ES2233469T3 - Formulaciones para la administracion de proteinas osteogenicas. - Google Patents
Formulaciones para la administracion de proteinas osteogenicas.Info
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Abstract
Composición para la administración por inyección de proteínas osteogénicas, que comprende una mezcla, aceptable desde el punto de vista farmacéutico, que comprende. a)una proteína osteogénica; b)una pasta de espuma de gelatina hemostática; y c)fosfato tricálcico.
Description
Formulaciones para la administración de proteínas
osteogénicas.
La presente solicitud reivindica la prioridad de
la solicitud provisional US nº 60/159.703, presentada el 15 de
octubre de 1999, y de la solicitud provisional US nº 60/185.734,
presentada el 29 de febrero de 2000.
La presente invención se refiere al campo de las
proteínas osteogénicas y a formulaciones farmacéuticas de las
mismas. Más particularmente, la presente invención se refiere a
formulaciones farmacéuticas inyectables que comprenden gelatina
para la administración de proteínas osteogénicas.
Las proteínas osteogénicas son aquellas proteínas
capaces de inducir, o de facilitar la inducción de, la formación de
cartílago y/o hueso. En los últimos años se han aislado y
caracterizado muchas de dichas proteínas osteogénicas, y algunas
han sido producidas por métodos recombinantes. Por ejemplo, las
denominadas proteínas morfogénicas óseas (BMP) han sido aisladas a
partir de tejido óseo desmineralizado (véase, por ejemplo, Urist US
4.455.256); se han producido varias de dichas proteínas BMP
mediante técnicas recombinantes (véase, por ejemplo, Wang et
al. US 4.877.864 y Wang et al. US 5.013.549); se ha
identificado una familia de factores de crecimiento transformantes
(TGF-\alpha y TGF-\beta) que
puede ser potencialmente útil en el tratamiento de osteopatías
(véase, por ejemplo, Derynck et al., EP 154.434); se ha
comprobado que una proteína denominada Vgr-1 se
expresa en altos niveles en células osteogénicas (véase Lyons et
al. (1989) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86,
4554-4558); y las proteínas denominadas
OP-1, COP-5 y COP-7
han demostrado tener supuesta actividad osteoinductora (véase
Oppermann, et al. US 5.001.691).
Se han desarrollado varias formulaciones
diseñadas para la administración de proteínas osteogénicas al lugar
en el que se desea inducir la formación de hueso. Por ejemplo, se
han utilizado ciertas matrices poliméricas tales como un polímero
de éster acrílico (Urist, patente US nº 4.526.909) y un polímero de
ácido láctico (Urist, patente US nº 4.563.489).
Brekke et al., patentes US nº 4.186.448 y
US nº 5.133.755, describen métodos de formación de materiales
biodegradables muy porosos, compuestos de polímeros de ácido
láctico ("OPLA").
Okada et al., patentes US nº 4.652.441, US
nº 4.711.782, US nº 4.917.893 y US nº 5.061.492, y Yamamoto et
al., patente US nº 4.954.298 describen una microcápsula de
liberación prolongada que comprende un fármaco polipeptídico y una
sustancia que retiene el fármaco, encapsulados en una capa acuosa
interna rodeada por una sustancia que actúa de pared polimérica en
una capa oleaginosa externa.
Yamazaki et al., Clin. Orthop. and
Related Research, 234:240-249 (1988) describen
la utilización de implantes que comprenden 1 mg de proteína
morfogénica ósea purificada a partir de hueso y 5 mg de escayola. La
patente US nº 4.645.503 describe materiales compuestos de
hidroxiapatito y escayola, como materiales para implantes
óseos.
También se han utilizado matrices de colágeno
como vehículos para la administración de proteínas osteogénicas
(véase, por ejemplo, Jeffries, patente US nº 4.394.370).
