NO176439B - Fremgangsmåte for rensing av hepatittproteiner - Google Patents

Fremgangsmåte for rensing av hepatittproteiner Download PDF

Info

Publication number
NO176439B
NO176439B NO891532A NO891532A NO176439B NO 176439 B NO176439 B NO 176439B NO 891532 A NO891532 A NO 891532A NO 891532 A NO891532 A NO 891532A NO 176439 B NO176439 B NO 176439B
Authority
NO
Norway
Prior art keywords
hepatitis
surface antigen
supernatant
silica
buffer
Prior art date
Application number
NO891532A
Other languages
English (en)
Other versions
NO176439C (no
NO891532D0 (no
NO891532L (no
Inventor
William Scot Craig
Robert Steven Siegel
Original Assignee
Res Corp Technologies Inc
Phillips Petroleum Co
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Res Corp Technologies Inc, Phillips Petroleum Co filed Critical Res Corp Technologies Inc
Publication of NO891532D0 publication Critical patent/NO891532D0/no
Publication of NO891532L publication Critical patent/NO891532L/no
Publication of NO176439B publication Critical patent/NO176439B/no
Publication of NO176439C publication Critical patent/NO176439C/no

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/005Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2730/00Reverse transcribing DNA viruses
    • C12N2730/00011Details
    • C12N2730/10011Hepadnaviridae
    • C12N2730/10111Orthohepadnavirus, e.g. hepatitis B virus
    • C12N2730/10122New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Detergent Compositions (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Physical Water Treatments (AREA)

