KR20190040364A - 옥심 결합용 친핵성 촉매 - Google Patents

옥심 결합용 친핵성 촉매 Download PDF

Info

Publication number
KR20190040364A
KR20190040364A KR1020197010071A KR20197010071A KR20190040364A KR 20190040364 A KR20190040364 A KR 20190040364A KR 1020197010071 A KR1020197010071 A KR 1020197010071A KR 20197010071 A KR20197010071 A KR 20197010071A KR 20190040364 A KR20190040364 A KR 20190040364A
Authority
KR
South Korea
Prior art keywords
protein
buffer
hepes
growth factor
psa
Prior art date
Application number
KR1020197010071A
Other languages
English (en)
Other versions
KR102088852B1 (ko
Inventor
위르겐 지크만
스테판 하이더
한스페터 로텐스타이너
안드레아스 이벤스
페터 투레첵
올리버 죄흘링
Original Assignee
박스알타 인코퍼레이티드
박스앨타 게엠베하
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 박스알타 인코퍼레이티드, 박스앨타 게엠베하 filed Critical 박스알타 인코퍼레이티드
Publication of KR20190040364A publication Critical patent/KR20190040364A/ko
Application granted granted Critical
Publication of KR102088852B1 publication Critical patent/KR102088852B1/ko

Links

Images

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K47/00—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
    • A61K47/50—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates
    • A61K47/51—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent
    • A61K47/56—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule
    • A61K47/59—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule obtained otherwise than by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds, e.g. polyureas or polyurethanes
    • A61K47/60—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule obtained otherwise than by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds, e.g. polyureas or polyurethanes the organic macromolecular compound being a polyoxyalkylene oligomer, polymer or dendrimer, e.g. PEG, PPG, PEO or polyglycerol
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K47/00—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
    • A61K47/06—Organic compounds, e.g. natural or synthetic hydrocarbons, polyolefins, mineral oil, petrolatum or ozokerite
    • A61K47/16—Organic compounds, e.g. natural or synthetic hydrocarbons, polyolefins, mineral oil, petrolatum or ozokerite containing nitrogen, e.g. nitro-, nitroso-, azo-compounds, nitriles, cyanates
    • A61K47/18—Amines; Amides; Ureas; Quaternary ammonium compounds; Amino acids; Oligopeptides having up to five amino acids
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K47/00—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
    • A61K47/50—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates
    • A61K47/51—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent
    • A61K47/56—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule
    • A61K47/61—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule the organic macromolecular compound being a polysaccharide or a derivative thereof
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P1/00—Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system
    • A61P1/16—Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system for liver or gallbladder disorders, e.g. hepatoprotective agents, cholagogues, litholytics
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P15/00—Drugs for genital or sexual disorders; Contraceptives
    • A61P15/08—Drugs for genital or sexual disorders; Contraceptives for gonadal disorders or for enhancing fertility, e.g. inducers of ovulation or of spermatogenesis
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P17/00—Drugs for dermatological disorders
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P19/00—Drugs for skeletal disorders
    • A61P19/08—Drugs for skeletal disorders for bone diseases, e.g. rachitism, Paget's disease
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P19/00—Drugs for skeletal disorders
    • A61P19/08—Drugs for skeletal disorders for bone diseases, e.g. rachitism, Paget's disease
    • A61P19/10—Drugs for skeletal disorders for bone diseases, e.g. rachitism, Paget's disease for osteoporosis
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P25/00—Drugs for disorders of the nervous system
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P3/00—Drugs for disorders of the metabolism
    • A61P3/08—Drugs for disorders of the metabolism for glucose homeostasis
    • A61P3/10—Drugs for disorders of the metabolism for glucose homeostasis for hyperglycaemia, e.g. antidiabetics
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00—Antineoplastic agents
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00—Antineoplastic agents
    • A61P35/02—Antineoplastic agents specific for leukemia
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00—Drugs for immunological or allergic disorders
    • A61P37/02—Immunomodulators
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00—Drugs for immunological or allergic disorders
    • A61P37/02—Immunomodulators
    • A61P37/04—Immunostimulants
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P43/00—Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P5/00—Drugs for disorders of the endocrine system
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P5/00—Drugs for disorders of the endocrine system
    • A61P5/06—Drugs for disorders of the endocrine system of the anterior pituitary hormones, e.g. TSH, ACTH, FSH, LH, PRL, GH
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P5/00—Drugs for disorders of the endocrine system
    • A61P5/24—Drugs for disorders of the endocrine system of the sex hormones
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P7/00—Drugs for disorders of the blood or the extracellular fluid
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P7/00—Drugs for disorders of the blood or the extracellular fluid
    • A61P7/02—Antithrombotic agents; Anticoagulants; Platelet aggregation inhibitors
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P7/00—Drugs for disorders of the blood or the extracellular fluid
    • A61P7/04—Antihaemorrhagics; Procoagulants; Haemostatic agents; Antifibrinolytic agents
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P7/00—Drugs for disorders of the blood or the extracellular fluid
    • A61P7/06—Antianaemics
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00—Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00—Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • A61P9/02—Non-specific cardiovascular stimulants, e.g. drugs for syncope, antihypotensives

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Physical Education & Sports Medicine (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Rheumatology (AREA)
  • Cardiology (AREA)
  • Orthopedic Medicine & Surgery (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Reproductive Health (AREA)
  • Oil, Petroleum & Natural Gas (AREA)
  • Obesity (AREA)
  • Emergency Medicine (AREA)
  • Gynecology & Obstetrics (AREA)
  • Neurosurgery (AREA)
  • Neurology (AREA)
  • Dermatology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Pregnancy & Childbirth (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)

Abstract

본 발명은 물질, 및 수용성 폴리머를 치료 단백질의 산화된 탄수화물 모이어티에 콘주게이트하는 방법에 관한 것이고, 상기 방법은 콘주게이션을 허용하는 조건 하에서 상기 산화된 탄수화물 모이어티를 활성화된 수용성 폴리머와 접촉시키는 것을 포함한다. 더 상세하게는, 본 발명은 상기 언급된 물질 및 방법들에 관한 것이고, 여기서 상기 수용성 폴리머는 활성 아미노옥시 그룹을 함유하고 옥심 또는 하이드라존 결합은 상기 산화된 탄수화물 모이어티와, 수용성 폴리머 상의 상기 활성 아미노옥시 그룹 사이에서 형성되고, 상기 콘주게이션은 친핵성 촉매의 존재에서 수행된다.

Description

옥심 결합용 친핵성 촉매 {NUCLEOPHILIC CATALYSTS FOR OXIME LINKAGE}
본 발명은 수용성 폴리머를 단백질에 콘주게이션 (conjugation)시키는 물질 및 방법에 관한 것이다.
수용성 폴리머 및 치료 단백질 사이의 공유 결합의 형성에 의한 콘주게이트의 제조는 다양한 화학 방법들에 의해 수행될 수 있다. 폴리펩티드 약물의 페길화 (PEGylation)는 순환 중에서 이들을 보호하고, 이들의 약동학적 및 약력학적 특성을 개선시킨다 (Harris 및 Chess, Nat Rev Drug Discov. 2003;2:214-21). 페길화 공정은 폴리펩티드 약물에 에틸렌 글리콜의 반복 단위 (폴리에틸렌 글리콜 (PEG))를 부착시킨다. PEG 분자는 큰 유체역학적 용적 (구형 단백질의 크기의 5 내지 10 배)을 가지며, 물에 매우 잘 용해되고, 수화되며, 비-독성이고, 비-면역원성이며, 신체로부터 빠르게 제거된다. 분자의 페길화는 효소적 분해에 대한 약물의 저항성 증가, 생체내 반감기 증가, 투약 빈도의 감소, 면역원성의 저하, 물리적 및 열적 안정성의 증가, 용해도 증가, 액체 안정성의 증가, 및 응집의 감소를 유도할 수 있다. 최초의 페길화된 약물은 1990년대 초반에 FDA에 의해서 승인되었다. 그 이후에, FDA는 경구, 주사 및 국소 투여를 위한 여러 페길화된 약물을 승인하였다.
콜로민산 (CA)으로도 불리는 폴리시알산 (PSA)은 천연적으로 발생한 폴리사카라이드이다. 이것은 α (2→8) 케토시딕 (ketosidic) 결합을 갖는 N-아세틸뉴라민산의 단일 중합체 (homopolymer)이며, 그의 비-환원성 말단에 인접한 디올기를 함유한다. 이것은 음으로 하전되며, 인체의 천연 구성성분이다. 이것은 박테리아로부터 대량으로, 예정된 물리적 특성을 가지고 쉽게 생산될 수 있다 (미국 특허 제5,846,951호). 박테리아에서 생산된 PSA는 인체에서 생산된 PSA와 화학적으로 및 면역학적으로 동일하기 때문에, 박테리아 PSA는, 심지어 단백질에 커플링된 경우에도 비-면역원성이다. 일부의 폴리머들과 달리, PSA 산은 생물 분해성이다. 카탈라제 및 아스파라기나제에 대한 콜로민산의 공유적 커플링은 단백분해 효소 또는 혈장의 존재 하에서 효소 안정성을 증가시키는 것으로 나타났다. 폴리시알릴화 및 비변형된 아스파라기나제를 이용한 생체내 비교 시험에서, 폴리시알릴화가 효소의 반감기를 증가시켰다는 것이 밝혀졌다 (Fernandes and Gregoriadis, Int J Pharm. 2001;217:215-24).
펩티드 또는 단백질에 대한 PEG-유도체의 커플링은 로버츠 (Roberts) 등에 의해서 검토되었다 (Adv Drug Deliv Rev 2002;54:459-76). 수용성 폴리머를 치료학적 단백질에 커플링시키는 한가지 접근 방법은 단백질의 탄수화물 부위를 통한 폴리머의 콘주게이션이다. 단백질 내의 탄수화물의 인접한 히드록실기 (OH)는 과요오드산 나트륨 (NaIO4)에 의해서 쉽게 산화되어 활성 알데히드기를 형성할 수 있다 (Rothfus et Smith, J Biol Chem 1963; 238:1402-10; van Lenten et Ashwell, J Biol Chem 1971;246:1889-94). 그 다음, 상기 폴리머는, 예를 들어 활성 히드라지드기를 함유하는 시약을 사용함으로써 상기 탄수화물의 알데히드기에 커플링될 수 있다 (Wilchek M 및 Bayer EA, Methods Enzymol 1987;138:429-42). 보다 최근의 기술로서 알데히드와 반응하여 옥심 결합을 형성하는 아미노옥시기를 함유하는 시약을 사용하는 것이 있다 (WO 96/40662, WO2008/025856).
치료학적 단백질에 대한 수용성 폴리머의 콘주게이션을 설명하는 추가적인 예는, 폰 빌레브란트 인자 내의 탄수화물 부위를 산화시키고, 이어서 히드라지드 화학 반응을 이용하여 PEG에 대해 커플링시키는 것을 교시한 WO 06/071801; rFⅧ를 산화시키고, 이어서 히드라지드 화학 반응을 이용하여 PEG 및 그 밖의 다른 수용성 폴리머 (예를 들어, PSA, HES, 덱스트란)에 커플링시키는 것을 교시한 미국 공개 제2009/0076237호; 다른 응고 인자, 예를 들어, rFIX, FⅧ 및 FⅦa를 산화시키고, 이어서 옥심 결합의 형성에 의한 아미노 옥시 화학 반응을 이용하여, 예를 들어, PEG에 커플링시키는 것을 교시한 WO 2008/025856; 및 FIX를 산화시키고, 이어서 히드라지드 화학 반응을 이용하여 PEG에 커플링시키는 것을 교시한 미국 특허 제5,621,039호에 기술되어 있다.
최근, 시알산의 약한 과요오드산염 산화로 알데히드를 생성시키고, 이어서 촉매량의 아닐린의 존재 하에서 아미노옥시기를 함유하는 시약과 반응시키는 것을 포함하는 개선된 방법이 기술되었다 (Dirksen A 및 Dawson PE, Bioconjugate Chem. 2008;19,2543-8; 및 Zeng Y 등, Nature Methods 2009;6:207-9). 상기 아닐린 촉매작용은 옥심 라이게이션 (ligation)을 극적으로 촉진시켜, 매우 낮은 농도의 시약의 사용을 가능하게 한다. 친핵성 촉매의 사용은 또한 하기에 기재되어 있다: Dirksen, A, et al, J Am Chem Soc, 128:15602-3 (2006); Dirksen, A, et al, Angew chem. Int Ed, 45:7581-4 (2006); Kohler, J.J, ChemBioChem, 10:2147-50 (2009); Giuseppone, N, et al, J Am Chem Soc, 127:5528-39 (2005); 및 Thygesen, M.B, et al, J Org Chem, 75:1752-5 (2010).
아닐린 촉매작용이 짧은 반응 시간 및 저농도의 아미노옥시 사약의 사용을 허용하는 옥심 결찰을 촉진할 수 있지만, 아닐린은, 예를 들면, 콘주게이트된 치료 단백질이 약품의 기초를 형성할 때 고려되어야 되는 독성 특성을 갖는다. 예를 들면, 아닐린은 메트헤모글로빈혈증을 유발하는 것으로 보여졌다 (Harrison, J.H., 및 Jollow, D.J, Molecular Pharmacology, 32(3) 423-431, 1987). 랫트의 장기 식이 치료는 비장에서 종양을 유발하는 것을 보여졌다 (Goodman, DG, et al, J Natl Cancer Inst, 73(1):265-73, 1984). 시험관 내에서 연구는 또한, 아닐린이 염색체 돌연변이를 유발하는 잠재성을 가지며 잠재적 유전독성 활성을 갖는다는 것을 보여주었다 (Bombhard E.M. et Herbold B, Critical Reviews in Toxicology 35,783-835, 2005).
아닐린의 잠재적 위험 특성을 고려하고 상기 방법들로 치료학적 단백질에 수용성 폴리머를 콘주게이션하는 것이 가능하나, 다양한 시약과 관련된 비용을 최소화하고 환자 수령인에 대한 건강 위험을 최소화하면서 단백질의 약동학적 및/또는 약력학적 특성을 개선시키는, 단백질에 수용성 폴리머를 콘주게이션시키는 물질 및 방법을 개발할 필요성은 여전히 남아있다.
발명의 요약
본 발명은 콘주게이션 반응이 친핵성 촉매에 의해 촉진될 때 다양한 시약과 관련된 비용 및 환자 수령인에 대한 건강 위험을 최소화하면서 단백질의 약동학적 및/또는 약력학적 특성을 개선시키는, 단백질에 수용성 폴리머를 콘주게이션시키는 물질 및 방법을 제공한다. 본 발명의 다양한 구현예에서, 아닐린을 대신하는 대안적인 촉매가 제공된다.
일 구현예에서, 수용성 폴리머를 치료 단백질의 산화된 탄수화물 모이어티에 코주게이션시키는 방법이 제공되고, 이 방법은 콘주게이션을 허용하는 조건 하에서 상기 산화된 탄수화물 모이어티를 활성화된 수용성 폴리머와 접촉시키는 것을 포함하고; 상기 수용성 폴리머는 활성 아미노옥시 그룹을 함유하고 폴리에틸렌 글라이콜 (PEG), 분지형 PEG, PolyPEG® (Warwick Effect Polymers; Coventry, UK), 폴리시알산 (PSA), 전분, 하이드록시알킬 전분 (HAS), 하이드록실에틸 전분 (HES), 탄수화물, 다당류, 풀루란, 키토산, 히알루론산, 콘드로이틴 설페이트, 더마탄 설페이트, 전분, 덱스트란, 카복시메틸-덱스트란, 폴리알킬렌 옥사이드 (PAO), 폴리알킬렌 글라이콜 (PAG), 폴리프로필렌 글라이콜 (PPG), 폴리옥사졸린, 폴리아크릴로일모폴린, 폴리비닐 알코올 (PVA), 폴리카복실레이트, 폴리비닐피롤리돈, 폴리포스파젠, 폴리옥사졸린, 폴리에틸렌-코-말레산 무수물, 폴리스티렌-코-말레산 무수물, 폴리(1-하이드록시메틸에틸렌 하이드록시메틸포름알) (PHF), 2-메타크릴로일옥시-2'-에틸트리메틸암모늄포스페이트 (MPC)로 이루어진 그룹으로부터 선택되고; 상기 탄수화물 모이어티는 나트륨 페리오데이트 (NaIO4), 납 테트라아세테이트 (Pb(OAc)4) 및 칼륨 퍼루테네이트 (KRuO4)로 이루어진 그룹으로부터 선택된 산화제를 포함하는 완충액으로 인큐베이션에 의해 산화되고; 여기서 옥심 결합은 상기 산화된 탄수화물 모이어티와, 수용성 폴리머 상의 상기 활성 아미노옥시 그룹 사이에서 형성되고; 여기서 상기 옥심 결합 형성은 o-아미노 벤조산, m-아미노 벤조산, p-아미노 벤조산, 설파닐산, o-아미노벤즈아마이드, o-톨루이딘, m-톨루이딘, p-톨루이딘, o-아니시딘, m-아니시딘, 및 p-아니시딘으로 이루어진 그룹으로부터 선택된 친핵성 촉매에 의해 촉진된다.
또 하나의 구현예에서, 수용성 폴리머를 치료 단백질의 산화된 탄수화물 모이어티에 코주게이션시키는 방법이 제공되고, 이 방법은 콘주게이션을 허용하는 조건 하에서 상기 산화된 탄수화물 모이어티를 활성화된 수용성 폴리머와 접촉시키는 것을 포함하고; 상기 치료 단백질은 인자 IX (FIX), 인자 VIII (FVIII), 인자 VIIa (FVIIa), 폰빌레브란트 인자 (VWF), 인자 FV (FV), 인자 X (FX), 인자 XI (FXI), 인자 XII (FXII), 트롬빈 (FII), 단백질 C, 단백질 S, tPA, PAI-1, 조직 인자 (TF),ADAMTS 13 프로테아제, IL-1 알파, IL-1 베타, IL-2, IL-3, IL-4, IL-5, IL-6, IL-11, 콜로니 자극 인자-1 (CSF-1), M-CSF, SCF, GM-CSF, 과립구 콜로니 자극 인자 (G-CSF), EPO, 인터페론-알파 (IFN-알파), 공통 인터페론, IFN-베타, IFN-감마, IFN-오메가, IL-7, IL-8, IL-9, IL-10, IL-12, IL-13, IL-14, IL-15, IL-16, IL-17, IL-18, IL-19, IL-20, IL-21, IL-22, IL-23, IL-24, IL-31, IL-32 알파, IL-33, 트롬보포이에틴 (TPO), Ang-1, Ang-2, Ang-4, Ang-Y, 안지오포이에틴-유사 폴리펩티드 1 (ANGPTL1), 안지오포이에틴-유사 폴리펩티드 2 (ANGPTL2), 안지오포이에틴-유사 폴리펩티드 3 (ANGPTL3), 안지오포이에틴-유사 폴리펩티드 4 (ANGPTL4), 안지오포이에틴-유사 폴리펩티드 5 (ANGPTL5), 안지오포이에틴-유사 폴리펩티드 6 (ANGPTL6), 안지오포이에틴-유사 폴리펩티드 7 (ANGPTL7), 바이트로넥틴, 혈관 내피 성장 인자 (VEGF), 안지오게닌, 액티빈 A, 액티빈 B, 액티빈 C, 골형성 단백질-1, 골형성 단백질-2, 골형성 단백질-3, 골형성 단백질-4, 골형성 단백질-5, 골형성 단백질-6, 골형성 단백질-7, 골형성 단백질-8, 골형성 단백질-9, 골형성 단백질-10, 골형성 단백질-11, 골형성 단백질-12, 골형성 단백질-13, 골형성 단백질-14, 골형성 단백질-15, 골형성 단백질 수용체 IA, 골형성 단백질 수용체 IB, 골형성 단백질 수용체 II, 뇌 유래 신경친화성 인자, 카디오트로핀-1, 섬모 신경친화성 인자, 섬모 신경친화성 인자 수용체, 크립토, 크립틱, 시토카인 유래 중성구 화학주성 인자 1, 시토카인 유래 중성구, 화학주성 인자 2α, 시토카인 유래 중성구 화학주성 인자 2β, β 내피 세포 성장 인자, 엔도텔린 1, 표피 성장 인자, 에피겐, 에피레굴린, 상피-유래된 중성구 유인체, 섬유아세포 성장 인자 4, 섬유아세포 성장 인자 5, 섬유아세포 성장 인자 6, 섬유아세포 성장 인자 7, 섬유아세포 성장 인자 8, 섬유아세포 성장 인자 8b, 섬유아세포 성장 인자 8c, 섬유아세포 성장 인자 9, 섬유아세포 성장 인자 10, 섬유아세포 성장 인자 11, 섬유아세포 성장 인자 12, 섬유아세포 성장 인자 13, 섬유아세포 성장 인자 16, 섬유아세포 성장 인자 17, 섬유아세포 성장 인자 19, 섬유아세포 성장 인자 20, 섬유아세포 성장 인자 21, 산성 섬유아세포 성장 인자, 염기성 섬유아세포 성장 인자, 신경아교세포계-유래된 신경친화성 인자 수용체 α1, 신경아교세포계-유래된 신경친화성 인자 수용체 α2, 성장 관련 단백질, 성장 관련 단백질 α, 성장 관련 단백질 β, 성장 관련 단백질 γ, 헤파린 결합 표피 성장 인자, 간세포 성장 인자, 간세포 성장 인자 수용체, 간종양-유래된 성장 인자, 인슐린-유사 성장 인자 I, 인슐린-유사 성장 인자 수용체, 인슐린-유사 성장 인자 II, 인슐린-유사 성장 인자 결합 단백질, 케라틴생성세포 성장 인자, 백혈병 억제 인자, 백혈병 억제 인자 수용체 α, 신경 성장 인자 신경 성장 인자 수용체, 뉴로포이에틴,뉴로트로핀-3, 뉴로트로핀-4, 온코스타틴 M (OSM), 태반 성장 인자, 태반 성장 인자 2, 혈소판-유래된 내피 세포 성장 인자, 혈소판 유래 성장 인자, 혈소판 유래 성장 인자 A 사슬, 혈소판 유래 성장 인자 AA, 혈소판 유래 성장 인자 AB, 혈소판 유래 성장 인자 B 사슬, 혈소판 유래 성장 인자 BB, 혈소판 유래 성장 인자 수용체 α, 혈소판 유래 성장 인자 수용체 β, B형 전구세포 성장 자극 인자, 줄기세포 인자 (SCF), 줄기세포 인자 수용체, TNF, TNF0, TNF1, TNF2, 변형 성장 인자 α, 변형 성장 인자 β, 변형 성장 인자 β1, 변형 성장 인자 β1.2, 변형 성장 인자 β2, 변형 성장 인자 β3, 변형 성장 인자 β5, 잠재형 변형 성장 인자 β1, 변형 성장 인자 β 결합 단백질 I, 변형 성장 인자 β 결합 단백질 II, 변형 성장 인자 β 결합 단백질 III, 흉선 기질 림포포이에틴 (TSLP), 종양 괴사 인자 수용체 유형 I, 종양 괴사 인자 수용체 유형 II, 유로키나아제-유형 플라스미노겐 활성제 수용체, 포스포리파아제 활성 단백질 (PUP), 인슐린, 렉틴 리신, 프로락틴, 융모성 생식선, 난포자극 호르몬, 갑성선 자극 호르몬, 조직 플라스미노겐 활성제, IgG, IgE, IgM, IgA, 및 IgD, α-갈라토시다아제, β-갈라토시다아제, DNAse, 페투인, 황체형성 호르몬, 에스트로겐, 인슐린, 알부민, 지단백질, 태아단백, 트랜스페린, 트롬보포이에틴, 유로키나아제, 인테그린, 트롬빈, 렙틴, 휴미라 (아달리무맙), 프롤리아 (데노수맙), Enbrel (에타네르셉트), 표 1의 단백질, 또는 생물학적 활성 단편, 그의 유도체 또는 변형로 이루어진 그룹으로부터 선택되고; 상기 수용성 폴리머는 활성 아미노옥시 그룹을 함유하고 폴리에틸렌 글라이콜 (PEG), 분지형 PEG, PolyPEG® (Warwick Effect Polymers; Coventry, UK), 폴리시알산 (PSA), 전분, 하이드록시알킬 전분 (HAS), 하이드록실에틸 전분 (HES), 탄수화물, 다당류, 풀루란, 키토산, 히알루론산, 콘드로이틴 설페이트, 더마탄 설페이트, 전분, 덱스트란, 카복시메틸-덱스트란, 폴리알킬렌 옥사이드 (PAO), 폴리알킬렌 글라이콜 (PAG), 폴리프로필렌 글라이콜 (PPG), 폴리옥사졸린, 폴리아크릴로일모폴린, 폴리비닐 알코올 (PVA), 폴리카복실레이트, 폴리비닐피롤리돈, 폴리포스파젠, 폴리옥사졸린, 폴리에틸렌-코-말레산 무수물, 폴리스티렌-코-말레산 무수물, 폴리(1-하이드록시메틸에틸렌 하이드록시메틸포름알) (PHF), 2-메타크릴로일옥시-2'-에틸트리메틸암모늄포스페이트 (MPC)로 이루어진 그룹으로부터 선택되고; 상기 탄수화물 모이어티는 나트륨 페리오데이트 (NaIO4), 납 테트라아세테이트 (Pb(OAc)4) 및 칼륨 퍼루테네이트 (KRuO4)로 이루어진 그룹으로부터 선택된 산화제를 포함하는 완충액으로 인큐베이션에 의해 산화되고; 여기서 옥심 결합은 상기 산화된 탄수화물 모이어티와, 수용성 폴리머 상의 상기 활성 아미노옥시 그룹 사이에서 형성되고; 여기서 상기 옥심 결합 형성은 o-아미노 벤조산, m-아미노 벤조산, p-아미노 벤조산, 설파닐산, o-아미노벤즈아마이드, o-톨루이딘, m-톨루이딘, p-톨루이딘, o-아니시딘, m-아니시딘, 및 p-아니시딘으로 이루어진 그룹으로부터 선택된 친핵성 촉매에 의해 촉진된다.
또 하나의 구현예에서, 상기 방법이 제공되고, 여기서 약 0.3 mg/ml 내지 약 3.0 mg/ml의 치료 단백질 초기 농도를 함유하는 용액은 상기 활성 수용성 폴리머와 접촉시키기 전에 pH 값 약 5.0 내지 약 8.0로 조정된다.
본원에서 사용된 바와 같이, 용어 "약"는 언급된 값 초과 또는 미만의 값을 의미한다. 다양한 구현예들에서, 용어 "약"은 언급된 값 플러스 또는 마이너스 언급된 값의 0.1, 0.2, 0.3, 0.4, 0.5, 0.6, 0.7, 0.8, 0.9, 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9 또는 10%를 포함한다.
또 하나의 구현예에서, 상기 방법이 제공되고, 상기 치료 단백질의 초기 농도는 약 1.0 mg/ml이고 pH는 약 6.0이다. 관련 구현예에서, 치료 단백질의 초기 농도는 약 0.75 mg/ml이고 pH는 약 6.0이다. 또 하나의 관련 구현예에서, 치료 단백질의 초기 농도는 약 1.25 mg/ml이고 pH는 약 6.0이다.
또 하나의 구현예에서, 상기 방법이 제공되고, 상기 치료 단백질은 원하는 과잉 농도의 활성 수용성 폴리머에 의해 접촉되고, 여기서 상기 과잉 농도는 약 1-몰 내지 약 300-몰 과잉이다. 또 하나의 구현예에서, 과잉 농도는 약 50-배 몰 과잉이다.
또 하나의 구현예에서, 상기 방법이 제공되고, 상기 치료 단백질은 약 0.5 시간 내지 약 24 시간의 지속시간; 약 2 ℃ 내지 약 37 ℃의 온도; 광의 존재 또는 부재에서; 및 교반하면서 또는 하지 않으면서를 포함하는 조건 하에서 활성화된 수용성 폴리머와 함께 인큐베이트된다. 또 하나의 구현예에서, 상기 조건은 약 120 분의 지속시간, 약 22 ℃의 온도, 광의 부재; 및 교반하면서를 포함한다. 본원에서 사용된 바와 같이, 용어 "교반하는"은 통상적으로 사용된 실험실 또는 제조 장비 및 생성물에 의해 다양한 속도 및 강도 (예들 들면, 완만한 교반)에서 교반하는 것을 포함하는 것으로 의미된다.
또 하나의 구현예에서, 상기 방법이 제공되고, 상기 친핵성 촉매는 최종 농도 약 1.0 mM 내지 약 50 mM의 친핵성 촉매로 되는 양으로, 약 0.1 분 내지 약 30 분의 지속시간; 약 2 ℃ 내지 약 37 ℃의 온도; 광의 존재 또는 부재에서; 및 교반하면서 또는 하지 않으면서를 포함하는 조건 하에서 첨가된다. 또 하나의 구현예에서, 친핵성 촉매의 최종 농도는 약 10 mM이고, 상기 조건은 최대 약 15 분의 지속시간, 약 22 ℃의 온도, 광의 부재; 및 교반하면서를 포함한다.
또 하나의 구현예에서, 상기 방법이 제공되고, 상기 산화제는 최종 농도 약 50 μM 내지 약 1000 μM의 산화제로 되는 양으로, 약 0.1 분 내지 120 분의 지속시간; 약 2 ℃ 내지 약 37 ℃의 온도; 광의 존재 또는 부재에서; 및 교반하면서 또는 하지 않으면서를 포함하는 조건 하에서 첨가된다. 또 하나의 구현예에서, 산화제의 최종 농도는 약 400 μM이고, 상기 조건은 약 10 분의 지속시간, 약 22oC의 온도, 광의 부재 및 교반하면서를 포함하다.
또 하나의 구현예에서, 상기 방법이 제공되고, 수용성 폴리머를 상기 치료 단백질의 상기 산화된 탄수화물 모이어티에 콘주게이트하는 것은 L-시스테인, 메티오닌, 글루타티온, 글리세롤, 나트륨 메타 바이설파이트 (Na2S2O5), 트립토판, 티로신, 히스티딘 또는 그의 유도체들, 크레졸, 이미다졸, 및 이들의 조합으로 이루어진 그룹으로부터 선택된 켄칭제의 첨가로 멈추고; 여기서 상기 켄칭제는 최종 농도 약 1 mM 내지 약 100 mM의 켄칭제로 되는 양으로, 약 5 분 내지 약 120 분의 지속시간; 약 2 ℃ 내지 약 37 ℃의 온도; 광의 존재 또는 부재에서; 및 교반하면서 또는 하지 않으면서를 포함하는 조건 하에서, 첨가된다. 또 하나의 구현예에서, 켄칭제는 L-시스테인이다. 또 다른 구현예에서, L-시스테인은 약 10 mM의 최종 농도가 되도록 첨가되고, 상기 조건은 약 60 분의 지속시간, 약 22oC의 온도, 광의 부재 및 교반하면서를 포함하다.
또 하나의 구현예에서, 상기 언급된 방법이 제공되고, 이 방법은 하기를 포함한다: a) 치료 단백질을 포함하는 용액의 pH 값을 약 5.0 내지 약 8.0의 pH 값으로 조정하는 것을 포함하는 제1 단계로서, 상기 치료 단백질 농도는 약 0.3 mg/ml 내지 약 3.0 mg/ml인 제1 단계; b) 상기 치료 단백질 상의 하나 이상의 탄수화물을 산화시키는 것을 포함하는 제2 단계로서, 상기 산화제는 약 0.1 분 내지 약 120 분의 지속시간; 약 2 ℃ 내지 약 37 ℃의 온도; 광의 존재 또는 부재에서, 및 교반하면서 또는 하지 않으면서를 포함하는 조건 하에서, 약 50μM 내지 약 1000μM의 최종 농도로 되도록 제1 단계에서 용액에 첨가되는 제2 단계; c) 상기 치료 단백질을 원하는 과잉 농도의 활성 수용성 폴리머와 접촉시키는 것을 포함하는 제3 단계로서, 약 0.5 시간 내지 약 24 시간의 지속시간, 약 2 ℃ 내지 약 37 ℃의 온도; 광의 존재 또는 부재에서; 및 교반하면서 또는 하지 않으면서를 포함하는 조건 하에서, 상기 과잉 농도는 약 1-몰 과잉 내지 약 300-몰 과잉인 제3 단계; d) 친핵성 촉매를 제3 단계의 용액에 첨가하는 것을 포함하는 제4 단계로서, 상기 친핵성 촉매는, 약 0.1 분 내지 약 30 분의 지속시간; 약 2 ℃ 내지 약 37 ℃의 온도; 광의 존재 또는 부재에서, 및 교반하면서 또는 하지 않으면서를 포함하는 조건 하에서, 약 1 mM 내지 약 50 mM의 최종 농도가 되도록 첨가되는 제4 단계; e) 치료 단백질이, 활성화된 수용성 폴리머의 치료 단백질 상의 하나 이상의 산화된 탄수화물에의 콘주게이션을 허용하는 조건 하에서, 활성화된 수용성 폴리머 및 친핵성 촉매와 함께 인큐베이트되는 제5 단계로서, 상기 조건은 약 0.5 시간 내지 약 24 시간의 지속시간, 약 2 ℃ 내지 약 37 ℃의 온도; 광의 존재 또는 부재에서, 및 교반하면서 또는 하지 않으면서를 포함하는 제5 단계; 및 f) 상기 수용성 폴리머의 제5 단계의 치료 단백질의 하나 이상의 산화된 탄수화물에의 코주게이트가 L-시스테인, 메티오닌, 글루타티온, 글리세롤, Na2S2O5 (나트륨 메타 바이설파이트), 트립토판, 티로신, 히스티딘 또는 그의 유도체들, 크레졸, 이미다졸, 및 이들의 조합으로 이루어진 그룹으로부터 선택된 켄칭제의 첨가로 멈추는 제6 단계로서; 상기 켄칭제는 약 5 분 내지 약 120 분의 지속시간; 약 2 ℃ 내지 약 37 ℃의 온도; 광의 존재 또는 부재에서, 및 교반하면서 또는 하지 않으면서를 포함하는 조건 하에서, 약 1 mM 및 약 100 mM의 최종 농도가 되도록 첨가되는 제6 단계. 또 하나의 구현예에서, 제1 단계에서의 치료 단백질의 초기 농도는 약 1 mg/ml이고 pH는 약 6.0이고; 여기서 상기 제2 단계에서의 산화제의 최종 농도는 약 400 μM이고, 제5 단계에서의 조건은 약 10 분의 지속시간, 약 22oC의 온도, 광의 부재 및 교반하면서를 포함하고; 여기서 제3 단계에서의 과잉 농도는 약 50 몰 과잉이고; 여기서 제3 단계에서의 조건은 약 15 분의 지속시간, 약 22 ℃의 온도, 광의 부재 및 교반하면서를 포함하고; 여기서 제4 단계에서의 친핵성 촉매의 최종 농도는 약 10 mM이고, 제4 단계에서의 조건은 약 15 분의 지속시간, 약 22 ℃의 온도, 광의 부재 및 교반하면서를 포함하고; 여기서 제5 단계에서 치료 단백질을 활성화된 수용성 폴리머 및 친핵성 촉매와 함께 인큐베이팅하는 조건은 약 2 시간의 지속시간; 약 22 ℃의 온도; 광의 부재; 및 교반하면서를 포함하고; 여기서 제6 단계에서의 상기 켄칭제는 L-시스테인이고; 여기서 상기 L-시스테인은 약 10 mM의 최종 농도가 되도록 첨가되고, 제6 단계에서의 조건은 약 60 분의 지속시간, 약 22 ℃의 온도, 광의 부재 및 교반하면서를 포함하다.
또 하나의 구현예에서, 상기 방법이 제공되고, 상기 수용성 폴리머는 PSA이다. 또 하나의 구현예에서 PSA는 약 10 - 300 시알산 단위로 구성된다. 또 하나의 구현예에서, 수용성 폴리머는 PEG이다. 또 하나의 구현예에서, 수용성 폴리머는 HES이다. 또 다른 구현예에서, 수용성 폴리머는 HAS이다.
또 다른 구현예에서, 상기 방법이 제공되고, 상기 치료 단백질은 FIX이다. 또 하나의 구현예에서, 치료 단백질은 FVIIa이다. 또 하나의 구현예에서, 치료 단백질은 FVIII이다.