La presente invención proporciona formulaciones
inyectables que permiten la administración percutánea de proteínas
osteogénicas. En una realización, la invención comprende
composiciones que constan de una mezcla, aceptable desde el punto
de vista farmacéutico, de una proteína osteogénica junto con una
formulación de espuma de gelatina hemostática. Las formulaciones
inyectables de la invención permiten el tratamiento de fracturas
cerradas sin reducción quirúrgica abierta, como es necesaria en los
dispositivos implantables. La espuma de gelatina hemostática
mantiene una red de poros macroscópicos interconectados que permite
la infiltración celular y la angiogénesis. También absorbe sangre y
puede concentrar una población enriquecida de células
osteoprogenitoras en el lugar del traumatismo, en el que está
presente rhBMP-2 para actuar en las células. La
formulación inyectable comprende proteína osteogénica, formulación
de pasta inyectable de espuma de gelatina hemostática, junto con
fosfato tricálcico.
Las pastas inyectables de Gelfoam o TCP/Gelfoam
mejoran la consolidación de los defectos. La retención de
rhBMP-2 (y quizá de otras proteínas osteoinductoras)
en el lugar aumenta cuando se administra en pasta de Gelfoam o
TCP/Gelfoam, en comparación con la administración en tampón. La
adición de TCP aumenta la retención de rhBMP-2 en
el lugar de aplicación.
Los métodos y composiciones de la presente
invención son útiles para la preparación de formulaciones de
proteínas osteoinductoras que pueden emplearse, entre otras
utilizaciones, para fomentar la formación de cartílago y/o hueso,
para reparar lesiones de tejido y fracturas. La invención
proporciona, además, métodos para el tratamiento de pacientes que
necesitan reparación y/o crecimiento del cartílago y/o del
hueso.
La Figura 1 presenta el efecto de 6 ml de Gelfoam
en MFR00842+200 \mul de BMP (marcada + no marcada).
Las Figuras 2 y 3 comparan la retención de
I^{125}-rhBMP-2 tras la inyección
en el modelo de osteotomía de conejo, en comparación con la
rhBMP-2 administrada en tampón.
Las Figuras 4, 5, 6 y 7 presentan los resultados
de la evaluación biomecánica y del área del callo en los estudios
de osteotomía de conejo.
La presente invención proporciona composiciones
inyectables para la administración de proteínas osteogénicas. Las
composiciones comprenden proteína osteogénica, una formulación
inyectable que comprende espuma de gelatina hemostática, y fosfato
tricálcico. La invención proporciona, además, un método para
preparar la espuma de gelatina inyectable, y la invención incluye la
composición preparada por esta composición de espuma de gelatina
inyectable.
Las formulaciones de Gelfoam de la invención
presentan las ventajas siguientes: (1) procedimiento de preparación
simple, (2) facilidad de inyección con agujas de calibre 18 g y 20
g, (3) sin materiales reticulantes adicionales, (4) larga
experiencia en medicina como material de implantes, (5) coste
relativamente bajo, y (6) sin límite de tiempo de trabajo (que
puede ser una limitación en otros materiales que se reticulan o se
"endurecen"). Una importante ventaja adicional es que la pasta
de Gelfoam puede formularse y conservarse como un producto
unitario.
Las proteínas osteogénicas útiles con las
esponjas fusionadas preparadas con arreglo a la presente invención
son bien conocidas por los expertos en la materia e incluyen las
examinadas anteriormente. Las proteínas osteogénicas preferidas
para su utilización en la presente memoria son aquellas de la clase
BMP, identificadas como BMP-1 a
BMP-12 en los documentos US nº 4.877.864; US nº
5.013.649; WO 90/11366, publicado el 4 de octubre de 1990; WO
91/18098, publicado el 28 de noviembre de 1991; WO 93/00432,
publicado el 7 de enero de 1993; las patentes US nº 08/247.908 y nº
08/247.904, presentadas ambas el 20 de mayo de 1994; y la patente
US nº 08/217.780, presentada el 25 de marzo de 1994. La más
preferida es la BMP-2, cuya secuencia completa de
ADNc se describe en detalle en la patente US nº 5.013.649.
