PL192468B1 - Stała doustna farmaceutyczna jednostka dawkowania w postaci tabletki o kontrolowanym uwalnianiu, sposób nadawania cechy opóźnionego uwalniania substancji czynnej i usieciowana skrobia wysokoamylozowa - Google Patents

Stała doustna farmaceutyczna jednostka dawkowania w postaci tabletki o kontrolowanym uwalnianiu, sposób nadawania cechy opóźnionego uwalniania substancji czynnej i usieciowana skrobia wysokoamylozowa

Info

Publication number
PL192468B1
PL192468B1 PL342596A PL34259699A PL192468B1 PL 192468 B1 PL192468 B1 PL 192468B1 PL 342596 A PL342596 A PL 342596A PL 34259699 A PL34259699 A PL 34259699A PL 192468 B1 PL192468 B1 PL 192468B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
cross
high amylose
amylose starch
linking agent
linked
Prior art date
Application number
PL342596A
Other languages
English (en)
Other versions
PL342596A1 (en
Inventor
Vincent Lenaerts
Francois Chouinard
Mircea A. Mateescu
Pompilia Ispas-Szabo
Original Assignee
Francois Chouinard
Ispas Szabo Pompilia
Vincent Lenaerts
Mateescu Mircea A
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Francois Chouinard, Ispas Szabo Pompilia, Vincent Lenaerts, Mateescu Mircea A filed Critical Francois Chouinard
Publication of PL342596A1 publication Critical patent/PL342596A1/xx
Publication of PL192468B1 publication Critical patent/PL192468B1/pl

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/20Pills, tablets, discs, rods
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/20Pills, tablets, discs, rods
    • A61K9/2004Excipients; Inactive ingredients
    • A61K9/2022Organic macromolecular compounds
    • A61K9/205Polysaccharides, e.g. alginate, gums; Cyclodextrin
    • A61K9/2059Starch, including chemically or physically modified derivatives; Amylose; Amylopectin; Dextrin

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)
  • Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Abstract

1. Stala doustna farmaceutyczna jednostka dawkowania w postaci tabletki o kontrolowanym uwalnianiu zawierajaca czynna substancje farmaceutyczna, nosnik i/lub substancje pomocnicze, znamienna tym, ze zawiera mieszanke 0,01-80% wagowych suchej, sproszkowanej czynnej sub- stancji farmaceutycznej i 20-99,99% wagowych suchej sproszkowanej wysokoamylozowej skrobi, przy czym wysokoamylozowa skrobia sklada sie z mieszaniny 10-60% wagowych amylopektyny i 40-60% wagowych amylozy, przy czym wysokoamylozowa skrobia jest skrobia zzelowana, która nastepnie kowalencyjnie usieciowano z uzyciem czynnika kowalencyjnie sieciujacego, przy czym to sieciowanie przeprowadzono stosujac 0,1-30 g czynnika sieciujacego na 100 g wysokoamylo- zowej skrobi, a jednostka dawkowania jest odporna na rozklad przez amylaze. PL PL PL