Description

Den foreliggende oppfinnelse angår en fremgangsmåte til rensing av hepatitt-B-overflateantigener fra Pichia pastoris-gjærceller.
Hepatitt-B-viruset induserer en infeksjon kjent som hepatitt B. Kronisk infeksjon med viruset kan føre til skrumplever og leverkreft.
For øyeblikket kan man ikke helbrede individer som er infisert med hepatitt-B-viruset. Følgelig konsentrerer medisinsk behandling seg om forebyggelse via vaksinasjon.
Vaksinens aktive bestanddel er et polypeptid kjent som hepatitt-B-overf lateantigenet. Dette polypeptid opptrer naturlig på overflaten av hepatitt-B-viruset.
En fremgangsmåte til fremstilling av dette peptid er å isolere det fra blodet hos individer som er infisert med hepatitt-B-viruset. På grunn av den frykt som for tiden hersker med hensyn til spredning av sykdommer såsom AIDS via blodprodukter, er denne fremgangsmåte blitt mindre populær.
En alternativ fremgangsmåte er å fremstille hepatitt-B-overflateantigenet via genteknikk. Genet for hepatitt-B-overflateantigenpolypeptidet kan klones inn i f.eks. enten en gjær-, bakterie- eller pattedyrcelle.
Den genetisk endrede celle kan deretter dyrkes på en slik
måte at hepatitt-B-overflateantigenpolypeptidet vil uttrykkes og samles i partikler.
Skjønt hepatitt-B-overflateantigenpolypeptidet med hell kan fremstilles i rekombinante celler, eksisterer der likevel problemer med de fremgangsmåter som for tiden anvendes til utvinning av polypeptidet fra cellen og rensing av dette.
Den mest vanlige fremgangsmåte til rensing av hepatitt-B-overf lateantigen er f.eks. en densitetsgradientsentrifugering. Denne fremgangsmåte krever imidlertid anvendelse av en stor mengde cesiumklorid og sakkarose samt bruken av en ultrasentri-fugeringsmaskin og også forskjellige rotorer i henhold til graden av rensing og dens målestokk, og følgelig er fremgangsmåten ikke egnet på grunn av dens høye omkostninger.
I US-PS 4 683 293 er der angitt at lipofile proteiner såsom hepatitt-B-overflateantigen fremstilt ved genetisk modifiserte stammer av Pichia pastoris kan utvinnes selektivt ved bruk av en lysebuffer som inneholder kaotropiske salter. Skjønt en slik fremgangsmåte anses å representere et betydelig frem-skritt i rensingen av lipofile proteiner, er der fortsatt behov for en samlet fremgangsmåte som tillater utvinningen av slike proteiner som hepatitt-B-overflateantigenet i en form som er egnet til bruk i fremstillingen av en vaksine.
Det vil således være et verdifullt bidrag til faget å utvikle en samlet fremgangsmåte som lar seg utføre i industriell målestokk for utvinning av hepatitt-B-overflateantigenpartikkelen fra gjærceller i en renhetstilstand som er tilstrekkelig for direkte innlemmelse i en vaksine.
Det er en hensikt med den foreliggende oppfinnelse å skaffe
en fremgangsmåte til utvinning av hepatitt-B-overflateantigenpartikkelen i en tilstand av renhet som er tilstrekkelig til at den kan innlemmes direkte i en vaksine og på en måte som er forenlig med utførelse i industriell målestokk.
Denne hensikt er oppnådd ved foreliggende oppfinnelse kjenne-tegnet ved det som fremgår av de vedlagte krav.
I henhold til den foreliggende oppfinnelse er det funnet at hepatitt-B-overflateantigenpartikkelen kan utvinnes og renses fra en gjærcelle ved en fremgangsmåte som omfatter at: a. de nevnte gjærceller underkastes lyse i nærvær av et kaotropisk salt og den hepatitt-B-overflateantigenholdige supernatant separeres fra den lyserte cellepellet; b. den hepatitt-B-overflateantigenholdige supernatant som fås i trinn (a), underkastes betingelser som er egnet til å utfelle lipider og forurensende proteiner fra den nevnte hepatitt-B-overflateantigenholdige supernatant og nevnte utfelling utføres ved en temperatur på tilnærmet 200°C i nærvær av fosforsyre som har en konsentrasjon tilstrekkelig til å senke pH-verdien til 5; c. etter nevnte utfelling tilsettes tilstrekkelig natriumhydroksid til å heve pH-verdien av nevnte hepatitt-B-overf lateantigenholdige oppløsning til tilnærmet 6,5; d. nevnte hepatitt-B-overflateantigenholdige oppløsning oppnådd i trinn (c) underkastes diafiltrering på en membran som har en molekylvekteksklusjonsgrense på 100
000 og i nærvær av en fosfatbuffer som har en pH-verdi
på tilnærmet 7,5;
e. nevnte hepatitt-B-overflateantigenholdige retentat som fås i trinn (d) bringes i kontakt med en tilstrekkelig mengde av en tilnærmet 50 vekt% silikaslurry slik at for hvert 1 mg av hepatitt-B-overflateantigenaktivitet
tilstede i nevnte supernatant benyttes det 60 mg silika;
f. nevnte forurensende proteiner vaskes fra nevnte silika med et fosfatbufret salinebuffersystem som har en pH-verdi i området 6-8 og inneholder 0,15 M NaCl;
g. nevnte hepatitt-B-overflateantigen elueres fra silikaet med en karbonat-bikarbonat buffer som har en pH-verdi i området 9,5-11,0 og en ureakonsentrasjon i området 0,5-8 M;
h. nevnte hepatitt-B-overflateantigenholdige fraksjon oppnådd
1 trinn (g) underkastes diafiltrering på en membran som
har en molekylvekteksklusjonsgrense på 100 000 i nærvær av en TRIS-kloridbuffer som har en pH-verdi på tilnærmet
8;
i. nevnte gelfiltrering utføres på en agarosegel som har en molekylvekteksklusjonsgrense på 20*IO<6> og nevnte hepatitt-B-overf lateantigen elueres gjennom nevnte agarosegel
med en TRIS-kloridbuffer som har en pH-verdi på tilnærmet 8; og
j. den hepatitt-B-overflateantigenholdige fraksjon som fås
i trinn (i) underkastes ionevekslingskromatografi under anvendelse av et dietylaminoetylkation og nevnte hepatitt-B-overf lateantigen elueres fra nevnte kation med TRIS-kloridbuf f er som har en natriumkloridkonsentrasjon i området fra 0 til 0,3 M.
Fremgangsmåten ifølge oppfinnelsen er nyttig for en hvilken som helst transformert gjær som kan uttrykke et hepatitt-B-overf lateantigen. Representative eksempler på egnede transfor-merte gjærsorter kan velges fra gruppen bestående av de gjærsorter som tilhører slektene Candida, Kloeckera, Saccharomyces, Schizosaccharomyces, Rhodotorula, Hansenula, Torulopsis, Pichia og Kluyveromyces. En særlig foretrukket gjær er Pichia pastoris.
Typisk blir gjærsorter dyrket ved at de får vokse på en egnet karbonenergikilde under aerobe, vandige gjæringsbetingelser ved anvendelse av en assimilerbar nitrogenkilde, mineralsalter, fritt oksygen med egnet pH-verdi og andre styringsmekanismer, slik det er kjent i faget. Den nøyaktige måte som gjæren dyrkes på, er ikke kritisk for utførelse av den foreliggende oppfinnelse.
Som kjent for fagfolk er hepatitt-B-virusgenomer kjent for å produsere tre variasjoner av hepatitt-B-overflateantigenpolypeptidet. Disse variasjoner er alminnelig betegnet som S-formen, pre-S]_-formen og pre-S2_formen. Den foreliggende fremgangsmåte er anvendelig for utvinning og rensing av partikler som består av hvilke som helst av disse former av polypeptidet, f.eks. kan partiklene bestå av en blanding av hepatitt-B-overflateantigenpolypeptider.
Uttrykket hepatitt-B-overflateantigen, slik det anvendes i
den foreliggende søknad, betegner partikler med S-formen, pre-S^-formen og pre-S2-formen og blandinger derav.
Det første trinn i den foreliggende oppfinnelse er å lysere gjærcellene i nærvær av et kaotropisk salt (US-PS 4 683 293). Typisk vil cellene bli lysert ved homogenisering i en perle-mølle.
Uttrykket "kaotropisk salt", slik det anvendes i den foreliggende beskrivelse, betegner salter hvis anioner begunstiger overføringen av apolare grupper til vann. Slike salter innbefatter forbindelser som inneholder tiocyanatanionet, halogenid-anioner såsom jodid og bromid, og hypo-NaCl-anioner (hypohalite anions) såsom perklorat, såvel som kationer som f.eks. litium, kalsium og barium.
Representative eksempler på egnede kaotropiske salter kan velges fra gruppen bestående av natriumtiocyanat, kaliumtiocyanat, natriumjodid, kaliumjodid, natriumhypokloritt, litium-klorid, litiumbromid, guanidinhydroklorid, guanidintiocyanat, urea og lignende. For tiden foretrekkes kaliumtiocyanat.
