотрансферазу, полинуклеотид, кодирующий аспартаткиназу. полинуклеотид, кодирующий дегидрогеназу полуальдегида аспарагиновой кислоты, полинуклеотид, кодирующий дегидродипиколинатсинтазу, полинуклеотид. кодирующий дегидродипиколинатредуктазу. и полинуклеотид. кодирующий диаминодипимелатдекарбоксилазу. К примеру, микроорганизм, принадлежащий к роду Corynebacterium, может представлять собой КССМ10770Р Corynebacterium glutamicum (корейский патент №10-0924065).
В другом варианте осуществления микроорганизм, принадлежащий к роду Corynebacterium, может представлять собой КССМ11347Р (KFCC10750) Corynebacterium glutamicum.
В другом варианте осуществления микроорганизм, принадлежащий к роду Corynebacterium, может приобретать способность продуцировать лизин в результате введения мутантного полинуклеотида, кодирующего пируваткарбоксилазу (рус), мутантного полинуклеотида, кодирующего гомосериндегидрогеназу (hom), и мутантного полинуклеотида, кодирующего аспартаткиназу (lysC) (Binder et al. Genome Biology, 2012, 13:R40). Микроорганизм может представлять собой, к примеру. CJ3P Corynebacterium glutamicum.
Другой аспект настоящего изобретения предусматривает способ получения L-лизина, при этом способ включает культивирование микроорганизма и получение I -лизина из культуры.
Микроорганизм является таким же, как описано выше.
Культивирование микроорганизма можно проводить в соответствующей среде в условиях культивирования, известных в данной области техники. Такой процесс культивирования можно легко регулировать в зависимости от выбранного микроорганизма. Способ культивирования может включать одно или несколько, выбранных из группы, состоящей из периодической культуры, непрерывной культуры и культуры с подпиткой.
Среда, которую применяют при культивировании, может соответствовать требованиям конкретного микроорганизма. Среду можно выбрать из группы, состоящей из источников углерода, источников азота, микроэлементов и их комбинаций.
Источник углерода может быть выбран из группы, состоящей из углеводов, липидов, жирных кислот, спиртов, органических кислот и их комбинаций. Углеводом может быть глюкоза, сахароза, лактоза, фруктоза, мальтоза, крахмал, целлюлоза или их комбинация. Липидом может быть соевое масло, подсолнечное масло, касторовое масло, кокосовое масло или их комбинация. Жирной кислотой может быть пальмитиновая кислота, стеариновая кислота, линолевая кислота или их комбинация. Спиртом может быть глицерин или этанол. Органической кислотой может быть уксусная кислота.
Источник азота может включать источник органического азота, источник неорганического азота или их комбинацию. Источник органического азота может быть выбран из группы, состоящей из пептона, дрожжевого экстракта, мясного экстракта, экстракта солода, кукурузного экстракта (CSL), соевой муки и их комбинаций. Источник неорганического азота может быть выбран из группы, состоящей из мочевины, сульфата аммония, хлорида аммония, фосфата аммония, карбоната аммония, нитрата аммония и их комбинаций.
Среда может включать один элемент, выбранный из группы, состоящей из фосфора, солей металлов, аминокислот, витаминов, предшественников и их комбинаций. Источник фосфора может включать дигидрофосфат калия, фосфат дикалия, натрийсодержащую соль, соответствующую ему. Соль металла может представлять собой сульфат магния и сульфат железа.
Среду или ее отдельные компоненты можно добавлять в культуральную среду в режиме периодической культуры, непрерывной культуры или культуры с подпиткой.
В способе культивирования рН культуры можно регулировать. Регулирование рН можно осуществлять путем добавления гидроксида аммония, гидроксида калия, аммиака, фосфорной кислоты или серной кислоты к культуре. Дополнительно, способ культивирования может включать предотвращение образования воздушных пузырьков. Предотвращение образования воздушных пузырьков можно осуществлять путем применения противовспенивающего средства. Противовспенивающее средство может включать полигликолевый эфир жирной кислоты. Дополнительно, способ культивирования может включать введение газа в культуру. Газ может включать любой газ, способный поддерживать аэробные условия культуры. Газ может представлять собой кислород или кислородсодержащий газ. Кислородсодержащий газ может включать воздух. При культивировании температура культуры может составлять от 20 до 45°С, к примеру, от 22 до 42°С или от 25 до 40°С. Культивирование может продолжаться до того момента, пока продукция L-лизина не достигнет желаемого уровня.
Полученный L-лизин можно, к примеру, извлекать из культуры путем обработки культуры серной кислотой или соляной кислотой с последующим выполнением комбинации таких способов, как анионообменная хроматография, концентрирование, кристаллизация и осаждение в изоэлектрической точке.
ПРЕИМУЩЕСТВЕННЫЕ ЭФФЕКТЫ ИЗОБРЕТЕНИЯ
Способность продуцировать L-лизин можно повысить путем применения микроорганизма согласно аспекту настоящего изобретения.
Способность продуцировать L-лизин можно повысить путем применения способа получения L-лизина согласно другому аспекту настоящего изобретения.