Description

Przedmiotem wynalazku jest stała doustna farmaceutyczna jednostka dawkowania w postaci tabletki o kontrolowanym uwalnianiu, sposób nadawania cechy opóźnionego uwalniania substancji czynnej i usieciowana skrobia wysokoamylozowa. Usieciowana skrobia o wysokiej zawartości amylozy zawierająca grupy funkcjonalne nadaje właściwość przedłużonego uwalniania czynnikom farmaceutycznym po sprasowaniu w postać tabletki.
Kontrolowane uwalnianie cząsteczek bioaktywnych, np. czynników farmaceutycznych, było przedmiotem szerokich badań przez ostatnią połowę dwudziestego stulecia. Kontrolowane uwalnianie czynników farmaceutycznych jest bardzo istotne dla zastosowań biofarmaceutycznych. Długo działające dawki różnych leków są obecnie osiągalne, pozwalając na tryb podawania raz lub dwa razy dziennie, podczas gdy postacie o natychmiastowym uwalnianiu wymagały podawania wielokrotnego i czasem nie praktycznego. Skuteczne tryby dawkowania z powolnym uwalnianiem okazały się lepsze pod względem użyteczności dla pacjenta, a zatem miały polepszoną skuteczność w stosunku do postaci o natychmiastowym uwalnianiu.
Istnieje kilka typów polimerów, które stosuje się jako matryce do powolnego uwalniania leków. Tak więc, opisuje się materiały polimerowe, takie jak chlorek poliwinylu, polietylen, poliamidy, etylocelulozę, silikon, poli(hydroksyetylometakrylan), inne kopolimery akrylowe, kopolimery poliwinylooctanchlorek poliwinylu i inne polimery, jako odpowiednie matryce do wytwarzania tabletek (patrz 2,987,335,- oraz Pharm. Acta Helv., (1980), 55:174-182, Salomon i in.). Polisacharydy stosuje się szeroko w dziedzinie farmaceutycznego, chemicznego i biochemicznego dostarczania leku. Tę rodzinę naturalnych polimerów stosuje się w obszarze otoczek kontrolowanego uwalniania, matryc, nośników makromolekularnych i nośników ulegających rozkładowi biologicznemu. Jednym z najczęstszych problemów związanych ze stosowaniem polisacharydów, takich jak skrobia, jako czynników dostarczania leków, jest ich podatność na rozkład przez polisacharydazy jelitowe, takie jak a-amylaza. Opisano stosowanie polisacharydów w dostarczaniu leku do okrężnicy (Critical Reviews™ w Therapeutic Drug Carriers Systems, 13 (3&4) : 185-223 (1996).
Jednakże skrobia jest jednym z najatrakcyjniejszych biopolimerów do stosowania jako czynnik dostarczania leku, ponieważ można ją wytwarzać masowo z dużą czystością i bardzo ekonomiczną ceną. Ostatnio, w celu zastosowania amylozy w dziedzinie kontrolowanego uwalniania, wytworzono chemicznie modyfikowaną amylozę, przez usieciowanie amylozy w stanie żelu, jak opisano w opisie patentowym Stanów Zjednoczonych Ameryki nr 5456921.
Amyloza jest substancją naturalną, otrzymywaną ze skrobi. Jest ona zasadniczo liniowym, nierozgałęzionym polimerem jednostek glukopiranozowych z wiązaniami a-D-(1-4). W skrobi, amylozie towarzyszy zwykle amylopektyna, która jest rozgałęzionym polimerem poliglukozowym, ze znaczną częstotliwością punktów rozgałęzień w oparciu o wiązania a-(1-6)-glukozydowe.
Usieciowana amyloza (CLAm) jest zaróbką do kontrolowanego uwalniania leków w stałych postaciach dawkowania leków. CLAm wytwarza się przez reakcję amylozy z odpowiednim czynnikiem sieciującym w środowisku zasadowym. Można uzyskać różny stopień usieciowania (CLAx) przez zmianę udziału czynnika sieciującego, takiego jak epichlorohydryna, wobec amylozy w naczyniu reakcyjnym, gdzie x oznacza ilość (g) czynnika sieciującego użytego do usieciowania 100 g amylozy (to jest CLAx z x = 0, 6, 11, 15 lub 30).
Tabletki CLAm wytwarza się przez bezpośrednie prasowanie isą one bardzo odporne na nacisk mechaniczny w stanie suchym. Po umieszczeniu w zetknięciu z płynami wodnymi, woda dyfunduje do matrycy CLAm, tworząc następnie warstwę żelu. Postępujące wchłanianie wody prowadzi do istotnego spęcznienia matrycy. Przy stopniu usieciowania niższym od 11, spęczniała matryca polimeryczna nie podlega jakiejkolwiek erozji podczas doświadczeń in vitro prowadzonych przy nieobecności amylazy. Amylaza, znajdująca się w ludzkiej dwunastnicy katalizuje hydrolizę amylozy, drastycznie zmniejszając jej właściwości opóźnionego uwalniania.
W związku z tym, byłoby pożądane dostarczenie systemu powolnego uwalniania, mającego większą odporność na rozkład indukowany amylazą, o całkowicie ulepszonych właściwościach opóźnionego uwalniania.
Inną cechą usieciowanej amylozy jest jej zdolność do uwalniania leku w stałym tempie, po kinetyce rzędu zerowego, tak jak opisano u S.T.P Pharma (1966), 2: 33-46 (Peppas i in.). Podejście zwane systemami „kontrolowania przez pęcznienie” składa się z polimerów szklistych, do których w stałym tempie wnika czoło wody. Poza tym czołem, polimer występuje w stanie gumowatym. Pod warunkiem,
PL 192 468 B1 że współczynnik dyfuzji leku w polimerze gumowym jest znacznie wyższy niż w polimerze szklistym, uwalnianie rzędu zerowego można osiągnąć do pewnego stopnia. Jednakże, tempo dostarczania jest stałe tylko dla ograniczonej frakcji uwalniania, zwykle około 60% całkowitej ilości zawartego leku, i wymaga niskiego początkowego stężenia leku.
Badania dyfrakcji promieni rentgenowskich pokazują różne postacie morfologiczne dla amylozy, w korelacji z jej pochodzeniem, sposobem wytworzenia lub stanem uwodnienia (French D. - „Organization of starch granules” - w Starch: Chemistry and Technology [Whistler R., L., BeMiller J., N. i Pachall E.F., wydawcy], Acad.Press, 1984). Struktury amylozy typu A i B opierają się o podwójne helisy ułożone w równoległe nici lub są antyrównolegle upakowane, przy czym poszczególne nici występują w prawoskrętnej sześciokrotnej konformacji helikalnej (Wu H.C. i Sarko A., Carbohydr. Res., 61: 7-25, 1978). Amyloza A zawiera 8 cząsteczek H2O, a amyloza B zawiera 36 cząsteczek H2O na elementarną jednostkę komórkową. Amylozę V wykonuje się z pojedynczych łańcuchów heliksu i istnieje w postaci kompleksów z małymi cząsteczkami organicznymi, wodą lub jodem. Nawet jeśli wnętrze kanału heliksu amyloz V jest przede wszystkim hydrofobowe, znaleziono wodę wewnątrzhelikalną w postaciach bezwodnych (Va) jak również w uwodnionych (Vh). Niektóre wewnątrzcząsteczkowe wiązania wodorowe tworzą się poprzez międzywęzłowe cząsteczki wody. Sugerowało to, że obecność zasadniczej ilości czynnika kompleksującego (np. etanolu) może w głównej mierze stabilizować pojedyncze helisy amylozy, podczas gdy przewaga wody może indukować zmiany konformacyjne, prowadzące do tworzenia się helis podwójnych (Buleon A., Duprat F., Booy F.P. i Chanzy H., Carbohydr. Polymer, A: 61-173, 1984). Wszystkie postacie amylozy stają się typu B w fazie żelu (Wu H.C. i Sarko Carbohydr. Res., 61: 7-25, 1978); zmiana wewnętrzna struktur morfologicznych prowadzi do osiągania bardziej stabilnej postaci podwójnego heliksu z odpowiadającymi cząsteczkami wody.
W związku z tym, byłoby pożądane dostarczenie systemu powolnego uwalniania po kinetyce rzędu zerowego i pozwalającego na kontrolowane uwalnianie leku w stałym tempie aż do uwolnienia całego leku, bez względu na stężenie leku w systemie.
Wynalazek dotyczy stałej doustnej farmaceutycznej jednostki dawkowania w postaci tabletki o kontrolowanym uwalnianiu zawierająca czynną substancję farmaceutyczną, nośnik i/lub substancje pomocnicze według wynalazku zawiera mieszankę 0,01-80% wagowych suchej, sproszkowanej czynnej substancji farmaceutycznej i 20-99,99% wagowych suchej sproszkowanej wysokoamylozowej skrobi, przy czym wysokoamylozowa skrobia składa się z mieszaniny 10-60% wagowych amylopektyny i 40-60% wagowych amylozy, przy czym wysokoamylozowa skrobia jest skrobią zżelowaną, którą następnie kowalencyjnie usieciowano z użyciem czynnika kowalencyjnie sieciującego, przy czym to sieciowanie przeprowadzono stosując 0,1-30 g czynnika sieciującego na 100 g wysokoamylozowej skrobi, a jednostka dawkowania jest odporna na rozkład przez amylazę.
W jednostce dawkowania według wynalazku, korzystnie, czynnikiem kowalencyjnie sieciującym jest 2,3-dibromopropanol, epichlorohydryna, trimetafosforan sodu, liniowe mieszane bezwodniki kwasu octowego i di- lub trizasadowych kwasów karboksylowych, winylosulfon, diepoksydy, chlorek cyjanurowy, heksahydro-1,3,5-trisakryloilo-s-triazyna, diizocyjanian heksametylenu, 2,4-diizocyjanian toluenu, N,N-metylenobisakrylamid, N,N'-bis(hydroksymetylo)etyleno-mocznik, fosgen, tripolifosforan, mieszane bezwodniki kwasu węglowokarboksylowego, imidazolidy kwasów węglowego i karboksylowego wielozasadowego, sole imidazoliowe kwasów karboksylowych wielozasadowych, pochodne guanidynowe kwasów wielokarboksylowych oraz estry kwasu propanowego.
W jednostce dawkowania według wynalazku, korzystnie, czynną substancją farmaceutyczną jest chlorowodorek pseudoefedryny.
W jednostce dawkowania według wynalazku, korzystnie, czynną substancją farmaceutyczną jest acetaminofen.
W jednostce dawkowania według wynalazku, korzystnie, czynnikiem kowalencyjnie sieciującym jest epichlorohydryna.
W jednostce dawkowania według wynalazku, korzystnie, czynnikiem kowalencyjnie sieciującym jest trimetafosforan sodu.
Jednostka dawkowania według wynalazku, korzystnie, dodatkowo zawiera polisacharyd lub poliol.
Jednostka dawkowania według wynalazku, korzystnie, jako polisacharyd zawiera b-(1-3)glikan, gumę ksantanową, gumę akacjową lub gumę guarową.
Jednostka dawkowania według wynalazku, korzystnie, jako poliol zawiera poli(alkohol winylowy).
Wynalazek dotyczy także sposobu nadawania cechy opóźnionego uwalniania czynnej substancji farmaceutycznej, który według wynalazku polega na tym,
PL 192 468 B1 (a) że dostarcza się czynnej substancji farmaceutycznej w suchej sproszkowanej postaci; i (b) czynną substancję farmaceutyczną miesza się z proszkiem zawierającym wysokoamylozową skrobię, przy czym wysokoamylozowa skrobia zawiera mieszaninę 10-60% wagowych amylopektyny i 40-60% wagowych amylozy, przy czym ta wysokoamlozowa skrobia została kowalencyjnie usieciowana z czynnikiem sieciującym, które to sieciowanie przeprowadzono z 0,1 - 30 g czynnika sieciującego na 100 g wysokoamylozowej skrobi; i (c) otrzymaną mieszankę sprasowuje się z wytworzeniem tabletki.
W sposobie według wynalazku, korzystnie, w etapie (b) miesza się czynną substancję farmaceutyczną w ilości 0,01-80% wagowych z 20-99,99% wagowych proszku zawierającego usieciowaną skrobię wysokoamylozową.
W sposobie według wynalazku, korzystnie, jako czynnik sieciujący stosuje się trimetafosforan sodu.