또 하나의 구현예에서, 상기 방법이 제공되고, 상기 산화제는 나트륨 페리오데이트 (NaIO4)이다.
또 하나의 구현예에서, 상기 방법이 제공되고, 여기서 상기 치료 단백질의 상기 산화된 탄수화물 모이어티는 혈액응고 단백질의 활성화 펩티드에서 위치한다.
일 구현예에서, 상기 방법이 제공되고, 여기서 PSA는 활성화된 아미노옥시 링커를 산화된 PSA와 반응시켜서 제조되고; 여기서 상기 아미노옥시 링커는 하기로 이루어진 그룹으로부터 선택된다:
a) 하기 식의 3-옥사-펜탄-1,5-디옥시아민 링커:
Figure pat00001
b) 하기 식의 3,6,9-트리옥사-운데칸-1,11-디옥시아민 링커:
Figure pat00002
및
d) 하기 식의 3,6,9,12,15-페나톡사-헵타데칸-1,17-디옥시아민 링커:
Figure pat00003
여기서 상기 PSA는 산화제로 인큐베이션에 의해 산화되어 PSA의 비-환원 말단에서 말단 알데하이드 그룹을 형성한다. 관련 구현예에서, 아미노옥시 링커는 3-옥사-펜탄-1,5-디옥시아민이다.
또 다른 구현예에서, 상기 방법이 제공되고, 상기 산화제는 NaIO4이다.
또 하나의 구현예에서, 상기 방법이 제공되고, 상기 친핵성 촉매는 약 1 mM 내지 약 50 mM의 농도로 제공된다. 일 구현예에서, 친핵성 촉매는 m-톨루이딘이다. 또 다른 구현예에서, m-톨루이딘은 약 10 mM의 농도로 콘주게이션 반응에 존재한다.
또 하나의 구현예에서, 상기 언급된 방법이 제공되고, 이 방법은 나트륨 시아노보로하이드라이드 (NaCNBH3), 아스코르브산 (비타민 C) 및 NaBH3로 이루어진 그룹으로부터 선택된 환원 화합물을 포함하는 완충액에서 콘주게이트된 치료 단백질을 인큐베이트하여 콘주게이트된 치료 단백질에서 옥심 결합을 환원시키는 단계를 추가로 포함한다. 일 구현예에서, 환원 화합물은 나트륨 시아노보로하이드라이드 (NaCNBH3)이다.
또 다른 구현예에서, 상기 언급된 방법이 제공되고, 이 방법은 콘주게이트된 치료 단백질을 정제하는 단계를 추가로 포함한다. 또 하나의 구현예에서, 콘주게이트된 치료 단백질은 크로마토그래피, 여과 및 침전으로 이루어진 그룹으로부터 선택된 방법으로 정제된다. 또 하나의 구현예에서, 크로마토그래피는 소수성 상호작용 크로마토그래피 (HIC), 이온 교환 크로마토그래피 (IEC), 크기 배제 크로마토그래피 (SEC), 친화성 크로마토그래피, 및 역상 크로마토그래피로 이루어진 그룹으로부터 선택된다. 또 다른 구현예에서, 안티-케이오성 염은 크로마토그래피 로딩 단계 및 크로마토그래피 세정 단계에서 사용된다. 또 하나의 구현예에서, 크로마토그래피는 칼럼에서 일어난다. 또 하나의 구현예에서, 칼럼은 페닐-세파로오스 FF 및 부틸-세파로오스 FF로 이루어진 그룹으로부터 선택된 크로마토그래피 수지를 포함한다. 또 하나의 구현예에서, 수지는 약 5 cm 내지 약 20 cm의 층 높이에서 칼럼 내에 존재한다. 일 구현예에서, 층 높이는 약 10 cm이다.
또 하나의 구현예에서, 상기 언급된 방법이 제공되고, 이 방법은 하나 이상의 세정 단계를 포함하고 여기서 흐름 방향은 상향류로 설정되고 유속은 약 0.2 cm/min 내지 약 6.7 cm/min이다. 본원에서 사용된 바와 같이, 용어 "하향류"는 크로마토그래피 칼럼의 최상부로부터 크로마토그래피 칼럼의 최저부 (통상의 흐름 방향/표준 방식)로의 흐름 방향을 의미한다. 본원에서 사용된 바와 같이, 용어 "상향류" 칼럼의 최저부로부터 최상부로의 흐름 방향 (역 흐름 방향)을 의미한다. 일 구현예에서, 유속은 약 2 cm/min이다.
또 하나의 구현예에서, 상기 언급된 방법이 제공되고, 이 방법은 하나 이상의 용출 단계를 포함하고 여기서 흐름 방향은 하향류로 설정되고 유속은 약 0.1 cm/min 내지 약 6.7 cm/min이다. 관련 구현예에서, 유속은 약 1 cm/min이다.
또 다른 구현예에서, 상기 언급된 방법이 제공되고, 이 방법은 한외-/정용여과 (UF/DF)로 콘주게이트된 치료 단백질을 농축하는 것을 포함한다. 또 하나의 구현예에서, 치료 단백질의 최종 농도는 약 0.5 내지 약 3 mg/ml이다.
또 하나의 구현예에서, 상기 방법이 제공되고, 상기 치료 단백질은 약 5 내지 약 11개의 수용성 폴리머 모이어티들을 포함한다. 또 하나의 구현예에서, 치료 단백질은 약 1 내지 약 3개의 수용성 폴리머를 포함한다.
또 다른 구현예에서, 상기 방법이 제공되고, 여기서 콘주게이트된 치료 단백질은 크로마토그래피를 사용하여 정제되고; 여기서 안티-케이오성 염은 로딩 단계 및 세정 단계에 사용되고; 상기 방법은, 흐름 방향이 상향류로 설정되고 유속은 약 0.2 cm/min 내지 약 6.7 cm/min인 하나 이상의 세정 단계 및 흐름 방향이 하향류로 설정되고 상기 유속은 약 0.2 cm/min 내지 약 6.7 cm/min인 하나 이상의 용출 단계를 포함하고; 한외-/정용여과 (UF/DF)에 의해 콘주게이트된 치료 단백질을 농축하는 것을 추가로 포함한다. 또 하나의 구현예에서, 크로마토그래피는 소수성 상호작용 크로마토그래피 (HIC)이고; 여기서 하나 이상의 세정 단계 유속은 약 2 cm/min이고; 여기서 하나 이상의 용출 단계 유속은 약 1 cm/min이다.
또 하나의 구현예에서, 상기 언급된 방법들 중 어떤 것에 의해 생산된 변형된 치료 단백질이 제공된다.
또 다른 구현예에서, 산화된 치료 단백질 상의 탄수화물 모이어티와, 활성 아미노옥시 그룹을 함유하는 활성화된 수용성 폴리머 사이에서 옥심 결합을 형성하는 방법이 제공되고, 이 방법은 하기 단계를 포함한다: a) 상기 단백질을 나트륨 페리오데이트 (NaIO4), 납 테트라아세테이트 (Pb(OAc)4) 및 칼륨 퍼루테네이트 (KRuO4)로 이루어진 그룹으로부터 선택된 산화제와 함께 인큐베이트하여 치료 단백질 상의 탄수화물 모이어티를 산화시키는 단계; 및 b) 상기 옥심 결합의 형성을 허용하는 친핵성 촉매의 존재에서, 상기 치료 단백질의 상기 산화된 탄수화물 모이어티와, 활성 아미노옥시 그룹을 함유하는 활성화된 수용성 폴리머 사이에서 옥심 결합을 형성하는 단계; 여기서 활성 아미노옥시 그룹을 함유하는 상기 수용성 폴리머는 폴리에틸렌 글라이콜 (PEG), 분지형 PEG, PolyPEG® (Warwick Effect Polymers; Coventry, UK), 폴리시알산 (PSA), 전분, 하이드록시알킬 전분 (HAS), 하이드록실에틸 전분 (HES), 탄수화물, 다당류, 풀루란, 키토산, 히알루론산, 콘드로이틴 설페이트, 더마탄 설페이트, 전분, 덱스트란, 카복시메틸-덱스트란, 폴리알킬렌 옥사이드 (PAO), 폴리알킬렌 글라이콜 (PAG), 폴리프로필렌 글라이콜 (PPG), 폴리옥사졸린, 폴리아크릴로일모폴린, 폴리비닐 알코올 (PVA), 폴리카복실레이트, 폴리비닐피롤리돈, 폴리포스파젠, 폴리옥사졸린, 폴리에틸렌-코-말레산 무수물, 폴리스티렌-코-말레산 무수물, 폴리(1-하이드록시메틸에틸렌 하이드록시메틸포름알) (PHF), 2-메타크릴로일옥시-2'-에틸트리메틸암모늄포스페이트 (MPC)로 이루어진 그룹으로부터 선택되고; 여기서 상기 친핵성 촉매는 o-아미노 벤조산, m-아미노 벤조산, p-아미노 벤조산, 설파닐산, o-아미노벤즈아마이드, o-톨루이딘, m-톨루이딘, p-톨루이딘, o-아니시딘, m-아니시딘, 및 p-아니시딘으로 이루어진 그룹으로부터 선택된다.
또 하나의 구현예에서, 산화된 치료 단백질 상의 탄수화물 모이어티와, 활성 아미노옥시 그룹을 함유하는 활성화된 수용성 폴리머 사이에서 옥심 결합을 형성하는 방법이 제공되고, 이 방법을 하기 단계를 포함한다: a) 상기 단백질을 나트륨 페리오데이트 (NaIO4), 납 테트라아세테이트 (Pb(OAc)4) 및 칼륨 퍼루테네이트 (KRuO4)로 이루어진 그룹으로부터 선택된 산화제와 함께 인큐베이트하여 치료 단백질 상의 탄수화물 모이어티를 산화시키는 단계; 및 b) 상기 옥심 결합의 형성을 허용하는 친핵성 촉매의 존재에서, 상기 치료 단백질의 상기 산화된 탄수화물 모이어티와, 활성 아미노옥시 그룹을 함유하는 활성화된 수용성 폴리머 사이에서 옥심 결합을 형성하는 단계; 여기서 상기 치료 단백질은 인자 IX (FIX), 인자 VIII (FVIII), 인자 VIIa (FVIIa), 폰빌레브란트 인자 (VWF), 인자 FV (FV), 인자 X (FX), 인자 XI (FXI), 인자 XII (FXII), 트롬빈 (FII), 단백질 C, 단백질 S, tPA, PAI-1, 조직 인자 (TF),ADAMTS 13 프로테아제, IL-1 알파, IL-1 베타, IL-2, IL-3, IL-4, IL-5, IL-6, IL-11, 콜로니 자극 인자-1 (CSF-1), M-CSF, SCF, GM-CSF, 과립구 콜로니 자극 인자 (G-CSF), EPO, 인터페론-알파 (IFN-알파), 공통 인터페론, IFN-베타, IFN-감마, IFN-오메가, IL-7, IL-8, IL-9, IL-10, IL-12, IL-13, IL-14, IL-15, IL-16, IL-17, IL-18, IL-19, IL-20, IL-21, IL-22, IL-23, IL-24, IL-31, IL-32 알파, IL-33, 트롬보포이에틴 (TPO), Ang-1, Ang-2, Ang-4, Ang-Y, 안지오포이에틴-유사 폴리펩티드 1 (ANGPTL1), 안지오포이에틴-유사 폴리펩티드 2 (ANGPTL2), 안지오포이에틴-유사 폴리펩티드 3 (ANGPTL3), 안지오포이에틴-유사 폴리펩티드 4 (ANGPTL4), 안지오포이에틴-유사 폴리펩티드 5 (ANGPTL5), 안지오포이에틴-유사 폴리펩티드 6 (ANGPTL6), 안지오포이에틴-유사 폴리펩티드 7 (ANGPTL7), 바이트로넥틴, 혈관 내피 성장 인자 (VEGF), 안지오게닌, 액티빈 A, 액티빈 B, 액티빈 C, 골형성 단백질-1, 골형성 단백질-2, 골형성 단백질-3, 골형성 단백질-4, 골형성 단백질-5, 골형성 단백질-6, 골형성 단백질-7, 골형성 단백질-8, 골형성 단백질-9, 골형성 단백질-10, 골형성 단백질-11, 골형성 단백질-12, 골형성 단백질-13, 골형성 단백질-14, 골형성 단백질-15, 골형성 단백질 수용체 IA, 골형성 단백질 수용체 IB, 골형성 단백질 수용체 II, 뇌 유래 신경친화성 인자, 카디오트로핀-1, 섬모 신경친화성 인자, 섬모 신경친화성 인자 수용체, 크립토, 크립틱, 시토카인 유래 중성구 화학주성 인자 1, 시토카인 유래 중성구, 화학주성 인자 2α, 시토카인 유래 중성구 화학주성 인자 2β, β 내피 세포 성장 인자, 엔도텔린 1, 표피 성장 인자, 에피겐, 에피레굴린, 상피-유래된 중성구 유인체, 섬유아세포 성장 인자 4, 섬유아세포 성장 인자 5, 섬유아세포 성장 인자 6, 섬유아세포 성장 인자 7, 섬유아세포 성장 인자 8, 섬유아세포 성장 인자 8b, 섬유아세포 성장 인자 8c, 섬유아세포 성장 인자 9, 섬유아세포 성장 인자 10, 섬유아세포 성장 인자 11, 섬유아세포 성장 인자 12, 섬유아세포 성장 인자 13, 섬유아세포 성장 인자 16, 섬유아세포 성장 인자 17, 섬유아세포 성장 인자 19, 섬유아세포 성장 인자 20, 섬유아세포 성장 인자 21, 산성 섬유아세포 성장 인자, 염기성 섬유아세포 성장 인자, 신경아교세포계-유래된 신경친화성 인자 수용체 α1, 신경아교세포계-유래된 신경친화성 인자 수용체 α2, 성장 관련 단백질, 성장 관련 단백질 α, 성장 관련 단백질 β, 성장 관련 단백질 γ, 헤파린 결합 표피 성장 인자, 간세포 성장 인자, 간세포 성장 인자 수용체, 간종양-유래된 성장 인자, 인슐린-유사 성장 인자 I, 인슐린-유사 성장 인자 수용체, 인슐린-유사 성장 인자 II, 인슐린-유사 성장 인자 결합 단백질, 케라틴생성세포 성장 인자, 백혈병 억제 인자, 백혈병 억제 인자 수용체 α, 신경 성장 인자 신경 성장 인자 수용체, 뉴로포이에틴,뉴로트로핀-3, 뉴로트로핀-4, 온코스타틴 M (OSM), 태반 성장 인자, 태반 성장 인자 2, 혈소판-유래된 내피 세포 성장 인자, 혈소판 유래 성장 인자, 혈소판 유래 성장 인자 A 사슬, 혈소판 유래 성장 인자 AA, 혈소판 유래 성장 인자 AB, 혈소판 유래 성장 인자 B 사슬, 혈소판 유래 성장 인자 BB, 혈소판 유래 성장 인자 수용체 α, 혈소판 유래 성장 인자 수용체 β, B형 전구세포 성장 자극 인자, 줄기세포 인자 (SCF), 줄기세포 인자 수용체, TNF, TNF0, TNF1, TNF2, 변형 성장 인자 α, 변형 성장 인자 β, 변형 성장 인자 β1, 변형 성장 인자 β1.2, 변형 성장 인자 β2, 변형 성장 인자 β3, 변형 성장 인자 β5, 잠재형 변형 성장 인자 β1, 변형 성장 인자 β 결합 단백질 I, 변형 성장 인자 β 결합 단백질 II, 변형 성장 인자 β 결합 단백질 III, 흉선 기질 림포포이에틴 (TSLP), 종양 괴사 인자 수용체 유형 I, 종양 괴사 인자 수용체 유형 II, 유로키나아제-유형 플라스미노겐 활성제 수용체, 포스포리파아제 활성 단백질 (PUP), 인슐린, 렉틴 리신, 프로락틴, 융모성 생식선, 난포자극 호르몬, 갑성선 자극 호르몬, 조직 플라스미노겐 활성제, IgG, IgE, IgM, IgA, 및 IgD, α-갈라토시다아제, β-갈라토시다아제, DNAse, 페투인, 황체형성 호르몬, 에스트로겐, 인슐린, 알부민, 지단백질, 태아단백, 트랜스페린, 트롬보포이에틴, 유로키나아제, 인테그린, 트롬빈, 렙틴, Humira (아달리무맙), Prolia (데노수맙), Enbrel (에타네르셉트), 표 1로부터의 단백질, 또는 생물학적 활성 단편, 그의 유도체 또는 변형으로 이루어진 그룹으로부터 선택되고; 여기서 활성 아미노옥시 그룹을 함유하는 상기 수용성 폴리머는 폴리에틸렌 글라이콜 (PEG), 분지형 PEG, PolyPEG® (Warwick Effect Polymers; Coventry, UK), 폴리시알산 (PSA), 전분, 하이드록시알킬 전분 (HAS), 하이드록실에틸 전분 (HES), 탄수화물, 다당류, 풀루란, 키토산, 히알루론산, 콘드로이틴 설페이트, 더마탄 설페이트, 전분, 덱스트란, 카복시메틸-덱스트란, 폴리알킬렌 옥사이드 (PAO), 폴리알킬렌 글라이콜 (PAG), 폴리프로필렌 글라이콜 (PPG), 폴리옥사졸린, 폴리아크릴로일모폴린, 폴리비닐 알코올 (PVA), 폴리카복실레이트, 폴리비닐피롤리돈, 폴리포스파젠, 폴리옥사졸린, 폴리에틸렌-코-말레산 무수물, 폴리스티렌-코-말레산 무수물, 폴리(1-하이드록시메틸에틸렌 하이드록시메틸포름알) (PHF), 2-메타크릴로일옥시-2'-에틸트리메틸암모늄포스페이트 (MPC)로 이루어진 그룹으로부터 선택되고; 여기서 상기 친핵성 촉매는 o-아미노 벤조산, m-아미노 벤조산, p-아미노 벤조산, 설파닐산, o-아미노벤즈아마이드, o-톨루이딘, m-톨루이딘, p-톨루이딘, o-아니시딘, m-아니시딘, 및 p-아니시딘으로 이루어진 그룹으로부터 선택된다.
또 하나의 구현예에서, 산화된 치료 단백질 상의 탄수화물 모이어티와, 활성 하이드라자이드 그룹을 함유하는 활성화된 수용성 폴리머 사이에서 하이드라존 결합을 형성하는 방법이 제공되고 이 방법은 하기의 단계를 포함한다: a) 상기 단백질을 나트륨 페리오데이트 (NaIO4), 납 테트라아세테이트 (Pb(OAc)4) 및 칼륨 퍼루테네이트 (KRuO4)로 이루어진 그룹으로부터 선택된 산화제와 함께 인큐베이트하여 치료 단백질 상의 탄수화물 모이어티를 산화시키는 단계; 및 b) 상기 하이드라존 결합의 형성을 허용하는 친핵성 촉매의 존재에서, 상기 치료 단백질의 상기 산화된 탄수화물 모이어티와, 활성 하이드라자이드 그룹을 함유하는 활성화된 수용성 폴리머 사이에서 하이드라존 결합을 형성하는 단계; 여기서 활성 하이드라자이드 그룹을 함유하는 상기 수용성 폴리머는 폴리에틸렌 글라이콜 (PEG), 분지형 PEG, PolyPEG® (Warwick Effect Polymers; Coventry, UK), 폴리시알산 (PSA), 전분, 하이드록시알킬 전분 (HAS), 하이드록실에틸 전분 (HES), 탄수화물, 다당류, 풀루란, 키토산, 히알루론산, 콘드로이틴 설페이트, 더마탄 설페이트, 전분, 덱스트란, 카복시메틸-덱스트란, 폴리알킬렌 옥사이드 (PAO), 폴리알킬렌 글라이콜 (PAG), 폴리프로필렌 글라이콜 (PPG), 폴리옥사졸린, 폴리아크릴로일모폴린, 폴리비닐 알코올 (PVA), 폴리카복실레이트, 폴리비닐피롤리돈, 폴리포스파젠, 폴리옥사졸린, 폴리에틸렌-코-말레산 무수물, 폴리스티렌-코-말레산 무수물, 폴리(1-하이드록시메틸에틸렌 하이드록시메틸포름알) (PHF), 2-메타크릴로일옥시-2'-에틸트리메틸암모늄포스페이트 (MPC)로 이루어진 그룹으로부터 선택되고; 여기서 상기 친핵성 촉매는 o-아미노 벤조산, m-아미노 벤조산, p-아미노 벤조산, 설파닐산, o-아미노벤즈아마이드, o-톨루이딘, m-톨루이딘, p-톨루이딘, o-아니시딘, m-아니시딘, 및 p-아니시딘으로 이루어진 그룹으로부터 선택된다.
또 하나의 구현예에서, 하기 단계를 포함하는, 산화된 치료 단백질 상의 탄수화물 모이어티와, 활성 하이드라자이드 그룹을 함유하는 활성화된 수용성 폴리머 사이에서 하이드라존 결합을 형성하는 방법: a) 상기 단백질을 나트륨 페리오데이트 (NaIO4), 납 테트라아세테이트 (Pb(OAc)4) 및 칼륨 퍼루테네이트 (KRuO4)로 이루어진 그룹으로부터 선택된 산화제와 함께 인큐베이트하여 치료 단백질 상의 탄수화물 모이어티를 산화시키는 단계; 및 b) 상기 하이드라존 결합의 형성을 허용하는 친핵성 촉매의 존재에서, 상기 치료 단백질의 상기 산화된 탄수화물 모이어티와, 활성 하이드라자이드 그룹을 함유하는 활성화된 수용성 폴리머 사이에서 하이드라존 결합을 형성하는 단계; 여기서 상기 치료 단백질은 인자 IX (FIX), 인자 VIII (FVIII), 인자 VIIa (FVIIa), 폰빌레브란트 인자 (VWF), 인자 FV (FV), 인자 X (FX), 인자 XI (FXI), 인자 XII (FXII), 트롬빈 (FII), 단백질 C, 단백질 S, tPA, PAI-1, 조직 인자 (TF),ADAMTS 13 프로테아제, IL-1 알파, IL-1 베타, IL-2, IL-3, IL-4, IL-5, IL-6, IL-11, 콜로니 자극 인자-1 (CSF-1), M-CSF, SCF, GM-CSF, 과립구 콜로니 자극 인자 (G-CSF), EPO, 인터페론-알파 (IFN-알파), 공통 인터페론, IFN-베타, IFN-감마, IFN-오메가, IL-7, IL-8, IL-9, IL-10, IL-12, IL-13, IL-14, IL-15, IL-16, IL-17, IL-18, IL-19, IL-20, IL-21, IL-22, IL-23, IL-24, IL-31, IL-32 알파, IL-33, 트롬보포이에틴 (TPO), Ang-1, Ang-2, Ang-4, Ang-Y, 안지오포이에틴-유사 폴리펩티드 1 (ANGPTL1), 안지오포이에틴-유사 폴리펩티드 2 (ANGPTL2), 안지오포이에틴-유사 폴리펩티드 3 (ANGPTL3), 안지오포이에틴-유사 폴리펩티드 4 (ANGPTL4), 안지오포이에틴-유사 폴리펩티드 5 (ANGPTL5), 안지오포이에틴-유사 폴리펩티드 6 (ANGPTL6), 안지오포이에틴-유사 폴리펩티드 7 (ANGPTL7), 바이트로넥틴, 혈관 내피 성장 인자 (VEGF), 안지오게닌, 액티빈 A, 액티빈 B, 액티빈 C, 골형성 단백질-1, 골형성 단백질-2, 골형성 단백질-3, 골형성 단백질-4, 골형성 단백질-5, 골형성 단백질-6, 골형성 단백질-7, 골형성 단백질-8, 골형성 단백질-9, 골형성 단백질-10, 골형성 단백질-11, 골형성 단백질-12, 골형성 단백질-13, 골형성 단백질-14, 골형성 단백질-15, 골형성 단백질 수용체 IA, 골형성 단백질 수용체 IB, 골형성 단백질 수용체 II, 뇌 유래 신경친화성 인자, 카디오트로핀-1, 섬모 신경친화성 인자, 섬모 신경친화성 인자 수용체, 크립토, 크립틱, 시토카인 유래 중성구 화학주성 인자 1, 시토카인 유래 중성구, 화학주성 인자 2α, 시토카인 유래 중성구 화학주성 인자 2β, β 내피 세포 성장 인자, 엔도텔린 1, 표피 성장 인자, 에피겐, 에피레굴린, 상피-유래된 중성구 유인체, 섬유아세포 성장 인자 4, 섬유아세포 성장 인자 5, 섬유아세포 성장 인자 6, 섬유아세포 성장 인자 7, 섬유아세포 성장 인자 8, 섬유아세포 성장 인자 8b, 섬유아세포 성장 인자 8c, 섬유아세포 성장 인자 9, 섬유아세포 성장 인자 10, 섬유아세포 성장 인자 11, 섬유아세포 성장 인자 12, 섬유아세포 성장 인자 13, 섬유아세포 성장 인자 16, 섬유아세포 성장 인자 17, 섬유아세포 성장 인자 19, 섬유아세포 성장 인자 20, 섬유아세포 성장 인자 21, 산성 섬유아세포 성장 인자, 염기성 섬유아세포 성장 인자, 신경아교세포계-유래된 신경친화성 인자 수용체 α1, 신경아교세포계-유래된 신경친화성 인자 수용체 α2, 성장 관련 단백질, 성장 관련 단백질 α, 성장 관련 단백질 β, 성장 관련 단백질 γ, 헤파린 결합 표피 성장 인자, 간세포 성장 인자, 간세포 성장 인자 수용체, 간종양-유래된 성장 인자, 인슐린-유사 성장 인자 I, 인슐린-유사 성장 인자 수용체, 인슐린-유사 성장 인자 II, 인슐린-유사 성장 인자 결합 단백질, 케라틴생성세포 성장 인자, 백혈병 억제 인자, 백혈병 억제 인자 수용체 α, 신경 성장 인자 신경 성장 인자 수용체, 뉴로포이에틴,뉴로트로핀-3, 뉴로트로핀-4, 온코스타틴 M (OSM), 태반 성장 인자, 태반 성장 인자 2, 혈소판-유래된 내피 세포 성장 인자, 혈소판 유래 성장 인자, 혈소판 유래 성장 인자 A 사슬, 혈소판 유래 성장 인자 AA, 혈소판 유래 성장 인자 AB, 혈소판 유래 성장 인자 B 사슬, 혈소판 유래 성장 인자 BB, 혈소판 유래 성장 인자 수용체 α, 혈소판 유래 성장 인자 수용체 β, B형 전구세포 성장 자극 인자, 줄기세포 인자 (SCF), 줄기세포 인자 수용체, TNF, TNF0, TNF1, TNF2, 변형 성장 인자 α, 변형 성장 인자 β, 변형 성장 인자 β1, 변형 성장 인자 β1.2, 변형 성장 인자 β2, 변형 성장 인자 β3, 변형 성장 인자 β5, 잠재형 변형 성장 인자 β1, 변형 성장 인자 β 결합 단백질 I, 변형 성장 인자 β 결합 단백질 II, 변형 성장 인자 β 결합 단백질 III, 흉선 기질 림포포이에틴 (TSLP), 종양 괴사 인자 수용체 유형 I, 종양 괴사 인자 수용체 유형 II, 유로키나아제-유형 플라스미노겐 활성제 수용체, 포스포리파아제 활성 단백질 (PUP), 인슐린, 렉틴 리신, 프로락틴, 융모성 생식선, 난포자극 호르몬, 갑성선 자극 호르몬, 조직 플라스미노겐 활성제, IgG, IgE, IgM, IgA, 및 IgD, α-갈라토시다아제, β-갈라토시다아제, DNAse, 페투인, 황체형성 호르몬, 에스트로겐, 인슐린, 알부민, 지단백질, 태아단백, 트랜스페린, 트롬보포이에틴, 유로키나아제, 인테그린, 트롬빈, 렙틴, Humira (아달리무맙), Prolia (데노수맙), Enbrel (에타네르셉트), 표 1로부터의 단백질, 또는 생물학적 활성 단편, 그의 유도체 또는 변형으로 이루어진 그룹으로부터 선택되고; 여기서 활성 하이드라자이드 그룹을 함유하는 상기 수용성 폴리머는 폴리에틸렌 글라이콜 (PEG), 분지형 PEG, PolyPEG® (Warwick Effect Polymers; Coventry, UK), 폴리시알산 (PSA), 전분, 하이드록시알킬 전분 (HAS), 하이드록실에틸 전분 (HES), 탄수화물, 다당류, 풀루란, 키토산, 히알루론산, 콘드로이틴 설페이트, 더마탄 설페이트, 전분, 덱스트란, 카복시메틸-덱스트란, 폴리알킬렌 옥사이드 (PAO), 폴리알킬렌 글라이콜 (PAG), 폴리프로필렌 글라이콜 (PPG), 폴리옥사졸린, 폴리아크릴로일모폴린, 폴리비닐 알코올 (PVA), 폴리카복실레이트, 폴리비닐피롤리돈, 폴리포스파젠, 폴리옥사졸린, 폴리에틸렌-코-말레산 무수물, 폴리스티렌-코-말레산 무수물, 폴리(1-하이드록시메틸에틸렌 하이드록시메틸포름알) (PHF), 2-메타크릴로일옥시-2'-에틸트리메틸암모늄포스페이트 (MPC)로 이루어진 그룹으로부터 선택되고; 여기서 상기 친핵성 촉매는 o-아미노 벤조산, m-아미노 벤조산, p-아미노 벤조산, 설파닐산, o-아미노벤즈아마이드, o-톨루이딘, m-톨루이딘, p-톨루이딘, o-아니시딘, m-아니시딘, 및 p-아니시딘으로 이루어진 그룹으로부터 선택된다.
또 하나의 구현예에서, 상기 방법이 제공되고, 활성 아미노옥시 그룹을 함유하는 상기 수용성 폴리머는 하기를 포함하는 방법으로 제조된다: 상기 산화된 수용성 폴리머 및 활성화된 아미노옥시 링커 사이의 안정한 옥심 결합의 형성을 허용하는 조건 하에서, 산화된 수용성 폴리머를 포함하는 용액을, 활성 아미노옥시 그룹을 포함하는 활성화된 아미노옥시 링커와 함께 인큐베이트하는 단계로서, 상기 조건은 약 1 분 내지 약 24 시간의 지속시간; 약 2 ℃ 내지 약 37 ℃의 온도; 광의 존재 또는 부재에서, 및 교반하면서 또는 하지 않으면서를 포함하고; 이로써 활성 아미노옥시 그룹을 형성하는 수용성 폴리머를 형성하는 단계; 및 b) 크로마토그래피, 여과 및 침전으로 이루어진 그룹으로부터 선택된 방법으로 활성 아미노옥시 그룹을 함유하는 수용성 폴리머를 정제하는 단계. 용어 "활성화된 수용성 폴리머"는, 일 구현예에서, 알데하이드 그룹을 함유하는 수용성 폴리머를 의미한다.
또 하나의 구현예에서, 상기 방법이 제공되고, 활성 아미노옥시 그룹을 함유하는 상기 수용성 폴리머는 하기를 포함하는 방법으로 제조된다: a) 상기 산화된 수용성 폴리머 및 활성화된 아미노옥시 링커 사이의 안정한 옥심 결합의 형성을 허용하는 조건 하에서, 산화된 수용성 폴리머를 포함하는 용액을, 활성 아미노옥시 그룹을 포함하는 활성화된 아미노옥시 링커와 함께 인큐베이트하는 단계로서, 상기 조건은 약 1 분 내지 약 24 시간의 지속시간; 약 2 ℃ 내지 약 37 ℃의 온도; 광의 존재 또는 부재에서, 및 교반하면서 또는 하지 않으면서를 포함하고; 이로써 활성 아미노옥시 그룹을 형성하는 수용성 폴리머를 형성하는 단계; b) 상기 산화된 수용성 폴리머 및 활성화된 아미노옥시 링커 사이에 안정한 알콕사민 결합의 형성을 허용하는 조건 하에서, 단계 a)의 활성 아미노옥시 그룹을 함유하는 수용성 폴리머를 포함하는 용액을 환원제와 함께 인큐베이트하는 단계로서, 상기 조건은 약 1 분 내지 약 24 시간의 지속시간; 약 2 ℃ 내지 약 37 ℃의 온도; 광의 존재 또는 부재에서; 및 교반하면서 또는 하지 않으면서를 포함하는 단계; 및 c) 크로마토그래피, 여과 및 침전으로 이루어진 그룹으로부터 선택된 방법으로 활성 아미노옥시 그룹을 함유하는 수용성 폴리머를 정제하는 단계.
또 다른 구현예에서, 상기 방법이 제공되고, 활성 아미노옥시 그룹을 함유하는 상기 수용성 폴리머는 하기를 포함하는 방법으로 제조된다: a) 상기 산화된 수용성 폴리머 및 활성화된 아미노옥시 링커 사이의 안정한 옥심 결합의 형성을 허용하는 조건 하에서, 산화된 수용성 폴리머를 포함하는 용액을, 활성 아미노옥시 그룹을 포함하는 활성화된 아미노옥시 링커와 함께 인큐베이트하는 단계로서, 상기 조건은 약 1 분 내지 약 24 시간의 지속시간; 약 2 ℃ 내지 약 37 ℃의 온도; 광의 존재 또는 부재에서, 및 교반하면서 또는 하지 않으면서를 포함하고; 이로써 활성 아미노옥시 그룹을 형성하는 수용성 폴리머를 형성하는 단계; b) 1 분 내지 24 시간의 지속시간; 2 ℃ 내지 37 ℃의 온도; 광의 존재 또는 부재에서; 및 교반하면서 또는 하지 않으면서를 포함하는 조건 하에서, 단계 a)의 활성 아미노옥시 그룹을 함유하는 수용성 폴리머를 포함하는 용액을 친핵성 촉매와 함께 인큐베이트 하는 단계; 및 c) 크로마토그래피, 여과 및 침전으로 이루어진 그룹으로부터 선택된 방법으로 활성 아미노옥시 그룹을 함유하는 수용성 폴리머를 정제하는 단계.
또 하나의 구현예에서, 상기 방법이 제공되고, 활성 아미노옥시 그룹을 함유하는 상기 수용성 폴리머는 하기를 포함하는 방법으로 제조된다: a) 상기 산화된 수용성 폴리머 및 활성화된 아미노옥시 링커 사이의 안정한 옥심 결합의 형성을 허용하는 조건 하에서, 산화된 수용성 폴리머를 포함하는 용액을, 활성 아미노옥시 그룹을 포함하는 활성화된 아미노옥시 링커와 함께 인큐베이트하는 단계로서, 상기 조건은 약 1 분 내지 약 24 시간의 지속시간; 약 2 ℃ 내지 약 37 ℃의 온도; 광의 존재 또는 부재에서, 및 교반하면서 또는 하지 않으면서를 포함하고; 이로써 활성 아미노옥시 그룹을 형성하는 수용성 폴리머를 형성하는 단계; b) 단계 a)의 활성 아미노옥시 그룹을 함유하는 수용성 폴리머를 포함하는 용액을 친핵성 촉매와 함께, 1 분 및 24 시간의 지속시간; 2 ℃ 내지 37 ℃의 온도; 광의 존재 또는 부재에서; 및 교반하면서 또는 하지 않으면서를 포함하는 조건 하에서 인큐베이트 하는 단계; c) 상기 산화된 수용성 폴리머 및 활성화된 아미노옥시 링커 사이에 안정한 알콕사민 결합의 형성을 허용하는 조건 하에서, 단계 b)의 활성 아미노옥시 그룹을 함유하는 수용성 폴리머를 포함하는 용액을 환원제와 함께 인큐베이트하는 단계로서, 상기 조건은 약 1 분 내지 약 24 시간의 지속시간; 약 2 ℃ 내지 약 37 ℃의 온도; 광의 존재 또는 부재에서; 및 교반하면서 또는 하지 않으면서를 포함하는 단계; 및 d) 크로마토그래피, 여과 및 침전으로 이루어진 그룹으로부터 선택된 방법으로 활성 아미노옥시 그룹을 함유하는 수용성 폴리머를 정제하는 단계.