ПРИНЦИП ИЗОБРЕТЕНИЯ
В дальнейшем, настоящая заявка будет описана более подробно со ссылками на примеры. Однако эти примеры приведены только в целях иллюстрации, и не подразумевается ограничение объема настоящей заявки этими примерами.
Пример 1. Получение геномной библиотеки ДНК Corynebacterium glutamicum дикого типа
Получали геномную ДНК штамма АТССТ3032 Corynebacterium glutamicum. а затем обрабатывали ферментом рестрикции Sau3AI так. чтобы получить частичные фрагменты размером от 6 до 8 т.п.о. Фрагмент лигировали в челночный вектор pECCG122 для трансформации Е. coli и Corynebacterium, при этом челночный вектор включает концы для фермента рестрикции BamHI. Затем DH5α Е. coli трансформировали полученным в результате вектором и наносили на твердую среду LB, содержащую канамицин (25 мг/л). Колонии, трансформированные вектором, в который были встроены фрагменты, отбирали с помощью ПЦР (с применением праймеров SEQ ID NO: 3 и 4) и вносили в смешанную культуру, и из них получали плазмиды с помощью общеизвестного способа выделения плазмид.
Figure 00000001
Figure 00000002
Пример 2. Внедрение библиотеки и отбор штамма с улучшенной способностью продуцировать лизин
Штамм КССМ11016Р Corynebacterium glutamicum, продуцирующий лизин, трансформировали рекомбинантным вектором, полученным в примере 1 с применением способа с использованием электрического импульса, а затем вносили в планшет с комплексной средой, как описано ниже.
<Комплексная среда для планшета>
20 г глюкозы, 50 г (NH4)2SO4, 10 г пептона, 5 г дрожжевого экстракта, 1,5 г мочевины, 5 г КН2РО4, 10 г K2HPO4, 0,5 г MgSO4⋅7H2O, 100 мкг биотина, 1000 мкг тиамина-HCl, 2000 мкг пантотената кальция, 2000 мкг никотинамида, 20 г агара и 25 мг канамицина (на основе 1 л дистиллированной воды).
Приблизительно 2000 колоний инокулировали в каждую лунку 96-луночного планшета (изготовленного в Bioneer Company), содержащую 200 мкл комплексной жидкой среды, описанной выше, и затем культивировали путем встряхивания при 200 об./мин. и 30°С в течение 24 часов. В соответствии со способом с использованием лизиноксидазы 50 мкл каждой культуры добавляли в 96-луночный планшет с распределенной в нем реакционной смесью, содержащей лизиноксидазу (содержащей 200 мкл фосфата калия (рН 7,5), 0,04 мкл лизиноксидазы (0,1 ед./мкл), 0,04 мкл пероксидазы (1 ед./мкл) и 0,4 мг ABTS). После прохождения реакции в течение 30 минут измеряли поглощение при OD405нм и сравнивали степень изменения цвета. Среди них были выбраны 7 типов экспериментальных групп, каждая из которых характеризовалась более высоким поглощением, чем контрольная группа (KCCM11016P/pECCG122).
<Комплексная жидкая среда>
20 г глюкозы, 10 г пептона, 5 г дрожжевого экстракта, 1,5 г мочевины, 4 г КН2РО4, 8 г К2НРО4, 0,5 г MgSO4⋅7H2O, 100 мкг биотина. 1000 мкг тиамина-HCl. 2000 мкг пантотената кальция и 2000 мкг никотинамида (на основе 1 л дистиллированной воды).
Отдельные штаммы инокулировали во флакон с угловыми перегородками объемом 250 мл, содержащий 25 мл среды для посева, описанной ниже, и затем культивировали путем встряхивания при 200 об./мин. и 30°С в течение 20 часов. Затем 1 мл засеянной культуры инокулировали во флакон с угловыми перегородками объемом 250 мл, содержащий 24 мл продукционной среды, описанной ниже, и затем культивировали путем встряхивания при 200 об./мин. и 37°С в течение 96 часов. После окончания культивирования анализировали концентрации L-лизина с помощью HPLC, а результаты анализа показаны в таблице 1.
<Среда для посева (рН 7,0)>
20 г глюкозы, 10 г (NH4)2SO4, 10 г пептона, 5 г дрожжевого экстракта, 1,5 г мочевины, 4 г KH2PO4, 8 г К2НРО4, 0.5 г MgSO4⋅7H2O. 100 мкг биотина. 1000 мкг тиамина-HCl, 2000 мкг пантотената кальция и 2000 мкг никотинамида (на основе 1 л дистиллированной воды).
<Продукционная среда (рН 7,0)>
100 г глюкозы, 40 г (NH4)2SO4, 2,5 г соевого белка. 5 г концентрата кукурузного экстракта, 3 г мочевины, 1 г KH2PO4, 0,5 г MgSO4⋅7H2O, 100 мкг биотина, 1000 мкг тиамина-HCl, 2000 мкг пантотената кальция, 3000 мкг никотинамида и 30 г СаСО3 (на основе 1 л дистиллированной воды).
Figure 00000003
Figure 00000004
На основании результатов, приведенных выше, были отобраны КССМ11016Р/М2 и KCCM11016P/L52, которые демонстрировали повышенную способность продуцировать лизин по сравнению с контрольной группой, а затем из них выделяли плазмиды с последующим анализом последовательности с применением праймеров SEQ ID NO: 3 и 4. Плазмиду, полученную из КССМ11016Р/М2, назвали рЕС-L1, а плазмиду, полученную из KCCM11016P/L52, назвали pEC-L2. Плазмида pEC-L1 охватывает нуклеотиды от приблизительно 200 пар оснований (п.о.) выше стартового кодона открытой рамки считывания (ORF) гена NCgl0857 до приблизительно 200 п.о. ниже стоп-кодона открытой рамки считывания (ORF) гена NCgl0862. Плазмида pEC-L2 охватывает нуклеотиды от приблизительно 250 п.о. ниже стоп-кодона ORF гена NCgl0861 до приблизительно 300 п.о. выше стартового кодона ORF гена NCgl0865. Соответственно, подтвердили, что оба из двух типов плазмид одновременно содержат ген NCgl0862.
