RU2088258C1 - Способ изготовления вакцины против лептоспироза животных - Google Patents

Способ изготовления вакцины против лептоспироза животных Download PDF

Info

Publication number
RU2088258C1
RU2088258C1 RU9595114193A RU95114193A RU2088258C1 RU 2088258 C1 RU2088258 C1 RU 2088258C1 RU 9595114193 A RU9595114193 A RU 9595114193A RU 95114193 A RU95114193 A RU 95114193A RU 2088258 C1 RU2088258 C1 RU 2088258C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
tween
leptospira
vitamin
neonol
cultivation
Prior art date
Application number
RU9595114193A
Other languages
English (en)
Other versions
RU95114193A (ru
Inventor
В.И. Белоусов
Ю.А. Малахов
В.И. Ситьков
Г.Л. Соболева
В.М. Усольцев
Original Assignee
Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт биологической промышленности
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт биологической промышленности filed Critical Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт биологической промышленности
Priority to RU9595114193A priority Critical patent/RU2088258C1/ru
Publication of RU95114193A publication Critical patent/RU95114193A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2088258C1 publication Critical patent/RU2088258C1/ru

Links

Images

Classifications

    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Использование: биотехнология, вакцина против лептоспироза животных. Сущность изобретения: культуру лептоспир выращивают при 27 - 29oC в течение 72 - 90 ч и парциальном давлении растворенного кислорода в пределах 15 - 20% от насыщения кислородом воздуха. Для культивирования используют жидкую питательную среду на твин-альбуминовой основе, при следующем соотношении компонентов, мас.%: альбумин сухой 0,15 - 0,3; неонол или твин-80 0,01 - 0,03; L-аспарагин 0,1 - 0,5; фторурацил 0,01 - 0,025; пролин 0,03 - 0,05; глутамин 0,025 - 0,045; витамин B1 0,03 - 0,05; витамин B12 0,01 - 0,025; натрий фосфорнокислый двузамещенный 15,6 - 17,6; калий фосфорнокислый однозамещенный 1,17 - 3,17; вода дистиллированная до 100,0. Причем после засева лептоспир окислительно-восстановительный потенциал снижают до 180 - 200 мВ, а концентрацию неонола или твина-80 поддерживают на уровне 0,01 - 0,03 маc.% на протяжении всего процесса культивирования. 1 табл.

