PL195642B1 - Sposób przetwarzania wodnego roztworu aktywowanego białka C - Google Patents

Sposób przetwarzania wodnego roztworu aktywowanego białka C

Info

Publication number
PL195642B1
PL195642B1 PL98336420A PL33642098A PL195642B1 PL 195642 B1 PL195642 B1 PL 195642B1 PL 98336420 A PL98336420 A PL 98336420A PL 33642098 A PL33642098 A PL 33642098A PL 195642 B1 PL195642 B1 PL 195642B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
protein
activated protein
processing
apc
activated
Prior art date
Application number
PL98336420A
Other languages
English (en)
Other versions
PL336420A1 (en
Inventor
Andrew David Carlson
Theodore Arsay Sheliga
Jeffrey Clayton Baker
Lihua Huang
Original Assignee
Lilly Co Eli
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Lilly Co Eli filed Critical Lilly Co Eli
Publication of PL336420A1 publication Critical patent/PL336420A1/xx
Publication of PL195642B1 publication Critical patent/PL195642B1/pl

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/70Carbohydrates; Sugars; Derivatives thereof
    • A61K31/715Polysaccharides, i.e. having more than five saccharide radicals attached to each other by glycosidic linkages; Derivatives thereof, e.g. ethers, esters
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/43Enzymes; Proenzymes; Derivatives thereof
    • A61K38/46Hydrolases (3)
    • A61K38/48Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
    • A61K38/482Serine endopeptidases (3.4.21)
    • A61K38/4866Protein C (3.4.21.69)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P43/00Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P7/00Drugs for disorders of the blood or the extracellular fluid
    • A61P7/02Antithrombotic agents; Anticoagulants; Platelet aggregation inhibitors
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • A61P9/10Drugs for disorders of the cardiovascular system for treating ischaemic or atherosclerotic diseases, e.g. antianginal drugs, coronary vasodilators, drugs for myocardial infarction, retinopathy, cerebrovascula insufficiency, renal arteriosclerosis
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • A61P9/14Vasoprotectives; Antihaemorrhoidals; Drugs for varicose therapy; Capillary stabilisers
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/48Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
    • C12N9/50Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25)
    • C12N9/64Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue
    • C12N9/6421Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue from mammals
    • C12N9/6424Serine endopeptidases (3.4.21)
    • C12N9/6464Protein C (3.4.21.69)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y304/00Hydrolases acting on peptide bonds, i.e. peptidases (3.4)
    • C12Y304/21Serine endopeptidases (3.4.21)
    • C12Y304/21069Protein C activated (3.4.21.69)

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Cardiology (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Vascular Medicine (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

1. Sposób przetwarzania wodnego roztworu aktywowanego bialka C, znamienny tym, ze prze- twarzanie prowadzi sie przy stezeniu soli pomiedzy 150 mM i 1000 mM i pH 5,5 do 6,3, a przetwarza- nie wybiera sie z grupy skladajacej sie z: a. operacji wzbogacania lub zatezenia bialka, lub b. operacji oczyszczania bialka, lub c. liofilizacji wodnego roztworu z wytworzeniem kompozycji farmaceutycznej, lub d. chromatografii lub filtracji, lub e. przechowywania PL PL PL PL PL PL PL PL