Пример 3. Получение вектора для замены промотора гена NCgl0862
На основании результатов, полученных в примере 2, чтобы подтвердить, индуцирует ли фактически сверхэкспрессия гена NCgl0862 улучшение способности продуцировать лизин, получали вектор, выполненный с возможностью замены промотора гена NCgl0862 в хромосоме. Для замены промотора промотор дикого типа (lysCP) и модифицированный промотор lysCP1 применяли в качестве промоторов гена lysC.
Подробное описание приведено ниже.
На основе GenBank Национальных институтов здравоохранения (GenBank NIH, США) была разработана пара праймеров (SEQ ID NO: 5 и 6 или SEQ ID NO: 7 и 8), выполненных с возможностью проведения амплификации соответственно выше и ниже стартового кодона ORF гена NCgl0862 (SEQ ID NO: 2). Вдобавок, была разработана пара праймеров (праймеры SEQ ID NO: 9 и 10) для амплификации промоторного сайта из последовательностей выше гена lysC. SEQ ID NO: и последовательности праймеров показаны ниже. Подчеркнутые последовательности указывают на сайты, которые узнаются ферментами рестрикции.
Figure 00000005
Figure 00000006
Figure 00000007
Figure 00000008
Figure 00000009
Figure 00000010
Проводили ПЦР с применением геномной ДНК штамма КССМ11016Р Corynebacterium glutamicum в качестве матрицы и пар праймеров SEQ ID NO: 5 и 6, и SEQ ID NO: 7 и 8, и SEQ ID NO: 9 и 10, с получением, таким образом, фрагментов ДНК размером 300 п.о., каждый из которых имеет фланкирующие последовательности слева и справа от стартового кодона ORF гена NCgl0862 и фрагмент промотора lysCP. Условия ПЦР-амплификации включают денатурацию при 94°С в течение 5 мин., 30 циклов денатурации при 94°С в течение 30 секунд, отжиг при 56°С в течение 30 секунд и полимеризацию при 72°С в течение 30 секунд, а затем полимеризацию при 72°С в течение 7 минут. Каждый из продуктов размером 300 и.о., амплифицированных с помощью ПЦР и имевших фланкирующую последовательность слева или справа от стартового кодона ORF гена NCgl0862, соответственно обрабатывали EcoRI и BamHI и BamHI и Sail, а затем лигировали с фрагментом ДНК, полученным путем обработки вектора pDZ для встраивания в хромосому у микроорганизма, принадлежащего к роду Corynebacterium, ферментами рестрикции SalI и EcoRI, с получением, таким образом, вектора.
Для амплификации промотора lysCP или промотора lysCPl ПЦР проводили с применением геномной ДНК штамма АТСС 13032 или штамма KCCM11016P-lysCP1 Corynebacterium glutamicum (корейский патент №10-0930203) в качестве матрицы и пары праймеров. SEQ ID NO: 9 и 10. с получением, таким образом, фрагментов промотора lysCP и промотора lysCP1 размером 300 п. о. Фрагменты ДНК промотора lysC дикого типа и промотора lysCP1 обрабатывали BamHI и NdeI. Затем полученный ранее вектор лигировали с фрагментом ДНК, полученным путем обработки BamHI и NdeI, с получением, таким образом, рекомбинантных плазмид pDZ-lysCP_N0862 и PDZ-lysCP1_N0862.
Пример 4. Анализ способности продуцировать лизин у штамма, продуцирующего лизин, происходящего от штамма с замененным промотором NCgl0862
Рекомбинантными плазмидами pDZ-lysCP_N0862 и pDZ-lysCP1_N0862, полученными в примере 3, трансформировали КССМ11016Р Corynebacterium glutamicum согласно способу с использованием электрического импульса (Van der Rest et al., Appl Microbiol Biotechnol 52:541-545, 1999). В соответствии с широко известной хромосомной гомологической рекомбинацией штаммы, в которых промотор lysC встраивался в промоторный сайт гена NCgl0862, были отобраны путем ПЦР (праймеры SEQ ID NO: 5 и 8). Отобранные рекомбинантные штаммы назвали Corynebacterium glutamicum KCCM11016P::lysCP_N0862 и KCCM11016P::lysCP1_N0862 Corynebacterium glutamicum.
Для определения способности продуцировать лизин у таких полученных штаммов, продуцирующих лизин, KCCM11016P::lysCP_N0862 и KCCM11016P::lysCP1_N0862, штаммы культивировали на среде для посева и продукционной среде так же, как в примере 2. а затем анализировали концентрации лизина в каждой культуре, как показано ниже (см. таблицу 2).
Figure 00000011
Как показано в таблице 2, было подтверждено, что у штамма KCCM11016P::lysCP_N0862, в котором промотор был заменен промотором lysC дикого типа, способность продуцировать лизин повышалась в среднем на 1% по сравнению с родительским штаммом, КССМ11016Р, и что у штамма KCCM11016P::lysCP1_N0862, в котором промотор был заменен промотором lysCP1, способность продуцировать лизин повышалась в среднем на 4% по сравнению с родительским штаммом. Впоследствии штамм KCCM11016P::lysCP_1_N0862 назвали CA01-2269 и передали на депонирование в Корейский центр культур микроорганизмов (КССМ) 12 июня 2013 г. с номером доступа КССМ11430Р.
Пример 5. Получение вектора для дополнительного встраивания в хромосому гена NCgl0862
Для обеспечения встраивания необходимого гена в положение трапспозомного гена вектор pDZTN, сконструированный на основе вектора pDZ, применяли как основной вектор, конструируя и получая, таким образом, вектор, выполненный с возможностью дополнительного встраивания гена NCgl0862 из примера 2 в хромосомы.