W sposobie według wynalazku, korzystnie, etap (b) prowadzi się za pomocą 0,1-30,0 g trimetafosforanu sodu na 100 g wysokoamylozowej skrobi.
Dalszym aspektem wynalazku jest stała doustna farmaceutyczna jednostka dawkowania w postaci tabletki o kontrolowanym uwalnianiu zawierająca czynną substancję farmaceutyczną, nośnik i/lub substancje pomocnicze, które według wynalazku zawiera (a) czynną substancję farmaceutyczną;
(b) wysokoamylozową skrobię, która składa się z 10-60% wagowych amylopektyny i 40-90% wagowych amylozy;
(c) oraz polisacharyd lub poliol;
przy czym ta wysokoamylozowa skrobia została zżelowana i zżelowana wysokoamylozowa skrobia i polisacharyd lub poliol zostały wspólnie kowalencyjnie usieciowane z użyciem czynnika kowalencyjnie sieciującego, które to sieciowanie przeprowadzono stosując 0,1-30 g czynnika sieciującego na 100 g wysokoamylozowej skrobi.
W jednostce dawkowania według wynalazku, korzystnie, polisacharydem jest b -(1-3)glikan, guma ksantanowa, guma akacjowa lub guma guarowa.
W jednostce dawkowania według wynalazku, korzystnie, poliolem jest poli(alkohol winylowy).
W jednostce dawkowania według wynalazku, korzystnie, czynnikiem kowalencyjnie sieciującym jest 2,3-dibromopropanol, epichlorohydryna, trimetafosforan sodu, liniowe mieszane bezwodniki kwasu octowego i di- lub trizasadowych kwasów karboksylowych, winylosulfon, diepoksydy, chlorek cyjanurowy, heksahydro-1,3,5-trisakryloilo-s-triazyna, diizocyjanian heksametylenu, 2,4-diizocyjanian toluenu, N,N-metylenobisakrylamid, N,N'-bis(hydroksymetylo)etylenomocznik, fosgen, tripolifosforan, mieszane bezwodniki kwasu węglowokarboksylowego, imidazolidy kwasów węglowego i karboksylowego wielozasadowego, sole imidazoliowe kwasów karboksylowych wielozasadowych, pochodne guanidynowe kwasów wielokarboksylowych oraz estry kwasu propanowego.
W jednostce dawkowania według wynalazku, korzystnie, czynną substancją farmaceutyczną jest chlorowodorek pseudoefedryny.
W jednostce dawkowania według wynalazku, korzystnie, czynną substancją farmaceutyczną jest acetaminofen.
W jednostce dawkowania według wynalazku, korzystnie, czynnikiem kowalencyjnie sieciującym jest epichlorohydryna.
W jednostce dawkowania według wynalazku, korzystnie, czynnikiem kowalencyjnie sieciującym jest trimetafosforan sodu.
Dalszym aspektem wynalazku jest sposób nadawania cechy opóźnionego uwalniania czynnej substancji farmaceutycznej, który według wynalazku polega na tym, że (a) dostarcza się czynnej substancji farmaceutycznej w suchej sproszkowanej postaci;
(b) czynną substancję farmaceutyczną miesza się z proszkiem zawierającym wysokoamylozową skrobię, przy czym wysokoamylozowa skrobia stanowi mieszaninę 10-60% wagowych amylopektyny i 40-60% wagowych amylozy, przy czym ta wysokoamylozowa skrobia została zżelowana i następnie kowalencyjnie usieciowana wspólnie z polisacharydem lub poliolem i czynnikiem sieciującym, które to sieciowanie przeprowadzono z 0,1-30 g czynnika sieciującego na 100 g wysokoamylozowej skrobi; i (c) otrzymaną mieszankę sprasowuje się z wytworzeniem tabletki.
W sposobie według wynalazku, korzystnie, w etapie (b) polisacharyd lub poliol miesza się z wysokoamylozową skrobią przed usieciowaniem wysokoamylozowej skrobi.
W sposobie według wynalazku, korzystnie, jako poliol stosuje się poli(alkohol winylowy).
PL 192 468 B1
W sposobie według wynalazku, korzystnie, jako polisacharyd stosuje się b -(1-3)glikan, gumę ksantanową, gumę akacjową lub gumę guarową.
W sposobie według wynalazku, korzystnie, w etapie (b) czynną substancję farmaceutyczną w ilości 0,01-80% wagowych miesza się z 20-99,99% wagowymi proszku zawierającego usieciowaną skrobię wysokoamylozową, przy czym procenty podano w przeliczeniu na tabletkę.
W sposobie według wynalazku, korzystnie, jako czynnik sieciujący stosuje się trimetafosforan sodu.
W sposobie według wynalazku, korzystnie, etap (b) przeprowadza się stosując 0,1-30,0 g trimetafosforanu sodu na 100 g wysokoamylozowej skrobi.
Dalszym aspektem wynalazku jest sposób nadawania cechy opóźnionego uwalniania czynnej substancji farmaceutycznej, który według wynalazku polega na tym, że (a) dostarcza się czynnik farmaceutyczny w sproszkowanej postaci;
(b) czynną substancję farmaceutyczną miesza się z proszkiem zawierającym wysokoamylozową skrobię, przy czym wysokoamylozowa skrobia stanowi mieszaninę 10-60% wagowych amylopektyny i 40-60% wagowych amylozy, przy czym ta wysokoamylozowa skrobia została zżelowana i następnie kowalencyjnie usieciowana z zastosowaniem czynnika kowalencyjnie sieciującego, które to sieciowanie przeprowadzono z 0,1 -30 g czynnika sieciującego na 100 g wysokoamylozowej skrobi;
(c) proszek otrzymany w etapie (b) miesza się polisacharydem lub poliolem; i (d) otrzymaną mieszankę sprasowuje się z wytworzeniem tabletki.
W sposobie według wynalazku, korzystnie, jako poliol stosuje się poli(alkohol winylowy).
W sposobie według wynalazku, korzystnie, jako polisacharyd stosuje się b -(1-3)glikan, gumę ksantanową, gumę akacjową lub gumę guarową.
W sposobie według wynalazku, korzystnie, jako czynnik sieciujący stosuje się trimetafosforan sodu.
W sposobie według wynalazku, korzystnie, etap (b) przeprowadza się stosując 0,1-30,0 g trimetafosforanu sodu na 100 g wysokoamylozowej skrobi.
W sposobie według wynalazku, korzystnie, w etapie (b) czynną substancję farmaceutyczną w ilości 0,01-80% wagowych miesza się z 20-99,99% wagowymi proszku zawierającego usieciowaną skrobię wysokoamylozową, przy czym procenty podano w przeliczeniu na tabletkę.
Dalszym aspektem wynalazku jest usieciowana skrobia wysokoamylozowa mająca grupy funkcjonalne, wytwarzana sposobem, w którym (a) zżelowaną skrobię wysokoamylozową poddaje się reakcji z czynnikiem sieciującym, przy czym sieciuje się przy stężeniu 0,1-40 g czynnika sieciującego na 100 g wysokoamylozowej skrobi, z wytworzeniem usieciowanej amylozy;
(b) usieciowaną skrobię wysokoamylozową poddaje się reakcji z odczynnikiem przyłączającym grupy funkcjonalne przy stężeniu 75-250 g odczynnika przyłączającego grupy funkcjonalne na 100 g usieciowanej amylozy, z wytworzeniem usieciowanej amylozy mającej grupy funkcjonalne, przy czym jako odczynnik przyłączający grupy funkcjonalne stosuje się odczynnik wybrany z grupy obejmującej kwas monochlorooctowy i chlorowodorek chloroetyloaminy.
W usieciowanej skrobi wysokoamylozowej według wynalazku, korzystnie, czynnik sieciujący jest wybrany z grupy obejmującej 2,3-dibromopropanol, epichlorohydryna, trimetafosforan sodu, liniowe mieszane bezwodniki kwasu octowego i di- lub tri-zasadowych kwasów karboksylowych, winylosulfon, diepoksydy, chlorek cyjanurowy, heksahydro-1,3,5-trisakryloilo-s-triazyna, diizocyjanian heksametylenu, 2,4-diizocyjanian toluenu, N,N-metylenobisakrylamid, N,N'-bis(hydroksymetylo)etylenomocznik, fosgen, tripolifosforan, mieszane bezwodniki kwasu węglowokarboksylowego, imidazolidy kwasów węglowego i karboksylowego wielozasadowego, sole imidazoliowe kwasów karboksylowych wielozasadowych, pochodne guanidynowe kwasów wielokarboksylowych oraz estry kwasu propanowego.
W usieciowanej skrobi wysokoamylozowej według wynalazku, korzystnie, czynnikiem sieciującym jest epichlorohydryna.
W usieciowanej skrobi wysokoamylozowej według wynalazku, korzystnie, reakcję w etapie (a) prowadzi się przy stężeniu 35 g epichlorohydryny na 100 g wysokoamylozowej skrobi.
W usieciowanej skrobi wysokoamylozowej według wynalazku, korzystnie, reakcję w etapie (b) prowadzi się przy stężeniu 100 g kwasu monochlorooctowego na 100 g wysokoamylozowej skrobi.
W usieciowanej skrobi wysokoamylozowej według wynalazku, korzystnie, reakcję w etapie (b) prowadzi się przy mm stężeniu 122,5 g chlorowodorku 2-chloroetyloaminy na 100 g wysokoamylozowej skrobi.
PL 192 468 B1
Niniejszy wynalazek można zrozumieć pełniej przez odniesienie się do następujących rysunków, szczegółowego opisu i ilustrujących przykładów, które w zamierzeniu są jedynie przykładowe, nie ograniczając postaci realizacji wynalazku.
Wynalazek bliżej scharakteryzowano na rysunku, na którym:
Figury I i II ilustrują charakterystyki uwalniania tabletek usieciowanej skrobi o wysokiej zawartości amylozy, zawierającej odpowiednio acetaminofen i pseudoefedrynę. Dane wskazują, że tabletki nie są wrażliwe na rozkład enzymatyczny przez amylazę. Specyficzny rodzaj amylozy użyty w tych przykładach, zawierał co najmniej 20% amylopektyny i usieciowano go trimetafosforanem sodowym.
Figura III jest wykresem słupkowym, ukazującym objętość pęcznienia przy równowadze CLA-20 i CM-CLA-20 (sól karboksylowa i karboksylanowa) mierzoną w wodzie destylowanej w temperaturze 25°C.
Figura IV jest wykresem liniowym, ukazującym amylolizę CLA-6, CLA-20 i CM-CLA20.
Figura V jest wykresem słupkowym, ukazującym stopnie amylolizy CLA-6, CLA-35, AE-CLA-6, AE-CLA35 i CM-CLA35, jaką mierzono przez uwalnianie maltozy.
Figura VI jest wykresem liniowym, ukazującym profile kinetyki uwalniania acetaminofenu z tabletek, zawierających matryce CLA-35, CM-CLA35 lub AE-CLA-35.
Figura VII jest wykresem słupkowym, ukazującym czas uwalniania 90% acetaminofenu z tabletek, zawierających matryce CLA-35, CM-CLA35 lub AE-CLA-35.
Figura VIII jest wykresem liniowym, ukazującym procent uwalniania diklofenaku sodowego z tabletek, zawierających amylozę usieciowaną aminoetylem, którą zanurzono w buforze fosforanowym USP (pH=6,8). Symbol „-·- stosuje się do opisania danych dla buforu fosforanowego bez enzymu amylazy; symbol „-o- stosuje się do opisania danych dla buforu fosforanowego z enzymem amylazą (9000 IU/1).
Sieciowanie amylozy można przeprowadzić w sposób opisany w Biochemie 1978, 60, 535-537 (Matescu) przez reakcję amylozy z epichlorohydryną w środowisku zasadowym. W taki sam sposób można usieciować amylozę z użyciem innych czynników sieciujących, włączając, lecz bez ograniczenia, 2,3-dibromopropanol, epichlorohydrynę, trimetafosforan sodu, liniowe mieszane bezwodniki kwasu octowego i di- lub trizasadowych kwasów karboksylowych, winylosulfon, diepoksydy, chlorek cyjanurowy, heksahydro-1,3,5-trisakryloilo-s-triazynę, diizocyjanian heksametylenu, 2,4-diizocyjanian toluenu, N,N-metylenobisakrylamid, N,N'-bis(hydroksymetylo)etylenomocznik, fosgen, tripolifosforan, mieszane bezwodniki kwasu węglowokarboksylowego, imidazolidy kwasów węglowego i karboksylowego wielozasadowego, sole imidazolowe kwasów karboksylowych wielozasadowych, pochodne guanidynowe kwasów wielokarboksylowych oraz estry kwasu propanowego.