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób przetwarzania wodnego roztworu aktywowanego białka C. Podczas przetwarzania według wynalazku obniża się autodegradacja aktywowanego białka.
Białko C jest proteazą serynową i naturalnie występującym środkiem przeciwkrzepliwym, który odgrywa rolę w regulacji homeostazy poprzez inaktywację czynników Va i VIIIa w kaskadzie krzepnięcia krwi. Ludzkie białko C powstaje in vivo przede wszystkim w wątrobie w postaci pojedynczego polipeptydu o długości 461 aminokwasów. Ta prekursorowa cząsteczka podlega wielu modyfikacjom posttranslacyjnym, obejmującym 1) odszczepianie sekwencji sygnałowej o długości 42 aminokwasów; 2) proteolityczne usuwanie z jednego łańcucha zymogenu reszty lizyny w pozycji 156 i reszty argininy w pozycji 157 z utworzeniem cząsteczki o postaci dwułańcuchowej (tj. łańcucha lekkiego o długości 155 reszt aminokwasowych połączonego mostkiem dwu-siarczkowym z zawierającym proteazę serynową łańcuchem ciężkim o długości 262 reszt aminokwasowych); 3) zależną od witaminy K karboksylację dziewięciu reszt kwasu glutaminowego zgrupowanych w pierwszych 42 aminokwasach łańcucha lekkiego, w wyniku czego powstaje 9 reszt kwasu gamma-karboksyglutaminowego; oraz 4) przyłączanie węglowodanów w czterech miejscach (jednym w łańcuchu lekkim i trzech w łańcuchu ciężkim). Łańcuch ciężki zawiera dobrze poznaną triadę Asp 257, His 211 i Ser 360 proteaz serynowych. Ostatecznie, dwułańcuchowy zymogen w krążeniu aktywowany jest in vivo przez trombinę na fosfolipidowej powierzchni w obecności jonu wapniowego. Aktywacja zachodzi w wyniku usunięcia dodekapeptydu z końca N łańcucha ciężkiego, prowadząc do powstawania aktywowanego białka C (aPC), posiadającego aktywność enzymatyczną. Wraz z innymi białkami, aktywowane białko C działa, jako być może najważniejszy, czynnik hamujący prowadzące do zakrzepicy krzepnięcie krwi.
Niestety, aPC może ulegać autodegradacji, co prowadzi do zmniejszania jego funkcjonalności jako środka przeciwkrzepliwego. Znanym szlakiem degradacji aktywowanego białka C jest proteolityczne rozszczepienie przy reszcie lizyny w pozycji 308 łańcucha ciężkiego, z utworzeniem fragmentu o długości 111 aminokwasów. Ten produkt degradacji znany jest jako fragment EAK.
Uprzednie próby obniżania autodegradacji skupiały się na minimalizacji tworzenia fragmentu EAK. Co najbardziej godne uwagi, Prouty i in., europejski opis patentowy numer 0 662 513, 12 lipca 1995 r., ujawniają minimalizację autodegradacji aPC przez kontrolowanie pH na poziomie od około 6,3 do 7,0; inkubowanie aPC w 3 M moczniku lub wystawianie aPC na działanie skrajnych stężeń soli, które określono na powyżej 0,4 M lub poniżej 0,05 M.
Chociaż opis patentowy JP 1226900 dostarcza sposobu skutecznej izolacji i oczyszczania białka różni się od tego sposobu, jaki przedstawiono w niniejszym wynalazku i nie dotyczy aktywowanego białka C. W opisie JP 1226900 nie ma pouczenia ani sugestii dotyczącej sposobu przetwarzania aktywowanego białka C ani też jakiegokolwiek pouczenia na temat metody liofilizacji wodnego roztworu aktywowanego białka C. W szczególności nie jest oczywiste w świetle opisu JP 1226900, że stabilność aktywowanego białka C podczas liofilizacji byłaby zwiększona przez wybór pH w zakresie 5,5 do 6,3, i siły jonowej w zakresie 150 mM i 1000 mM.
Natomiast roztwory aktywowanego białka C ujawnione w opisie patentowym EP 726076 zawierają, co najmniej jeden aminokwas, i albo jeden lub kombinację albuminy i niejonowego środka powierzchniowo czynnego jako stabilizatory. Opis patentowy EP 726076 nie sugeruje pominięcia tych stabilizatorów w roztworach aktywowanego białka C. Niniejszy wynalazek korzystnie nie wymaga takich stabilizatorów. W opisie EP 726076 nie wymienia się pH w rozważaniach stabilizacji aktywowanego białka C, i dlatego opis ten nie motywuje fachowca do tego by brał pod uwagę pH, nie mówiąc już o wprowadzeniu specyficznego zakresu pH według niniejszego wynalazku.
Opis patentowy JP 8301786 skupia się na aktywowanym białku C jako środku zapobiegającym i leczniczym w chorobie resorpcji kości i nie zawiera pouczenia na temat zmniejszenia autodegradacji produktu, aktywowanego białka C. Opis JP 8301786 nie porusza identyfikacji autodegradacji produktu, nie mówiąc już o stabilizowaniu roztworów według niniejszego wynalazku. W ujawnieniu sposobu wytwarzania aktywowanego białka C pochodzącego z ludzkiej plazmy, opis JP 8301786 zapewnia wytwarzanie aktywowane białko C wysuszonego przez liofilizację w roztworach zawierających fosforan sodu i chlorek sodu i albo stabilizowaną żelatynę (Przykład 1) albo albuminę i mannitol (Przykład 2). Nigdzie JP 8301786 nie sugeruje wytwarzania aktywowanego białka C bez stabilizatorów jak w niniejszym wynalazku. Co więcej JP 8301786 nie omawia pH z uwagi na stabilność aktywowanego białka C.
Jak uprzednio wskazano JP 1226900 dotyczy białka C, a nie aktywowanego białka C. EP 726076 i JP 8301786 każdy obejmuje dodatkowe zaróbki nie objęte niniejszym wynalazkiem.
PL 195 642 B1
Autorzy zgłoszenia odkryli drugi ważny szlak degradacji - autodegradację końca N łańcucha lekkiego, której wynikiem jest rozszczepianie po obu stronach reszty histydyny w pozycji 10. Ten szlak degradacji prowadzi do powstawania dwóch nieaktywnych produktów. W wyniku odszczepienia pierwszych dziewięciu N-końcowych reszt łańcucha lekkiego powstaje dez(1-9)aktywowane białko C, a w wyniku odszczepienia pierwszych dziesięciu reszt łańcucha lekkiego, dez(1-10)aktywowane białko C. Wynikiem tego szlaku degradacji, o którym nie donoszono uprzednio, jest utrata aktywności przeciwkrzepliwej z powodu usunięcia posiadających zasadnicze znaczenie reszt GLA w pozycjach 6 i 7. Dlatego też, minimalizacja poziomu produktów degradacji, dez(1-9)- i dez(1-10)aktywowanego białka C jest ważna dla uzyskania preparatu farmaceutycznego aktywowanego białka C o silnym działaniu i wysokiej czystości. Warianty te były uprzednio nieznanymi produktami degradacji i są niezwykle trudne, jeśli nie niemożliwe, do usunięcia konwencjonalnymi technikami oczyszczania. Warunki prowadzące do minimalizacji ich tworzenia były uprzednio nieznane.
Identyfikacja tego ważnego szlaku autodegradacji aktywowanego białka C przez autorów zgłoszenia umożliwiła odkrycie warunków przetwarzania i nadawania postaci farmaceutycznej pozwalających na zwiększenie czystości i siły działania aktywowanego białka C. Autorzy zgłoszenia wykazali, że w niskim pH (np. niższym niż 6,3), szlak autodegradacji prowadzący do powstawania dez(1-9)aPC lub dez(1-10)aPC dominuje nad szlakiem autodegradacji 308-309, jednakże stosowanie podwyższonych stężeń chlorku sodowego (wyższych niż 150 mM) w pH niższym niż 6,3 zasadniczo obniża zasięg reakcji autodegradacji, w wyniku której powstają dez(1-9)aPC i/lub dez(1-10)aPC.
Zgodnie z tym, niniejszy wynalazek zapewnia sposób przetwarzania aktywowanego białka C przy sile jonowej wyższej niż 150 mM i w pH od około 5,5 do poniżej 6,3. W warunkach tych tworzenie dez(1-9)aPC i dez(1-10)aPC jest znacząco obniżone. Dlatego też, niniejszy wynalazek zapewnia ulepszony sposób przetwarzania wodnego roztworu aktywowanego białka C bez niepożądanej degradacji.
Opis rysunków
Figura 1 przedstawia pierwszorzędową strukturę aktywowanego ludzkiego białka C dla ułatwienia zilustrowania opisywanego w niniejszym opisie szlaku autodegradacji. Przyjęta tu numeracja reszt oparta jest na numeracji sekwencji ludzkiego aktywowanego białka C. Specjalista w tej dziedzinie będzie wiedział, że inne rodzaje aktywowanego białka C mogą nieznacznie różnić się sekwencją, czego wynikiem stają się przesunięcia w zdefiniowanej tu numeracji.
Zgodnie z wynalazkiem sposób przetwarzania wodnego roztworu aktywowanego białka C, charakteryzuje się tym, że przetwarzanie prowadzi się przy stężeniu soli pomiędzy 150 mM i 1000 mM i pH 5,5 do 6,3, a przetwarzanie wybiera się z grupy składającej się z:
a. operacji wzbogacania lub zatężenia białka, lub
b. operacji oczyszczania białka, lub
c. liofilizacji wodnego roztworu z wytworzeniem kompozycji farmaceutycznej, lub
d. chromatografii lub filtracji, lub
e. przechowywania
W korzystnym wykonaniu wynalazku przetwarzanie prowadzi się w nieobecności środka denaturującego, histydyny, chlorowodorku lizyny lub albuminy.
W innym wykonaniu wynalazku przetwarzanie prowadzi się korzystnie przy pH od 5,6 do 6,2, korzystniej przy pH od 5,9 do 6,1.
W kolejnym wykonaniu wynalazku pH buforuje się cytrynianem sodowym, a jako sól korzystnie stosuje się chlorek sodu.
W sposobie według wynalazku aktywowanym białkiem C jest korzystnie ludzkie zrekombinowane aktywowane białko C.
W sposobie według wynalazku przetwarzanie stanowi korzystnie operacja oczyszczania białka, a zwłaszcza przechowywanie.
W dalszym wykonaniu wynalazku przetwarzanie stanowi liofilizacja wodnego roztworu aktywowanego białka C z wytworzeniem kompozycji farmaceutycznej. Przy czym wodny roztwór aktywowanego białka C korzystnie ponadto zawiera wypełniacz wybrany z grupy obejmującej trehalozę, rafinozę, i sacharozę i ich mieszaniny.
Operacja oczyszczania aktywowanego białka C następuje przez rozdział chromatograficzny, obejmujący eluowanie aktywowanego białka C podczas rozdziału chromatograficznego z zastosowaniem eluowania roztworem wodnym posiadającym siłę jonową wyższą niż 150 mM i pHod5,5do poniżej 6,3.
PL 195 642 B1
Operacja zatężania roztworu aktywowanego białka C następuje przez sączenie, obejmujące nakładanie aktywowanego białka C na membranę filtrującą w postaci wodnego roztworu posiadającego siłę jonową wyższą niż 150 mM ipH od 5,5 do poniżej 6,3.
Preparaty farmaceutyczne aktywowanego białka C otrzymane sposobem według wynalazku zawierają mniej niż 10% wagowych dez(1-9)aPC i/lub dez(1-10)aPC.
Wszystkie stosowane w tym ujawnieniu skróty nazw aminokwasów są skrótami przyjętymi przez United States Patent and Trademark Office, jak wymieniono w 37 C.F.R. § 1.822 (B)2.