На основе представленных последовательностей были синтезированы праймеры (SEQ ID NO: 7 и 12) для амплификации сайтов гена NCgl0862. Проводили ПЦР с применением хромосом АТСС 13032 Corynebacterium glutamicum в качестве матрицы, амплифицируя, таким образом, сайт ORF гена NCgl0862 размером приблизительно 370 п.о.
Вдобавок, были синтезированы праймеры (SEQ ID NO: 10 и 11) для амплификации сайтов промотора гена lysC. Проводили ПЦР с применением хромосом штамма для введения KCCM11016P-lysCP1 Corynebacterium glutamicum в качестве матрицы, амплифицируя, таким образом, промоторный сайт размером приблизительно 300 п.о. В этом случае условия ПЦР-амплификации включают денатурацию при 94°С в течение 5 минут, 30 циклов денатурации при 94°С в течение 30 секунд, отжиг при 56°С в течение 30 секунд и полимеризацию при 72°С в течение 30 секунд, а потом полимеризацию при 72°С в течение 7 минут.
Figure 00000012
Фрагменты генов, амплифицированных с помощью ПЦР, обрабатывали ферментами рестрикции SpeI и NdeI, чтобы, таким образом, получить из них фрагменты ДНК. Фрагменты ДНК лигировали в вектор pDZTN для встраивания в хромосому, который имеет концы для фермента рестрикции SpeI. Затем DH5α Е. coli трансформировали полученным в результате вектором и наносили на твердую среду LB, содержащую 25 мг/л канамицина. Колонии, трансформированные вектором, содержащим встроенный в него необходимый ген, отбирали с помощью ПЦР (праймеры SEQ ID NO: 12 и 13), а плазмиды получали путем осуществления общеизвестного способа выделения плазмид и затем называли pDZTN-N0862.
Figure 00000013
Figure 00000014
Пример 6. Анализ способности продуцировать лизин у штамма с NCgl0862, дополнительно встроенным в хромосому
На основе гомологической рекомбинации хромосом вектор pDZTN-N0862. полученный в примере 5, применяли для трансформации штамма КССМ11016Р Corynebacterium glutamicum, продуцирующего L-лизин. Затем его колонии подвергали селективному скринингу с помощью ПЦР (с применением праймеров SEQ ID NO: 12 и 13), и полученный в результате штамм назвали KCCM11016P::N0862-Tn. KCCM11016P::N0862-Tn и контрольную группу в каждом случае культивировали так же, как в примере 2, а затем анализировали концентрации L-лизина в культурах, как показано ниже (см. таблицу 3).
Figure 00000015
В результате было подтверждено, что у KCCM11016P::N0862-Tn, который представлял собой штамм с дополнительно встроенным в хромосому геном NCgl0862, способность продуцировать лизин повышалась на 8% по сравнению с родительским штаммом КССМ11016Р.
Пример 7. Получение L-лизина с применением микроорганизма, происходящего от КССМ10770Р, содержащего NCgl0862, дополнительно встроенный в хромосому
Вектор pDZTN-N0862, полученный в примере 5. применяли для трансформации КССМ10770Р Corynebacterium glutamicum, который представлял собой штамм, продуцирующий лизин, в котором 7 типов генов, вовлеченных в путь биосинтеза L-лизина, дополнительно добавляли в его хромосому. Впоследствии штамм, в котором ген NCgl0862 был дополнительно встроен в хромосому, отбирали с помощью ПЦР, и полученный в результате штамм назвали KCCM10770P::N0862-Tn Corynebacterium glutamicum. Штамм культивировали так же, как в примере 2, а затем анализировали концентрации L-лизина в культуре, как показано ниже (таблица 4).
Figure 00000016
В результате было подтверждено, что способность продуцировать лизин повышалась на 5% по сравнению с родительским штаммом.
Пример 8. Получение L-лизина с применением микроорганизма, происходящего от CJ3P, содержащего NCgl0862, дополнительно встроенный в хромосому
Для определения эффектов в других штаммах, принадлежащих к Corynebacterium glutamicum, вектор pDZTN-N0862, полученный в примере 5, применяли для трансформации CJ3P Corynebacterium glutamicum. который представлял собой штамм, продуцирующий лизин, с 3 типами генных мутаций, связанных с улучшениями способности продуцировать L-лизин. Впоследствии штамм, в котором ген NCgl0862 был дополнительно встроен в хромосому, отбирали с помощью ПЦР, а полученный в результате штамм назвали CJ3P::N0862-Tn. Штамм культивировали также, как в примере 2, а затем анализировали концентрации извлеченного из него L-лизина, как показано ниже (см. таблицу 5).
Figure 00000017
В результате было подтверждено, что способность продуцировать лизин повышалась на 12% по сравнению с родительским штаммом.
Пример 9. Получение L-лизина с применением микроорганизма, происходящего от КССМ11347Р, содержащего NCgl0862, встроенный в хромосому
Для определения эффектов в других штаммах, принадлежащих к Corynebacterium glutamicum, вектор pDZTN-N0862 вводили в штамм КССМ11347Р Corynebacterium glutamicum, продуцирующий L-лизин (корейский патент №1994-0001307) таким же путем, как в примере 5, и полученный в результате штамм назвали KCCM11347P::N0862-Tn. Штамм культивировали также, как в примере 2, а затем анализировали концентрации извлеченного из него L-лизина. как показано ниже (см. таблицу 6).
Figure 00000018
В результате было подтверждено, что способность продуцировать лизин повышалась на 6% по сравнению с родительским штаммом.