또 하나의 구현예에서, 상기 방법이 제공되고, 여기서 상기 산화된 수용성 폴리머는 폴리에틸렌 글라이콜 (PEG), 분지형 PEG, PolyPEG® (Warwick Effect Polymers; Coventry, UK), 폴리시알산 (PSA), 전분, 하이드록시알킬 전분 (HAS), 하이드록실에틸 전분 (HES), 탄수화물, 다당류, 풀루란, 키토산, 히알루론산, 콘드로이틴 설페이트, 더마탄 설페이트, 전분, 덱스트란, 카복시메틸-덱스트란, 폴리알킬렌 옥사이드 (PAO), 폴리알킬렌 글라이콜 (PAG), 폴리프로필렌 글라이콜 (PPG), 폴리옥사졸린, 폴리아크릴로일모폴린, 폴리비닐 알코올 (PVA), 폴리카복실레이트, 폴리비닐피롤리돈, 폴리포스파젠, 폴리옥사졸린, 폴리에틸렌-코-말레산 무수물, 폴리스티렌-코-말레산 무수물, 폴리(1-하이드록시메틸에틸렌 하이드록시메틸포름알) (PHF), 2-메타크릴로일옥시-2'-에틸트리메틸암모늄포스페이트 (MPC)로 이루어진 그룹으로부터 선택되고, 여기서 상기 수용성 폴리머는 산화제로 인큐베이션에 의해 산화되어 수용성 폴리머의 비-환원 말단에서 말단 알데하이드 그룹을 형성한다. 일 구현예에서, 수용성 폴리머는 PSA이다.
또 하나의 구현예에서, 상기 방법이 제공되고, 상기 산화제는 NaIO4이다.
또 다른 구현예에서, 상기 방법이 제공되고, 상기 아미노옥시 링커는 하기로 이루어진 그룹으로부터 선택된다:
a) 하기 식의 3-옥사-펜탄-1,5-디옥시아민 링커:
Figure pat00004
b) 하기 식의 3,6,9-트리옥사-운데칸-1,11-디옥시아민 링커:
Figure pat00005
및
c) 하기 식의 3,6,9,12,15-페나톡사-헵타데칸-1,17-디옥시아민 링커:
Figure pat00006
.
또 하나의 구현예에서, 상기 방법이 제공되고, 상기 환원제는 나트륨 시아노보로하이드라이드 (NaCNBH3), 아스코르브산 (비타민 C) 및 NaBH3이다. 일 구현예에서, 환원제는 나트륨 시아노보로하이드라이드 (NaCNBH3)로 이루어진 그룹으로부터 선택된다.
또 하나의 구현예에서, 상기 방법이 제공되고, 상기 친핵성 촉매는 o-아미노 벤조산, m-아미노 벤조산, p-아미노 벤조산, 설파닐산, o-아미노벤즈아마이드, o-톨루이딘, m-톨루이딘, p-톨루이딘, o-아니시딘, m-아니시딘, 및 p-아니시딘으로 이루어진 그룹으로부터 선택된다. 일 구현예에서, 친핵성 촉매는 m-톨루이딘이다. 또 하나의 구현예에서, 친핵성 촉매는 최종 농도 약 1.0 mM 내지 약 50 mM의 친핵성 촉매로 되는 양으로 첨가된다.
또 하나의 구현예에서, 상기 언급된 방법이 제공되고, 이 방법은 한외-/정용여과 (UF/DF)에 의해 콘주게이트된 치료 단백질을 농축하는 것을 추가로 포함한다.
도 1은 응고 인자 IX (서열번호: 1)의 일차구조를 보여준다.
도 2는 산화된 rFIX의 아미노옥시-PSA에의 커플링을 보여준다.
도 3은 수용성 디-아미녹시 링커 3-옥사-펜탄-1,5-디옥시아민 및 3,6,9-트리옥사-운데칸-1,11-디옥시아민의 합성을 보여준다.
도 4는 아미노옥시-PSA의 제조를 보여준다.
도 5는 SDS PAGE에 의해 상이한 촉매의 존재에서 제조된 PSA-FIX 콘주케이트의 가시화를 보여준다. a) 상이한 농도를 사용하는 아닐린과 m-톨루이딘과의 비교; b) 아닐린과 o-아미노벤조산, m-아미노벤조산, p-아미노벤조산, p-아미노벤즈아마이드 및 설파닐산과의 비교; c) 아닐린 및 m-톨루이딘과 o-아니시딘 및 m-아니시딘과의 비교.
도 6은 다양한 친핵성 촉매에 의한 폴리시알릴화의 퍼센트를 보여준다.
발명의 상세한 설명
치료학적 단백질의 약물학적 및 면역학적 특성은, 화학적 변형 및 폴리에틸렌 글리콜 (PEG), 분지형 PEG, 폴리시알산 (PSA), 하이드록시알킬 전분 (HAS), 하이드록실에틸 전분 (HES), 탄수화물, 폴리사카라이드, 풀루란, 키토산, 히알루론산, 황산 콘드로이틴, 황산 더마탄, 녹말, 덱스트란, 카복시메틸-덱스트란, 폴리알킬렌 옥시드 (PAO), 폴리알킬렌 글리콜 (PAG), 폴리프로필렌 글리콜 (PPG), 폴리옥사졸린, 폴리아크릴로일모폴린, 폴리비닐 알코올 (PVA), 폴리카복실레이트, 폴리비닐피롤리돈, 폴리포스파젠, 폴리옥사졸린, 폴리에틸렌-말레인산 무수물 공중합체, 폴리스테렌-말레인산 무수물 공중합체, 폴리 (1-히드록시메틸에틸렌 히드록시메틸포름알) (PHF), 2-메타크릴로일록시-2'-에틸트리메틸암모늄포스페이트 (MPC)와 같은 폴리머 화합물과의 콘주게이션에 의하여 개선될 수 있다. 상기 결과로 생성된 복합체의 특성은 일반적으로, 상기 폴리머의 구조 및 크기에 영향을 받는다. 따라서, 규정된 가느다란 크기 분포를 갖는 폴리머가 당해 기술분야에서 통상적으로 바람직하다. PSA는 가느다란 크기 분포를 갖는 최종 PSA 제제를 제공하는 그러한 방식으로 정제될 수 있는 반면, PEG와 같은 합성 폴리머는 가느다란 크기 분포로 쉽게 제조될 수 있다. 또한, 규정된 폴리머 쇄 및 좁은 크기 분포를 갖는 페길화 시약은 판매 중에 있으며, 합리적인 가격으로 상업적으로 이용 가능하다.
폴리시알릴화를 통하는 것과 같은 가용성 폴리머의 첨가는, 치료 단백질 예컨대 치료 단백질 FIX뿐만 아니라 그 밖의 다른 응고 단백질들 (예를 들어, VWF, FⅦa (예를 들어, 본 발명에 참고로서 통합된 US 2008/0221032 A1 참조) 및 FⅧ)의 특성을 개선시키는 한가지 접근 방법이다.
치료 단백질
본 발명의 어떤 구현예에서, 상기 언급된 폴리펩티드 및 폴리뉴클레오티드는 하기 치료 단백질에 의해 예시된다: 효소, 항원, 항체, 수용체, 혈액응고 단백질, 성장 인자, 호르몬, 및 리간드. 어떤 구현예들에서, 치료 단백질은 혈액응고 단백질 예컨대 인자 IX (FIX), 인자 VIII (FVIII), 인자 VIIa (FVIIa), 폰빌레브란트 인자 (VWF), 인자 FV (FV), 인자 X (FX), 인자 XI (FXI), 인자 XII (FXII), 트롬빈 (FII), 단백질 C, 단백질 S, tPA, PAI-1, 조직 인자 (TF) 또는 ADAMTS 13 프로테아제. 일 구현예에서, 본 발명에 따른 치료 단백질은 당단백질, 또는 다양한 구현예에서, 생체내에서 자연적으로 글리코실화되지 않는 단백질 (즉, 천연 글라이코실화 부위를 함유하지 않는 단백질 또는 정제 전에 호스트 세포에서 글리코실화되지 않는 단백질)이다.
어떤 구현예들에서, 치료 단백질은 하기이다: 면역글로불린, 시토카인 예컨대 IL-1 알파, IL-1 베타, IL-2, IL-3, IL-4, IL-5, IL-6, IL-11, 콜로니 자극 인자-1 (CSF-1), M-CSF, SCF, GM-CSF, 과립구 콜로니 자극 인자 (G-CSF), EPO, 인터페론-알파 (IFN-알파), 공통 인터페론, IFN-베타, IFN-감마, IFN-오메가, IL-7, IL-8, IL-9, IL-10, IL-12, IL-13, IL-14, IL-15, IL-16, IL-17, IL-18, IL-19, IL-20, IL-21, IL-22, IL-23, IL-24, IL-31, IL-32 알파, IL-33, 트롬보포이에틴 (TPO), 안지오포이에틴, 예를 들면 Ang-1, Ang-2, Ang-4, Ang-Y, 인간 안지오포이에틴-유사 폴리펩티드 ANGPTL1 내지 7, 바이트로넥틴, 혈관 내피 성장 인자 (VEGF), 안지오게닌, 액티빈 A, 액티빈 B, 액티빈 C, 골형성 단백질-1, 골형성 단백질-2, 골형성 단백질-3, 골형성 단백질-4, 골형성 단백질-5, 골형성 단백질-6, 골형성 단백질-7, 골형성 단백질-8, 골형성 단백질-9, 골형성 단백질-10, 골형성 단백질-11, 골형성 단백질-12, 골형성 단백질-13, 골형성 단백질-14, 골형성 단백질-15, 골형성 단백질 수용체 IA, 골형성 단백질 수용체 IB, 골형성 단백질 수용체 II, 뇌 유래 신경친화성 인자, 카디오트로핀-1, 섬모 신경친화성 인자, 섬모 신경친화성 인자 수용체, 크립토, 크립틱, 시토카인 유래 중성구 화학주성 인자 1, 시토카인 유래 중성구, 화학주성 인자 2α, 시토카인 유래 중성구 화학주성 인자 2β, β 내피 세포 성장 인자, 엔도텔린 1, 표피 성장 인자, 에피겐, 에피레굴린, 상피-유래된 중성구 유인체, 섬유아세포 성장 인자 4, 섬유아세포 성장 인자 5, 섬유아세포 성장 인자 6, 섬유아세포 성장 인자 7, 섬유아세포 성장 인자 8, 섬유아세포 성장 인자 8b, 섬유아세포 성장 인자 8c, 섬유아세포 성장 인자 9, 섬유아세포 성장 인자 10, 섬유아세포 성장 인자 11, 섬유아세포 성장 인자 12, 섬유아세포 성장 인자 13, 섬유아세포 성장 인자 16, 섬유아세포 성장 인자 17, 섬유아세포 성장 인자 19, 섬유아세포 성장 인자 20, 섬유아세포 성장 인자 21, 산성 섬유아세포 성장 인자, 염기성 섬유아세포 성장 인자, 신경아교세포계-유래된 신경친화성 인자 수용체 α1, 신경아교세포계-유래된 신경친화성 인자 수용체 α2, 성장 관련 단백질, 성장 관련 단백질 α, 성장 관련 단백질 β, 성장 관련 단백질 γ, 헤파린 결합 표피 성장 인자, 간세포 성장 인자, 간세포 성장 인자 수용체, 간종양-유래된 성장 인자, 인슐린-유사 성장 인자 I, 인슐린-유사 성장 인자 수용체, 인슐린-유사 성장 인자 II, 인슐린-유사 성장 인자 결합 단백질, 케라틴생성세포 성장 인자, 백혈병 억제 인자, 백혈병 억제 인자 수용체 α, 신경 성장 인자 신경 성장 인자 수용체, 뉴로포이에틴, 뉴로트로핀-3, 뉴로트로핀-4, 온코스타틴 M (OSM), 태반 성장 인자, 태반 성장 인자 2, 혈소판-유래된 내피 세포 성장 인자, 혈소판 유래 성장 인자, 혈소판 유래 성장 인자 A 사슬, 혈소판 유래 성장 인자 AA, 혈소판 유래 성장 인자 AB, 혈소판 유래 성장 인자 B 사슬, 혈소판 유래 성장 인자 BB, 혈소판 유래 성장 인자 수용체 α, 혈소판 유래 성장 인자 수용체 β, B형 전구세포 성장 자극 인자, 줄기세포 인자 (SCF), 줄기세포 인자 수용체, TNF (TNF0, TNF1, TNF2 포함), 변형 성장 인자 α, 변형 성장 인자 β, 변형 성장 인자 β1, 변형 성장 인자 β1.2, 변형 성장 인자 β2, 변형 성장 인자 β3, 변형 성장 인자 β5, 잠재형 변형 성장 인자 β1, 변형 성장 인자 β 결합 단백질 I, 변형 성장 인자 β 결합 단백질 II, 변형 성장 인자 β 결합 단백질 III, 흉선 기질 림포포이에틴 (TSLP), 종양 괴사 인자 수용체 유형 I, 종양 괴사 인자 수용체 유형 II, 유로키나아제-유형 플라스미노겐 활성제 수용체, 혈관 내피 성장 인자, 및 키메라 단백질 및 그의 생물학적으로 또는 면역학적으로 활성인 단편.
어떤 구현예들에서, 치료 단백질은 하기이다: 알파-, 베타-, 및 감마-인터페론, 과립구 콜로니 자극 인자 포함 콜로니 자극 인자, 섬유아세포 성장 인자, 혈소판 유래 성장 인자, 포스포리파아제 활성 단백질 (PUP), 인슐린, 식물성 단백질 예컨대 렉틴 및 리신, 종양 괴사 인자 및 관련 대립유전자, 가용성 형태의 종양 괴사 인자 수용체, 인터루킨 수용체 및 가용성 형태의 인터루킨 수용체, 성장 인자 예컨대 조직 성장 인자, 예컨대 TGFα 또는 TGFβ 및 표피 성장 인자, 호르몬, 스마토메틴, 색소 호르몬, 시상하부 방출 인자, 항이뇨 호르몬, 프로락틴, 융모성 생식선, 난포자극 호르몬, 갑성선 자극 호르몬, 조직 플라스미노겐 활성제, 및 면역글로불린 예컨대 IgG, IgE, IgM, IgA, 및 IgD, 갈라토시다아제, α-갈라토시다아제, β-갈라토시다아제, DNAse, 페투인, 황체형성 호르몬, 에스트로겐, 코르티코스테로이드, 인슐린, 알부민, 지단백질, 태아단백, 트랜스페린, 트롬보포이에틴, 유로키나아제, DNase, 인테그린, 트롬빈, 조혈 성장 인자, 렙틴, 글라이코시다제, 휴미라 (아달리무맙), 프롤리아 (데노수맙), Enbrel (에타네르셉트), 및 그의 단편, 또는 임의의 상기 언급된 단백질 또는 그의 단편을 포함하는 임의의 융합 단백질. 상기 언급된 단백질 외에, 하기 표 1은 본 발명에 의해 고려된 치료 단백질을 제공한다:
Figure pat00007
Figure pat00008
Figure pat00009
Figure pat00010
Figure pat00011
Figure pat00012
Figure pat00013
Figure pat00014
Figure pat00015
Figure pat00016
Figure pat00017
Figure pat00018
Figure pat00019
Figure pat00020
Figure pat00021
Figure pat00022
Figure pat00023
Figure pat00024
Figure pat00025
본원에서 제공된 치료 단백질은 배타적인 것으로 고려되지 않아야 한다. 오히려, 본원에 제공된 명세서로부터 명백한 바와 같이, 본 발명의 방법은 임의의 단백질에 적용가능하고, 여기서, 수용성 폴리머의 부착은 본 발명에 따라 바람직하다. 예를 들면, 치료 단백질은, 그 전체가 참고로 본원에 통합되어 있는 US 2007/0026485에 기재되어 있다.
혈액 응고 단백질
일 측면에서, 본 발명의 개시 물질은 혈액응고 단백질이고, 이는 인간 혈장으로부터 유래될 수 있고, 하기에 기재된 재조합 조작 기술에 의해 생산될 수 있다:미국 특허 번호 4,757,006; 미국 특허 번호 5,733,873; 미국 특허 번호 5,198,349; 미국 특허 번호 5,250,421; 미국 특허 번호 5,919,766; 및 EP 306 968.
치료 폴리펩티드 예컨대 인자 IX (FIX), 인자 VIII (FVIII), 인자 VIIa (FVIIa), 폰빌레브란트 인자 (VWF), 인자 FV (FV), 인자 X (FX), 인자 XI (FXI), 인자 XII (FXII), 트롬빈 (FII), 단백질 C, 단백질 S, tPA, PAI-1, 조직 인자 (TF) 및 ADAMTS 13 프로테아제를 포함하는 혈액응고 단백질은 단백분해 효소에 의해 빠르게 분해되고 항체에 의해 중화된다. 이는 그의 반감기 및 순환 시간을 감소시키고, 이로써 그의 치료 효과를 제한한다. 비교적 높은 용량 및 빈번한 투여가 이들 응고 단백질의 원하는 치료 또는 예방 효과에 도달하고 유지할 필요가 있다. 그 결과, 적절한 용량 조절은 얻기 어렵고 빈번한 정맥내 투여의 필요가 환자의 삶의 방식에 대한 제한이 된다.
본원 명세서에 기술된 바와 같이, 본 발명의 혈액 응고 단백질은, 인자 IX (FIX), 인자 Ⅷ (FⅧ), 인자 Ⅶa (FⅦa), 폰 빌레브란트 인자 (VWF), 인자 FV (FV), 인자 X (FX), 인자 XI, 인자 XⅡ (FXⅡ), 트롬빈 (FII), 단백질 C, 단백질 S, tPA, PAI-1, 조직 인자 (TF) 및 ADAMTS 13 프로테아제를 포함하나, 이에 제한되지 않는다. 본원 명세서에서 사용된 용어, "혈액 응고 단백질"은 특정한 천연 혈액 응고 단백질과 관련된 생물학적 활성을 나타내는 임의의 인자 IX (FIX), 인자 Ⅷ (FⅧ), 인자 Ⅶa (FⅦa), 폰 빌레브란트 인자 (VWF), 인자 FV (FV), 인자 X (FX), 인자 XⅡ (FXⅡ), 트롬빈 (FII), 단백질 C, 단백질 S, tPA, PAI-1, 조직 인자 (TF) 및 ADAMTS 13 프로테아제를 의미한다.
혈액 응고 캐스케이드 (cascade)는 3 개의 별개의 부분, 즉 내인성, 외인성 및 공통 경로로 구분된다 (Schenone 등, Curr Opin Hematol. 2004;11:272-7). 상기 캐스케이드는 일련의 세린 프로테아제 효소 (자이모겐) 및 단백질 보조인자를 포함한다. 필요한 경우에, 불활성 자이모겐 전구체를, 상기 캐스케이드에서 결과적으로 다음 효소로 전환되는 활성 형태로 전환시킬 수 있다.
상기 내인성 경로는 상기 응고 인자 Ⅷ, IX, X, XI, 및 XⅡ를 필요로 한다. 상기 내인성 경로의 개시는 프리칼리크레인 (prekallikrein), 고분자량 키니노겐 (kininogen), 인자 XI (FXI) 및 인자 XⅡ (FXⅡ)가 음으로 하전된 표면에 노출되는 경우에 일어난다. 또한, 혈소판으로부터 분비된 칼슘 이온 및 인지질이 요구된다.
상기 외인성 경로는 혈관의 혈관 내강이 손상되는 경우에 일어난다. 막 당단백질 조직 인자가 노출되고, 그 다음, 순환 인자 Ⅶ (FⅦ) 및 기존에 존재하는 소량의 그의 활성화된 형태 FⅦa에 결합한다. 이러한 결합은 FⅦ의 FⅦa로의 완전한 전환, 및 후속적인 칼슘 및 인지질의 존재 하에서의, 인자 IX (FIX)의 인자 IXa (FIXa)로의 전환 및 인자 X (FX)의 인자 Xa (FXa)로의 전환을 촉진시킨다. FⅦa과 조직 인자의 상기 결합은 기질 (FIX 및 FX)에 대한 FⅦ의 결합 부위를 더 근접하게 하고, 상기 FⅦa의 효소 활성을 증진시키는 형태적 변화 (conformational change)를 유도함으로써 단백분해적 활성을 증진시킨다.
상기 FX의 활성화는 상기 2 개의 경로의 공통점이 된다. 인지질 및 칼슘과 함께, 인자 Va (FVa) 및 Xa는 프로트롬빈을 트롬빈 (프로트롬비나제 컴플렉스)으로 전환시키며, 이것은 후에 피브리노겐을 분해하여 피브린 모노머를 형성시킨다. 상기 모노머는 중합하여 피브린 가닥을 형성한다. 인자 XⅢa (FXⅢa)는 이들 가닥을 서로 공유적으로 결합시켜 단단한 그물을 형성시킨다.
FⅦ의 FⅦa로의 전환은 또한 트롬빈, FIXa, FXa, 인자 XIa (FXIa), 및 인자 XⅡa (FXⅡa)를 포함한 다수의 프로테아제에 의해서 촉진된다. 상기 캐스케이드의 초기 단계의 억제를 위해서, 조직 인자 경로 억제제는 FⅦa/조직 인자/FXa 생성물 컴플렉스를 표적으로 한다.
인자 Ⅶa
FⅦ (또한, 안정한 인자 또는 프로컨버틴 (proconvertin)으로 알려짐)은 지혈 및 응고에 중추적인 역할을 하는 비타민 K-의존성 세린 프로테아제 당단백질이다 (Eigenbrot, Curr Protein Pept Sci. 2002;3:287-99).
FⅦ은 간에서 합성되며, 48 kD의 단일-쇄 당단백질로서 분비된다. FⅦ은 지질 막과 단백질의 상호 작용을 관장하는 9 내지 12 개의 잔기를 갖는 아미노-말단 감마-카복시글루탐산 (Gla) 영역, 카복시-말단 세린 프로테아제 영역 (촉매적 영역), 및 조직 인자와의 상호작용을 매개하는 칼슘 이온 결합 부위를 함유하는 2 개의 표피 성장 인자-유사 영역으로 구성된 유사한 단백질 영역 구조를, 모든 비타민 K-의존성 세린 프로테아제 당단백질과,공유한다. 감마-글루타밀 카복실라제는 상기 분자의 아미노-말단 부분에서 Gla 잔기의 카복실화를 촉진시킨다. 카복실라제는 그의 작용에 의한, 에폭사이드 형태로 산화되는 비타민 K의 환원된 형태에 의존적이다. 비타민 K 에폭사이드 환원 효소는 비타민 K의 에폭사이드 형태를 환원된 형태로 다시 전환시키는데 필요하다.
FⅦ의 대부분은 자이모겐 형태로 혈장 내에서 순환하며, 이 형태의 활성화는 아르기닌 152와 이소류신 153 사이의 펩티드 결합의 분해를 야기한다. 상기 결과로 생성되는 활성화된 FⅦa는 단일 이황화 결합 (Cys 135 대 Cys 262)을 통해서 연결된 NH2-유래된 경쇄 (light chain) (20 kD) 및 COOH 말단-유도된 중쇄 (heavy chain) (30 kD)로 구성된다. 상기 중쇄는 촉매적 영역을 함유하는 반면, 상기 경쇄는 막-결합성 Gla 영역을 함유한다.
유전적 인자 및 환경적 인자에 의해서 결정된 FⅦ의 혈장 농도는 약 0.5 ㎎/㎖이다 (Pinotti 등, Blood. 2000;95:3423-8). 상이한 FⅦ 유전자형은 평균 FⅦ 레벨에서 수 배의 차이를 야기할 수 있다. 혈장 FⅦ 레벨은 건강한 여성에서 임신 중에 상승되며, 또한 연령에 따라 증가하고, 여성 및 고트리글리세라이드혈증 (hypertriglyceridemia)이 있는 사람에게서 더 높다. FⅦ은 모든 응혈원 인자 중 가장 짧은 반감기를 갖는다 (3 내지 6 시간). FⅦa의 평균 혈장 농도는 건강한 개체내에서 3.6 ng/㎖이며, FⅦa의 순환 반감기는 다른 응혈원 인자와 비교하여 비교적 길다 (2.5 h).
유전적 FⅦ 결핍은 일반적인 집단에서 500,000 명당 1 증례로 추정되는 출현율을 갖는 희귀한 상염색체 열성 출혈성 장애이다 (Acharya 등, J Thromb Haemost. 2004;2248-56). 억제제로부터 얻어지는 FⅦ 결핍 또한 매우 희귀하다. 또한 세팔로스포린 (cephalosporins), 페니실린 및 경구용 항응고제와 같은 약물과 관련하여 나타나는 결핍에 대한 증례가 보고되고 있다. 더욱이, 획득된 FⅦ 결핍은 자발적으로 또는 골수종, 패혈증, 재생불량성 빈혈과 같은 다른 질병과 함께, 인터루킨-2 및 항 흉선 세포성 글로불린 요법과 함께 나타나는 것으로 보고되고 있다.
참조 폴리뉴클레오티드 및 폴리펩티드는, 예를 들어, 게놈 서열에 대한 유전자 은행 (GenBank) 수탁번호 제J02933호, cDNA에 대한 M13232 (Hagen 등 PNAS 1986; 83: 2412-6), 및 폴리펩티드 서열에 대한 P08709를 포함한다 (본원 명세서에 전체로서 통합된 참고문헌). FⅦ의 다양한 다형현상은 예를 들어, 문헌 (참조: Sabater-Lleal 등, Hum Genet. 2006; 118:741-51; 본 발명에 온전히 참고로 통합됨)에 기술되어 있다.
인자 IX
FIX는 FX를 칼슘 이온, 인지질 및 FⅧa의 존재 하에서 그의 활성 형태로 전환시킴으로써 치료의 내인성 경로에 참여하는 비타민 K-의존성 혈장 단백질이다. FIX는 FX 내의 특정한 아르기닌-이소류신 결합에 대한 특이성을 갖는 세린 프로테아제로서 현저한 촉매적 능력을 갖는다. FIX의 활성화는 FIX로부터 활성화된 펩티드 절단을 야기하는 FXIa에 의해 발생하며, 하나 이상의 이황화 결합을 갖는 2 개의 쇄를 포함하는 활성화된 FIX 분자를 생산한다. FIX의 결함은 열성 X-연관된 혈우병 B의 원인이 된다.
혈우병 A 및 B는 각각 FⅧ 및 FIX 폴리펩티드에서의 결핍을 특징으로 하는 유전병이다. 상기 결핍의 근본적 원인은 종종, 양자 모두 X 염색체 상에 위치하는 FⅧ 및 FIX 유전자의 돌연변이에 있다. 혈우병에 대한 전통적인 치료법은 흔히 정상 개체로부터 유래하는 혼합된 혈장 (pooled plasma) 또는 반-정제된 응고 단백질의 정맥내 투여를 포함한다. 이들 제제는 감염성 프리온 (prions), HIV, 파보바이러스, 간염 A, 및 간염 C와 같은 병원성 작용제 또는 바이러스에 의해서 오염될 수 있다. 따라서, 인간 혈청의 사용을 필요로 하지 않는 치료학적 약제에 대한 요구가 절실하다.
FIX 활성의 감소 정도는 혈우병 B의 중증도에 정비례한다. 혈우병 B의 현행 치료는 결여된 단백질을 혈장-유래 또는 재조합 FIX에 의해서 대체시키는 것 (소위 FIX 치환 또는 대체 치료 또는 치료법)을 포함한다.
FIX의 폴리뉴클레오티드 및 폴리펩티드 서열은 예를 들어, UniProtKB/Swiss-Prot 수탁번호 제P00740호, 미국 특허 제6,531,298호 및 도 1에서 찾아볼 수 있다 (서열번호: 1)
인자 Ⅷ
응고 인자 Ⅷ (FⅧ)은 혈장 내에서 매우 낮은 농도로 순환하며, 폰 빌레브란트 (VWF)에 비-공유적으로 결합된다. 지혈 중, FⅧ은 VWF로부터 분리되고, 칼슘 및 인지질 또는 세포성 막의 존재 하에서 활성화 속도를 증진시킴으로써 활성화된 인자 IX (FIXa)에 매개된 FX 활성화를 위한 보조인자로서 작용한다.
FⅧ은 영역 구조 A1-A2-B-A3-C1-C2를 갖는 약 270 내지 330 kD의 단일-쇄 전구체로 합성된다. 혈장으로부터 정제되는 경우 (예를 들어, "혈장-유래" 또는 "혈장성"), FⅧ은 중쇄 (A1-A2-B) 및 경쇄 (A3-C1-C2)로 구성된다. 상기 경쇄의 분자 질량은 80 kD인 반면, 상기 B 영역 내에서의 단백분해로 인하여, 상기 중쇄는 90 내지 220 kD의 범위이다.
FⅧ은 또한 출혈성 장애에서 치료학적 사용을 위해 재조합 단백질로 합성된다. 다양한 생체 외 시험이 치료학적 의약으로서의 재조합 FⅧ (rFⅧ)의 잠재적 효능을 결정하기 위하여 고안되었다. 이들 시험방법은 내인성 FⅧ의 생체내 효과를 모사한다. FⅧ의 생체 외 트롬빈 처리는 생체 외 시험방법에 의해서 측정된 것으로서, 그의 응혈원 활성의 빠른 증가 및 그에 따른 감소를 야기한다. 상기 활성화 및 불활성화는 중쇄 및 경쇄 양자에서 특이적으로 제한된 단백분해와 일치하며, 이는 FⅧ에서 다양한 결합성 항원 결정 부위 (epitopes)의 이용 가능성을 변화시킴으로써, 예를 들어, FⅧ가 VWF로부터 해리되어 인지질 표면에 결합하도록 하거나, 특정의 단일 클론성 항체에 대한 결합 능력을 변화시킨다.
FⅧ의 결여 또는 기능부전은 가장 빈번한 출혈성 장애인 혈우병 A와 연관된다. 혈우병 A의 관리를 위해서 선택된 치료는 혈장 유래 또는 rFⅧ 농축물에 의한 대체요법이다. 1% 이하의 양의 FⅧ을 갖는 중증 혈우병 A를 앓는 환자는 일반적으로 투약 사이에 1% 이상으로 FⅧ을 유지시킬 목적으로 예방적 요법을 시행한다. 순환 중인 상기 다양한 FⅧ 생성물의 평균 반감기를 고려할 때, 상기 결과는 통상적으로 FⅧ을 1 주일에 2 내지 3 회 제공함으로써 달성될 수 있다.
참조 폴리뉴클레오티드 및 폴리펩티드 서열은, 예를 들어, UniProtKB/Swiss-Prot P00451 (FA8_HUMAN)을 포함한다 (참조: Gitschier J 등, Characterization of the human Factor Ⅷ gene, Nature, 312 (5992): 326-30 (1984); Vehar GH 등, Structure of human Factor Ⅷ, Nature, 312 (5992):337-42 (1984); Thompson AR. Structure and Function of the Factor Ⅷ gene and protein, Semin Thromb Hemost, 2003:29;11-29 (2002)).
폰 빌레브란트 인자
폰 빌레브란트 인자 (VWF)는 크기가 약 500 내지 20,000 kD의 범위인 멀티머 (multimers) 계열로서 혈장 중에 순환하는 당단백질이다. VWF의 멀티머 형태는 이황화 결합에 의해서 함께 연결된 250 kD 폴리펩티드 서브유니트로 구성된다. VWF는 손상된 혈관 벽의 내피하층에 대한 초기 혈소판 부착을 매개한다. 오로지 더 큰 멀티머만이 지혈 활성을 나타낸다. 상기 내피세포는 VWF의 큰 폴리머 형태를 분비하고, 작은 분자량을 갖는 VWF (저분자량 VWF)는 단백분해적 분해로부터 생기는 것으로 추측된다. 큰 분자 질량을 갖는 상기 멀티머는 내피세포의 바이벨-팔레이드체 (Weibel-Pallade bodies) 내에 저장되며, 자극에 의해 유리된다.
VWF는 내피세포 및 거핵세포에 의해서, 대부분 반복된 영역으로 구성되는 프로-VWF 전구체 (prepro-VWF)로서 합성된다. 시그날 펩티드의 분해에 의해서 프로-VWF는 그의 C-말단 구역에서 이황화 결합을 통해서 다이머화한다. 상기 다이머는 유리 말단의 말단부 사이의 이황화 결합에 의해 지배를 받는 멀티머화를 위한 프로모터로서 작용한다. 멀티머로의 집합에 이어서 프로펩티드 서열의 단백분해적 제거가 뒤따른다 (Leyte 등, Biochem. J. 274 (1991), 257-261).
VWF의 클로닝된 cDNA로부터 예측되는 일차 번역 생성물은 2813-잔기 전구체 폴리펩티드 (프로-VWF 전구체)이다. 상기 프로-VWF 전구체는 22 개의 아미노산 시그날 펩티드 및 741 개의 아미노산 프로펩티드로 구성되며, 성숙 VWF는 2050 개의 아미노산을 포함한다 (Ruggeri Z.A., and Ware, J., FASEB J., 308-316 (1993)).
VWF에서의 결함은 다소 현저한 출혈성 표현형을 특징으로 하는 폰 빌레브란트병 (VWD)에 대한 원인이 된다. VWD 유형 3은 VWF가 완전히 결여된 가장 중증인 형태이며, VWD 유형 1은 VWF의 양적인 손실과 관련되며, 그의 표현형은 매우 약할 수 있다. VWD 유형 2는 VWF의 성질상의 결함과 관련되며, VWD 유형 3과 같은 정도로 중증일 수 있다. VWD 유형 2는 다수의 서브 형태를 가지며, 이들 중의 일부는 고분자량 멀티머의 손실 또는 감소와 연관된다. 폰 빌레브란트 질환 유형 2a (VWD-2A)는 중간체 및 큰 멀티머 양자의 손실에 의해 특성화된다. VWD-2B는 최고 분자량의 멀티머의 손실에 의해 특성화된다. VWF와 관련된 그 밖의 다른 질환 및 장애는 당해 기술분야에서 공지되어 있다.
프로-VWF 전구체의 폴리뉴클레오티드 및 아미노산 서열은 각각 유전자 은행수탁번호 제NM_000552 및 NP_000543으로 이용 가능하다.
본 발명에 따른 그 밖의 다른 치료 단백질은 당해 기술분야에서, 예를 들어, 문헌 (Mann KG, Thromb Haemost, 1999;82:165-74)에 기술되어 있다.
A. 폴리펩타이드
일 측면에서, 본 발명의 시작 물질은 단백질 또는 폴리펩타이드이다. 본원 명세서에서 사용된, 용어 치료 단백질은 치료 단백질과 관련된 생물학적 활성을 나타내는 임의의 치료 단백질 분자를 나타낸다. 본 발명의 일 구현예에서, 상기 치료 단백질 분자는 전체-길이 치료 단백질이다.
고려되는 치료 단백질 분자는, 전체-길이 단백질, 전체 길이 단백질의 전구체, 전체 길이 단백질의 생물학적 활성 서브유니트 또는 단편뿐만 아니라, 치료 단백질의 임의의 형태의 생물학적 활성 유도체 및 변이체를 포함한다. 따라서, 치료 단백질은, (1) 본원 명세서에 기술된 기준 핵산 또는 아미노산 서열에 의해 코딩된 폴리펩티드에 대해서 적어도 약 25, 약 50, 약 100, 약 200, 약 300, 약 400, 또는 그 이상의 아미노산의 구역에 걸쳐서, 약 60%, 약 65%, 약 70%, 약 75%, 약 80%, 약 85%, 약 90%, 약 91%, 약 92%, 약 93%, 약 94%, 약 95%, 약 96%, 약 97%, 약 98% 또는 약 99% 이상 또는 그 이상의 아미노산 서열 동일성을 가지며; 및/또는 (2) 본원 명세서에 기술된 바와 같은 기준 아미노산 서열, 그의 면역원성 단편 및/또는 그의 보존적으로 변형된 변이체를 포함하는 면역원에 대해서 생성된 항체, 예를 들어, 다중 클론성 (polyclonal) 또는 단일 클론성 (monoclonal) 항체에 특이적으로 결합하는 것을 포함한다.
본 발명에 따르면, 용어 "재조합 치료 단백질"은 재조합 DNA 기술을 통해서 수득된 임의의 치료 단백질을 포함한다. 특정의 구현예에서, 상기 용어는 본원 명세서에 기술된 바와 같은 단백질을 포함한다.