Do celów niniejszego wynalazku, jak opisano i zastrzeżono w niniejszym opisie, następujące terminy posiadają podane poniżej znaczenia.
aPC lub aktywowane białko - odnosi się do białka C, niezależnie od tego, czy jest białkiem zrekombinowanym, czy pochodzącym z osocza. aPC obejmuje, a korzystnie jest, ludzkim białkiem C, chociaż aPC może również obejmować inne rodzaje lub pochodne posiadające aktywności proteolityczną, amidolityczną, estrolityczną lub biologiczną (przeciwkrzepliwą bądź profibrynolityczną) białka C. Przykłady pochodnych białka C opisali Gerlitz i in., opis patentowy Stanów Zjednoczonych Ameryki numer 5 453 373 oraz Foster i in., opis patentowy Stanów Zjednoczonych Ameryki numer 5 516 650, których ujawnienia w całości włączono do niniejszego opisu poprzez odnośniki literaturowe.
APTT - aktywowany częściowy czas tromboplastynowy.
Wodny - obejmuje układy różnych rozpuszczalników, jak również stosowanie jako rozpuszczalnika tylko wody. Korzystnie, wodny oznacza tylko wodę jako rozpuszczalnik.
Rozdział chromatograficzny - obejmuje techniki chromatograficzne znane i stosowane w tej dziedzinie, włącznie z chromatografią sączenia molekularnego, anionową, kationową, oddziaływań hydrofobowych, z odwróconymi fazami i podobnymi.
Filtracja z przepływem krzyżowym - odnosi się do rozdziału poprzez styczny przepływ przez membranę filtracyjną, gdzie produkt jest albo zatrzymywany przez membranę (jak przy zatężaniu lub diafiltracji), albo przechodzi przez membranę (jak w filtracji wirusowej).
PC - zyraogen białka C.
Przetwarzanie - odnosi się do jednostkowych operacji użytecznych w wytwarzaniu aktywowanego białka C, takich jak chromatografia kolumnowa, filtracja (styczne, z przepływem krzyżowym, z objętością martwą), liofilizacja, pompowanie lub przechowywanie.
r-aPC - zrekombinowane białko C wytworzone przez aktywację PC in vitro lub przez bezpośrednie wydzielanie aktywowanej postaci białka C przez komórki prokariotyczne, komórki eukariotyczne lub zwierzęta transgeniczne, włącznie z, na przykład, wydzielaniem z komórek 293 nerki ludzkiej w postaci zymogenu, następnie oczyszczanego i aktywowanego technikami dobrze znanymi specjalistom w tej dziedzinie i przedstawionymi w Yan, opis patentowy Stanów Zjednoczonych Ameryki numer 4 981 952 oraz Cottingham, światowy opis patentowy numer WO 97/20043.
Niniejszy wynalazek dotyczy ulepszonego sposobu przetwarzania aktywowanego białka C. Wynalazek szczególnie dotyczy przetwarzania aktywowanego białka C przez operacje wzbogacania lub zatężanie białka, z jednoczesnym obniżaniem autodegradacji. Wynalazek charakteryzuje się stosowaniem takiego przetwarzania, a szczególnie takich operacji modyfikacji, wzbogacania i oczyszczania, prowadzonych z zastosowaniem wodnego roztworu białka w opisanych w niniejszym opisie warunkach.
Kombinacja zastrzeganych w niniejszym opisie warunków minimalizuje tworzenie dez(1-9)aPC i dez(1-10)aPC. Dez(1-9)aPC i dez(1-10)aPC są niezwykle trudne do usunięcia znanymi metodami oczyszczania, tak że pożądane jest minimalizowanie ich tworzenia podczas wytwarzania preparatów farmaceutycznych aPC. Aktywowane białko C przygotowane w zastrzeganych warunkach jest zasadniczo wolne od wariantów dez(1-9)aPC i dez(1-10)aPC. Ogólnie, preparaty farmaceutyczne aPC przygotowanego w tych warunkach są zasadniczo wolne od dez(1-9)aPC i dez(1-10)aPC, generalnie zawierają mniej niż 10% wagowych, korzystnie mniej niż 8%, korzystniej mniej niż 5%, a najkorzystniej mniej niż 3% tych wariantów, osobno lub łącznie. Liofilizowane preparaty farmaceutyczne przygotowane z zastosowaniem aPC przygotowanego jak opisano i zastrzeżono w niniejszym opisie wykazują ulepszoną stabilność w stanie roztworu (przed liofilizacją) i stabilność w ciągu od 24 do 48 godzin po rekonstytucji. Obserwuje się nie więcej niż 5% utraty siły działania w ciągu do pięciu dni w temperaturze od 2 do 8°C, do 50 godzin w temperaturze 15°C oraz do 40 godzin w temperaturze 25°C. Przed dokonaniem niniejszego wynalazku taka stabilność była uprzednio nieosiągalna.
Dokładnie kontrolując pH, siłę jonową i korzystnie temperaturę, można obniżyć autodegradację aktywowanego białka C w roztworach wodnych podczas przetwarzania i w postaciach farmaceutyczPL 195 642 B1 nych do niemożliwych uprzednio do uzyskania poziomów - szczególnie w nieobecności mocznika i innych czynników denaturujących, histydyny, chlorowodorku lizyny lub albuminy.
W szeroko rozumianym praktycznym stosowaniu niniejszego wynalazku, uważa się, że przetwarzanie białka C obejmuje szeroki zakres operacji jednostkowych, operacji rozdziałów fizycznych i oczyszczania, włącznie ze stosowaniem chromatografii i filtracji z przepływem krzyżowym, takich jak mających na celu oczyszczanie składu preparatu białkowego, zatężanie roztworu lub wymianę rozpuszczalnika, jak również ewentualnie działanie środkami chemicznymi i enzymami. Rozważane w niniejszym wynalazku przetwarzanie białka obejmuje szczególnie oczyszczanie standardowymi metodami chromatograficznymi, takimi jak chromatografia jonowymienna, chromatografia oddziaływań hydrofobowych i podobne, oraz zatężanie białka przez ultrafiltrację i podobne. Przetwarzanie białka obejmuje również w zamierzeniu utrzymywanie roztworu białka w zbiornikach i podobne przygotowania do takich etapów oczyszczania i zatężania. W celu zmniejszenia niestabilności, wszystkie przetwarzania roztworu aktywowanego białka C, włącznie z różnymi etapami oczyszczania białka i zatężania białka, prowadzi się w warunkach opisanych w niniejszym opisie. Takie etapy przetwarzania mają na celu ostateczne wyizolowanie białka, zazwyczaj w postaci zliofilizowanego proszku, do tworzenia preparatu farmaceutycznego.
pH przetwarzanego wodnego roztworu wynosi od około 5,5 do poniżej 6,3. Korzystniej, od 5,7 do poniżej 6,3. Jeszcze korzystniej, pH pomiędzy około 5,6 a około 6,2. Nawet bardziej korzystne jest pH pomiędzy około 5,6 a około 6,2. Jeszcze bardziej korzystne jest pH pomiędzy około 5,9 a około 6,1. Najkorzystniejsze pH wynosi około 6,0. Reprezentatywne układy buforowe do utrzymywania skutecznej kontroli pH obejmują Tris-octan, cytrynian sodowy, cytrynian potasowy, cytrynian-glicynę oraz fosforan sodowy. Korzystniejsze układy buforowe obejmują cytrynian sodowy i fosforan sodowy. Najkorzystniejszym buforem jest cytrynian sodowy. Korzystne stężenie molowe układu buforowego wynosi od 10 mM do 50 mM. Najkorzystniejszym stężeniem molowym jest stężenie od 20 do 40 mM. Specjalista w tej dziedzinie będzie wiedział, że dostępnych jest wiele innych układów buforowych, które również można stosować do utrzymywania pH w zastrzeganym zakresie.
Siła jonowa przetwarzanych roztworów jest drugim elementem o krytycznym znaczeniu według niniejszego wynalazku. Siła jonowa generalnie jest wynikiem dodawania farmaceutycznie dopuszczalnych soli - korzystnie chlorku sodowego lub chlorku potasowego. Siła jonowa jest korzystnie wyższa lub równa 150 mM, będąc wynikiem wyższego niż 150 mM stężenia soli w buforowanym roztworze. Korzystnie, stężenie soli jest nie wyższe niż 1000 mM, dla ułatwienia dalszego przetwarzania, stężenie soli wynosi od około 200 mM do około 1000 mM. Stężenia wyższe niż 50 mM i niższe niż 400 mM uprzednio uważano za niedopuszczalne.
Dodatkowym warunkiem zapewniającym minimalną autodegradację jest temperatura. Korzystnie, temperatura podczas przetwarzania roztworu wynosi pomiędzy 0°C a 10°C, korzystniej od 2°C do 8°C; poza tymi temperaturami występuje znaczna autodegradacja aktywowanego białka C. Jednakże, przekroczenie 10°C w ciągu krótkiego okresu może być tolerowane bez narażania na szwank integralności aktywowanego białka C.
Stężenie aktywowanego białka C nie ma krytycznego znaczenia dla niniejszego wynalazku. Co istotne, zdolność do przetwarzania białka o wyższych stężeniach jest znacząco wzmacniana w opisywanych w niniejszym opisie warunkach. Korzystne stężenie białka wynosi od około 1 mg/ml do około 50 mg/ml, korzystniej od 1do 30 mg/ml, jeszcze korzystniej od 1do 20 mg/ml, a najkorzystniej od 1do 10 mg/ml, chociaż wyższe i niższe stężenia uważa się za możliwe do stosowania.
Aktywowane białko C przygotowane w opisywany w niniejszym opisie sposób użyteczne jest w leczeniu szerokiego zakresu nabytych stanów chorobowych obejmujących wewnątrznaczyniowe krzepnięcie krwi, włącznie z udarem zakrzepowym, zakrzepicą żył głębokich, zatorem tętnicy płucnej, zakrzepicą tętnic obwodowych, czopami zatorowymi powstającymi w sercu i tętnicach obwodowych, ostrym zawałem serca, rozsianym wewnątrznaczyniowym krzepnięciem krwi oraz ostrymi zamknięciami naczyń pre- lub postkapilarnych, w tym zakrzepicą transplantacyjną lub siatkówki.
Aktywowanemu białku C najlepiej nadaje się postać farmaceutyczną w stanie zliofilizowanym ze środkiem wypełniającym. Środek wypełniający najlepiej wybiera się w taki sposób, aby poprawiał on stabilność cząsteczki w stanie stałym. Przykładami takich zaróbek są sacharoza, trehaloza i rafinoza. Specjalista w tej dziedzinie będzie wiedział, że dostępnych jest wiele innych środków wypełniających, które również można stosować z aktywowanym białkiem C. Stężenie środka wypełniającego w postaci farmaceutycznej jest zmienną o krytycznym znaczeniu dla procesu liofilizacji. Korzystnym środkiem wypełniającym jest sacharoza o stężeniu w roztworze przeznaczonym do liofilizacji wynoszącym od 15
PL 195 642 B1 do 30 mg/ml. W postaci farmaceutycznej aPC o stężeniu 2,5 mg/ml najkorzystniejsze stężenie sacharozy w roztworze przeznaczonym do liofilizacji wynosi 15 mg/ml. W postaci farmaceutycznej aPC o stężeniu 5,0 mg/ml najkorzystniejszym stężeniem sacharozy w roztworze przeznaczonym do liofilizacji jest 30 mg/ml.
Poniższe przykłady przedstawiono w celu zilustrowania i wyjaśnienia wynalazku. Nie należy uważać, że przykłady te ograniczają zakres wynalazku. O ile nie stwierdzono inaczej, wszystkie odwołania do części i procentów dotyczą części i procentów wagowych, a wszystkie temperatury wyrażono w stopniach Celsjusza.