Claims (5)

1. Микроорганизм, принадлежащий к роду Corynebacterium, продуцирующий L-лизин, с улучшенной экспрессией полинуклеотида, кодирующего аминокислотную последовательность SEQ ID NO: 1.
2. Микроорганизм по п.1, где улучшенная экспрессия индуцируется посредством повышения числа копий генов, манипуляции с последовательностью, регулирующей экспрессию, или их комбинаций.
3. Микроорганизм по п.2, где манипуляция с последовательностью, регулирующей экспрессию, представляет собой модификацию промотора с помощью замены, изменение в стартовом кодоне или их комбинации.
4. Микроорганизм по п.1, где микроорганизм представляет собой Corynebacterium glutamicum.
5. Способ получения L-лизина, при этом способ предусматривает: культивирование микроорганизма по п.1 в среде и извлечение L-лизина из микроорганизма или среды.
RU2016114418A 2013-10-28 2014-09-25 Микроорганизм Corynebacterium sp. с повышенной способностью продуцировать L-лизин и способ получения L-лизина с его помощью RU2667425C2 (ru)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR1020130128634A KR101498630B1 (ko) 2013-10-28 2013-10-28 L-라이신 생산능이 향상된 코리네박테리움 속 미생물 및 이를 이용한 l-라이신 생산방법
KR10-2013-0128634 2013-10-28
PCT/KR2014/008932 WO2015064917A1 (ko) 2013-10-28 2014-09-25 L-라이신 생산능이 향상된 코리네박테리움 속 미생물 및 이를 이용한 l-라이신 생산방법