Det foretrekkes for tiden at det kaotropiske salt foreligger
i en molar konsentrasjon på 1-8.
Det foretrekkes også at det kaotropiske salt buffres for opprettholdelse av en pH-verdi i området 6-8. Som fagfolk vet, er der en rekke forskjellige buffersystemer som kan opprettholde en pH-verdi i området 6-8. Hvilke som helst av disse buffersystemer som er forenlige med det valgte salt, er egnet til bruk ved den foreliggende oppfinnelse. Den for tiden foretrukne buffer er natriumfosfat.
Om ønskelig kan proteaseinhibitorer foreligge i det kaotropiske saltmedium. Representative eksempler på egnede proteaseinhibitorer kan velges fra gruppen bestående av fenylmetylsulfonylfluorid og diisopropylfluorfosfat.
Typisk vil cellelysen med det kaotropiske salt utføres ved
en temperatur i området 0-10"C for ytterligere å redusere proteolytisk nedbrytning.
Etter at gjærcellene er blitt lysert, foretrekk.es det for tiden at den hepatitt-B-overflateantigenholdige supernatant separeres fra den lyserte cellepellet før ytterligere rensing. Denne separasjon kan oppnås ved sentrifugering eller en hvilken som helst annen vanlig fremgangsmåte.
Det foretrekkes for tiden at den lyserte cellepellet som fås ved ekstraksjonen med det kaotropiske salt, underkastes en ytterligere vasking med en buffer som har en pH-verdi i området 6-8 for å fjerne eventuelle resterende hepatitt-B-overflateantigener som er tilbake i cellepelleten.
Om ønskelig kan det buffrede kaotropiske salt anvendes til å vaske cellepelleten.
Etter at den lyserte cellepellet er blitt vasket, foretrekkes det at den resulterende supernatant separeres fra celleavfallet som er forbundet med den lyserte cellepellet og kombineres med den supernatant som ble oppnådd tidligere for ytterligere rensing.
Det neste trinn i rensingen er å underkaste den hepatitt-B-overf lateantigenholdige supernatant betingelser som er egnet til å utfelle lipider og forurensende proteiner fra den hepatitt-B-overf lateantigenholdige supernatant. En egnet fremgangsmåte til å bevirke denne utfelling, er å varme supernatanten til en temperatur i området 45-55°C, fortrinnsvis 47-5CPC i et tidsrom på 10-30 min.
En annen egnet fremgangsmåte til utfelling av lipidene og
de forurensende proteiner fra supernatanten, er å varme supernatanten i nærvær av en syre.
Tilstrekkelig mengde syre bør tilsettes til at pH-verdien av den hepatitt-B-overflateantigenholdige supernatant reduseres til 5,0-6,0.
Den syre som anvendes i fremgangsmåten, kan være enten en uorganisk syre eller en organisk syre. Egnede syrer kan velges fra gruppen bestående av saltsyre, svovelsyre, fosforsyre, eddiksyre, oksalsyre, salpetersyre, perklorsyre eller maursyre.
Syrningsbehandlingen utføres fortrinnsvis ved en temperatur ikke høyere enn 30°C, helst ikke høyere enn 20°C, dvs. i et området på 4-30'C, helst 4-20°C.
Etter utfellingstrinnet foretrekkes det at de utfelte celle-komponenter separeres fra den hepatitt-B-overflateantigenholdige supernatant. Dette kan utføres ved en hvilken som helst vanlig separasjonsteknikk såsom sentrifugering eller dekantering.
Dersom syrning anvendes i utfellingstrinnet, foretrekkes det at den hepatitt-B-overflateantigenholdige supernatant behandles med tilstrekkelig mengde base til å returnere pH-verdien til et område på 6-8, fortrinnsvis ca. 6,5, før ytterligere rensing.
Den spesielle base som anvendes for å returnere pH-verdien
til 6-8, er ikke kritisk for utførelse av den foreliggende oppfinnelse. Representative eksempler på egnede baser kan velges fra gruppen bestående av kaliumhydroksid, natriumhydroksid og ammoniumhydroksid.
Det neste trinn i rensingen-.- er å underkaste den hepatitt-B-overf lateantigenholdige supernatant konsentrering og diafiltrering. Konsentrering og diafiltreringen bør utføres med en membran som har en molekylvekteksklusjonsgrense som er tilstrekkelig til å hindre passasjen av hepatitt-B-overflateantigenet gjennom membranen, men likevel er i stand til å tillate passasjen av forurensende peptider og elektrolytter.
En hvilken som helst i handelen tilgjengelig konsentrasjons-membran som har en molekylvekteksklusjonsgrense i området 5000-500 000, fortrinnsvis 75 000-100 000, er egnet til bruk i den foreliggende fremgangsmåte.
Det foretrekkes også at konsentrasjonsmembranen benyttes til
å fjerne det kaotropiske salt. Dette kan oppnås ved tilsetning av 1-2 volumer av en kaotropisk-fri buffret oppløsning med en pH-verdi i området 6-8 til den hepatitt-B-overflateantigenholdige supernatant etter den opprinnelige konsentrering og gjentagelse av konsentreringsrekkefølgen.
Ethvert etterfølgende like stort volum buffer vil fortynne konsentrasjonen av det kaotropiske salt i den hepatitt-B-overf lateantigenholdige oppløsning med en faktor på ca. 5 0%. Således vil disse ytterligere volumer gradvis fjerne det kaotropiske salt fra den hepatitt-B-overflateantigenholdige oppløsning.
Det neste trinn i renseprosessen er å utsette den hepatitt-B-overf lateantigenholdige supernatant for adsorpsjonskromato-grafi med silika.
Adsorpsjonskromatografien kan utføres ved en kolonnemetode eller ved en satsvis metode. Den satsvise metode foretrekkes for tiden. Silika som er egnet til bruk ved fremgangsmåten ifølge oppfinnelsen, innbefatter enten partikkelformet silika-hydrat eller silikaanhydrat med et tilgjengelig overflateareal i området 100-500 mm<2>/g. Et egnet partikkelformet silika er tilgjengelig under handelsnavnet "Aerosil 380" fra DeGussa Corp., New Jersey.
I den satsvise fremgangsmåte blir det partikkelformede silika dispergert i tilstrekkelig mengde vann til å gi en silikaoppslemming som inneholder 40-60 vektprosent silika.
Silikaoppslemmingen blir deretter bragt i berøring med den hepatitt-B-overflateantigenholdige supernatant.
Den mengde silikaoppslemming som benyttes, bør være slik at når den opprinnelige partikkelkonsentrasjon er £ 1% av det samlede ekstraherbare protein fra det lyserte celleekstrakt, så tilsettes for hvert mg hepatitt-B-overflateantigenaktivitet som foreligger i supernatanten, 50-100 mg silika til supernatanten. Fortrinnsvis tilsettes ca. 60 mg silika for hvert mg AUSRIA-aktivitet som foreligger når den opprinnelige partikkelkonsentrasjon er > 1%. Når partikkelkonsentrasjonen i det lyserte celleekstrakt er < 1%, så bør mengden av silika økes proporsjonalt med den reduserte partikkelkonsentrasjon.
AUSRIA II Analysis Kit er tilgjengelig i handelen fra Abbott Laboratories, Chicago, IL.
Etter at den hepatitt-B-overflateantigenholdige supernatant er blitt bragt i berøring med silikaoppslemmingen, foretrekkes det at den resulterende blanding omrøres sammen i en periode fra 15 min til 4 h.
Etter at den hepatitt-B-overflateantigenholdige oppløsning
er blitt tillatt å komme i berøring med silika i et egnet tidsrom, foretrekkes det at supernatanten separeres fra de silikabundne hepatitt-B-overflateantigener. Dette kan oppnås ved sentrifugering og dekantering eller ved en hvilken som helst teknikk som det er vanlig å anvende.
Det neste trinn i rensingen er å fjerne de forurensende proteiner fra silikaet. Dette kan oppnås ved vasking av silikaet med en buffret oppløsning som har en pH-verdi i området 6-8, fortrinnsvis ca. 7,2. Som det er kjent for fagfolk, er der en rekke forskjellige buffersystemer tilgjengelige for opprettholdelse av en pH-verdi i området 6-8. Hvilke som helst av disse buffersystemer er egnet til bruk i den foreliggende oppfinnelse. Det for tiden foretrukne buffersystem er et natriumfosfat/natriumklorid-buffersystem.
Det foretrekkes for tiden at silikaet vaskes flere ganger med 5-15 volumer av bufferen hver gang for å sikre fjerning av de forurensende proteiner. En måte å overvåke fjerningen av forurensende proteiner på, er å måle absorbansen av hver vasking ved 280 nm. Når absorbansen når den samme uendrede minimumsverdi, er vaskeprosessen fullstendig.
Etter at de forurensende proteiner er blitt fjernet fra silikaet, kan hepatitt-B-overflateantigenet elueres fra silikaet ved at silikaet bringes i berøring med en egnet buffer som inneholder urea, fortrinnsvis i en konsentrasjon på 0,5-3 molaritet.