Preparatyka 1
Przygotowywanie ludzkiego białka C
Zrekombinowane ludzkie białko C (zymogen) wytworzono w komórkach 293 nerki ludzkiej technikami dobrze znanymi specjalistom w tej dziedzinie, takimi jak te wymienione w Yan, opis patentowy Stanów Zjednoczonych Ameryki numer 4 981 952, którego ujawnienia w całości włączono do niniejszego opisu poprzez odnośnik literaturowy. Gen kodujący ludzkie białko C ujawniono i zastrzeżono w Bang i in., opis patentowy Stanów Zjednoczonych Ameryki numer 4 775 624, którego ujawnienia w całości włączono do niniejszego opisu poprzez odnośnik literaturowy. Plazmidem zastosowanym do ekspresji ludzkiego białka C w komórkach 293 był plazmid pLPC, który ujawniono w Bang i in., opis patentowy Stanów Zjednoczonych Ameryki numer 4 992 373, którego ujawnienia w całości włączono do niniejszego opisu poprzez odnośnik literaturowy. Konstruowanie plazmidu pLCP opisano również w publikacji europejskiego opisu patentowego numer 0 445 939 oraz w Grinell i in., 1987, Bio/Technology 5: 1189-1192, których ujawnienia w całości również włączono do niniejszego opisu poprzez odnośniki literaturowe. Krótko, plazmidem stransfekowano komórki 293, następnie zidentyfikowano stabilne transformanty, założono subhodowle i prowadzono je w podłożach wolnych od surowicy. Po fermentacji otrzymywano podłoże wolneodkomórekprzezmikrofiltrację.
Zymogen ludzkiego białka C wydzielano z płynu hodowlanego przez adaptację techniki Yana, opis patentowy Stanów Zjednoczonych Ameryki numer 4 981 952, którego ujawnienia w całości włączono do niniejszego opisu poprzez odnośnik literaturowy. Przed adsorpcją na żywicy anionowymiennej (Fast-Flow Q, Pharmacia), sklarowane podłoże doprowadzano do 4 mM EDTA. Po przemyciu 4 objętościami kolumny roztworu zawierającego 20 mM Tris, 200mM NaCl, pH 7,4, oraz 2 objętościami kolumny roztworu zawierającego 20 mM Tris, 150 mM NaCl, pH 7,4, związany zrekombinowany zymogen ludzkiego białka C eluowano roztworem zawierającym 20 mM Tris, 150 mM NaCl, 10 mM CaCl2, pH 7,4. Eluowane białko wykazywało czystość powyżej 95%, jak stwierdzono przez elektroforezę w żelu poliakryloamidowym w obecności SDS.
Dalsze oczyszczanie białka przeprowadzono przez doprowadzanie roztworu białka do 3 M stężenia NaCl, a następnie adsorpcję na żywicy oddziaływań hydrofobowych (Toyopearl Phenyl 650M, TosoHaas), zrównoważonej roztworem zawierającym 20 mM Tris, 3 M NaCl, 10 mM CaCl2, pH 7,4. Po przemyciu 2 objętościami kolumny buforu do równoważenia bez CaCl2, zrekombinowany zymogen ludzkiego białka C eluowano roztworem zawierającym 20 mM Tris, pH 7,4. Wyeluowane białko przygotowywano do aktywacji przez usunięcie pozostającego wapnia. Zymogen przepuszczano przez kolumnę powinowactwa do metali (Chelex-100, BioRad) w celu usunięcia wapnia i ponownie wiązano z wymieniaczem anionowym (Fast Flow Q, Pharmacia). Obie te kolumny łączono w szereg i równoważono roztworem zawierającym 20 mM Tris, 150 mM NaCl, 5 mM EDTA, pH 7,4. Po nałożeniu białka kolumnę Chelex-100, przed jej odłączeniem z szeregu, przemywano jedną objętością kolumny tego samego buforu. Kolumnę anionowymienną przemywano 3 objętościami kolumny buforu do równoważenia przed elucją białka roztworem zawierającym 0,4 M NaCl, 20 mM Tris-octan, pH 6,5. Stężenie zrekombinowanego ludzkiego białka C mierzono przez pomiar ekstynkcji UV przy długości fali 280 nm, E0,1%= 1,81.
Preparatyka 2
Aktywacja zrekombinowanego ludzkiego białka C
Trombinę bydlęcą sprzęgnięto z Activated CH-Sepharose 4B w temperaturze 4°C. Reakcję sprzęgania przeprowadzono z żywicą uprzednio upakowaną w kolumnie, stosując około 5000 jednostek trombiny/ml żywicy. Roztwór trombiny krążył przez kolumnę w ciągu około 3 godzin przed dodaniem 2-aminoetanolu (MEA) do stężenia 0,6 ml/litr krążącego roztworu. Zawierający MEA roztwór krążył w ciągu dodatkowych 12-14 godzin dla zapewnienia całkowitego zablokowania nieprzereagowanych grup aminowych żywicy. Po blokowaniu, żywicę ze sprzęgniętą trombiną przemywano 10 objętościami kolumny roztworu zawierającego 1 M NaCl, 20 mM Tris, pH 6,5, w celu całości niePL 195 642 B1 specyficznie związanego białka, a następnie stosowano w reakcjach aktywacji po zrównoważeniu buforem do aktywacji.
Oczyszczone rHPC doprowadzano do 5 mM stężenia EDTA (w celu cheletacji jakiegokolwiek pozostającego wapnia) i rozcieńczano do stężenia 2 mg/ml roztworem zawierającym 20 mM Tris, pH 7,4, lub 20 mM Tris-octan, pH 6,5. Materiał ten przepuszczano przez kolumnę z trombiną, zrównoważoną w temperaturze 37°C roztworem zawierającym 50 mM NaCl i albo 20 mM Tris, pH 7,4, albo 20 mM Tris-octan, pH 6,5. Szybkość przepływu doprowadzano do wartości umożliwiającej czas kontaktu pomiędzy rHPC i żywicą z trombiną wynoszący około 20 minut. Zbierano wyciek i natychmiast oznaczano pod kątem aktywności amidolitycznej. Jeśli materiał nie posiadał aktywności właściwej (amidolitycznej) porównywalnej ze znanym wzorcem standardem aPC, poddawano go dalszemu przepuszczaniu przez kolumnę z trombiną dla uzyskania pełnej aktywacji rHPC. Następnie materiał rozcieńczano 1:1 powyższym 20 mM buforem.
Przeciwkrzepliwą aktywność aktywowanego białka C określa się przez pomiar wydłużania czasu krzepnięcia w oznaczeniu krzepnięcia, aktywowanego częściowego czasu tromboplastynowego (APTT). Krzywą wzorcową przygotowuje się w buforze do rozcieńczeń (1 mg/ml BSA czystości do oznaczeń radioimmunologicznych, 20 mM Tris, pH 7,4, 150 mM NaCl, 0,02% NaN3) dla zakresu stężeń białka C 125-1000 ng/ml, gdzie próbki przygotowuje się w kilku rozcieńczeniach w tym zakresie stężeń. Do każdej kuwety na próbkę dodaje się 50 ml zimnego osocza końskiego i 50 ml rekonstytuowanego odczynnika do oznaczania aktywowanego częściowego czasu tromboplastynowego (APTT Reagent, Sigma) i inkubuje w temperaturze 37°C w ciągu 5 minut. Po inkubacji do każdej kuwety dodaje się 50 ml odpowiednich próbek lub wzorców. Dla oznaczania podstawowego czasu krzepnięcia stosuje się bufor do rozcieńczeń w miejsce próbki lub wzorca. Stoper fibrometru (CoA Screener Hemostasis Analyzer, American Labor) uruchamia się natychmiast po dodaniu do każdej próbki lub wzorca 50 ml 30 mM CaCl2 o temperaturze 37°C. Stężenie aktywowanego białka C w próbkach oblicza się z równania regresji liniowej krzywej wzorcowej. Czasy krzepnięcia są średnią z co najmniej trzech powtórzeń, włącznie z próbkami krzywej wzorcowej. Stężenia białka dla zrekombinowanego 0,1% aktywowanego białka C mierzono przez pomiar ekstynkcji UV przy długości fali 280 nM, E0,1% = 1,85.
P r zyk ł a d 1
Chromatograficzny rozdział aPC
Roztwór zawierający aPC o przewodności około 14 mMho i pH 5,7 nakładano na kolumnę o wymiarach 9,5 cm x 9 cm (wysokość x średnica) z żywicą kationowymienną S-Sepharose Fast Flow, połączoną w szereg z kolumną o wymiarach 25 cm x 14 cm (wysokość x średnica) z żywicą anionowymienną Q Sepharose Fast Flow. Obie kolumny uprzednio równoważono 20 mM cytrynianem sodowym, pH 6,0, 150 mM NaCl. Nakładana na kolumnę ilość białka wynosiła 10 gramów aPC na litr żywicy anionowymiennej. Kolumnę przemywano >2 objętościami kolumn buforu do równoważenia i jednoetapowo eluowano 20 mM cytrynianem sodowym, pH 6,0, 400 mM NaCl. Wszystkie operacje prowadzono w temperaturze 2-8°C i przy liniowej szybkości przepływu wynoszącej 60 cm/godzinę.
Chociaż aPC posiadało wysoką aktywność (639 jednostek/mg w oznaczeniu APTT) i było znacznie zatężone podczas chromatografii (>20 g/litr w piku) oraz po połączeniu w całość (10 g/litr), produkt pozostawał stabilny. Obserwacje te potwierdzono przez spektrometrię masową zredukowanych i niezredukowanych produktów trawienia łańcucha lekkiego trypsyną, która wskazała na brak wykrywalnych (<2%) lizoform zawierających endoproteolityczne rozszczepienie 308-309 lub obecności dez(1-9)aPCi dez(1-10)aPC (<5%).
P rz y k ła d 2 Filtracja wirusowa
Aktywowane białko C (4 mg/ml) w buforze zawierającym 20 mM Tris, 150 mM NaCl i 20 mM EDTA sączy się stosując filtrację z przepływem stycznym (membrana Millipore Virusolve™ 180). Przepuszczanie aPC przez sączek ułatwia się stosując bufor do diafiltracji. Buforem do diafiltracji jest 20 mM cytrynian sodowy i 150 mM NaCl. Sączono roztwór (10 litrów) aPC o stężeniu 4 mg/ml w buforze zawierającym 20 mM Tris, 150 mM NaCl i 20 mM EDTA. Jako bufor do diafiltracji stosowano bufor zawierający cytrynian sodowy i chlorek sodowy, uzyskując objętość końcową roztworu aPC wynoszącą 21,5 litrów.
P rz y k ła d 3 Liofilizacja
Roztwór przygotowuje się w fiolce przez dodanie odpowiednich ilości sacharozy, chlorku sodowego i cytrynianu sodowego do wstępnie określonej objętości r-aPC, uzyskując stężenia 2,5 mg/ml
PL 195 642 B1 aPC, 15 mg/ml sacharozy, 325 mM chlorek sodowy i 20 mM cytrynian sodowy o pH 6,0. Roztwór liofilizuje się stosując konwencjonalny liofilizator, uzyskując fiolki z liofilizowanym aPC, odpowiednim do rekonstytucji i podawania pacjentowi. Liofilizowane postacie farmaceutyczne zawierają mniej niż 10% dez(1-9)apC i dez(1-10)aPC.
P r zyk ł a d 4
Liofilizacja
Roztwór przygotowuje się w fiolce przez dodanie odpowiednich ilości sacharozy, chlorku sodowego i cytrynianu sodowego do wstępnie określonej objętości r-aPC, uzyskując stężenia 5 mg/ml aPC, 30 mg/ml sacharozy, 650 mM chlorek sodowy i 40 mM cytrynian sodowy o pH 6,0. Roztwór liofilizuje się stosując konwencjonalny liofilizator, uzyskując fiolki z liofilizywanym aPC, odpowiednim do rekonstytucji i podawania pacjentowi. Liofilizowane postacie farmaceutyczne zawierają mniej niż 10% dez(1-9)apC i dez(1-10)aPC.
W powyższym opisie opisano zasady, korzystne rozwiązania i sposoby działania według niniejszego wynalazku. Jednakże, wynalazku, który w zamiarze ma tu podlegać ochronie, nie należy interpretować jako ograniczonego do poszczególnych ujawnionych postaci, ponieważ należy je traktować jako raczej ilustrujące, a nie ograniczające. Specjaliści w tej dziedzinie mogą dokonywać modyfikacji i zmian, bez odchodzenia od ducha wynalazku.

