PL216040B1 - Kompozycja do stosowania w leczeniu ssaka z ubytkiem kosci - Google Patents

Kompozycja do stosowania w leczeniu ssaka z ubytkiem kosci

Info

Publication number
PL216040B1
PL216040B1 PL367224A PL36722402A PL216040B1 PL 216040 B1 PL216040 B1 PL 216040B1 PL 367224 A PL367224 A PL 367224A PL 36722402 A PL36722402 A PL 36722402A PL 216040 B1 PL216040 B1 PL 216040B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
calcium phosphate
bone
bmp
calcium
phosphate
Prior art date
Application number
PL367224A
Other languages
English (en)
Other versions
PL367224A1 (pl
Inventor
Rebecca Hung-Mei Li
Howard Joel Seeherman
Tofighi Aliassghar
Original Assignee
Etex Corp
Wyeth Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Etex Corp, Wyeth Corp filed Critical Etex Corp
Publication of PL367224A1 publication Critical patent/PL367224A1/pl
Publication of PL216040B1 publication Critical patent/PL216040B1/pl

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/17Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/14Macromolecular materials
    • A61L27/22Polypeptides or derivatives thereof, e.g. degradation products
    • A61L27/227Other specific proteins or polypeptides not covered by A61L27/222, A61L27/225 or A61L27/24
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/02Peptides of undefined number of amino acids; Derivatives thereof
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/17Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • A61K38/18Growth factors; Growth regulators
    • A61K38/1875Bone morphogenic factor; Osteogenins; Osteogenic factor; Bone-inducing factor
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L17/00Materials for surgical sutures or for ligaturing blood vessels ; Materials for prostheses or catheters
    • A61L17/005Materials for surgical sutures or for ligaturing blood vessels ; Materials for prostheses or catheters containing a biologically active substance, e.g. a medicament or a biocide
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L17/00Materials for surgical sutures or for ligaturing blood vessels ; Materials for prostheses or catheters
    • A61L17/14Post-treatment to improve physical properties
    • A61L17/145Coating
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L24/00Surgical adhesives or cements; Adhesives for colostomy devices
    • A61L24/02Surgical adhesives or cements; Adhesives for colostomy devices containing inorganic materials
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L24/00Surgical adhesives or cements; Adhesives for colostomy devices
    • A61L24/04Surgical adhesives or cements; Adhesives for colostomy devices containing macromolecular materials
    • A61L24/10Polypeptides; Proteins
    • A61L24/108Specific proteins or polypeptides not covered by groups A61L24/102 - A61L24/106
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/02Inorganic materials
    • A61L27/12Phosphorus-containing materials, e.g. apatite
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P1/00Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system
    • A61P1/02Stomatological preparations, e.g. drugs for caries, aphtae, periodontitis
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P19/00Drugs for skeletal disorders
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P19/00Drugs for skeletal disorders
    • A61P19/08Drugs for skeletal disorders for bone diseases, e.g. rachitism, Paget's disease
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P19/00Drugs for skeletal disorders
    • A61P19/08Drugs for skeletal disorders for bone diseases, e.g. rachitism, Paget's disease
    • A61P19/10Drugs for skeletal disorders for bone diseases, e.g. rachitism, Paget's disease for osteoporosis
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • A61P9/10Drugs for disorders of the cardiovascular system for treating ischaemic or atherosclerotic diseases, e.g. antianginal drugs, coronary vasodilators, drugs for myocardial infarction, retinopathy, cerebrovascula insufficiency, renal arteriosclerosis
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L2430/00Materials or treatment for tissue regeneration
    • A61L2430/02Materials or treatment for tissue regeneration for reconstruction of bones; weight-bearing implants

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Surgery (AREA)
  • Physical Education & Sports Medicine (AREA)
  • Orthopedic Medicine & Surgery (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Vascular Medicine (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Transplantation (AREA)
  • Oral & Maxillofacial Surgery (AREA)
  • Materials Engineering (AREA)
  • Dermatology (AREA)
  • Inorganic Chemistry (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Rheumatology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Cardiology (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Materials For Medical Uses (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Prostheses (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Dental Prosthetics (AREA)