Egnede buffere vil ha en pH-verdi i området 9,5-11. Som det er kjent for fagfolk, er der en rekke forskjellige buffersystemer som kan opprettholde en pH-verdi innen området 9,5-11. Hvilke som helst av disse buffersystemer er egnet til bruk med den foreliggende oppfinnelse. For tiden foretrekkes en natriumkarbonat/natriumbikarbonat-buffer.
Dersom den satsvise metode er blitt anvendt, foretrekkes det at 8-12 volumer av den ureaholdige buffer tillates å kontakte silikaet i en periode på 1-4 h, fortrinnsvis ca. 2 h. Etter dett tidsrom blir supernatanten som inneholder hepatitt-B-over: ^eantigenet separert fra silikaet og tatt vare på for ytterligere rensing.
Det foretrekkes for tiden at silikaet underkastes en ytterligere eluering med 8-12 volumer av den buffrede urea. De ytterligere hepatitt-B-overflateantigenholdige fraksjoner som fremstilles, kombineres med den tidligere hepatitt-B-overf lateantigenholdige fraksjon og underkastes ytterligere rensing.
Dersom kolonnemetoden anvendes, blir en kromatografikolonne pakket med det partikkelformede silika og den hepatitt-B-overf lateantigenholdige supernatant bringes i berøring med kolonnen. De forurensende proteiner vaskes fra silikaet med en buffer som har en pH-verdi i området 6-8, som beskrevet ovenfor for den satsvise metode. Hepatitt-B-overflateantigenet kan elueres med en ureabuffer som har en pH-verdi i området 9,5-11, som beskrevet ovenfor for den satsvise metode.
Fortrinnsvis blir den hepatitt- overflateantigenholdige fraksjon deretter underkastet ytterligere diafiltreringstrinn for å fjerne ureaet. Et diafiltreringssystem bør anvendes som har en membran med en molekylvektbegrensning slik at hepatitt-B-overflateantigenet ikke vil passere gjennom den.
Egnede membraner er de som har en molekylvektbegrensning innen området 5 000-500 000.
Ureaet fjernes fra den hepatitt-B-overflateantigenholdige fraksjon ved at fraksjonen underkastes gjentatte diafiltreringer i løpet av hvilke et ytterligere volum av en ikke-urea-holdig buffer som har en pH-verdi i området 6-8, settes til den hepatitt-B-overflateantigenholdige fraksjon. Disse gjentatte diafiltreringer med ytterligere buffer vil gradvis fortynne ureaet fra oppløsningen.
Det neste trinn i rensingen er å underkaste den hepatitt-B-overf lateantigenholdige fraksjon gelfiltrering.
Det foretrekkes for tiden at gelfiltreringen utføres på en kromatografikolonne som er blitt pakket med en agarosegel. Andre egnede polare grunnmasser som kan anvendes til å pakke kolonnen, kan velges fra, men er ikke begrenset til, gruppen bestående av dekstrangeler og polyakrylamidgeler.
Den polare grunnmasse som benyttes som pakkingsmateriale for gelfiltreringen, bør ha en molekylvekteksklusjonsgrense på minst en million.
Før den hepatitt-B-overflateantigenholdige fraksjon bringes
i berøring med kromatografikolonnen, bør kolonnen ekvilibreres med en egnet buffer for å hindre at hepatitt-B-overflateantigenet adsorberes på pakkingsmat°rialet. Egnede buffere vil ha en pH-verdi i området 6-9. i det er kjent for fagfolk,
er der en rekke forskjellige buffere som kan opprettholde en pH-verdi i området 6-9. Hvilke som helst av disse buffere er egnet til bruk med den foreliggende oppfinnelse. For tiden foretrekkes en tris(hydroksymeti_,/aminometan(TRIS)-kloridbuffer.
Etter at kolonnen er blitt ekvilibrert, bør den hepatitt-B-overf lateantigenholdige fraksjon bringes i berøring med pak-kingsmaterialet i kolonnen.
Den buffer som anvendes i ekvilibreringen av kolonnen, anvendes også til vasking av både der forurensende proteiner og hepatitt-B-overf lateantigenene gjennom kolonnen.
Søm kjent for fagfolk, vil de molekyler som har den største molekylvekt, passere gjennom kolonnen først og de mindre molekyler følge etter. Kolonnen bør vaskes kontinuerlig med en egnet buffer inntil hepatitt-B-overflateantigenene er blitt eluert.
Nærværet av hepatitt-B-overflateantigen i elueringsmiddelet kan påvises ved gelelektroforese eller ved hvilke som helst av de i handelen tilgjengelige analysepakker som er følsomme for hepatitt-B-overflateantigen. En slik egnet pakke er AUSRIA II, som er tilgjengelig fra Abbott Laboratories.
De fraksjoner som har testet positivt for besittelse av hepatitt-B-overflateantigener, slås sammen og blir valgfritt underkastet konsentrering. En egnet konsentreringsmetode er ultrafiltrering.
De hepatitt-B-overflateantigenholdige fraksjoner blir deretter underkastet ytterligere rensing ved ionevekslingskromatografi. Det foretrekkes for tiden at rensingen utføres med en anionvekslingsligand. Den for tiden foretrukne anionvekslingsligand er et dietylaminoetylkation.
Som kjent for fagfolk, kan anionvekslingsliganden innføres i en polyakrylamidgelharpiks eller en karbohydratpolymerharpiks såsom cellulose eller dekstran, og kromatografikolonnen .vil være pakket med dette materiale. Kolonnekonfigurasjonen kan være, men er ikke begrenset til, enten vanlig vertikal strøm-ning eller radial strømning. Cellulose er for tiden den foretrukne harpiks.
Før hepatitt-B-overflateantigenene bringes i berøring med anionvekslingsharpiksen, bør harpiksene ekvilibreres med en passende buffer som har en pH-verdi i området 6-9.
En rekke buffere kan opprettholde dette pH-område. Hvilke
som helst av disse buffere er egnet til bruk med den foreliggende oppfinnelse. For tiden foretrekkes en TRIS-klorid-buf fer .
Etter ekvilibrering bør de hepatitt-B-overflateantigenholdige fraksjoner bringes i berøring med anionvekslingsharpiksen.
Det foretrekkes for tiden at hepatitt-B-overflateantigenene elueres fra ionevekslingsharpiksen ved lineærgradienteluering. Dette kan oppnås ved en lineær forandring i ionestyrke eller en lineær forandring i pH-verdi. Opprinnelig blir kolonnen vasket med et buffersystem som er det samme som det som benyttes i ekvilibreringstrinnet. Gradvis blir oppløsnings-middelsammensetningen forandret ved innføring av en elektrolytt i buffersystemet og gradvis økning av konsentrasjonen av elektrolytten opp til en molaritet på ca. 0,3 molar.
Det foretrekkes for tiden at elektrolytten er natriumklorid, skjønt andre elektrolytter er like virkningsfulle.
For tiden foretrekkes det at de forskjellige fraksjoner som oppnås som et resultat av gradientelueringen, testes for hepatitt-B-overflateantigeninnhold. Det kan gjøres på samme-måte som utløpsstrømmen fra gelfiltreringen ble testet.
De fraksjoner som inneholder hepatitt-B-overflateantigen, slås sammen. Om ønskelig, kan de resulterende sammenslåtte hepatitt-B-overflateantigenholdige fraksjoner konsentreres ved ultrafiltrering.
Det hepatitt-B-overflateantigen som oppnås via den rensing som er angitt ovenfor, har nå i det minste et renhetsnivå hvor det kan anvendes direkte i en vaksine.
Det følgende eksempel er gitt for ytterligere å belyse for-delene ved oppfinnelsen.
Eksempel I
Dette eksempel viser nytten av den foreliggende oppfinnelse ved rensing av hepatitt-B-overflateantigener som er blitt produsert i transformert Pichia pastoris-kulturer.
En kultur av Pichia pastoris-celler (GS115; NRRL Y-15851)
ble transformert med en vektor pBSAGI5I (tilgjengelig i en E. coli-vert fra the Northern Regional Research Center ved
De forente staters landbruksdepartement, Peoria, Illinois, med aksesjonsnr. NRRLB-18021).
Disse kulturer av Pichia pastoris ble gjæret ved vanlige teknikker inntil en celletetthet på 264 g/l våtvekt.
1900 ml av gjæringsvæsken ble separert fra gjæringsbeholderen. Denne gjæringsvæske ble sentrifugert ved 850 0 omdr. pr. min (RCF ved rave=7700) i ca. 10 min, og den resulterende supernatant ble kassert.
En kaotropisk buffer ble fremstilt for ekstraksjonstrinnet, hvilken inneholdt kaliumtiocyanat i en konsentrasjon på 3M
og natriumfosfat i en konsentrasjon på 10 mM. Proteaseinhibi-toren, fenylmetylsulfonylfluorid, ble også satt til inntil en konsentrasjon på 1 mM. Den resulterende buffer hadde en pH-verdi på 7,5.