Description

Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано при промышленном производстве вакцины против лептоспироза животных.
Известны способы получения поливалентной вакцины против лептоспироза животных [1, 2, 3] Однако существующие способы изготовления вакцины обладают рядом недостатков.
Используемая сывороточная питательная среда и рутинный способ культивирования лептоспир в стеклянной посуде не отвечают требованиям современного индустриального производства препарата, не обеспечивают высокого накопления бактериальной массы 70 100 млн/мл для получения высокоиммуногенной, стабильной и эффективной вакцины.
Применение стеклянных бутылей для культивирования лептоспир представляет весьма трудоемкий и тяжелый ручной труд. Многочисленные операции с бутылями при монтаже, при фильтровании среды, при посеве культуры лептоспир, при просмотре культуры на накопление, при перекачке культуры лептоспир для составления серии вакцины и др. приводит к контаминации отдельных бутылей посторонней микрофлорой, а в конечной итоге к удорожанию и снижению качества препарата. В настоящее время сказывается нехватка стеклянной посуды, ее дороговизна и относительно короткий срок эксплуатации.
Трудоемки и не надежны в промышленном производстве также процессы стерилизующего фильтрования среды и концентрирования баксуспензии (в следствие низкого накопления бактериальной массы).
Многолетний опыт показал, что основным недостатком сывороточной среды является содержание (у значительной части овец-доноров) специфических антител к производственным штаммам лептоспир, что приводит к снижению накопления этих микроорганизмов и изменению их антигенной структурны, а это в конечном итоге к снижению качества вакцины.
Наиболее близким аналогом является способ изготовления вакцины против лептоспироза животных, включающий посев лептоспир в синтетическую среду, содержащую аминокислоты, витамины В1 и В12, калий фосфорнокислый однозамещенный, натрий фосфорнокислый двузамещенный, ПАВ (твин-80) и дистиллированную воду. Культивирование проводят в условиях аэрации и перемешивания с периодическим внесением твина-80 в процессе культивирования. Полученную бактериальную массу инактивируют и добавляют адъювант [4]
Цель изобретения получение высокого накопления бактериальной массы при культивировании лептоспир в биореакторе, повышение иммуногенности, стабильности и эффективности вакцины, а также снижение себестоимости препарата.
Цель достигается за счет использования разработанной бессывороточной питательной среды на твин-альбуминовой основе и разработанного режима культивирования лептоспир.
Кроме того, введение в состав питательной среды пролина, аспарагина и глутамина позволяет получать максимальное накопление лептоспир, а добавление фторурацила подавляет рост посторонней микрофлоры, не влияя на рост лептоспир, и обеспечивает чистоту культуры.
Способ осуществляется следующий образом.
В стерильные биореакторы загружают жидкую оптимизированную по составу для лептоспир (ВГНКИ-1, ВГНКИ-2, ВГНКИ-3, ВГНКИ-4, ВГНКИ-5, ВГНКИ-6) питательную среду, приготовленную по следующей прописи, мас.
Альбумин сухой 0,15 0,3
Твин-80 (неонол) 0,01 0,03
L аспарагин 0,1 0,5
Фторурацил 0,01 0,025
Пролин 0,03 0,05
Глутамин 0,025 0,045
Витамин В1 0,03 0,05
Витамин В12 0,01 0,025
Натрий фосфорнокислый (Na2HPO4) 15,6 17,6
Калий фосфорнокислый (KH2PO4) 1,17 3,17
Вода дистиллированная до 100,0.
Готовая стерильная питательная среда должна содержать 0,15 0,3% белка и иметь 7,35 7,55 ед. pH.
Питательную среду в отдельном ферменте засевают матровой расплодкой лептоспир, выращенной в течение 5 сут (120 ч) в жидкой питательной среде с сывороткой крови (5%) и культивируют каждый штамм в отдельном биореакторе при 27 29oC в течение 72 90 ч.
После засева окислительно-восстановительный потенциал снижают до 200 - 180 мВ путем выдержки культуры без подачи воздуха на аэрацию и включенной мешалке. Затем с помощью изменения расхода воздуха на аэрацию и скорости вращения мешалки до 120 об/мин поддерживают парциальное давление растворенного в культуральной жидкости кислорода на уровне 15 20% от насыщения кислородом воздуха, pH культуральной жидкости в процессе культивирования изменяется незначительно и его не регулируют. Через 48 ч культивирования дробную подачу раствора твин-80 (неонола) осуществляют дозами до концентрации 0,01 0,03% при лимитировании роста лептоспир, характеризующимся резким повышением pO2 при неизменных оборотах мешалки и количества подаваемого в реакторы воздуха. Выращенные культуры лептоспир инактивируют формалином, смешивают между собой в одинаковых объемах, добавляют адъювант и стерильно фасуют во флаконы.
Пример 1. Способ изготовления с минимальными значениями параметров.
В стерильные биореакторы отдельно для каждого штамма загружают в жидкую оптимизированную по составу для лептоспир питательную среду, приготовленную по следующей прописи, мас.