Description

Wynalazek dotyczy kompozycji do stosowania w leczeniu ssaka z ubytkiem kości.
Biologicznie złożone materiały osteoindukcyjne można stosować do regeneracji kości i wzmacniania kości, a także do naprawy i wzmocnienia tkanki przy złamaniach kości, implantach dentystycznych, implantach i protezach kości i tym podobnych.
Wiele badań w dziedzinie biofarmaceutyków ma na celu rozwój skutecznych, implantowalnych nośników do dostarczania leków i innych zastosowań chirurgicznych. Takie nośniki muszą być zgodne biologicznie i muszą również być zdolne do zabezpieczenia aktywności dowolnego czynnika aktywnego biologicznie, który mają dostarczać. Liczne czynniki aktywne biologicznie są labilne, łatwo tracąc aktywność, gdy włącza sie je do materiału nośnika. Zachowywanie aktywności białka stwarza szczególnie poważne problemy.
W dziedzinie dostarczania leków badano, jako potencjalne środki dostarczania, materiały ceramiczne z fosforanu wapnia, ze względu na ich dobrze znaną zgodność biologiczną i ich powinowactwo do substancji białkowych (patrz np. Ijntema i wsp., Int. J. Pharm. 112:215 (1994); Itokazu i wsp., J. Orth. Res. 10:440 (1992); Shinto i wsp., J. Bone Joint Surg. 74-B:60Q (1992) i Uchida i wsp., J. Orth. Res. 10:440 (1992)). Zdecydowana większość tych materiałów miała postać prefabrykowanego, spiekanego hydroksyapatytu w postaci albo granul albo bloków. Te preparaty miały kilka wad, w tym ograniczoną zdolność dostosowywania się do ubytków szkieletowych, szczególnie w przypadku bloków; nieodpowiednią integralność strukturalną granul (które nie wiążą się ze sobą) oraz trudności przy modelowaniu implantu do kształtu ubytku tkanki szkieletowej, dotyczące zarówno bloków, jak i granul. Postać blokowa hydroksyapatytu zapewnia wytrzymałość strukturalną ale, pośród innych komplikacji, musi być utrzymywana w miejscu za pomocą środków mechanicznych, które wielce ograniczają jej zastosowanie oraz jej efekty kosmetyczne. Jest również bardzo trudno wypiłować z bloku hydroksyapatytu kształt, który pasuje do ubytku u danego pacjenta. Postać granularna daje lepsze wyniki kosmetyczne, ale ma bardzo ograniczoną wytrzymałość strukturalną i trudno utrzymać ją w miejscu podczas i po zabiegu chirurgicznym. Ogólnie, wszystkie te produkty są materiałami ceramicznymi, wytwarzanymi przez spiekanie w wysokiej temperaturze i nie są indywidualnie krystaliczne, zamiast tego mają postapiane granice kryształów. Większość materiałów typu ceramicznego jest, ogólnie rzecz biorąc, funkcjonalnie nieabsorbowalna biologicznie (posiadając szybkości absorpcji nieprzekraczające z reguły poziomu 1% na rok).
Porowaty, nieresorbowalny materiał oparty na koralu pozwala na wrastanie kości, ale w efekcie ® staje się kością jedynie w około 20%, a pozostałe 80% przeistacza się w bliznę. HA RESORB® wytwarzany przez Osteogen jest formą absorbowalnego hydroksyapatytu, ale nie jest cementem. Jest gra® nularny i nieprzylegający. HA RESORB® układa się w miejscu w sposób raczej luźny niż przylegający. Jest zastępowany przez kość zbyt szybko dla zastosowań w dużej skali. Na rynku materiałów dentystycznych HAPSET® jest kompozycją granul fosforanu wapnia i klejącego gipsu (siarczanu wapnia). Ten materiał nie jest naprawdę hydroksyapatytem i zawiera zbyt wiele siarczanu wapnia dla większości zastosowań biologicznych. Siarczan wapnia, jako składnik takiej kompozycji, jest resorbowalny, ale granule fosforanu wapnia nie.
Kompozycje co najmniej jednej klasy fosforanów wapnia są prekursorami dla tworzenia hydroksyapatytu, są zgodne biologicznie i mają dwie unikalne właściwości, które nie są osiągalne dla innych materiałów z fosforanu wapnia: (I) samoutwardzalność, prowadząca do tworzenia masy o wytrzymałości wystarczającej dla wielu zastosowań medycznych i dentystycznych i (2) po zaimplantowaniu do kości materiał resorbuje się powoli, ulegając całkowitemu zastąpieniu przez powstawanie nowej kości, bez utraty objętości lub integralności tkanki, która otrzymuje implant. Patrz opisy patentowe USA nr Re.33221 i Re. 33161, przyznane Brown'owi i Chow, które ujawniają wytwarzanie kompozycji remineralizacyjnych fosforanu wapnia i drobnokrystalicznego, nieceramicznego, resorbującego się stopniowo materiału z hydroksyapatytu, opartego na tej samej kompozycji fosforanu wapnia.
Właściwie taki sam system fosforanu wapnia, który składa się z fosforanu tetrawapniowego (TTCP) i fosforanu monowapniowego (MCP) lub jego formy monohydratowej (MCPM) został opisany przez Constantza i wsp. (opisy patentowe USA nr 5053212 i 5129905). Ten system, jak doniesiono, obejmuje przekształcenie MCP do fosforanu diwapniowego, który reaguje z TTCP, tworząc jako produkt końcowy hydroksyapatyt (HA), główny składnik mineralny zębów i kości.
Inny typ kompozycji fosforanu wapnia zawiera amorficzny, apatytowy fosforan wapnia jako reagent oraz promotor i wodną ciecz, które tworzą utwardzalną pastę. Zobacz np. opisy patentowe USA
PL 216 040 B1 nr 5650176; 5676976; 5683461; 6027742 i 6117456 dla Lee i wsp. Ten system dostarcza bioaktywnego materiału ceramicznego, który jest zgodny biologicznie, bioresorbowalny i nadający się do obróbki przez długi okres w temperaturze pokojowej. Bioaktywny materiał ceramiczny może powstawać w niskich temperaturach, można go łatwo formować i/lub wstrzykiwać, a pomimo to może utwardzić się do wysokiej wytrzymałości, w wyniku dalszej reakcji. Bioaktywny materiał ceramiczny zawiera ciała lite, będące niskokrystalicznym, apatytowym fosforanem wapnia, o stosunku wapń-fosforan (Ca/P) porównywalnym z występującymi naturalnie minerałami kości i posiadającym sztywność i odporność na pękanie podobną do naturalnej kości. Bioaktywny materiał ceramiczny mocno się bioresorbuje, a jego zdolność do biosorpcji i reaktywność można dobrać tak, by spełnić wymagania danej terapii i/lub miejsca implantu. Materiał można wykonać w postaci płytek do kości, śrub do kości oraz innych rodzajów elementów i urządzeń medycznych, w tym zastosowań weterynaryjnych, które mocno się bioresorbują i/lub kostnieją.
Jednym z celów chirurgii odtwórczej jest uzyskanie zdolności zastępowania tkanki uszkodzonej tkanką nową, z użyciem albo własnych komórek pacjenta albo białek wzmagających wzrost. Na przykład, badacze podjęli się rozwoju systemów regeneracji tkanki łącznej, w których wyizolowane chondrocyty wstrzykuje się do uszkodzonego obszaru w obecności rusztowania polimerowego (zobacz np. Atala i wsp., J. Uroi. 150:747 (1993); Freed i wsp., 17. Cell Biochem. 51:257 (1993) oraz cytowane tam odnośniki). Podobne systemy rusztowań z posiewem badano w kontekście naprawy kości, gdzie stosuje się osteoblasty w połączeniu z rusztowaniem polimerowym lub ceramicznym (zobacz np. Elgendy i wsd., Biomater. 14:263 (1993); Ishaug i wsp., J. Biomed. Mater. Res. 28: 1445 (1994)). Szczególne zainteresowanie budzą materiały osteoindukcyjne, takie jak białka morfogenetyczne kości (np. rekombinowane ludzkie BMP-2), zdemineralizowana macierz międzykomórkowa kości; transformujące czynniki wzrostu (np. TGF-p) i inne różnorodne związki organiczne, znane ze swoich zdolności wywoływania tworzenia kości.
Specjalnie dla zastosowania w kompozycjach z posiewem zaprojektowano trzy zasadnicze rodzaje materiałów rusztowaniowych na bazie fosforanu wapnia. Jeden z typów materiału rusztowaniowego składa się z gotowych granul na bazie fosforanu wapnia, z substancją bioaktywną związaną na ich zewnętrznej powierzchni. Ogólnie rzecz biorąc, wymagane są duże granule (idealnie 100-1000 μm), by uniknąć wywołania odpowiedzi zapalnych. Niełatwe jest jednak wstrzykiwanie takich dużych, wstępnie utworzonych granul za pomocą igieł o małym kalibrze, wymaganych do zastrzyków przezskórnych. W dodatku czynniki można jedynie domieszać do prefabrykowanych granul, wynikiem czego jest pokrywanie powierzchni, a nie osadzenie lub rozproszenie czynnika w macierzy międzykomórkowej. Osadzenie czynnika pozwala na lepszą kontrolę uwalniania biomolekuł, gdy macierz międzykomórkowa resorbuje się. Wstępnie utworzone granule są na ogół trudne w manipulacjach i stosowaniu. Ponadto większość wstępnie utworzonych granul hydroksyapatytu wytwarza sie w procesie spiekania, który sprawia, że są one zasadniczo nieresorbowalne.
Drugi rodzaj typów materiału rusztowaniowego dla kompozycji z posiewem składa się z implantowalnych bloków porowatego hydroksyapatytu lub fosforanu triwapniowego. Można wytworzyć implantowalne bloki porowate o różnych stopniach porowatości, stosując zazwyczaj suchą mieszaninę odczynników o kontrolowanych rozmiarach cząstek. Inne sposoby wywoływania porowatości obejmują trawienie chemiczne lub fizyczne i ługowanie. Choć ogólnie zapewniają wystarczającą wytrzymałość, to bloki porowate mają kilka znaczących wad. Po pierwsze, tak jak opisane wyżej wstępnie utworzone granule, rusztowania blokowe nie zawierają substancji osteoindukcyjnej, osadzonej w ich objętości, a zatem uniemożliwiają kontrolowane uwalnianie substancji aktywnej. Po drugie, bloków implantowalnych nie można wstrzykiwać, wymagają więc bardziej inwazyjnej procedury implantowania. W końcu, co najważniejsze, bloki monolityczne mogą spowalniać prędkość tworzenia kości w zastosowaniach klinicznych, gdzie pożądane jest przyspieszenie leczenia w stosunku do normalnego przebiegu leczenia. To opóźnienie może być spowodowane powolną resorpcją nośnika stałego i związanego z tym opóźnienia uwalniania substancji aktywnej. Obecność macierzy monolitycznej może również przeszkadzać migracji i infiltracji komórek do miejsca złamania. Przyjmując, że macierz blokowa zawiera łączące kanały pomiędzy porami, tworzenie nowej kości będzie zależne od porów i granic ścian w rusztowaniu, ograniczając w ten sposób tworzenie nowej kości.
Do trzeciego typu materiałów rusztowania zalicza się cementy z fosforanu wapnia. W przeciwieństwie do prefabrykowanych granul i bloków monolitycznych, cementy można z łatwością wstrzykiwać, można też osadzać w ich objętości substancję osteoindukcyjną. Te cementy mają jednak tendencję do tworzenia agregatów monolitycznych, które są w sposób naturalny mikroporowate. Choć
PL 216 040 B1 opisano odmiany makroporowate, stosujące biodegradowalne substancje tworzące pory (patrz np. publikacja PCT nr WO 98/16209, którą włącza się jako odnośnik), to te cementy tworzą rusztowania monolityczne, które zawierają zamiast mikroporowatych granul kanały, co, jak przedyskutowano wyżej, znacząco ogranicza wzrost nowej kości.
Zgodnie z tym, pomimo znaczących dokonań na tym polu, wciąż potrzebny jest nośnik dostarczania leku, który jest zgodny biologicznie, łatwo się resorbuje i nie jest szkodliwy dla aktywności leku. W sytuacji idealnej środek powinien być wstrzykiwalny; ciągliwy, by umożliwić wstrzyknięcie lub implantację do złamań lub ubytków o różnych rozmiarach; powinien promować homogenną dystrybucję materiałów bioaktywnych w macierzy, pozwalając w ten sposób na kontrolowane uwalnianie substancji aktywnej; a także tworzyć odrębne makrogranule, przy podawaniu do miejsca zabiegu lub defektu. Granulacja jest pożądana dla ułatwienia migracji i infiltracji komórek, dla wydzielania macierzy pozakomórkowej kości i umożliwienia dostępu dla waskularyzacji. Granule zapewniają również wysokie rozwinięcie powierzchni, które ułatwia resorpcję i uwalnianie substancji aktywnej, a także zwiększa oddziaływanie komórki-macierz kostna. Obecny wynalazek spełnia te potrzeby, dostarczając materiałów i kompozycji przydatnych w dostarczaniu leków i naprawie tkanki.
Wynalazek rozwiązuje problem kompozycji do zastosowania w leczeniu ssaka z ubytkiem kości. Kompozycja taka obejmuje materiał z fosforanu wapnia, skuteczną ilość czynnika musującego i czynnik aktywny biologicznie. Materiałem z fosforanu wapnia może być amorficzny apatytowy fosforan wapnia, hydroksyapatyt, fosforan triwapniowy lub fluoroapatyt. W korzystnej realizacji materiałem z fosforanu wapnia jest amorficzny apatytowy fosforan wapnia, na przykład niskokrystaliczny apatytowy fosforan wapnia. Niskokrystaliczny apatytowy fosforan wapnia może mieć stosunek wapń-fosforan (Ca:P) porównywalny z występującymi naturalnie minerałami kości. W korzystnych wykonaniach stosunek Ca:P wynosi mniej niż 1:1,50, korzystnie około 1:1,40. Białko osteogenne może być członkiem rodziny białek morfogenezy kości (BMP), w tym ΒΜΡ-2, ΒΜΡ-4, BMP-5, BMP-6, 5MP-7, BMP-10, BMP-12 i BMP-13. W korzystnej realizacji białkiem osteogennym jest BMP-2 lub ΒΜΡ-6. Czynnikiem musującym może być gaz, wybrany z grupy składającej sie z dwutlenku węgla, powietrza, azotu, helu, tlenu i argonu. W korzystnej realizacji czynnikiem musującym jest kwaśny węglan sodu. Kwaśny węglan sodu może być obecny w stężeniu pomiędzy około 10 i około 40 procent (wag./wag.). Kompozycja może ponadto zawierać jeden lub większą liczbę materiałów dodatkowych, takich jak akceptowalne farmaceutycznie sole, polisacharydy, peptydy, białka, aminokwasy, polimery syntetyczne, polimery naturalne i środki powierzchniowo czynne; struktury lite, takie jak gąbki, sita, błony, włókna, żele, włókna ciągłe, mikrocząstki i nanocząstki; polimery erodujące biologicznie, takie jak kolagen, glikogen, chityna, celulozy, skrobia, keratyny, jedwab, kwasy nukleinowe, zdemineralizowana macierz kostna, zderywatyzowany kwas hialuronowy, polibezwodniki, poliortoestry, kwas poliglikolowy, kwas polimlekowy oraz ich kopolimery i pochodne; kwasy α-hydroksykarboksylowe, takie jak poli(L-laktyd) (PLLA), poli(D,L-laktyd)(PDLLA), poliglikolid(PGA), poli(laktyd-ko-glikolid)(PLGA), poli(D,L-laktyd-ko-trimetylenowęglan) i polihydroksymaślan (PHB) oraz polibezwodniki i ich kopolimery i pochodne; SiO2, Na2O, CaO, P2O5, Al2O3 i CaF2 oraz polisacharydy, peptydy i kwasy tłuszczowe. Kompozycja może również zawierać drugi czynnik aktywny, taki jak białko Hedgehog, Frazzled, Chordin, Noggin, Ceroerus i Follistatin.
Przedmiotem wynalazku jest kompozycja do zastosowania w leczeniu ssaka z ubytkiem kości, zawierająca białko z rodziny białek morfogennych kości (BMP), materiał z fosforanu wapnia jako nośnik i skuteczną ilość czynnika musującego w ilości wystarczającej do wspomagania tworzenia makrogranul podczas ekspozycji na warunki fizjologiczne in vivo.
Białko morfogenne wybiera się z grupy składającej się z BMP-2, BM P-4, BMP-5, BMP-6, BMP-7, BMP-10, BMP-12 i BMP-13; korzystnie białkiem morfogennym jest BMP-2 lub BMP-6.
Korzystnie materiał z fosforanu wapnia wybiera się z grupy fosforanów wapnia, składającej się z amorficznego apatytowego fosforanu wapnia, hydroksyapatytu, fosforanu triwapniowego i fluoroapatytu; korzystnie materiałem z fosforanu wapnia jest amorficzny apatytowy fosforan wapnia;
Korzystnie materiałem z fosforanu wapnia jest niskokrystaliczny apatytowy fosforan wapnia; korzystnie niskokrystaliczny apatytowy fosforan wapnia ma stosunek wapń-fosforan porównywalny z występującymi naturalnie minerałami kości;
korzystnie niskokrystaliczny apatytowy fosforan wapnia ma stosunek wapń-fosforan mniejszy niż 1:1,50;
niskokrystaliczny apatytowy fosforan wapnia ma stosunek wapń-fosforan około 1:1,40.
PL 216 040 B1
W kompozycji według wynalazku, korzystnie czynnikiem musującym jest gaz, wybrany z grupy składającej się z dwutlenku węgla, powietrza, azotu, helu, tlenu i argonu;
czynnikiem musującym jest kwaśny węglan sodu a korzystnie kwaśny węglan sodu jest obecny w stężeniu pomiędzy około 10 i około 40 procent (wag./wag.).
Obecny wynalazek dotyczy więc kompozycji osteoindukcyjnych, przystosowanych do użycia w naprawie, regeneracji i wzmacnianiu tkanki kostnej. Kompozycja obejmuje zgodny biologicznie i bioresorbowalny materiał z fosforanu wapnia, czynnik musujący i czynnik aktywny biologicznie. Po utwardzeniu materiał z fosforanu wapnia zapewnia resorbowalne rusztowanie dla wzrostu nowej kości. Czynnik musujący zapobiega tworzeniu przez fosforan wapnia jednolitej struktury monolitycznej, przez ułatwienie tworzenia odrębnych makrogranul, które rozpraszają się podczas utwardzania fosforanu wapnia. Czynnik aktywny biologicznie stymuluje zwiększenie aktywności osteogennej obecnych lub infiltrujących komórek rodzicielskich lub innych. Kompozycje osteoindukcyjne są przydatne do wzmacniania kości i regeneracji tkanki kostnej, na przykład w kości z osteopenią, a także do naprawy i wzmacniania tkanki przy złamaniach kości, implantach dentystycznych, implantach i protezach kości i tym podobnych.
Użyte w opisie określenie „materiał z fosforanu wapnia oznacza syntetyczny materiał zastępujący kość, zawierający jako główny składnik fosforan wapnia. Stosowne materiały na bazie fosforanu wapnia są dobrze znane w tej dziedzinie wiedzy, obejmując, bez ograniczania, amorficzny apatytowy fosforan wapnia, hydroksyapatyt, fosforan triwapniowy i fluoroapatyt. W korzystnym wykonaniu materiałem z fosforanu wapnia jest niskokrystaliczny apatytowy fosforan wapnia, mający stosunek wapń-fosforan (Ca/P) porównywalny z występującymi naturalnie minerałami kości. Takie materiały można wytwarzać, stosując kombinację amorficznego apatytowego fosforanu wapnia jako reagenta, promotora i wodnej cieczy, które tworzą utwardzalną pastę. W alternatywnym wykonaniu materiał z fosforanu wapnia jest wytwarzany w reakcji kwasowo-zasadowej w ciele stałym krystalicznych fosforanów wapnia jako reagentów, dającej stały, krystaliczny hydroksyapatyt.
Określenie „czynnik musujący odnosi się do substancji gazowej lub substancji, która powoduje tworzenie bąbelków, pienienie lub uwalnianie gazu.
Użyty w opisie zwrot „amorficzny oznacza materiał o znaczącym charakterze amorficznym. Znaczący charakter amorficzny oznacza zawartość postaci amorficznej większą niż 75%, korzystne jest gdy zawartość postaci amorficznej jest większa niż 90%, co charakteryzuje się szerokim, pozbawionym cech indywidualnych obrazem dyfrakcji rentgenowskiej.
Określenie „bioaktywny dotyczy materiału, który indukuje tworzenie tkanki twardej wewnątrz i wokół implantu. Gdy nastąpi zaimplantowanie do tkanki miękkiej, to bioaktywność może również wymagać obecności czynnika wzrostu lub troficznego, lub wykonania posiewu implanta komórkami typu tworzącego tkankę twardą.
Użyty w opisie termin „zgodny biologicznie, oznacza, że materiał nie wywołuje znaczącej szkodliwej odpowiedzi u gospodarza. Zawsze, gdy wprowadzi się do żywego organizmu obcy element, można się obawiać, że ten element wywoła reakcję immunologiczną, taką jak odpowiedź zapalna, która będzie miała ujemne skutki dla gospodarza. Na przykład, choć hydroksyapatyt jest uważany ogólnie za „zgodny biologicznie, to obserwuje się znaczący stan zapalny i nekrozę tkanki, gdy krystaliczne mikronośniki z hydroksyapatytu wszczepia się domięśniowo zwierzętom (patrz, np. IJntema i wsp., Int. J. Pharm. 112:215 (1994)).
Określenie „bioresorbowalny dotyczy zdolności materiału do ulegania resorpcji in vivo. Proces resorpcji obejmuje eliminację oryginalnych materiałów implantu przez działanie płynów ustrojowych, enzymów lub komórek. Resorbowany fosforan wapnia może, na przykład, zostać ponownie odłożony jako minerał kości, wykorzystany ponownie wewnątrz ciała w inny sposób albo wydalony. Użyty tu termin „silnie bioresorbowalny, oznacza, że przynajmniej 80% masy całkowitej materiału, zaimplantowanego domięśniowo lub podskórnie, ulega resorpcji w ciągu roku. W korzystnych zastosowaniach materiał ulega resorpcji w ciągu dziewięciu miesięcy, sześciu miesięcy, trzech miesięcy, a idealnie jednego miesiąca.
„Skuteczna ilość czynnika musującego oznacza ilość wystarczającą do spowodowania powstania makrogranul podczas utwardzania, uzależnioną od stosowanego materiału z fosforanu wapnia. Ogólnie, ilość dodawanego czynnika musującego mieści się w zakresie od około 1 do 90 procent wagowo, korzystne jest, gdy około 1 do 50 procent wagowo, a bardziej korzystne, gdy około 1 do 40 procent wagowo.
PL 216 040 B1
Określenie „makrogranula oznacza granulę lub cząstkę o średnicy pomiędzy około 100 mikronami i 1 milimetrem. Materiał makrogranularny, tworzący się podczas utwardzania wynalazczej kompozycji fosforanu wapnia, jest zgodny biologicznie (tj. makrogranule mają rozmiar wystarczający, by uniknąć wywołania reakcji zapalnej) i makroporowaty, jak opisano niżej.
Termin „makroporowaty odnosi się do utwardzonego materiału z fosforanu wapnia, posiadającego pory o średnicy wystarczającej, by umożliwić migrację i infiltrację komórek. W korzystnym wykonaniu materiał makroporowaty, powstający w zgodności z wynalazkiem, ma średnicę porów większą niż 30 mikronów, bardziej korzystne jest, pomiędzy około 30 i 200 mikronów, a najbardziej korzystnie pomiędzy około 50 i 100 mikronów średnicy. Materiał makroporowaty stosowany w wynalazku ułatwia migrację i infiltrację komórek, dla wydzielania pozakomórkowej macierzy kostnej, a także wzmacniania oddziaływań komórka-macierz.
„Skuteczna ilość czynnika aktywnego biologicznie jest ilością wystarczającą dla stymulacji zwiększenia aktywności osteogennej obecnych, lub infiltrujących komórek rodzicielskich lub innych. Ilość będzie zależeć od rozmiaru i natury leczonego ubytku, a także od stosowanej kompozycji materiału z fosforanu wapnia. Ogólnie, ilość dostarczanego czynnika aktywnego biologicznie jest w zakresie od około 0,1 do około 100 mg, korzystne jest, około 1 do około 100 mg; a najbardziej korzystne, około 10 do około 80 mg.
„Skuteczna ilość materiału dodatkowego jest ilością wystarczającą dla nadania materiałowi złożonemu pożądanej właściwości mechanicznej lub chemicznej.
„Utwardzanie odnosi się do procesu, w którym ciągliwa kompozycja fosforanu wapnia jest przekształcana w utwardzony materiał z fosforanu wapnia. Materiał z fosforanu wapnia uważa się za „utwardzony, gdy jest zasadniczo nie dającym się formować ciałem litym. Taki utwardzony materiał z fosforanu wapnia ma minimalną ściśliwość i raczej ulega odkształceniom plastycznym, niż sprężystym.