Lysetrinnet ble utført ved at der i en perlemølle ble agitert 500 g celler fra pelleten i 1500 ml av den kaotropiske buffer i nærvær av 500 ml 0,5 mm glassperler.
Celle/perle-blandingen ble sentrifugert i 15 min ved 12 500 omdr. pr. min (RCF ved rave = 16 000). Supernatanten ble separert fra celle/perle-blandingen ved dekantring og bevart for senere rensing.
Celle/perle-blandingen ble deretter underkastet en ytterligere vasking med 1000 ml av den kaotropiske buffer. Den resulterende supernatant ble deretter separert fra celle/perle-blandingen og bevart for ytterligere rensing.
Ekstraksjonen med et kaotropisk salt ble utført ved en temperatur på 4°C. Alle andre rensetrinn ble også utført ved 4°C med mindre noe annet er angitt. Dette ble gjort for å redusere proteolytisk nedbrytning.
Supernatantene ble kombinert og underkastet utfelling ved oppvarming av supernatanten til værelsetemperatur i et vannbad. Straks supernatanten hadde oppnådd værelsetemperatur, ble
IN fosforsyre tilsatt supernatanten i en mengde som reduserte pH-verdien av supernatanten fra 7,5 til 5. Oppløsningen ble deretter tillatt å stå ved værelsetemperatur i ca. 30 min.
I løpet av dette tidsrom ble forurensende proteiner og lipider utfelt fra den hepatitt-B-overflateantigenholdige supernatant.
Supernatanten ble avkjølt til 4°C og sentrifugert i 15 min
ved 12 500 omdr. pr. min. Supernatanten ble dekantert for å separere den fra de utfelte avfallsstoffer.
pH-verdien av supernatanten ble deretter øket til 6,5 ved tilsetning av IN natriumhydroksid.
På dette punkt var der 3 120 ml hepatitt-B-overflateantigen-holdig supernatant. En AUSRIA Il-analyse ble utført. Denne analyse viste at der var 236 mg hepatitt-B-overflateantigen i supernatanten. Dette representerte en utvinning på 80,5%.
Den hepatitt-B-overflateantigenholdige oppløsning ble deretter underkastet konsentrering og diafiltrering på et Amicon-hul-fiber ultrafiltreringssystem med en molekylvekteksklusjonsgrense på 100 000.
Etter den opprinnelige konsentrering til ca. 0,5 1 ble 1 1 natriumfosfatbuffer med en pH-verdi på 7,5 satt til den hepatitt-B-overf lateantigenholdige supernatant og den resulterende blanding ble underkastet ytterligere konsentrering. Dette ble gjentatt to ganger inntil kaliumtiocyanatet ble fortynnet fra oppløsningen.
Etter at kaliumtiocyanatet var blitt fjernet fra den hepatitt-B-overf lateantigenholdige supernatant ved diafiltrering, ble nok en AUSRIA II-analyse utført på det 40 5 mis retentat. Denne analyse viste at der var 231 mg hepatitt-B-overflateantigen, hvilken representerte en utvinning på 7 8,8%.
Den hepatitt-B-overflateantigenholdige supernatant ble deretter satsvis bundet til silika som hadde en tilgjengelig overflate på 380 m2/g.
Dette ble utført på følgende måte:
Først ble tørt silika fremstilt som en 50% oppslemming (tørr-vekt/volum) med destillert vann. Dette gav en blanding med 50 mg silika pr. ml oppslemming. 27 5 ml av silikaoppslemmingen ble satt til den hepatitt-B-overf lateantigenholdige supernatant og blandingen ble omrørt langsomt ved værelsetemperatur i 2 h.
Hepatitt/silika-blandingen ble deretter avkjølt til 4°C og sentrifugert i 15 min ved 5000 omdr. pr. min (RCF ved rave = 2500). Den resulterende supernatant ble kassert.
Silikaet ble deretter vasket med 500 ml av en fosfatbuffer med en pH-vedi på 7 og inneholdende 0,15 M NaCl. Renseopp-løsningen ble kassert. Vasketrinnene med fosfatbuffer ble fortsatt inntil absorbansen ved 280 nm fra supernatant nådde en minste uendret verdi.
Hepatitt-B-overflateantigenet ble deretter eluert fra silikaet med en buffer inneholdende 25 mM natriumkarbonat, 25 mM natri-umbikarbonat og 1 molar urea. Den endelige pH-verdi av bufferen var 10.
Hepatitt/silika-blandingen ble plassert i 500 ml av urea-bufferen og omrørt ved værelsetemperatur i 2 h.
Den buffrede ureaoppløsning inneholdende silika/hepatitt ble avkjølt til 4°C og sentrifugesrt i 15 min ved 5000 omdr. pr. min. Supernatanten ble dekantert og bevart for ytterligere rensing.
Silikaet ble deretter eluert med et andre volum på 500 ml urea, buffret på samme måte-som det første. Den resulterende supernatant ble kombinert med den første supernatant og underkastet et konsentrerings- og diafiltreringstrinn for å fjerne ureaet.
På dette punkt ble den hepatitt-B-overflateantigenholdige supernatant underkastet konsentrering på et Amicon-hulfilter diafiltreringssystem som hadde en membran med en molekylvekteksklusjonsgrense på 100 000.
Etter denne opprinnelige konsentrering til ca. 100 ml ble
200 ml av en 10 mM natriumfosfatbuffer med en pH-verdi på
7,5 satt til den hepatitt-B-overflateantigenholdige supernatant og underkastet en ytterligere konsentrering. Dette trinn hadde den virkning at det fortynnet ut ureaet. Fremgangsmåten ble gjentatt to ganger, hvilket hadde den virkning at 89% av
ureaet ble fjernet fra den hepatitt-B-overflateantigenholdige fraksjon.
Etter diafiltrering ble den hepatitt-B-overflateantigenholdige fraksjon sentrifugert i 15 min ved 16 000 omdr. pr. min.
En AUSRIA Il-analyse ble utført på dette punkt. Analysen viste at der var 234 mg hepatitt-B-overflateantigen til stede, hvilket representerte en 64,5% utvinning.
Den hepatitt-B-overflateantigenholdige supernatant ble deretter underkastet gelfiltrering.
En i handelen tilgjengelig Sepharose CL4B størrelseseksklu-sjonskolonne ble benyttet. Denne kolonne hadde et volum på 2 1 og var pakket med en agarosegel som hadde en molekylvekteksklusjonsgrense på 20 x 10^.
Den hepatitt-B-overflateantigenholdige fraksjon ble deretter bragt i berøring me denne kolonne. Hepatitt-B-overflateantigenet ble eluert fra kolonnen med 25 mm TRIS-klorid med en pH-verdi på 8.
Fraksjonene ble samlet opp etter hvert som de ble eluert fra kolonnen og analysert for hepatitt-B-overflateantigeninnhold. Disse fraksjoner med hepatitt-B-overflateantigenaktivitet, basert på en polyakrylamidgelelektroforese-analyse, ble slått sammen og bevart for senere rensing. Den analyse som ble anvendt, var den AUSRIA II-analysetest som er tilgjengelig i handelen fra Abott Laboratories.
De sammenslåtte fraksjoner hadde samlet 17 0 mg hepatitt-B-overf lateantigenaktivitet , som representerer 63,1% utvinning.
Denne hepatitt-B-overflateantigenholdige sammenslåtte fraksjon ble deretter konsentrert ved bruk av et Amicon YM 30-filter. Den konsentrerte hepatitt-B-overflateantigenholdige fraksjon ble deretter underkastet ionevekslingskromatografi.
Ionevekslingskromatografiet ble utført på en kolonne ved anvendelse av et dietylaminoetylkation som var blitt bundet til en cellulose-bærergrunnmasse. Denne kolonne ble ekvilibrert med en TRIS-kloridbuffer med en pH-verdi på 8.
Etter ekvilibrering av harpiksen ble den hepatitt-B-overflateantigenholdige sammenslåtte fraksjon bragt i berøring med ionevekslingskromatografiharpiksen.
Hepatitt-B-overflateantigenet ble deretter eluert fra harpiksen ved lineær gradienteluering ved anvendelse av en TRIS-klorid-buf fer med en pH-verdi på 8 og en natriumkloridkonsentrasjon som varierte fra 0 til 0,3 M.
Fraksjonene ble samlet opp etter hvert som de ble eluert fra kromatografikolonnen og ble analysert for hepatitt-B-overflateantigener som beskrevet tidligere. Prøver av de fraksjoner som viste oppviste hepatitt-B-overflateantigenaktivitet ble deretter underkastet sølvflekking (silver staining) og de resulterende geler ble analysert for å bekrefte nærværet og renheten av hepatitt-B-overflateantigen.
De fraksjoner som inneholdt'hepatitt-B-overflateantigen, ble slått sammen. En ytterligere AUSRIA II-analyse ble utført og viste at der var 63 mg hepatitt-B-overflateantigen til stede, hvilket representerte en utvinning på 42%. Produktet var tilnærmet 95% rent.
Den hepatitt-B-overflateantigenholdige oppløsning ble deretter filtrert gjennom et 0,2 mikrometer filter og lagret ved -70°C.
Dette eksempel viser således at hepatitt-B-overflateantigen-proteiner kan utvinnes fra gjærceller i henhold til den foreliggende oppfinnelse.