Альбумин сухой 0,15
Твин-80 (неонол) 0,01
L аспарагин 0,1
Пролин 0,03
Глутамин 0,025
Фторурацил 0,01
Витамин B1 0,03
Витамин B12 0,01
Натрий фосфорнокислый (Na2HPO4) 15,6
Калий фосфорнокислый (KH2PO4) 1,17
Вода дистиллированная До 100,0
Готовая стерильная питательная среда содержит 0,15% белка и имеет 7,35 ед pH. Питательную среду в отдельных биореакторах для каждого штамма засевают матровой расплодкой лептоспир, выращенной в жидкой питательной среде указанного состава в течение 5 сут (120 ч) и культивируют каждый штамм в отдельном биореакторе при 27oC в течение 72 ч.
После засева окислительно-восстановительный потенциал снижают до 200 мB путем выдержки культуры без подачи воздуха на аэрацию и выключенной мешалке. Затеи с помощью изменения расхода воздуха на аэрацию и скорости вращения мешалки до 120 об./мин поддерживают парциальное давление растворенного в культурной жидкости кислорода на уровне 15% от насыщения кислородом воздуха. Через 48 ч культивирования дробную подачу раствора твина-80 (неонола) осуществляют дозами до концентрации 0,01% при лимитировании роста лептоспир, характеризующимся резким повышением pO2 при неизменных оборотах мешалки и количества подаваемого в реакторы воздуха. Накопление лептоспир после 72 ч культивирования составляет 1 млрд/с3.
Выращенные культуры лептоспир инактивируют формалином в концентрации 0,2% от общего объема, антигены смешивают между собой в равных количествах, добавляют 6% -ный гидрат окиси алюминия в количестве 30% от общего объема и стерильно фасуют во флаконы,
Пример 2. Способ изготовления вакцины с оптимальными значениями параметров. В стерильные биореакторы отдельно для каждого штамма загружают жидкую оптимизированную по составу для липтоспир питательную среду, приготовленную по следующей прописи, мас.
Альбумин сухой 0,22
Твин-80 (неонол) 0,02
L аспарагин 0,3
Фторурацил 0,018
Пролин 0,04
Глутамин 0,035
Витамин B1 0,04
Витамин B12 0,018
Натрий фосфорнокислый (Na2HPO4) 16,6
Калий фосфорнокислый (KH2PO4) 2,17
Вода дистиллированная До 100,0
Питательная среда содержит до 0,22% белка и имеет 7,45 ед. pH.
Питательную среду в отдельных биореакторах засевают матровой расплодкой лептоспир, выращенной в жидкой питательной среде аналогичного состава в течение 120 ч.
Культивируют каждый штамм отдельно при 28oC в течение 81 ч.
После засева окислительно-восстановительный потенциал снижают до 190 мВ путем выдержки культуры без подачи воздуха на аэрацию и выключенной мешалке. Затем с помощью изменения подачи воздуха на аэрацию и скорости вращения мешалки до 120 об/мин поддерживают парциальное давление растворенного в культурной жидкости кислорода на уровне 17,5% от насыщения кислородом воздуха. Через 48 ч культивирования дробную подачу раствора твина-80 (неонола) осуществляют дозами до концентрации 0,02% при лимитировании роста лептоспир, характеризующимся резким повышением pO2 при неизменных оборотах мешалки и количества подаваемого в реактор воздуха. Накопление лептоспир после 81 ч культивирования составляет 2 млрд/см3.
Выращенные культуры лептоспир инактивируют формалином в концентрации 0,2% от общего объема, смешивают антигены между собой в равных количествах, добавляют 6%-ый гель гидрата окиси алюминия в количестве 30% от общего объема, перемешивают и стерильно фасуют во флаконы.
Пример 3. Способ изготовления вакцины с максимальными значениями параметров. В стерильные биореакторы отдельно для каждого штамма загружают жидкую оптимизированную по составу для лептоспир питательную среду, приготовленную по следующей прописи, мас.
Альбумин сухой 0,3
Твин-80 (неонол) 0,03
L аспарагин 0,5
Фторурацил 0,025
Пролин 0,05
Глутамин 0,045
Витамин В1 0,05
Витамин B12 0,025
Натрий фосфорнокислый (Na2HPO4) 17,6
Калий фосфорнокислый (KH2PO4) 3,17
Вода дистиллированная До 100,0
Питательная среда содержит 0,3% белка и имеет 7,55 ед.pH.
Питательную среду в отдельных биореакторах для каждого штамма засевают матровой расплодкой лептоспир, выращенной в жидкой питательной среде указанного состава в течение 120 ч и культивируют каждый штамм в отдельном биореакторе при 29oC в течение 90 ч.
После засева окислительно-восстановительный потенциал снижают до: 180 мВ путем выдержки культуры без подачи воздуха на аэрацию и выключенной мешалке. Затем с помощью изменения расхода воздуха на аэрацию и скорости вращения мешалки до 120 об. /мин поддерживают парциальное давление растворенного в культуральной жидкости кислорода на уровне 20% от насыщения кислородом воздуха. Через 48 ч культивирования дробную подачу раствора твин-80 (неонола) осуществляют дозами до концентрации 0,03% при лимитировании роста лептоспир, характеризующимся резким повышением pO2 при неизменных оборотах мешалки и количества подаваемого в реакторы воздуха. Накопление лептоспир после 90 ч культивирования составляет 1,5 млрд/см3