본원 명세서에서 사용된, "내인성 치료 단백질"은 치료를 받도록 의도된 포유 동물로부터 유래된 치료 단백질을 포함한다. 상기 용어는 또한, 상기 포유 동물에 존재하는 이식 유전자 (transgene) 또는 임의의 다른 외래 DNA로부터 전사된 치료 단백질을 포함한다. 본원 명세서에서 사용된 용어, "외인성 치료 단백질"은 치료를 받도록 의도된 포유동물로부터 유래하지 않는 치료 단백질을 포함한다.
본원 명세서에서 사용된, "혈장-유래 치료 단백질" 또는 "혈장성"은 응고 경로에 참여하는 특성을 갖는 포유동물로부터 수득된 혈액 내에서 발견된 임의의 형태의 단백질을 포함한다.
본원 명세서에서 사용된, "생물학적 활성 유도체" 또는 "생물학적 활성 변이체"는, 결합 특성과 같은 상기 분자와 실질적으로 동일한 기능적 및/또는 생물학적 특성을 가지며, 및/또는 펩티드 골격 또는 기본 폴리머 단위와 같은 동일한 구조적 기반을 갖는 분자의 임의의 유도체 또는 변이체를 포함한다.
"유사체" 예컨대 "변이체" 또는 "유도체"는 천연적으로 발생한 분자와, 비록 특정의 경우에 상이하나, 구조적으로 실질적으로 유사하며 동일한 생물학적 활성을 갖는 화합물이다. 예를 들어, 폴리펩티드 변이체는 참조 폴리펩티드와 실질적으로 유사한 구조를 공유하며, 동일한 생물학적 활성을 갖는 폴리펩티드를 나타낸다. 변이체 또는 유사체는, (i) 폴리펩티드의 하나 이상의 말단 및/또는 천연적으로 발생한 폴리펩티드 서열의 하나 이상의 내부 구역 (예를 들어, 단편)에서 하나 이상의 아미노산 잔기의 결실, (ii) 폴리펩티드의 하나 이상의 말단 (전형적으로 "부가" 또는 "융합") 및/또는 천연적으로 발생한 폴리펩티드 서열의 하나 이상의 내부 구역 (전형적으로 "삽입")에서 하나 이상의 아미노산의 삽입 또는 부가, 또는 (iii) 천연적으로 발생한 폴리펩티드 서열에서 하나 이상의 아미노산의 다른 아미노산에 대한 치환을 포함하는 하나 이상의 돌연변이를 근거로 하여, 유사체가 유도된 천연적으로 발생한 폴리펩티드와 비교하여, 그들의 아미노산 서열의 조성이 상이하다. 예를 들어, "유도체"는 예를 들어, 화학적으로 변형된 참조 폴리펩티드와 동일하거나 실질적으로 유사한 구조를 공유하는 폴리펩티드를 나타낸다.
변이체 폴리펩티드는 유사체 폴리펩타이드의 유형이고, 하나 이상의 아미노산 잔기가 본 발명의 치료 단백질 아미노산 서열에 첨가된 삽입 변이체를 포함한다. 삽입은 단백질의 어느 하나 또는 양자의 말단에 위치할 수 있으며, 및/또는 치료 단백질 아미노산 서열의 내부 구역 내에 위치할 수 있다. 어느 하나 또는 양 말단에 추가적인 잔기를 갖는 삽입 변이체는, 예를 들어, 융합 단백질 및 아미노산 태그 (tag) 또는 다른 아미노산 라벨 (label)을 포함하는 단백질을 포함한다. 일 관점에서, 상기 치료 단백질 분자는 특히 분자가 E. coli와 같은 박테리아 세포에서 재조합적으로 발현되는 경우에, N-말단 Met를 임의적으로 함유한다.
결실 변이체에서, 본원 명세서에 기술된 바와 같은 치료 단백질 폴리펩티드 내의 하나 이상의 아미노산 잔기가 제거된다. 결실은 치료 단백질 폴리펩티드의 어느 하나 또는 양 말단에서 유효할 수 있으며, 및/또는 상기 치료 단백질 아미노산 서열 내의 하나 이상의 잔기의 제거와 함께 일어날 수 있다. 따라서, 결실 변이체는 치료 단백질 폴리펩티드 서열의 단편을 포함한다.
치환 변이체에서, 치료 단백질 폴리펩티드의 하나 이상의 아미노산 잔기가 제거되고, 대체 잔기로 치환된다. 일 관점에서, 상기 치환은 사실상 보존적이며, 상기 유형의 보존적 치환은 당해 기술 분야에서 잘 알려져 있다. 대안적으로, 본 발명은 또한 비-보존적인 치환을 포함한다. 보존적 치환의 예는 문헌 (Lehninger, Biochemistry, 2nd Edition; Worth Publishers, Inc., 뉴욕 (1975), pp.71-77)에 기술되어 있으며, 바로 아래에서 설명한다.
Figure pat00026
대안적으로, 예시적인 보존적 치환은 하기에서 바로 나타나 있다.
Figure pat00027
B. 폴리뉴클레오티드
본 발명의 치료 단백질을 인코딩하는 핵산은, 예를 들면 및 비제한적으로, 유전자, pre-mRNAs, mRNAs, cDNAs, 다형성 변이체, 대립유전자, 합성 및 천연 생성 돌연변이체를 포함한다.
본 발명의 치료 단백질을 인코딩하는 폴리뉴클레오티드는 또한, 비제한적으로 하기인 것을 포함한다: (1) 엄격한 하이브리드화 조건 하에서 본원에서 기재된 바와 같은 참조 아미노산 서열을 인코딩하는 핵산, 및 그의 보존적으로 변형된 변이체로 특이적으로 하이브리드화하는 것; (2) 적어도 약 25, 약 50, 약 100, 약 150, 약 200, 약 250, 약 500, 약 1000, 또는 그 초과 뉴클레오타이드의 영역에 걸쳐 (성숙 단백질의 1218 뉴클레오타이드의 전체 길이 서열까지) 본원에서 기재된 참조 핵산 서열에 대해 약 95%, 약 96%, 약 97%, 약 98%, 약 99%, 또는 그 초과 뉴클레오타이드 서열 동일성을 갖는 핵산 서열을 갖는 것. 예시적인 "엄격한 하이브리드화" 조건은 하기를 포함한다: 50% 포름아마이드, 5X SSC, 20 mM NaㆍPO4, pH 6.8에서 42oC에서 하이브리드화; 및 55 ℃에서 30분 동안 1X SSC에서 세정. 이들 예시적인 조건에의 변형은 하이브리드화될 서열의 길이 및 GC 뉴클레오타이드 함량을 기준으로 만들어질 수 있다는 것으로 이해된다. 당해분야에서의 식 표준은 적절한 하이브리드화 조건을 결정하는데 적절하다. 참조 Sambrook et al, Molecular Cloning: A Laboratory Manual (제2판, Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989)§§ 9.47-9.51.
"천연 생성" 폴리뉴클레오티드 또는 폴리펩티드 서열은 하기를 비제한적으로 포함하는 포유류로부터 전형적으로 유래된다: 영장류, 예들 들면, 인간; 설치료, 예들 들면, 랫트, 마우스, 햄스터; 소, 돼지, 말, 양, 또는 어떤 포유류. 본 발명의 핵산 및 단백질은 재조합 분자일 수 있다 (예들 들면, 이종성 및 야생형 서열 또는 그의 변이체를 인코딩함, 또는 비-천연 생성).
C. 치료 단백질의 생산
치료 단백질의 생산은 정제된 치료 단백질을 수득하기 위하여 (i) 유전자 가공에 의해서 재조합 DNA를 생산하고, (ii) 예를 들어, 형질 주입, 전기천공 또는 미량주사에 의해서 (단, 이들로 제한되지 않는다) 원핵 또는 진핵 세포 내로 재조합 DNA를 도입시키고, (iii) 상기 형질전환된 세포를 배양하고, (iv) 치료 단백질을, 예를 들어, 구성적으로 또는 유도에 의해서 발현시키고, (v) 예를 들어, 배양 배지로부터, 또는 상기 형질 전환된 세포를 거두어 들임으로써 상기 치료 단백질을 분리시키기 위한 당해 기술분야에서 공지된 모든 방법을 포함한다.
다른 측면에서, 상기 치료 단백질은 약물학적으로 허용되는 치료 단백질 분자를 생산하는 것을 특징으로 하는 적합한 원핵 또는 진핵 숙주 시스템 내에서의 발현에 의해서 생산된다. 진핵세포의 예로는 CHO, COS, HEK 293, BHK, SK-Hep, 및 HepG2와 같은 포유동물 세포를 들 수 있다.
상기 치료 단백질의 제조를 위해서 광범위한 종류의 벡터가 사용되며, 진핵성 및 원핵성 발현 벡터로부터 선택된다. 원핵성 발현을 위한 벡터의 예로는 pRSET, pET, 및 pBAD와 같은 플라스미드가 포함되나, 이들로 제한되지 않으며, 여기에서 원핵성 발현 벡터에서 사용된 프로모터는 lac, trc, trp, recA, 또는 araBAD 중의 1 이상을 포함하나, 이들로 제한되지 않는다. 진핵성 발현을 위한 벡터의 예로는, (i) AOX1, GAP, GAL1, 또는 AUG1과 같은 (단, 이들로 제한되지 않는다) 프로모터를 사용하는, pAO, pPIC, pYES, 또는 pMET와 같은 (단, 이들로 제한되지 않는다) 효모내의 발현을 위한 벡터; (ii) PH, p10, MT, Ac5, OpIE2, gp64, 또는 polh와 같은 (단, 이들로 제한되지 않는다) 프로모터를 사용하는 pMT, pAc5, pIB, pMIB, 또는 pBAC와 같은 (단, 이들로 제한되지 않는다) 곤충 세포에서의 발현을 위한 벡터, 및 (iii) 포유동물 세포에서의 발현을 위한 pSVL, pCMV, pRc/RSV, pcDNA3, 또는 pBPV와 같은 (단, 이들로 제한되지 않는다) 벡터, 및 일 관점에서, CMV, SV40, EF-1, UbC, RSV, ADV, BPV, 및 β-액틴과 같은 (단, 이들로 제한되지 않는다) 프로모터를 사용하는, 우두 바이러스 (Vaccinia Virus), 아데노-연관 바이러스, 포진 바이러스 (Herpes Virus), 또는 레트로바이러스와 같은 (단, 이들로 제한되지 않는다) 바이러스 시스템으로부터 유도된 벡터가 포함된다.
D. 투여
일 구현예에서, 본 발명의 콘주게이션된 치료 단백질은 정맥내, 근육내 또는 복강내 주사와 같은 주사에 의해서 투여될 수 있다.
일 구현예에서, 본 발명의 콘주게이션된 치료 단백질을 포함하는 조성물을 인간 또는 시험 동물에게 투여하기 위하여, 상기 조성물은 하나 이상의 약제학적으로 허용되는 담체를 포함한다. 상기 용어 "약제학적으로" 또는 "약물학적으로 허용되는"은 이하에 기술되는 바와 같이, 당해 기술분야에서 잘 알려진 경로를 사용하여 투여되는 경우, 안정하며, 응집 및 분해 생성물과 같은 단백질 분해를 억제하고, 이에 더하여 알레르기 또는 그 밖의 다른 유해반응을 야기하지 않는 분자 물질 및 조성물을 나타낸다. "약제학적으로 허용되는 담체"에는 상술한 성분들을 포함한 임의의 모든 임상학적으로 유용한 용매, 분산 매질, 코팅제, 항균 및 항진균제, 등장성 및 흡수지연제 등이 포함된다.
본원 명세서에서 사용된, "유료량"은 질환 또는 장애를 치료하거나 질환 또는 장애의 증상을 완화시키는데 적당한 용량을 포함한다. 일 구현예에서,"유효량"은 본원 명세서에 기술된 바와 같은 출혈성 장애를 갖는 포유동물을 치료하는데 적합한 용량을 포함한다.
상기 조성물은 경구적으로, 국소적으로, 경피적으로, 비경구적으로, 흡입 스프레이에 의해서, 질내로, 직장으로, 또는 두개내 (intracranial) 주사에 의해서 투여될 수 있다. 상기 용어, 비경구는 본원 명세서에서 사용된 바와 같이, 피하 주사, 정맥내, 근육내, 낭내 (intracisternal) 주사, 또는 주입 기술을 포함한다. 정맥내, 피내 (intradermal), 근육내, 유선내, 복강내, 척추강내 (intrathecal), 안구후, 폐내 주사에 의한 투여, 또는 특정 부위에서의 외과적 이식 역시 고려된다. 일반적으로, 조성물은 본질적으로 수용주에게 유해할 수 있는 다른 불순물뿐만 아니라, 발열 인자 (pyrogens)를 함유하지 않는다.
상기 조성물의 단일 또는 복수의 투여는 치료하는 의사에 의해서 선택된 용량 및 패턴으로 수행될 수 있다. 질병의 예방 또는 치료를 위해서, 적절한 투여량은 상술한 바와 같이 치료될 질병의 유형, 질병의 중증도 및 과정, 약물이 예방적 또는 치료학적 목적으로 투여되는지 여부, 선행 치료법, 환자의 임상적 병력 및 약물에 대한 반응, 및 주치의의 판단에 따라 좌우될 수 있다.
본 발명은 또한, 본원 명세서에 정의된 바와 같은 콘주게이션된 치료 단백질의 유효량을 포함하는 약제학적 조성물에 관한 것이다. 상기 약제학적 조성물은 약제학적으로 허용되는 담체, 희석제, 염, 완충제 또는 부형제를 추가로 포함할 수 있다. 상기 약제학적 조성물은 상기 정의된 출혈성 장애를 치료하는데 사용될 수 있다. 본 발명의 상기 약제학적 조성물은 용액 또는 동결건조된 생성물일 수 있다. 상기 약제학적 조성물의 용액은 임의의 적합한 동결건조 공정에 적용될 수 있다.
추가적인 측면으로서, 본 발명은 대상체에게 투여하기 위하여, 그 사용을 용이하게 하는 방식으로 포장된 본 발명의 조성물을 포함하는 키트 (kits)를 포함한다. 일 구현예에서, 이러한 키트는 상기 방법을 실시할 때의 화합물 또는 조성물의 사용을 설명하는 것으로 용기에 부착되거나 포장에 포함된 라벨을 갖는 밀봉된 병 또는 용기와 같은 용기 내에 포장된, 본원 명세서에 기술된 화합물 또는 조성물 (예를 들어, 콘주게이션된 치료 단백질을 포함하는 조성물)을 포함한다. 일 구현예에서, 상기 키트는 콘주게이션된 치료 단백질을 포함하는 조성물을 담은 제1 용기, 및 상기 제1 용기 내의 조성물을 위한 생리학적으로 허용되는 재구성 용액을 담은 제2 용기를 함유한다. 일 관점에서, 상기 화합물 또는 조성물은 단위 투약 형태으로 포장된다. 상기 키트는 특정한 투여 경로에 따라 상기 조성물을 투여하는데 적합한 장치를 추가로 포함할 수 있다. 바람직하게는, 상기 키트는 치료학적 단백질 또는 펩티드 조성물의 사용을 설명하는 라벨을 함유한다.
수용성 폴리머
일 측면에서, 제공된 치료 단백질 유도체 (즉, 콘주게이션된 치료 단백질) 분자는 폴리에틸렌 글리콜 (PEG), 분지형 PEG, 폴리시알산 (PSA), 하이드록시알킬 전분 (HAS), 하이드록실에틸 전분 (HES), 탄수화물, 폴리사카라이드, 풀루란, 키토산, 히알루론산, 황산 콘드로이틴, 황산 더마탄, 녹말, 덱스트란, 카복시메틸-덱스트란, 폴리알킬렌 옥시드 (PAO), 폴리알킬렌 글리콜 (PAG), 폴리프로필렌 글리콜 (PPG), 폴리옥사졸린, 폴리아크릴로일모폴린, 폴리비닐 알코올 (PVA), 폴리카복실레이트, 폴리비닐피롤리돈, 폴리포스파젠, 폴리옥사졸린, 폴리에틸렌-말레인산 무수물 공중합체, 폴리스테렌-말레인산 무수물 공중합체, 폴리(1-히드록시메틸에틸렌 히드록시메틸포름알) (PHF), 2-메타크릴로일록시-2'-에틸트리메틸암모늄포스페이트 (MPC)를 포함하나, 이들로 제한되지 않는 수용성 폴리머에 결합된다. 본 발명의 일 구현예에서, 상기 수용성 폴리머는 350 내지 120,000, 500 내지 100,000, 1,000 내지 80,000, 1,500 내지 60,000, 2,000 내지 45,000 Da, 3,000 내지 35,000 Da, 및 5,000 내지 25,000 Da의 분자량 범위를 갖는 시알산 분자로 구성된다. 상기 수용성 폴리머의 커플링 반응은 단백질에 대한 직접 커플링에 의해서, 또는 링커 분자를 통해서 수행될 수 있다. 화학적 링커의 한가지 예는 탄수화물-선택적 히드라지드 및 설프히드릴-반응성 말레이미드기를 함유하는 MBPH (4-[4-N-말레이미도페닐]부티르산 히드라지드)이다 (Chamow 등, J Biol Chem 1992;267:15916-22). 그 밖의 다른 예시적이고 바람직한 링커는 하기에서 기술한다.
일 구현예에서, 상기 유도체는 천연 치료학적 치료 단백질 생성물의 전체 기능적 활성을 보유하며, 천연 치료학적 치료 단백질 생성물과 비교할 때, 연장된 생체내 반감기를 제공한다. 또 다른 구현예에서, 상기 유도체는 천연 치료 단백질에 비해서 적어도 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 34, 35, 36, 37, 38, 39, 40, 41, 42, 43, 44, 45, 46, 47, 48, 49, 50, 51, 52, 53, 54, 55, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 63, 64, 65, 66, 67, 68, 69, 70, 71, 72, 73, 74, 75, 76, 77, 78, 79, 80, 81, 82, 83, 84, 85, 86, 87, 88, 89, 90, 91, 92, 93, 94, 95, 96, 97, 98, 99, 100, 110, 120, 130, 140, 또는 150 퍼센트 (%)의 생물학적 활성을 보유한다. 관련된 관점에서, 상기 유도체 및 천연 치료 단백질의 생물학적 활성은 치료 인자 항원값에 대한 발색 반응 활성 (chromogenic activity)의 비 (치료 인자 : Chr : 치료 인자 : Ag)에 의해서 결정된다. 본 발명의 또 다른 구현예에서, 상기 구조물의 반감기는 천연 치료 단백질의 생체내 반감기에 비해 0.5, 0.6, 0.7, 0.8, 0.9, 1.0, 1.1, 1.2, 1.3, 1.4, 1.5, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 또는 10 배 감소 또는 증가한다.
A. 시알산 및 PSA
PSA는 N-아세틸뉴라민산의 폴리머 (일반적으로 호모폴리머)로 이루어진다. 2차 아미노 그룹은 통상 아세틸 그룹을 갖지만, 대신에 글라이콜릴 그룹을 보유할 수 있다. 하이드록실 그룹 상의 가능한 치환체는 아세틸, 락틸 에틸, 설페이트, 및 포스페이트 그룹을 포함한다.
Figure pat00028
시알산 (N-아세틸뉴라민산)의 구조
PSA 및 mPSA은 일반적으로 2,8- 또는 2,9- 글라이코사이드 결합 또는 이들의 조합 (예들 들면 2,8- 및 2,9- 결합을 대체)에 의해 결합된 N-아세틸뉴라민산 모이어티들로 본질적으로 이루어진 선형 폴리머를 포함한다. 특히 바람직한 PSA 및 mPSA에서, 글라이코사이드 결합은 α-2,8이다. 그와 같은 PSA 및 mPSA는 편리하게 콜로민산으로부터 유래되고, "CA" 및 "mCA"인 것으로 본원에서 정의된다. 전형적인 PSA 및 mPSA는 적어도 2, 바람직하게는 적어도 5, 더 바람직하게는 적어도 10 및 가장 바람직하게는 적어도 20 N-아세틸뉴라민산 모이어티들을 포함한다. 따라서, 2 내지 300 N-아세틸뉴라민산 모이어티들, 바람직하게는 5 내지 200 N-아세틸뉴라민산 모이어티들, 또는 가장 바람직하게는 10 내지 100 N-아세틸뉴라민산 모이어티들을 포함할 수 있다. PSA 및 CA는 바람직하게는 N-아세틸뉴라민산 이외의 당 모이어티들이 본질적으로 없다. 따라서 PSA 및 CA는 바람직하게는 적어도 90 %, 더 바람직하게는 적어도 95 % 및 가장 바람직하게는 적어도 98 % N-아세틸뉴라민산 모이어티들을 포함한다.
(예를 들면 mPSAS 및 mCA에서와 같이)PSA 및 CA가 N-아세틸뉴라민산 이외의 모이어티들을 포함하는 경우 이들은 바람직하게는 폴리머 사슬의 말단의 한쪽 또는 양쪽에서 위치한다. 그와 같은 "다른" 모이어티들은, 예를 들면, 산화 또는 환원에 의해 말단 N-아세틸뉴라민산 모이어티들로부터 유래된 모이어티들일 수 있다.
예를 들면, WO-A-0187922은 그와 같은 mPSA 및 mCA을 기재하고 있고 여기서 비-환원 말단 N-아세틸뉴라민산 단위는 나트륨 페리오데이트와의 반응에 의해 알데하이드 그룹으로 전환된다. 또한, WO 2005/016974는 그와 같은 mPSA 및 mCA을 기재하고 있고 여기서 환원 말단 N-아세틸뉴라민산 단위에 대해 환원 말단 N-아세틸뉴라민산 단위에서 고리를 환원적으로 개방하기 위해 환원이 수행되고, 이로써 근접 디올 그룹이 형성되고, 그 다음 근접 디올 그룹을 알데하이드 그룹으로 전환시키기 위해 산화가 수행된다.
시알산 풍부 당단백질은 인간 및 다른 유기체에서 셀렉틴에 결합한다. 인간 인플루엔자 감염에서 중요한 역할을 한다. 예들 들면, 시알산은 만노오스 결합 렉틴으로부터 호스트 세포 또는 세균의 표면 상에 만노오스 항원을 숨길 수 있다. 이는 보체의 활성화를 방지한다. 시알산은 또한, 페뉼티메이트(penultimate) 갈락토오스 잔기를 숨기고 따라서 간 실질 세포 상의 갈락토오스 수용체에 의해 당단백질의 빠른 청소를 방치한다.
Figure pat00029
콜로민산 (N-아세틸뉴라민산의 호모폴리머)의 구조
콜로민산 (PSA의 하위분류)는 α (2→8) 케토사이드 결합을 갖는 N-아세틸뉴라민산 (NANA)의 호모폴리머이고, 그 중에서도, K1 항원을 갖는 에스케리치아 콜리의 특정 균주에 의해 생산된다. 콜로민산은 많은 생리 기능을 갖는다. 약물 및 화장품의 원료로서 중요하다.
폴리시알릴화된 및 비변형 아스파라기나제에 의한 생체내 비교 연구는, 폴리시알릴화가 효소의 반감기를 증가시킨다는 것을 보여주었다 (Fernandes 및 Gregoriadis, Biochimica Biophysica Acta 1341: 26-34, 1997).
본원 명세서에서 사용된, "시알산 부위"는 수성 용액 또는 현탁액에서 가용성이며, PSA-치료 단백질 복합체를 포유동물에 약제학적 유효량으로 투여하면 부작용과 같은 부정적인 영향이 거의 없거나 전혀 없는 시알산 모노머 또는 폴리머 ("폴리사카라이드")를 포함한다. 상기 폴리머는 일 관점에서 1, 2, 3, 4, 5, 10, 20, 30, 40, 50, 60, 70, 80, 90, 100, 200, 300, 400, 또는 500 개의 시알산 단위를 갖는 것으로 특정화된다. 특정 관점에서는, 다양한 시알산 단위가 쇄 내에 조합된다.
본 발명의 일 구현예에서, 폴리사카라이드 화합물의 시알산 부분은 강한 친수성이며, 또 다른 구현예에서는 전체 화합물이 강한 친수성을 띤다. 친수성은 주로 히드록실기뿐만 아니라 시알산 단위의 펜던트 카복실기에 의해서 부여된다. 사카라이드 단위는 아민, 히드록실기 또는 설페이트기, 또는 이들의 조합과 같은 다른 기능적 작용기를 함유할 수 있다. 이들 작용기는 천연적으로 발생한 사카라이드 화합물 상에 존재하거나, 유도된 폴리사카라이드 화합물 내로 도입될 수 있다.
상기 천연적으로 발생한 폴리머 PSA는 넓은 크기 분포 (예를 들어, 시그마 C-5762) 및 높은 다분산성 (PD)을 나타내는 다분산 제제 (polydisperse)로서 이용될 수 있다. 상기 폴리사카라이드는 통상적으로 내독소를 공동 정제하는 유전적 위험을 동반하는 박테리아에서 생산되기 때문에, 긴 시알산 폴리머 쇄의 정제는 내독소 함량을 증가시킬 가능성을 상승시킬 수 있다. 1 내지 4 개의 시알산 단위를 갖는 짧은 PSA 분자는 또한 합성적으로 제조될 수도 있으며 (Kang SH 등, Chem Commun. 2000;227-8; Ress DK 및 Linhardt RJ, Current Organic Synthesis. 2004;1:31-46), 따라서 높은 내독소 함량의 위험을 최소화시킬 수 있다. 그러나, 현재 내독소 또한 함유하지 않으며 가느다란 크기 분포 및 낮은 다분산성을 갖는 PSA 제제를 제조하는 것이 가능하다. 일 관점에서, 본 발명을 위한 특별한 용도의 폴리사카라이드 화합물은 박테리아에 의해서 생산된 것이다. 이러한 천연적으로 발생한 폴리사카라이드 중의 일부는 당지질 (glycolipids)로 알려져 있다. 일 구현예에서, 상기 폴리사카라이드 화합물은 실질적으로 말단 갈락토스 단위를 갖지 않는다.
B. 폴리에틸렌 글리콜 (PEG) 및 페길화
특정의 관점에서, 치료 단백질은 임의의 다양한 화학적 방법에 의해 수용성 폴리머에 콘주게이션된다 (Roberts JM 등, Advan Drug Delivery Rev 2002;54:459-76). 예를 들어, 일 구현예에서 치료 단백질은 N-히드록시석신이미드 (NHS) 에스테르를 사용하여 단백질의 유리 아미노기에 PEG를 콘주게이션시킴으로써 변형된다. 또 다른 구현예에서, 수용성 폴리머, 예를 들어, PEG는 말레이미드 화학 반응, 또는 선행 산화반응 후에 치료 단백질의 탄수화물 부위에 대한 PEG 히드라지드 또는 PEG 아민의 커플링 반응을 이용하여 유리 SH 기에 커플링된다.
일 관점에서, 상기 콘주게이션은 안정한 결합의 형성 하에서의 치료 단백질에 대한 수용성 폴리머의 직접 커플링 (또는 링커 시스템을 통한 커플링)에 의해서 수행된다. 또한, 본 발명의 특정한 관점에서, 분해성, 방출 가능성 또는 가수 분해성 링커 시스템이 사용된다 (Tsubery 등 J Biol Chem 2004;279:38118-24 / Greenwald 등, J Med Chem 1999;42:3657-67 / Zhao 등, Bioconj Chem 2006;17:341-51 / WO2006/138572A2 / US7259224B2 / US7060259B2).
본 발명의 일 구현예에서, 치료 단백질는 석신이미딜 석시네이트, 석신이미딜 글루타레이트 또는 석신이미딜 프로피오네이트와 같은 활성 N-히드록시석신이미드 에스테르 (NHS)를 함유하는 폴리에틸렌 글리콜 유도체를 사용함으로써 리신 잔기를 통해서 변형된다. 이들 유도체는 안정한 아미드 결합을 형성함으로써 온화한 조건 하에서 치료 단백질의 리신 잔기와 반응한다. 본 발명의 일 구현예에서, 상기 PEG 유도체의 쇄 길이는 5,000 Da이다. 500 내지 2,000 Da, 2,000 내지 5,000 Da, 5,000 초과 10,000 Da 이하, 또는 10,000 초과 20,000 Da 이하, 또는 20,000 초과 150,000 Da 이하의 쇄 길이를 가지며 선형 및 분지형 구조를 포함하는 다른 PEG 유도체가 다양한 구현예에서 사용된다.
아미노기의 페길화를 위한 대안적의 방법으로는, 우레탄 결합의 형성에 의한 PEG 카보네이트와의 화학적 콘주게이션, 또는 2급 아미드 결합을 형성하는 환원적 아미노화에 의한 알데히드 또는 케톤과의 반응이 있으나, 이들로 제한되지는 않는다.
본 발명의 일 구현예에서, 치료 단백질 분자는 상업적으로 이용할 수 있는 PEG 유도체를 사용하여 화학적으로 변형된다. 대안적 관점에서의 이들 PEG 유도체는 선형 또는 분지형 구조를 갖는다. NHS기를 함유하는 PEG-유도체의 예는 이하에 열거한다.
다음의 PEG 유도체는 Nektar Therapeutics로부터 상업적으로 이용할 수 있는 비-제한적인 예이다 (Huntsville, Ala.; www.nektar.com/PEG reagent catalog 참조; Nektar Advanced PEGylation, price list 2005-2006):
mPEG-석신이미딜 프로피오네이트 (mPEG-SPA)
Figure pat00030
mPEG-석신이미딜 α-메틸부타노에이트 (mPEG-SMB)
Figure pat00031
mPEG-CM-HBA-NHS (CM=카복시메틸; HBA=히드록시 부티르산)
Figure pat00032
분지형 PEG-유도체의 구조 (Nektar Therapeutics):
분지형 PEG N-히드록시석신이미드 (mPEG2-NHS)
Figure pat00033
분지된 구조를 갖는 상기 시약은 Kozlowski 등 (BioDrugs 2001;5:419-29)에 의해 보다 상세하게 기술되어 있다.
PEG 유도체의 그 밖의 다른 비-제한적 예는 NOF Corporation으로부터 상업적으로 이용할 수 있다 (도쿄, 일본; www.nof.co.jp/english 참조: Catalogue 2005):
선형 PEG-유도체의 일반적 구조 (NOF Corp.):
Figure pat00034
X=카복시메틸
Figure pat00035
X=카복시펜틸
Figure pat00036
x=석시네이트
Figure pat00037
x=글루타레이트
Figure pat00038
분지형 PEG-유도체의 구조 (NOF Corp.): 2,3-비스(메틸폴리옥시에틸렌-옥시)-1-(1,5-디옥소-5-석신이미딜옥시, 펜틸옥시)프로판
Figure pat00039
2,3-비스 (메틸폴리옥시에틸렌-옥시)-1- (석신이미딜-카복시펜틸옥시)프로판
Figure pat00040
이들 프로판 유도체는 1,2 치환 패턴을 갖는 글리세롤 골격을 나타낸다. 본 발명에서는 또한, 1,3-치환된 글리세롤 구조, 또는 US2003/0143596A1에 기술된 그 밖의 다른 분지된 구조를 기반으로 하는 분지형 PEG 유도체가 고려된다.
또한, Tsubery 등 (J Biol Chem 2004; 279:38118-24); 및 Shechter 등 ( WO04089280A3])에 의해 기술된 바와 같은 분해성 (예를 들어, 가수 분해성) 링커를 갖는 PEG 유도체가 고려된다.
놀랍게도, 본 발명의 상기 페길화된 치료 단백질은 생체내에서의 연장된 반감기와 함께 기능적 활성을 나타낸다. 또한, 상기 페길화된 rFⅧ, FⅦa, FIX, 또는 그 밖의 다른 치료 인자는 트롬빈 불활성화에 대해서 보다 강한 저항성을 나타낸다.
C. 하이드록시알킬 전분 (HAS) 및 하이드록실에틸 전분 (HES)
본 발명의 다양한 구현예에서, 치료 단백질 분자는 하이드록시알킬 전분 (HAS) 또는 하이드록실에틸 전분 (HES) 또는 그의 유도체들을 사용하여 화학적으로 변형된다.
HES는 천연 생성 아밀로펙틴의 유도체이고 몸체에서 알파-아밀라아제에 의해 분해된다. HES는 최대 95 중량 %의 농도에서 옥수수 전분에서 존재하는 탄수화물 폴리머 아밀로펙틴의 치환된 유도체이다. HES는 유익한 생물학적 특성을 나타내고 혈액량 교체 제제로서 임상에서 혈액희석 요법으로 사용된다(Sommermeyer et al, 1987, Krankenhauspharmazie, 8 (8), 271-278; 및 Weidler et al, 1991, Arzneim.-Forschung/Drug Res. g 419 494-498).
아밀로펙틴은 글루코오스 모이어티들로 이루어지고, 여기서 상기 주요 사슬 알파-1,4- 글리코사이드 결합이 존재하고 분지 부위에서 알파-1, 6-글리코사이드 결합이 발견된다. 이 분자의 물리-화학 특성은 글리코사이드 결합의 유형에 의해 주로 결정된다. 틈이 있는 알파-1,4-글리코사이드 결합으로 인해, 약 6개의 글루코오스-모노머/회전을 갖는 나선형 구조가 생성된다. 폴리머의 물리-화학 뿐만 아니라 생화학 특성은 치환을 통해 변형될 수 있다. 하이드록시에틸 그룹의 도입은 알칼린 하이드록시에틸화에 의해 달성될 수 있다. 반응 조건을 채택하여 하이드록시에틸화에 대해 치환되지 않은 글루코오스 모노머에서 각각의 하이드록시 그룹의 상이한 반응성을 이용할 수 있다. 이러한 사실 때문에, 당업자는 치환 패턴에 제한적으로 영향을 미칠 수 있다.
HAS는 적어도 하나 하이드록시알킬 그룹에 의해 치환된 전분 유도체를 의미한다. 따라서, 용어 하이드록시알킬 전분은 말단 탄수화물 모이어티가 하이드록시알킬 그룹 R1, R2, 및/또는 R3을 포함하는 화합물들로 한정되지 않지만, 말단 탄수화물 모이어티에서 및/또는 전분 분자의 나머지 일부, HAS'에서 어디에도 존재하는 적어도 하나 하이드록시 그룹이, 하이드록시알킬 그룹 Rl, R2, 또는 R3에 의해 치환되는 화합물을 의미한다.
Figure pat00041
알킬 그룹은 적당하게 치환될 수 있는 선형 또는 분지형 알킬 그룹일 수 있다. 바람직하게는, 하이드록시알킬 그룹은 1 내지 10개의 탄소 원자, 더 바람직하게는 1 내지 6개의 탄소 원자, 더 바람직하게는 1 내지 4개의 탄소 원자, 및 더욱 더 바람직하게는 2-4 탄소 원자들를 함유한다. 따라서 "하이드록시알킬 전분"는 바람직하게는 하이드록시에틸 전분, 하이드록시프로필 전분 및 하이드록시부틸 전분을 포함하고, 여기서 하이드록시에틸 전분 및 하이드록시프로필 전분이 특히 바람직하다.
2개 이상 상이한 하이드록시알킬 그룹을 포함하는 하이드록시알킬 전분이 또한 본 발명에서 포함된다. HAS에서 포함된 적어도 하나 하이드록시알킬 그룹은 2개 이상 하이드록시 그룹을 함유할 수 있다. 일 구현예에 따라, 적어도 하나 하이드록시알킬 그룹 포함 HAS는 하나의 하이드록시 그룹을 함유한다.
용어 HAS는 또한, 유도체들을 포함하고 여기서 상기 알킬 그룹은 단일- 또는 다치환된다. 일 구현예에서, 알킬 그룹은 할로겐, 특히 불소, 또는 아릴 그룹으로 치환되고, 단, HAS은 물에서 가용성인 채로 있다. 또한, 하이드록시알킬 그룹의 말단 하이드록시 그룹은 에스테르화 또는 에테르화될 수 있다. HAS 유도체들 WO/2004/024776에 기재되어 있고, 이는 그 전체가 참고로 본원에 통합되어 있다.
D. 부착 방법
치료 단백질은 당해 기술분야에서 숙련된 기술자에게 공지된 임의의 다양한 기술에 의해 폴리사카라이드 화합물에 공유적으로 연결될 수 있다. 본 발명의 다양한 관점에서, 시알산 부위는 예를 들어, 본 발명에 참조로서 통합된 미국 특허 제4,356,170호에 기술된 방법에 의해서 치료 단백질, 예를 들어, FIX, FⅧ, FⅦa 또는 VWF에 결합된다.