Stwierdzono, że skrobię o wysokiej zawartości amylozy można mieszać z dodatkami przed reakcją z czynnikami sieciującymi. Otrzymany produkt jest użyteczny jako matryca do opóźnionego uwalniania czynników farmaceutycznych.
Odpowiednie czynniki, które można stosować jako dodatki do skrobi o wysokiej zawartości amylozy do opóźnionego uwalniania przed sieciowaniem skrobi o wysokiej zawartości amylozy, obejmują, lecz bez ograniczenia alkohol poliwinylowy, b-(1-3)ksylan, gumę ksantanową, gumę akacjową i gumę guarową.
Zasadniczo, skrobia o wysokiej zawartości amylozy pęcznieje w wodzie w wyniku stosowania ogólnie znanych technik żelowania, takich jak traktowanie zasadą lub ciepłem oraz, po homogenizacji, dodanie odpowiedniej ilości czynnika sieciującego. Po zasadniczej homogenizacji, środowisko reakcyjne przenosi się na łaźnię wodną i ogrzewa przez jedną godzinę w temperaturze wynoszącej od 40° do 45°C, a następnie temperaturę podnosi się od 60° do 75°C przez dodatkowy okres, wynoszący od 1do 2 godzin, po których reakcja jest zakończona. Długość okresu ogrzewania może się zmieniać, jak również ilość czynnika sieciujące użytego w reakcji.
Otrzymany materiał usieciowany przesiewa się następnie i zbiera granule o wielkości od około 25 do około 700 mm, w celu wytworzenia tabletek powolnego uwalniania według niniejszego wynalazku. Wybiera się granule o 25 do około 300 mm reprezentujące co najmniej 50% granulek, do użycia zgodnie z niniejszym wynalazkiem.
Zalecanymi polimerami usieciowanymi skrobi o wysokiej zawartości amylozy z czynnikiem sieciującym do celów niniejszego wynalazku, są te, w których użyto od około 0,1 do około 40 g czynnika sieciującego do usieciowania 100 g skrobi o wysokiej zawartości amylozy.
Nieoczekiwanie stwierdzono, że gdy mieszaninę amylozy i amylopektyny między około 10-60% amylopektyny wagowo, sieciuje się czynnikiem sieciującym, obejmującym trimetafosforan sodu, 2,3-dibromopropanol, epichlorohydrynę i epibromohydrynę lub miesza z odpowiednim polisacharydem lub poPL 192 468 B1 liolem i prasuje w tabletki, tabletki te są odporne na rozkład przez amylazę, pod warunkiem, że środek poślizgowy stosowany do tabletkowania nie jest stearynianem magnezu. Tabletki te można następnie stosować do kontrolowanego uwalniania doustnych środków farmaceutycznych. Przeciwnie, gdy przedmioty wynalazku rozprasza się w postaci proszku w środowisku amylazowym, ulegają one łatwo rozkładowi. Zatem, po umieszczeniu w tabletce, było całkowicie nieoczekiwane, że przedmioty wynalazku są stabilne wobec amylazy.
Stwierdzono także niespodziewanie, że gdy kowalentnie sieciowaną skrobię o wysokiej zawartości amylozy według wynalazku podda się ekspozycji wobec wody, tworzy ona przede wszystkim podwójny heliks podobny do postaci B amylozy. Po umieszczeniu tabletki usieciowanej skrobi o wysokiej zawartości amylozy w wodzie, na powierzchni polimeru bardzo szybko tworzy się żel. Jako, że postęp czoła żelu w kierunku środka tabletki zachodzi szybko, woda dyfunduje do polimeru. W miarę penetracji wody, gradient wody w rdzeniu progresywnie zmniejsza się, a rdzeń rozszerza. Proces ten zachodzi przez kilka godzin, aż do przekształcenia rdzenia w żel i osiągnięcia równowagi pęcznienia. W stanie żelu, usieciowana skrobia o wysokiej zawartości amylozy, która początkowo była uszeregowana głównie w stanie amorficznym w pojedyncze helisy typu V, progresywnie przyjmuje konformację podwójnych helisy typu B, tworząc trójwymiarową fizyczną sieć. Zarówno amyloza jak i PVA może przyjmować konformacje helikalne. PVA jest interesującym polimerem o zamieniających się grupach hydrofilowych (CHOH) i hydrofobowych (CH2), a w konsekwencji, zachodzi w nim pęcznienie w mniejszym stopniu niż w amylozie. W jednym aspekcie wynalazku, PVA można mieszać ze skrobią o wysokiej zawartości amylozy. Mieszaninę sieciuje się następnie i prasuje w tabletki, wykazujące właściwości opóźnionego uwalniania i odporność na rozkład przez alfa-amylazę.
Dalej nieoczekiwanie stwierdzono, że gdy usieciowaną skrobię o wysokiej zawartości amylozy modyfikuje się grupami funkcjonalnymi, np. grupami karboksymetylowymi (-CH2COOH) lub aminoetylowymi (-CH2CH2NH2), taka modyfikowana skrobia o wysokiej zawartości amylozy, po sprasowaniu w tabletki, jest niezwykle odporna na rozkład katalizowany przez amylazę, jaki występuje w ludzkiej dwunastnicy. Wynik ten jest bardzo pożądany, dlatego że wolniejsze tempo rozpuszczania daje wyższy stopień opóźnionego uwalniania czynnika farmaceutycznego z tabletki. Prowadzi to do większej korzyści leku w danej jednostce czasu, i pozwala na podawanie niższych i/lub rzadszych dawek leku w danej jednostce czasu. W związku z tym, takie tabletki, obejmujące usieciowaną skrobię o wysokiej zawartości amylozy, które modyfikuje się grupami, mającymi grupy funkcjonalne, są bardzo użyteczne do opóźnionego uwalniania doustnych czynników farmaceutycznych.
Stwierdzono, że usieciowaną skrobię o wysokiej zawartości amylozy można modyfikować grupami funkcjonalnymi przez reakcję usieciowanej skrobi o wysokiej zawartości amylozy za pomocą odczynnika przyłączającego grupy funkcjonalne. Bez wiązania się z jakąkolwiek teorią, odczynnik przyłączający grupy funkcjonalne reaguje z grupami hydroksylowymi cząsteczki skrobi, tworząc z nimi wiązania kowalentne. Generalnie, odczynnik przyłączający grupy funkcjonalne, ma wzór Y-A-COOH, Y-A-NH2, Y-A-NR3+X-, Y-A-SH, Y-A-SO3H i Y-A-OH, gdzie A oznacza cząsteczkę zdolną do tworzenia wiązania kowalentnego z grupą hydroksylową skrobi, Y oznacza grupę opuszczającą, która odchodzi podczas tworzenia A wiązania kowalentnego z grupą hydroksylową skrobi, a R oznacza grupę alkilową lub atom wodoru. Odpowiednie grupy A obejmują lecz bez ograniczenia -alkil-, -C(O)alkil-, -C(O)N(H)alkil-, -C(O)Oalkil- i temu podobne. W przypadku Y-A-OH, A oznacza grupę aromatyczną. Korzystnie, odczynnikiem przyłączającym grupę funkcjonalną jest kwas monochlorooctowy lub chlorowodorek 2-chloroetyloaminy.
Generalnie, reakcja między usieciowaną skrobią o wysokiej zawartości amylozy i odczynnikiem przyłączającym grupę funkcjonalną prowadzi się przy stężeniu, wynoszącym około 75 g do około 250 g odczynnika przyłączającego grupy funkcjonalne na 100 g usieciowanej skrobi o wysokiej zawartości amylozy, w obecności wodnego roztworu zasady, np. 2-12N NaOH. Reakcję prowadzi się korzystnie w podwyższonej temperaturze, np. około 50°C do około 100°C.
Jeśli odczynnikiem przyłączającym grupy funkcjonalne jest kwas monochlorooctowy, korzystnie stosuje się stężenie około 75 g do około 250 g kwasu monochlorooctowego na 100 g usieciowanej skrobi o wysokiej zawartości amylozy. Jeśli odczynnikiem przyłączającym grupy funkcjonalne jest chlorowodorek 2-chloroetyloaminy, korzystnie stosuje się stężenie około 100 g do około 150 g chlorowodorku 2-chloroetyloaminy na 100 g usieciowanej skrobi o wysokiej zawartości amylozy. Zazwyczaj, odczynnik przyłączający grupy funkcjonalne przyłączać będzie około 0,4 do około 1 milirównoważnika grupy funkcjonalnej/g usieciowanej skrobi o wysokiej zawartości amylozy.
PL 192 468 B1
Stwierdzono, że modyfikowana usieciowana skrobia o wysokiej zawartości amylozy według niniejszego wynalazku jest użyteczna jako nośnik polimerowy dla czynników farmaceutycznych, które podaje się doustnie, ze względu na ich wysoką odporność na rozkład przez amylazę oraz polepszone właściwości rozpuszczalności. Taka modyfikowana usieciowana skrobia o wysokiej zawartości amylozy nadaje pożądane właściwości powolnego uwalniania tabletkom do podawania doustnego, zawierającym czynniki farmaceutyczne. W związku z tym, wynalazek zastrzega stałą doustną farmaceutyczną jednostkę dawkowania o kontrolowanym uwalnianiu. Taka jednostka dawkowania występuje korzystnie w postaci tabletki, chociaż rozważa się także kapsułki, pastylki i kołaczyki. Stała doustna farmaceutyczna jednostka dawkowania o kontrolowanym uwalnianiu według niniejszego wynalazku, zawiera mieszaninę około 0,01% do około 80% wagowych czynnika farmaceutycznego, oraz około 20% do około 99,99% wagowych modyfikowanej usieciowanej skrobi o wysokiej zawartości amylozy opisanej powyżej. Korzystnie, jednostka dawkowania obejmuje około 5% około 20% wagowych czynnika farmaceutycznego. Czynnik farmaceutyczny korzystnie występuje w postaci suchego proszku.
Taki czynnik farmaceutyczny jest jakimkolwiek lekiem, który można podawać doustnie. Korzystnie, czynnikiem farmaceutycznym jest chlorowodorek pseudoefedryny, acetaminofen lub diklofenak sodowy, werapamil, glipizyd, nifedypina, felodypina, batahistyna, (R) -albuterol, akrywastyna, omeprazol, mizoprostol, tramadol, oksybutynina i ich sole. Oprócz tego, czynnikiem farmaceutycznym może być środek przeciwgrzybowy, taki jak ketokonazol lub środek przeciwbólowy, taki jak kwas acetylosalicylowy, acetaminofen, paracetamol, ibuprofen, ketoprofen, indometacyna, diflunizol, naproksen, ketorolak, diklofenak, tolmetyna, sulindak, fenacetyna, piroksykam, kwas mefamanowy, dekstrometorfan, inne leki niesteroidowe przeciwzapalne, łącznie z salicylanami, ich farmaceutycznie dopuszczalne sole i ich mieszaniny.
Po wymieszaniu czynnika farmaceutycznego i modyfikowanej usieciowanej skrobi o wysokiej zawartości amylozy, generalnie środkami konwencjonalnymi, otrzymaną mieszankę prasuje się w postać tabletki. Korzystnie, ciśnienie stosowane do prasowania mieszaniny, jest równe lub przekracza 15,7 MPa (0,16 T/cm2).
Niniejszy wynalazek łatwiej będzie zrozumieć przez odniesienie do następujących przykładów, które podaje się w celu zilustrowania wynalazku, a nie w celu ograniczenia jego zakresu.
Przykłady
Część doświadczalna
Materiały i metody
Materiały:
- Skrobia o wysokiej zawartości amylozy: proszek Hylon VII, nabyta od National Starch (A);
- Proszki PVA (Aldrich) o różnych masach cząsteczkowych (9000-146000 Da), oraz stopień hydrolizy im 60-89% (stopień hydrolizy oznacza liczbę grup octanowych odchodzących po hydrolizie octanu poliwinylu (PVAc), aby wytworzyć PVA, obliczoną w procentach z początkowej liczby octanowych grup funkcjonalnych);
- Epichlorohydryna, trimetafosforan sodu (Sigma Chem Co.),
- a-amylaza (EC 3.2.1.1) z rodzaju Bacillus od Sigma Chemical Co.,
- lodowaty kwas octowy, monozasadowy i dizasadowy fosforan sodu (od Anachemia);