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2016114418A RU2016114418A (ru) 2017-12-06
RU2667425C2 true RU2667425C2 (ru) 2018-09-19

Family

ID=53004468

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2016114418A RU2667425C2 (ru) 2013-10-28 2014-09-25 Микроорганизм Corynebacterium sp. с повышенной способностью продуцировать L-лизин и способ получения L-лизина с его помощью

Country Status (9)

Country Link
US (1) US9758801B2 (ru)
EP (1) EP3064569A4 (ru)
JP (1) JP6286571B2 (ru)
KR (1) KR101498630B1 (ru)
CN (1) CN105849249B (ru)
BR (1) BR112016009324B1 (ru)
MY (1) MY181203A (ru)
RU (1) RU2667425C2 (ru)
WO (1) WO2015064917A1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2793441C1 (ru) * 2021-01-29 2023-04-03 СиДжей ЧеилДжеданг Корпорейшн Новый вариант белка сборки праймосомы и способ получения l-лизина с его применением

Families Citing this family (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104824364A (zh) * 2015-05-28 2015-08-12 河南双成生物科技有限公司 富含五种必需氨基酸的功能蛋白饲料生产方法
KR101766964B1 (ko) * 2015-08-27 2017-08-09 씨제이제일제당 (주) L-라이신 생산능을 가지는 코리네박테리움 속 미생물 및 이를 이용한 l-라이신 생산방법
KR101863456B1 (ko) * 2016-11-15 2018-06-01 씨제이제일제당 (주) L-라이신을 생산하는 코리네박테리움 속 미생물 및 이를 이용한 l-라이신의 생산방법
KR101947945B1 (ko) * 2018-01-25 2019-02-13 씨제이제일제당 (주) L-아미노산을 생산하는 코리네박테리움 속 미생물 및 이를 이용한 l-아미노산의 생산방법
KR102147776B1 (ko) * 2019-09-20 2020-08-26 대상 주식회사 L-라이신 생산능력이 향상된 코리네박테리움속 미생물 및 이를 이용한 라이신의 생산 방법
KR102291553B1 (ko) * 2021-01-29 2021-08-18 씨제이제일제당 (주) 신규한 프리모솜 조립 단백질 변이체 및 이를 이용한 l-라이신 생산 방법
KR20230154199A (ko) * 2021-03-05 2023-11-07 더 리젠트스 오브 더 유니이버시티 오브 캘리포니아 피부 프로바이오틱스
CN112695036B (zh) * 2021-03-23 2021-07-06 中国科学院天津工业生物技术研究所 一种天冬氨酸激酶基因表达调控序列及其应用
KR20230084993A (ko) * 2021-12-06 2023-06-13 대상 주식회사 L-라이신 생산능이 향상된 코리네박테리움 글루타미쿰 변이주 및 이를 이용한 l-라이신의 생산 방법