폴리펩티드에 PSA를 커플링시키는 다른 기술 또한 공지되어 있으며, 본 발명에 의해서 고려된다. 예를 들어, 미국 공개 제2007/0282096호는 예를 들어, PSA의 아민 또는 히드라지드 유도체를 단백질에 콘주게이션시키는 것을 기술하고 있다. 또한, 미국 공개 제2007/0191597호는 환원성 말단에서 기질 (예를 들어, 단백질)과 반응하기 위한 알데히드기를 함유하는 PSA 유도체를 기술하고 있다. 이들 문헌 전체는 참조로서 통합되어 있다.
다양한 방법은 미국 특허 제5,846,951호 (이것은 전체가 참조로서 통합되어있다)의 7 칼럼, 15 행 내지 8 칼럼, 5 행에 기술되어 있다. 예시적인 기술에는 치료 단백질 또는 폴리사카라이드 중 어느 하나의 카복실기와 치료 단백질 또는 폴리사카라이드의 아민기 사이의 펩티드 결합을 통한 결합, 또는 치료 단백질 또는 폴리사카라이드의 카복실기와 치료 단백질 또는 폴리사카라이드의 히드록실기 사이의 에스테르 결합이 포함된다. 상기 치료 단백질을 폴리사카라이드 화합물에 공유적으로 결합시키는 또 다른 결합은 과요오드산염 산화반응에 의해서 상기 폴리사카라이드의 비-환원성 말단에서 형성된 알데히드기와 반응하는 치료 단백질 상의 유리 아미노기 사이에서 시프 염기 (Schiff base)를 통하는 것이다 (Jennings HJ 및 Lugowski C, J Immunol. 1981;127:1011-8; Fernandes AI 및 Gregoriadis G, Biochim Biophys Acta. 1997;1341;26-34). 일 관점에서, 상기 생성된 시프 염기는 NaCNBH3에 의한 특이적 환원으로 2차 아민을 형성시킴으로써 안정화된다. 대안적인 접근 방법에는, 선행 산화 반응 후에 NH4Cl로 환원적 아미노화시킴으로써 상기 PSA 내의 말단 유리 아미노기를 생성시키는 것이 있다. 이작용기성 (bifunctional) 시약은 2 개의 아미노기 또는 2 개의 히드록실기를 연결시키기 위해서 사용될 수 있다. 예를 들어, 아미노기를 함유하는 PSA를 BS3 (비스(설포석신이미딜)수베레이트 / Pierce, Rockford, IL)와 같은 시약으로 단백질의 아미노기에 커플링시킨다. 또한, 예를 들어, 아민과 티올기를 연결시키기 위해서 설포-EMCS(N-ε-말레이미도카프로일록시) 설포석신이미드 에스테르/Pierce)와 같은 헤테로-이작용기성성 교차 결합 시약 사용된다.
또 다른 접근방법에서는, PSA 히드라지드를 제조하고, 선행 산화반응 및 알데히드 기능의 생성 후에 이를 상기 단백질의 탄수화물 부위에 커플링시킨다.
상술한 바와 같이, 상기 치료학적 단백질의 유리 아민기가 상기 시알산 잔기의 1-카복실기와 반응하여 펩티드 결합을 형성하거나, 1-카복실산 기와 치료 단백질 상의 히드록실기 또는 다른 적합한 활성 작용기 사이에서 에스테르 결합이 형성된다. 대안적으로, 카복실기는 탈아세틸화된 5-아미노기와 펩티드 결합을 형성하거나, 치료 단백질의 분자의 알데히드기는 시알산 잔기의 N-탈아세틸화된 5-아미노 그룹과 시프 염기를 형성한다.
대안적으로, 폴리사카라이드 화합물은 비-공유적 방식으로 치료 단백질과 회합된다. 예를 들어, 일 관점에서 상기 폴리사카라이드 화합물과 약제학적 활성 화합물은 소수성 상호작용을 통해서 결합된다. 그 밖의 다른 비-공유적 회합에는 반대로 하전되어 서로 끌어당기는 이온에 의한 정전기적 상호작용이 포함된다.
다양한 구현예에서, 상기 치료 단백질은 상기 폴리사카라이드 화합물에 화학량론적 양 (예를 들어, 1:1, 1:2, 1:3, 1:4, 1:5, 1:6, 1:7, 1:7, 1:8, 1:9, 또는 1:10 등)으로 결합되거나 회합된다. 다양한 구현예에서, 1 내지 6, 7 내지 12 또는 13 내지 20 개의 폴리사카라이드가 상기 치료 단백질에 결합된다. 또 다른 구현예에서는 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20 개 또는 그 이상의 폴리사카라이드가 상기 치료 단백질에 결합된다.
다양한 구현예에서, 상기 치료 단백질은 글리코실화 부위 (즉, 천연 글리코실화 부위가 아닌 다른 부위)를 도입시키도록 변형된다. 이러한 변형은 당해 기술분야에서 공지된 표준 분자 생물학적 기술을 사용하여 수행될 수 있다. 더욱이, 치료 단백질은 1개 이상의 탄수화물 부위를 통해서 수용성 폴리머에 콘주게이션되기 전에 생체 내 또는 생체 외에서 글리코실화될 수 있다. 상기 글리코실화된 부위는 수용성 폴리머와 단백질의 콘주게이션을 위한 표적으로 작용할 수 있다 (미국 특허출원 제20090028822호, 미국 특허출원 제2009/0093399호, 미국 특허출원 제2009/0081188호, 미국 특허출원 제2007/0254836호, 미국 특허출원 제2006/0111279호, 및 DeFrees S. 등, Glycobiology, 2006, 16, 9, 833-43). 예를 들면, 생체 내에서 자연적으로 글리코실화되지 않는 단백질 (예들 들면, 당단백질이 아닌 단백질)이 본원에서 기재된 바와 같이 변형될 수 있다.
E. 아미노옥시 결합
본 발명의 일 구현예에서, 옥심기를 형성시키기 위한 알데히드 (예를 들어, 과요오드산 나트륨에 의한 산화 반응에 따른 탄수화물 부위의)와 히드록실아민 또는 히드록실아민 유도체의 반응이 치료 단백질의 복합체의 제조에 적용된다. 예를 들어, 첫째로, 당단백질 (예를 들어, 본 발명에 따르는 치료 단백질)을 과요오드산 나트륨 (NaIO4)과 같은 산화제로 산화시킨다 (Rothfus JA et Smith EL., J Biol Chem 1963, 238, 1402-10; 및 Van Lenten L 및 Ashwell G., J Biol Chem 1971, 246, 1889-94). 상기 당단백질의 과요오드산염 산화 반응은 활성 알데히드기를 형성시키기 위한 과요오드산염에 의한 인접한 디올의 산화 반응으로서 1928년에 기술된 고전적인 말라프레이드 (Malaprade) 반응을 기반으로 한다 (Malaprade L., Analytical application, Bull Soc Chim 프랑스, 1928, 43, 683-96). 이러한 산화제에 대한 추가적인 예로는, 테트라 아세트산 납 (Pb(OAc)4), 아세트산 망간 (MnO(Ac)3), 아세테이트산 코발트 (Co(OAc)2), 아세트산 탈륨 (TlOAc), 황산 세륨 (Ce(SO4)2) (US 4,367,309), 또는 과루테늄산 칼륨 (KRuO4) (Marko 등, J Am Chem Soc 1997,119, 12661-2)이다. "산화제"는 탄수화물 내의 인접한 디올을 산화시킬 수 있는 약한 산화성 화합물로, 이에 의해 생리학적 반응조건 하에서 활성 알데히드기를 생성시킬 수 있는 것을 의미한다.
두 번째 단계는, 아미노옥시기를 함유하는 폴리머를 상기 산화된 탄수화물 부위에 커플링시켜 옥심 결합을 형성시키는 것이다. 본 발명의 일 구현예에서, 상기 단계는 촉매량의 친핵성 촉매인 아닐린 또는 아닐린 유도체의 존재 하에서 수행될 수 있다 (Dirksen A et Dawson PE, Bioconjugate Chem. 2008; Zeng Y 등, Nature Methods 2009;6:207-9). 상기 아닐린 촉매작용은 상기 옥심 라이게이션을 극적으로 촉진시켜 매우 저농도의 시약을 사용하는 것이 가능하게 한다. 본 발명의 또 다른 구현예에서, 상기 옥심 결합은 알콕시아민 결합을 형성하도록 NaCNBH3로 환원시시킴으로써 안정화된다 (도 2). 추가의 촉매는 하기에 기재되어 있다.
아미노옥시 기술에 대한 추가적인 정보는 각각 전체로서 통합된 하기의 참고문헌에서 찾을 수 있다: EP 1681303A1 (HASylated erythropoietin); WO 2005/014024 (conjugates of a polymer and a protein linked by an oxime linking group); WO96/40662 (aminooxy-containing linker compounds and their application in conjugates); WO 2008/025856 (Modified proteins); Peri F 등, Tetrahedron 1998, 54, 12269-78; Kubler-Kielb J et. Pozsgay V., J Org Chem 2005, 70, 6887-90; Lees A 등, Vaccine 2006, 24 (6), 716-29; 및 Heredia KL 등, Macromoecules 2007, 40 (14), 4772-9.
본 발명의 다양한 구현예에서, 본원 명세서에 기술된 아미노옥시 기술에 따라 치료 단백질 (예를 들어, FⅧ, FⅦa, 또는 FIX)의 산화된 탄수화물 부위에 결합되는 수용성 폴리머에는, 폴리에틸렌 글리콜 (PEG), 분지형 PEG, 폴리시알산 (PSA), 탄수화물, 폴리사카라이드, 풀루란, 키토산, 히알루론산, 황산 콘드로이틴, 황산 더마탄, 녹말, 덱스트란, 카복시메틸-덱스트란, 폴리알킬렌 옥시드 (PAO), 폴리알킬렌 글리콜 (PAG), 폴리프로필렌 글리콜 (PPG), 폴리옥사졸린, 폴리아크릴로일모폴린, 폴리비닐 알코올 (PVA), 폴리카복실레이트, 폴리비닐피롤리돈, 폴리포스파젠, 폴리옥사졸린, 폴리에틸렌-말레인산 무수물 공중합체, 폴리스테렌-말레인산 무수물 공중합체, 폴리 (1-히드록시메틸에틸렌 히드록시메틸포름알) (PHF), 2-메타크릴로일록시-2'-에틸트리메틸암모늄포스페이트 (MPC)가 포함되나, 이들로 제한되지 않는다.
친핵성 촉매
본원에 기재된 바와 같이, 수용성 폴리머의 치료 단백질에의 콘주게이션은 아닐린에 의해 촉진될 수 있다. 아닐린은 안정한 아민 예컨대 하이드라존 및 옥심을 형성하기 위해 알데하이드 및 케톤과 아민과의 수성 반응을 강하게 촉진한다. 하기 도식은 비촉매형 대 아닐린-촉매형 옥심 리게이션 반응을 포함한다 (Kohler JJ, ChemBioChem 2009;10:2147-50):
Figure pat00042
그러나, 아닐린과 연관된 수많은 건강 위험을 고려하면, 대안적인 촉매가 바람직하다. 본 발명은 대안적인 옥심 리게이션 촉매로서 아닐린 유도체를 제공한다. 그와 같은 아닐린 유도체들은, 비제한적으로, o-아미노 벤조산, m-아미노 벤조산, p-아미노 벤조산, 설파닐산, o-아미노벤즈아마이드, o-톨루이딘, m-톨루이딘, p-톨루이딘, o-아니시딘, m-아니시딘, 및 p-아니시딘을 포함한다.
본 발명의 일 구현예에서, m-톨루이딘 (아카 메타-톨루이딘, m-메틸아닐린, 3-메틸아닐린, 또는 3-아미노-1-메틸벤젠)은 본원에 기재된 콘주게이션 반응을 촉진하기 위해 사용된다. M-톨루이딘 및 아닐린은 유사한 물리적 특성 및 본질적으로 동일한 pKa 값을 갖는다 (m-톨루이딘: pKa 4.73, 아닐린: pKa 4.63).
본 발명의 친핵성 촉매는 옥심 리게이션 (예를 들면, 아미노옥시 결합 사용) 또는 하이드라존 형성 (예들 들면, 하이드라자이드 화학 사용)에 대해 유용하다. 본 발명의 다양한 구현예에서, 친핵성 촉매는 0.1, 0.2, 0.3, 0.5, 0.5, 0.6, 0.7, 0.8, 0.9, 1.0, 1.5, 2.0, 2.5, 3.0, 3.5, 4.0, 4.5, 5.0, 5.5, 6.0, 6.5, 7.0, 7.5, 8.0, 8.5, 9.0, 9.5, 10.0, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 25, 30, 35, 40, 45, 또는 50 mM의 농도로 콘주게이션 반응에서 제공된다. 일 구현예에서, 친핵성 촉매는 1 내지 10 mM로 제공된다. 본 발명의 다양한 구현예에서, 콘주게이션 반응의 pH 범위는 4.5, 5.0, 5.5, 6.0, 6.5, 7.0 및 7.5이다. 일 구현예에서, pH는 5.5 내지 6.5이다.
복합 단백질의 정제
다양한 구현예들에서, 산화제 및/또는 본원에 개시된 수용성 폴리머와 콘주게이트된 치료 단백질과 함께 인큐베이트된 단백질의 정제가 바람직하다. 수많은 정제 기술은 당해분야에 공지되어 있고, 비제한적으로, 크로마토그래피 방법들 예컨대 이온교환 크로마토그래피, 소수성 상호작용 크로마토그래피, 크기 배제 크로마토그래피 및 친화성 크로마토그래피 또는 이들의 조합, 여과 방법들, 및 침전 방법들을 포함한다 (Guide to Protein Purification, Meth. Enzymology Vol 463 (Burgess RR 및 Deutscher MP에 의해 편집), 2nd edition, Academic Press 2009).
이하의 실시예는 본 발명을 제한하는 것으로 의도된 것이 아니며, 단지 본 발명의 특정한 구현예를 예시하고자 하는 것이다.
실시예
실시예 1
동종이작용기성 링커 NH 2 [OCH 2 CH 2 ] 2 ONH 2 의 제조
하기 화학식의 동종이작용기성 링커 NH2[OCH2CH2]2ONH2
Figure pat00043
2 개의 활성 아미노옥시기를 함유하는 3-옥사-펜탄-1,5-디옥시아민을, Boturyn 등 (Tetrahedron 1997;53:5485-92)에 따라 1차 아민의 변형된 가브리엘-합성 (modified Gabriel-Synthesis)을 이용하는 2 단계의 유기 반응을 통해 합성하였다 (도 3). 첫 번째 단계에서, 2,2-클로로디에틸에테르 한 분자를 디메틸포름아미드 (DMF) 중 엔도-N-히드록시-5-노보넨-2,3-디카복시미드 두 분자와 반응시켰다. 상기 목적하는 동종이작용기성 산물은, 상기 반응 결과 생성된 중간체로부터 에탄올에서의 히드라진 분해 (hydrazinolysis)에 의하여 제조되었다.
실시예 2
동종이작용기성 링커 NH 2 [OCH 2 CH 2 ] 4 ONH 2 의 제조
하기 화학식의 동종이작용기성 링커 NH2[OCH2CH2]4ONH2
Figure pat00044
2 개의 활성 아미노옥시기를 함유하는 3,6,9-트리옥사-운데칸-1,11-디옥시아민을, Boturyn 등 (Tetrahedron 1997;53:5485-92)에 따라 1차 아민의 변형된 가브리엘-합성을 이용하는 2 단계 유기 반응을 통해 합성하였다 (도 3). 첫 번째 단계에서, 비스-(2-(2-클로로에톡시)-에틸)-에테르 한 분자를 DMF 중 엔도-N-히드록시-5-노보넨-2,3-디카복시미드 두 분자와 반응시켰다. 상기 목적하는 동종이작용기성 산물은, 상기 반응 결과 생성된 중간체로부터 에탄올에서의 히드라진 분해에 의하여 제조되었다.
실시예 3
동종이작용기성 링커 NH 2 [OCH 2 CH 2 ] 6 ONH 2 의 제조
동종이작용기성 링커 NH2[OCH2CH2]6ONH2
Figure pat00045
2 개의 활성 아미노옥시기를 함유하는 3,6,9,12,15-펜타톡사-헵타데칸-1,17-디옥시아민은 Boturyn 등 (Tetrahedron 1997;53:5485-92)에 따라 1차 아민의 변형된 가브리엘-합성을 이용하는 2 단계의 유기 반응을 통해 합성하였다. 상기 첫 번째 단계에서, 헥사에틸렌 글리콜 디클로라이드 한 분자를 DMF 중 엔도-N-히드록시-5-노보넨-2,3-디카복시미드 두 분자와 반응시켰다. 상기 목적하는 동종이작용기성 산물은, 상기 반응 결과 만들어진 중간체로부터 에탄올에서의 히드라진 분해에 의하여 제조되었다.
실시예 4
상기 아미노옥시 -PSA 시약의 상세한 합성
Botyryn 등 (Tetrahedron 1997; 53:5485-92)에 따라, 실시예 1에서 언급된 두 단계의 유기 합성을 통하여 3-옥사-펜탄-1,5-디옥시아민을 합성하였다.
단계 1:
700 ml 무수 N,N-디메틸포름아미드 중 엔도-N-히드록시-5-노보넨-2,3-디카복시이미드 (59.0 g; 1.00 eq) 용액에, 무수 K2CO3 (45.51 g; 1.00 eq) 및 2,2-디클로로디에틸에테르 (15.84 ml; 0.41 eq)를 첨가하였다. 상기 반응 혼합물을 50℃에서 22시간 동안 교반하였다. 상기 혼합물을 감압하에서 건조물이 되도록 증발시켰다. 그 잔여물을 2L의 디클로로메탄에 현탁하고 NaCl 포화 수용액 (각 1L)으로 2회 추출하였다. 상기 디클로로메탄층을 Na2SO4로 건조시킨 다음, 감압하에서 건조물이 되도록 증발시키고 고진공 상태에서 건조시켜 64.5 g의 3-옥사펜탄-1,5-디옥시-엔도-2',3'-디카복시디이미드노보넨을 담황색 고체로서 얻었다 (중간체 1).
단계 2:
800 ml 무수 에탄올 중 중간체 1 수용액 (64.25 g; 1.00 eq)에, 31.0 ml 히드라진 수화물 (4.26 eq)을 첨가하였다. 그 다음, 상기 반응 혼합물을 2시간 동안 환류시켰다. 감압하에서 상기 용매를 증발시켜, 상기 혼합물을 처음 부피의 절반이 되도록 농축하였다. 상기 발생된 침전물을 여과하였다. 상기 잔여 에탄올층이 건조되도록 감압하에서 증발시켰다. 조 산물인 3-옥사-펜탄-1,5-디옥시아민을 함유하는 잔류물을 진공 상태에서 건조하여 46.3 g을 수득하였다. 상기 조 산물을 칼럼 크로마토그래피 (실리카겔 60; 9/1, 디클로로메탄/메탄올 혼합물을 이용한 등용매 용리)에 의해 추가 정제하여, 11.7 g의 순수한 최종 산물인 3-옥사-펜탄-1,5-디옥시아민을 얻었다.
실시예 5
아미노옥시 -PSA의 제조
Serum Institute of India (Pune, India)로부터 얻은 1000 mg의 산화된 PSA (MW = 20 kD)을 16 ml 50 mM 포스페이트 완충액 pH 6.0에서 용해시켰다. 그 다음 170 mg 3-옥사-펜탄-1,5-디옥시아민을 반응 혼합물에 제공했다. 2시간 동안 실온에서 진탕한 후 78.5 mg 나트륨 시아노보로하이드라이드를 첨가하고 반응을 18시간 동안 밤새 수행했다. 그 다음 반응 혼합물에 대해 재생된 셀롤로오스로 만들어진 5 kD 분획을 갖는 막 (50　cm2, 밀리포어)을 사용하여 한외여과/정용여과 절차 (UF/DF)를 수행했다.
실시예 6
크로마트그래피 정제 단계를 이용하는 아미노옥시 -PSA의 제조
Serum Institute of India (Pune, India)로부터 얻은 1290 mg의 산화된 PSA (MW = 20 kD)을 25 ml 50 mM 포스페이트 완충액 pH 6.0 (완충액 A)에서 용해시켰다. 그 다음 209 mg 3-옥사-펜탄-1,5-디옥시아민을 반응 혼합물에 제공했다. 1시간 동안 실온에서 진탕한 후 101 mg 나트륨 시아노보로하이드라이드를 첨가하고 반응을 3시간 동안 수행했다. 그 다음 혼합물에 대해 Fractogel EMD DEAE 650-M 크로마토그래피 겔 (칼럼 치수: XK26/135)을 이용하는 약한 음이온 교환 크로마토그래피 단계를 수행했다. 반응 혼합물을 110 ml 완충액 A로 희석하고 완충액 A로 미리 평형을 이룬 DEAE 칼럼 상 1 cm/min의 유속으로 로딩했다. 그 다음 칼럼을 20 CV 완충액 B (20 mM Hepes, pH 6.0)으로 세정하여 유리 3-옥사-펜탄-1,5-디옥시아민 및 시아나이드를 2 cm/min의 유속으로 제거했다. 그 다음 아미노옥시-PSA 시약을 67% 완충액 B 및 43% 완충액 C (20 mM Hepes, 1M NaCl, pH 7.5)로 이루어진 단계 구배로 용출했다. 용출물을, 폴리에테르 설폰으로 만들어진 5 kD 막, (50 cm2, 밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 완충액 D (20mM Hepes, 90mM NaCl, pH 7.4) 에 대항하여 수행했다. 제제를, 총 PSA (레조르시놀 검정) 및 총 아미노옥시 그룹 (TNBS 검정)을 측정하여 분석적으로 특성화하여 변형도를 측정했다. 또한 다분산성 뿐만 아니라 유리 3-옥사-펜탄-1,5-디옥시아민 및 시아나이드를 측정했다.
실시예 7
환원 단계 없는 아미노옥시 -PSA의 제조의 제조
Serum Institute of India (Pune, India)로부터 얻은 573 mg의 산화된 PSA (MW = 20 kD)을 11,3 ml 50mM 포스페이트 완충액 pH 6.0 (완충액 A)에서 용해시켰다. 그 다음 94 mg 3-옥사-펜탄-1,5-디옥시아민을 반응 혼합물에 제공했다. 5시간 동안 실온에서 진탕한 후 그 다음 혼합물에 대해 Fractogel EMD DEAE 650-M 크로마토그래피 겔 (칼럼 치수: XK16/105)을 이용하는 약한 음이온 교환 크로마토그래피 단계를 수행했다. 반응 혼합물을 50 ml 완충액 A로 희석하고 완충액 A로 미리 평형을 이룬 DEAE 칼럼 상 1 cm/min의 유속으로 로딩했다. 그 다음 칼럼을 20　CV 완충액 B (20 mM Hepes, pH 6.0)로 세정하여 유리 3-옥사-펜탄-1,5-디옥시아민 및 시아나이드를 2 cm/min의 유속으로 제거했다. 아미노옥시-PSA 시약을 67 % 완충액 B 및 43 % 완충액 C (20 mM Hepes, 1　M NaCl, pH 7.5)로 이루어진 단계 구배로 용출했다. 용출물을, 폴리에테르 설폰으로 만들어진 5 kD 막, (50 cm2, 밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 완충액 D (20 mM Hepes, 90 mM NaCl, pH 7.4) 에 대항하여 수행했다. 제제를, 총 PSA (레조르시놀 검정) 및 총 아미노옥시 그룹 (TNBS 검정)을 측정하여 분석적으로 특성화하여 변형도를 측정했다. 또한 다분산성 뿐만 아니라 유리 3-옥사-펜탄-1,5-디옥시아민를 측정했다.
실시예 8
친핵성 촉매 m-톨루이딘의 존재에서 환원 단계 없는 아미노옥시 -PSA의 제조
Serum Institute of India (Pune, India)로부터 얻은 573 mg의 산화된 PSA (MW = 20 kD)을 9 ml 50 mM 포스페이트 완충액 pH 6.0 (완충액 A)에서 용해시킨다. 그 다음 94 mg 3-옥사-펜탄-1,5-디옥시아민을 이 용액에 제공한다. 순차적으로 2.3 ml의 50 mM m-톨루이딘 모액을 이 반응 혼합물에 첨가한다. 2시간 동안 실온에서 진탕한 후 그 다음 혼합물에 대해 Fractogel EMD DEAE 650-M 크로마토그래피 겔 (칼럼 치수: XK16/105)을 이용하는 약한 음이온 교환 크로마토그래피 단계를 수행했다. 반응 혼합물을 50 ml 완충액 A로 희석하고 완충액 A로 미리 평형을 이룬 DEAE 칼럼 상 1 cm/min의 유속으로 로딩했다. 그 다음 칼럼을 20CV 완충액 B (20 mM Hepes, pH 6.0)로 세정하여 유리 3-옥사-펜탄-1,5-디옥시아민 및 시아나이드를 2 cm/min의 유속으로 제거했다. 아미노옥시-PSA 시약을 67 % 완충액 B 및 43 % 완충액 C (20 mM Hepes, 1 M NaCl, pH 7.5)로 이루어진 단계 구배로 용출했다. 용출물을 폴리에테르 설폰으로 만들어진 5 kD 막, (50　cm2, 밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 에 against 완충액 D (20mM Hepes, 90mM NaCl, pH 7.4) 대항하여 수행했다. 제제를, 총 PSA (레조르시놀 검정) 및 총 아미노옥시 그룹 (TNBS 검정)을 측정하여 분석적으로 특성화하여 변형도를 측정했다. 또한 다분산성 뿐만 아니라 유리 3-옥사-펜탄-1,5-디옥시아민을 측정했다.
실시예 9
아미노옥시 -PSA 시약의 제조
아미노옥시 - PSA 시약을 실시예 4 - 8에 따라 제조했다. 정용여과 후, 생성물을 -80 ℃에서 동결하고 동결건조시켰다. 동결건조 후 시약을 적절한 용적의 물에서 용해시키고 탄수화물 변형을 통해 PSA-단백질 콘주케이트의 제조를 위해 사용했다.
실시예 10
상이한 대안적인 친핵성 촉매의 효능의 평가
Rfix를, 상이한 친핵성 촉매 (아닐린, m-톨루이딘, o-아니시딘, m-아니시딘, o-아미노벤조산, m-아미노벤조산, p-아미노벤조산, p-아미노벤즈아마이드, 설파닐산/표준 농도: 10 mM)를 사용하는 표준화된 조건 (20 mM L-히스티딘 중 1 mg/ml rFIX, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2, pH 6.0, 5-배 몰 아미노옥시-PSA 시약 과잉, 100 μM NaIO4) 하에서 나트륨 페리오데이트, 아미노옥시-PSA 시약과 함께 인큐베이트했다. 반응을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 수행하고 1 mM의 최종 농도를 갖는 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
커플링 효율을, Invitrogen X-세포 미니 시스템을 사용하는 SDS-PAGE로 측정했다. 샘플에 리튬 도데실 설페이트 (LDS) 완충액을 넣고 10분 동안 70 ℃에서 변성시켰다. 그 다음 샘플들을 3-8 % TRIS-아세테이트 겔 상에 적용하고 150 V에서 60분 동안 수행했다. 순차적으로 겔을 Coomassie으로 염색했다.
또한 샘플들을, Shodex KW 803 칼럼이 구비된 Agilent 1200 HPLC 시스템을 사용하는 SEC-HPLC 시스템의 사용으로 앞서 기재된 조건 하에서 특성화했다 (Kolarich et al, Transfusion 2006;46:1959-77).
50 μl의 샘플들을 미희석 상태로 주입하고 등용매적으로 20 mM NaH2PO4, 50 mM Na2SO4(pH 6.1)의 0.22 μm 여과된 용액으로, 0.5 ml/min의 유속에서 용출했다. 용출 패턴을 280 nm에서 기록했다.
결과는 도 5a-c 및 6 (SDS PAGE) 및 표 2 (SEC- HPLC 결과)에 요약되어 있다. 상이한 제제의 촉매 효과가 설명된다. m-톨루이딘의 사용으로 아닐린으로 얻은 것과 동등한 결과를 얻는다는 것을 보여준다.
표 2
Figure pat00046
실시예 11
아미노옥시 -PSA 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 rFIX의 폴리시알릴화
방법 1:
12.3 mg rFIX를 6.1 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20 mM L-히스티딘, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2)에서 용해시켰다. 그 다음 254 μl의 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 6.5 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 Vivaspin 15R 10 kD 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 순차적으로 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
산화된 rFIX를 함유하는 체류물 (8.8 ml)을 2.46 ml의 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음 20 kD의 MW을 갖는 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
유리 rFIX를 음이온 교환 크로마토그래피 (AEC)로 제거했다. 반응 혼합물을 15 ml 완충액 A (50 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.5)으로 희석하고 완충액 A로 평형을 이룬 20 ml HiPrep QFF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 로딩했다. 그 다음 칼럼을 완충액 B (50 mM Hepes, 1 M NaCl, 5 mM CaCl2, pH 7.5)로 용출했다. 유리 rFIX는 12-25 mS/cm의 전도도에서 용출하고 27-45 mS/cm에서 콘주게이트했다. 콘주게이트 함유 분획의 전도도는 순차적으로 완충액 C (50 mM Hepes, 5M NaCl, 5 mM CaCl2, pH 6.9)와 함께190 mS/cm로 상승되었고 완충액 D (50 mM Hepes, 3 M NaCl, 5 mM CaCl2, pH 6.9)로 미리 평형을 이룬 20 ml HiPrep 부틸 FF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 로딩되었다. 유리 아미노옥시-PSA 시약을 5 CV 완충액 D로 세정했다. 순차적으로 콘주게이트를 100 % 완충액 E (50 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.4)로 용출했다. 콘주게이트 함유 분획을 Vivaspin 15R 10 kD 원심 여과기를 사용하는 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 150 mM NaCl 및 5 mM CaCl2를 함유하는 히스티딘 완충액(pH　7.2)에 대항하여 수행했다. 제제를, 총 단백질 (Bradford) 및 FIX 발색 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다. PSA-rFIX 콘주게이트 천연 rFIX와 비교한 > 50%의 비활성기 측정된다는 것을 보여주었다.
방법 2:
12.3 mg rFIX을 L-히스티딘 완충액(pH 6.0) (20 mM L-히스티딘, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2)에서 용해시켜 1 mg rFIX/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 5 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 첨가하여 100 μM의 최종 농도를 얻고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 pH 6.0에서 인큐베이트하고 1 M 수성 L-시스테인 용액 (또는 다른 켄칭 시약)의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 혼합물에 대해 Vivaspin 15R 10 kD 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 순차적으로 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
산화된 rFIX을 함유하는 얻은 체류물 (8.8 ml)을 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하여 10 mM의 최종 농도를 얻고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음 20 kD의 MW을 갖는 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 pH 6.0에서 2.5 시간 동안 실온에서; 0.5 시간 내지 18 시간 +4 ℃에서) 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
유리 rFIX를 음이온 교환 크로마토그래피 (AEC)로 제거했다. 반응 혼합물을 적절한 양의 완충액 A (50 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.5)로 희석하여, 용액 전도도 및 pH를 보정한 후 20 ml HiPrep QFF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 로딩했다 완충액 A로 평형을 이룬. 그 다음 칼럼을 완충액 B (50 mM Hepes, 1 M NaCl, 5 mM CaCl2, pH 7.5)로 용출했다. 유리 rFIX를 완충액 B의 25 %를 사용하는 단계 구배로 용출하고, 이로써 얻은 분획에서 12-25 mS/cm의 전도도로를 얻고 50 % 완충액 B의 단계 구배를 사용하여 콘주게이트 하고, 이로써 콘주게이트 분획 27-45 mS/cm의 전도도를 얻는다. 콘주게이트 함유 분획의 전도도는 순차적으로 완충액 C (50 mM Hepes, 5 M NaCl, 5 mM CaCl2, pH 6.9 또는 안티-케이오성 염 예들 들면 암모늄 설페이트, 암모늄 아세테이트 등의 사용에 의해)와 함께190 mS/cm로 상승되고 완충액 D (50 mM Hepes, 3 M NaCl, 5 mM CaCl2, pH 6.9)로 미리 평형을 이룬 20 ml HiPrep 부틸 FF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT 또는 비교가능 HIC 배지) 상에 로딩되었다. 유리 아미노옥시-PSA 시약을 5 CV 완충액 D로 세정했다. 순차적으로, 콘주게이트를 100 % 완충액 E (50 mM Hepes, 5　mM CaCl2, pH 7.4)로 용출했다. 콘주게이트 함유 분획들을, 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD, 밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 150 mM NaCl 및 5 mM CaCl2를 함유하는 L-히스티딘 완충액 (pH 7.2) 에 대항하여 수행했다. 제제를, 총 단백질 (Bradford 및 BCA 절차) 및 FIX 발색- 및 응고 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다. PSA-rFIX 콘주게이트에 대해 천연 rFIX와 비교한 > 50 %의 비활성을 측정했다.
방법 3:
25.4 mg rFIX를 18.7 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20 mM L-히스티딘, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2)에서 용해시켰다. 531 μl의 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM) 및 5.07 ml의 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 then 첨가했다. 순차적으로, 20 kD의 MW을 갖는 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 25 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
유리 rFIX를 음이온 교환 크로마토그래피 (AEC)로 제거했다. 반응 혼합물을 20 ml 완충액 A (50 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.5)으로 상승되고 완충액 A로 평형을 이룬 20 ml HiPrep QFF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 로딩했다. 그 다음 칼럼을 완충액 B (50 mM Hepes, 1 M NaCl, 5 mM CaCl2, pH 7.5)로 용출했다. 유리 rFIX는 12-25 mS/cm의 전도도에서 용출되고 27-45 mS/cm에서 콘주게이트했다. 콘주게이트 함유 분획의 전도도는 순차적으로 완충액 C (50 mM Hepes, 5 M NaCl, 5 mM CaCl2, pH 6.9)와 함께 190 mS/cm로 상승되었고 완충액 D (50 mM Hepes, 3 M NaCl, 5 mM CaCl2, pH 6.9)으로 미리 평형을 이룬 20 ml HiPrep 부틸 FF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 로딩되었다. 유리 아미노옥시-PSA 시약을 5 CV 완충액 D로 세정했다. 순차적으로, 콘주게이트를 100 % 완충액 E (50 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.4)로 용출했다. 콘주게이트 함유 분획을 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD, 밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 150 mM NaCl 및 5 mM CaCl2를 함유하는 히스티딘 완충액 (pH 7.2) 에 대항하여 수행했다. 제제를, 총 단백질 (Bradford) 및 FIX 발색 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다. PSA-rFIX 콘주게이트에 대해 천연 rFIX와 비교한 > 50 %의 비활성을 측정했다. 콘주게이트를 앞서 기재된 조건 하에서 Shodex KW 803 칼럼이 구비된 Agilent 1200 HPLC 시스템을 사용하는 크기 배제 HPLC로 추가로 분석적으로 특성화했다 (Kolarich et al, Transfusion 2006;46:1959-77). 상기 제제는 유리 FIX를 함유하지 않았다는 것을 보여주었다. 콘주게이트는 57 % 모노-폴리시알릴화된 및 31 % 디-폴리시알릴화된 및 12 % 트리-폴리시알릴화된 생성물로 이루어졌다.
방법 4:
25.4 mg rFIX를 L-히스티딘 완충액(pH 6.0) (20 mM L-히스티딘, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2)에서 용해시켜 2 mg rFIX/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 순차적으로 5 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 15 분 내에 첨가하여 100 μM의 최종 농도를 얻고, 그 다음 50 mM 수성 m-톨루이딘 용액의 첨가로 10 mM의 최종 농도를 30 분의 지속시간 내에 얻었다. 그 다음 20 kD의 MW을 갖는 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. pH를 6.0으로 보정한 후 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 1 M 수성 L-시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다.