Naturalmente, pueden utilizarse combinaciones de dos o más de
dichas proteínas osteogénicas, así como fragmentos de dichas
proteínas que presentan también actividad osteogénica. Se sabe que
dichas proteínas osteogénicas son homodiméricas, pero también
presentan actividad como heterodímeros mixtos. También pueden
utilizarse las formas heterodiméricas de las proteínas osteogénicas
en la práctica de la presente invención. Heterodímeros de BMP se
describen en el documento WO 93/09229, cuya descripción se
incorpora en la presente memoria a título de referencia. Las
proteínas recombinantes son preferibles a las proteínas aisladas
naturales. La cantidad de proteína osteogénica útil en la presente
memoria es aquella cantidad eficaz para estimular el incremento de
la actividad osteogénica de las células progenitoras infiltrantes,
y dependerá del tamaño y naturaleza del defecto tratado, así como
del vehículo empleado.
Las formulaciones pueden inyectarse, por ejemplo,
en tendones, ligamentos y/o sus lugares de unión al hueso. Las
formulaciones inyectables también pueden aplicarse a otros sitios
óseos, tales como quistes óseos y fracturas cerradas.
La pauta de dosificación se determinará con
arreglo a la indicación clínica que se va a tratar, así como a
diversas variables del paciente (por ejemplo, peso, edad, sexo) y a
la presentación clínica (por ejemplo, extensión de la lesión, lugar
de la lesión, etc.). En general, la dosis de la proteína osteogénica
se encontrará en el intervalo de aproximadamente 0,1 a 4 mg/ml.
La proteína osteogénica inyectable puede
proporcionarse en la práctica clínica como formulación única, o la
formulación puede proporcionarse en forma de kit de múltiples
componentes en el que, por ejemplo, la proteína osteogénica se
proporciona en un vial y la esponja fusionada con el material
polimérico particulado se proporciona por separado.
Las formulaciones de la presente invención
permiten la administración de cantidades terapéuticamente eficaces
de proteína osteoinductora al lugar de la lesión en el que se desea
la formación de cartílago y/o hueso. Las formulaciones pueden
utilizarse como sustituto del injerto de hueso autólogo en fracturas
recientes y en las que no se da unión, fusiones de la espina
dorsal, y reparación de defectos óseos en el ámbito ortopédico; en
reconstrucciones craneo/maxilofaciales; para la integración de
prótesis, especialmente como recubrimiento superficial para mejorar
la fijación de los implantes de prótesis tales como las prótesis
recubiertas de hidroxiapatito; para la regeneración ósea en la
osteomielitis; y en odontología, para el aumento del borde alveolar
y de los defectos periodontales y alvéolos para exodoncia. Los
métodos y formulaciones de la presente invención pueden ser útiles
en el tratamiento y/o la prevención de la osteoporosis, o en el
tratamiento del hueso osteoporótico u osteopénico. En otra
realización, las formulaciones de la presente invención pueden
utilizarse en el procedimiento conocido como distracción
osteogénica. Cuando se utilizan para el tratamiento de la
osteomielitis o para la reparación ósea con infección mínima, la
proteína osteogénica puede utilizarse en combinación con
micropartículas porosas y antibióticos, con la adición de agentes
secuestrantes de proteínas tales como alginato, derivados
celulósicos, especialmente carboximetilcelulosa, diluidos
utilizando glicerol acuoso. El antibiótico se selecciona debido a
su capacidad de disminuir la infección presentando al mismo tiempo
efectos adversos mínimos en la osteogénesis. Los antibióticos
preferidos para su utilización en los dispositivos de la presente
invención incluyen vancomicina y gentamicina. El antibiótico puede
estar en cualquier forma aceptable desde el punto de vista
farmacéutico, tal como vancomicina HCl o sulfato de gentamicina. El
antibiótico está presente preferiblemente a una concentración de
aproximadamente 0,1 mg/ml hasta aproximadamente 10,0 mg/ml. La
preparación tradicional de formulaciones en forma aceptable desde
el punto de vista farmacéutico (es decir, exentas de pirógenos, con
pH e isotonicidad apropiadas, estériles, etc.) está claramente al
alcance de los expertos en la materia y es aplicable a las
formulaciones de la invención.