Выращенные культуры лептоспир инактивируют формалином в концентрации 0,2% от общего объема, смешивают антигены между собой в равных объемах, добавляют 6%-ый гель гидрата окиси алюминия в количестве 30% от общего объема, перемешивают и стерильно фасуют во флаконы.
Пример 4. Способ изготовления вакцины со значениями параметров ниже минимальных. В стерильные биореакторы отдельно для каждого штамма загружают жидкую питательную среду, приготовленную по следующей прописи, мас.
Альбумин сухой 0,1
Твин-80 (неонол) 0,005
L аспарагин 0,05
Фторурацил 0,005
Пролин 0,02
Глутамин 0,015
Витамин B1 0,02
Витамин B12 0,005
Натрий фосфорнокислый (Na2HPO4) 14,5
Калий фосфорнокислый (KH2PO4) 0,99
Вода дистиллированная До 100,0
Готовая питательная среда содержит 0,10% белка и имеет 7,30 ед. pH
Питательную среду в отдельных биореакторах засевают матровой расплодкой лептоспир, выращенной в жидкой питательной среде указанного состава в течение 120 ч. Культивируют каждый штамм лептоспир в отдельном биореакторе при 26oC в течение 70 ч.
После засева окислительно-восстановительный потенциал снижают до 210 мВ путем выдержки культуры без подачи воздуха на аэрацию и выключенной мешалке. Затем с помощью изменения расхода воздуха на аэрацию и скорости вращения мешалки до 120 об./мин поддерживают парциальное давление растворенного в культуральной жидкости кислорода на уровне 12,5% от насыщения кислородом воздуха. Через 48 ч культивирования дробную подачу раствора твин-80 (неонола) осуществляют дозами до концентрации 0,005% при лимитировании роста лептоспир характеризующимся резким повышением рО2 при неизменных оборотах мешалки и количества подаваемого в реакторы воздуха. В полученной культуре наблюдали полиморфизм. Накопление лептоспир после 70 ч культивирования составляет не выше 0,15 млрд клеток/мл.
Выращенные культуры лептоспир инактивируют формалином в концентрации 0,2% от общего объема, смешивают антигены лептоспир между собой в равных объемах, добавляют 6% -ый гель гидрата окиси алюминия в количестве 30% от общего объема, перемешивают и стерильно фасуют во флаконы.
Пример 5. Способ изготовления вакцины со значениями параметров выше максимальных. В стерильные биореакторы отдельно для каждого штамма загружают жидкую питательную среду, приготовленную по следующей прописи, мас.
Альбумин сухой 0,4
Твин-80 (неонол) 0,04
L аспарагин 0,6
Фторурацил 0,035
Пролин 0,055
Глутамин 0,055
Витамин В1 0,06
Витамин В12 0,03
Натрий фосфорнокислый (Na2HPO4) 18,6
Калий фосфорнокислый (KH2PO4) 4,17
Вода дистиллированная до 100,0
Готовая питательная среда содержит 0,4% белка и имеет 7,60 ед. pH.
Питательную среду в отдельных биореакторах для каждого штамма засевают матровой расплодкой лептоспир, выращенной в течение 120 ч в жидкой питательной среде указанного состава и культивируют при 30oС в течение 92 ч.
После засева окислительно-восстановительный потенциал снижают до 170 мВ путем выдержки культуры без подачи воздуха на аэрацию и выключенной мешалке. Затем с помощью изменений расхода воздуха на аэрацию и скорости вращения мешалки до 120 об./мин поддерживают парциальное давление растворенного в культуральной жидкости кислорода на уровне 22,5% от насыщения кислородом воздуха. Через 48 ч культивирования дробную подачу раствора твин-80 (неонола) осуществляют дозами до концентрации 0,04% при лимитировании роста лептоспир, характеризующимся резким повышением рО2 при неизменных оборотах мешалки и количества подаваемого в реакторы воздуха. В полученной культуре наблюдали полиморфизм. Накопление лептоспир после 92 ч культивирования составляет 0,3 млрд/см3.
Выращенные культуры лептоспир инактивируют формалином в концентрации 0,2% от общего объема, смешивают антигены между собой в равных количествах, добавляют 6%-ый гель гидрата окиси алюминия в количестве 30% от общего объема, перемешивают и стерильно фасуют во флаконы.
Технологические параметры культивирования лептоспир и сравнительные данные изготовления вакцины против лептоспироза животных, указанные в примерах, а также активность готового препарата, приведены в таблице.
Таким образом использование принципиально новой бессывороточной питательной среды на твин-альбуминовой основе и разработанного режима культивирования позволяет значительно увеличить накопление бактериальной массы при изготовлении вакцины против лептоспироза животных, а также повысить стабильность и срок годности препарата.
Источники информации:
1. Авторское свидетельство СССР N 555664, кл. А 61 К 39/00, 1983 г.
2. Авторское свидетельство СССР N 828459, кл. А 61 К 39/02, C 12 N 5/00, 1983 г.
3. Инструкция по изготовлению и контролю поливалентной вакцины "ВГНКИ" против лептоспироза животных, утв. 06.03.84.
4. Малахов Ю.А. Лептоспироз животных, М. ВО Агропромиздат, 1992, с.31-33.