유리 rFIX를 이온 교환 크로마토그래피 (IEC)로 제거했다. 반응 혼합물을 적절한 양의 완충액 A (50 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.5)로 희석하여 용액 전도도 및 pH 값을 보정한 후 완충액 A로 평형을 이룬 20 ml HiPrep QFF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 로딩했다. 그 다음 칼럼을 완충액 B (50 mM Hepes, 1 M NaCl, 5 mM CaCl2, pH 7.5)로 용출했다. 유리 rFIX를 완충액 B의 25 %를 사용하는 단계 구배로 용출하고, 이로써 얻은 분획에서 12-25 mS/cm의 전도도를 얻고 50 % 완충액 B의 단계 구배를 사용하여 콘주게이트 하고, 이로써 콘주게이트 분획에서 27-45 mS/cm의 전도도를 얻었다. 콘주게이트 함유 분획의 전도도는 순차적으로 완충액 C (50 mM Hepes, 5 M NaCl, 5 mM CaCl2, pH 6.9; 안티-케이오성 염 예들 들면 암모늄 아세테이트의 사용에 의해)과 함께190 mS/cm로 상승되었고 완충액 D (50 mM Hepes, 3 M NaCl, 5 mM CaCl2, pH 6.9) 으로 미리 평형을 이룬 20 ml HiPrep 부틸 FF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT; 또는 비교가능 HIC 배지) 상에 로딩되었다. 유리 아미노옥시-PSA 시약을 5 CV 완충액 D로 세정했다. 순차적으로 콘주게이트를 100 % 완충액 E (50 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.4)으로 용출했다. 콘주게이트 함유 분획을 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD, 밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 L-150 mM NaCl 및 5 mM CaCl2를 함유하는 히스티딘 완충액 (pH 7.2) 에 대항하여 수행했다. 제제를, 총 단백질 (Bradford 및 BCA 절차) 및 FIX 발색- 및 응고 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다. PSA-rFIX 콘주게이트에 대해 천연 rFIX와 비교한 > 50 %의 비활성을 측정했다. 콘주게이트를 앞서 기재된 조건 하에서 Shodex KW 803 칼럼이 구비된 Agilent 1200 HPLC 시스템을 사용하는 크기 배제 HPLC로 추가로 분석적으로 특성화했다 (Kolarich et al, Transfusion 2006;46:1959-77). 상기 제제는 유리 FIX를 함유하지 않았다는 것을 보여주었다. 콘주게이트는 57 % 모노-폴리시알릴화된 및 31 % 디-폴리시알릴화된 및 12 % 트리-폴리시알릴화된 생성물로 이루어졌다.
실시예 12
아미노옥시 -PSA 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 rFVIII의 폴리시알릴화
방법 1:
50 mg rFVIII를 반응 완충액 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 이 용액에, NaIO4를 첨가하여 200 μM의 최종 농도를 얻었다. 산화를 실온에서 30 분 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 수행했다. 그 다음 반응을 시스테인 (최종 농도: 10 mM)로 60분 동안 실온에서 켄칭했다. 용액에 대해 20 ml의 용적을 갖는 IEX 칼럼 (Merck EMD TMAE (M))을 수행하고, 이를 완충액 A (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2 , pH 7.0)으로 평형을 이루었다. 칼럼을 5 CV 완충액 A로 평형을 이루었다. 그 다음 상기 산화된 rFVIII을 완충액 B (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, 1M NaCl, pH 7.0)로 용출했다. rFVIII 함유 분획을 수집했다. 단백질 함량을 측정하고 (Coomassie, Bradford), 반응 완충액으로 1 mg/ml로 조정하고 0.5 M HCl의 적가로 pH 6.0으로 조정했다. 그 다음 20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨), 그 다음 m-톨루이딘을 친핵성 촉매로서 첨가했다 (최종 농도: 10 mM). 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 과잉의 아미노옥시-PSA 시약을 HIC로 제거했다. 반응 혼합물의 전도도는, 암모늄 아세테이트 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 8 M 암모늄 아세테이트, pH 6.9)을 함유하고 50 mM Hepes, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9으로 미리 평형을 이룬 80 ml 페닐 세파로오스 FF (GE Healthcare, Fairfield, CT) 가 충전된 칼럼 상에 로딩된 완충액을 첨가하여 130 mS/cm로 상승되었다. 순차적으로, 콘주게이트를 5 mM CaCl2을 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.5)로 용출했다. 마지막으로, PSA-rFVIII 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 30 kD 막 (88cm2, 밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 제제를, 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 FVIII 발색 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다. PSA-rFVIII 콘주게이트는 천연 rFVIII와 비교한 > 70%의 비활성이 측정되었다는 것을 보여주었다.
방법 2:
Hepes 완충액 (50 mM HEPES, ~350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 0.1 % 폴리소르베이트 80, pH 7.4)에서 ADVATE 과정으로부터 유래된 58 mg의 재조합 인자 VIII (rFVIII)을 반응 완충액 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로, 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 200 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/- 5 분 동안 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)을 15 분 내에 T= +22 +/- 2 ℃에서 첨가하여 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 rFVIII을 EMD TMAE (M) (Merck) 상에서 음이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 혼합물을 완충액 A (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 6.5)으로 희석하여 5 ms/cm의 전도도를 얻었다. 이 용액을 1.5 cm/min의 유속을 사용하여 10 ml의 칼럼 용적을 갖는 IEX 칼럼 (층 높이: 5.4 cm) 상에 로딩했다. 이 칼럼을 순차적으로 완충액 A 및 완충액 B의 92:8 혼합물 (w/w)의 5 CV (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, 1.0 M NaCl, pH 7.0)로 세정했다 (유속: 1.5 cm/min). 그 다음 상기 산화된 rFVIII를 완충액 A 및 완충액 B의 50:50 (w/w) 혼합물로 용출하고 그 다음 완충액 B의 5 CV로 후용출 단계를 수행했다. 용출 단계를 1.0 cm/min의 유속의 사용으로 수행했다.
순차적으로, 아미노옥시-폴리시알산 (PSA-ONH2) 시약을 정제된 산화된 rFVIII를 함유하는 용출물에 대해 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50　mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다.
얻은 PSA-rFVIII 콘주게이트를, 15 cm의 층 높이 (h) 및 81 ml의 수득한 칼럼 용적 (CV)을 갖는 칼럼 (GE Healthcare 제조)에 충전된 페닐 세파로오스 FF 낮은 서브 수지 (GE Healthcare)을 사용하여 소수성 상호작용 크로마토그래피 (HIC)로 정제했다.
반응 혼합물에, 350 mM 나트륨 클로라이드, 8 M 암모늄 아세테이트, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9를 함유하는 50 mM Hepes 완충액의 첨가로 암모늄 아세테이트를 고정시켰다. 2 용적의 반응 혼합물을 1 용적의 암모늄 아세테이트 함유 완충계와 혼합하고 pH 값을 pH 6.9으로 0.5 N 수성 NaOH 용액의 적가로 보정했다. 이 혼합물을 HIC 칼럼 상에 1 cm/min의 유속으로 로딩하고 그 다음 세정 단계 > 3 CV 평형 완충액 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9)를 사용하여 세정 단계를 수행했다.
반응 부산물 및 안티-케이오성 염의 제거에 대해 제2 세정 단계를 > 5CV 세정 완충액 1 (50 mM Hepes, 3 M 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9)으로 상향류 방식으로 2 cm/min의 유속으로 수행했다. 그 다음 정제된 PSA-rFVIII 콘주게이트의 용출을, 40　% 세정 완충액 2 (50 mM Hepes, 1.5 M 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9) 및 60　% 용출 완충액 (20mM Hepes, 5mM 염화칼슘, pH 7.5)의 단계 구배를 사용하여 하향류 방식으로 1 cm/min의 유속으로 수행했다. PSA-rFVIII 콘주게이트의 용출을 UV 280 nm에서 모니터링하고 콘주게이트 함유 용출물을 < 4 CV 내에서 수집했다. 후 용출 단계를 > 3 CV 용출 완충액으로 주요 생성물로부터 최소 및/또는 비 변형된 rFVIII를 분리하기 위한 조건 하에서 수행했다.
마지막으로 정제된 콘주게이트를 분자량 분획 30kD을 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (88cm2, 밀리포어)을 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용으로 제조한 콘주게이트를, PSA 함량 (레조르시놀 검정)을 측정하여 총 단백질, FVIII 발색 활성 및 폴리시알화도의 측정을 측정하여 분석적으로 특성화했다. 얻은 콘주게이트에 대해 비활성 > 50% 및 PSA 도 > 5.0가 계산되었다.
방법 3:
50 mg rFVIII을 반응 완충액 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)으로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨), 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (최종 농도: 10 mM) 및 NaIO4 (최종 농도: 400 μM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 순차적으로, 반응을 시스테인으로 60분 동안 실온에서 켄칭했다 (최종 농도: 10 mM). 그 다음 반응 혼합물의 전도도는, 암모늄 아세테이트 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 8 M 암모늄 아세테이트, pH 6.9)을 함유하고 50 mM Hepes, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 0.01 % Tween 80, pH 6.9으로 미리 평형을 이룬80 ml 페닐 세파로오스 FF (GE Healthcare, Fairfield, CT)가 충전된 칼럼 상에 로딩된 완충액을 첨가하여 130 mS/cm로 상승되었다. 순차적으로, 콘주게이트를 50 mM Hepes, 5 mM 염화칼슘, pH 7.5로 용출했다. 마지막으로, PSA-rFVIII 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 30 kD 막 (88cm2, 밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 제제를, 총 단백질 (Bradford) 및 FVIII 발색 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다. PSA-rFVIII 콘주게이트에 대해 천연 rFVIII와 비교한 ≥ 70%의 비활성 측정했다.
방법 4:
50 mM Hepes 완충액 (50 mM HEPES, ~350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 0.1 % 폴리소르베이트 80, pH 7.4) 중 ADVATE 과정으로부터 유래된 50 mg 재조합 인자 VIII (rFVIII)을 반응 완충액 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH을 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다.
순차적으로, 아미노옥시-폴리시알산 (PSA-ONH2) 시약을 50-배 몰 과잉으로 이 rFVIII 용액에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 마지막으로, 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 첨가하여 400 μM의 농도를 얻었다.
반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
얻은 PSA-rFVIII 콘주게이트를, 15 cm의 층 높이 (h) 및 81 ml의 수득한 칼럼 용적 (CV)을 갖는 칼럼 (GE Healthcare 제조)에 충전된 페닐 세파로오스 FF 낮은 서브 수지 (GE Healthcare)을 사용하여 소수성 상호작용 크로마토그래피 (HIC)로 정제했다.
반응 혼합물에, 350 mM 나트륨 클로라이드, 8 M 암모늄 아세테이트, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9을 함유하는 50 mM Hepes 완충액의 첨가에 의해 암모늄 아세테이트를 넣었다. 2 용적의 반응 혼합물을 1 용적의 암모늄 아세테이트 함유 완충계와 혼합하고 pH 값을 pH 6.9으로 0.5 N 수성 NaOH 용액의 적가에 의해 보정했다. 이 혼합물을 1 cm/min의 유속을 사용하여 HIC 칼럼 상에 로딩하고 그 다음 > 3CV 평형 완충액 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9)를 사용하여 세정 단계를 수행했다.
반응 부산물 및 안티-케이오성 염의 제거에 대해 제2 세정 단계를 > 5CV 세정 완충액 1 (50 mM Hepes, 3 M 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9)로 상향류 방식으로 2 cm/min의 유속으로 수행했다. 그 다음 정제된 rFVIII 콘주게이트의 용출을, 40　% 세정 완충액 2 (50 mM Hepes, 1.5 M 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9) 및 60 % 용출 완충액 (20 mM Hepes, 5 mM 염화칼슘, pH 7.5)의 단계 구배를 사용하여 1 cm/min의 유속으로 하향류 방식으로 수행했다. PSA-rFVIII 콘주게이트의 용출을 UV 280 nm에서 모니터링하고 콘주게이트 함유 용출물을 < 4 CV 내에서 수집했다. 후 용출 단계를 > 3 CV 용출 완충액으로 주요 생성물로부터 최소 및/또는 비 변형된 rFVIII를 분리하기 위한 조건 하에서 수행했다.
마지막으로, 정제된 콘주게이트를 분자량 분획 30kD을 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (88cm2, 밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용에 의해 제조된 콘주케이트를, PSA 함량 (레조르시놀 검정)을 측정하여 총 단백질, FVIII 발색 활성 및 폴리시알화도의 측정을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
분석 데이타 (6개의 연속 배치의 평균):
공정 수율 (Bradford): 58.9%
공정 수율 (FVIII 크롬.): 46.4%
비활성: (FVIII 크롬./mg 단백질): 4148 IU/mg
비활성 (개시 물질의 %): 79.9 %
PSA 도 (mol/mol): 8.1
실시예 13
아미노옥시 -PEG 시약 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 r FVIII의 페길화
방법 1:
rFVIII을 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 14.7 mg rFVIII을 7.0 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20　mM L-히스티딘, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2)에서 용해시켰다. 그 다음 296 μl의 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 7.5 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 Vivaspin 15R 10 kD 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 순차적으로 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
산화된 rFVIII을 함유하는 체류물 (10.9 ml)을 2.94 ml의 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)과 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
마지막으로, PEG-rFVIII 콘주게이트를 Q 세파로오스 FF상 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 1.5 mg 단백질/ml 겔을 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)으로 평형을 이룬 칼럼 상에 로딩했다. 콘주게이트를 5 mM CaCl2 및 500 mM 나트륨 클로라이드를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 용출하고, 그 다음 30 kD 막 (50cm2, 밀리포어)를 사용하여 UF/DF를 수행했다. 제제를, 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 FVIII 발색 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다. PEG-rFVIII 콘주게이트는 측정된 천연 rFVIII와 비교한 > 70%의 비활성을 나타낼 것으로 예상된다.
방법 2:
rFVIII을 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 개시 중량 또는 농도의 rFVIII을 용해시키거나 반응 완충액 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)으로 이동시켜셔 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 200 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/-5 분 동안 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)을 15 분 내에 T= +22 +/- 2 ℃에서 첨가하여 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 rFVIII을 EMD TMAE (M) (Merck) 상에서 음이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 혼합물을 완충액 A (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH　6.5)으로 희석하여 5 ms/cm의 전도도를 얻었다. 이 용액을 1.5 cm/min의 유속을 사용하여 10 ml의 칼럼 용적을 갖는 IEX 칼럼 (층 높이: 5.4 cm) 상에 로딩했다. 이 칼럼을 순차적으로 완충액 A 및 완충액 B의 92:8 혼합물 (w/w)의 5 CV (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, 1.0 M NaCl, pH 7.0)으로 세정했다 (유속: 1.5 cm/min). 그 다음 상기 산화된 rFVIII를 완충액 A 및 완충액 B의 50:50 (w/w) 혼합물로 용출하고 그 다음 완충액 B의 5 CV로 후용출 단계를 수행했다. 용출 단계를 1.0 cm/min의 유속의 사용으로 수행했다.
순차적으로, 20 kD의 MW 시약을 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 정제된 산화된 rFVIII를 함유하는 용출물에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50　mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다.
얻은 PEG-rFVIII 콘주게이트를, 15 cm의 층 높이 (h) 및 81 ml의 수득한 칼럼 용적 (CV)을 갖는 칼럼 (GE Healthcare 제조)에 충전된 페닐 세파로오스 FF 낮은 서브 수지 (GE Healthcare)을 사용하여 소수성 상호작용 크로마토그래피 (HIC)로 정제했다.
반응 혼합물에 350 mM 나트륨 클로라이드, 8 M 암모늄 아세테이트, 5 mM 염화칼슘을 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 6.9)의 첨가로 암모늄 아세테이트를 넣었다. 2 용적의 반응 혼합물을 1 용적의 암모늄 아세테이트 함유 완충계와 혼합하고 pH 값을 pH 6.9으로 0.5 N 수성 NaOH 용액의 적가로 보정했다. 이 혼합물을 1 cm/min의 유속을 사용하여 HIC 칼럼 상에 로딩하고 그 다음 > 3 CV 평형 완충액 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9)를 사용하여 세정 단계를 수행했다.
반응 부산물 및 안티-케이오성 염의 제거에 대해 제2 세정 단계를, > 5CV 세정 완충액 1 (50 mM Hepes, 3 M 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9)로 상향류 방식으로 2 cm/min의 유속으로 수행했다. 그 다음 정제된 rFVIII 콘주게이트의 용출을 하향류 방식으로 40 % 세정 완충액 2 (50 mM Hepes, 1.5 M 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9) 및 60 % 용출 완충액 (20mM Hepes, 5mM 염화칼슘, pH 7.5)의 단계 구배를 사용하여 1cm/min의 유속에서 수행했다. PEG-rFVIII 콘주게이트의 용출을 UV 280 nm에서 모니터링하고 콘주게이트 함유 용출물을 < 4 CV 내에서 수집했다. 후 용출 단계를 > 3 CV 용출 완충액으로 주요 생성물로부터 최소 및/또는 비 변형된 rFVIII를 분리하기 위한 조건 하에서 수행했다.
마지막으로, 정제된 콘주게이트를 분자량 분획 30kD을 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)을 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용으로 제조한 콘주게이트를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 3:
rFVIII을 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 6 ml Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해된 7.84 mg rFVIII을 314 μl의 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (10 mM), 및 1.57 ml의 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합했다. 순차적으로 아미노옥시 시약을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 8 μl의 수성 시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
마지막으로 PEG-rFVIII 콘주게이트를 Q-세파로오스 FF상 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 1.5 mg 단백질/ml 겔을 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 미리 평형을 이룬 칼섬 상에 로딩했다. 콘주게이트를 5 mM CaCl2 및 500 mM 나트륨 클로라이드를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 용출하고, 그 다음 30 kD 막 (88cm2, 밀리포어)를 사용하여 UF/DF를 수행했다. FVIII 발색 검정 및 총 단백질 (Bradford)의 측정에 의한 콘주게이트의 분석적 특성화는 rFVIII 개시 물질과 비교하여 > 60%의 비활성을 보여준다.
방법 4:
rFVIII을 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 초기 농도 또는 중량의 rFVIII을 이동시키거나 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 2 mg rFVIII/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 순차적으로, 5 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 15 분 내에 첨가하여 100 μM의 최종 농도를 얻고, 그 다음 50 mM 수성 m-톨루이딘 용액의 첨가로 10 mM의 최종 농도를 30 분의 지속시간 내에 얻었다. 그 다음 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 20-배 몰 과잉을 얻었다. pH를 6.0으로 보정한 후 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 1 M 수성 L-시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다.
유리 rFVIII을 이온 교환 크로마토그래피 (IEC)로 제거했다. 반응 혼합물을 적절한 양의 완충액 A (50 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.5)로 희석하여 용액 전도도 및 pH 값을 보정한 후 완충액 A로 평형을 이룬 20 ml HiPrep QFF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 로딩했다. 그 다음 칼럼을 완충액 B (50 mM Hepes, 1 M NaCl, 5 mM CaCl2, pH 7.5)로 용출했다. 유리 rFVIII을 완충액 B의 25 %를 사용하는 단계 구배로 용출하고, 이로써 얻은 분획에서 12-25 mS/cm의 전도도를 얻고 50 % 완충액 B의 단계 구배를 사용하여 콘주게이트 하고, 이로써 콘주게이트 분획에서 27-45 mS/cm의 전도도를 얻었다. 콘주게이트 함유 분획의 전도도는 순차적으로 완충액 C (50 mM Hepes, 5 M NaCl, 5 mM CaCl2, pH 6.9; 안티-케이오성 염 예들 들면 암모늄 아세테이트의 사용에 의해, 암모늄 설페이트 등)으로 상승되고 완충액 D (50 mM Hepes, 3 M NaCl, 5 mM CaCl2, pH 6.9)로 미리 평형을 이룬 20 ml HiPrep 부틸 FF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT; 또는 비교가능 HIC 배지) 상에 로딩되었다. 유리 PEG-시약을 5 CV 완충액 D로 세정했다. 순차적으로, 콘주게이트를 100 % 완충액 E (50 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.4)으로 용출했다. 콘주게이트 함유 분획들을, 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD, 밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.5)에 대항하여 수행했다.
제제를, 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford 및 BCA 절차) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
실시예 14
아미노옥시 -PSA 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 rFVIIa의 폴리시알릴화
방법 1:
개시 농도 또는 중량의 재조합 인자 VIIa (rFVIIa)을 이동시키거나 반응 완충액 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 NaOH 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로, 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 50 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/- 5 분 동안 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 15 분 내에 T = +22 +/- 2 ℃에서 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 rFVIIa을 EMD TMAE (M) (Merck) 상에서 음이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 혼합물을 완충액 A (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 6.5)으로 희석하여 5 ms/cm의 전도도를 얻었다. 이 용액을 1.5 cm/min의 유속을 사용하여 10 ml의 칼럼 용적을 갖는 IEX 칼럼 (층 높이: 5.4 cm) 상에 로딩했다. 이 칼럼을 순차적으로 완충액 A 및 완충액 B의 92:8 혼합물 (w/w)의 5 CV (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, 1.0 M NaCl, pH 7.0)으로 세정했다 (유속: 1.5 cm/min). 그 다음 상기 산화된 rFVIIa를 완충액 A 및 완충액 B의 50:50 (w/w) 혼합물로 용출하고 그 다음 완충액 B의 5 CV로 후용출 단계를 수행했다. 용출 단계를 1.0 cm/min의 유속의 사용으로 수행했다.
순차적으로, 아미노옥시-폴리시알산 (PSA-ONH2) 시약을 정제된 산화된 rFVIIa를 함유하는 용출물에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50　mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다.
얻은 PSA-rFVIIa 콘주게이트를, 15 cm의 층 높이 (h) 및 81 ml의 수득한 칼럼 용적 (CV)을 갖는 칼럼 (GE Healthcare 제조)에 충전된 페닐 세파로오스 FF 낮은 서브 수지 (GE Healthcare)을 사용하여 소수성 상호작용 크로마토그래피 (HIC)로 정제했다.
반응 혼합물에 350 mM 나트륨 클로라이드, 8 M 암모늄 아세테이트, 5 mM 염화칼슘을 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 6.9)의 첨가로 암모늄 아세테이트를 넣었다. 2 용적의 반응 혼합물을 1 용적의 암모늄 아세테이트 함유 완충계와 혼합하고 pH 값을 pH 6.9으로 0.5 N 수성 NaOH 용액의 적가로 보정했다. 이 혼합물을 1 cm/min의 유속을 사용하여 HIC 칼럼 상에 로딩하고 그 다음 > 3 CV 평형 완충액 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9)를 사용하여 세정 단계를 수행했다.
반응 부산물 및 안티-케이오성 염의 제거에 대해 제2 세정 단계를 > 5CV 세정 완충액 1 (50 mM Hepes, 3 M 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9)로 상향류 방식으로 2 cm/min의 유속으로 수행했다. 그 다음 정제된 rFVIIa 콘주게이트의 용출을 하향류 방식으로 40 % 세정 완충액 2 (50 mM Hepes, 1.5 M 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9) 및 60 % 용출 완충액 (20mM Hepes, 5mM 염화칼슘, pH 7.5)의 단계 구배로 사용하여 1 cm/min의 유속으로 수행했다. PSA-rFVIIa 콘주게이트의 용출을 UV 280 nm에서 모니터링하고 콘주게이트 함유 용출물을 < 4 CV 내에서 수집했다. 후 용출 단계를 주요 생성물로부터 최소 및/또는 비 변형된 rFVIIa를 분리하기 위한 동일한 조건 하에서 > 3 CV 용출 완충액으로 수행했다.
마지막으로, 정제된 콘주게이트를 적절한 분획 분자량을 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (예들 들면 10 kD MWCO, 88cm2, 밀리포어)을 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용에 의해 제조된 콘주게이트를, PSA 함량 (레조르시놀 검정)을 측정하여 총 단백질, 생물학적 활성, 및 폴리시알화도의 측정을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 2:
개시 중량 또는 농도의 rFVIIa를 용해시키거나 반응 완충액 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)으로 이동시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 NaOH 용액의 적가로 보정했다.
순차적으로, 아미노옥시-폴리시알산 (PSA-ONH2) 시약을 이 rFVIIa 용액에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 마지막으로 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 첨가하여 150 μM의 농도를 얻었다.
반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
얻은 PSA-rFVIIa 콘주게이트를, 15 cm의 층 높이 (h) 및 81 ml의 수득한 칼럼 용적 (CV)을 갖는 칼럼 (GE Healthcare 제조)에 충전된 페닐 세파로오스 FF 낮은 서브 수지 (GE Healthcare)을 사용하여 소수성 상호작용 크로마토그래피 (HIC)로 정제했다.
반응 혼합물에, 350 mM 나트륨 클로라이드, 8 M 암모늄 아세테이트, 5 mM 염화칼슘을 함유하는 50 mM Hepes 완충액(pH 6.9)의 첨가로 암모늄 아세테이트를 넣었다. 2 용적의 반응 혼합물을 1 용적의 암모늄 아세테이트 함유 완충계와 혼합하고 pH 값을 pH 6.9으로 0.5 N 수성 NaOH 용액의 적가로 보정했다. 이 혼합물을 1 cm/min의 유속을 사용하여 HIC 칼럼 상에 로딩하고 그 다음 > 3CV 평형 완충액 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9)를 사용하여 세정 단계를 수행했다.
반응 부산물 및 안티-케이오성 염의 제거에 대해 제2 세정 단계를 > 5CV 세정 완충액 1 (50 mM Hepes, 3 M 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9)로 상향류 방식으로 2 cm/min의 유속으로 수행했다. 그 다음 정제된 rFVIIa 콘주게이트의 용출을 하향류 방식으로 40 % 세정 완충액 2 (50 mM Hepes, 1.5 M 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9) 및 60 % 용출 완충액 (20mM Hepes, 5mM 염화칼슘, pH 7.5)의 단계 구배로 사용하여 1 cm/min의 유속으로 수행했다. PSA-rFVIIa 콘주게이트의 용출을 UV 280 nm에서 모니터링하고 콘주게이트 함유 용출물을 < 4 CV 내에서 수집했다. 후 용출 단계를 > 3 CV 용출 완충액으로 주요 생성물로부터 최소 및/또는 비 변형된 rFVIII를 분리하기 위한 조건 하에서 수행했다.
마지막으로, 정제된 콘주게이트를 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)을 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용으로 제조된 콘주케이트를 PSA 함량 (레조르시놀 검정)을 측정하여 총 단백질, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 생물학적 활성, 및 폴리시알화도의 측정을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
실시예 15
아미노옥시 -PEG 시약 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 rFIX의 페길화
방법 1:
rFIX를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 개시 중량 또는 농도의 rFIX을 용해시키거나 반응 완충액 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)으로 이동시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로, 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 200 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/- 5 분 동안 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 15 분 내에 T = +22 +/- 2 ℃에서 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 rFVIII을 EMD TMAE (M) (Merck) 상에서 음이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 혼합물을 완충액 A (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 6.5)로 희석하여 5 mS/cm의 전도도를 얻었다. 이 용액을 1.5 cm/min의 유속을 사용하여 10 ml의 칼럼 용적을 갖는 IEX 칼럼 (층 높이: 5.4 cm) 상에 로딩했다. 이 칼럼을 순차적으로 완충액 A 및 완충액 B의 92:8 혼합물 (w/w)의 5 CV (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, 1.0 M NaCl, pH 7.0)으로 세정했다 (유속: 1.5 cm/min). 그 다음 상기 산화된 rFIX를 완충액 A 및 완충액 B의 50:50 (w/w) 혼합물로 용출하고 그 다음 완충액 B의 5 CV로 후용출 단계를 수행했다. 용출 단계를 1.0 cm/min의 유속의 사용으로 수행했다.
순차적으로, 20 kD의 MW 시약을 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 정제된 산화된 rFIX를 함유하는 용출물에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50　mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다.
얻은 PEG-rFIX 콘주게이트를, 15 cm의 층 높이 (h) 및 81 ml의 수득한 칼럼 용적 (CV)을 갖는 칼럼 (GE Healthcare 제조)에 충전된 페닐 세파로오스 FF 낮은 서브 수지 (GE Healthcare)을 사용하여 소수성 상호작용 크로마토그래피 (HIC)로 정제했다.
반응 혼합물에 350 mM 나트륨 클로라이드, 8 M 암모늄 아세테이트, 5 mM 염화칼슘을 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 6.9)의 첨가로 암모늄 아세테이트를 넣었다. 2 용적의 반응 혼합물을 1 용적의 암모늄 아세테이트 함유 완충계와 혼합하고 pH 값을 pH 6.9으로 0.5 N 수성 NaOH 용액의 적가로 보정했다. 이 혼합물을 1 cm/min의 유속을 사용하여 HIC 칼럼 상에 로딩하고 그 다음 > 3 CV 평형 완충액 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9)를 사용하여 세정 단계를 수행했다.
반응 부산물 및 안티-케이오성 염의 제거에 대해 제2 세정 단계를 > 5CV 세정 완충액 1 (50 mM Hepes, 3 M 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9)로 상향류 방식으로 2 cm/min의 유속으로 수행했다. 그 다음 정제된 rFIX 콘주게이트의 용출을 하향류 방식으로 40　% 세정 완충액 2 (50 mM Hepes, 1.5 M 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9) 및 60 % 용출 완충액 (20 mM Hepes, 5 mM 염화칼슘, pH 7.5)의 단계 구배를 사용하여 1 cm/min의 유속으로 수행했다. PEG-rFIX 콘주게이트의 용출을 UV 280 nm에서 모니터링하고 콘주게이트 함유 용출물을 < 4 CV 내에서 수집했다. 후 용출 단계를 주요 생성물로부터 최소 및/또는 비 변형된 rFIX를 분리하기 위한 동일한 조건 하에서 > 3 CV 용출 완충액으로 수행했다.
마지막으로, 정제된 콘주게이트를 분자량 분획10kD를 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (88cm2, 밀리포어)을 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용으로 제조한 콘주게이트를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 2:
rFIX를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 초기 농도 또는 중량의 rFIX를 이동시키거나 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 2 mg rFIX/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 순차적으로, 5 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 15 분 내에 첨가하여 100 μM의 최종 농도를 얻고, 그 다음 50 mM 수성 m-톨루이딘 용액의 첨가로 10 mM의 최종 농도를 30 분의 지속시간 내에 얻었다. 그 다음 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. pH를 6.0으로 보정한 후 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 1 M 수성 L-시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다.
유리 rFIX를 이온 교환 크로마토그래피 (IEC)로 제거했다. 반응 혼합물을 적절한 양의 완충액 A (50 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.5)로 희석하여 용액 전도도 및 pH 값을 보정한 후 완충액 A로 평형을 이룬 20 ml HiPrep QFF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 로딩했다. 그 다음 칼럼을 완충액 B (50 mM Hepes, 1 M NaCl, 5 mM CaCl2, pH 7.5)로 용출했다. 유리 rFIX를 완충액 B의 25 %를 사용하는 단계 구배로 용출하고, 이로써 얻은 분획에서 12- 25 mS/cm의 전도도를 얻고 50 % 완충액 B의 단계 구배를 사용하여 콘주게이트 하고, 이로써 콘주게이트 분획에서 27-45 mS/cm의 전도도를 얻었다. 콘주게이트 함유 분획의 전도도는 순차적으로 완충액 C (50 mM Hepes, 5 M NaCl, 5 mM CaCl2, pH 6.9; 안티-케이오성 염 예들 들면 암모늄 아세테이트의 사용에 의해 등)으로 상승되고 완충액 D (50 mM Hepes, 3 M NaCl, 5 mM CaCl2, pH 6.9)으로 미리 평형을 이룬20 ml HiPrep 부틸 FF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT; 또는 비교가능 HIC 배지) 상에 로딩되었다. 유리 아미노옥시-PEG 시약을 5 CV 완충액 D로 세정했다. 순차적으로, 콘주게이트를 100 % 완충액 E (50 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.4)으로 용출했다. 콘주게이트 함유 분획들을, 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD, 밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.5)에 대항하여 수행했다.
제제를, 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford 및 BCA 절차) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
실시예 16
아미노옥시 -PEG 시약 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 rFVIIa의 페길화
방법 1:
rFVIIa를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 개시 중량 또는 농도의 rFVIIa를 용해시키거나 반응 완충액 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)으로 이동시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 NaOH 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로, 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 50 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/- 5 분 동안 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)을 15 분 내에 T= +22 +/- 2 ℃에서 첨가하여 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 rFVIIa을 EMD TMAE (M) (Merck) 상에서 음이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 혼합물을 완충액 A (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 6.5)로 희석하여 5 mS/cm의 전도도를 얻었다. 이 용액을 1.5 cm/min의 유속을 사용하여 10 ml의 칼럼 용적을 갖는 IEX 칼럼 (층 높이: 5.4 cm) 상에 로딩했다. 이 칼럼을 순차적으로 완충액 A 및 완충액 B의 92:8 혼합물 (w/w)의 5 CV (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, 1.0 M NaCl, pH 7.0)으로 세정했다 (유속: 1.5 cm/min). 그 다음 상기 산화된 rFVIIa를 완충액 A 및 완충액 B의 50:50 (w/w) 혼합물로 용출하고 그 다음 완충액 B의 5 CV로 후용출 단계를 수행했다. 용출 단계를 1.0 cm/min의 유속의 사용으로 수행했다.
순차적으로, 20 kD의 MW 시약을 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 정제된 산화된 rFVIIa를 함유하는 용출물에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다.
얻은 PEG-rFVIIa 콘주게이트를, 15 cm의 층 높이 (h) 및 81 ml의 수득한 칼럼 용적 (CV)을 갖는 칼럼 (GE Healthcare 제조)에 충전된 페닐 세파로오스 FF 낮은 서브 수지 (GE Healthcare)을 사용하여 소수성 상호작용 크로마토그래피 (HIC)로 정제했다.
반응 혼합물에 350 mM 나트륨 클로라이드, 8 M 암모늄 아세테이트, 5 mM 염화칼슘을 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 6.9)의 첨가로 암모늄 아세테이트를 넣었다. 2 용적의 반응 혼합물을 1 용적의 암모늄 아세테이트 함유 완충계와 혼합하고 pH 값을 pH 6.9으로 0.5 N 수성 NaOH 용액의 적가로 보정했다. 이 혼합물을 1 cm/min의 유속을 사용하여 HIC 칼럼 상에 로딩하고 그 다음 > 3 CV 평형 완충액 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9)를 사용하여 세정 단계를 수행했다.
반응 부산물 및 안티-케이오성 염의 제거에 대해 제2 세정 단계를 > 5CV 세정 완충액 1 (50 mM Hepes, 3 M 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9)로 상향류 방식으로 2 cm/min의 유속으로 수행했다. 그 다음 정제된 rFVIIa 콘주게이트의 용출을 하향류 방식으로 40　% 세정 완충액 2 (50 mM Hepes, 1.5 M 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9) 및 60 % 용출 완충액 (20 mM Hepes, 5 mM 염화칼슘, pH 7.5)의 단계 구배를 사용하여 1 cm/min의 유속으로 수행했다. PEG-rFVIIa 콘주게이트의 용출을 UV 280 nm에서 모니터링하고 콘주게이트 함유 용출물을 < 4 CV 내에서 수집했다. 후 용출 단계를 주요 생성물로부터 최소 및/또는 비 변형된 rFVIIa를 분리하기 위한 동일한 조건 하에서 > 3 CV 용출 완충액으로 수행했다.
마지막으로, 정제된 콘주게이트를을 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다 분자량 분획10kD를 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어).
이 절차의 사용으로 제조한 콘주게이트를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 2:
rFVIIa를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 초기 농도 또는 중량의 rFVIIa를 이동시키거나 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 2 mg rFVIIa/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 순차적으로 5 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 15 분 내에 첨가하여 100 μM의 최종 농도를 얻고, 그 다음 50 mM 수성 m-톨루이딘 용액의 첨가로 10 mM의 최종 농도를 30 분의 지속시간 내에 얻었다. 그 다음 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. pH를 6.0으로 보정한 후 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 1 M 수성 L-시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다.