- NaOH i aceton (jakość ACS);
Synteza mieszaniny usieciowane polimery-usieciowana skrobia o wysokiej zawartości amylozy (CLA) oraz mieszaniny wspólnie sieciowanych skrobi o wysokiej zawartości amylozy-PVA
Synteza usieciowanej skrobi o wysokiej zawartości amylozy CLA-0, CLA-3, CLA-6, CLA-8 i CLA-14)
Do każdej syntezy, wymieszano ilość 300 g proszku skrobi o wysokiej zawartości amylozy i objętości 1,75 l 0,85 N wodorotlenku sodu (temperatura 55°C) w zbiorniku mieszalnika obiegowego HOBART® N-50, utrzymując temperaturę 50°C w celu zżelowania. Po 20 minutach homogenizacji, dodano odpowiednio objętość 0ml, 7,60 ml, 15,24 ml, 20,30 ml lub 38,10 ml epichlorohydryny (odpowiadające wymaganemu stopniowi usieciowania) do każdej porcji syntezy. Przykładowo, dla CLA-6 dodano objętość 15,24 ml epichlorohydryny, odpowiadającej 18 g (d=1,19 g/ml). Każdą mieszaninę reakcyjną ponownie homogenizowano przez 20 minut. Reakcję kontynuowano przez okres do 1 godziny, w warunkach średniego ogrzewania (temperatura 40-70°C). Mieszaninę zobojętniono kwasem octowym, a następnie dokładnie przemyto na lejku Buchnera roztworem wody/acetony (15:85 objętościowo) w pierwszym etapie, a potem wodą/acetonem (60:40). CLA wysuszono na koniec acetonem, a następnie wystawiono na powietrze na 24 godziny. Można także stosować inne procedury suszenia
PL 192 468 B1 (suszenie z rozpylaniem, liofilizacja). Suchy polimer przesiano (otwory sita 75-300 μm) i przechowywano w temperaturze pokojowej.
Inne polimery CLA o różnym stopniu usieciowania można otrzymać w podobnych warunkach, biorąc pod uwagę, że dodane ilości powinny wynosić „x” g odczynnika sieciującego/100 amylozy.
Synteza polimery ko-CL(A-PVA), synteza polimeru ko-CL(A-PVA)-6, przy różnych stosunkach
A/PVA (3/1; 1/1; 1/3)
Stopień usieciowania utrzymywano stały (clx=6) i wytworzono polimery amyloza/PVA o początkowych stosunkach: A/PVA - (3/1), odpowiadający 225 g A /75 g PVA; A/PVA = (1/1, odpowiadający 150 g A /150 g/PVA; A/PVA - (1/3), odpowiadający 75 g A /225 g PVA.
Dla każdej syntezy, wymaganą ilość proszku PVA (MW 9,000-146,000, 87-89% stopnia hydrolizy) zawieszono w 1,5 N wodorotlenku sodu i ogrzewano w temperaturze 95°C przy silnym mieszaniu. Po tym jak system stał się makroskopowo homogeniczny, temperaturę obniżono do 50°C. Oddzielnie, dla każdej syntezy, odpowiadającą ilość skrobi o wysokiej zawartości amylozy (Hylon VII) zawieszono w 750 ml zimnej wody destylowanej w mieszalniku HOBART® i ogrzewano przy mieszaniu, w temperaturze 50°C. Następnie, do odpowiadającej zawiesiny skrobi o wysokiej zawartości amylozy dodano powoli roztwór PVA/NaOH, przy ciągłym mieszaniu, i system utrzymywano przez 20 minut w kontrolowanej temperaturze (50-55°C) w celu żelowania skrobi o wysokiej zawartości amylozy.
Synteza CL(A-PVA)-6 z użyciem epichlorohydryny jako czynnika sieciującego
Dla każdej żelowanej partii (o temperaturze 40-60°C) dodano ilość 18 g epichlorohydryny (clx=6). Po 1 godzinie w temperaturze 50°C, mieszaninę zobojętniono 0,75 M roztworem kwasu octowego, a potem przemyto i wysuszono acetonem. Można także stosować inne procedury suszenia (suszenie przez rozpylanie, liofilizacja). Proszki przesiano i utrzymywano w ciemnych butelkach w temperaturze pokojowej.
Synteza CL(A-PVA)-6 z użyciem trimetafosforanu sodu (STMP) jako czynnika sieciującego
Żelowaną partię potraktowano ilością 18 g STMP. Po 1 godzinie w temperaturze 50°C mieszaninę zobojętniono 0,75 M roztworem kwasu octowego, a potem przemyto i wysuszono acetonem. Można także stosować inne procedury suszenia (suszenie przez rozpylanie, liofilizacja). Proszki przesiano i utrzymywano w ciemnych butelkach w temperaturze pokojowej.
Synteza CLA-20 z użyciem epichlorohydryny jako czynnika sieciującego
150 g amylozy zawieszono w 750 ml zimnej wody destylowanej, w reaktorze. Zawiesinę ogrzano do temperatury 50°C przy mieszaniu i powoli (przez około 8 minut) dodano objętość 1 litra 1,5 N NaOH (60 g/l) do zawiesiny amylozy. Środowisko utrzymywano przez następne 20 minut w temperaturze 50°C przy mieszaniu, w celu żelowania. Następnie powoli (przez 5 minut) dodano w stałym tempie ilość 25,4 ml epichlorohydryny (d=1,19 g/ml). Środowisko reakcyjne utrzymywano przy mieszaniu w temperaturze 50°C przez 1 godzinę, aby uzyskać usieciowanie.
Zobojętnienie osiągnięto przez dodanie do środowiska reakcyjnego 2,5 litra wody destylowanej. Następnie roztwór kwasu octowego (88 ml lodowatego kwasu octowego w 600 ml wody destylowanej, uzupełnionego następną objętością 1050 ml wody destylowanej wstępnie ogrzanej do temperatury 50°C) wprowadzono powoli do zawiesiny CLA-20 przy mieszaniu, aż do ostatecznego pH, wynoszącego 6,6-7,0. Potem zawiesinę powoli ochłodzono do temperatury 20°C.
Wytworzono roztwór aceton-woda (85/15 objętościowo) i dodano powoli 1 litr tego roztworu, przy mieszaniu, do 1 litra zawiesiny CLA-20. Środowisko to pozostawiono, przy mieszaniu, w temperaturze 4°C na 20 minut i przesączono. Żel pozostały na filtrze zawieszono ponownie w 1 litrze roztworu aceton/woda (60/40 objętościowo), utrzymując przez 20 minut przy mieszaniu w temperaturze 4°C, i przesączono. To przemywanie mieszaniną aceton/woda (60/40 objętościowo) powtórzono jeszcze dwukrotnie.
Żel otrzymany z ostatniego filtrowania odzyskano i zawieszono ponownie w 400 ml acetonu. Środowisko utrzymywano przez 20 minut przy mieszaniu w temperaturze 4°C, i przesączono. Operację tę powtórzono jeszcze dwa razy (lecz bez utrzymywania zawiesiny przez 20 minut przy mieszaniu w temperaturze 4°C) i przesączono. Otrzymany proszek wysuszono przez odparowanie acetonu, a następnie przesiano, zachowując frakcje 300-500 mm do następnych etapów.
Synteza karboksymetylocelulozy (CM-CLA-20) g CLA-20 zawieszono w 400 ml wody destylowanej, w celu spęcznienia. Zawiesinę przesączono, odzyskano żel i zawieszono w 200 ml 10 M NaOH. Następnie do zasadowej zawiesiny CLA-20 dodano 20 g kwasu monochlorooctowego (rozpuszczonego w 20-25 ml wody destylowanej). Środowi10
PL 192 468 B1 sko reakcyjne homogenizowano przez 20 minut na łaźni lodowej, a potem umieszczono w łaźni wodnej o temperaturze 75°C, aby uzyskać karboksymetylowanie.
Po zakończeniu reakcji, zawiesinę przesączono, zawieszono ponownie w wodzie destylowanej i przesączono ponownie na lejku Buchnera, mierząc pH przesączu. Żel przemywano na filtrze do uzyskania pH 6,5-7,0. Następnie, żel zawieszono ponownie w 1 litrze wody destylowanej i do zawiesiny CM-CLA-20 dodano powoli i przy mieszaniu 1 litr roztworu aceton/woda (85/15 objętościowo). Środowisko utrzymywano przy mieszaniu w temperaturze 4°C przez 20 minut, i przesączono. Żel pozostały na filtrze zawieszono ponownie w 0,5 litra roztworu aceton/woda (60/40 objętościowo), utrzymywano przez 20 minut przy mieszaniu w temperaturze 4°C i przesączono. To przemywanie acetonem/wodą powtórzono jeszcze dwa razy.
Żel otrzymany z ostatniej filtracji odzyskano, zawieszono ponownie w 400 ml acetonu, utrzymywano przez 20 minut przy mieszaniu w temperaturze 4°C, i przesączono. Operację tę powtórzono jeszcze dwa razy (lecz bez utrzymywania zawiesiny przez 20 minut przy mieszaniu w temperaturze 4°C) i przesączono. Otrzymany proszek CM-CLA-20 ostatecznie wysuszono przez odparowanie.
Stopień substytucji grup hydroksylowych oceniono przez potencjometryczne miareczkowanie grup hydroksylowych (urządzenie analizator Corning-ion 250) za pomocą 0,1 NaOH.
Stopień substytucji grup hydroksylowych w CM-CLA-20 oceniono na podstawie pojemności wymiany jonowej pochodnej CM-. Otrzymana pojemność wynosiła 0,4-1 milirównoważnika/g - wartość porównywalna z pojemnościami innych wymienników jonowych, (to jest CM-metyloceluloza).
Właściwości hydrofilowe CLA-20 i CM-CLA-20
Jednym z końcowych etapów w syntezie CM-CLA-20 jest zobojętnianie zawiesiny polimerowej. Można to przeprowadzić przy użyciu kwasu (to jest kwasu octowego lub HCl), prowadząc do CM-CLA, mającej grupy karboksylowe w formie protonowanej (-COOH), lub przez dokładne przemywanie wodą, uzyskując CM-CLA-20, mającą grupy funkcyjne karboksylanowe w postaci soli karboksylanowej (-COONa+). Postać soli karboksylanowej jest bardzo hydrofilowa, tworząc rozprzestrzenioną sieć. Bez wiązania się z żadną szczególną teorią, Zgłaszający uważa, że polimery, które zapewniają wysoką objętość pęcznienia, mają niższą lepkość in vivo, co pozwala na zwiększoną dyfuzję wody i substancji rozpuszczonych z matrycy polimery do dwunastnicy. Różnice uwodnienia między solą i postaciami protonowanymi CM-CLA-20, przedstawiono wyraźnie w fig. III.
Po przesączeniu, postać protonowana utworzyła jednorodną zawiesinę o średniej retencji wody. Przemywanie 0,5 M NaCl dało bardzo małą redukcję objętości. Po utworzeniu soli, materiał żelowy o dużej objętości przesączono, otrzymano spęcznienie około trzy razy większe (fig. III). Bez wiązania się z jakąkolwiek szczególną teorią, zatrzymano więcej wody solwatacyjnej (uwodnienie kationów Na+ formy karboksylanowej) oprócz cząsteczek wody zatrzymanej w sieci przez osiągalne uwodnienie grup hydroksylowych. Wtym wypadku, przemywanie 0,5 M NaCl spowodowało zmniejszenie o około 50% pęczenienia, lecz objętość końcowa tej formy karboksylanowej była wciąż wyższa od formy protonowanej. Przez przemywanie 0,5 M NaCl, część wody uwięzionej w sieci była prawdopodobnie usunięta przez osmozę.
Podatność na amylolizę CLA-6, CLA-20 i CM-CLA-20
Amylolizę oceniono ilościowo z ilości maltozy uwolnionej przez amylolizę trzech substratów (CLA-6, CLA-20 i CM-CLA-20) metodą Noelting i Bernfeld (1948) przy użyciu kwasu dinitrosalicylowego (DNS) jako czynnika mierzącego redukcję. 20 mg każdego substratu w postaci proszku poddano pęcznieniu i inkubowano przez 3 minuty w temperaturze 25°C w 2 ml buforu fosforanowego (0,02 M), zawierającego 13 EU a-amylazy trzustkowej.
CM-CLA-20 wykazywała wyższą stabilność na amylolizę niż CLA-20 (fig. LV). Substratem, wykazującym najwyższą podatność na amylazę była CLA-6. Bez wiązania się z jakąkolwiek szczególną teorią, okazuje się, że wyższy stopień usieciowania nadaje wyższą stabilność wobec amylolizy. Ponadto, obecność grup karboksylowych (CM) wydaje się nawet bardziej ograniczać amylolizę. Bez wiązania się z jakąkolwiek szczególną teorią, grupy CM mogą blokować dostęp a-amylazy (mimo faktu, że jest ona endo-amylazą) do podpory CM-CLA przez przeszkodę steryczną lub interakcje jonowe.
Synteza usieciowanej amylozy CLA-35