Los siguientes ejemplos son ilustrativos de la
presente invención y de ningún modo son limitantes. Se prevén
modificaciones, variaciones y pequeñas mejoras, que se encuentran
dentro del alcance de la presente invención.
La pasta de Gelfoam® se formuló el día del
implante hidratando un paquete (1 g) de polvo de Gelfoam
(Pharmacia/Upjohn) con 5 ml de tampón MFR00842. El tampón se añadió
directamente al frasco de polvo de Gelfoam estéril con ayuda de una
pipeta, utilizando técnica aséptica en una campana de bioseguridad.
El polvo hidratado resultante se mezcló a continuación con una
espátula estéril durante aproximadamente dos minutos hasta obtener
una consistencia de la pasta como una masa espesa homogénea. El
volumen de la pasta tras la hidratación y el mezclado fue
aproximadamente 6 ml. La formulación de pasta que contenía 0,1 mg/ml
de rhBMP-2 se realizó añadiendo 142 \mul de
líquido a granel de rhBMP-2 por medio de una pipeta
estéril de modo uniforme sobre la pasta. La pasta volvió a
mezclarse después para distribuir la proteína de forma homogénea en
todo el volumen. La concentración final de rhBMP-2
en la pasta fue 0,1 mg/ml.
Para las muestras inyectables que contenían FN
liofilizada, se disolvieron 5 mg de FN liofilizada en 0,5 ml del
diluyente administrado. Después se añadió el volumen de 0,5 ml que
contenía FN a la pasta de Gelfoam (volumen total de 6 ml) y se
mezcló con una espátula estéril antes de distribuirla en partes
alícuotas en jeringas. La concentración final de rhFN fue 770
\mug/ml.
La pasta de Gelfoam se insertó en el extremo
posterior de una jeringa de 10 ml utilizando una espátula estéril.
Después se acopló un conector Luer estéril a la jeringa de 10 ml
para facilitar el llenado de tres jeringas de 1 ml con cierre Luer
(Becton Dickinson).
La uniformidad de la carga de
rhBMP-2 en partes alícuotas de pasta de Gelfoam
(preparada como se ha descrito anteriormente) se analizó utilizando
I^{125}-rhBMP-2 marcada
radiactivamente. Para esta evaluación, se mezclaron 40 ml de
I^{125}-rhBMP-2 (0,5 mCi/ml) con
300 ml de líquido a granel de rhBMP-2 (proteína no
marcada). Después se añadieron 200 ml de esta solución de proteínas
(rhBMP-2 marcada y no marcada) de modo uniforme a 6
ml de pasta de Gelfoam. La pasta se colocó a continuación en una
jeringa de 10 ml y se distribuyó en partes alícuotas en cinco
jeringas de 1 ml (marcadas #1-5). Esta evaluación
simula una dilución de 30 veces de la solución de
rhBMP-2 en pasta de Gelfoam, así como la mezcla
subsiguiente y el procedimiento de distribución en partes
alícuotas.
Para simular un procedimiento de inyección
típico, se inyectaron cuatro muestras sucesivas de 100 ml de cada
una de las cinco jeringas (agujas de calibre 18 g) en tubos
Eppendorf individuales. Después se colocaron los tubos en un
contador gamma (contador gamma automático Wallac 1470 Wizard) para
medir las cuentas por minuto (CPM) de I^{125}. Los datos se
analizaron para comprobar la reproducibilidad de los procedimientos
de mezclado y de distribución en partes alícuotas.
Se analizó la eficacia de la pasta de Gelfoam en
el modelo de inducción ósea ectópica en ratas. Para este estudio se
utilizaron ratas Long Evans, machos, de 4 a 5 semanas de edad. Se
siguieron protocolos estándar para el cuidado de los animales, la
introducción de implantes y el análisis de explantes. Una vez
afeitados, etiquetados y pesados, los animales se anestesiaron por
inhalación de isoflurano en una campana de gases.