Claims (3)

1. Fremgangsmåte til utvinning av hepatitt-B-overflateantigen med opptil 95% renhet dyrket fra Pichia pastoris-celler transformert med et gen som koder for hepatitt-B-overflateantigen-peptid, karakterisert ved at (a) nevnte dyrkede gjærceller lyseres i nærvær av en fosfatbuffer som har en pH-verdi på tilnærmet 7,5 og en kaliumtiocyanat-konsentrasjon på tilnærmet 3 molar og den hepatitt-B-overflateantigenholdige supernatant separeres fra de lysert celler; (b) den hepatitt-B-overflateantigenholdige supernatant oppnådd i trinn (a) underkastes betingelser egnet til å utfelle lipider og forurensende proteiner fra nevnte supernatant og nevnte utfelling utføres ved en temperatur på tilnærmet 20<*>C i nærvær av fosforsyre som har en konsentrasjon tilstrekkelig til å senke pH-verdien til 5,0; (c) etter nevnte utfelling tilsettes tilstrekkelig natriumhydroksid til å heve pH-verdien av nevnte hepatitt-B-overf lateantigenholdige oppløsning til tilnærmet 6,5; (d) nevnte hepatitt-B-overflateantigenholdige oppløsning oppnådd i trinn (c) underkastes diafiltrering på en membran som har en molekylvekteksklusjonsgrense på 100 000 og i nærvær av en fosfatbuffer som har en pH-verdi på tilnærmet 7,5; (e) nevnte hepatitt-B-overflateantigenholdige retentat som fås i trinn (d) bringes i kontakt med en tilstrekkelig mengde av en tilnærmet 50 vekt% silikaslurry slik at for hvert 1 mg av hepatitt-B-overflateantigenaktivitet tilstede i nevnte supernatant benyttes det 60 mg silika; (f) nevnte forurensende proteiner vaskes fra nevnte silika med et fosfatbufret salinebuffersystem som har en pH-verdi i området 6-8 og inneholder 0,15 M NaCl; (g) nevnte hepatitt-B-overflateantigen elueres fra silikaet med en karbonat-bikarbonat buffer som har en pH-verdi i området 9,5-11,0 og en ureakonsentrasjon i området 0,5-8 M; (h) nevnte hepatitt-B-overflateantigenholdige fraksjon oppnådd i trinn (g) underkastes diafiltrering på en membran som har en molekylvekteksklusjonsgrense på 100 000 i nærvær av en TRIS-kloridbuf f er som har en pH-verdi på tilnærmet 8; (i) nevnte gelfiltrering utføres på en agarosegel som har en molekylvekteksklusjonsgrense på 20-10^ og nevnte hepatitt-B-overf lateantigen elueres gjennom nevnte agarosegel med en TRIS-kloridbuf fer som har en pH-verdi på tilnærmet 8; og (j) den hepatitt-B-overflateantigenholdige fraksjon som fås i trinn (i) underkastes ionevekslingskromatografi under anvendelse av et dietylaminoetylkation og nevnte hepatitt-B-overflateantigen elueres fra nevnte kation med TRIS-kloridbuffer som har en natriumkloridkonsentrasjon i området fra 0 til 0,3 M.
2. Fremgangsmåte som angitt i krav 1, karakterisert ved at gjærcellene blir lysert ved glassperleknusing.
3. Fremgangsmåte som angitt i krav 1, karakterisert ved at nevnte gjærceller utgjør Pichia pastoris GS115 (NRRL Y-15851) transformert med pBSAG151 (NRRLB-18021).
NO891532A 1988-04-15 1989-04-13 Fremgangsmåte for rensing av hepatittproteiner NO176439C (no)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US07/181,934 US5004688A (en) 1988-04-15 1988-04-15 Purification of hepatitis proteins