Termin „niskokrystaliczny apatytowy fosforan wapnia, „fosforan wapnia PCA i „materiał PCA, opisują syntetyczny niskokrystaliczny apatytowy fosforan wapnia. Niskokrystaliczny materiał apatytowy (PCA) niekoniecznie jest ograniczony do pojedynczej fazy fosforanu wapnia, o ile wykazuje charakterystyczny obraz dyfrakcji rentgenowskiej (XRD) i FTIR. Fosforan wapnia PCA ma widmo XRD istotnie takie same, jak kość. Widmo charakteryzuje się zasadniczo tylko dwoma szerokimi maksima-1 mi w zakresie 20-35°, jednym przy 26° i drugim przy 32°, a maksima FTIR znajdują się przy 563 cm-1, -1 -1 -1 -1 -1 -1
1034 cm-1, 1638 cm-1 i 3432 cm-1 (+2 cm-1). Ostre przegięcia obserwuje się przy 603 cm-1 i 875 cm-1, -1 -1 z dubletem, posiadającym maksima przy 1422 cm-1 i 1457 cm-1.
Użyty w opisie termin „uwodniony prekursor, odnosi się do pasty lub kitu, tworzonej przez uwodnienie suchych prekursorów PCA w obecności ograniczonej ilości roztworu wodnego (tj. mniej niż w przybliżeniu 1 ml roztworu wodnego/1 g proszku prekursora). Uwodniony prekursor może zawierać zarówno reagenty, jak i produkty, w różnych kombinacjach, w zależności od stopnia zaawansowania przemiany. Zarówno „wstrzykiwalne, jak i „formowalne pasty prekursorów PCA, opisane tutaj, są uwodnionymi prekursorami. Korzystne jest, gdy „wstrzykiwalne uwodnione prekursory mają konsystencję odpowiednią dla podawania przez igłę podskórną kalibru 18.
Termin „promotor, opisuje materiał lub procedurę, która promuje utwardzanie uwodnionego prekursora i może wzmagać przemianę amorficznego fosforanu wapnia (ACP) w fosforan wapnia PCA. Niektóre promotory biorą udział w przemianie i ulegają włączeniu do materiału PCA; inne, znane jako promotory „pasywne nie są zaangażowane w przemianę.
Określenie „reaktywny używany jest jako odnoszący się do zdolności fosforanu wapnia, gdy jest mieszany z cieczą, do tworzenia uwodnionego prekursora, do ulegania przemianie w materiał PCA w obecności promotora, w powiązaniu z utwardzaniem materiałów prekursorowych. Korzystne ACP cechują się zdolnością do całkowitej przemiany, zdolnością do przemiany szybkiej, z utwardzaniem, zdolnością do ulegania przemianie ze związkami skądinąd biernymi i/lub zdolnością do przemiany w materiał PCA zasadniczo homogenny. Tam, gdzie ACP reaguje z drugim fosforanem wapnia, „przemiana może obejmować przemianę zarówno ACP, jak i drugiego fosforanu wapnia. Stopień utwardzenia i kinetyka procesu utwardzania są również ważnymi elementami reaktywności. Niektóre ACP są bardziej reaktywne niż inne. ACP jest uważany za „wysoce reaktywny, jeśli ulega przemianie i utwardzeniu do materiału PCA w obecności słabego promotora, takiego jak dihydrat fosforanu diwapniowego (DCPD). Korzystne wysoce reaktywne ACP dają utwardzony materiał ACP w obecności słabo promującego DCPD i wody w temperaturze 37°C w ciągu mniej niż dwunastu godzin, z utwardzeniem zasadniczo pełnym w ciągu około jednej do pięciu godzin, a idealnie w 10-30 minut.
PL 216 040 B1
Materiał z fosforanu wapnia.
Fosforan wapnia, jako składnik stosowany w obecnym wynalazku, może być dowolnym zgodnym biologicznie materiałem z fosforanu wapnia, znanym w tej dziedzinie wiedzy. Materiał z fosforanu wapnia może być wytwarzany za pomocą dowolnego spośród różnorodnych sposobów i z użyciem dowolnych odpowiednich składników wyjściowych. Na przykład materiał z fosforanu wapnia może być wytwarzany z użyciem kombinacji amorficznego apatytowego fosforanu wapnia jako reagenta, promotora i cieczy wodnej, tworzących utwardzalną pastę. Alternatywnie, materiał z fosforanu wapnia może być wytwarzany w reakcji kwasowo-zasadowej w ciele stałym krystalicznych fosforanów wapnia, jako reagentów, dającej stały, krystaliczny hydroksyapatyt. Inne sposoby wytwarzania materiałów macierzowych z fosforanu wapnia są znane w tej dziedzinie wiedzy.
Niskokrystaliczny apatytowy (PCA) fosforan wapnia
W jednej z realizacji, materiałem z fosforanu wapnia jest niskokrystaliczny apatytowy (PCA) fosforan wapnia. Materiał PCA jest opisany w zgłoszeniu USSN 08/650764 i opisie patentowym USA nr 5650176, obydwa które zostają włączone tu w całości jako odnośniki. Materiał jest również opisany w zespole pokrewnych zgłoszeń, zatytułowanych „Nośnik dostarczania, „Przemiana amorficznego fosforanu wapnia, dająca nowy materiał bioceramiczny, „Ceramiczne implanty ortopedyczne i dentystyczne i „Bioaktywne ceramiczne materiały złożone, każdy z nich został złożony 16 października 1997, przypisany ETEX Corporation (Cambridge, MA) i zostaje włączony jako odnośnik. W świetle szerokiego zakresu ujawnień w każdym z tych pokrewnych zgłoszeń, szczegóły materiałów PCA nie będą tutaj omawiane. Wystarczy podsumowanie ich cech.
Materiał PCA cechuje się zdolnością do resorpcji biologicznej i minimalną krystalicznością. Jego charakter krystaliczny jest zasadniczo taki sam, jak kości naturalnej. Materiał PCA jest również zgodny biologicznie i nie jest szkodliwy dla gospodarza.
Materiał PCA może zostać zaimplantowany pacjentowi w postaci pasty lub kitu (tj. jako uwodniony prekursor). Jako że reakcja wynalazcza, która daje homogenny, makroporowaty materiał z fosforanu wapnia, może zostać zainicjowana poza organizmem i postępuje powoli w temperaturze pokojowej, możliwość, że materiał „stężeje przed zastosowaniem w miejscu zabiegu i stanie się niemożliwy do użycia, została zminimalizowana. Reakcja przyspiesza znacząco w warunkach fizjologicznych (tj. temperatura i ciśnienie w organizmie) i materiał utwardza się w miejscu. Ta cecha jest szczególnie przydatna przy zabiegu chirurgicznym, gdzie na ogół jest konieczne indywidualne dopasowywanie obiektu do umiejscowienia implantu. Na przykład pasta PCA, zawierająca czynnik musujący i czynnik aktywny biologicznie, może zostać podana i zastosowana do wypełnienia miejsca złamania.
Alternatywnie, materiał PCA może zostać uprzednio utwardzony poza organizmem, wypełniony pożądanym czynnikiem aktywnym biologicznie i czynnikiem musującym oraz zaimplantowany później. To podejście jest przydatne w takich sytuacjach, gdy indywidualne kształty nie są. istotne i gdzie pożądane jest wytwarzanie dużych ilości implantów.
Zasadniczo reakcja tworzenia ulega zakończeniu po wprowadzeniu materiału w miejsce zabiegu. Materiał utwardza się na ogól w ciągu mniej niż pięciu godzin, a zasadniczo w ciągu około jednej do pięciu godzin, w warunkach fizjologicznych. Korzystne jest, gdy materiał utwardza się zasadniczo w ciągu około 10 do 30 minut. Spójność i formowalność materiału PCA, a także szybkość reakcji tworzenia, można zmienić, w zależności od wymogów terapeutycznych, przez modyfikację kilku prostych parametrów (patrz np. opis patentowy USA nr 6027742 przyznany Lee i wsp., który zostaje włączony w całości jako odnośnik).
Reakcja przemiany, która daje materiał PCA, może zostać zainicjowana przez dodanie wody destylowanej do mieszaniny suchych składników prekursorowych, by utworzyć gęsty uwodniony prekursor, w postaci pasty lub kitu. Zamiast wody destylowanej można użyć innych środków wodnych, takich jak bufory, roztwór soli fizjologicznej, surowica, lub pożywka hodowli tkankowej. W innych wykonaniach można dodać do proszku prekursorów ilość wody wystarczającą do utworzenia pasty, którą, po dodaniu innych składników wynalazku, można łatwo wstrzyknąć za pomocą igły o kalibrze 18. Najczęściej powstały bioresorbowalny materiał z fosforanu wapnia będzie mieć „niedobór wapnia, ze stosunkiem wapń-fosforan mniejszym niż 1,5, w porównaniu z idealną wartością stechiometryczną około 1,67 dla hydroksyapatytu.
Odpowiednie materiały PCA można zidentyfikować przez zmieszanie prekursorów PCA, uwodnienie ograniczoną ilością wody (tak, by utworzyć pastę lub kit) i umożliwienie utwardzenia do materiału PCA. Pożądane prekursory mogą ulec utwardzeniu w środowisku wilgotnym, w lub blisko temperatury ciała, w ciągu mniej niż 5 godzin, a korzystne jest, gdy w ciągu 10-30 minut. Składniki, które ule8
PL 216 040 B1 gają utwardzeniu w ten sposób, można następnie umieścić domięśniowo lub podskórnie w zwierzęciu doświadczalnym i sprawdzić pod względem resorbowalności biologicznej. Pożądanymi materiałami są te, które, gdy zaimplantuje się je jako pastylki 1-5 g, ulegają resorpcji przynajmniej w 80% w ciągu roku. Korzystne jest, gdy materiał może ulec pełnej resorpcji. Zasadniczo łatwiej jest badać resorpcję gramowych ilości materiału podskórnie.
Materiał PCA można utworzyć w reakcji, która wykorzystuje przynajmniej jeden prekursor z amorficznego fosforanu wapnia (ACP), korzystne jest gdy wykorzystuje zaktywowany lub reaktywny ACP (patrz np. zgłoszenie PCT nr WO 98/16209; przykłady 1-4). W pewnych przypadkach reakcja może wykorzystywać tylko jeden prekursor ACP, który ulega przemianie w sposób kontrolowany częściowo lub całkowicie w materiał PCA. Dla ułatwienia przemiany zaktywowanego ACP w materiał PCA może również zostać wykorzystany promotor nieuczestniczący. W każdym razie, ogromnie korzystne są reakcje, które mogą zostać zainicjowane poza organizmem, które mogą zostać przeprowadzone w układzie typu pasty i które przyspieszają znacząco w temperaturze 37°C, prowadząc do utwardzonego produktu z fosforanu wapnia.
Przemiana ACP w materiał PCA jest promowana w obecności wody. Na ogół ACP jest dostarczany jako proszek, łączony z wszelkimi innymi reagentami (np. z drugim fosforanem wapnia), a następnie eksponowany na wodę w ograniczonej ilości, tak by utworzyć pastę lub kit. Uwodniony prekursor ulega wówczas utwardzeniu, a utwardzenie związane jest z tworzeniem materiału PCA. Przemiana ACP w fosforan wapnia PCA zachodzi w sposób kontrolowany, jako pasta lub kit, która ulega utwardzeniu w sposób przewidywalny i którą można używać w zastosowaniach dentystycznych, ortopedycznych i innych leczniczych.
Gdy jako jedyny prekursor w wytwarzaniu resorbowalnego materiału PCA używany jest amorficzny fosforan wapnia, ważne jest, by kontrolować naturalną tendencję ACP do przemiany w wysokokrystaliczny hydroksyapatyt. Z drugiej strony przebieg czasowy przemiany powinien być wystarczająco szybki, by zapewnić użyteczność dla chirurgii. Jednym z podejść jest zmieszanie prekursorowego ACP, zawierającego inhibitor tworzenia kryształów (patrz np. WO 98/16209; przykład 1) z ACP, który nie zawiera inhibitora tworzenia kryształów (np. promotor). Reagenty mogą zostać zmieszane w stanie suchym, o odpowiednim rozmiarze cząstek i z nadmiarem ACP, zawierającego inhibitor. Reagenty można następnie uwodnić przez dodanie wody, a następnie podniesienie temperatury (np. tak, jak zachodzi to w następstwie wprowadzenia do organizmu), by przekształcić reagenty w materiał PCA. Inne sposoby przemiany kontrolowanej obejmują zastosowanie katalizatorów.
Krystaliczny hydroksyapatyt
W drugiej realizacji, materiałem z fosforanu wapnia jest krystaliczny hydroksyapatyt (HA). Krystaliczny HA jest opisany na przykład w opisach patentowych USA nr Re. 33221 i Re.33161 przyznanych Brownowi i Chow, obydwa które zostają włączone jako odnośniki. Opisy patentowe Browna i Chow podają wytwarzanie kompozycji remineralizujących z fosforanu wapnia i drobnokrystalicznego, nieceramicznego, stopniowo resorbowalnego hydroksyapatytowego materiału nośnikowego, opartego na tej samej kompozycji z fosforanu wapnia. Podobny system fosforanu wapnia, który składa się z fosforanu tetrawapniowego (TTCP) i fosforanu monowapniowego (MCP) lub jego formy monohydratowej (MCPM) został opisany przez Constantza i wsp. w opisach patentowych USA nr 5053212 i 5129905), obydwa które zostają włączone jako odnośniki. W tej realizacji materiał z fosforanu wapnia jest wytwarzany w reakcji kwasowo-zasadowej w ciele stałym krystalicznych reagentów z fosforanu wapnia, dającej krystaliczny hydroksyapatyt jako ciało stałe.
Krystaliczne materiały HA (znane potocznie jako dahlit) można otrzymywać tak, by były płynne, formowalne i utwardzalne in situ (patrz opis patentowy USA nr 5962028 przyznany Constantzowi). Te materiały HA (znane potocznie jako hydroksyapatyt karbonizowany) można formować przez połączenie reagentów mokrych i suchych, by dostarczyć mieszaninę zasadniczo jednorodną, nadanie mieszaninie kształtu wedle potrzeby i umożliwienie utwardzenia mieszaniny. Alternatywnie, mieszaniny reakcyjne prekursorów można podawać do miejsca zabiegu i utwardzać i/lub kształtować in situ. Podczas utwardzania mieszanina krystalizuje jako lita i zasadniczo monolityczna struktura apatytowa.
Reagenty składają się ogólnie ze źródła kwasu fosforowego, zasadniczo wolnego od niezwiązanej wody, źródła metalu ziem alkalicznych, szczególnie wapnia, ewentualnie zarodków krystalizacji, szczególnie kryształów hydroksyapatytu lub fosforanu wapnia, węglanu wapnia i akceptowalnej fizjologicznie substancji obniżającej tarcie, takiej jak woda, która może zawierać różne substancje rozpuszczone. Składniki suche mogą zostać uprzednio przygotowane jako mieszanina, a następnie
PL 216 040 B1 zmieszane ze składnikami płynnymi w warunkach, w których zachodzi zasadniczo jednolite zmieszanie.
Źródłem kwasu fosforowego może być dowolny częściowo zobojętniony kwas fosforowy, szczególnie poniżej lub łącznie z całkowitym zobojętnieniem pierwszego protonu, tak jak w ortofosforanie monowapniowym. Alternatywnie lub dodatkowo może nim być kwas ortofosforowy, o ile możliwe w postaci krystalicznej, który jest zasadniczo wolny od niezwiązanej wody. Źródła wapnia zasadniczo zawierają przeciwjony, takie jak węglany, fosforany i tym podobne, szczególnie źródła podwójne fosforanu wapnia i fosforanu, takiego jak fosforan tetrawapniowy lub fosforan triwapniowy.
Rozmaite składniki suche mogą zostać połączone przed dodaniem składników mokrych. Mieszanie łączy składniki i może zostać zastosowane do regulacji stopnia przereagowania składników. Każdy lub wszystkie spośród składników suchych można dodać przed rozpoczęciem mieszania lub przed zakończeniem mieszania mechanicznego. Po zmieszaniu pozwala się na odprężenie mieszaniny w spoczynku, po czym następuje dłuższy okres czasu, w którym mieszanina ulega utwardzeniu.
Czynnik musujący
Materiałem z fosforanu wapnia może być każdy zgodny biologicznie materiał z fosforanu wapnia, znany w tej dziedzinie wiedzy, taki jak materiał z fosforanu wapnia PCA i krystaliczny hydroksyapatyt, opisane wyżej. Niespodziewanie, wynalazcy stwierdzili, że dodatek czynnika musującego do tych materiałów z fosforanu wapnia zasadniczo zmienia właściwości biologiczne, chemiczne i mechaniczne materiału, tym samym znacząco podnosząc jego przydatność w leczeniu. Czynnikiem musującym zgodnie z wynalazkiem może być każda substancja akceptowalna farmaceutycznie, która powoduje tworzenie bąbelków lub uwalnianie gazu w temperaturach i/lub ciśnieniach fizjologicznych.
Wszystkie dostępne obecnie sposoby wytwarzania materiałów z fosforanu wapnia, dla zastosowania w kompozycjach z posiewem, mają pewne nieodłączne wady, w tym ograniczoną wstrzykiwalność, z powodu tworzenia granul podczas wytwarzania lub przygotowania do podania za pomocą strzykawki. Wstępnie wytworzone granule fosforanu wapnia, do których przylega substancja bioaktywna, muszą być duże (idealnie 100-1000 pm) by uniknąć wywoływania reakcji zapalnych. Jednakże takie duże wstępnie wytworzone granule niełatwo wstrzykiwać przez igły o małym kalibrze, wymagane do wstrzyknięć podskórnych. Ponadto te granule sprawiają na ogół trudności przy manipulacjach i stosowaniu, wiele ich wytwarza się w procesie spiekania, który sprawia, że są one zasadniczo nieresorbowalne. W dodatku czynnik aktywny można jedynie domieszać do wstępnie wytworzonych granul, czego wynikiem jest pokrycie powierzchni, a nie równomierne osadzenie lub rozproszenie w materiale. Rozproszenie umożliwia większą kontrolę uwalniania biomolekuł podczas resorpcji macierzy.
W ważnym aspekcie wynalazku, łatwość stosowania materiału bioceramicznego przy zabiegu chirurgicznym jest znacznie podwyższona, w stosunku do innych materiałów złożonych, zastępujących kości, znanych w tej dziedzinie wiedzy. Precyzując, czynnik musujący jest dodawany do innych składników kompozycji (np. materiału z fosforanu wapnia i wszelkich materiałów dodatkowych), w celu wywołania pienienia lub bąbelków gazu w danych warunkach (tj. temperatury i/lub ciśnienia fizjologicznego). Tworzenie bąbelków lub musowanie wywołuje granulację i rozpraszanie materiału z fosforanu wapnia przy wstrzyknięciu lub implantacji in vivo. Podczas postępu reakcji utwardzania i/lub tworzenia cementu, jednocześnie zachodzi granulacja, a czynnik aktywny (który może być zmieszany z innymi składnikami lub dodany do mieszaniny tuż przed jej podaniem) zostaje rozproszony homogennie w objętości poszczególnych granul.
Czynnik musujący jest dodawany w ilości odpowiedniej dla zapobiegania tworzeniu monolitycznej masy fosforanu wapnia. Czynnik musujący reaguje szybko i całkowicie z szeroką gamą fosforanów wapnia i innych materiałów zawierających wapń lub fosfor, dając homogenny, wstrzykiwalny środek dostarczania. W zależności od danego materiału z fosforanu wapnia, wybiera się czynnik musujący, zakłócający proces utwardzania lub cementowania w stopniu wystarczającym dla umożliwienia tworzenia granul względnie jednorodnych, ale nie w stopniu, który uczyniłby cement z fosforanu wapnia „niereaktywnym. Dodatek czynnika musującego sprawia, że granulacja zachodzi w znaczącym stopniu tylko po wstrzyknięciu lub implantacji in vivo. W wyniku tego granulacja nie zachodzi podczas wytwarzania materiału z fosforanu wapnia i/lub komponowania cementu, przed wstrzyknięciem lub implantacją. Granule powstające w obecności czynnika musującego są wystarczająco duże, by nie doszło do reakcji zapalnej (zazwyczaj większe niż 30 ąm), ale wystarczająco małe, by zapewnić znaczący stosunek powierzchni do objętości. Duży stosunek powierzchni do objętości umożliwia szybką resorpcję materiału z fosforanu wapnia przy odtwarzaniu nowej kości. Duże rozwinięcie powierzchni ułatwia również uwalnianie czynnika aktywnego biologicznie, jednocześnie zatrzymując czynnik
PL 216 040 B1 w miejscu zabiegu przez odpowiedni okres, wymagany dla indukcji kości. Dodatkowo, duży stosunek powierzchni do objętości ułatwia migrację i infiltrację komórek do macierzy, co wywołuje wydzielanie macierzy kostnej i umożliwia dostęp dla waskularyzacji. Granule, tworzone in vivo z zastosowaniem kompozycji według wynalazku mieszczą się w zakresie 1-2000 ąm korzystnie w zakresie 30-1000 ąm, bardziej korzystnie, w zakresie 30-500 ąm, a najbardziej korzystnie, w zakresie 50-100 ąm.
W jednej z realizacji czynnik musujący jest gazem, który jest rozpuszczony w uwodnionym materiale z fosforanu wapnia. Gaz może zostać rozpuszczony w materiale pod ciśnieniem, tj. przez poddanie materiału złożonego działaniu podwyższonego ciśnienia gazu, który jest obojętny dla reakcji cementowania. Gaz jest następnie uwalniany przy ekspozycji na temperatury fizjologiczne (tj. przy wstrzyknięciu lub implantacji), z powodu obniżenia rozpuszczalności gazu w podwyższonej temperaturze. W tych okolicznościach rozpuszczanie gazu i następująca po nim granulacja zachodzą jedynie podczas utwardzania in vivo, a nie przed podaniem. Jest to szczególnie korzystne, gdyż niepożądane jest zajście granulacji w temperaturze pokojowej w strzykawce. Jedynie tytułem przykładu, do odpowiednich gazów zalicza się dwutlenek węgla, powietrze, azot, hel, tlen i argon.
W innej realizacji, czynnikiem musującym jest lotna ciecz, która paruje w temperaturach fizjologicznych.
W jeszcze innej realizacji, czynnikiem musującym jest materiał stały, który uwalnia gaz przy rozpuszczaniu. Na przykład kwaśny węglan sodu uwalnia gazowy dwutlenek węgla, gdyż przekształca się w nietrwały, przejściowy kwas węglowy, który następnie uwalnia dwutlenek węgla i wodę.
Czynniki aktywne biologicznie
Za pomocą opracowanego materiału z fosforanu wapnia można dostarczać dowolne czynniki użyteczne biologicznie, które ułatwiają lub stymulują wzrost nowej kości. Szczególnie interesujące są materiały osteoindukcyjne, takie jak białka morfogenezy kości (np. rekombinowane ludzkie BMP-2), zdemineralizowana macierz kostna, transformujące czynniki wzrostu (np. TGF-β) i inne rozmaite związki organiczne, znane ze swoich zdolności indukcji tworzenia kości. Alternatywnie lub dodatkowo, by zoptymalizować kostnienie, środek dostarczania może zostać posiany komórkami tworzącymi kości.
Białka osteoindukcyjne
Korzystne jest, gdy czynnik aktywny biologicznie wybierany jest z rodziny białek, znanych jako nadrodzina białek transformujących czynników wzrostu (TGF-β), która obejmuje aktywiny, inhibiny i białka morfogenezy kości (BMP). Najbardziej korzystne jest, gdy czynnik aktywny zawiera przynajmniej jedno białko, wybrane z podgrupy białek, znanych ogólnie jako BMP, dla których ujawniono aktywność osteogenną i inne rodzaje aktywności, typu wzrostu i różnicowania. Te BMP obejmują BMP proteiny BMP-2, BMP-3, BMP-4, BMP-5, BMP-6 i BMP-7, ujawnione na przykład w opisach patentowych USA nr 5108922; 5013649; 5116738; 5106748; 5187076 i 5141905; BMP-8, ujawnione w publikacji PCT W091/18098 i BMP-9, ujawnione w publikacji PCT W093/00432, BMP-10, ujawnione w zgłoszeniu PCT W094/26893; BMP-11, ujawnione w zgłoszeniu PCT W094/26892, lub BMP-12 lub BMP-13, ujawnione w zgłoszeniu PCT W095/16035; BMP-15, ujawnione w opisie patentowym USA 5635372; lub BMP-16, ujawnione w opisie patentowym USA 5965403. Inne białka TGF-β, które mogą być przydatne jako czynniki aktywne w obecnym wynalazku, obejmują Vgr-2, Jones i wsp., Mol. Endocrinol. 6:1961-1968 (1992) i każdy z czynników wzrostu i różnicowania [GDF], włączając te, które opisano w zgłoszeniach PCT W094/15965; W094/15949; W095/01801; W095/01802; W094/21681; W094/15966; W095/10539; W096/01845; W096/02559 i inne. Również przydatne w wynalazku mogą być BIP, ujawnione w W094/01557; HP00269, ujawnione w publikacji JP numer 7-250688 i MP52, ujawnione w zgłoszeniu PCT W093/16099. Ujawnienia ze wszystkich powyższych zgłoszeń zostają włączone jako odnośniki. Podzbiór BMP, który jest obecnie uważany za korzystny dla zastosowania w obecnym wynalazku, obejmuje BMP-2, BMP-4, BMP-5, BMP-6, BMP-7, BMP-10, BMP-12 i BMP-13. Najbardziej korzystnym czynnikiem aktywnym jest BMP-2, którego sekwencję ujawnia opis patentowy USA 5013649, to ujawnienie zostaje włączone jako odnośnik. Można zastosować inne białka BMP i TGF- β, znane w tej dziedzinie wiedzy.