Se realizaron inyecciones subcutáneas en la
reacción torácica ventral o escapular. Se realizaron inyecciones IM
en el cuádriceps/músculo de la pantorrilla, y se repitieron en la
pata contralateral. En todas las inyecciones se utilizó una aguja
de calibre 18 g, de 1½ pulgadas. Al finalizar el estudio (14 días),
los animales fueron sacrificados por inhalación de CO_{2}. Se
extrajeron los dispositivos de los cadáveres, se pesaron y se
examinó su consistencia (dureza), forma, presencia de líquidos, y
vascularidad. Después se colocaron los dispositivos en casetes de
tejido etiquetadas y se sumergieron en etanol al 70%.
Las muestras se recibieron en etanol al 70%, se
catalogaron y prepararon para el análisis histológico de tejido no
calcificado (Schenk, et al.). Brevemente, las muestras se
deshidrataron con gradientes de alcohol y se lavaron en xileno
utilizando un aparato de preparación de tejidos Sakura VIP. Las
muestras se infiltraron y se incluyeron en metacrilato de metilo, y
se dejaron polimerizar durante 3 a 5 días a temperatura ambiente.
Una vez completada la polimerización, se seccionaron bloques de 5
micrómetros, utilizando un aparato Riechert-Jung
Polycut o Lecia 2065 Supercut. Todos los cortes microscópicos fueron
teñidos con una modificación de la técnica tricrómica de Goldner
(Schenk et al.). Los resultados de la tinción son: núcleos:
morado-negro, citoplasma y osteoides: rojo, hueso
mineralizado y colágeno: verde, eritrocitos: naranja.
El tamaño del explante y el porcentaje de hueso y
de matriz residual fueron calculados utilizando técnicas de
histomorfometría. También se registró la respuesta celular, si
estaba presente, así como el tipo de respuesta y la presencia y
ausencia de inflamación.
Cada corte microscópico se puntuó de modo similar
en lo referente al porcentaje de hueso y de matriz residual. El
porcentaje de hueso y de matriz se calculó y puntuó con el
microscopio utilizando la siguiente escala.
| % de hueso | Puntuación |
| 0 (no observado) | 0 |
| <10 | 0,5 |
| 10-20 | 1 |
| 20-40 | 2 |
| 40-60 | 3 |
| 60-80 | 4 |
| 80-100 | 5 |
Se calcularon los parámetros estándar de
estadística descriptiva para todas las variables principales. El
efecto del tratamiento con rhBMP-2 y de la adición
de FN en la formación de hueso ectópico se comparó utilizando una
prueba de la t para datos no emparejados. Las pruebas fueron
bilaterales y las diferencias se consideraron significativas a un
valor de p <0,05. La evaluación de la media global de las 20
partes alícuotas (5 jeringas), demostró una desviación típica de
\pm 13%. Las CPM por cada parte alícuota se muestran en la Figura
1. No se observó tendencia aparente en función del número de parte
alícuota.
Grupos testigo (sin
rhBMP-2): Las observaciones histológicas
demostraron que la matriz se resorbe en el plazo de dos semanas
solamente cuando está presente la rhBMP-2. Las
características histológicas típicas del implante testigo ectópico
de Gelfoam después de 14 días fueron una estructura particulada,
circundada de células gigantes y células fusiformes. Se observan
vasos sanguíneos fácilmente en los implantes, que están
generalmente bien vascularizados. Las características histológicas
parecieron similares en todos los testigos, incluidos aquellos con
Gelfoam solo, con fibronectina, y con implantes subcutáneos (SC) o
intramusculares (IM).
Grupos con rhBMP-2: El
hueso inducido por Gelfoam/rhBMP-2 pareció estar
formado principalmente por la ruta de osificación osteocondral, ya
que se observaron de modo uniforme condrocitos y matriz
cartilaginosa en el frente de formación de hueso, en el que el
hueso y la matriz que actuaba de vehículo se separaban. Se
observaron algunas zonas de hueso formado a través del mecanismo
directo. La formación de hueso con Gelfoam se inició desde la
periferia y se extendió hacia el centro del implante ectópico. Por
consiguiente, se formó una cáscara ósea en la fase temprana de la
formación de hueso.
Se encontraron diferencias significativas entre
los explantes SC e IM en todas las caracterizaciones histológicas.