Publications (4)

Publication Number Publication Date
NO891532D0 NO891532D0 (no) 1989-04-13
NO891532L NO891532L (no) 1989-10-16
NO176439B true NO176439B (no) 1994-12-27
NO176439C NO176439C (no) 1995-04-05

Family

ID=22666418

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
NO891532A NO176439C (no) 1988-04-15 1989-04-13 Fremgangsmåte for rensing av hepatittproteiner

Country Status (14)

Country Link
US (1) US5004688A (no)
EP (1) EP0337492B1 (no)
JP (1) JP2721699B2 (no)
KR (1) KR960004707B1 (no)
AT (1) ATE124088T1 (no)
AU (1) AU608706B2 (no)
CA (1) CA1339792C (no)
DE (1) DE68923115T2 (no)
DK (1) DK181589A (no)
ES (1) ES2075006T3 (no)
IE (1) IE68408B1 (no)
IL (1) IL89924A0 (no)
MX (1) MX166707B (no)
NO (1) NO176439C (no)

Families Citing this family (42)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE69013471T2 (de) * 1989-12-05 1995-03-30 Merck & Co Inc Methode zur Stabilisierung von rekombinanten Hepatitis-B-Virus-Oberflächenproteinen aus Hefe.
CU22290A1 (es) * 1990-10-08 1995-01-31 Cigb Procedimiento para la obtencion de antigeno de superficie del virus de la hepatitis b de superior capacidad inmunoganica y su uso en un preparado vacunal
WO1992013951A1 (en) * 1991-02-04 1992-08-20 The Salk Institute Biotechnology/Industrial Associates, Inc. Production of human serum albumin in methylotrophic yeast cells
US5102989A (en) * 1991-03-15 1992-04-07 Merck & Co., Inc. Method of stabilizing recombinant hepatitis B virus surface proteins from recombinant host cells
IT1248075B (it) * 1991-06-18 1995-01-05 Sclavo Spa Processo per la purificazione del virus dell'epatite a (hav), virus cosi` purificato e composizioni vaccinali che lo contengono.
RU2128707C1 (ru) * 1992-01-17 1999-04-10 Сентро Де Инженьериа Генетика И Биотекнологиа Способ получения поверхностного антигена вируса гепатита в (hbs ag), моноклональные антитела св-hepi, поверхностный антиген вируса гепатита в (hbs ag) и способ получения гибридного клона 48/1/574, продуцирующего моноклональные антитела св-hepi
US6362003B1 (en) 1992-02-24 2002-03-26 Coulter Corporation Hematological reference control composition containing leukocyte analogs, methods of making, and uses thereof
US5494801A (en) * 1993-12-03 1996-02-27 Biostar, Inc. Microorganism antigen extraction methods
US5451660A (en) * 1993-12-13 1995-09-19 Genentech, Inc. Method for purifying polypeptides
HRP950097A2 (en) 1994-03-08 1997-06-30 Merck & Co Inc Hepatitis a virus culture process
US5863894A (en) * 1995-06-05 1999-01-26 Corvas International, Inc. Nematode-extracted anticoagulant protein
CA2202351A1 (en) * 1994-10-18 1996-04-25 George Phillip Vlasuk Nematode-extracted serine protease inhibitors and anticoagulant proteins
US5866543A (en) * 1995-06-05 1999-02-02 Corvas International, Inc. Nematode-extracted anticoagulant protein
US5872098A (en) * 1995-06-05 1999-02-16 Corvas International, Inc. Nematode-extracted anticoagulant protein
NZ296648A (en) * 1994-10-18 2001-05-25 Corvas Int Inc Nematode-extracted serine protease inhibitors and anticoagulant proteins
US5866542A (en) * 1994-10-18 1999-02-02 Corvas International, Inc. Nematode-extracted anticoagulant protein
US5945275A (en) * 1994-10-18 1999-08-31 Corvas International, Inc. Nematode-extracted anticoagulant protein
KR960023066A (ko) * 1994-12-10 1996-07-18 성재갑 전에스 (s) 2 펩티드 함유 비 (b) 형 간염 표면항원의 정제 방법
MX9605082A (es) 1996-10-24 1998-04-30 Univ Autonoma De Nuevo Leon Levaduras metilotroficas modificadas geneticamente para la produccion y secrecion de hormona de crecimiento humano.
KR100251015B1 (ko) * 1997-06-05 2000-05-01 성재갑 B형간염표면항원의정제방법
DE19918619A1 (de) * 1999-04-23 2000-10-26 Rhein Biotech Proz & Prod Gmbh Verfahren zum Gewinnen von rekombinantem HBsAg
US7625756B2 (en) 2000-06-28 2009-12-01 GycoFi, Inc. Expression of class 2 mannosidase and class III mannosidase in lower eukaryotic cells
WO2002000879A2 (en) * 2000-06-28 2002-01-03 Glycofi, Inc. Methods for producing modified glycoproteins
US7449308B2 (en) * 2000-06-28 2008-11-11 Glycofi, Inc. Combinatorial DNA library for producing modified N-glycans in lower eukaryotes
US7598055B2 (en) * 2000-06-28 2009-10-06 Glycofi, Inc. N-acetylglucosaminyltransferase III expression in lower eukaryotes
US7863020B2 (en) * 2000-06-28 2011-01-04 Glycofi, Inc. Production of sialylated N-glycans in lower eukaryotes
US8697394B2 (en) * 2000-06-28 2014-04-15 Glycofi, Inc. Production of modified glycoproteins having multiple antennary structures
JP4798833B2 (ja) * 2000-10-24 2011-10-19 一般財団法人化学及血清療法研究所 加熱処理工程を含むヒト血清アルブミンの製造方法
KR100405174B1 (ko) * 2001-02-02 2003-11-12 씨제이 주식회사 재조합 β형 간염바이러스 표면항원의 정제방법
KR100436655B1 (ko) * 2001-07-25 2004-06-22 (주)엘피스바이오텍 광범위한 단백질에 적용할 수 있는 단백질의 농축 및정제 방법
US7118901B2 (en) * 2002-12-18 2006-10-10 Roche Diagnostics Operations, Inc. Recombinant bovine pancreatic desoxyribonuclease I with high specific activity
DE60319333D1 (de) * 2002-12-20 2008-04-10 Roche Diagnostics Gmbh Hitzelabile Desoxyribonuklease I-Varianten
US7332299B2 (en) * 2003-02-20 2008-02-19 Glycofi, Inc. Endomannosidases in the modification of glycoproteins in eukaryotes
EP1460425A1 (en) 2003-03-17 2004-09-22 Boehringer Mannheim Gmbh Deglycosylated enzymes for conjugates
DE602004025192D1 (de) * 2003-12-05 2010-03-11 Roche Diagnostics Gmbh Rekombinante Carboxypeptidase B und ihre Aufreinigung
CA2548378A1 (en) * 2003-12-30 2005-07-14 Bharat Biotech International Limited A process for the preparation and purification of recombinant proteins
CA2621344C (en) * 2005-09-14 2014-12-16 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Cleavage of precursors of insulins by a variant of trypsin
AU2013330344B2 (en) 2012-09-17 2018-07-05 W. R. Grace & Co.-Conn. Chromatography media and devices
WO2015080943A1 (en) 2013-11-26 2015-06-04 Yale University Novel cell-penetrating compositions and methods using same
JP6914189B2 (ja) 2014-05-02 2021-08-04 ダブリュー・アール・グレース・アンド・カンパニー−コーンW R Grace & Co−Conn 官能化担体材料並びに官能化担体材料を作製及び使用する方法
EP3302784B1 (en) 2015-06-05 2021-10-06 W.R. Grace & Co.-Conn. Adsorbent bioprocessing clarification agents and methods of making and using the same
CN108047316B (zh) * 2018-01-04 2021-06-15 远大赛威信生命科学(南京)有限公司 重组乙肝核心抗原的分离纯化方法