Czynnik aktywny można otrzymać przez rekombinację lub oczyścić z kompozycji białkowej. Czynnik aktywny, jeśli jest nim TGF-β, taki jak BMP lub inne białko dimeryczne, może być homodimerem lub może być heterodimerem z innymi BMP (np. heterodimerem, w skład którego wchodzi po jednym monomerze BMP-2 i BMP-6) lub z innymi członkami nadrodziny TGF-β, takimi jak aktywiny, inhibiny i TGF^1 (np. heterodimerem, w skład którego wchodzi po jednym monomerze BMP i pokrePL 216 040 B1 wnego członka nadrodziny TGF-β). Przykłady takich białek heterodimerycznych opisano na przykład w opublikowanym zgłoszeniu patentowym PCT W093/09229, specyfikacje którego zostają włączone jako odnośnik.
Czynnik aktywny może ponadto zawierać dodatkowe czynniki, takie jak białka Hedgehog, Frazzled, Chordin, Noggin, Cerberus i Follistatin. Te rodziny białek zostały opisane ogólnie w Sasai i wsp., Celi 79:779-790 (1994) (Chordin); publikacji patentowej PCT W094/05800 (Noggin) oraz Fukui i wsp., Devel. Biol. 159:131-139 (1993) (Follistatin). Białka Hedgehog zostały opisane w W096/16668; W096/17924 i W095/18856. Rodzina białek Frazzled jest odkrytą niedawno rodziną białek o dużej homologii do pozakomórkowej domeny wiążącej rodziny białek receptorowych, znanych jako Frizzled. Rodzina genów i białek Frizzled została opisana w Wang i wsp., J. Biol. Chem. 2 71:4468-4476 (1996). Czynnik aktywny może również obejmować inne receptory rozpuszczalne, takie jak obcięte receptory rozpuszczalne, ujawnione w publikacji patentowej PCT W095/07982. Na podstawie W095/07982 osoba biegła w tej dziedzinie wiedzy stwierdzi, że dla wielu innych białek receptorowych można otrzymać obcięte receptory rozpuszczalne. One również znalazłyby się w zasięgu wynalazku. Powyższe publikacje zostają włączone tu jako odnośnik.
Ilość przydatnego tu czynnika aktywnego jest ilością skuteczną dla stymulacji zwiększenia aktywności osteogennej obecnych lub infiltrujących komórek rodzicielskich lub innych, która będzie zależeć od wielkości i natury leczonego ubytku, a także od stosowanego nośnika. Ilość podawanego białka znajduje się ogólnie w zakresie od około 0,1 do około 100 mg; korzystne jest, gdy około 1 do około 100 mg; najbardziej korzystne około 10 do około 80 mg.
Komórki tworzące kości
W jednym z wykonań, dla optymalizacji kostnienia, kompozycję fosforanu wapnia można posiać komórkami tworzącymi kości, takimi jak komórki rodzicielskie, komórki macierzyste krwi i/lub osteoblasty. Najłatwiej to osiągnąć przez umieszczenie kompozycji fosforanu wapnia w kontakcie ze źródłem własnych komórek tworzących kości pacjenta. Takie komórki można znaleźć w tkance związanej z kością, we krwi lub płynach, włączając płyny pochodzenia zewnętrznego, które miały kontakt z kością, materiałem kostnym lub obszarem kości, w tym okostną, kością gąbczastą lub szpikiem. Przy zastosowaniach w powiązaniu z przyrządami, takimi jak śruby i szpilki, wprowadzeniu których do kości towarzyszy przerwanie okostnej i/lub krwawienie, niepotrzebny jest dodatkowy posiew. Dla płytek, które mają kontakt tylko z warstwą korową kości, zalecane jest wywołanie ubytku okostnej w miejscu przylegającym do elementu. W jeszcze innych zastosowaniach przydatne będzie chirurgiczne utworzenie gniazda w kości, przez usunięcie części warstwy korowej kości w miejscu implantu. Dla wzmożenia kostnienia można wprowadzić do implantu komórki tworzące kości, pobrane od pacjenta. Nieautologiczne komórki kości znajdują również zastosowanie w wynalazku, jeśli przed odrzuceniem przez gospodarza komórek tworzących kości nastąpi pożądany stopień regeneracji kości. Komórki lub tkanki, otrzymane ze źródeł pierwotnych, linii komórkowych lub banków komórek, mogą być zatem przydatne w pewnych wykonaniach. Zobacz opis patentowy USA nr 6132463 przyznany Lee i wsp., który zostaje włączony jako odnośnik.
Materiał dodatkowy
Materiał złożony według wynalazku można sporządzić przez połączenie materiału z fosforanu wapnia, czynnika musującego i czynnika aktywnego biologicznie z wybranym materiałem dodatkowym. Fosforan wapnia może służyć jako materiał wzmacniający, macierz lub jedno i drugie. Materiał z fosforanu wapnia w wyjściowej postaci uwodnionej zazwyczaj posiada pH około 6-7, jest zatem zgodny z szeroką gamą substancji dodatkowych, nie powodując efektu szkodliwego. Materiał dodatkowy wybierany jest na podstawie jego zgodności z fosforanem wapnia i innymi składnikami oraz zdolności do przekazania materiałowi złożonemu właściwości (biologicznych, chemicznych lub mechanicznych), które są pożądane dla konkretnego celu terapeutycznego. Materiał dodatkowy można dobrać na przykład tak, by poprawić wytrzymałość na naprężenia i twardość, zwiększyć odporność na złamania, zapewnić możliwość obrazowania i/lub zmienić właściwości płynne i czas tężenia materiału z fosforanu wapnia.
Materiał dodatkowy można dodać do kompozycji fosforanu wapnia w zmiennych ilościach i pod różnymi postaciami fizycznymi, w zależności od przewidywanego zastosowania terapeutycznego. Materiał dodatkowy może mieć na przykład postać struktur ciała stałego, takich jak gąbki, sita, błony, włókna, żele, włókna ciągłe lub cząstki, w tym mikrocząstki i nanocząstki. Sam materiał dodatkowy może być materiałem złożonym. Materiał dodatkowy może być czynnikiem dodatkowym lub domieszkowym, złożonym z cząstek lub płynem, który zostaje dokładnie zmieszany z resorbowalnym fosfora12
PL 216 040 B1 nem wapnia. Przy dokładnym mieszaniu z materiałem z fosforanu wapnia PCA, materiał dodatkowy może zaburzać reakcję cementowania na poziomie makroskopowym. Może to zajść, gdy materiał dodatkowy okryje cześć cząstek cementu, pozwalając na zajście słabej reakcji cementowania z cząstkami okrytymi. Alternatywnie, ciecz lub ciało stałe może spowodować fizyczne rozdzielenie form reaktywnych, powodując tworzenie ognisk tworzenia cementu (lub granul). Materiał dodatkowy może służyć jako macierz dla fosforanu wapnia, który jest osadzony lub rozproszony w macierzy. Fosforan wapnia może alternatywnie służyć jako macierz dla materiału dodatkowego, który jest w nim rozproszony. Materiał dodatkowy można zastosować jako okrycie dla bryły fosforanu wapnia, na przykład jako okrycie końcowe dla opóźnienia czasu resorpcji lub zmian innych właściwości materiału bioceramicznego. Wreszcie, materiał dodatkowy można okryć kompozycją fosforanu wapnia.
Pożądane jest, by materiały dodatkowe były zgodne biologicznie, to jest, by materiał nie wywoływał szkodliwej reakcji przy wprowadzaniu do gospodarza. W wielu przypadkach pożądane jest, by materiał dodatkowy był również bioresorbowalny. Materiał dodatkowy może mieć powinowactwo do wapnia, fosforanu lub fosforanów wapnia, które podniesie wytrzymałość powierzchni styku fosforan wapnia/materiał dodatkowy. Powinowactwo może być swoiste lub przenoszone przez nieswoiste oddziaływania jonowe. Jedynie dla przykładu, odpowiednie polimery erodujące biologicznie, które mogą zostać użyte jako macierz w materiale złożonym obejmują, lecz nie są ograniczone do kolagenu, glikogenu, chityny, celuloz, skrobi, keratyn, jedwabiu, kwasów nukleinowych, zdemineralizowanej macierzy kostnej, zderywatyzowanego kwasu hialuronowego, polibezwodników, poliortoestrów, kwasu poliglikolowego, kwasu polimlekowego oraz ich kopolimerów. W szczególności wiadomo, że poliestry kwasów α-hydroksykarboksylowych, takie jak poli(L-Iaktyd)(PLLA), poli(D,L-laktyd)(PDLLA), poliglikolid(PGA), poli(laktyd-ko-glikolid) (PLGA), poli(D,L-laktyd-ko-tri-metylenowęglan) i polihydroksymaślan (PHB) i polibezwodniki, takie jak poli(bezwodnik-ko-imid) i ich kopolimery są znane jako erodujące biologicznie i są odpowiednie do użycia w obecnym wynalazku.
Dodatkowo, w połączeniu z kompozycją fosforanu wapnia można zastosować bioaktywne kompozycje szkieł, takie jak kompozycje, zawierające SiO2, Na2O, CaO, P2O5, Al2O3 i/lub CaF2. Inne przydatne polimery erodujące biologicznie obejmują polisacharydy, peptydy i kwasy tłuszczowe.
Korzystne jest użycie polimerów erodujących biologicznie do wykonywania elementów bioresorbowalnych, takich jak, lecz nie ograniczonych do gwoździ śródszpikowych, szpilek, śrub, płytek i kotwic, służących do implantacji do kości. Włókno bioresorbowalne może mieć postać nici, które oddziaływują z fosforanem wapnia, zgodnie z zasadami projektowania i wytwarzania materiałów złożonych, znanymi w tej dziedzinie wiedzy. Takie elementy można formować przez prasowanie mieszaniny proszków cząstek fosforanu wapnia i polimeru. Alternatywnie można wzmocnić macierz fosforanu wapnia za pomocą włókien PLLA, stosując włókna PLLA podobne do tych opisanych przez Tormala i wsp., co zostaje tu włączone jako odnośnik, dotyczący wytwarzania degradowalnych biologicznie, samowzmacniających materiałów złożonych (Clin. Mater. 10:29-34 (1992)).
Polimery bioresorbowalne można również zastosować w produkcji klejów do kości lub kitu, do użycia w sytuacjach związanych z przenoszeniem obciążeń. Materiały dodatkowe można dodać do materiałów złożonych, by zwiększyć ściśliwość i zdolność do przenoszenia obciążeń kleju do kości. Do materiału złożonego można dodać w szczególności włókna węglowe lub inne włókna wzmacniające. W wytwarzaniu klejów zastępujących kości, wzmocnionych włóknami, może być korzystne trawienie plazmowe włókien, dla poprawy jakości i wytrzymałości powierzchni styku fosforan wapnia/włókno. Fosforan wapnia można również utwardzać w temperaturze 37°C, sproszkować lub rozdrobnić w inny sposób i zmieszać ze znanymi substancjami wiążącymi, takimi jak cementy klejów do kości, wypełniacze, gipsy, epoksydy, inne fosforany wapnia lub żele, takie jak, lecz nie ograniczone do siarczanu wapnia, alginianu, kolagenu lub produktów dostępnych w handlu, takich jak Endobone® (Merck), Hapset (Lifecore Biomedical), SRS® (Norian), Bonesource® (Leibinger), Collograft® (Zimmer), Osteograf® (CereMed) i Simplex® (Howmedica). Dla zastosowań, w których utwardzony fosforan wapnia zostanie rozproszony w substancji wiążącej, substancja wiążąca jest najczęściej wytwarzana sposobami znanymi w danej dziedzinie i mieszana z fosforanem wapnia w postaci cząstek, w objętościach w przybliżeniu równych, chociaż rzeczywiste proporcje będą się zmieniać w sposób znany w tej dziedzinie wiedzy, by utworzyć kompozycje o pożądanej spoistości, obrabialności i przyleganiu.
W jeszcze innej realizacji, kompozycją fosforanu wapnia według wynalazku można okryć splecione nici chirurgiczne, wykonane zazwyczaj z poliestru, dla poprawy ich zgodności biologicznej. Okryte nici chirurgiczne można wykonać przez zanurzenie nici w zawiesinie, zawierającej materiał z fosforanu wapnia. Przyleganie okrycia z fosforanu wapnia do nici można poprawić przez obróbkę poPL 216 040 B1 wierzchniową albo nici, albo cząstek fosforanu wapnia, albo jednych i drugich. Obróbka powierzchni obejmuje trawienie plazmowe i/lub wytrawianie chemiczne.
W innych realizacjach dostarczany jest materiał złożony, składający się z materiału z fosforanu wapnia i materiału nieresorbowalnego lub trudnoresorbowalnego. Do odpowiednich materiałów nieresorbowalnych lub trudnoresorbowalnych zalicza się dekstrany, polietylen, polimetakrylan metylu (PMMA), włókna węglowe, alkohol poliwinylowy (PVA), poliamid poli(tereftalan etylenu), szkła biologiczne i związki, wyliczone wyżej w związku z zastosowaniem w klejach lub kitach do kości.
Innym zastosowaniem jest stałe zamocowanie przydatnego obiektu, takiego jak szpilka lub siatka wzmacniająca, w samej kości. Obiekt służy jako kotwica dla trwałego przytwierdzenia do naturalnej kości. Jest to szczególnie przydatne w przyczepianiu do kości więzadeł i ścięgien. Obiekty, składające się z bioresorbowalnego i kostniejącego fosforanu wapnia i odpowiedniego elementu nieresorbowalnego można umieścić w kości i zamocować dodatkowo za pomocą dodatkowego materiału z fosforanu wapnia, lub materiału złożonego w preparacie kleju do kości. Element zostaje osadzony w kości w wyniku kostnienia materiału z fosforanu wapnia.
W jeszcze innej realizacji wynalazku wykonuje się kompozycję przez mieszanie fosforanu wapnia lub materiału złożonego z dodatkiem, który zmienia zdolność do resorpcji, czas tężenia i/lub właściwości płynne materiału złożonego. Do materiału złożonego można na przykład dodać olej silikonowy lub inne polimery lub ciecze, zmniejszające tarcie, by poprawić właściwości płynne materiału złożonego, ze względu na podawanie gospodarzowi za pomocą strzykawki. Korzystne jest, gdy substancja zmniejszająca tarcie jest zgodna biologicznie i zdolna do szybkiego wyciekania z materiału złożonego, zastępującego kość, po zestaleniu kompozycji fosforanu wapnia in vivo. Do odpowiednich substancji zmniejszających tarcie zalicza się, jedynie tytułem przykładu, woski polimerowe, lipidy i kwasy tłuszczowe. Substancje zmniejszające tarcie można stosować w stężeniach około 0,1 do około 30% wag.
Następujące przykłady szczegółowo wyjaśniają korzystne realizacje wynalazku. Przewiduje się, że biegli w tej dziedzinie wiedzy, biorąc pod uwagę te opisy, dokonają podczas praktykowania go licznych modyfikacji i zmian. Uważa się, że te modyfikacje i zmiany mieszczą się w zakresie dołączonych tu zastrzeżeń. Przykłady nie ograniczają w żadnej mierze wynalazku.
Cała zawartość wszystkich odnośników, patentów i opublikowanych zgłoszeń patentowych, cytowanych w tym zgłoszeniu, zostaje włączona jako odnośniki.
P r z y k ł a d y
Wszystkie składniki, wykorzystane w tych przykładach mają czystość farmaceutyczną. Składnik fosforan wapnia to dostępny handlowo materiał zastępczy kości, sprzedawany pod nazwą handlową CEREDEX® przez Etex Corporation, 38 Sydney Street, Cambridge, MA 02139. Wykorzystany czynnik aktywny biologicznie to rekombinowane białko 2 morfogenezy kości człowieka (rhBMP-2). Wytwarzanie i cechy BMP-2 opisano szczegółowo w opisie patentowym USA nr 5013649.
P r z y k ł a d 1: Wytwarzanie kompozycji fosforanu wapnia.
Pastę apatytową niskokrystalicznego amorficznego fosforanu wapnia wykonano zgodnie z opisem w opisie patentowym USA nr 5650176, z wyjątkiem tego, że do sproszkowanego prekursora amorficznego fosforanu wapnia (ACP) dodano 20% wagowo kwaśnego węglanu sodu. Następnie uwodniono ACP za pomocą ograniczonej ilości wody, sporządzając pastę, która pozostała zdatna do obróbki w temperaturze pokojowej przez 20-30 minut.
P r z y k ł a d 2: Analiza implantu in vitro.
Kompozycję fosforanu wapnia wykonano tak, jak opisano w przykładzie 1. Następnie wstrzyknięto uwodnioną pastę do łaźni z roztworem soli fizjologicznej o temperaturze ciała. Materiał z fosforanu wapnia uległ utwardzeniu do makrogranul w symulowanych warunkach in vivo (tj. w temperaturze 37°C).
P r z y k ł a d 3: Wstrzyknięcie domięśniowe.
Pierwszą kompozycję fosforanu wapnia, zawierającą 20% wagowo kwaśnego węglanu sodu wykonano jak opisano w przykładzie 1. Drugą pastę z fosforanu wapnia wykonano zgodnie z opisem patentowym USA nr 5650176, z wyjątkiem tego, że do sproszkowanego prekursora amorficznego fosforanu wapnia (ACP) dodano 29% wagowo glikolu polietylenowego. Następnie obydwie kompozycje ACP uwodniono za pomocą ograniczonej ilości wody, by wytworzyć dwie pasty, obydwie tworzące makrogranule około 100-1000 mikronowe, przy eksplantacji kilka godzin po wstrzyknięciu. Ponadto (danych nie pokazano) granulacja zaszła po wstrzyknięciu 20 μg rhBMP-2, dostarczonego albo w tężejącym cemencie monolitycznym z fosforanu wapnia, albo w samogranulującej kompozycji fosfo14
PL 216 040 B1 ranu wapnia. Ilość tkanki kostnej, wyindukowanej po 21 dniach przy zastosowaniu rhBMP-2, dostarczonego w kompozycji makrogranularnej (fosforan wapnia) była znacząco większa, niż dla materiału kontrolnego (cement monolityczny); danych nie pokazano. Ponadto, retencja miejscowa rhBMP-2, dostarczonego przy zastosowaniu makrogranularnych materiałów z fosforanu wapnia, była znacząco mniejsza, niż dla materiału kontrolnego (tj. w przybliżeniu 307; w stosunku do 75%; danych nie pokazano). Opracowana kompozycja makrogranularna zapewnia szybsze uwalnianie białka osteoindukcyjnego, dzięki zwiększeniu powierzchni dostępnej dla resorpcji macierzy przez osteoklasty. Natomiast ta resorpcja macierzy uwalnia z materiału z fosforanu wapnia rozpuszczalne rhBMP-2.
P r z y k ł a d 4: Wstrzyknięcie do nacięcia kości strzałkowej
Kompozycję fosforanu wapnia, zawierającą 20% wagowo kwaśnego węglanu sodu wykonano jak opisano w przykładzie 1. 20 ąg rhBMP-2 dodano do powstałej kompozycji ACP, którą następnie uwodniono ograniczoną ilością wody, tworząc pastę. Do nacięcia kości strzałkowej ssaka naczelnego, 3 niebędącego człowiekiem, wstrzyknięto 0,5 cm3. materiału uwodnionego. Granulacja i rozproszenie makrogranul uwidoczniły się po jednym dniu. W przeciwieństwie do tego, po tygodniu od wstrzyknięcia, standardowy materiał z fosforanu wapnia, bez kwaśnego węglanu sodu (kontrola) pozostał w litej masie monolitycznej (danych nie pokazano).
P r z y k ł a d 5: Nacięcie kości strzałkowej ssaka naczelnego, niebędącego człowiekiem
Kompozycję fosforanu wapnia, zawierającą 20% wagowo kwaśnego węglanu sodu (rhBMP-2 -/NaBSM20) wykonano jak opisano w przykładzie 4. Celem tego badania było określenie skuteczności pojedynczego zastrzyku podskórnego rhBMP-2/NaBSM20, podawanego 7 dni po zabiegu chirurgicznym, by przyspieszyć gojenie nacięcia kości strzałkowej u dorosłych samców mangaby rudoczelnej. Wyniki porównano z poprzednim badaniem, gdzie zastrzyk wykonano 3 godziny po zabiegu (danych nie pokazano). U 12 zwierząt wykonano obustronne nacięcia kości strzałkowej, ustabilizowane za pomocą małego gwoździa śródszpikowego. Do jednego nacięcia u sześciu zwierząt wstrzyknięto 0,5 ml roztworu 1,5 mg/ml rhBMP-2 na ml NaBSM20, siedem dni po wykonaniu nacięcia. Przeciwległe nacięcie kości pozostawiono bez leczenia, jako kontrolę chirurgiczną. U pozostałych sześciu zwierząt do jednego nacięcia wstrzyknięto bufor/NaBSM20 bez rhBMP-2, co posłużyło jako kontrola nośnika. Również tu przeciwległe nacięcie kości pozostawiono bez leczenia, jako kontrolę chirurgiczną.
Kolejne radiogramy, wykonane w odstępach tygodniowych od zabiegu wykazały tworzenie zmineralizowanej kości w nacięciach kości, leczonych rhBMP-2/NaBSM20, już w tydzień od wstrzyknięcia. W ciągu dwóch tygodni od wstrzyknięcia uwidoczniło się istotne radiograficznie tworzenie nowej kości. Mostkowanie nacięcia kości przez nową kostninę było obecne już po 3-5 tygodniach od leczenia (4-6 tygodni od nacięcia kości). Nacięcia kości zagoiły się, z punktu widzenia radiografii, w ciągu 7 tygodni od leczeniu (3 tygodni od nacięcia kości). W tym punkcie czasowym nie było dowodów obecności pozostałości materiału nośnikowego NaBSM. Dowody obecności tworzenia nowej kości w przeciwległych nacięciach kontrolnych nie pojawiły się przed 3-4 tygodniem od leczenia (4-5 tygodni od nacięcia kości). W przeciwległych nacięciach kontrolnych z grupy leczonej rhBMP-2/NaBSM20 nie było danych radiograficznych co do kostniny mostkującej lub gojenia nacięcia kości po 7 tygodniach od leczenia (8 tygodni od nacięcia kości). Obraz radiograficzny nacięć kości, leczonych buforem/NaBSM i przeciwległych nacięć kontrolnych w drugiej grupie zwierząt był podobny do otrzymanego dla przeciwległych nacięć kontrolnych w grupie leczonej rhBMP-2/NaBSM20 po 7 tygodniach od leczenia (8 tygodni od nacięcia kości) wciąż widoczna była pozostałość nośnika w nacięciach kości, leczonych buforem/NaBSM20.
Wytrzymałość mechaniczna na skręcanie nacięć kości, leczonych rhBMP-2/NaBSM2O w 8 tygodniu po nacięciu kości, była znacząco większa, niż wytrzymałość i sztywność normalnej kości (1,58 ± 0,40 wobec 1,24 + 0,26 Nm). Wytrzymałość na skręcanie w tej grupie była również znacząco większa w porównaniu z przeciwległymi nacięciami kontrolnymi (0,72 ± 0,19 Nm) oraz z nacięciami kości, leczonymi buforem/NaBSM20 i przeciwległymi nacięciami kontrolnymi tej grupy (0,87 ± 0,29 i 0,74 ± 0,21 Nm). Nie było znaczących różnic pomiędzy wytrzymałością mechaniczną na skręcanie nacięć kości, leczonych buforem/NaBSM20, w porównaniu z przeciwległymi nacięciami kontrolnymi u tych samych zwierząt i w porównaniu z przeciwległymi nacięciami kontrolnymi u zwierząt z grupy rhBMP-2/NaBSM20. Nieleczone kontrolne nacięcia kości uzyskują wytrzymałość mechaniczną normalnej kości po około 14-16 tygodniach. Podobne wyniki otrzymano dla sztywności nacięcia kości.
To badanie wykazuje przyspieszenie o ponad 50% leczenia nacięcia kości, w odpowiedzi na wstrzyknięcie rhBMP-2/NaBSM20 po 7 dniach od wykonania nacięcia kości. Pojawienie się tworzenia nowej kości było znacznie szybsze od tego, które zaobserwowano w nacięciach kości, leczonych
PL 216 040 B1 w poprzednich badaniach rhBMP-2/NaBSM i rhBMP-2/NaBSM po 3 godzinach i 1 dniu od wykonania nacięcia kości. Również wytrzymałość mechaniczna na skręcanie była większa u zwierząt leczonych po 7 dniach od wykonania nacięcia kości, w porównaniu z leczeniem po 3 godzinach i 1 dniu. Przyspieszenie leczenia nacięcia kości wynosiło około 30-40%, gdy leczenie zastosowano w tych dwóch punktach czasowych. Wstępne wyniki wskazują, że przyspieszenie leczenia nacięcia kości można również uzyskać dla leczenia, zastosowanego po 2 tygodniach od wykonania nacięcia kości. Wyniki tych badań wskazują, że kombinacja rhBMP-2/NaBSM znacząco przyspiesza leczenie nacięcia kości, przy podaniu pomiędzy 3 godzinami i 7 dniami po wykonaniu nacięcia kości.