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2316588C1 (ru) * 2004-01-30 2008-02-10 Адзиномото Ко., Инк. Бактерия - продуцент l-аминокислоты и способ получения l-аминокислоты (варианты)
KR20130061570A (ko) * 2011-12-01 2013-06-11 씨제이제일제당 (주) L-아미노산 및 리보플라빈을 동시에 생산하는 미생물 및 이를 이용한 l-아미노산 및 리보플라빈을 생산하는 방법
US20130157370A1 (en) * 2008-04-10 2013-06-20 Cj Cheiljedang Corporation Transformation Vector Comprising Transposon, Microorganisms Transformed with the Vector, and Method for Producing L-Lysine Using the Microorganism

Family Cites Families (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR940001307B1 (ko) 1991-12-27 1994-02-19 제일제당 주식회사 L-라이신을 생산하는 신규 미생물
KR0159812B1 (ko) 1995-12-20 1998-11-16 손경식 코리네박테리움 글루타미컴 씨에이치 77 및 이 균주를 이용한 l-라이신의 제조 방법
JP4623825B2 (ja) 1999-12-16 2011-02-02 協和発酵バイオ株式会社 新規ポリヌクレオチド
KR100789270B1 (ko) 2005-11-30 2008-01-02 씨제이 주식회사 L-라이신 생산능이 향상된 코리네박테리움 속 미생물 및그를 이용하여 l-라이신을 생산하는 방법
KR100789271B1 (ko) * 2005-11-30 2008-01-02 씨제이 주식회사 L-라이신 생산능이 향상된 코리네박테리움 속 미생물 및그를 이용하여 l-라이신을 생산하는 방법
KR100733928B1 (ko) * 2005-11-30 2007-07-02 씨제이 주식회사 카나마이신 내성을 갖고 l-라이신 생산능이 향상된코리네형 미생물 및 그를 이용하여 l-라이신을 생산하는방법
EP2066782A4 (en) 2006-09-15 2010-02-03 Cj Cheiljedang Corp CORYNEBACTERIA WITH IMPROVED L-LYSINE PRODUCTIVITY AND METHOD FOR THE PREPARATION OF L-LYSINE THEREWITH
KR100930203B1 (ko) 2008-01-28 2009-12-07 씨제이제일제당 (주) 개량된 프로모터 및 이를 이용한 l-라이신의 생산 방법
KR101126041B1 (ko) 2008-04-10 2012-03-19 씨제이제일제당 (주) 트랜스포존을 이용한 형질전환용 벡터, 상기 벡터로형질전환된 미생물 및 이를 이용한 l-라이신 생산방법

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2316588C1 (ru) * 2004-01-30 2008-02-10 Адзиномото Ко., Инк. Бактерия - продуцент l-аминокислоты и способ получения l-аминокислоты (варианты)
US20130157370A1 (en) * 2008-04-10 2013-06-20 Cj Cheiljedang Corporation Transformation Vector Comprising Transposon, Microorganisms Transformed with the Vector, and Method for Producing L-Lysine Using the Microorganism
KR20130061570A (ko) * 2011-12-01 2013-06-11 씨제이제일제당 (주) L-아미노산 및 리보플라빈을 동시에 생산하는 미생물 및 이를 이용한 l-아미노산 및 리보플라빈을 생산하는 방법

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
UNIPROTKB Q8NL10, 01.10.2002, Найдено в Интернет 16.06.2017 по адресу www.uniprot.org/uniprot/Q8NL10. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2794550C1 (ru) * 2021-01-15 2023-04-21 СиДжей ЧеилДжеданг Корпорейшн "Новый вариант субъединиц гамма и тау ДНК-полимеразы III и способ получения L-лизина с его применением"
RU2793441C1 (ru) * 2021-01-29 2023-04-03 СиДжей ЧеилДжеданг Корпорейшн Новый вариант белка сборки праймосомы и способ получения l-лизина с его применением