Family Cites Families (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4515714A (en) * 1983-03-09 1985-05-07 Juridicial Foundation, The Chemo-Semo-Sero-Therapeutic Research Institute Method for purification of hepatitis B virus surface antigen
US4533596A (en) * 1983-06-28 1985-08-06 Ncr Corporation Thermal magnetic transfer ribbon
JPS6078999A (ja) * 1983-10-05 1985-05-04 Chemo Sero Therapeut Res Inst HBs抗原の精製方法
JPS60197629A (ja) * 1984-03-16 1985-10-07 Chemo Sero Therapeut Res Inst HBs抗原の精製方法
US4624918A (en) * 1984-07-09 1986-11-25 Genentech, Inc. Purification process for hepatitis surface antigen and product thereof
CA1268437A (en) * 1984-12-21 1990-05-01 Haruo Fujita Method for purification of hbc antigen and method for measurement of hbc antibody by using said purified hbc antigen
US4649192A (en) * 1985-05-30 1987-03-10 Smith Kline-Rit Method for the isolation and purification of hepatitis B surface antigen using polysorbate
US4895800A (en) * 1985-11-26 1990-01-23 Phillips Petroleum Company Yeast production of hepatitis B surface antigen
US4683293A (en) * 1986-10-20 1987-07-28 Phillips Petroleum Company Purification of pichia produced lipophilic proteins

Also Published As

Publication number Publication date
IE68408B1 (en) 1996-06-12
ATE124088T1 (de) 1995-07-15
EP0337492B1 (en) 1995-06-21
DK181589A (da) 1989-10-16
ES2075006T3 (es) 1995-10-01
KR960004707B1 (ko) 1996-04-12
MX166707B (es) 1993-01-28
IE891206L (en) 1989-10-15
NO176439C (no) 1995-04-05
JP2721699B2 (ja) 1998-03-04
DK181589D0 (da) 1989-04-14
AU608706B2 (en) 1991-04-11
JPH01311028A (ja) 1989-12-15
DE68923115T2 (de) 1995-11-02
DE68923115D1 (de) 1995-07-27
CA1339792C (en) 1998-03-31
IL89924A0 (en) 1989-12-15
US5004688A (en) 1991-04-02
KR890016166A (ko) 1989-11-28
NO891532D0 (no) 1989-04-13
NO891532L (no) 1989-10-16
EP0337492A1 (en) 1989-10-18
AU3277989A (en) 1989-10-19

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0337492B1 (en) Purification of hepatitis proteins
US4683293A (en) Purification of pichia produced lipophilic proteins
KR940010283B1 (ko) 단백질이 생성된 배양배지로부터 그 단백질을 추출 및 정제하는 방법
EP2129684B1 (en) Method of purification of hydrophobic proteins
EP0477285B1 (en) Processes for the recovery of microbially produced chymosin
KR910008643B1 (ko) B형 간염 비루스 표면항원(HBs 항원)의 정제 방법
US5139943A (en) Processes for the recovery of microbially produced chymosin
Sitrin et al. Survey of licensed hepatitis B vaccines and their production processes
EP0243103B1 (en) Purification of pre-s hbsag by polymerized serum albumin affinity binding
CA2078365C (en) Pichia pastoris linear plasmids and dna fragments thereof
KR100194247B1 (ko) 재조합 b형 간염 표면 항원의 정제방법
JPS61148127A (ja) HBc抗原の精製方法
EP0384058A1 (en) Isolation of hepatitis B surface antigen from transformed yeast cells
KR0122431B1 (ko) 당함량이 낮은 바이러스 표면 항원 입자의 제조 방법
WO1987000553A1 (en) Process for preparing hetero-protein
Milburn Optimization of large scale virus-like particle purification
JPH04229187A (ja) 組換えヒトγインターフェロンの抽出および精製方法

Legal Events

Date Code Title Description
MM1K Lapsed by not paying the annual fees