Claims (11)

1. Sposób przetwarzania wodnego roztworu aktywowanego białka C, znamienny tym, że przetwarzanie prowadzi się przy stężeniu soli pomiędzy 150 mM i 1000 mM i pH 5,5 do 6,3, a przetwarzanie wybiera się z grupy składającej się z:
a. operacji wzbogacania lub zatężenia białka, lub
b. operacji oczyszczania białka,lub
c. liofilizacji wodnegoroztworuz wytworzeniem kompozycji farmaceutycznej, lub
d. chromatografii lubfiltracji,lub
e. przechowywania
2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że przetwarzanie prowadzi w nieobecności środka denaturującego, histydyny, chlorowodorku lizyny lub albuminy.
3.Sposóbwedługzastrz. 1, znamienny tym, że pHwynosi od5,6do6,2.
4.Sposóbwedługzastrz. 3, znamienny tym, że pHwynosi od5,9do6,1.
5. Sposób według zastrz. 1, albo 2, albo 3, albo 4, znamienny tym, że pH buforuje się cytrynianem sodowym.
6. Sposób według zastrz. 1, albo 2, albo 3, albo 4, znamienny tym, że jako sól stosuje się chloreksodu.
7. Sposóbwedług zastrz. 1, albo 2, albo 3, albo4, znamienny tym, że aktywowanym białkiem C jest ludzkiezrekombinowaneaktywowanebiałkoC.
8. Sposób według zastrz. 7, znamienny tym, że przetwarzanie stanowi operacja oczyszczania białka.
9. Sposób według zastrz. 7, znamienny tym, że przetwarzanie stanowi przechowywanie.
10. Sposób według zastrz. 7, znamienny tym, że przetwarzanie stanowi liofilizacja wodnego roztworuaktywowanegobiałkaC z wytworzeniem kompozycji farmaceutycznej.
11. Sposób według zastrz. 10, znamienny tym, że wodny roztwór aktywowanego białka C ponadto zawiera wypełniacz wybrany z grupy obejmującej trehalozę, rafinozę, i sacharozę i ich mieszaniny.
PL98336420A 1997-04-28 1998-04-24 Sposób przetwarzania wodnego roztworu aktywowanego białka C PL195642B1 (pl)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US4525597P 1997-04-28 1997-04-28
PCT/US1998/008384 WO1998048822A1 (en) 1997-04-28 1998-04-24 Improved methods for processing activated protein c