유리 rFVIIa를 이온 교환 크로마토그래피 (IEC)로 제거했다. 반응 혼합물을 적절한 양의 완충액 A (50 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.5)로 희석하여 용액 전도도 및 pH 값을 보정한 후 완충액 A로 평형을 이룬 20 ml HiPrep QFF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 로딩했다. 그 다음 칼럼을 완충액 B (50 mM Hepes, 1 M NaCl, 5 mM CaCl2, pH 7.5)로 용출했다. 유리 rFVIIa를 완충액 B의 25 %를 사용하는 단계 구배로 용출하고, 이로써 얻은 분획에서 12-25 mS/cm의 전도도를 얻고 50 % 완충액 B의 단계 구배를 사용하여 콘주게이트 하고, 이로써 콘주게이트 분획에서 27-45 mS/cm의 전도도를 얻었다. 콘주게이트 함유 분획의 전도도는 순차적으로 완충액 C (50 mM Hepes, 5 M NaCl, 5 mM CaCl2, pH 6.9; 안티-케이오성 염 예들 들면 암모늄 아세테이트의 사용으로)으로 상승되고 완충액 D (50 mM Hepes, 3 M NaCl, 5 mM CaCl2, pH 6.9)으로 미리 평형을 이룬20 ml HiPrep 부틸 FF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT; 또는 비교가능 HIC 배지) 상에 로딩되었다. 유리 PEG-시약을 5 CV 완충액 D로 세정했다. 순차적으로 콘주게이트를 100% 완충액 E (50 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.4)로 용출했다. 콘주게이트 함유 분획들을, 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD, 밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.5)에 대항하여 수행했다.
제제를, 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford 및 BCA 절차) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
실시예 17
아미노 벤조산의 존재에서 rFIX의 폴리시알릴화
방법 1:
8.2 mg rFIX을 4.0 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20 mM L-히스티딘, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2)에서 용해시켰다. 그 다음 82 μl의 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 4 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 순차적으로 Vivaspin 6 10 kD 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
산화된 rFIX를 함유하는 체류물 (6.5 ml)을 1.64 ml의 수성 o-아미노 벤조산 (50 mM)와 혼합시키고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음 20 kD의 MW을 갖는 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
콘주게이트의 추가 정제는 본원에서 기재된 바와 같이 수행되었다.
방법 2:
5-배 몰 과잉의 20 kD의 MW을 갖는 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨)을 함유하는 0.65 ml 나트륨 포스페이트 완충액(pH 6.0) 중 1 mg rFIX의 용액을 제조했다. 그 다음 333 μl의 수성 o-아미노 벤조산 용액 (30 mM)을 친핵성 촉매로서 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 순차적으로 NaIO4 (5 mM)의 20 μl의 수용액을 첨가하여 100 μM의 최종 농도를 얻었다. 커플링 과정을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행하고 1 μl의 수성 시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 콘주게이트의 추가 정제는 본원에서 기재된 바와 같이 수행되었다.
실시예 18
아미노옥시 -PSA 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 EPO의 폴리시알릴화
방법 1:
개시 농도의 에리트로포이에틴 (EPO)을 반응 완충액 (예들 들면 50　mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)으로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 이 용액에, NaIO4을 첨가하여 200 μM의 최종 농도를 얻었다. 산화를 실온에서 30 분 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 수행했다. 그 다음 반응을 시스테인 (최종 농도: 10 mM)로 60분 동안 실온에서 켄칭했다.
그 다음 용액에 대해 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거하거나, 대안적으로, 완충액 A (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2 , pH 7.0)으로 평형을 이룬 20 ml의 용적 (Merck EMD TMAE (M))을을 갖는 IEX 칼럼으로 이동시켰다. 칼럼을 5 CV 완충액 A로 평형을 이루었다. 상기 산화된 EPO를 완충액 B (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, 1M NaCl, pH 7.0)로 용출했다. EPO 함유 분획들을 수집했다. 단백질 함량을 측정하고 (Coomassie, Bradford), 반응 완충액으로 1 mg/ml로 조정하고 pH 6.0로 0.5M HCl의 적가로 조정했다.
20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (최종 농도: 10 mM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 과잉의 아미노옥시-PSA 시약을 HIC로 제거했다. 반응 혼합물의 전도도를 암모늄 아세테이트 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 8 M 암모늄 아세테이트, pH 6.9)을 함유하는 완충액을 첨가하여 조정하고 50 mM Hepes, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9로 미리 충전된 80 ml 페닐 세파로오스 FF (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 충전했다. 순차적으로, 콘주게이트를 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.5)로 용출했다. 마지막으로 PSA-EPO 함유 분획들을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (MWCO 10kD, 50cm2, 밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 1을 하기와 같이 수행했다.
10 mg EPO를 5 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20 mM L-히스티딘, 150 mM NaCl)에서 용해시켰다. 그 다음 100 μl의 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 50 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 Vivaspin 15R 10 kD 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 순차적으로 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
산화된 EPO를 함유하는 체류물 (대략 7 ml)을 2 ml의 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음 20 kD의 MW을 갖는 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
유리 EPO를 음이온 교환 크로마토그래피 (AEC)로 제거했다. 반응 혼합물을 20 ml 완충액 A (50 mM Hepes, pH 7.5)으로 희석하고 완충액 A로 평형을 이룬 20 ml HiPrep QFF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 로딩했다. 그 다음 칼럼을 완충액 B (50 mM Hepes, 1 M NaCl, pH 7.5)로 용출했다. 유리 EPO를 칼럼을 25 % 완충액 B로 그리고 콘주게이트를 50 % 완충액 B로 칼럼을 세정하여 용출했다. 콘주게이트 함유 분획의 전도도는 순차적으로 완충액 C (50 mM Hepes, 5 M NaCl, pH 6.9)으로 ~190 mS/cm로 상승되고 완충액 D (50 mM Hepes, 3 M NaCl, pH 6.9)으로 미리 평형을 이룬 20 ml HiPrep 부틸 FF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 로딩되었다. 유리 PSA-시약을 5 CV 완충액 D로 세정했다. 순차적으로, 콘주게이트를 100 % 완충액 E (50 mM Hepes, pH 7.4)로 용출했다. 콘주게이트 함유 분획들을, 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD/밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 150 mM NaCl을 함유하는 히스티딘 완충액 (pH 7.2)에 대항하여 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다. PSA-EPO 콘주게이트에 대해 천연 EPO와 비교한 > 50 %의 비활성을 측정했다. 콘주게이트를 앞서 기재된 조건 하에서 Shodex KW 803 칼럼이 구비된 Agilent 1200 HPLC 시스템을 사용하는 크기 배제 HPLC로 추가로 분석적으로 특성화했다 (Kolarich et al, Transfusion 2006;46:1959-77). 이 제제는 유리 EPO를 함유하지 않는다는 것을 보여준다.
방법 2:
EPO를 이동시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50mM Hepes, 350mM 나트륨 클로라이드, 5mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로, 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 200 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/- 5 분 동안 T = +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)을 15 분 내에 T= +22 +/- 2 ℃에서 첨가하여 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 EPO를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 상기 용출물의 산화된 EPO 함유 분획을 수집하고 콘주게이션 반응을 위해 사용한다.
아미노옥시-폴리시알산 (PSA-ONH2) 시약을 정제된 산화된 EPO를 함유하는 용출물에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 pH 6.0에서 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다 (단백질 농도: 1 mg/ml).
얻은 PSA-EPO 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. PSA-EPO 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 적절한 분획 분자량을 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용에 의해 제조된 콘주게이트를 PSA 함량 (레조르시놀 검정)을 측정하여 총 단백질, 생물학적 활성, 및 폴리시알화도의 측정을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 3:
에리트로포이에틴 (EPO)을 반응 완충액 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)으로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 20 kD의 MW을 갖는 50 배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (10 mM 최종 농도) 및 NaIO4 (최종 농도: 400 μM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 순차적으로, 반응을 시스테인으로 60분 동안 실온에서 켄칭했다 (시스테인 농도: 10 mM). 그 다음 반응 혼합물의 전도도를 암모늄 아세테이트 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 8 M 암모늄 아세테이트, pH 6.9)을 함유하는 완충액을 첨가하여 조정하고 50 mM Hepes, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 0.01% Tween 80, pH 6.9으로 미리 평형을 이룬 페닐 세파로오스 FF (GE Healthcare, Fairfield, CT)로 충전된 칼럼 상에 충전했다. 순차적으로, 콘주게이트를 50 mM Hepes, 5 mM 염화칼슘, pH 7.5으로 용출했다. 마지막으로, PSA-EPO 함유 분획들을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (MWCO 10 kD, 88cm2, 밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 3을 하기와 같이 수행했다. 10 mg EPO를 8 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20 mM L-히스티딘, 150 mM NaCl)에서 용해시켰다. 그 다음 200 μl의 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM) 및 2 ml의 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 첨가했다. 순차적으로, 20 kD의 MW을 갖는 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 100 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
유리 EPO를 음이온 교환 크로마토그래피 (AEC)로 제거했다. 반응 혼합물을 20 ml 완충액 A (50 mM Hepes, pH 7.5)으로 희석하고 완충액 A로 평형을 이룬 20 ml HiPrep QFF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 로딩했다. 그 다음 칼럼을 완충액 B (50 mM Hepes, 1 M NaCl, pH 7.5)로 용출했다. 유리 EPO를 칼럼을 25 % 완충액 B로 그리고 콘주게이트를 50 % 완충액 B로 칼럼을 세정하여 용출했다. 콘주게이트 함유 분획의 전도도는 순차적으로 완충액 C (50 mM Hepes, 5 M NaCl, pH 6.9)으로 ~190 mS/cm로 상승되고 완충액 D (50 mM Hepes, 3 M NaCl, pH 6.9)으로 미리 평형을 이룬 20 ml HiPrep 부틸 FF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 로딩되었다. 유리 PSA-시약을 5 CV 완충액 D로 세정했다. 순차적으로, 콘주게이트를 100% 완충액 E (50 mM Hepes, pH 7.4)로 용출했다. 콘주게이트 함유 분획들을, 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD, 밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 150 mM NaCl을 함유하는 히스티딘 완충액 (pH 7.2)에 대항하여 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다. PSA-EPO 콘주게이트에 대해 천연 EPO와 비교한 > 50 %의 비활성을 측정했다. 콘주게이트를 앞서 기재된 조건 하에서 Shodex KW 803 칼럼이 구비된 Agilent 1200 HPLC 시스템을 사용하는 크기 배제 HPLC로 추가로 분석적으로 특성화했다 (Kolarich et al, Transfusion 2006;46:1959-77). 이 제제는 유리 EPO를 함유하지 않는다는 것을 보여준다.
방법 4:
EPO를 용해시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50mM Hepes, 350mM 나트륨 클로라이드, 5mM 염화칼슘, pH 6.0)으로 이동시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다.
순차적으로, 아미노옥시-폴리시알산 (PSA-ONH2) 시약을 이 EPO 용액에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 마지막으로 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 첨가하여 400 μM의 농도를 얻었다.
반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
얻은 PSA-EPO 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 PSA-EPO 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (MWCO 10 kD, 88cm2, 밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용으로 제조된 콘주케이트를 PSA 함량 (레조르시놀 검정)을 측정하여 총 단백질, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 생물학적 활성, 및 폴리시알화도의 측정을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
실시예 19
아미노옥시 -PSA 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 Ang -2의 폴리시알릴화
방법 1:
개시 농도의 안지오포이에틴-2 (Ang-2)을 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)으로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 이 용액에, NaIO4을 첨가하여 200 μM의 최종 농도를 얻었다. 산화를 실온에서 30 분 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 수행했다. 그 다음 반응을 시스테인 (최종 농도: 10 mM)로 60분 동안 실온에서 켄칭했다.
그 다음 용액에 대해 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 부산물을 제거하거나, 대안적으로, 완충액 A (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.0)으로 평형을 이룬 20 ml의 용적 (Merck EMD TMAE (M))을 갖는 IEX 칼럼을 수행했다. 칼럼을 5 CV 완충액 A로 평형을 이루었다. 상기 산화된 Ang-2을 완충액 B (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, 1　M NaCl, pH 7.0)로 용출했다. Ang-2 함유 분획들을 수집했다. 단백질 함량을 측정하고 (Coomassie, Bradford), 반응 완충액으로 1 mg/ml로 조정하고 0.5 M HCl의 적가로 pH 6.0으로 조정했다.
20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (최종 농도: 10 mM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 과잉의 아미노옥시 시약을 HIC로 제거했다. 반응 혼합물의 전도도를 암모늄 아세테이트 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 8 M 암모늄 아세테이트, pH 6.9)을 함유하는 완충액을 첨가하여 조정하고 50 mM Hepes, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9로 미리 충전된 80 ml 페닐 세파로오스 FF (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 충전했다. 순차적으로, 콘주게이트를 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.5)로 용출했다. 마지막으로, PSA - Ang-2 함유 분획들을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 1을 하기와 같이 수행했다. 안지오포이에틴-2 (Ang-2)을 반응 완충액 (예들 들면, 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 이 용액에, NaIO4을 첨가하여 200 μM의 최종 농도를 얻었다. 산화를 실온에서 30 분 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 수행했다. 그 다음 반응을 시스테인 (최종 농도: 10 mM)으로 60분 동안 실온에서 켄칭했다.
그 다음 용액을 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (최종 농도: 10 mM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 과잉의 아미노옥시 시약을 이온 교환 크로마토그래피로 제거했다. 용출물의 PSA-Ang-2 콘주게이트 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 2:
Ang-2을 이동시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로, 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 200 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/- 5 분 동안 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)을 15 분 내에 T= +22 +/- 2 ℃에서 첨가하여 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 Ang-2을 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 상기 용출물의 산화된 Ang-2 함유 분획을 수집하고 콘주게이션 반응을 위해 사용한다.
아미노옥시-폴리시알산 (PSA-ONH2) 시약을 정제된 산화된 Ang-2을 함유하는 용출물에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 pH 6.0에서 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다 (단백질 농도: 1 mg/ml).
얻은 PSA- Ang-2 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 추가 정제했다
PSA-Ang-2 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 적절한 분획 분자량을 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용에 의해 제조된 콘주게이트를 PSA 함량 (레조르시놀 검정)을 측정하여 총 단백질, 생물학적 활성, 및 폴리시알화도의 측정을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 3:
안지오포이에틴-2 (Ang-2)을 반응 완충액 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)으로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 20 kD의 MW를 갖는 50 배 몰 과잉의 PSA 아미노옥시 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (10 mM 최종 농도) 및 NaIO4 (최종 농도: 400 μM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 순차적으로, 반응을 시스테인으로 60분 동안 실온에서 켄칭했다 (시스테인 농도: 10 mM). 그 다음 반응 혼합물의 전도도를 암모늄 아세테이트 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 8 M 암모늄 아세테이트, pH 6.9)을 함유하는 완충액을 첨가하여 조정하고 50 mM Hepes, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 0.01% Tween 80, pH 6.9로 미리 평형을 이룬 페닐 세파로오스 FF (GE Healthcare, Fairfield, CT)로 충전된 칼럼 상에 충전했다. 순차적으로, 콘주게이트를 50 mM Hepes, 5 mM 염화칼슘, pH 7.5으로 용출했다. 마지막으로, PSA Ang-2 함유 분획들을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 3을 하기와 같이 수행했다. 안지오포이에틴-2 (Ang-2)을 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 PSA 아미노옥시 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (10 mM 최종 농도) 및 NaIO4 (최종 농도: 400 μM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 순차적으로, 반응을 시스테인으로 60분 동안 실온에서 켄칭했다 (시스테인 농도: 10 mM) 및 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 PSA Ang-2 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 4:
Ang-2을 용해시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다.
순차적으로, 아미노옥시-폴리시알산 (PSA-ONH2) 시약을 이 Ang-2 용액에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 마지막으로 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 첨가하여 400 μM의 농도를 얻었다.
반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
얻은 PSA-Ang-2 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 PSA-Ang-2 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용으로 제조된 콘주케이트를 PSA 함량 (레조르시놀 검정)을 측정하여 총 단백질, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 생물학적 활성, 및 폴리시알화도의 측정을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
실시예 20
아미노옥시 -PSA 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 VEGF의 폴리시알릴화
방법 1:
개시 농도의 혈관 내피 성장 인자 (VEGF)을 반응 완충액 (예들 들면, 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 이 용액에, NaIO4을 첨가하여 200 μM의 최종 농도를 얻었다. 산화를 실온에서 30 분 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 수행했다. 그 다음 반응을 시스테인 (최종 농도: 10 mM)로 60분 동안 실온에서 켄칭했다.
그 다음 용액에 대해 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거하거나, 대안적으로, 완충액 A (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.0)으로 평형을 이룬 20 ml의 용적 (Merck EMD TMAE (M))을 갖는 IEX 칼럼을 수행했다. 칼럼을 5 CV 완충액 A로 평형을 이루었다. 상기 산화된 VEGF을 완충액 B (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, 1　M NaCl, pH 7.0)로 용출했다. VEGF 함유 분획들을 수집했다. 단백질 함량을 측정하고 (Coomassie, Bradford), 반응 완충액으로 1 mg/ml로 조정하고 pH 6.0로 0.5M NaOH의 적가로 조정했다.
20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (최종 농도: 10 mM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 과잉의 아미노옥시 시약을 HIC로 제거했다. 반응 혼합물의 전도도를 암모늄 아세테이트 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 8 M 암모늄 아세테이트, pH 6.9)을 함유하는 완충액을 첨가하여 조정하고 50 mM Hepes, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9로 미리 충전된 80 ml 페닐 세파로오스 FF (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 충전했다. 순차적으로, 콘주게이트를 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.5)로 용출했다. 마지막으로 PSA - VEGF 함유 분획들을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 1을 하기와 같이 수행했다. 혈관 내피 성장 인자 (VEGF)을 반응 완충액 (예들 들면, 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 이 용액에, NaIO4을 첨가하여 200 μM의 최종 농도를 얻었다. 산화를 실온에서 30 분 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 수행했다. 그 다음 반응을 시스테인 (최종 농도: 10 mM)로 60분 동안 실온에서 켄칭했다.
그 다음 용액을 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (최종 농도: 10 mM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 과잉의 아미노옥시 시약을 이온 교환 크로마토그래피로 제거했다. 용출물의 PSA - VEGF 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 2:
VEGF를 이동시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 200 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/- 5 분 동안 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)을 15 분 내에 T= +22 +/- 2 ℃에서 첨가하여 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 VEGF을 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 상기 용출물의 산화된 VEGF 분획을 수집하고 콘주게이션 반응을 위해 사용한다.
아미노옥시-폴리시알산 (PSA-ONH2) 시약을 정제된 산화된 VEGF을 함유하는 용출물에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 pH 6.0에서 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다 (단백질 농도: 1 mg/ml).
얻은 PSA-VEGF 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. PSA-VEGF 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 적절한 분획 분자량을 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용에 의해 제조된 콘주게이트를 PSA 함량 (레조르시놀 검정)을 측정하여 총 단백질, 생물학적 활성, 및 폴리시알화도의 측정을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 3:
혈관 내피 성장 인자 (VEGF)을 반응 완충액 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)으로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 PSA 아미노옥시 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (10 mM 최종 농도) 및 NaIO4 (최종 농도: 400 μM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 순차적으로, 반응을 시스테인으로 60분 동안 실온에서 켄칭했다 (시스테인 농도: 10 mM). 그 다음 반응 혼합물의 전도도를 암모늄 아세테이트 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 8 M 암모늄 아세테이트, pH 6.9)을 함유하는 완충액을 첨가하여 조정하고 50 mM Hepes, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 0.01% Tween 80, pH 6.9로 미리 평형을 이룬 페닐 세파로오스 FF (GE Healthcare, Fairfield, CT)로 충전된 칼럼 상에 충전했다. 순차적으로 콘주게이트를 50 mM Hepes, 5 mM 염화칼슘, pH 7.5으로 용출했다. 마지막으로, PSA-VEGF 함유 분획들을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 3을 하기와 같이 수행했다. 혈관 내피 성장 인자 (VEGF)을 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (10 mM 최종 농도) 및 NaIO4 (최종 농도: 400 μM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 순차적으로, 반응을 시스테인으로 60분 동안 실온에서 켄칭했다 (시스테인 농도: 10 mM) 및 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 PSA-VEGF 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 4:
VEGF을 용해시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다.
순차적으로, 아미노옥시-폴리시알산 (PSA-ONH2) 시약을 이 VEGF 용액 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 마지막으로 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 첨가하여 400 μM의 농도를 얻었다.
반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
얻은 VEGF-콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 PSA-VEGF 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용으로 제조된 콘주케이트를 PSA 함량 (레조르시놀 검정)을 측정하여 총 단백질, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 생물학적 활성, 및 폴리시알화도의 측정을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
실시예 21
아미노옥시 -PSA 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 EGF의 폴리시알릴화
방법 1:
개시 농도의 표피 성장 인자 (EGF)을 반응 완충액 (예들 들면, 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 이 용액에, NaIO4을 첨가하여 200 μM의 최종 농도를 얻었다. 산화를 실온에서 30 분 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 수행했다. 그 다음 반응을 시스테인 (최종 농도: 10 mM)으로 60분 동안 실온에서 켄칭했다.
그 다음 용액에 대해 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거하거나, 대안적으로, 완충액 A (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.0)으로 평형을 이룬 20 ml의 용적 (Merck EMD TMAE (M))을 갖는 IEX 칼럼을 수행했다. 칼럼을 5 CV 완충액 A로 평형을 이루었다. 상기 산화된 EGF를 완충액 B (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, 1M NaCl, pH 7.0)로 용출했다. EGF 함유 분획들을 수집했다. 단백질 함량을 측정하고 (Coomassie, Bradford), 반응 완충액으로 1 mg/ml로 조정하고 pH 6.0로 0.5M HCl의 적가로 조정했다.
20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (최종 농도: 10 mM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 과잉의 아미노옥시 시약을 HIC로 제거했다. 반응 혼합물의 전도도를 암모늄 아세테이트 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 8 M 암모늄 아세테이트, pH 6.9)을 함유하는 완충액을 첨가하여 조정하고 50 mM Hepes, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9로 미리 충전된 80 ml 페닐 세파로오스 FF (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 충전했다. 순차적으로, 콘주게이트를 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.5)로 용출했다. 마지막으로, PSA-EGF 함유 분획들을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 1을 하기와 같이 수행했다. 표피 성장 인자 (EGF)을 반응 완충액 (예들 들면, 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 이 용액에, NaIO4을 첨가하여 200 μM의 최종 농도를 얻었다. 산화를 실온에서 30 분 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 수행했다. 그 다음 반응을 시스테인 (최종 농도: 10 mM)으로 60분 동안 실온에서 켄칭했다.
그 다음 용액을 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (최종 농도: 10 mM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 과잉의 아미노옥시 시약을 이온 교환 크로마토그래피로 제거했다. 용출물의 PSA-EGF 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 2:
EGF를 이동시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로, 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 200 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/- 5 분 동안 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)을 15 분 내에 T= +22 +/- 2 ℃에서 첨가하여 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 EGF를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 상기 용출물의 산화된 EGF 함유 분획을 수집하고 콘주게이션 반응을 위해 사용한다.
아미노옥시-폴리시알산 (PSA-ONH2) 시약을 정제된 산화된 EGF를 함유하는 용출물에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 pH 6.0에서 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다 (단백질 농도: 1 mg/ml).
얻은 PSA-EGF 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. PSA-EGF 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 적절한 분획 분자량을 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용에 의해 제조된 콘주게이트를 PSA 함량 (레조르시놀 검정)을 측정하여 총 단백질, 생물학적 활성, 및 폴리시알화도의 측정을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 3:
표피 성장 인자 (EGF)을 반응 완충액 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)으로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 PSA 아미노옥시 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (10 mM 최종 농도) 및 NaIO4 (최종 농도: 400 μM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 순차적으로, 반응을 시스테인으로 60분 동안 실온에서 켄칭했다 (시스테인 농도: 10 mM). 그 다음 반응 혼합물의 전도도를 암모늄 아세테이트 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 8 M 암모늄 아세테이트, pH 6.9)을 함유하는 완충액을 첨가하여 조정하고 50 mM Hepes, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 0.01% Tween 80, pH 6.9로 미리 평형을 이룬 페닐 세파로오스 FF (GE Healthcare, Fairfield, CT)로 충전된 칼럼 상에 충전했다. 순차적으로 콘주게이트를 50 mM Hepes, 5 mM 염화칼슘, pH 7.5으로 용출했다. 마지막으로 PSA-EGF 함유 분획들을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 3을 하기와 같이 수행했다. 표피 성장 인자 (EGF)을 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 PSA 아미노옥시 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (10 mM 최종 농도) 및 NaIO4 (최종 농도: 400 μM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 순차적으로, 반응을 시스테인으로 60분 동안 실온에서 켄칭했다 (시스테인 농도: 10 mM) 및 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 콘주게이트 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 4:
EGF를 용해시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다.
순차적으로 아미노옥시-폴리시알산 (PSA-ONH2) 시약을 이 EGF-용액에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 마지막으로 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 첨가하여 400 μM의 농도를 얻었다.
반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
얻은 EGF-콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 PSA-EGF 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용으로 제조된 콘주케이트를 PSA 함량 (레조르시놀 검정)을 측정하여 총 단백질, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 생물학적 활성, 및 폴리시알화도의 측정을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
실시예 22
아미노옥시 -PSA 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 NGF의 폴리시알릴화
방법 1:
개시 농도의 신경 성장 인자 (NGF)을 반응 완충액 (예들 들면, 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 이 용액에, NaIO4을 첨가하여 200 μM의 최종 농도를 얻었다. 산화를 실온에서 30 분 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 수행했다. 그 다음 반응을 시스테인 (최종 농도: 10 mM)로 60분 동안 실온에서 켄칭했다.
그 다음 용액에 대해 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거하거나, 대안적으로, 완충액 A (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.0)으로 평형을 이룬 20 ml의 용적 (Merck EMD TMAE (M))을 갖는 IEX 칼럼을 수행했다. 칼럼을 5 CV 완충액 A로 평형을 이루었다. 상기 산화된 NGF를 완충액 B (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, 1M NaCl, pH 7.0)로 용출했다. NGF 함유 분획들을 수집했다. 단백질 함량을 측정하고 (Coomassie, Bradford), 반응 완충액으로 1 mg/ml로 조정하고 pH 6.0로 0.5M HCl의 적가로 조정했다.
20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (최종 농도: 10 mM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 과잉의 아미노옥시 시약을 HIC로 제거했다. 반응 혼합물의 전도도를 암모늄 아세테이트 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 8 M 암모늄 아세테이트, pH 6.9)을 함유하는 완충액을 첨가하여 조정하고 50 mM Hepes, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9로 미리 충전된 80 ml 페닐 세파로오스 FF (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 충전했다. 순차적으로, 콘주게이트를 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.5)로 용출했다. 마지막으로, PSA-NGF 함유 분획들을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 1을 하기와 같이 수행했다. 신경 성장 인자 (NGF)을 반응 완충액 (예들 들면, 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 이 용액에, NaIO4을 첨가하여 200 μM의 최종 농도를 얻었다. 산화를 실온에서 30 분 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 수행했다. 그 다음 반응을 시스테인 (최종 농도: 10 mM)로 60분 동안 실온에서 켄칭했다.
그 다음 용액을 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (최종 농도: 10 mM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 과잉의 아미노옥시 시약을 이온 교환 크로마토그래피로 제거했다. 용출물의 PSA-NGF 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 2:
NGF를 이동시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로, 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 200 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/- 5 분 동안 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)을 15 분 내에 T= +22 +/- 2 ℃에서 첨가하여 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 NGF를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 상기 용출물의 산화된 NGF 함유 분획을 수집하고 콘주게이션 반응을 위해 사용한다.
아미노옥시-폴리시알산 (PSA-ONH2) 시약을 정제된 산화된 NGF 함유 용출물에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 pH 6.0에서 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다 (단백질 농도: 1 mg/ml).
얻은 PSA-NGF 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. PSA-NGF 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 적절한 분획 분자량을 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용에 의해 제조된 콘주게이트를 PSA 함량 (레조르시놀 검정)을 측정하여 총 단백질, 생물학적 활성, 및 폴리시알화도의 측정을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 3:
신경 성장 인자 (NGF)을 반응 완충액 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)으로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (10 mM 최종 농도) 및 NaIO4 (최종 농도: 400 μM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 순차적으로, 반응을 시스테인으로 60분 동안 실온에서 켄칭했다 (시스테인 농도: 10 mM). 그 다음 반응 혼합물의 전도도를 암모늄 아세테이트 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 8 M 암모늄 아세테이트, pH 6.9)을 함유하는 완충액을 첨가하여 조정하고 50 mM Hepes, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 0.01 % Tween 80, pH 6.9로 미리 평형을 이룬 페닐 세파로오스 FF (GE Healthcare, Fairfield, CT)로 충전된 칼럼 상에 충전했다. 순차적으로 콘주게이트를 50 mM Hepes, 5 mM 염화칼슘, pH 7.5으로 용출했다. 마지막으로, PSA NGF 함유 분획들을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 3을 하기와 같이 수행했다. 신경 성장 인자 (NGF)을 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (10 mM 최종 농도) 및 NaIO4 (최종 농도: 400 μM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 순차적으로, 반응을 시스테인으로 60분 동안 실온에서 켄칭했다 (시스테인 농도: 10 mM) 및 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 정제했다. 그 다음 용출물의 PSA-NGF 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 4:
NGF을 용해시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다.
순차적으로, 아미노옥시-폴리시알산 (PSA-ONH2) 시약을 이 NGF-용액에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 마지막으로 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 첨가하여 400 μM의 농도를 얻었다.
반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
얻은 NGF-콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 PSA-NGF 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용으로 제조된 콘주케이트를 PSA 함량 (레조르시놀 검정)을 측정하여 총 단백질, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 생물학적 활성, 및 폴리시알화도의 측정을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
실시예 23
아미노옥시 -PSA 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 HGH의 폴리시알릴화
방법 1:
본원에서 기재된 바와 같이, 인간 성장호르몬 (HGH)의 아미노산 서열을 먼저 변형시켜 적어도 하나의 글라이코실화 부위에 통합시켰다. 정제 다음에, HGH를 당해분야에 공지된 방법들에 따라 시험관 내에서 글리코실화했다.
개시 농도의 인간 성장호르몬 (HGH)을 반응 완충액 (예들 들면, 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 이 용액에, NaIO4을 첨가하여 200 μM의 최종 농도를 얻었다. 산화를 실온에서 30 분 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 수행했다. 그 다음 반응을 시스테인 (최종 농도: 10 mM)로 60분 동안 실온에서 켄칭했다.
그 다음 용액에 대해 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거하거나, 대안적으로, 완충액 A (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.0)으로 평형을 이룬 20 ml의 용적 (Merck EMD TMAE (M))을 갖는 IEX 칼럼을 수행했다. 칼럼을 5 CV 완충액 A로 평형을 이루었다. 상기 산화된 HGH를 완충액 B로 용출했다 (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, 1 M NaCl, pH 7.0). HGH 함유 분획들을 수집했다. 단백질 함량을 측정하고 (Coomassie, Bradford), 반응 완충액으로 1 mg/ml로 조정하고 0.5 M HCl의 적가로 pH 6.0으로 조정했다.
20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (최종 농도: 10 mM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 과잉의 아미노옥시 시약을 HIC로 제거했다. 반응 혼합물의 전도도를 암모늄 아세테이트 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 8 M 암모늄 아세테이트, pH 6.9)을 함유하는 완충액을 첨가하여 조정하고 50 mM Hepes, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9로 미리 충전된 80 ml 페닐 세파로오스 FF (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 충전했다. 순차적으로 콘주게이트를 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.5)로 용출했다. 마지막으로, PSA-HGH 함유 분획들을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 1을 하기와 같이 수행했다. 본원에서 기재된 바와 같이, 인간 성장호르몬 (HGH)의 아미노산 서열을 먼저 변형시켜 적어도 하나의 글라이코실화 부위에 통합시켰다. 정제 다음에, HGH를 당해분야에 공지된 방법들에 따라 시험관 내에서 글리코실화했다. HGH를 반응 완충액 (예들 들면, 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 이 용액에, NaIO4을 첨가하여 200 μM의 최종 농도를 얻었다. 산화를 실온에서 30 분 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 수행했다. 그 다음 반응을 시스테인 (최종 농도: 10 mM)로 60분 동안 실온에서 켄칭했다.
그 다음 용액을 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (최종 농도: 10 mM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 과잉의 아미노옥시 시약을 이온 교환 크로마토그래피로 제거했다. 용출물의 PSA-HGH 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 2:
본원에서 기재된 바와 같이, 인간 성장호르몬 (HGH)의 아미노산 서열을 먼저 변형시켜 적어도 하나의 글라이코실화 부위에 통합시켰다. 정제 다음에, HGH를 당해분야에 공지된 방법들에 따라 시험관 내에서 글리코실화했다.
HGH를 이동시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로, 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 200 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/- 5 분 동안 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)을 15 분 내에 T= +22 +/- 2 ℃에서 첨가하여 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 HGH를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 상기 용출물의 산화된 HGH 함유 분획을 수집하고 콘주게이션 반응을 위해 사용한다.
아미노옥시-폴리시알산 (PSA-ONH2) 시약을 정제된 산화된 HGH 함유 용출물에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 pH 6.0에서 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다 (단백질 농도: 1 mg/ml).
얻은 PSA-HGH 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. PSA-HGH 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 적절한 분획 분자량을 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용에 의해 제조된 콘주게이트를 PSA 함량 (레조르시놀 검정)을 측정하여 총 단백질, 생물학적 활성, 및 폴리시알화도의 측정을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 3:
본원에서 기재된 바와 같이, 인간 성장호르몬 (HGH)의 아미노산 서열을 먼저 변형시켜 적어도 하나의 글라이코실화 부위에 통합시켰다. 정제 다음에, HGH를 당해분야에 공지된 방법들에 따라 시험관 내에서 글리코실화했다.
인간 성장호르몬 (HGH)을 반응 완충액 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)으로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 20 kD의 MW을 갖는 50 배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (10 mM 최종 농도) 및 NaIO4 (최종 농도: 400 μM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 순차적으로, 반응을 시스테인으로 60분 동안 실온에서 켄칭했다 (시스테인 농도: 10 mM). 그 다음 반응 혼합물의 전도도를 암모늄 아세테이트 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 8 M 암모늄 아세테이트, pH 6.9)을 함유하는 완충액을 첨가하여 조정하고 50 mM Hepes, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 0.01% Tween 80, pH 6.9로 미리 평형을 이룬 페닐 세파로오스 FF (GE Healthcare, Fairfield, CT)로 충전된 칼럼 상에 충전했다. 순차적으로 콘주게이트를 50 mM Hepes, 5 mM 염화칼슘, pH 7.5으로 용출했다. 마지막으로, PSA HGH 함유 분획들을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 3을 하기와 같이 수행했다. 본원에서 기재된 바와 같이, 인간 성장호르몬 (HGH)의 아미노산 서열을 먼저 변형시켜 적어도 하나의 글라이코실화 부위에 통합시켰다. 정제 다음에, HGH를 당해분야에 공지된 방법들에 따라 시험관 내에서 글리코실화했다. HGH를 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 20 kD의 MW을 갖는 50 배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (10 mM 최종 농도) 및 NaIO4 (최종 농도: 400 μM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 순차적으로, 반응을 시스테인으로 60분 동안 실온에서 켄칭했다 (시스테인 농도: 10 mM) 및 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 정제했다. 그 다음 PSA -HGH 함유 용출물의 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 4:
본원에서 기재된 바와 같이, 인간 성장호르몬 (HGH)의 아미노산 서열을 먼저 변형시켜 적어도 하나의 글라이코실화 부위에 통합시켰다. 정제 다음에, HGH를 당해분야에 공지된 방법들에 따라 시험관 내에서 글리코실화했다.
HGH을 용해시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다.
순차적으로, 아미노옥시-폴리시알산 (PSA-ONH2) 시약을 이 HGH-용액에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 마지막으로 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 첨가하여 400 μM의 농도를 얻었다.
반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
얻은 HGH-콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 PSA-HGH 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용으로 제조된 콘주케이트를 PSA 함량 (레조르시놀 검정)을 측정하여 총 단백질, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 생물학적 활성, 및 폴리시알화도의 측정을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
실시예 24
아미노옥시 -PSA 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 TNF -알파의 폴리시알릴화
개시 농도의 종양 괴사 인자-알파 (TNF-알파)을 반응 완충액 (예들 들면, 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 이 용액에, NaIO4을 첨가하여 200 μM의 최종 농도를 얻었다. 산화를 실온에서 30 분 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 수행했다. 그 다음 반응을 시스테인 (최종 농도: 10 mM)로 60분 동안 실온에서 켄칭했다.
그 다음 용액에 대해 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거하거나, 대안적으로, 완충액 A (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.0)으로 평형을 이룬 20 ml의 용적 (Merck EMD TMAE (M))을 갖는 IEX 칼럼을 수행했다. 칼럼을 5 CV 완충액 A로 평형을 이루었다. 상기 산화된 TNF-알파를 완충액 B (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, 1M NaCl, pH 7.0)로 용출했다. TNF-알파 함유 분획들을 수집했다. 단백질 함량을 측정하고 (Coomassie, Bradford), 반응 완충액으로 1 mg/ml로 조정하고 pH 6.0로 0.5M HCl의 적가로 조정했다.