Claims (12)

1. Kompozycja do zastosowania w leczeniu ssaka z ubytkiem kości, znamienna tym, że zawiera białko z rodziny białek morfogennych kości (BMP), materiał z fosforanu wapnia jako nośnik i skuteczną ilość czynnika musującego w ilości wystarczającej do wspomagania tworzenia makrogranul podczas ekspozycji na warunki fizjologiczne in vivo.
2. Kompozycja według zastrz. 1, znamienna tym, że białko morfogenne wybiera się z grupy składającej się z BMP-2, BMP-4, BMP-5, BMP-6, BMP-7, BMP-10, BMP-12 i BMP-13.
3. Kompozycja według zastrz. 1, znamienna tym, że białkiem morfogennym jest BMP-2 lub BMP-6.
4. Kompozycja według dowolnego z zastrz. 1-3, znamienna tym, że materiał z fosforanu wapnia wybiera się z grupy fosforanów wapnia, składającej się z amorficznego apatytowego fosforanu wapnia, hydroksyapatytu, fosforanu triwapniowego i fluoroapatytu.
5. Kompozycja według dowolnego z zastrz. 1-3, znamienna tym, że materiałem z fosforanu wapnia jest amorficzny apatytowy fosforan wapnia.
6. Kompozycja według dowolnego z zastrz. 1-3, znamienna tym, że materiałem z fosforanu wapnia jest niskokrystaliczny apatytowy fosforan wapnia.
7. Kompozycja według zastrz. 6, znamienna tym, że niskokrystaliczny apatytowy fosforan wapnia ma stosunek wapń-fosforan porównywalny z występującymi naturalnie minerałami kości.
8. Kompozycja według zastrz. 6 albo 7, znamienna tym, że niskokrystaliczny apatytowy fosforan wapnia ma stosunek wapń-fosforan mniejszy niż 1:1,50.
9. Kompozycja według dowolnego z zastrz. 6-8, znamienna tym, że niskokrystaliczny apatytowy fosforan wapnia ma stosunek wapń-fosforan około 1:1,40.
10. Kompozycja według dowolnego z zastrz. 1-9, znamienna tym, że czynnikiem musującym jest gaz, wybrany z grupy składającej się z dwutlenku węgla, powietrza, azotu, helu, tlenu i argonu.
11. Kompozycja według dowolnego z zastrz. 1-9, znamienna tym, że czynnikiem musującym jest kwaśny węglan sodu.
12. Kompozycja według zastrz. 11, znamienna tym, że kwaśny węglan sodu jest obecny w stężeniu pomiędzy około 10 i około 40 procent (wag./wag.).
PL367224A 2001-06-08 2002-06-06 Kompozycja do stosowania w leczeniu ssaka z ubytkiem kosci PL216040B1 (pl)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US29681801P 2001-06-08 2001-06-08