Se observó muy poca formación de hueso en los explantes SC,
mientras que se encontró una formación de hueso sustancial en los
explantes IM. En general, las muestras IM parecieron presentar una
mejor respuesta global, un mayor grado de resorción de la matriz y
de formación de hueso, en comparación con las muestras subcutáneas.
La resorción ósea está presente tanto en las muestras IM como
subcutáneas. Las muestras IM presentan una cantidad
significativamente mayor de hueso maduro y médula, y menos matriz
restante. Se observó degradación muscular mínima. La infiltración
celular del vehículo en las muestras IM fue mayor que la de las
muestras subcutáneas, y constaba de numerosos linfocitos y células
gigantes.
Las muestras subcutáneas presentaron infiltración
celular de la matriz, que constaba predominantemente de linfocitos.
Las células gigantes eran abundantes en la periferia del material,
y se observaron algunas hacia el centro. La matriz no parecía estar
completamente resorbida en muchas áreas en las se dio la formación
de hueso SC. El hueso se forma en la zona adyacente al vehículo.
No se encontraron diferencias significativas
entre implantes formulados con Gelfoam solo y con fibronectina, con
la salvedad de que el Gelfoam solo presenta una puntuación ósea
ligeramente mayor. Ambas formulaciones dieron malos resultados en
la zona subcutánea pero muy buenos resultados en la zona
intramuscular.
Estas observaciones se reflejan en las siguientes
puntuaciones óseas promedio (Tabla 1).
La pasta de Gelfoam inyectable con
rhBMP-2 indujo la formación de hueso maduro en el
plazo de dos semanas tanto en las zonas IM como subcutáneas. La
respuesta en la zona intramuscular fue mucho más robusta que la de
la zona subcutánea. Se extrajeron explantes óseos grandes, bien
vascularizados, de la zona intramuscular. Las puntuaciones óseas
promedio fueron 3,4 \pm 0,7 para los explantes IM, y 1,3 \pm 1
para los explantes SC que contenían rhBMP-2. La
pasta de Gelfoam sola no indujo la formación de hueso, ni resorción
significativa, en las dos semanas del período del implante. Éste no
es un resultado inesperado, ya que la resorción completa en 4 a 6
semanas en los tejidos blandos, y la licuación en 2 a 5 días con
abundante hemorragia es normalmente lo esperable con Gelfoam.
La adición de FN a Gelfoam no mejoró la velocidad
de migración celular, la adhesión o la proliferación
significativamente como para mejorar la formación de hueso. Es
posible que la concentración de FN utilizada en este experimento
(770 mg/ml) no sea adecuada, o que no esté dispersa de modo
uniforme en la pasta. Una alternativa puede ser la utilización de
péptidos RGD para aumentar la adhesividad celular y la migración de
las células a la matriz. Una hipótesis alternativa es que el efecto
de rhBMP-2 a esta dosis en el modelo ectópico de
rata sobrepasa cualquier efecto de FN que pueda detectarse en un
modelo menos reactivo.
El estudio evaluó asimismo la reproducibilidad de
la dosis del procedimiento actual de formulación. Los resultados
con la proteína marcada indican que el procedimiento es adecuado
para distribuir rhBMP-2 uniformemente en la masa de
pasta. En general, la rhBMP-2 administrada en una
pasta de Gelfoam inyectable fue eficaz en la inducción ósea tanto
en las zonas IM como subcutáneas en este modelo.
Se preparó una pasta de Gelfoam al 16,7% en peso
que contenía rhBMP-2 hidratando polvo de Gelfoam
(Pharmacia/Upjohn) con tampón de ácido glutámico (pH=4,5; 400 mg de
rhBMP-2) como se ha descrito anteriormente en el
estudio ectópico de rata. En realizaciones que comprenden TCP, se
preparó TCP/Gelfoam (relación 70:30 en peso) que contenía
rhBMP-2 hidratando pasta compuesta; el TCP (tamizado
hasta un tamaño de partículas de 45 a 125 micrómetros de polvo de
Gelfoam con tampón de ácido glutámico) se dispersó de modo uniforme
en la pasta. Se comprobó que estas formulaciones eran adecuadas
para la inyección a través de una aguja de calibre 18, permitiendo
al mismo tiempo a la pasta la consistencia cohesiva necesaria para
su localización en la zona del defecto. Además, se incorporó a la
pasta una cantidad mínima de
I^{125}-rhBMP-2 para permitir la
determinación del perfil de retención local utilizando técnicas de
gammagrafía.