150 g amylozy zawieszono w 375 ml zimnej wody destylowanej w mieszalniku HOBART® (4 litry). Zawiesinę ogrzewano do temperatury 50°C przy mieszaniu i powoli (przez około 8 minut) do zawiesiny amylozy dodawano objętość 500 ml 1,5 M NaOH (60 g/l). Środowisko utrzymywano przez następne 20 minut w temperaturze 50°C przy mieszaniu, w celu żelowania. Następnie poPL 192 468 B1 woli (przez 5 minut) dodano w stałym tempie 44,2 ml epichlorohydryny (d=1,19 g/ml). Środowisko reakcyjne utrzymywano przy mieszaniu w temperaturze 50°C przez l godzinę, aby uzyskać usieciowanie.
Zobojętnienie osiągnięto najpierw przez dodanie do środowiska reakcyjnego 570 ml wody destylowanej. Potem, roztwór kwasu octowego (85 ml lodowatego kwasu octowego/17,4 M/ w 600 ml wody destylowanej, uzupełnionego następną objętością 1050 ml wody destylowanej wstępnie ogrzanej do temperatury 50°C) wprowadzono do zawiesiny CLA-35 przy mieszaniu, aż do ostatecznego pH, wynoszącego 6,8-7,0. Potem zawiesinę powoli ochłodzono do temperatury 20°C.
Wytworzono 4 litry roztworu aceton-woda (85/15 objętościowo) i dodano powoli 1litr tego roztworu, przy mieszaniu, do 1 litra zawiesiny CLA-35. Środowisko to pozostawiono, przy mieszaniu, w temperaturze 4°C na 20 minut i przesączono. Żel pozostały na filtrze zawieszono ponownie w 1 litrze roztworu aceton/woda (60/40 objętościowo), utrzymując przez 20 minut przy mieszaniu w temperaturze 4°C,i przesączono. To przemywanie mieszaniną aceton/woda (60/40 objętościowo) powtórzono jeszcze dwukrotnie.
Żel otrzymany z ostatniego filtrowania odzyskano i zawieszono ponownie w 400 ml acetonu. Środowisko utrzymywano przez 20 minut przy mieszaniu w temperaturze 4°C, i przesączono. Operację tę powtórzono jeszcze dwa razy (lecz bez utrzymywania przez 20 minut w temperaturze 4°C) i przesączono. Otrzymany proszek wysuszono przez odparowanie acetonu.
Synteza karboksymetylowej usieciowanej amylozy (CM-CLA-35) g CLA-35 zawieszono w 40 ml 5 M NaOH. Następnie do zasadowej zawiesiny CLA-35 dodano 10 g kwasu monochlorooctowego (rozpuszczonego w 12 ml wody destylowanej). Środowisko reakcyjne homogenizowano przez 20 minut na łaźni lodowej, a potem umieszczono na 1 godzinę w łaźni wodnej o temperaturze 75°C, aby uzyskać karboksymetylowanie.
Przemywanie CM-CLA-35. Po zakończeniu reakcji, zawiesinę przesączono, zawieszono ponownie w wodzie destylowanej i przesączono znów na lejku Buchnera, mierząc pH przesączu. Żel przemywano dokładnie na filtrze do uzyskania pH 6,5-7,0. Następnie, żel zawieszono ponownie w 1 litrze wody destylowanej i do zawiesiny dodano powoli przy mieszaniu 1litr roztworu aceton/woda (85/15 objętościowo). Środowisko utrzymywano przy mieszaniu w temperaturze 4°C przez 20 minut, i przesączono. Żel pozostały na filtrze zawieszono ponownie w 0,5 litra roztworu aceton/woda (80/20 objętościowo), utrzymywano przez 20 minut przy mieszaniu w temperaturze 4°C i przesączono. To przemywanie acetonem/wodą powtórzono jeszcze raz z użyciem mieszaniny aceton/woda (90/10).
Żel otrzymany z ostatniej filtracji odzyskano, zawieszono ponownie w 400 ml acetonu, utrzymywano przez 20 minut przy mieszaniu w temperaturze 4°C, i przesączono. Operację tę powtórzono jeszcze dwa razy (lecz bez utrzymywania zawiesiny przez 20 minut przy mieszaniu w temperaturze 4°C) i przesączono. Otrzymany proszek CM-CLA-35 ostatecznie wysuszono przez odparowanie.
Stopień substytucji grup hydroksylowych oceniono przez potencjometryczne miareczkowanie grup hydroksylowych (urządzenie analizator Corning-ion 250) za pomocą 0,1 NaOH. Wynosił 3,8 milirównoważników/g.
Synteza aminoetylowej usieciowanej amylozy (AE-CLA-35)
Aminoetylowanie uzyskano przez potraktowanie 4B CLA-35 chlorowodorkiem 2-chloroetyloaminy.
g CLA-35 zawieszono w 40 ml zimnego (temperatura 0-4°C) 5 M NaOH i utrzymywano na łaźni lodowej przez jedną godzinę. Potem, do zasadowej zawiesiny CLA-35 dodano 12,25 g chlorowodorku chloroetyloaminy (rozpuszczonego w minimalnej objętości wody destylowanej), kontynuując homogenizację przez następne 20 minut na łaźni lodowej. Środowisko reakcyjne umieszczono następnie na 1 godzinę w łaźni wodnej o temperaturze 75°C, uzyskując aminoetylowanie. Podczas reakcji sprawdzano pH i do żelu dodano kilka ml 10 N NaOH ( małych równych ilościach) w celu zobojętnienia HCl wytworzonego w czasie reakcji i aby utrzymać pH żelu przy 9-10.
Po reakcji, zawiesinę przesączono, zawieszono ponownie w wodzie destylowanej i przesączono ponownie na lejku Buchnera, mierząc pH przesączu, jak przy syntezie CM-CLA-35. Żel przemyto na filtrze uzyskując pH 65-7,0, następnie zawieszono ponownie w 1 litrze wody destylowanej. Powoli do zawiesiny dodano 1 litr roztworu aceton/woda (85/15 objętościowo), przy mieszaniu. Żel AE-CLA-35 wysuszono w takiej samej procedurze jak dla CM-CLA-35. Otrzymany proszek AE-CLA-35 wysuszono ostatecznie przez odparowanie na płytach aluminiowych.
Podatność na amylolizę CLA-6, CLA-35, AE-CLA-6. AE-CLA35 i CM-CLA-35
Porównano podatność na amylolizę CLA-6, CLA-35, AE-CLA-6. AE-CLA35 i CM-CLA-35.
PL 192 468 B1
AE-CLA-6 wytworzono zgodnie z procedurą stosowaną do wytworzenia AE-CLA-35 z wyjątkiem tego, że zamiast CLA-35 użyto CLA-6. Amylolizę oceniono ilościowo z ilości maltozy uwolnionej w czasie ataku a-amylazy na wyżej wspomniane substraty, określono metodą Noelting i Bernfed (Noelting G, i Bernfed P., Helv.Chim.Acta, 31, 286-293, 1948) z użyciem kwasu dinitrosalicylowego (DNS) stosowanego jako czynnik mierzący redukcję. Dla każdej pochodnej, poddano pęcznieniu 20 mg proszku i inkubowano przez 3 minuty w temperaturze 25°C w 2 ml 0,02 M buforu fosforanowego, zawierającego 18 EU a-amylazy. Następnie, dodano 1ml 1% DNA (zatrzymując reakcje enzymatyczną), i mieszaninę inkubowano w łaźni z wrzącą wodą przez 5 minut, pozwalając uwolnionym cukrom redukującym na reakcję z DNA. Próbki umieszczono następnie w łaźni wodnej w temperaturze 0°C i rozcieńczono 15 ml wody destylowanej, przed odczytem absorbancji przy 535 nm. Jak ukazano w fig. V, aminoetylowanie lub karboksymetylowanie substratów amylozowych redukuje stopień amylolizy (co zmierzono przez ilość uwolnionej maltozy). W rzeczywistości, podatność na amylolizę AE-CLA-6 zmniejszyła się do 50% w stosunku do CLA-6. Ponadto, CM-CLA-35 była rzeczywiście odporna na rozkład amylolityczny przez a-amylazę.
Uwalnianie leku in vitro
P r zyk ł a d1: tabletki 10% acetaminofenu
CLA (x=3,25) 90%
Acetaminofen 10%
Metoda:
CLA użyta w tym przykładzie była z trimetafosforanem sodu. Lek mieszano z CLA w torebce przez 2-3 minuty i mieszankę sprasowano przy użyciu tabletkarki z oprzyrządowaniem okrągłym 0,79 cm (5/16 cala). Ciężar tabletek wynosił 200 mg.
P r zyk ł a d 2: tabletki 10% pseudoefedryny
CLA (x=3,25) 90%
Pseudoefedryna HCl 10%
Metoda:
CLA użyta w tym przykładzie była z trimetafosforanem sodu. Lek mieszano z CLA w torebce przez 2-3 minuty i mieszankę sprasowano przy użyciu tabletkarki z oprzyrządowaniem okrągłym 1,19 cm (15/32 cala). Ciężar tabletek wynosił 500 mg.
Procedura testowa
Określono profil rozpuszczania tabletek przy użyciu aparatu do rozpuszczania USP typu III.
System rozpuszczania ustawiono z różnymi płynami do rozpuszczania, które naśladują środowisko układu pokarmowego z, lub bez a-amylazy (4500 IU/L). Jedna jednostka międzynarodowa (I.U.) uwolni 1mg maltozy ze skrobi w ciągu trzech minut przy pH 6,9 w temperaturze 20oC. Uwalnianie leku odnotowywano spektrofotometrycznie z użyciem automatycznego układu próbkowania.
P r zyk ł ad 3:
tabletki 20% acetaminofenu CLA (lub pochodne) 80%
Acetaminofen 20%
Metoda:
500 mg tabletki, mające 13 mm średnicy i 2,4-2,7 mm grubości wytworzono przez bezpośrednie prasowanie w prasie hydraulicznej Carver przy 294 MPa (3 T/cm2) i zawierały 100 mg acetaminofenu jako substancji śledzonej. Proszki śledzonego acetaminofenu oraz CLA (lub pochodne) mieszano przez trzy minuty przed sprasowaniem.
Procedura testowa:
Tabletki umieszczono indywidualnie w 1 l buforowanych roztworów (0,05 M bufor fosforanowy, pH 7 temperatura 37°C w aparacie do rozpuszczania USP (łopatka obracająca się z prędkością 50 obrotów na minutę) i odnotowywano dane dotyczące uwalniania acetaminofenu (spektrofotometr HP z oprogramowaniem rozpuszczania). Uwalnianie acetaminofenu mierzono spektrofotometrycznie (l=280nm) przy użyciu zamkniętego systemu cyrkulacji.
Wyniki:
Profile kinetyczne uwalniania acetaminofenu z tabletek, zawierających matryce CLA-35, CMCLA35 lub AE-CLA-35 przedstawiono w fig. VI. Zarówno pochodne CM-CLA-35 jak i AE-CLA-35 zapewniają dłuższy czas uwalniania niż CLA-35.
Karboksymetylowanie amylozy powoduje zwiększenie o około 2-3 godziny czasu rozpuszczania; od 2-3 godzin dla CLA-35 (90% uwalniania) do 4-6 godzin dla CM-CLA-35 (90% uwalniania).
PL 192 468 B1
Zasadniczy wzrost czasu uwalniania (aż do 16-17 godzin dla 90% uwalniania) znaleziono dla AE-CLA-35 (22-24 godziny dla całkowitego uwolnienia).
Rozpuszczanie in vitro tabletek, zawierających aminoetyloamylozę i diklofenak sodowy
200 mg okrągłe, płaskie tabletki, mające 8,73 mm średnicy i 2,51-2,74 mm grubości, i zawierające 10 mg diklofenaku sodowego oraz 190 mg AE-CLA-35, sprasowano przy użyciu tabletkarki o pojedynczym stemplu Stokes F4 (oprzyrządowanie: 8,73 mm okrągły płaski stempel; górna siła prasowania: 4-50kN). Tabletki poddano rozpuszczaniu in vitro, przy użyciu aparatu USP typu III przy 10 zanurzeniach/minutę i 37% buforu fosforanowego USP (pH=6,8) z, lub bez enzymu amylazy 9000 IU/l (n=3). Doświadczenie przeprowadzono w obecności enzymu w warunkach bliskich fizjologicznym. Uwalnianie diklofenaku sodowego oceniono ilościowo przy użyciu detekcji UV przy 276 nm.
Jak ukazano w fig. VIII, 100% diklofenaku sodowego zostało uwolnione po 8 minutach zanurzania w buforze fosforanowym, zawierającym enzym. Jednakże, 100% diklofenaku sodu uwalnia się w krótszym czasie w podobnych warunkach, jeśli jako nośnik polimerowy stosuje się amylozę, której nie modyfikowano grupami, mającymi grupy funkcjonalne.
Podczas gdy widoczne jest, że postacie realizacji ujawnionego w niniejszym wynalazku są dobrze dopasowane do wypełniania ustalonych powyżej celów, widoczne będzie, że fachowiec może wprowadzić liczne modyfikacje i inne postacie realizacji, i w zamierzeniu, załączone zastrzeżenia pokrywają wszystkie takie modyfikacje i postacie realizacji, które wchodzą w zakres prawdziwego ducha i kształtu niniejszego wynalazku.