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL367224A1 PL367224A1 (pl) 2005-02-21
PL216040B1 true PL216040B1 (pl) 2014-02-28

Family

ID=23143697

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL367224A PL216040B1 (pl) 2001-06-08 2002-06-06 Kompozycja do stosowania w leczeniu ssaka z ubytkiem kosci

Country Status (19)

Country Link
US (3) US7413753B2 (pl)
EP (2) EP1404346B1 (pl)
JP (5) JP4414218B2 (pl)
KR (3) KR101105908B1 (pl)
CN (2) CN100379424C (pl)
AR (1) AR034347A1 (pl)
AU (1) AU2002314928B2 (pl)
BR (1) BRPI0210282B8 (pl)
CA (2) CA2449713C (pl)
HK (2) HK1062530A1 (pl)
HU (1) HU230046B1 (pl)
IL (3) IL159136A0 (pl)
MX (1) MXPA03011236A (pl)
NO (1) NO333548B1 (pl)
NZ (1) NZ530435A (pl)
PL (1) PL216040B1 (pl)
TW (1) TWI267378B (pl)
WO (1) WO2002100331A2 (pl)
ZA (1) ZA200400066B (pl)

Families Citing this family (74)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7687462B2 (en) 1999-10-05 2010-03-30 The Regents Of The University Of California Composition for promoting cartilage formation or repair comprising a nell gene product and method of treating cartilage-related conditions using such composition
DE10032220A1 (de) 2000-07-03 2002-01-24 Sanatis Gmbh Magnesium-ammonium-phosphat-Zemente, deren Herstellung und Verwendung
TWI267378B (en) * 2001-06-08 2006-12-01 Wyeth Corp Calcium phosphate delivery vehicles for osteoinductive proteins
JP4614661B2 (ja) * 2002-02-08 2011-01-19 ワイス 生体活性因子を含有する処方物およびそれを使用する方法
TW200400062A (en) * 2002-04-03 2004-01-01 Mathys Medizinaltechnik Ag Kneadable, pliable bone replacement material
US7273523B2 (en) 2002-06-07 2007-09-25 Kyphon Inc. Strontium-apatite-cement-preparations, cements formed therefrom, and uses thereof
WO2004085998A2 (en) * 2003-03-28 2004-10-07 The Children's Hospital Of Philadelphia Biomimetic hierarchies using functionalized nanoparticles as building blocks
US20040199256A1 (en) * 2003-04-04 2004-10-07 Chao-Jan Wang Support device for supporting between spinal vertebrae
KR101161784B1 (ko) * 2003-04-11 2012-07-05 에텍스 코포레이션 골 유도성 골 물질
DE602004005477T2 (de) * 2003-09-12 2007-12-13 Wyeth Injizierbare feste Calciumphosphat-Stäbe zur Abgabe von osteogenen Proteinen
CA2557231C (en) 2004-03-05 2013-12-31 The Trustees Of Columbia University In The City Of New York Multi-phased, biodegradable and osteointegrative composite scaffold for biological fixation of musculoskeletal soft tissue to bone
US20060036331A1 (en) * 2004-03-05 2006-02-16 Lu Helen H Polymer-ceramic-hydrogel composite scaffold for osteochondral repair
NZ550667A (en) * 2004-04-15 2010-10-29 Etex Corp Delayed-setting calcium phosphate pastes for the treatment of orthopedic conditions
CA2564687A1 (en) 2004-04-27 2005-11-10 Kyphon Inc. Bone substitute compositions and method of use
US20060074422A1 (en) * 2004-09-27 2006-04-06 Story Brooks J Suture anchor and void filler combination
US8852240B2 (en) * 2004-10-25 2014-10-07 Kieran Murphy, Llc Methods and compositions for fostering and preserving bone growth
US20060089723A1 (en) * 2004-10-25 2006-04-27 Murphy Kieran P Method for bone augmentation
US7651701B2 (en) * 2005-08-29 2010-01-26 Sanatis Gmbh Bone cement composition and method of making the same
US20070248675A1 (en) * 2005-09-08 2007-10-25 Gwangju Institute Of Science And Technology Composite comprising polysaccharide-functionalized nanoparticle and hydrogel matrix, a drug delivery system and a bone defect replacement matrix for sustained release comprising the same, and the preparation method thereof
US8920827B2 (en) * 2005-10-21 2014-12-30 Wake Forest University Health Sciences Keratin bioceramic compositions
US8147860B2 (en) 2005-12-06 2012-04-03 Etex Corporation Porous calcium phosphate bone material
US10300167B2 (en) 2006-03-24 2019-05-28 Cabertech, Inc. Functionalized calcium phosphate artificial bone and joint compositions and methods of use and manufacture
JP5538881B2 (ja) * 2006-04-25 2014-07-02 テレフレックス・メディカル・インコーポレイテッド リン酸カルシウムポリマー複合材料および方法
US7754005B2 (en) 2006-05-02 2010-07-13 Kyphon Sarl Bone cement compositions comprising an indicator agent and related methods thereof
US7507286B2 (en) 2006-06-08 2009-03-24 Sanatis Gmbh Self-foaming cement for void filling and/or delivery systems
EP2046361A4 (en) * 2006-07-26 2011-06-29 Univ California AMPLIFICATION COMPOSITION OF OSTEOGENIC ACTIVITY
CN102274552B (zh) * 2006-11-30 2017-03-01 史密夫和内修有限公司 纤维增强的复合材料
US20100047309A1 (en) * 2006-12-06 2010-02-25 Lu Helen H Graft collar and scaffold apparatuses for musculoskeletal tissue engineering and related methods
HUE060822T2 (hu) 2006-12-29 2023-04-28 Ossifi Mab Llc Módszerek a csontnövekedés megváltoztatására SOST vagy WISE antagonista vagy agonista adásával
US8753391B2 (en) 2007-02-12 2014-06-17 The Trustees Of Columbia University In The City Of New York Fully synthetic implantable multi-phased scaffold
US20080241256A1 (en) * 2007-03-30 2008-10-02 Liisa Kuhn Targeted active agent delivery system based on calcium phosphate nanoparticles
CN101663043B (zh) * 2007-04-27 2014-03-12 尤尼基因实验室公司 促进和保持骨生长的方法和组合物
US20090081276A1 (en) * 2007-08-13 2009-03-26 Eben Alsberg Bioresorbable implant composition
US20090061002A1 (en) 2007-09-05 2009-03-05 Venbrocks Rudolf A Calcium phospate based delivery of growth and differentiation factors to compromised bone
US7968616B2 (en) * 2008-04-22 2011-06-28 Kyphon Sarl Bone cement composition and method
TWI381857B (zh) * 2008-12-10 2013-01-11 Univ Taipei Medical 口腔保健用之非晶性磷酸鈣之製備方法及其組成物
US9409963B2 (en) 2009-05-26 2016-08-09 The Regents Of The University Of California Fibromodulin peptide
US9636109B2 (en) * 2009-07-22 2017-05-02 Wisconsin Alumni Research Foundation Biologically active sutures for regenerative medicine
WO2011017297A2 (en) 2009-08-03 2011-02-10 The University Of North Carolina At Chapel Hill Biodegradable delivery system complexes for the delivery of bioactive compounds
US20110046240A1 (en) * 2009-08-24 2011-02-24 Keizer Timothy S Calcium-based carrier particles
US20110046239A1 (en) * 2009-08-24 2011-02-24 Keiser Bruce A Calcium based carrier particles
US20110046241A1 (en) * 2009-08-24 2011-02-24 Keizer Timothy S Calcium based carrier particles
US20110046238A1 (en) * 2009-08-24 2011-02-24 Keiser Bruce A Calcium based carrier particles
WO2011058443A1 (en) * 2009-11-13 2011-05-19 Barralet Jake E Method and device to induce collagen biomineralisation
US9180137B2 (en) 2010-02-09 2015-11-10 Bone Support Ab Preparation of bone cement compositions
US8388887B2 (en) 2010-04-12 2013-03-05 Biomet Manufacturing Corp. Methods for making textured ceramic implants
TWI579007B (zh) 2010-07-02 2017-04-21 艾格諾福斯保健公司 骨再生材料之用途
AU2011291537B2 (en) 2010-08-19 2016-06-02 The Regents Of The University Of California Compositions comprising perivascular stem cells and Nell-1 protein
US8551525B2 (en) 2010-12-23 2013-10-08 Biostructures, Llc Bone graft materials and methods
WO2012093939A1 (en) 2011-01-05 2012-07-12 Vereniging Voor Christelijk Hoger Onderwijs, Wetenschappelijk Onderzoek En Patiëntenzorg Particles comprising calcium phosphate and use thereof
WO2012177759A1 (en) 2011-06-20 2012-12-27 Rdc Holdings, Llc System and method for repairing joints
US8998925B2 (en) 2011-06-20 2015-04-07 Rdc Holdings, Llc Fixation system for orthopedic devices
EP3175852B1 (en) 2012-07-19 2019-03-06 Cayman Chemical Company, Incorporated Difluorolactam compositions for ep4-mediated osteo related diseases and conditions
PL2958603T3 (pl) 2013-02-20 2018-10-31 Bone Support Ab Ulepszone zestalanie utwardzalnego materiału zastępczego kości
EP2968284B1 (en) 2013-03-14 2021-04-21 Osteoqc Inc. Alkyl-amine harmine derivatives for promoting bone growth
US20160296664A1 (en) 2013-04-12 2016-10-13 The Trustees Of Columbia University In The City Of New York Methods for host cell homing and dental pulp regeneration
CA2910398A1 (en) * 2013-07-19 2015-01-22 Cayman Chemical Company, Inc. Methods, systems, and compositions for promoting bone growth
JP6145366B2 (ja) * 2013-09-10 2017-06-07 HOYA Technosurgical株式会社 リン酸カルシウム硬化性組成物
CA2959164A1 (en) * 2014-08-28 2016-03-24 Bioventus, Llc Improved osteoinductive substrates and methods of making the same
KR101597203B1 (ko) * 2014-09-26 2016-02-24 한국화학연구원 생분해성 폴리머 및 수산화아파타이트를 포함하는 복합 소재 및 이의 제조방법
KR20170100634A (ko) 2014-12-29 2017-09-04 바이오벤터스 엘엘씨 골 복구에서의 골유도 분자의 전달 향상을 위한 시스템 및 방법
US10238507B2 (en) 2015-01-12 2019-03-26 Surgentec, Llc Bone graft delivery system and method for using same
WO2016209910A1 (en) * 2015-06-23 2016-12-29 South Dakota Board Of Regents Sequential material deposition for desensitization and remineralization of teeth
ES2672265B1 (es) * 2016-11-07 2019-04-10 Inst Biomecanico De Barcelona S L Dispositivo para fusion intervertebral que comprende un tornillo de estabilizacion intervertebral y una composicion para remodelacion osea
CN106822991B (zh) * 2017-03-13 2019-09-27 深圳市英汉斯科技有限公司 小分子肽生物骨修复材料及其制备方法
US20200164087A1 (en) * 2017-04-03 2020-05-28 Wisconsin Alumni Research Foundation Mineral coated microparticles for sustained delivery of biologically active molecules
US11116647B2 (en) 2018-04-13 2021-09-14 Surgentec, Llc Bone graft delivery system and method for using same
US10687828B2 (en) 2018-04-13 2020-06-23 Surgentec, Llc Bone graft delivery system and method for using same
CN108815580B (zh) * 2018-07-23 2019-11-12 吴容思 一种可调控降解的磷酸钙骨水泥及其制备方法
JP2022504011A (ja) 2018-08-14 2022-01-13 オステオーク インコーポレイティド ピロロ-ジピリジン化合物
WO2020037001A1 (en) 2018-08-14 2020-02-20 Osteoqc Inc. FLUORO β-CARBOLINE COMPOUNDS
WO2020118011A1 (en) 2018-12-06 2020-06-11 Alexion Pharmaceuticals, Inc. Anti-alk2 antibodies and uses thereof
CN110064071B (zh) * 2019-04-12 2021-09-10 西安理工大学 一种可膨胀无机骨水泥的制备方法
CN114569732B (zh) * 2022-01-24 2023-09-01 国家纳米科学中心 一种纳米药物及其制备方法和应用