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL336420A1 PL336420A1 (en) 2000-06-19
PL195642B1 true PL195642B1 (pl) 2007-10-31

Family

ID=21936854

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL98336889A PL195090B1 (pl) 1997-04-28 1998-04-24 Stabilny liofilizowany preparat aktywowanego białka C i jego stosowanie
PL98336420A PL195642B1 (pl) 1997-04-28 1998-04-24 Sposób przetwarzania wodnego roztworu aktywowanego białka C

Family Applications Before (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL98336889A PL195090B1 (pl) 1997-04-28 1998-04-24 Stabilny liofilizowany preparat aktywowanego białka C i jego stosowanie

Country Status (34)

Country Link
US (4) US6159468A (pl)
EP (2) EP0875252B1 (pl)
JP (2) JP4383546B2 (pl)
KR (2) KR100450856B1 (pl)
CN (2) CN1227025C (pl)
AR (2) AR015598A1 (pl)
AT (1) ATE285788T1 (pl)
AU (2) AU740753C (pl)
BR (2) BR9809292A (pl)
CA (2) CA2288143C (pl)
CO (2) CO4940438A1 (pl)
CZ (1) CZ298429B6 (pl)
DE (1) DE69828330T2 (pl)
DK (1) DK0875252T3 (pl)
EA (2) EA002149B1 (pl)
EG (1) EG23685A (pl)
ES (1) ES2234072T3 (pl)
HU (2) HU224826B1 (pl)
ID (2) ID23172A (pl)
IL (2) IL132502A0 (pl)
IN (2) IN183798B (pl)
MY (2) MY120984A (pl)
NO (2) NO995134L (pl)
NZ (2) NZ337828A (pl)
PE (2) PE84799A1 (pl)
PL (2) PL195090B1 (pl)
PT (1) PT875252E (pl)
SI (1) SI0875252T1 (pl)
SV (2) SV1998000050A (pl)
TR (2) TR199902631T2 (pl)
TW (2) TWI242443B (pl)
UA (2) UA55448C2 (pl)
WO (2) WO1998048822A1 (pl)
ZA (2) ZA983496B (pl)