Claims (40)

1. Stała doustna farmaceutyczna jednostka dawkowania w postaci tabletki o kontrolowanym uwalnianiu zawierająca czynną substancję farmaceutyczną, nośnik i/lub substancje pomocnicze, znamienna tym, że zawiera mieszankę 0,01-80% wagowych suchej, sproszkowanej czynnej substancji farmaceutycznej i 20-99,99% wagowych suchej sproszkowanej wysokoamylozowej skrobi, przy czym wysokoamylozowa skrobia składa się z mieszaniny 10-60% wagowych amylopektyny i 40-60% wagowych amylozy, przy czym wysokoamylozowa skrobia jest skrobią zżelowaną, którą następnie kowalencyjnie usieciowano z użyciem czynnika kowalencyjnie sieciującego, przy czym to sieciowanie przeprowadzono stosując 0,1-30 g czynnika sieciującego na 100 g wysokoamylozowej skrobi, a jednostka dawkowania jest odporna na rozkład przez amylazę.
2. Jednostka dawkowania według zastrz. 1, znamienna tym, że czynnikiem kowalencyjnie sieciującym jest 2,3-dibromopropanol, epichlorohydryna, trimetafosforan sodu, liniowe mieszane bezwodniki kwasu octowego i di- lub trizasadowych kwasów karboksylowych, winylosulfon, diepoksydy, chlorek cyjanurowy, heksahydro-1,3,5-trisakryloilo-s-triazyna, diizocyjanian heksametylenu, 2,4-diizocyjanian toluenu, N,N-metylenobisakrylamid, N,N'-bis(hydroksymetylo)etylenomocznik, fosgen, tripolifosforan, mieszane bezwodniki kwasu węglowokarboksylowego, imidazolidy kwasów węglowego i karboksylowego wielozasadowego, sole imidazoliowe kwasów karboksylowych wielozasadowych, pochodne guanidynowe kwasów wielokarboksylowych oraz estry kwasu propanowego.
3. Jednostka dawkowania według zastrz. 1, znamienna tym, że czynną substancją farmaceutyczną jest chlorowodorek pseudoefedryny.
4. Jednostka dawkowania według zastrz. 1, znamienna tym, że czynną substancją farmaceutyczną jest acetaminofen.
5. Jednostka dawkowania według zastrz. 1, znamienna tym, że czynnikiem kowalencyjnie sieciującym jest epichlorohydryna.
6. Jednostka dawkowania według zastrz. 1, znamienna tym, że czynnikiem kowalencyjnie sieciującym jest trimetafosforan sodu.
7. Jednostka dawkowania według zastrz. 1, znamienna tym, że dodatkowo zawiera polisacharyd lub poliol.
8. Jednostka dawkowania według zastrz. 7, znamienna tym, że jako polisacharyd zawiera b-(1-3)glikan, gumę ksantanową, gumę akacjową lub gumę guarową.
9. Jednostka dawkowania według zastrz. 7, znamienna tym, że jako poliol zawiera poli(alkohol winylowy).
10. Sposób nadawania cechy opóźnionego uwalniania czynnej substancji farmaceutycznej, znamienny tym, że
PL 192 468 B1 (a) dostarcza się czynnej substancji farmaceutycznej w suchej sproszkowanej postaci; i (b) czynną substancję farmaceutyczną miesza się z proszkiem zawierającym wysokoamylozowa skrobię, przy czym wysokoamylozowa skrobia zawiera mieszaninę 10-60% wagowych amylopektyny i 40-60% wagowych amylozy, przy czym ta wysokoamlozowa skrobia została kowalencyjnie usieciowana z czynnikiem sieciującym, które to sieciowanie przeprowadzono z 0,1 - 30 g czynnika sieciującego na 100 g wysokoamylozowej skrobi; i (c) otrzymaną mieszankę sprasowuje się z wytworzeniem tabletki.
11. Sposób według zastrz. 10, znamienny tym, że w etapie (b) miesza się czynną substancję farmaceutyczną w ilości 0,01-80% wagowych z 20-99,99% wagowych proszku zawierającego usieciowaną skrobię wysokoamylozową.
12. Sposób według zastrz. 10, znamienny tym, że jako czynnik sieciujący stosuje się trimetafosforan sodu.
13. Sposób według zastrz. 10, znamienny tym, że etap (b) prowadzi się za pomocą 0,1-30,0 g trimetafosforanu sodu na 100 g wysokoamylozowej skrobi.
14. Stała doustna farmaceutyczna jednostka dawkowania w postaci tabletki o kontrolowanym uwalnianiu zawierająca czynną substancję farmaceutyczną, nośnik i/lub substancje pomocnicze, znamienna tym, że zawiera (a) czynną substancję farmaceutyczną;
(b) wysokoamylozową skrobię, która składa się z 10-60% wagowych amylopektyny i 40-90% wagowych amylozy; oraz (c) polisacharyd lub poliol; przy czym ta wysokoamylozowa skrobia została zżelowana i zżelowana wysokoamylozowa skrobia i polisacharyd lub poliol zostały wspólnie kowalencyjnie usieciowane z użyciem czynnika kowalencyjnie sieciującego, które to sieciowanie przeprowadzono stosując 0,1-30 g czynnika sieciującego na 100 g wysokoamylozowej skrobi.
15. Jednostka dawkowania według zastrz. 14, znamienna tym, że polisacharydem jest b-(1-3)glikan, guma ksantanowa, guma akacjowa lub guma guarowa.
16. Jednostka dawkowania według zastrz. 14, znamienna tym, że poliolem jest poli(alkohol winylowy).
17. Jednostka dawkowania według zastrz. 14, znamienna tym, że czynnikiem kowalencyjnie sieciującym jest 2,3- dibromopropanol, epichlorohydryna, trimetafosforan sodu, liniowe mieszane bezwodniki kwasu octowego i di- lub trizasadowych kwasów karboksylowych, winylosulfon, diepoksydy, chlorek cyjanurowy, heksahydro-1,3,5-trisakryloilo-s-triazyna, diizocyjanian heksametylenu, 2,4-diizocyjanian toluenu, N,N-metylenobisakrylamid, N,N'-bis(hydroksymetylo)etylenomocznik, fosgen, tripolifosforan, mieszane bezwodniki kwasu węglowokarboksylowego, imidazolidy kwasów węglowego i karboksylowego wielozasadowego, sole imidazoliowe kwasów karboksylowych wielozasadowych, pochodne guanidynowe kwasów wielokarboksylowych oraz estry kwasu propanowego.
18. Jednostka dawkowania według zastrz. 14, znamienna tym, że czynną substancją farmaceutyczną jest chlorowodorek pseudoefedryny.
19. Jednostka dawkowania według zastrz. 14, znamienna tym, że czynną substancją farmaceutyczną jest acetaminofen.
20. Jednostka dawkowania według zastrz. 14, znamienny tym, że czynnikiem kowalencyjnie sieciującym jest epichlorohydryna.
21. Jednostka dawkowania według zastrz. 14, znamienna tym, że czynnikiem kowalencyjnie sieciującym jest trimetafosforan sodu.
22. Sposób nadawania cechy opóźnionego uwalniania czynnej substancji farmaceutycznej, znamienny tym, że (a) dostarcza się czynnej substancji farmaceutycznej w suchej sproszkowanej postaci;
(b) czynną substancję farmaceutyczną miesza się z proszkiem zawierającym wysokoamylozową skrobię, przy czym wysokoamylozowa skrobia stanowi mieszaninę 10-60% wagowych amylopektyny i 40-60% wagowych amylozy, przy czym ta wysokoamylozowa skrobia została zżelowana i następnie kowalencyjnie usieciowana wspólnie z polisacharydem lub poliolem i czynnikiem sieciującym, które to sieciowanie przeprowadzono z 0,1-30 g czynnika sieciującego na 100 g wysokoamylozowej skrobi; i (c) otrzymaną mieszankę sprasowuje się z wytworzeniem tabletki.
23. Sposób według zastrz. 22, znamienny tym, że w etapie (b) polisacharyd lub poliol miesza się z wysokoamylozową skrobią przed usieciowaniem wysokoamylozowej skrobi.
PL 192 468 B1
24. Sposób według zastrz. 22, znamienny tym, że jako poliol stosuje się poli(alkohol winylowy).
25. Sposób według zastrz. 22, znamienny tym, że jako polisacharyd stosuje się b-(1-3)glikan, gumę ksantanową, gumę akacjową lub gumę guarową.
26. Sposób według zastrz. 22, znamienny tym, że w etapie (b) czynną substancję farmaceutyczną w ilości 0,01-80% wagowych miesza się z 20-99,99% wagowymi proszku zawierającego usieciowaną skrobię wysokoamylozową, przy czym procenty podano w przeliczeniu na tabletkę.
27. Sposób według zastrz. 22, znamienny tym, że jako czynnik sieciujący stosuje się trimetafosforan sodu.
28. Sposób według zastrz. 22, znamienny tym, że etap (b) przeprowadza się stosując 0,1-30,0 g trimetafosforanu sodu na 100 g wysokoamylozowej skrobi.
29. Sposób nadawania cechy opóźnionego uwalniania czynnej substancji farmaceutycznej, znamienny tym, że (a) dostarcza się czynnik farmaceutyczny w sproszkowanej postaci;
(b) czynną substancję farmaceutyczną miesza się z proszkiem zawierającym wysokoamylozową skrobię, przy czym wysokoamylozowa skrobia stanowi mieszaninę 10-60% wagowych amylopektyny i 40-60% wagowych amylozy, przy czym ta wysokoamylozowa skrobia została zżelowana i następnie kowalencyjnie usieciowaną z zastosowaniem czynnika kowalencyjnie sieciującego, które to sieciowanie przeprowadzono z 0,1 - 30 g czynnika sieciującego na 100 g wysokoamylozowej skrobi;
(c) proszek otrzymany w etapie (b) miesza się polisacharydem lub poliolem; i (d) otrzymaną mieszankę sprasowuje się z wytworzeniem tabletki.
30. Sposób według zastrz. 29, znamienny tym, że jako poliol stosuje się poli(alkohol winylowy).
31. Sposób według zastrz. 29, znamienny tym, że jako polisacharyd stosuje się b-(1-3)glikan, gumę ksantanową, gumę akacjową lub gumę guarową.
32. Sposób według zastrz. 29, znamienny tym, że jako czynnik sieciujący stosuje się trimetafosforan sodu.
33. Sposób według zastrz. 29, znamienny tym, że etap (b) przeprowadza się stosując 0,1-30,0 g trimetafosforanu sodu na 100 g wysokoamylozowej skrobi.
34. Sposób według zastrz. 29, znamienny tym, że w etapie (b) czynną substancję farmaceutyczną w ilości 0,01-80% wagowych miesza się z 20-99,99% wagowymi proszku zawierającego usieciowaną skrobię wysokoamylozową, przy czym procenty podano w przeliczeniu na tabletkę.
35. Usieciowana skrobia wysokoamylozowa mająca grupy funkcjonalne, wytwarzana sposobem, w którym (a) zżelowaną skrobię wysokoamylozową poddaje się reakcji z czynnikiem sieciującym, przy czym sieciuje się przy stężeniu 0,1-40 g czynnika sieciującego na 100 g wysokoamylozowej skrobi, z wytworzeniem usieciowanej amylozy;
(b) usieciowaną skrobię wysokoamylozową poddaje się reakcji z odczynnikiem przyłączającym grupy funkcjonalne przy stężeniu 75-250 g odczynnika przyłączającego grupy funkcjonalne na 100 g usieciowanej amylozy, z wytworzeniem usieciowanej amylozy mającej grupy funkcjonalne, przy czym jako odczynnik przyłączający grupy funkcjonalne stosuje się odczynnik wybrany z grupy obejmującej kwas monochlorooctowy i chlorowodorek chloroetyloaminy.
36. Usieciowana skrobia wysokoamylozowa według zastrz. 35, znamienna tym, że czynnik sieciujący jest wybrany z grupy obejmującej 2,3-dibromopropanol, epichlorohydryna, trimetafosforan sodu, liniowe mieszane bezwodniki kwasu octowego i di- lub trizasadowych kwasów karboksylowych, winylosulfon, diepoksydy, chlorek cyjanurowy, heksahydro-1,3,5-trisakryloilo-s-triazyna, diizocyjanian heksametylenu, 2,4-diizocyjanian toluenu, N,N-metylenobisakrylamid, N,N'-bis(hydroksymetylo)etylenomocznik, fosgen, tripolifosforan, mieszane bezwodniki kwasu węglowokarboksylowego, imidazolidy kwasów węglowego i karboksylowego wielozasadowego, sole imidazoliowe kwasów karboksylowych wielozasadowych, pochodne guanidynowe kwasów wielokarboksylowych oraz estry kwasu propanowego.
37. Usieciowana skrobia wysokoamylozowa według zastrz. 36, znamienna tym, że czynnikiem sieciującym jest epichlorohydryna.
38. Usieciowana skrobia wysokoamylozowa według zastrz. 35, znamienna tym, że reakcję w etapie (a) prowadzi się przy stężeniu 35 g epichlorohydryny na 100 g wysokoamylozowej skrobi.
PL 192 468 B1
39. Usieciowana skrobia wysokoamylozowa według zastrz. 35, znamienna tym, że reakcję w etapie (b) prowadzi się przy stężeniu 100 g kwasu monochlorooctowego na 100 g wysokoamylozowej skrobi.
40. Usieciowana skrobia wysokoamylozowa według zastrz. 35, znamienna tym, że reakcję w etapie (b) prowadzi się przy stężeniu 122,5 g chlorowodorku 2-chloroetyloaminy na 100 g wysokoamylozowej skrobi.
PL342596A 1998-02-24 1999-02-24 Stała doustna farmaceutyczna jednostka dawkowania w postaci tabletki o kontrolowanym uwalnianiu, sposób nadawania cechy opóźnionego uwalniania substancji czynnej i usieciowana skrobia wysokoamylozowa PL192468B1 (pl)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US09/028,385 US6284273B1 (en) 1998-02-24 1998-02-24 Cross-linked high amylose starch resistant to amylase as a matrix for the slow release of biologically active compounds
PCT/CA1999/000169 WO1999043305A1 (en) 1998-02-24 1999-02-24 Cross-linked high amylose starch having functional groups as a matrix for the slow release of pharmaceutical agents