Family Cites Families (187)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US2465357A (en) * 1944-08-14 1949-03-29 Upjohn Co Therapeutic sponge and method of making
CH563767A5 (pl) * 1973-01-30 1975-07-15 Pheulpin Jean
US4468464A (en) 1974-11-04 1984-08-28 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Biologically functional molecular chimeras
DE2657370C2 (de) * 1976-12-17 1982-11-11 Hans Dr.med. Dr.med.dent. 8000 München Scheicher Mittel zum Bedecken und/oder Ausfüllen von Knochendefekten
US4159358A (en) * 1977-05-19 1979-06-26 Board Of Regents, State Of Florida Method of bonding a bioglass to metal
DE2732848A1 (de) * 1977-07-18 1979-02-08 Schering Ag Diurethane, herbizide mittel enthaltend diese verbindungen sowie verfahren zu ihrer herstellung
US4399216A (en) 1980-02-25 1983-08-16 The Trustees Of Columbia University Processes for inserting DNA into eucaryotic cells and for producing proteinaceous materials
US4455256A (en) * 1981-05-05 1984-06-19 The Regents Of The University Of California Bone morphogenetic protein
US4761471A (en) 1980-08-04 1988-08-02 The Regents Of The University Of California Bone morphogenetic protein composition
US4619989A (en) 1981-05-05 1986-10-28 The Regents Of The University Of Cal. Bone morphogenetic protein composition
US4294753A (en) 1980-08-04 1981-10-13 The Regents Of The University Of California Bone morphogenetic protein process
US4419446A (en) 1980-12-31 1983-12-06 The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services Recombinant DNA process utilizing a papilloma virus DNA as a vector
IE52535B1 (en) 1981-02-16 1987-12-09 Ici Plc Continuous release pharmaceutical compositions
US4727028A (en) * 1981-06-22 1988-02-23 Eli Lilly And Company Recombinant DNA cloning vectors and the eukaryotic and prokaryotic transformants thereof
US4394370A (en) * 1981-09-21 1983-07-19 Jefferies Steven R Bone graft material for osseous defects and method of making same
US4472840A (en) 1981-09-21 1984-09-25 Jefferies Steven R Method of inducing osseous formation by implanting bone graft material
US4474181A (en) 1982-02-18 1984-10-02 Schenck Robert R Method and apparatus for anastomosing small blood vessels
USRE33161E (en) 1982-04-29 1990-02-06 American Dental Association Health Foundation Combinations of sparingly soluble calcium phosphates in slurries and pastes as mineralizers and cements
USRE33221E (en) 1982-04-29 1990-05-22 American Dental Association Health Foundation Dental restorative cement pastes
IL68218A (en) * 1983-03-23 1985-12-31 Univ Ramot Compositions for cartilage repair comprising embryonal chondrocytes
US4434094A (en) * 1983-04-12 1984-02-28 Collagen Corporation Partially purified osteogenic factor and process for preparing same from demineralized bone
US4795804A (en) * 1983-08-16 1989-01-03 The Regents Of The University Of California Bone morphogenetic agents
US4923805A (en) * 1983-11-02 1990-05-08 Integrated Genetics, Inc. Fsh
US4703008A (en) 1983-12-13 1987-10-27 Kiren-Amgen, Inc. DNA sequences encoding erythropoietin
GB8334498D0 (en) * 1983-12-24 1984-02-01 Beecham Group Plc Compounds
US4804744A (en) * 1984-01-04 1989-02-14 International Genetic Engineering, Inc. Osteogenic factors
US4563489A (en) 1984-02-10 1986-01-07 University Of California Biodegradable organic polymer delivery system for bone morphogenetic protein
US4608199A (en) 1984-03-20 1986-08-26 Arnold Caplan Bone protein purification process
US4662884A (en) * 1984-04-25 1987-05-05 University Of Utah Research Foundation Prostheses and methods for promoting nerve regeneration
US4596574A (en) * 1984-05-14 1986-06-24 The Regents Of The University Of California Biodegradable porous ceramic delivery system for bone morphogenetic protein
CA1341617C (en) * 1984-06-08 2011-06-28 Henry George Burger Inhibin isolated from ovarian follicular fluid
US4868161A (en) 1984-06-29 1989-09-19 City Of Hope Method for promoting nerve regeneration
US4627982A (en) 1984-07-16 1986-12-09 Collagen Corporation Partially purified bone-inducing factor
US4843063A (en) * 1984-07-16 1989-06-27 Collagen Corporation Polypeptide cartilage-inducing factors found in bone
ATE128715T1 (de) * 1984-07-16 1995-10-15 Celtrix Pharma Polypeptide induzierende faktoren in knochen und knorpel.
US4769328A (en) 1984-10-12 1988-09-06 Zymogenetics Inc. Expression of biologically active PDGF analogs in yeast
US5187263A (en) * 1984-10-12 1993-02-16 Zymogenetics, Inc. Expression of biologically active PDGE analogs in eucaryotic cells
US4563350A (en) * 1984-10-24 1986-01-07 Collagen Corporation Inductive collagen based bone repair preparations
KR930007429B1 (ko) * 1984-12-27 1993-08-10 산도리 가부시기가이샤 인터페론의 정제방법
US4886747A (en) 1985-03-22 1989-12-12 Genentech, Inc. Nucleic acid encoding TGF-β and its uses
US4766067A (en) 1985-05-31 1988-08-23 President And Fellows Of Harvard College Gene amplification
US4681763A (en) * 1985-06-11 1987-07-21 University Of Medicine And Dentistry Of New Jersey Composition for stimulating bone growth
US4851521A (en) * 1985-07-08 1989-07-25 Fidia, S.P.A. Esters of hyaluronic acid
US4798885A (en) * 1986-02-07 1989-01-17 Genentech, Inc. Compositions of hormonally active human and porcine inhibin containing an α chain and 62 chain
US5215893A (en) * 1985-10-03 1993-06-01 Genentech, Inc. Nucleic acid encoding the ba chain prodomains of inhibin and method for synthesizing polypeptides using such nucleic acid
US5089396A (en) * 1985-10-03 1992-02-18 Genentech, Inc. Nucleic acid encoding β chain prodomains of inhibin and method for synthesizing polypeptides using such nucleic acid
US4737578A (en) * 1986-02-10 1988-04-12 The Salk Institute For Biological Studies Human inhibin
US4758233A (en) * 1986-04-22 1988-07-19 N.J. Phillips TPY. Limited Cream applicator
NL8601328A (nl) 1986-05-23 1987-12-16 Langen Research Inrichting voor het met een massa, in het bijzonder pasteuze massa, injekteren van vlees.
US4839215A (en) * 1986-06-09 1989-06-13 Ceramed Corporation Biocompatible particles and cloth-like article made therefrom
US5459047A (en) * 1986-07-01 1995-10-17 Genetics Institute, Inc. BMP-6 proteins
US6432919B1 (en) * 1986-07-01 2002-08-13 Genetics Institute, Inc. Bone morphogenetic protein-3 and compositions
US5013649A (en) * 1986-07-01 1991-05-07 Genetics Institute, Inc. DNA sequences encoding osteoinductive products
US4877864A (en) 1987-03-26 1989-10-31 Genetics Institute, Inc. Osteoinductive factors
US5106748A (en) * 1986-07-01 1992-04-21 Genetics Institute, Inc. Dna sequences encoding 5 proteins
US5108922A (en) * 1986-07-01 1992-04-28 Genetics Institute, Inc. DNA sequences encoding BMP-1 products
US5366875A (en) 1986-07-01 1994-11-22 Genetics Institute, Inc. Methods for producing BMP-7 proteins
US5187076A (en) 1986-07-01 1993-02-16 Genetics Institute, Inc. DNA sequences encoding BMP-6 proteins
US5543394A (en) * 1986-07-01 1996-08-06 Genetics Institute, Inc. Bone morphogenetic protein 5(BMP-5) compositions
US6150328A (en) * 1986-07-01 2000-11-21 Genetics Institute, Inc. BMP products
ZA874681B (en) 1986-07-01 1988-04-27 Genetics Inst Novel osteoinductive factors
US5019087A (en) * 1986-10-06 1991-05-28 American Biomaterials Corporation Nerve regeneration conduit
US5124316A (en) * 1986-11-14 1992-06-23 President And Fellows Of Harvard College Method for periodontal regeneration
US5041538A (en) 1987-08-28 1991-08-20 The Salk Institute For Biological Studies Mammalian follistatin
US5202120A (en) * 1987-09-11 1993-04-13 Case Western Reserve University Methods of reducing glial scar formation and promoting axon and blood vessel growth and/or regeneration through the use of activated immature astrocytes
US5147399A (en) 1988-02-01 1992-09-15 Dellon Arnold L Method of treating nerve defects through use of a bioabsorbable surgical device
IT1215881B (it) 1988-02-16 1990-02-22 Giancarlo Foresti Sussidio chirurgico ad azione osteotropa.
US5011691A (en) * 1988-08-15 1991-04-30 Stryker Corporation Osteogenic devices
US5266683A (en) 1988-04-08 1993-11-30 Stryker Corporation Osteogenic proteins
US5258494A (en) 1988-04-08 1993-11-02 Stryker Corporation Osteogenic proteins
US5108753A (en) * 1988-04-08 1992-04-28 Creative Biomolecules Osteogenic devices
US5354557A (en) 1988-04-08 1994-10-11 Stryker Corporation Osteogenic devices
US4968590A (en) 1988-04-08 1990-11-06 Stryker Corporation Osteogenic proteins and polypeptides
US5962028A (en) 1988-04-20 1999-10-05 Norian Corporation Carbonated hydroxyapatite compositions and uses
US5129905A (en) 1988-04-20 1992-07-14 Norian Corporation Methods for in situ prepared calcium phosphate minerals
US5053212A (en) 1988-04-20 1991-10-01 Norian Corporation Intimate mixture of calcium and phosphate sources as precursor to hydroxyapatite
US6005162A (en) 1988-04-20 1999-12-21 Norian Corporation Methods of repairing bone
US6002065A (en) * 1988-04-20 1999-12-14 Norian Corporation Kits for preparing calcium phosphate minerals
US5024841A (en) * 1988-06-30 1991-06-18 Collagen Corporation Collagen wound healing matrices and process for their production
US5071834A (en) 1988-09-16 1991-12-10 Genentech, Inc. Purified activin B composition
US5106626A (en) * 1988-10-11 1992-04-21 International Genetic Engineering, Inc. Osteogenic factors
US5284756A (en) * 1988-10-11 1994-02-08 Lynn Grinna Heterodimeric osteogenic factor
US4955892A (en) 1988-10-24 1990-09-11 Louisiana State University Neural cell adhesion protein nerve prosthesis
US5457038A (en) * 1988-11-10 1995-10-10 Genetics Institute, Inc. Natural killer stimulatory factor
US5011486A (en) * 1988-11-18 1991-04-30 Brown University Research Foundation Composite nerve guidance channels
US5162430A (en) * 1988-11-21 1992-11-10 Collagen Corporation Collagen-polymer conjugates
US4920962A (en) * 1988-11-23 1990-05-01 Claude Proulx Splint-like element for use in end-to-end nerve suture
US5217867A (en) * 1988-11-30 1993-06-08 The Salk Institute For Biological Studies Receptors: their identification, characterization, preparation and use
US4963146A (en) 1989-04-20 1990-10-16 Colla-Tec Incorporated Multi-layered, semi-permeable conduit for nerve regeneration
US5026381A (en) * 1989-04-20 1991-06-25 Colla-Tec, Incorporated Multi-layered, semi-permeable conduit for nerve regeneration comprised of type 1 collagen, its method of manufacture and a method of nerve regeneration using said conduit
US5166322A (en) 1989-04-21 1992-11-24 Genetics Institute Cysteine added variants of interleukin-3 and chemical modifications thereof
US5399346A (en) * 1989-06-14 1995-03-21 The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services Gene therapy
AU5958090A (en) * 1989-06-29 1991-01-17 United States of America, as represented by the Secretary, U.S. Department of Commerce, The Method for protecting bone marrow against chemotherapeutic drugs and radiation therapy using transforming growth factor beta 1
US5324519A (en) * 1989-07-24 1994-06-28 Atrix Laboratories, Inc. Biodegradable polymer composition
US5422340A (en) * 1989-09-01 1995-06-06 Ammann; Arthur J. TGF-βformulation for inducing bone growth
US5236456A (en) * 1989-11-09 1993-08-17 Osteotech, Inc. Osteogenic composition and implant containing same
US5166190A (en) 1990-01-08 1992-11-24 Genentech, Inc. Method for increasing fertility in males
US5187086A (en) * 1990-01-26 1993-02-16 Scripps Clinic And Research Foundation Molecules with antibody combining sites that catalyze hydrolysis reactions through use of a charged hapten
US5492697A (en) * 1990-03-05 1996-02-20 Board Of Regents, Univ. Of Texas System Biodegradable implant for fracture nonunions
US5256418A (en) 1990-04-06 1993-10-26 Organogenesis, Inc. Collagen constructs
CA2040475C (en) * 1990-04-18 1995-08-22 Motohiko Hayashi Facsimile apparatus comprising cordless telephone set
US5290271A (en) * 1990-05-14 1994-03-01 Jernberg Gary R Surgical implant and method for controlled release of chemotherapeutic agents
JPH06500991A (ja) 1990-05-16 1994-01-27 ジェネティックス・インスティテュート・インコーポレイテッド 骨および軟骨誘導蛋白質
WO1991017777A2 (en) 1990-05-22 1991-11-28 University Of Florida Injectable bioactive glass compositions and methods for tissue reconstruction
US5168050A (en) 1990-05-24 1992-12-01 Genentech, Inc. Mammalian expression of the bone morphogenetic protein-2b using bmp2a/bmp2b fusion
US5218090A (en) * 1990-06-12 1993-06-08 Warner-Lambert Company EGF receptor truncates
US5364839A (en) 1990-06-18 1994-11-15 Genetics Institute, Inc. Osteoinductive pharmaceutical formulations
EP0550625B1 (en) * 1990-09-26 2003-11-05 Genetics Institute, LLC Bmp-5 derivatives
US5206028A (en) * 1991-02-11 1993-04-27 Li Shu Tung Dense collagen membrane matrices for medical uses
US5208219A (en) * 1991-02-14 1993-05-04 Celtrix Pharmaceuticals Inc. Method for inducing bone growth
US5318898A (en) * 1991-04-02 1994-06-07 Genetics Institute, Inc. Production of recombinant bone-inducing proteins
US5118667A (en) * 1991-05-03 1992-06-02 Celtrix Pharmaceuticals, Inc. Bone growth factors and inhibitors of bone resorption for promoting bone formation
US5229495A (en) * 1991-06-18 1993-07-20 Ludwig Institute For Cancer Research Substantially pure receptor like TGF-β 1 binding molecules and uses thereof
US5216126A (en) * 1991-06-19 1993-06-01 Genentech, Inc. Receptor polypeptides and their production and uses
ATE142460T1 (de) 1991-06-21 1996-09-15 Genetics Inst Osteogene proteine enthaltende arzneimittel
US6287816B1 (en) * 1991-06-25 2001-09-11 Genetics Institute, Inc. BMP-9 compositions
ATE175441T1 (de) 1991-06-25 1999-01-15 Genetics Inst Bmp-9 zusammensetzungen
US5356629A (en) 1991-07-12 1994-10-18 United States Surgical Corporation Composition for effecting bone repair
US5306307A (en) * 1991-07-22 1994-04-26 Calcitek, Inc. Spinal disk implant
US5270300A (en) 1991-09-06 1993-12-14 Robert Francis Shaw Methods and compositions for the treatment and repair of defects or lesions in cartilage or bone
US5171579A (en) 1991-10-11 1992-12-15 Genetics Institute, Inc. Formulations of blood clot-polymer matrix for delivery of osteogenic proteins
WO1993009229A1 (en) * 1991-11-04 1993-05-13 Genetics Institute, Inc. Recombinant bone morphogenetic protein heterodimers, compositions and methods of use
SE469653B (sv) 1992-01-13 1993-08-16 Lucocer Ab Poroest implantat
NZ249113A (en) 1992-02-12 1996-07-26 Bioph Biotech Entw Pharm Gmbh Recombinant dna encoding tgf-b, its production and pharmaceutical compositions thereof
WO1993016657A1 (en) 1992-02-28 1993-09-02 Collagen Corporation Injectable ceramic compositions and methods for their preparation and use
AU3920693A (en) * 1992-03-18 1993-10-21 General Hospital Corporation, The Four novel receptors of the TGF-beta receptor family
IT1259090B (it) 1992-04-17 1996-03-11 Fidia Spa Biomaterialli per protesi d'osso
US5550176A (en) * 1992-04-17 1996-08-27 Ucar Carbon Technology Corporation Room temperature setting carbonaceous cement with increased electrical conductivity and flexural strength
IT1259100B (it) * 1992-05-20 1996-03-11 Lanfranco Callegaro Uso di idrogeli per il bloccaggio di sistemi protesici
IL106278A0 (en) 1992-07-13 1993-11-15 Sumitomo Metal Ind Bone formation-inducing protein
WO1994005800A1 (en) 1992-09-03 1994-03-17 The Regents Of The University Of California Dorsal tissue affecting factor and compositions
CA2153653C (en) 1993-01-12 2010-12-07 Se-Jin Lee Growth differentiation factor-9
EP1475440A3 (en) 1993-01-12 2004-11-17 The Johns Hopkins University School Of Medicine Growth differentiation factor-3
CA2153654A1 (en) 1993-01-12 1994-07-21 Se-Jin Lee Growth differentiation factor-5
US5420243A (en) * 1993-01-26 1995-05-30 Celtrix Pharmaceuticals, Inc. Biologically active TGF-β2 peptides
CA2157577C (en) 1993-03-19 2009-11-17 Se-Jin Lee Growth differentiation factor-8
GB9308060D0 (en) * 1993-04-19 1993-06-02 Cancer Res Campaign Tech Stem cell inhibitor
WO1994026893A1 (en) 1993-05-12 1994-11-24 Genetics Institute, Inc. Bmp-10 compositions
DK1378572T3 (da) * 1993-05-12 2007-02-05 Genetics Inst Llc BMP-11-sammensætninger
US5637480A (en) * 1993-05-12 1997-06-10 Genetics Institute, Inc. DNA molecules encoding bone morphogenetic protein-10
US5447725A (en) 1993-06-11 1995-09-05 The Procter & Gamble Company Methods for aiding periodontal tissue regeneration
EP0804214A4 (en) 1993-07-09 1998-05-20 Univ Johns Hopkins Med FACTOR 6 OF CELL GROWTH AND DIFFERENTIATION
EP0717633A4 (en) 1993-07-09 1998-05-20 Univ Johns Hopkins Med GROWTH DIFFERENTIATION FACTOR-7
WO1995005846A1 (en) * 1993-08-26 1995-03-02 Genetics Institute, Inc. Neural regeneration using human bone morphogenetic proteins
US6291206B1 (en) 1993-09-17 2001-09-18 Genetics Institute, Inc. BMP receptor proteins
US6204047B1 (en) 1993-10-08 2001-03-20 The Johns Hopkins University School Of Medicine Growth differentiation factor-10
US5789543A (en) * 1993-12-30 1998-08-04 President And Fellows Of Harvard College Vertebrate embryonic pattern-inducing proteins and uses related thereto
CA2175049A1 (en) 1993-10-28 1995-05-04 Timothy Ringeisen Improved process and device for treating and healing a bone void
US6027919A (en) * 1993-12-07 2000-02-22 Genetics Institute, Inc. BMP-12 and BMP-13 proteins and DNA encoding them
EP0733109B9 (en) 1993-12-07 2006-07-05 Genetics Institute, LLC Bmp-12, bmp-13 and tendon-inducing compositions thereof
US5399677A (en) * 1993-12-07 1995-03-21 Genetics Institute, Inc. Mutants of bone morphogenetic proteins
WO1995018856A1 (en) 1993-12-30 1995-07-13 President And Fellows Of Harvard College Vertebrate embryonic pattern-inducing hedgehog-like proteins
JPH07250688A (ja) 1994-01-28 1995-10-03 Sagami Chem Res Center TGF−βスーパーファミリー蛋白質をコードするヒト新規cDNA
JP3424049B2 (ja) 1994-03-09 2003-07-07 山之内製薬株式会社 骨形成用移植体
ATE305036T1 (de) 1994-07-08 2005-10-15 Univ Johns Hopkins Med Wachstums-differenzierungsfaktor-11
PT770089E (pt) 1994-07-13 2001-02-28 Univ Johns Hopkins Med Factor 12 de diferenciacao do crescimento
US5520923A (en) * 1994-09-19 1996-05-28 Genetics Institute, Inc. Formulations for delivery of osteogenic proteins
US6281332B1 (en) 1994-12-02 2001-08-28 The Johns Hopkins University School Of Medicine Hedgehog-derived polypeptides
US5635372A (en) * 1995-05-18 1997-06-03 Genetics Institute, Inc. BMP-15 compositions
US5676976A (en) 1995-05-19 1997-10-14 Etex Corporation Synthesis of reactive amorphous calcium phosphates
US6132463A (en) * 1995-05-19 2000-10-17 Etex Corporation Cell seeding of ceramic compositions
US6117456A (en) 1995-05-19 2000-09-12 Etex Corporation Methods and products related to the physical conversion of reactive amorphous calcium phosphate
US6027742A (en) 1995-05-19 2000-02-22 Etex Corporation Bioresorbable ceramic composites
CA2220555C (en) * 1995-06-05 2011-07-19 John M. Wozney Methods and compositions for healing and repair of connective tissue attachment
CN1192700A (zh) 1995-06-06 1998-09-09 基因科学再生实验室有限公司 改性成骨材料
US5674292A (en) 1995-06-07 1997-10-07 Stryker Corporation Terminally sterilized osteogenic devices and preparation thereof
US5752974A (en) * 1995-12-18 1998-05-19 Collagen Corporation Injectable or implantable biomaterials for filling or blocking lumens and voids of the body
EP0906415B1 (en) * 1996-04-19 2009-08-19 Osiris Therapeutics, Inc. Regeneration and augmentation of bone using mesenchymal stem cells
EP0907721A1 (en) 1996-05-28 1999-04-14 Brown University Research Foundation Hyaluronan based biodegradable scaffolds for tissue repair
IT1288290B1 (it) 1996-06-21 1998-09-11 Fidia Spa In Amministrazione S Acido ialuronico autoreticolato e relative composizioni farmaceutiche per il trattamento delle artropatie
US5965403A (en) 1996-09-18 1999-10-12 Genetics Institute, Inc. Nucleic acids encoding bone morphogenic protein-16 (BMP-16)
WO1998016209A2 (en) 1996-10-16 1998-04-23 Etex Corporation Bioceramic compositions
AU6245898A (en) 1997-01-21 1998-08-07 Genetics Institute Inc. Injectable formulations for treatment of osteoporotic bone
US6034062A (en) * 1997-03-13 2000-03-07 Genetics Institute, Inc. Bone morphogenetic protein (BMP)-9 compositions and their uses
US20020098222A1 (en) 1997-03-13 2002-07-25 John F. Wironen Bone paste
US5972368A (en) 1997-06-11 1999-10-26 Sdgi Holdings, Inc. Bone graft composites and spacers
IT1296689B1 (it) 1997-11-06 1999-07-14 Fidia Advanced Biopolymers Srl Derivati esterei dell'acido ialuronico aventi proprieta viscoelastiche e loro uso in campo biomedico-sanitario
WO1999030632A1 (en) * 1997-12-18 1999-06-24 Comfort Biomedical, Inc. Bone augmentation for prosthetic implants and the like
US20020076429A1 (en) 1998-01-28 2002-06-20 John F. Wironen Bone paste subjected to irradiative and thermal treatment
IT1302534B1 (it) 1998-12-21 2000-09-05 Fidia Advanced Biopolymers Srl Composizioni iniettabili, biocompatibili e biodegradabili comprendentialmeno un derivato dell'acido ialuronico, cellule condrogeniche, per
JP4732587B2 (ja) * 1999-02-04 2011-07-27 ウォーソー・オーソペディック・インコーポレーテッド 骨形成ペースト組成物およびその用途
ES2233469T3 (es) 1999-10-15 2005-06-16 Genetics Institute, Llc Formulaciones para la administracion de proteinas osteogenicas.
EP2286847A1 (en) * 1999-10-15 2011-02-23 Genetics Institute, LLC Formulations of hyaluronic acid for delivery of osteogenic proteins
AU2001288077B2 (en) * 2000-09-29 2005-01-06 Honda Giken Kogyo Kabushiki Kaisha Bipedal robot
JP2004533276A (ja) * 2001-01-25 2004-11-04 リジェネレーション テクノロジーズ インク. 注射可能な多孔性骨グラフト材料
TWI267378B (en) * 2001-06-08 2006-12-01 Wyeth Corp Calcium phosphate delivery vehicles for osteoinductive proteins
WO2003099992A2 (en) 2002-05-17 2003-12-04 Wyeth Injectable solid hyaluronic acid carriers for delivery of osteogenic proteins