Se crearon, mediante osteotomía, defectos
bilaterales de 1 mm en el cúbito medio de 8 conejos adultos,
machos, de la raza New Zealand White. Una de las extremidades en
cada uno de los conejos recibió una inyección de
rhBMP-2 en pasta de Gelfoam; la extremidad
contralateral sirvió como testigo de la intervención quirúrgica. La
pasta de Gelfoam (0,2 ml, que contenían 400 \mug de
rhBMP-2) se inyectó por medio de una jeringa en la
zona del defecto y sus alrededores utilizando una aguja de calibre
18. Tras 4 semanas, se sacrificaron los conejos y se cortaron las
extremidades. Se determinó la formación de callos utilizando
tomografía computarizada periférica cuantitativa (pQCT). El análisis
de las características biomecánicas se llevó a cabo tras la
inclusión de las extremidades, y se realizaron pruebas de fractura
por torsión utilizando un sistema servohidráulico de análisis de
materiales (Modelo 8500, Instron, Corp.). El análisis histológico
se realizó en muestras representativos y cortes teñidos con la
técnica tricrómica de
Goldner.
Goldner.
Para el estudio con Gelfoam/TCP se crearon,
mediante osteotomía, defectos bilaterales de 1 mm en el cúbito
medio de 24 conejos adultos, machos, de la raza New Zealand White
(8 conejos por grupo). Una de las extremidades de cada uno de los
conejos recibió una inyección de rhBMP-2/vehículo;
la extremidad contralateral sirvió como testigo de la intervención
quirúrgica. Cada vehículo o tampón (0,15 ml, que contenían 100
\mug de rhBMP-2) se inyectó por medio de una
jeringa en el defecto y en la zona circundante. La biodistribución
in vivo de I^{125}-rhBMP-2
se cuantificó utilizando gammagrafía. Después de cuatro semanas se
analizó la biodistribución in vivo y la eficacia como se ha
descrito anteriormente.
La retención de
I^{125}-rhBMP-2 tras la inyección
en la zona del defecto (Fig. 2) se comparó con la de la
rhBMP-2 administrada a 3 conejos en un vehículo a
base de tampón. La media del tiempo de permanencia (MRT) fue 4,43
días y 1,72 días para la rhBMP-2 administrada en
Gelfoam y en tampón, respectivamente. De este modo, la semivida de
la rhBMP-2 (t1/2) fue 3,44 días y 1,11 días para
Gelfoam y tampón, respectivamente. Tras 7 días, la
rhBMP-2 administrada en tampón no era ya
detectable; sin embargo, la rhBMP-2 administrada en
Gelfoam era detectable a los 14 días tras la inyección.
La retención de
I^{125}-rhBMP-2 en pastas de
Gelfoam y TCP/Gelfoam tras la inyección en la zona del defecto
(Fig. 3), se comparó con la de la rhBMP-2
administrada en el vehículo a base de tampón a 3 conejos por grupo.
La media del tiempo de permanencia (MRT) fue 4,4 días, 5,9 días y
1,7 días para la rhBMP-2 administrada en Gelfoam,
en TCP/Gelfoam y en tampón, respectivamente. De este modo, la
semivida de la rhBMP-2 (t1/2) fue 3,4 días, 4,1 días
y 1,1 días para Gelfoam, TCP/Gelfoam y tampón, respectivamente.
Tras 7 días, la rhBMP-2 administrada en tampón no
era ya detectable en la zona; sin embargo, la
rhBMP-2 administrada en pasta de Gelfoam o
TCP/Gelfoam era detectable a los 13 a 14 días tras la
inyección.