Families Citing this family (61)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ID23172A (id) 1997-04-28 2000-03-23 Lilly Co Eli Metode yang diperbaiki untuk pengolahan protein c teraktivasi
US6630137B1 (en) * 1997-04-28 2003-10-07 Eli Lilly And Company Activated protein C formulations
HUP0001237A3 (en) * 1997-10-20 2002-01-28 Lilly Co Eli Methods for treating vascular disorders
US6815533B1 (en) 1998-07-31 2004-11-09 Eli Lilly And Company Cryogranulation of activated protein C
BR9915317A (pt) * 1998-11-13 2001-08-07 Lilly Co Eli Método de tratar trombocitopenia induzida por heparina
JP2002530353A (ja) * 1998-11-20 2002-09-17 イーライ・リリー・アンド・カンパニー ウイルス性出血熱の処置法
DE69905489T2 (de) * 1998-11-23 2003-09-11 Eli Lilly And Co., Indianapolis Protein c zur behandlung von sichelzellanämie und thalassämie
CN1329503A (zh) * 1998-12-10 2002-01-02 伊莱利利公司 治疗血小板减少性紫癜和溶血性尿毒综合征的方法
US6758938B1 (en) * 1999-08-31 2004-07-06 Micron Technology, Inc. Delivery of dissolved ozone
US7204981B2 (en) * 2000-03-28 2007-04-17 Eli Lilly And Company Methods of treating diseases with activated protein C
WO2001089558A2 (en) * 2000-05-24 2001-11-29 Eli Lilly And Company Formulations and use of activated protein c and protein c zymogen for treating hypercoagulable states
ATE400030T1 (de) 2001-02-19 2008-07-15 Merck Patent Gmbh Methode zur identifizierung von t-zellepitopen und deren anwendung zur herstellung von molekülen mit reduzierter immunogenität
US7101982B2 (en) * 2001-03-30 2006-09-05 Immunex Corporation Control of ph transitions during chromatography
US20030055003A1 (en) * 2001-07-19 2003-03-20 David Bar-Or Use of copper chelators to inhibit the inactivation of protein C
US20030073636A1 (en) * 2001-09-19 2003-04-17 Oklahoma Medical Research Foundation Method of treating diabetes
WO2003024398A2 (en) 2001-09-19 2003-03-27 Oklahoma Medical Research Foundation Treatment of sepsis with tafi
DE10149030A1 (de) * 2001-10-05 2003-04-10 Viscum Ag Stabile galenische gefriergetrocknete Arzneimittelzubereitung von rViscumin
BR0213292A (pt) 2001-10-15 2006-05-23 Chiron Corp tratamento de pneumonia severa por administração de inibidor da via de fator tecidual (tfpi)
ES2325653T3 (es) 2001-12-21 2009-09-11 Novo Nordisk Health Care Ag Composicion liquida de polipeptidos del factor vii.
EP1485121A4 (en) * 2002-03-08 2007-11-07 Lilly Co Eli ACTIVE C PROTEIN FORMULATIONS
BRPI0311959B8 (pt) 2002-06-21 2021-05-25 Novo Nordisk Healthcare Ag composição, métodos para preparar um polipeptídeo estável do fator vii, e para tratar uma síndrome responsiva do fator vii, e, uso do polipeptídeo do fator vii
NZ562480A (en) * 2002-10-29 2009-08-28 Alza Corp Stabilized, solid-state polypeptide particles
US20070142272A1 (en) * 2003-01-24 2007-06-21 Zlokovic Berislav V Neuroprotective activity of activated protein c independent of its anticoagulant activity
US7897734B2 (en) 2003-03-26 2011-03-01 Novo Nordisk Healthcare Ag Method for the production of proteins
ES2382157T3 (es) * 2003-06-25 2012-06-05 Novo Nordisk Health Care Ag Composición líquida de polipépttidos del factor VII
BRPI0508992A (pt) * 2004-03-17 2007-09-04 Chiron Corp tratamento de pneumonia severa pela administração de tfpi
EP1773371A4 (en) * 2004-07-23 2009-12-30 Univ Rochester ACTIVATED PROTEIN C INHIBITS SIDE EFFECTS OF PLASMINOGEN ACTIVATOR IN THE BRAIN
US20090148458A1 (en) * 2005-06-23 2009-06-11 The University Of British Columbia Coagulation factor iii polymorphisms associated with prediction of subject outcome and response to therapy
US9175283B2 (en) * 2006-05-31 2015-11-03 Genzyme Corporation Use polysaccharides for promotion of enzymatic activity
US20100041600A1 (en) * 2006-06-09 2010-02-18 Russel James A Interferon gamma polymorphisms as indicators of subject outcome in critically ill subjects
EA019345B1 (ru) * 2007-03-05 2014-03-31 Кадила Хелзкэр Лимитед Композиции, содержащие конъюгаты пэг-интерферон-альфа и рафинозу в качестве криопротектора
MX2009010361A (es) 2007-03-29 2009-10-16 Abbott Lab Anticuerpos il-12 anti-humanos cristalinos.
SG186607A1 (en) * 2007-11-30 2013-01-30 Abbott Lab Protein formulations and methods of making same
US8883146B2 (en) 2007-11-30 2014-11-11 Abbvie Inc. Protein formulations and methods of making same
US20110171200A1 (en) * 2008-01-15 2011-07-14 Walley Keith R Protein c rs2069915 as a response predictor to survival and administration of activated protein c or protein c-like compound
WO2010062896A1 (en) * 2008-11-28 2010-06-03 Abbott Laboratories Stable antibody compositions and methods for stabilizing same
WO2012068519A2 (en) 2010-11-19 2012-05-24 Sirius Genomics Inc. Markers associated with response to activated protein c administration, and uses thereof
US9062106B2 (en) 2011-04-27 2015-06-23 Abbvie Inc. Methods for controlling the galactosylation profile of recombinantly-expressed proteins
WO2013151727A1 (en) 2012-04-03 2013-10-10 Smith Medical Asd, Inc. Heparin-bulking agent compositions and methods thereof
US9067990B2 (en) 2013-03-14 2015-06-30 Abbvie, Inc. Protein purification using displacement chromatography
WO2013158273A1 (en) 2012-04-20 2013-10-24 Abbvie Inc. Methods to modulate c-terminal lysine variant distribution
US9334319B2 (en) 2012-04-20 2016-05-10 Abbvie Inc. Low acidic species compositions
US9249182B2 (en) 2012-05-24 2016-02-02 Abbvie, Inc. Purification of antibodies using hydrophobic interaction chromatography
WO2014005183A1 (en) 2012-07-04 2014-01-09 The University Of Sydney Treatment of inflammatory skin disorders
US9512214B2 (en) 2012-09-02 2016-12-06 Abbvie, Inc. Methods to control protein heterogeneity
BR112015004467A2 (pt) 2012-09-02 2017-03-21 Abbvie Inc método para controlar a heterogeneidade de proteínas
AU2013381687A1 (en) 2013-03-12 2015-09-24 Abbvie Inc. Human antibodies that bind human TNF-alpha and methods of preparing the same
US9017687B1 (en) 2013-10-18 2015-04-28 Abbvie, Inc. Low acidic species compositions and methods for producing and using the same using displacement chromatography
US9499614B2 (en) 2013-03-14 2016-11-22 Abbvie Inc. Methods for modulating protein glycosylation profiles of recombinant protein therapeutics using monosaccharides and oligosaccharides
WO2014159579A1 (en) 2013-03-14 2014-10-02 Abbvie Inc. MUTATED ANTI-TNFα ANTIBODIES AND METHODS OF THEIR USE
US9598667B2 (en) 2013-10-04 2017-03-21 Abbvie Inc. Use of metal ions for modulation of protein glycosylation profiles of recombinant proteins
US9085618B2 (en) 2013-10-18 2015-07-21 Abbvie, Inc. Low acidic species compositions and methods for producing and using the same
US8946395B1 (en) 2013-10-18 2015-02-03 Abbvie Inc. Purification of proteins using hydrophobic interaction chromatography
US9181337B2 (en) 2013-10-18 2015-11-10 Abbvie, Inc. Modulated lysine variant species compositions and methods for producing and using the same
US20150139988A1 (en) 2013-11-15 2015-05-21 Abbvie, Inc. Glycoengineered binding protein compositions
DK3137102T3 (da) 2014-04-16 2021-10-11 Zz Biotech Llc Apc til anvendelse til behandling af unormal kutan ardannelse
CN106488773B (zh) 2014-04-16 2020-02-11 Zz生物技术有限责任公司 Apc类似物用于创伤愈合的用途
US11058750B2 (en) 2015-12-03 2021-07-13 Mor Research Applications Ltd. Compositions and methods for treatment of ocular diseases
HRP20212027T1 (hr) 2016-06-01 2022-04-01 Servier IP UK Limited Formulacije polialkilen oksidne asparaginaze i postupci njihove priprave i uporabe
CN108159399B (zh) * 2017-12-29 2020-07-24 华中科技大学同济医学院附属同济医院 一种凝血蛋白酶aPC在防治糖尿病心肌病药物中的应用
WO2023119230A1 (en) 2021-12-22 2023-06-29 L'oreal Coagulation pathway and nicotinamide-adenine dinucleotide pathway modulating compositions and methods of their use