Also Published As

Publication number Publication date
RU2016114418A (ru) 2017-12-06
EP3064569A1 (en) 2016-09-07
WO2015064917A1 (ko) 2015-05-07
US20160251687A1 (en) 2016-09-01
CN105849249A (zh) 2016-08-10
BR112016009324B1 (pt) 2023-03-28
EP3064569A4 (en) 2017-06-07
CN105849249B (zh) 2019-11-15
JP6286571B2 (ja) 2018-02-28
KR101498630B1 (ko) 2015-03-04
US9758801B2 (en) 2017-09-12
JP2016533771A (ja) 2016-11-04
BR112016009324A2 (pt) 2017-09-19
MY181203A (en) 2020-12-21

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2667425C2 (ru) Микроорганизм Corynebacterium sp. с повышенной способностью продуцировать L-лизин и способ получения L-лизина с его помощью
RU2725193C1 (ru) Новый полипептид и способ продуцирования IMP с его использованием
RU2615454C1 (ru) Способ получения L-лизина с использованием микроорганизмов, обладающих способностью продуцировать L-лизин
KR102028554B1 (ko) 신규한 프로모터 및 이를 이용한 l-아미노산 생산 방법
CN105392880B (zh) 生产o-乙酰基高丝氨酸的微生物和用其生产o-乙酰基高丝氨酸的方法
KR20130082124A (ko) 자일로즈 이용능이 부여된 코리네박테리움 속 미생물 및 이를 이용한 l-라이신의 생산방법
RU2663135C2 (ru) Микроорганизм, обладающий улучшенной способностью к продуцированию l-лизина, и способ производства l-лизина с использованием данного микроорганизма
RU2681475C1 (ru) Вариант репрессора глюконата, микроорганизм-продуцент L-лизина, содержащий его, и способ получения L-лизина с его использованием
RU2736372C1 (ru) Вариант фосфорибозилпирофосфатамидотрансферазы и способ получения пуринового нуклеотида с его использованием
RU2651505C1 (ru) Микроорганизм Corynebacterium с улучшенной способностью продуцировать L-лизин и способ получения L-лизина с его помощью
JP2018518977A (ja) L−リジンを生産する微生物及びそれを用いたl−リジン生産方法
JP2019030316A (ja) L−リシン生産能を有する微生物及びそれを用いたl−リシンの生産方法
RU2668830C2 (ru) Микроорганизм рода Corynebacterium для продуцирования L-лизина и способ получения L-лизина с его помощью
RU2720522C1 (ru) Микроорганизм рода Corynebacterium, продуцирующий L-лизин, и способ получения L-лизина с использованием этого микроорганизма
JP2018529354A (ja) L−トレオニンを生産する組み換え微生物及びそれを用いてl−トレオニンを生産する方法
JP7286758B2 (ja) α-グルコシダーゼの活性が強化されたL-アミノ酸を生産する微生物及びそれを用いたL-アミノ酸生産方法
KR102589135B1 (ko) 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 활성이 강화된 미생물, 및 이의 용도
KR102285951B1 (ko) 시트레이트 신타아제의 활성이 약화된 신규한 변이형 폴리펩티드 및 이를 이용한 l-아미노산 생산 방법
RU2697005C2 (ru) Способ получения l-аминокислот
JP2020504598A (ja) L−アルギニンを生産するコリネバクテリウム属微生物及びこれを用いたl−アルギニン生産方法
US20220275412A1 (en) Microorganism for producing l-amino acid having increased cytochrome c activity, and l-amino acid production method using same
RU2819270C1 (ru) Микроорганизм для продуцирования L-аминокислоты, обладающий повышенной активностью цитохрома С, и способ получения L-аминокислоты с его использованием
JP2024515389A (ja) L-リシン生産能が向上したコリネバクテリウム・グルタミカム変異株及びそれを用いたl-リシンの生産方法
KR20230053351A (ko) L-라이신 생산능이 향상된 코리네박테리움 글루타미쿰 변이주 및 이를 이용한 l-라이신의 생산 방법
KR20210143591A (ko) 신규한 폴리펩티드 및 이를 이용한 l-류신의 생산 방법