Se evaluaron el área del callo y la resistencia
biomecánica (par máximo) de 16 extremidades (8 testigos y 8
tratadas con rhBMP-2). Una prueba de la t para
datos emparejados indicó que tanto el área del callo como la
resistencia biomecánica fueron mayores en las extremidades tratadas
con rhBMP-2 que en las extremidades testigo (Figs.
4, 5). La media del porcentaje de la diferencia entre los grupos
tratados y testigo fue 51% y 84% para el área del callo y para el
par máximo, respectivamente.
En el estudio con Gelfoam/TCP, una prueba de la t
para datos emparejados indicó que tanto el área del callo como la
resistencia biomecánica fueron significativamente superiores en las
extremidades tratadas con rhBMP-2 que en las
extremidades testigo en el caso de la pasta de Gelfoam y de la pasta
de TCP/Gelfoam (p < 0,05).
Sin embargo, en el caso de la
rhBMP-2 administrada en vehículo a base de tampón,
las extremidades tratadas no dieron resultados significativamente
distintos de los de las extremidades del grupo testigo. Se calculó
la media del porcentaje de aumento por encima del testigo para el
área del callo y para el par máximo (Figs. 6 a 7). Los porcentajes
de aumento en el área del callo y en el par máximo fueron máximos
en el grupo con TCP/Gelfoam y mínimos en el caso de la
administración de rhBMP-2 en tampón.
La evaluación histológica de 3 pares
representativos de extremidades en el estudio con Gelfoam demostró
que el defecto aparecía soldado al 100% con callo óseo en el
momento del sacrificio (4 semanas) en el caso de las extremidades
tratadas con rhBMP-2, mientras que el defecto
aparecía sólo parcialmente soldado en el caso de las extremidades
testigo, no tratadas. Esta observación se confirmó con radiografías
realizadas a las 4 semanas.
La evaluación histológica de extremidades
representativas en el estudio con Gelfoam/TCP demostró que el
defecto aparecía soldado al 100% con callo en el caso de las
extremidades tratadas con rhBMP-2 en Gelfoam y en
TCP/Gelfoam, mientras que el defecto aparecía sólo parcialmente
soldado en el caso de las extremidades testigo y las tratadas con
tampón.
Las descripciones anteriores exponen en detalle
las realizaciones de la presente invención preferidas actualmente.
Se espera que los expertos en la materia conciban, tras la lectura
de dichas descripciones, numerosas modificaciones y variaciones en
la práctica de la presente invención. Dichas modificaciones se
consideran englobadas en el alcance de las reivindicaciones que se
adjuntan.
Claims (10)
1. Composición para la administración por
inyección de proteínas osteogénicas, que comprende una mezcla,
aceptable desde el punto de vista farmacéutico, que comprende.
a) una proteína osteogénica;
b) una pasta de espuma de gelatina hemostática;
y
c) fosfato tricálcico.
2. Composición según la reivindicación 1, en la
que la proteína osteogénica se selecciona de entre el grupo formado
por miembros de la familia BMP.
3. Composición según la reivindicación 2, en la
que la proteína osteogénica es BMP-2.
4. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, que comprende micropartículas porosas y uno
o más antibióticos.
5. Composición según la reivindicación 4, que
comprende un agente secuestrador de proteínas seleccionado de entre
alginato y derivados celulósicos.
6. Composición según la reivindicación 1, en la
que la proteína osteogénica es OP-1.
7. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 6, para su utilización como medicamento.
8. Utilización de una composición según
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6 en la preparación de un
medicamento destinado al tratamiento de una zona lesionada en la
que se desea la formación de cartílago y/o hueso.
9. Utilización de una composición según
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6 en la preparación de un
medicamento destinado al tratamiento de uno o más trastornos
seleccionados de entre el grupo formado por fracturas recientes y en
las que no se da unión, fusiones de la espina dorsal, defectos
óseos en el ámbito ortopédico, osteomielitis, huesos osteoporóticos
u osteopénicos, defectos periodontales, alvéolos para exodoncia y
distracción osteogénica.
10. Utilización de una composición según
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6 en la preparación de un
medicamento destinado a las reconstrucciones cráneo/maxilofaciales
y/o a la integración de prótesis.
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