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL342596A1 PL342596A1 (en) 2001-06-18
PL192468B1 true PL192468B1 (pl) 2006-10-31

Family

ID=21843160

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL342596A PL192468B1 (pl) 1998-02-24 1999-02-24 Stała doustna farmaceutyczna jednostka dawkowania w postaci tabletki o kontrolowanym uwalnianiu, sposób nadawania cechy opóźnionego uwalniania substancji czynnej i usieciowana skrobia wysokoamylozowa

Country Status (19)

Country Link
US (2) US6284273B1 (pl)
EP (1) EP1059915B1 (pl)
JP (1) JP2002504508A (pl)
KR (1) KR100713702B1 (pl)
CN (1) CN1298297A (pl)
AT (1) ATE277604T1 (pl)
AU (1) AU755069B2 (pl)
BR (1) BR9908187A (pl)
CA (1) CA2321461C (pl)
CZ (1) CZ301010B6 (pl)
DE (1) DE69920669T2 (pl)
HU (1) HU225045B1 (pl)
IL (1) IL137955A (pl)
NO (1) NO329257B1 (pl)
NZ (1) NZ506437A (pl)
PL (1) PL192468B1 (pl)
PT (1) PT1059915E (pl)
TR (1) TR200003014T2 (pl)
WO (1) WO1999043305A1 (pl)

Families Citing this family (37)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN100389752C (zh) * 1978-04-21 2008-05-28 莱博法姆公司 控释组合物
NZ260408A (en) 1993-05-10 1996-05-28 Euro Celtique Sa Controlled release preparation comprising tramadol
US7022683B1 (en) 1998-05-13 2006-04-04 Carrington Laboratories, Inc. Pharmacological compositions comprising pectins having high molecular weights and low degrees of methoxylation
DE19927688A1 (de) * 1999-06-17 2000-12-21 Gruenenthal Gmbh Mehrschichttablette zur Verabreichung einer fixen Kombination von Tramadol und Diclofenac
US6607748B1 (en) * 2000-06-29 2003-08-19 Vincent Lenaerts Cross-linked high amylose starch for use in controlled-release pharmaceutical formulations and processes for its manufacture
US6777000B2 (en) 2001-02-28 2004-08-17 Carrington Laboratories, Inc. In-situ gel formation of pectin
WO2002088331A1 (en) * 2001-05-01 2002-11-07 Universite Du Quebec A Montreal Tridimensional biocompatible support structure for bioartificial organs and uses thereof
US8487002B2 (en) * 2002-10-25 2013-07-16 Paladin Labs Inc. Controlled-release compositions
TWI319713B (en) * 2002-10-25 2010-01-21 Sustained-release tramadol formulations with 24-hour efficacy
DE60322091D1 (de) * 2002-10-25 2008-08-21 Labopharm Inc Zubereitungen mit kontrollierter freisetzung
US20060172006A1 (en) * 2003-10-10 2006-08-03 Vincent Lenaerts Sustained-release tramadol formulations with 24-hour clinical efficacy
US20080286253A1 (en) * 2004-02-09 2008-11-20 Transfert Plus Societe En Commandite Composition Comprising Polymeric Material And Uses Thereof
CA2491665A1 (fr) * 2004-12-24 2006-06-24 Louis Cartilier Formulation de comprime pour liberation soutenue de principe actif
CA2616204C (en) 2005-09-09 2015-12-01 Labopharm Inc. Sustained drug release composition
ATE540705T1 (de) * 2005-09-21 2012-01-15 Surmodics Inc Überzüge und artikel mit natürlichen biologisch abbaubaren polysacchariden
CA2621597C (en) * 2005-09-21 2014-06-10 Surmodics, Inc. In vivo formed matrices including natural biodegradable polysaccharides and ophthalmic uses thereof
WO2007105719A1 (ja) * 2006-03-14 2007-09-20 National University Corporation NARA Institute of Science and Technology 新規なヘパリン代替材料およびその製造方法
CA2590821A1 (en) * 2007-06-07 2008-12-07 Universite De Montreal High-amylose sodium carboxymethyl starch sustained release excipient and process for preparing the same
CA2678092C (en) * 2007-10-16 2013-07-30 Labopharm Inc. Bilayer composition for the sustained release of acetaminophen and tramadol
CN101161684B (zh) * 2007-11-23 2010-05-19 华南理工大学 交联羧甲基淀粉的红外线合成方法
AU2008338207A1 (en) * 2007-12-17 2009-06-25 Labopharm (Barbados) Limited Misuse preventative, controlled release formulation
MX2010013942A (es) * 2007-12-21 2011-03-25 Akzo Nobel N V Star Polvo de polimero redispersable.
CA2723192A1 (en) 2008-05-07 2009-11-12 Surmodics, Inc. Delivery of nucleic acid complexes from particles
WO2010028489A1 (en) * 2008-09-15 2010-03-18 Labopharm Inc. Starch-based microparticles for the release of agents disposed therein
CA2746888C (en) 2008-12-16 2015-05-12 Labopharm (Barbados) Limited Misuse preventative, controlled release formulation
AR082189A1 (es) 2010-07-06 2012-11-21 Gruenenthal Gmbh Formas de dosificacion gastrorretentivas, procedimiento
US8901092B2 (en) 2010-12-29 2014-12-02 Surmodics, Inc. Functionalized polysaccharides for active agent delivery
WO2012116434A1 (en) * 2011-03-01 2012-09-07 4413261 Canada Inc. (Spencer Canada) Two speed monolithic system for controlled release of drugs
US12109217B2 (en) 2014-02-27 2024-10-08 B-Organic Films Corp. Bioactive agents included in functionalized starch having a single helix V-structure
WO2016100861A1 (en) 2014-12-19 2016-06-23 Baxter International, Inc. Flowable hemostatic composition
CN104784738B (zh) * 2015-04-03 2016-12-07 四川大学 一种天然缓释多效医用海绵
CN106279453B (zh) * 2015-05-28 2019-12-10 易媛 交联的高分子化合物及其制备方法、水凝胶、水基压裂液和用途
CN105536058A (zh) * 2016-01-22 2016-05-04 青岛中腾生物技术有限公司 一种医用淀粉海绵及其制备方法和用途
GB2567493B (en) 2017-10-13 2019-12-18 Altus Formulation Inc Starch-based release modifying excipients and pharmaceutical compositions derived therefrom
CN111072791A (zh) * 2019-12-27 2020-04-28 河南新孚望新材料科技有限公司 一种包膜剂用高直链淀粉的制备方法
JP7125216B1 (ja) 2021-03-31 2022-08-24 長瀬産業株式会社 水溶性ポリマーの製造方法、および吸水性樹脂の製造方法
BR112023019989A2 (pt) * 2021-03-31 2023-11-14 Hayashibara Co Método para produção de polímero solúvel em água e método para produção de resina absorvente de água

Family Cites Families (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4072535A (en) * 1970-12-28 1978-02-07 A. E. Staley Manufacturing Company Precompacted-starch binder-disintegrant-filler material for direct compression tablets and dry dosage capsules
US4369308A (en) * 1981-07-24 1983-01-18 National Starch And Chemical Corporation Low swelling starches as tablet disintegrants
JPH0791240B2 (ja) * 1987-04-01 1995-10-04 株式会社日本触媒 2−ハロエチルアミンハロゲン化水素酸塩の製造方法
CA2041774C (en) * 1990-11-27 1994-04-19 Mircea A. Mateescu Use of cross-linked amylose as a matrix for the slow release of biologically active compounds
JPH06271704A (ja) * 1993-03-22 1994-09-27 Asahi Chem Ind Co Ltd 水性易燃性組成物
US5616343A (en) * 1993-03-25 1997-04-01 Labopharm, Inc. Cross-linked amylose as a binder/disintegrant in tablets
CN1150218C (zh) * 1994-04-11 2004-05-19 赫希斯特人造丝公司 超吸收性聚合物及其制品
US5830884A (en) * 1995-01-18 1998-11-03 National Starch And Chemical Investment Holding Corporation Pharmaceutical products containing thermally-inhibited starches
US5593503A (en) * 1995-06-07 1997-01-14 National Starch And Chemical Investment Holding Corporation Process for producing amylase resistant granular starch
US5667637A (en) * 1995-11-03 1997-09-16 Weyerhaeuser Company Paper and paper-like products including water insoluble fibrous carboxyalkyl cellulose
CA2173818A1 (fr) * 1996-04-10 1997-10-11 Francois Chouinard Comprime pharmaceutique a liberation controlee contenant un support a base d'amylose reticule et d'hydroxypropylmethylcellulose
US5879707A (en) * 1996-10-30 1999-03-09 Universite De Montreal Substituted amylose as a matrix for sustained drug release
US5807575A (en) * 1997-02-14 1998-09-15 Rougier Inc. Manufacture of cross-linked amylose useful as a excipient for control release of active compounds

Also Published As

Publication number Publication date
NO329257B1 (no) 2010-09-20
WO1999043305A1 (en) 1999-09-02
AU3242099A (en) 1999-09-15
PT1059915E (pt) 2005-02-28
DE69920669D1 (de) 2004-11-04
JP2002504508A (ja) 2002-02-12
CN1298297A (zh) 2001-06-06
CA2321461A1 (en) 1999-09-02
NO20004208L (no) 2000-08-23
CA2321461C (en) 2008-04-29
NO20004208D0 (no) 2000-08-23
EP1059915B1 (en) 2004-09-29
DE69920669T2 (de) 2005-11-03
KR20010034531A (ko) 2001-04-25
KR100713702B1 (ko) 2007-05-02
US6419957B1 (en) 2002-07-16
BR9908187A (pt) 2000-10-31
TR200003014T2 (tr) 2001-02-21
HUP0100818A3 (en) 2001-12-28
CZ301010B6 (cs) 2009-10-14
EP1059915A1 (en) 2000-12-20
AU755069B2 (en) 2002-12-05
ATE277604T1 (de) 2004-10-15
PL342596A1 (en) 2001-06-18
IL137955A0 (en) 2001-10-31
HU225045B1 (en) 2006-05-29
NZ506437A (en) 2003-03-28
CZ20003097A3 (en) 2001-06-13
HUP0100818A2 (hu) 2001-08-28
IL137955A (en) 2005-12-18
US6284273B1 (en) 2001-09-04

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL192468B1 (pl) Stała doustna farmaceutyczna jednostka dawkowania w postaci tabletki o kontrolowanym uwalnianiu, sposób nadawania cechy opóźnionego uwalniania substancji czynnej i usieciowana skrobia wysokoamylozowa
Kamel et al. Pharmaceutical significance of cellulose: A review
JP5025066B2 (ja) 徐放性医薬製剤に利用する架橋高アミローススターチとその製造方法
Shukla et al. Carbohydrate polymers: Applications and recent advances in delivering drugs to the colon
RU2093148C1 (ru) Композиции с замедленным (пролонгированным) высвобождением
Singh et al. Mechanistic implication for cross-linking in sterculia-based hydrogels and their use in GIT drug delivery
Onofre et al. Effects of structure and modification on sustained release properties of starches
AU2001271481A1 (en) Cross-linked high amylose starch for use in controlled-release pharmaceutical formulations and processes for its manufacture
HUE024121T2 (en) Polymer hydrogels and their use in medicine
Wang et al. A novel, potential microflora-activated carrier for a colon-specific drug delivery system and its characteristics
JP2003321398A (ja) 多糖類複合体及びその製造方法
Ambrosio et al. Superabsorbent cellulose-based hydrogels for biomedical applications
Aguilar‐de‐Leyva et al. Critical points and phase transitions in polymeric matrices for controlled drug release
MXPA00008227A (en) Cross-linked high amylose starch having functional groups as a matrix for the slow release of pharmaceutical agents
SK1795A3 (en) Drug delivery device and method of this production
Malhotra et al. 2 Cellulosebased Polymeric Systems in Drug Delivery
Hassan Methods of Polysaccharides Crosslinking: Future-Promising Crosslinking Techniques of Alginate Hydrogels for 3D Printing in Biomedical Applications
Hamidi et al. An overview on current trends and future outlook of hydrogels in drug delivery.
HK et al. International Journal of Pharma Research and Technology
Sujja-Areevath Preparation of novel modified-release dosage forms of diclofenac sodium and ibuprofen.
Embi et al. First Order Kinetics of Salicylamide Release from κ-Carrageenan Hard Shell Capsules in Comparison with Gelatin

Legal Events

Date Code Title Description
LAPS Decisions on the lapse of the protection rights

Effective date: 20120224