Also Published As

Publication number Publication date
KR100980164B1 (ko) 2010-09-03
BR0210282A (pt) 2004-07-20
NZ530435A (en) 2005-08-26
MXPA03011236A (es) 2004-03-24
US8003133B2 (en) 2011-08-23
EP1404346B1 (en) 2016-03-23
JP2009172425A (ja) 2009-08-06
CN101239182B (zh) 2011-06-22
AU2002314928B2 (en) 2007-05-17
JP2013226469A (ja) 2013-11-07
HUP0401357A3 (en) 2009-11-30
EP2260860B1 (en) 2016-03-23
TWI267378B (en) 2006-12-01
KR20080075563A (ko) 2008-08-18
IL230994A0 (en) 2014-03-31
ZA200400066B (en) 2007-04-25
HK1123502A1 (en) 2009-06-19
EP2260860A1 (en) 2010-12-15
US20100074876A1 (en) 2010-03-25
HK1062530A1 (zh) 2004-11-12
AR034347A1 (es) 2004-02-18
HU230046B1 (hu) 2015-06-29
WO2002100331A3 (en) 2003-03-20
US7413753B2 (en) 2008-08-19
JP4414218B2 (ja) 2010-02-10
JP2010207653A (ja) 2010-09-24
CN101239182A (zh) 2008-08-13
IL159136A (en) 2014-03-31
CA2852202A1 (en) 2002-12-19
CN1541100A (zh) 2004-10-27
EP1404346A4 (en) 2006-02-08
KR20040019300A (ko) 2004-03-05
JP5091188B2 (ja) 2012-12-05
JP2004535232A (ja) 2004-11-25
NO333548B1 (no) 2013-07-08
US7622139B2 (en) 2009-11-24
NO20035383D0 (no) 2003-12-03
JP2016084361A (ja) 2016-05-19
KR20100086079A (ko) 2010-07-29
CA2449713A1 (en) 2002-12-19
EP1404346A2 (en) 2004-04-07
CN100379424C (zh) 2008-04-09
KR101105908B1 (ko) 2012-01-17
IL159136A0 (en) 2004-05-12
CA2449713C (en) 2014-07-29
US20080096797A1 (en) 2008-04-24
BRPI0210282B1 (pt) 2015-08-11
PL367224A1 (pl) 2005-02-21
BRPI0210282B8 (pt) 2021-05-25
HUP0401357A2 (hu) 2004-10-28
US20020187104A1 (en) 2002-12-12
WO2002100331A2 (en) 2002-12-19

Similar Documents

Publication Publication Date Title
AU2002314928B2 (en) Calcium phosphate delivery vehicles for osteoinductive proteins
AU2002314928A1 (en) Calcium phosphate delivery vehicles for osteoinductive proteins
Dorozhkin Calcium orthophosphate cements for biomedical application
JP2007533376A (ja) 遅延凝固リン酸カルシウムペースト
EP1891984A1 (en) Macroporous and highly resorbable apatitic calcium-phosphate cement
Vezenkova et al. Sudoku of porous, injectable calcium phosphate cements–Path to osteoinductivity
EP2200537B1 (en) Calcium phosphate based delivery of growth and differentiation factors to compromised bone
AU2007203555B2 (en) Calcium Phosphate Delivery Vehicles for Osteoinductive Proteins
Dorozhkin Self-Setting Formulations Calcium Orthophosphate (CaPO4)

Legal Events

Date Code Title Description
RECP Rectifications of patent specification