Claims (1)

  1. Способ изготовления вакцины против лептоспироза животных, включающий посев лептоспир, их культивирование в жидкой питательной среде, содержащей аминокислоты и витамины В1 и В12, калий фосфорнокислый однозамещенный, натрий фосфорнокислый двузамещенный, ПАВ и дистиллированную воду, в условиях аэрации и перемешивания, внесение ПАВ в процесс культивирования с последующей инактивацией бактериальной массы и добавлением адъюванта, отличающийся тем, что после посева окислительно-восстановительный потенциал снижают до 180 200 мВ, культивирование проводят в течение 72 90 ч при температуре 27 29oС и парциальном давлении растворенного кислорода в пределах 15 20% от насыщения кислородом воздуха в питательной среде, дополнительно содержащей альбумин сухой, фторурацил, из аминокислот - L-аспарагин, пролин, глутамин, из ПАВ неонол или твин-80, при следующем соотношении компонентов, мас.
    Альбумин сухой 0,15 0,3
    Неонол или твин-80 0,01 0,03
    L-аспарагин 0,1 0,5
    Фторурацил 0,01 0,025
    Пролин 0,03 0,05
    Глутамин 0,025 0,045
    Витамин В1 0,03 0,05
    Витамин В12 0,01 0,025
    Натрий фосфорнокислый двузамещенный 15,6 17,6
    Калий фосфорнокислый однозамещенный 1,17 3,17
    Вода дистиллированная До 100,0
    при этом концентрацию ПАВ поддерживают на уровне 0,01 0,03 мас. на протяжении всего процесса культивирования.
RU9595114193A 1995-08-08 1995-08-08 Способ изготовления вакцины против лептоспироза животных RU2088258C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU9595114193A RU2088258C1 (ru) 1995-08-08 1995-08-08 Способ изготовления вакцины против лептоспироза животных

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU9595114193A RU2088258C1 (ru) 1995-08-08 1995-08-08 Способ изготовления вакцины против лептоспироза животных

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU95114193A RU95114193A (ru) 1997-08-10
RU2088258C1 true RU2088258C1 (ru) 1997-08-27

Family

ID=20171133

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU9595114193A RU2088258C1 (ru) 1995-08-08 1995-08-08 Способ изготовления вакцины против лептоспироза животных

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2088258C1 (ru)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Авторское свидетельство СССР N 828459, кл. A 61 K 39/02, 1983. Малахов Ю.А. Лептоспироз животных. - М.: ВО "Агропромиздат", 1952, с.31 - 33. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2015164C1 (ru) Способ периодического культивирования клеток-продуцентов моноклональных антител и биологически активных веществ
US6156570A (en) Process for the continuous culture of cells
WO1998041611A9 (en) Process for the continuous culture of cells
CN101851610A (zh) 一种大规模生产动物用狂犬病毒抗原的方法
JP2008054688A (ja) アカルボースの製造のためのオスモル濃度制御発酵方法
Iijima et al. Immobilization of hybridoma cells with alginate and urethane polymer and improved monoclonal antibody production
Phillips et al. Effect of oxygen on antibody productivity in hybridoma culture
JPH08508875A (ja) 蛋白分泌細胞の流加回分培養法
CN102994442B (zh) 一种利用激流式生物反应器悬浮培养动物细胞的工艺过程及控制方法
RU2088258C1 (ru) Способ изготовления вакцины против лептоспироза животных
CN114381386B (zh) 一种发酵生产阿维菌素的培养基
CN109576212A (zh) 高密度接种培养中种子细胞的培养方法及其应用
US3930944A (en) Urokinase production
RU2053294C1 (ru) Способ культивирования бифидобактерий
RU2201958C2 (ru) Сухая стерильная малосывороточная питательная среда для культивирования клеток млекопитающих
RU1566532C (ru) Способ изготовления вакцины против сибирской язвы животных
RU2198921C2 (ru) Способ получения нативной споровой суспензии для приготовления сибиреязвенных вакцин
KR100429331B1 (ko) 재조합 효모를 이용한 에스에이치엘케이엔-1 단백질의대량생산방법
RU2803269C1 (ru) Питательная среда для культивирования пастерелл в промышленных биореакторах
RU2053790C1 (ru) Способ изготовления вакцины против листериоза сельскохозяйственных животных
CN106306364A (zh) 一种用于饲料添加剂的粪肠球菌产品及其生产工艺
RU2124366C1 (ru) Способ изготовления вакцины против сальмонеллеза сельскохозяйственных животных и птиц
RU2687373C2 (ru) Способ получения биомассы бруцелл вакцинных штаммов при глубинном выращивании с использованием жидкой питательной среды минимизированного состава
CN117431220A (zh) 一种无血清培养人二倍体细胞制备狂犬病毒抗原的方法和应用
JPS62181780A (ja) 動物細胞の培養方法