Family Cites Families (29)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4775624A (en) * 1985-02-08 1988-10-04 Eli Lilly And Company Vectors and compounds for expression of human protein C
US4849403A (en) * 1985-05-29 1989-07-18 Pentapharm Ag Protein C activator, methods of preparation and use thereof
US5516650A (en) 1985-06-27 1996-05-14 Zymogenetics, Inc. Production of activated protein C
AT399095B (de) * 1986-03-27 1995-03-27 Vukovich Thomas Dr Verfahren zur auftrennung von proteinen mittels gradientenelution und vorrichtung zur durchführung des verfahrens
US5175087A (en) * 1987-07-06 1992-12-29 Biopool International, Inc. Method of performing tissue plasminogen activator assay
CA1329760C (en) * 1987-10-29 1994-05-24 Ted C. K. Lee Plasma and recombinant protein formulations in high ionic strength media
US4877608A (en) * 1987-11-09 1989-10-31 Rorer Pharmaceutical Corporation Pharmaceutical plasma protein formulations in low ionic strength media
US4992373A (en) * 1987-12-04 1991-02-12 Eli Lilly And Company Vectors and compounds for direct expression of activated human protein C
JP2739050B2 (ja) * 1988-01-28 1998-04-08 ヘキスト薬品工業株式会社 抗血液凝固剤
JPH01226900A (ja) * 1988-03-08 1989-09-11 Green Cross Corp:The プロテインcの精製方法
DE3823519A1 (de) * 1988-07-12 1990-01-18 Basf Ag Verfahren zur reinigung von aktiviertem protein c
US4981952A (en) * 1988-10-04 1991-01-01 Eli Lilly And Company Method for the purification of vitamin K-dependent proteins
US5093117A (en) * 1989-01-24 1992-03-03 Baxter International Inc. Compositions and method for the treatment or prophylaxis of sepsis or septic shock
JPH05506354A (ja) * 1990-02-09 1993-09-22 ザイモジェネティクス,インコーポレイティド 端が切り取られた軽鎖を有する活性プロテインc
IL97312A (en) * 1990-02-23 1999-01-26 Lilly Co Eli A method of generating a polypeptide in an eukaryotic vector AND recombinant surrogate cell containing an enhanced transcriptional control unit based on the primary late adenovirus coefficient
US5040862A (en) 1990-05-07 1991-08-20 Corning Incorporated Method of trimming optical power
AT402262B (de) * 1991-06-20 1997-03-25 Immuno Ag Arzneimittel enthaltend aktiviertes protein c
US5413732A (en) * 1991-08-19 1995-05-09 Abaxis, Inc. Reagent compositions for analytical testing
MY110664A (en) 1992-05-21 1999-01-30 Lilly Co Eli Protein c derivatives
DE4234295A1 (de) * 1992-10-12 1994-04-14 Thomae Gmbh Dr K Carbonsäurederivate, diese Verbindungen enthaltende Arzneimittel und Verfahren zu ihrer Herstellung
US5395923A (en) * 1993-02-23 1995-03-07 Haemacure-Biotech, Inc. Process for the obtention of a biological adhesive made of concentrated coagulation factors by "salting-out"
JP2886061B2 (ja) * 1993-10-29 1999-04-26 財団法人化学及血清療法研究所 プロテインcもしくは活性化プロテインcの安定化方法及び安定化組成物
JP3043558B2 (ja) * 1993-10-29 2000-05-22 財団法人化学及血清療法研究所 ヒト活性化プロテインc調製物及びその製法
JPH07165605A (ja) * 1993-12-16 1995-06-27 Teijin Ltd 活性化プロテインcバイアル
NZ270271A (en) * 1994-01-05 1996-07-26 Lilly Co Eli Minimizing protein c degradation
JPH08301786A (ja) * 1995-05-11 1996-11-19 Mochida Pharmaceut Co Ltd 吸収性骨疾患予防・治療剤
WO1997020043A1 (en) 1995-11-30 1997-06-05 Zymogenetics, Inc. Protein c production in transgenic animals
ID23172A (id) * 1997-04-28 2000-03-23 Lilly Co Eli Metode yang diperbaiki untuk pengolahan protein c teraktivasi
HUP0001237A3 (en) 1997-10-20 2002-01-28 Lilly Co Eli Methods for treating vascular disorders

Also Published As

Publication number Publication date
TR199902631T2 (xx) 2000-01-21
EP0875563A2 (en) 1998-11-04
TW585871B (en) 2004-05-01
ID22933A (id) 1999-12-16
JP4383547B2 (ja) 2009-12-16
WO1998048818A1 (en) 1998-11-05
HUP0100284A2 (hu) 2001-06-28
CN1261280A (zh) 2000-07-26
CZ298429B6 (cs) 2007-10-03
EA002149B1 (ru) 2001-12-24
AU7161898A (en) 1998-11-24
DK0875252T3 (da) 2005-04-25
ATE285788T1 (de) 2005-01-15
EP0875252A2 (en) 1998-11-04
AR015598A1 (es) 2001-05-16
CN1254284A (zh) 2000-05-24
PL336420A1 (en) 2000-06-19
AR012010A1 (es) 2000-09-13
US6159468A (en) 2000-12-12
CA2287267C (en) 2006-08-15
BR9809292A (pt) 2000-07-04
UA73071C2 (en) 2005-06-15
NZ500346A (en) 2001-08-31
WO1998048822A1 (en) 1998-11-05
HUP0003401A3 (en) 2003-01-28
PE84799A1 (es) 1999-09-16
MY120984A (en) 2005-12-30
PT875252E (pt) 2005-03-31
HK1016472A1 (en) 1999-11-05
EA199900979A1 (ru) 2000-06-26
SV1998000050A (es) 1999-01-13
EA199900980A1 (ru) 2000-04-24
HU224826B1 (en) 2006-02-28
DE69828330T2 (de) 2005-10-13
KR100450856B1 (ko) 2004-10-02
EP0875252B1 (en) 2004-12-29
ZA983496B (en) 1999-10-25
EP0875563A3 (en) 2000-08-02
AU740753B2 (en) 2001-11-15
ZA983497B (en) 1999-10-25
EP0875252A3 (en) 2000-07-26
PE86299A1 (es) 1999-09-17
CA2288143C (en) 2012-08-21
IL132325A0 (en) 2001-03-19
US6162629A (en) 2000-12-19
AU7258998A (en) 1998-11-24
KR20010020242A (ko) 2001-03-15
TR199902529T2 (xx) 2000-02-21
AU740753C (en) 2002-10-10
BR9809304B1 (pt) 2011-02-08
BR9809304A (pt) 2000-10-17
CZ381099A3 (cs) 2000-03-15
PL336889A1 (en) 2000-07-17
JP2001524111A (ja) 2001-11-27
AU743531B2 (en) 2002-01-31
CO4940438A1 (es) 2000-07-24
SV1998000051A (es) 1998-12-11
CN1235638C (zh) 2006-01-11
CA2287267A1 (en) 1998-11-05
CA2288143A1 (en) 1998-11-05
CO4950523A1 (es) 2000-09-01
DE69828330D1 (de) 2005-02-03
IL132325A (en) 2005-07-25
MY118591A (en) 2004-12-31
ID23172A (id) 2000-03-23
KR20010020325A (ko) 2001-03-15
PL195090B1 (pl) 2007-08-31
TWI242443B (en) 2005-11-01
JP2001527543A (ja) 2001-12-25
HUP0100284A3 (en) 2003-08-28
SI0875252T1 (en) 2005-06-30
HUP0003401A2 (hu) 2001-02-28
ES2234072T3 (es) 2005-06-16
CN1227025C (zh) 2005-11-16
JP4383546B2 (ja) 2009-12-16
KR100564189B1 (ko) 2006-03-27
EA004881B1 (ru) 2004-08-26
US6436397B1 (en) 2002-08-20
NO995198D0 (no) 1999-10-25
IN183798B (pl) 2000-04-15
UA55448C2 (uk) 2003-04-15
NO995198L (no) 1999-10-25
NZ337828A (en) 2001-06-29
EG23685A (en) 2007-05-09
NO995134D0 (no) 1999-10-21
NO995134L (no) 1999-12-21
US6395270B1 (en) 2002-05-28
IL132502A0 (en) 2001-03-19
IN187157B (pl) 2002-02-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL195642B1 (pl) Sposób przetwarzania wodnego roztworu aktywowanego białka C
US6630137B1 (en) Activated protein C formulations
FI115635B (fi) Menetelmiä proteiini C:n hajoamisen estämiseksi
EP1557463A1 (en) Improved methods for processing activated protein C
AU769144B2 (en) Improved methods for processing activated protein C
US20040038288A1 (en) Human protein C Polypeptide
CZ373799A3 (cs) Zlepšené způsoby zpracování aktivovaného proteinu C
HK1016472B (en) Activated protein c formulations
EP1561469A1 (en) Activated Protein C Formulations