20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (최종 농도: 10 mM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 과잉의 아미노옥시 시약을 HIC로 제거했다. 반응 혼합물의 전도도를 암모늄 아세테이트 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 8 M 암모늄 아세테이트, pH 6.9)을 함유하는 완충액을 첨가하여 조정하고 50 mM Hepes, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9로 미리 충전된 80 ml 페닐 세파로오스 FF (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 충전했다. 순차적으로, 콘주게이트를 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.5)로 용출했다. 마지막으로 PSA- TNF-알파 함유 분획들을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 1을 하기와 같이 수행했다. 종양 괴사 인자-알파 (TNF-알파)을 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)으로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 이 용액에, NaIO4을 첨가하여 200 μM의 최종 농도를 얻었다. 산화를 실온에서 30 분 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 수행했다. 그 다음 반응을 시스테인 (최종 농도: 10 mM)로 60분 동안 실온에서 켄칭했다.
그 다음 용액을 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다. 20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (최종 농도: 10 mM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 과잉의 아미노옥시 시약을 이온 교환 크로마토그래피로 제거했다. 용출물의 PSA-TNF-알파 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 2:
TNF-알파를 이동시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로, 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 200 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/- 5 분 동안 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)을 15 분 내에 T= +22 +/- 2 ℃에서 첨가하여 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 TNF-알파를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 상기 용출물의 산화된 TNF-알파 함유 분획을 수집하고 콘주게이션 반응을 위해 사용한다.
아미노옥시-폴리시알산 (PSA-ONH2) 시약을 정제된 산화된 TNF-알파 함유 용출물에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 pH 6.0에서 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다 (단백질 농도: 1 mg/ml).
얻은 PSA-TNF-알파 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. PSA-TNF-알파 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 적절한 분획 분자량을 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용에 의해 제조된 콘주게이트를 PSA 함량 (레조르시놀 검정)을 측정하여 총 단백질, 생물학적 활성, 및 폴리시알화도의 측정을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 3:
종양 괴사 인자-알파 (TNF-알파)을 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (10 mM 최종 농도) 및 NaIO4 (최종 농도: 400 μM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 순차적으로, 반응을 시스테인으로 60분 동안 실온에서 켄칭했다 (시스테인 농도: 10 mM). 그 다음 반응 혼합물의 전도도를 암모늄 아세테이트 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 8 M 암모늄 아세테이트, pH 6.9)을 함유하는 완충액을 첨가하여 조정하고 50 mM Hepes, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 0.01 % Tween 80, pH 6.9로 미리 평형을 이룬 페닐 세파로오스 FF (GE Healthcare, Fairfield, CT)로 충전된 칼럼 상에 충전했다. 순차적으로 콘주게이트를 50 mM Hepes, 5 mM 염화칼슘, pH 7.5으로 용출했다. 마지막으로 PSA-TNF-알파 함유 분획들을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 3을 하기와 같이 수행했다. 종양 괴사 인자-알파 (TNF-알파)을 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (10 mM 최종 농도) 및 NaIO4 (최종 농도: 400 μM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 순차적으로, 반응을 시스테인으로 60분 동안 실온에서 켄칭했다 (시스테인 농도: 10 mM).and 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 PSA-TNF-알파 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 4:
TNF-알파을 용해시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다.
순차적으로 아미노옥시-폴리시알산 (PSA-ONH2) 시약을 이 TNF-알파-용액에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 마지막으로 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 첨가하여 400 μM의 농도를 얻었다.
반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
얻은 TNF-알파 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 PSA-TNF-알파 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용으로 제조된 콘주케이트를 PSA 함량 (레조르시놀 검정)을 측정하여 총 단백질, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 생물학적 활성, 및 폴리시알화도의 측정을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
실시예 25
아미노옥시 -PSA 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 인슐린의 폴리시알릴화
방법 1:
본원에서 기재된 바와 같이, 인슐린의 아미노산 서열을 먼저 변형시켜 적어도 하나의 글라이코실화 부위에 통합시켰다. 정제 다음에, 인슐린을 시험관 내에서 당해분야에 공지된 방법들에 따라 글리코실화했다. 개시 농도의 인슐린을 반응 완충액 (예들 들면, 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 이 용액에, NaIO4을 첨가하여 200 μM의 최종 농도를 얻었다. 산화를 실온에서 30 분 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 수행했다. 그 다음 반응을 시스테인 (최종 농도: 10 mM)로 60분 동안 실온에서 켄칭했다.
그 다음 용액에 대해 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거하거나, 대안적으로, 완충액 A (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.0)으로 평형을 이룬 20 ml의 용적 (Merck EMD TMAE (M))을 갖는 IEX 칼럼을 수행했다. 칼럼을 5 CV 완충액 A로 평형을 이루었다. 상기 산화된 인슐린을 완충액 B로 용출했다 (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, 1 M NaCl, pH 7.0). 인슐린 함유 분획들을 수집했다. 단백질 함량을 측정하고 (Coomassie, Bradford), 반응 완충액으로 1 mg/ml로 조정하고 0.5 M HCl의 적가로 pH 6.0으로 조정했다.
20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (최종 농도: 10 mM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 과잉의 아미노옥시 시약을 HIC로 제거했다. 반응 혼합물의 전도도를 암모늄 아세테이트 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 8 M 암모늄 아세테이트, pH 6.9)을 함유하는 완충액을 첨가하여 조정하고 50 mM Hepes, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9로 미리 충전된 80 ml 페닐 세파로오스 FF (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 충전했다. 순차적으로 콘주게이트를 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.5)로 용출했다. 마지막으로 PSA-인슐린 함유 분획들을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 1을 하기와 같이 수행했다. 본원에서 기재된 바와 같이, 인슐린의 아미노산 서열을 먼저 변형시켜 적어도 하나의 글라이코실화 부위에 통합시켰다. 정제 다음에, 인슐린을 시험관 내에서 당해분야에 공지된 방법들에 따라 글리코실화했다. 인슐린을 반응 완충액 (예들 들면, 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 이 용액에, NaIO4을 첨가하여 200 μM의 최종 농도를 얻었다. 산화를 실온에서 30 분 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 수행했다. 그 다음 반응을 시스테인 (최종 농도: 10 mM)로 60분 동안 실온에서 켄칭했다.
그 다음 용액을 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (최종 농도: 10 mM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 과잉의 아미노옥시 시약을 이온 교환 크로마토그래피로 제거했다. 용출물의 PSA-인슐린 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 2:
본원에서 기재된 바와 같이, 인슐린의 아미노산 서열을 먼저 변형시켜 적어도 하나의 글라이코실화 부위에 통합시켰다. 정제 다음에, 인슐린을 시험관 내에서 당해분야에 공지된 방법들에 따라 글리코실화했다.
인슐린을 이동시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50mM Hepes, 350mM 나트륨 클로라이드, 5mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로, 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 200 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/- 5 분 동안 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)을 15 분 내에 T= +22 +/- 2 ℃에서 첨가하여 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 인슐린을 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 상기 용출물의 산화된 인슐린 함유 분획을 수집하고 콘주게이션 반응을 위해 사용한다.
아미노옥시-폴리시알산 (PSA-ONH2) 시약을 정제된 산화된 인슐린 함유 용출물에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 pH 6.0에서 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다 (단백질 농도: 1 mg/ml).
얻은 PSA-인슐린 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. PSA-인슐린 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 적절한 분획 분자량을 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용에 의해 제조된 콘주게이트를 PSA 함량 (레조르시놀 검정)을 측정하여 총 단백질, 생물학적 활성, 및 폴리시알화도의 측정을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 3:
본원에서 기재된 바와 같이, 인슐린의 아미노산 서열을 먼저 변형시켜 적어도 하나의 글라이코실화 부위에 통합시켰다. 정제 다음에, 인슐린을 시험관 내에서 당해분야에 공지된 방법들에 따라 글리코실화했다.
인슐린을 반응 완충액 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)으로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (10 mM 최종 농도) 및 NaIO4 (최종 농도: 400 μM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 순차적으로, 반응을 시스테인으로 60분 동안 실온에서 켄칭했다 (시스테인 농도: 10 mM). 그 다음 반응 혼합물의 전도도를 암모늄 아세테이트 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 8 M 암모늄 아세테이트, pH 6.9)을 함유하는 완충액을 첨가하여 조정하고 50 mM Hepes, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 0.01 % Tween 80, pH 6.9로 미리 평형을 이룬 페닐 세파로오스 FF (GE Healthcare, Fairfield, CT)로 충전된 칼럼 상에 충전했다. 순차적으로 콘주게이트를 50 mM Hepes, 5 mM 염화칼슘, pH 7.5으로 용출했다. 마지막으로, PSA-인슐린 함유 분획들을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 3을 하기와 같이 수행했다. 본원에서 기재된 바와 같이, 인슐린의 아미노산 서열을 먼저 변형시켜 적어도 하나의 글라이코실화 부위에 통합시켰다. 정제 다음에, 인슐린을 시험관 내에서 당해분야에 공지된 방법들에 따라 글리코실화했다.
인슐린을 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (10 mM 최종 농도) 및 NaIO4 (최종 농도: 400 μM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 순차적으로, 반응을 시스테인으로 60분 동안 실온에서 켄칭했다 (시스테인 농도: 10 mM) 및 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 PSA-인슐린 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 4:
본원에서 기재된 바와 같이, 인슐린의 아미노산 서열을 먼저 변형시켜 적어도 하나의 글라이코실화 부위에 통합시켰다. 정제 다음에, 인슐린을 시험관 내에서 당해분야에 공지된 방법들에 따라 글리코실화했다.
인슐린을 용해시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다.
순차적으로, 아미노옥시-폴리시알산 (PSA-ONH2) 시약을 이 인슐린-용액에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 마지막으로 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 첨가하여 400 μM의 농도를 얻었다.
반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
얻은 인슐린 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 PSA- 인슐린 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용으로 제조된 콘주케이트를 PSA 함량 (레조르시놀 검정)을 측정하여 총 단백질, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 생물학적 활성, 및 폴리시알화도의 측정을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
실시예 26
아미노옥시 -PSA 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 인터페론-알파의 폴리시알릴화
방법 1:
개시 농도의 인터페론-알파를 반응 완충액 (예들 들면, 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 이 용액에, NaIO4을 첨가하여 200 μM의 최종 농도를 얻었다. 산화를 실온에서 30 분 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 수행했다. 그 다음 반응을 시스테인 (최종 농도: 10 mM)로 60분 동안 실온에서 켄칭했다.
그 다음 용액에 대해 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거하거나, 대안적으로, 완충액 A (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.0)으로 평형을 이룬 20 ml의 용적 (Merck EMD TMAE (M))을 갖는 IEX 칼럼을 수행했다. 칼럼을 5 CV 완충액 A로 평형을 이루었다. 상기 산화된 인터페론-알파를 완충액 B (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, 1M NaCl, pH 7.0)로 용출했다. 인터페론-알파 함유 분획들을 수집했다. 단백질 함량을 측정하고 (Coomassie, Bradford), 반응 완충액으로 1 mg/ml로 조정하고 0.5 M HCl의 적가로 pH 6.0으로 조정했다.
20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (최종 농도: 10 mM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 과잉의 아미노옥시 시약을 HIC로 제거했다. 반응 혼합물의 전도도를 암모늄 아세테이트 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 8 M 암모늄 아세테이트, pH 6.9)을 함유하는 완충액을 첨가하여 조정하고 50 mM Hepes, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9로 미리 충전된 80 ml 페닐 세파로오스 FF (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 충전했다. 순차적으로, 콘주게이트를 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.5)로 용출했다. 마지막으로 PSA-인터페론-알파 함유 분획들을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 1을 하기와 같이 수행했다. 인터페론-알파를 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)으로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 이 용액에, NaIO4을 첨가하여 200 μM의 최종 농도를 얻었다. 산화를 실온에서 30 분 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 수행했다. 그 다음 반응을 시스테인 (최종 농도: 10 mM)로 60분 동안 실온에서 켄칭했다.
그 다음 용액을 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (최종 농도: 10 mM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 과잉의 아미노옥시 시약을 이온교환 크로마토그래피로 제거했다. 용출물의 PSA-인터페론-알파 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 2:
인터페론-알파를 이동시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로, 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 200 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/- 5 분 동안 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)을 15 분 내에 T= +22 +/- 2 ℃에서 첨가하여 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 인터페론-알파를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 상기 용출물의 산화된 인터페론-알파 함유 분획을 수집하고 콘주게이션 반응을 위해 사용한다.
아미노옥시-폴리시알산 (PSA-ONH2) 시약을 정제된 산화된 인터페론-감마를 함유하는 용출물에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 pH 6.0에서 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다 (단백질 농도: 1 mg/ml).
얻은 PSA-인터페론-알파 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. PSA-인터페론-알파 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 적절한 분획 분자량을 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
방법 3:
인터페론-알파를 반응 완충액 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)으로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 PSA 아미노옥시 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (10 mM 최종 농도) 및 NaIO4 (최종 농도: 400 μM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 순차적으로, 반응을 시스테인으로 60분 동안 실온에서 켄칭했다 (시스테인 농도: 10 mM). 그 다음 반응 혼합물의 전도도를 암모늄 아세테이트 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 8 M 암모늄 아세테이트, pH 6.9)을 함유하는 완충액을 첨가하여 조정하고 50 mM Hepes, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 0.01 % Tween 80, pH 6.9로 미리 평형을 이룬 페닐 세파로오스 FF (GE Healthcare, Fairfield, CT)로 충전된 칼럼 상에 충전했다. 순차적으로 콘주게이트를 50 mM Hepes, 5 mM 염화칼슘, pH 7.5으로 용출했다. 마지막으로, PSA-인터페론-알파 함유 분획들을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 3을 하기와 같이 수행했다. 인터페론-알파를 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (10 mM 최종 농도) 및 NaIO4 (최종 농도: 400 μM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 순차적으로, 반응을 시스테인으로 60분 동안 실온에서 켄칭했다 (시스테인 농도: 10 mM) 및 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 PSA-인터페론-알파 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 4:
인터페론-알파을 용해시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다.
순차적으로, 아미노옥시-폴리시알산 (PSA-ONH2) 시약을 이 인터페론-알파 용액에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 마지막으로, 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 첨가하여 400 μM의 농도를 얻었다.
반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
얻은 인터페론-알파 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 PSA-인터페론-알파 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용으로 제조된 콘주케이트를 PSA 함량 (레조르시놀 검정)을 측정하여 총 단백질, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 생물학적 활성, 및 폴리시알화도의 측정을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
실시예 27
아미노옥시 -PSA 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 인터페론-감마의 폴리시알릴화
방법 1:
10 mg 인터페론-감마를 5 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20 mM L-히스티딘, 150 mM NaCl)에서 용해시켰다. 그 다음 100 μl의 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 50 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 Vivaspin 15R 10 kD 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 순차적으로 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
산화된 인터페론-감마를 함유하는 체류물 (대략 7 ml)을 2 ml의 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음 20 kD의 MW을 갖는 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
유리 인터페론-감마을 양이온 교환 크로마토그래피 (CEC)로 제거했다. 반응 혼합물을 20 ml 완충액 A (50 mM Hepes, pH 6.5)으로 희석하고 완충액 A로 평형을 이룬 20 ml HiPrep SPFF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 로딩했다. 그 다음 칼럼을 완충액 B로 용출했다 (50 mM Hepes, 1 M NaCl, pH 6.5). 유리 인터페론-감마를 칼럼을 25 % 완충액 B로 그리고 콘주게이트를 50 % 완충액 B로 칼럼을 세정하여 용출했다. 콘주게이트 함유 분획의 전도도는 순차적으로 완충액 C (50 mM Hepes, 5 M NaCl, pH 6.9)으로 ~190 mS/cm로 상승되고 완충액 D (50 mM Hepes, 3 M NaCl, pH 6.9)으로 미리 평형을 이룬 20 ml HiPrep 부틸 FF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 로딩되었다. 유리 PSA-시약을 5 CV 완충액 D로 세정했다. 순차적으로, 콘주게이트를 100 % 완충액 E (50 mM Hepes, pH 6.9)로 용출했다. 콘주게이트 함유 분획들을, 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD, 밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 150 mM NaCl를 함유하는 히스티딘 완충액 (pH 6.9)에 대항하여 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다. PSA-인터페론-감마 콘주게이트에 대해 천연 인터페론-감마와 비교된 > 50 %의 비활성(specific activity)을 측정했다. 콘주게이트를 앞서 기재된 조건 하에서 Shodex KW 803 칼럼이 구비된 Agilent 1200 HPLC 시스템을 사용하는 크기 배제 HPLC로 추가로 분석적으로 특성화했다 (Kolarich et al, Transfusion 2006;46:1959-77). 이 제제는 유리 인터페론 감마를 함유하지 않는다는 것을 보여준다.
방법 2:
10 mg 인터페론-감마를 8 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20 mM L-히스티딘, 150 mM NaCl)에서 용해시켰다. 그 다음 200 μl의 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM) 및 2 ml의 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 첨가했다. 순차적으로 20 kD의 MW을 갖는 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 100 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
유리 인터페론 감마를 양이온 교환 크로마토그래피 (CEC)로 제거했다. 반응 혼합물을 20 ml 완충액 A (50 mM Hepes, pH 6.5)으로 희석하고 완충액 A로 평형을 이룬 20 ml HiPrep SPFF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 로딩했다. 그 다음 칼럼을 완충액 B로 용출했다 (50 mM Hepes, 1 M NaCl, pH 6.5). 유리 인터페론-감마를 칼럼을 25 % 완충액 B로 그리고 콘주게이트를 50 % 완충액 B로 칼럼을 세정하여 용출했다. 콘주게이트 함유 분획의 전도도는 순차적으로 완충액 C (50 mM Hepes, 5 M NaCl, pH 6.9)으로 ~190 mS/cm로 상승되고 완충액 D (50 mM Hepes, 3 M NaCl, pH 6.9)으로 미리 평형을 이룬 20 ml HiPrep 부틸 FF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 로딩되었다. 유리 PSA-시약을 5 CV 완충액 D로 세정했다. 순차적으로, 콘주게이트를 100 % 완충액 E (50 mM Hepes, pH 6.9)로 용출했다. 콘주게이트 함유 분획들을, 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD/밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 150 mM NaCl를 함유하는 히스티딘 완충액 (pH 6.9)에 대항하여 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다. PSA인터페론-감마 콘주게이트에 대해 천연 인터페론-감마와 비교된 > 50 %의 비활성을 측정했다. 콘주게이트를 앞서 기재된 조건 하에서 Shodex KW 803 칼럼이 구비된 Agilent 1200 HPLC 시스템을 사용하는 크기 배제 HPLC로 추가로 분석적으로 특성화했다 (Kolarich et al, Transfusion 2006;46:1959-77). 이 제제는 유리 인터페론-감마를 함유하지 않는다는 것을 보여준다.
방법 3:
10 mg 인터페론-감마를 8 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20 mM L-히스티딘, 150 mM NaCl)에서 용해시켰다. 그 다음 200 μl의 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM) 및 2 ml의 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 첨가했다. 순차적으로 20 kD의 MW을 갖는 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 100 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
유리 인터페론 감마를 양이온 교환 크로마토그래피 (CEC)로 제거했다. 반응 혼합물을 20 ml 완충액 A (50 mM Hepes, pH 6.5)으로 희석하고 완충액 A로 평형을 이룬 20 ml HiPrep SPFF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 로딩했다. 그 다음 칼럼을 완충액 B로 용출했다 (50 mM Hepes, 1 M NaCl, pH 6.5). 유리 인터페론-감마를 칼럼을 25 % 완충액 B로 그리고 콘주게이트를 50 % 완충액 B로 칼럼을 세정하여 용출했다. 콘주게이트 함유 분획의 전도도는 순차적으로 완충액 C (50 mM Hepes, 5 M NaCl, pH 6.9)으로 ~190 mS/cm로 상승되고 완충액 D (50 mM Hepes, 3 M NaCl, pH 6.9)으로 미리 평형을 이룬 20 ml HiPrep 부틸 FF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 로딩되었다. 유리 PSA-시약을 5 CV 완충액 D로 세정했다. 순차적으로 콘주게이트를 100% 완충액 E (50 mM Hepes, pH 6.9)로 용출했다. 콘주게이트 함유 분획들을, 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD/밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 150 mM NaCl를 함유하는 히스티딘 완충액 (pH 6.9)에 대항하여 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다. For PSA인터페론-감마 콘주게이트 천연 인터페론-감마와 비교된 > 50 %의 비활성을 측정했다. 콘주게이트를 앞서 기재된 조건 하에서 Shodex KW 803 칼럼이 구비된 Agilent 1200 HPLC 시스템을 사용하는 크기 배제 HPLC로 추가로 분석적으로 특성화했다 (Kolarich et al, Transfusion 2006;46:1959-77). 이 제제는 유리 인터페론-감마를 함유하지 않는다는 것을 보여준다.
방법 4:
인터페론-감마을 용해시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다.
순차적으로, 아미노옥시-폴리시알산 (PSA-ONH2) 시약을 이 인터페론-감마 용액에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 마지막으로, 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 첨가하여 400 μM의 농도를 얻었다.
반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
얻은 인터페론-감마 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 PSA-인터페론-감마 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용으로 제조된 콘주케이트를 PSA 함량 (레조르시놀 검정)을 측정하여 총 단백질, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 생물학적 활성, 및 폴리시알화도의 측정을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
실시예 28
아미노옥시 -PSA 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 G- CSF의 폴리시알릴화
방법 1:
개시 농도의 과립구-콜로니 자극 인자 (G-CSF)을 반응 완충액 (예들 들면, 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 이 용액에, NaIO4을 첨가하여 200 μM의 최종 농도를 얻었다. 산화를 실온에서 30 분 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 수행했다. 그 다음 반응을 시스테인 (최종 농도: 10 mM)로 60분 동안 실온에서 켄칭했다.
그 다음 용액에 대해 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거하거나, 대안적으로, 완충액 A (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.0)으로 평형을 이룬 20 ml의 용적 (Merck EMD TMAE (M))을 갖는 IEX 칼럼을 수행했다. 칼럼을 5 CV 완충액 A로 평형을 이루었다. 상기 산화된 G-CSF를 완충액 B로 용출했다 (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, 1　M NaCl, pH 7.0). G-CSF 함유 분획들을 수집했다. 단백질 함량을 측정하고 (Coomassie, Bradford), 반응 완충액으로 1 mg/ml로 조정하고 0.5 M HCl의 적가로 pH 6.0으로 조정했다.
20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (최종 농도: 10 mM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 과잉의 아미노옥시 시약을 HIC로 제거했다. 반응 혼합물의 전도도를 암모늄 아세테이트 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 8 M 암모늄 아세테이트, pH 6.9)을 함유하는 완충액을 첨가하여 조정하고 50 mM Hepes, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9로 미리 충전된 80 ml 페닐 세파로오스 FF (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 충전했다. 순차적으로, 콘주게이트를 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.5)로 용출했다. 마지막으로 PSA- G-CSF 함유 분획들을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 1을 하기와 같이 수행했다. 과립구-콜로니 자극 인자 (G-CSF)을 반응 완충액 (예들 들면, 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 이 용액에, NaIO4을 첨가하여 200 μM의 최종 농도를 얻었다. 산화를 실온에서 30 분 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 수행했다. 그 다음 반응을 시스테인 (최종 농도: 10 mM)로 60분 동안 실온에서 켄칭했다.
그 다음 용액을 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다. 20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (최종 농도: 10 mM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 과잉의 아미노옥시 시약을 이온 교환 크로마토그래피로 제거했다. 용출물의 PSA-G-CSF 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 2:
G-CSF를 이동시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로, 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 200 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/- 5 분 동안 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)을 15 분 내에 T= +22 +/- 2 ℃에서 첨가하여 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 G-CSF를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 용출물의 상기 산화된 G-CSF 분획을 수집하고 콘주게이션 반응을 위해 사용한다.
아미노옥시-폴리시알산 (PSA-ONH2) 시약을 50-배 몰 과잉으로 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 정제된 산화된 G-CSF을 함유하는 용출물에 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 pH 6.0에서 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다 (단백질 농도: 1 mg/ml).
얻은 PSA-G-CSF 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. PSA-G-CSF 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 적절한 분획 분자량을 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용에 의해 제조된 콘주게이트를 PSA 함량 (레조르시놀 검정)을 측정하여 총 단백질, 생물학적 활성, 및 폴리시알화도의 측정을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 3:
과립구-콜로니 자극 인자 (G-CSF)을 반응 완충액 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)으로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (10 mM 최종 농도) 및 NaIO4 (최종 농도: 400 μM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 순차적으로, 반응을 시스테인으로 60분 동안 실온에서 켄칭했다 (시스테인 농도: 10 mM). 그 다음 반응 혼합물의 전도도를 암모늄 아세테이트 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 8 M 암모늄 아세테이트, pH 6.9)을 함유하는 완충액을 첨가하여 조정하고 50 mM Hepes, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 0.01 % Tween 80, pH 6.9로 미리 평형을 이룬 페닐 세파로오스 FF (GE Healthcare, Fairfield, CT)로 충전된 칼럼 상에 충전했다. 순차적으로 콘주게이트를 50 mM Hepes, 5 mM 염화칼슘, pH 7.5으로 용출했다. 마지막으로, PSA-G-CSF 함유 분획들을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 3을 하기와 같이 수행했다. 과립구-콜로니 자극 인자 (G-CSF)을 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (10 mM 최종 농도) 및 NaIO4 (최종 농도: 400 μM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 순차적으로, 반응을 시스테인으로 60분 동안 실온에서 켄칭했다 (시스테인 농도: 10 mM) 및 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 PSA-G-CSF 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 4:
G-CSF를 용해시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다.
순차적으로, 아미노옥시-폴리시알산 (PSA-ONH2) 시약을 이 G-CSF 용액에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 마지막으로, 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 첨가하여 400 μM의 농도를 얻었다.
반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
얻은 G-CSF 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 PSA-G-CSF 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용으로 제조된 콘주케이트를 PSA 함량 (레조르시놀 검정)을 측정하여 총 단백질, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 생물학적 활성, 및 폴리시알화도의 측정을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
실시예 29
아미노옥시 -PSA 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 휴미라의 폴리시알릴화
방법 1:
개시 농도의 휴미라를 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)으로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 이 용액에, NaIO4을 첨가하여 200 μM의 최종 농도를 얻었다. 산화를 실온에서 30 분 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 수행했다. 그 다음 반응을 시스테인 (최종 농도: 10 mM)로 60분 동안 실온에서 켄칭했다.
그 다음 용액에 대해 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거하거나, 대안적으로, 완충액 A (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.0)으로 평형을 이룬 20 ml의 용적 (Merck EMD TMAE (M))을 갖는 IEX 칼럼을 수행했다. 칼럼을 5 CV 완충액 A로 평형을 이루었다. 상기 산화된 휴미라를 완충액 B (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, 1M NaCl, pH 7.0)로 용출했다. 휴미라 함유 분획들을 수집했다. 단백질 함량을 측정하고 (Coomassie, Bradford), 반응 완충액으로 1 mg/ml로 조정하고 pH 6.0로 0.5M HCl의 적가로 조정했다.
20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (최종 농도: 10 mM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 과잉의 아미노옥시 시약을 HIC로 제거했다. 반응 혼합물의 전도도를 암모늄 아세테이트 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 8 M 암모늄 아세테이트, pH 6.9)을 함유하는 완충액을 첨가하여 조정하고 50 mM Hepes, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9로 미리 충전된 80 ml 페닐 세파로오스 FF (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 충전했다. 순차적으로 콘주게이트를 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.5)로 용출했다. 마지막으로, PSA-휴미라 함유 분획들을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 1을 하기와 같이 수행했다. 휴미라를 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)으로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 이 용액에, NaIO4을 첨가하여 200 μM의 최종 농도를 얻었다. 산화를 실온에서 30 분 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 수행했다. 그 다음 반응을 시스테인 (최종 농도: 10 mM)로 60분 동안 실온에서 켄칭했다.
그 다음 용액을 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다. 20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (최종 농도: 10 mM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 과잉의 아미노옥시 시약을 이온 교환 크로마토그래피로 제거했다. 용출물의 PSA-휴미라 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 2:
휴미라를 이동시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로, 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 200 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/- 5 분 동안 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)을 15 분 내에 T= +22 +/- 2 ℃에서 첨가하여 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 휴미라를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 상기 산화된 휴미라 함유 용출물의 분획을 수집하고 콘주게이션 반응을 위해 사용한다.
아미노옥시-폴리시알산 (PSA-ONH2) 시약을 50-배 몰 과잉으로 정제된 산화된 휴미라를 함유하는 용출물에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 pH 6.0에서 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다 (단백질 농도: 1 mg/ml).
얻은 PSA-휴미라 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. PSA-휴미라 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 적절한 분획 분자량을 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용에 의해 제조된 콘주게이트를 PSA 함량 (레조르시놀 검정)을 측정하여 총 단백질, 생물학적 활성, 및 폴리시알화도의 측정을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 3:
휴미라를 반응 완충액 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)으로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (10 mM 최종 농도) 및 NaIO4 (최종 농도: 400 μM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 순차적으로, 반응을 시스테인으로 60분 동안 실온에서 켄칭했다 (시스테인 농도: 10 mM). 그 다음 반응 혼합물의 전도도를 암모늄 아세테이트 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 8 M 암모늄 아세테이트, pH 6.9)을 함유하는 완충액을 첨가하여 조정하고 50 mM Hepes, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 0.01 % Tween 80, pH 6.9로 미리 평형을 이룬 페닐 세파로오스 FF (GE Healthcare, Fairfield, CT)로 충전된 칼럼 상에 충전했다. 순차적으로 콘주게이트를 50 mM Hepes, 5 mM 염화칼슘, pH 7.5으로 용출했다. 마지막으로 PSA-휴미라 함유 분획들을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 3을 하기와 같이 수행했다. 휴미라를 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (10 mM 최종 농도) 및 NaIO4 (최종 농도: 400 μM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 순차적으로, 반응을 시스테인으로 60분 동안 실온에서 켄칭했다 (시스테인 농도: 10 mM) 및 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 PSA-휴미라 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 4:
휴미라를 용해시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다.
순차적으로, 아미노옥시-폴리시알산 (PSA-ONH2) 시약을 이 휴미라 용액에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 마지막으로 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 첨가하여 400 μM의 농도를 얻었다.
반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
얻은 휴미라-콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 PSA- 휴미라 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용으로 제조된 콘주케이트를 PSA 함량 (레조르시놀 검정)을 측정하여 총 단백질, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 생물학적 활성, 및 폴리시알화도의 측정을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
실시예 30
아미노옥시 -PSA 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 프롤리아의 폴리시알릴화
방법 1:
개시 농도의 프롤리아를 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)으로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 이 용액에, NaIO4을 첨가하여 200 μM의 최종 농도를 얻었다. 산화를 실온에서 30 분 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 수행했다. 그 다음 반응을 시스테인 (최종 농도: 10 mM)로 60분 동안 실온에서 켄칭했다.
그 다음 용액에 대해 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거하거나, 대안적으로, 완충액 A (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.0)으로 평형을 이룬 20 ml의 용적 (Merck EMD TMAE (M))을 갖는 IEX 칼럼을 수행했다. 칼럼을 5 CV 완충액 A로 평형을 이루었다. 상기 산화된 프롤리아를 완충액 B (20 mM Hepes, 5 mM CaCl2, 1M NaCl, pH 7.0)로 용출했다. 프롤리아 함유 분획들을 수집했다. 단백질 함량을 측정하고 (Coomassie, Bradford), 반응 완충액으로 1 mg/ml로 조정하고 0.5 M HCl의 적가로 pH 6.0으로 조정했다.
20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (최종 농도: 10 mM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 과잉의 아미노옥시 시약을 HIC로 제거했다. 반응 혼합물의 전도도를 암모늄 아세테이트 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 8 M 암모늄 아세테이트, pH 6.9)을 함유하는 완충액을 첨가하여 조정하고 50 mM Hepes, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.9로 미리 충전된 80 ml 페닐 세파로오스 FF (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 충전했다. 순차적으로 콘주게이트를 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.5)로 용출했다. 마지막으로, PSA-프롤리아 함유 분획들을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 1을 하기와 같이 수행했다. 10 mg 프롤리아를 5 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20 mM L-히스티딘, 150 mM NaCl)에서 용해시켰다. 그 다음 100 μl의 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 50 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 Vivaspin 15R 10 kD 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 순차적으로 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
산화된 프롤리아 체류물 (대략 7 ml)을 2 ml의 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음 20 kD의 MW을 갖는 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
유리 프롤리아를 양이온 교환 크로마토그래피 (CEC)로 제거했다. 반응 혼합물을 20 ml 완충액 A (50 mM Hepes, pH 6.5)으로 희석하고 완충액 A로 평형을 이룬 20 ml HiPrep SPFF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 로딩했다. 그 다음 칼럼을 완충액 B로 용출했다 (50 mM Hepes, 1 M NaCl, pH 6.5). 유리 프롤리아를 칼럼을 25 % 완충액 B로 그리고 콘주게이트를 50 % 완충액 B로 칼럼을 세정하여 용출했다. 콘주게이트 함유 분획의 전도도는 순차적으로 완충액 C (50 mM Hepes, 5 M NaCl, pH 6.9)으로 ~190 mS/cm로 상승되고 완충액 D (50 mM Hepes, 3 M NaCl, pH 6.9)으로 미리 평형을 이룬 20 ml HiPrep 부틸 FF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 로딩되었다. 유리 PSA-시약을 5 CV 완충액 D로 세정했다. 순차적으로, 콘주게이트를 100 % 완충액 E (50 mM Hepes, pH 6.9)로 용출했다. 콘주게이트 함유 분획들을, 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD, 밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 150 mM NaCl를 함유하는 히스티딘 완충액 (pH 6.9)에 대항하여 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다. PSA-프롤리아 콘주게이트에 대해 천연 프롤리아와 비교한 > 50 %의 비활성이 측정된다. 콘주게이트를 앞서 기재된 조건 하에서 Shodex KW 803 칼럼이 구비된 Agilent 1200 HPLC 시스템을 사용하는 크기 배제 HPLC로 추가로 분석적으로 특성화했다 (Kolarich et al, Transfusion 2006;46:1959-77). 이 제제는 유리 프롤리아를 함유하지 않는다는 것을 보여준다.
방법 2:
프롤리아를 이동시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로, 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 200 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/- 5 분 동안 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)을 15 분 내에 T= +22 +/- 2 ℃에서 첨가하여 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 프롤리아를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 상기 용출물의 산화된 프롤리아 함유 분획을 수집하고 콘주게이션 반응을 위해 사용한다.
아미노옥시-폴리시알산 (PSA-ONH2) 시약을 정제된 산화된 프롤리아를 함유하는 용출물에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 pH 6.0에서 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다 (단백질 농도: 1 mg/ml).
얻은 프롤리아 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 프롤리아 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 적절한 분획 분자량을 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용에 의해 제조된 콘주게이트를 PSA 함량 (레조르시놀 검정)을 측정하여 총 단백질, 생물학적 활성, 및 폴리시알화도의 측정을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 3:
프롤리아를 반응 완충액 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)으로 이동시키고 희석하여 1 mg/ml의 단백질 농도를 얻었다. 20 kD의 MW을 갖는 50-배 몰 과잉의 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨) 그 다음 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘 (10 mM 최종 농도) 및 NaIO4 (최종 농도: 400 μM)을 첨가했다. 커플링 반응을 2시간 동안 암흑에서 완만한 진탕 하에서 실온에서 수행했다. 순차적으로, 반응을 시스테인으로 60분 동안 실온에서 켄칭했다 (시스테인 농도: 10 mM). 그 다음 반응 혼합물의 전도도를 암모늄 아세테이트 (50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 8 M 암모늄 아세테이트, pH 6.9)을 함유하는 완충액을 첨가하여 조정하고 50 mM Hepes, 2.5 M 암모늄 아세테이트, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, 0.01 % Tween 80, pH 6.9로 미리 평형을 이룬 페닐 세파로오스 FF (GE Healthcare, Fairfield, CT)로 충전된 칼럼 상에 충전했다. 순차적으로 콘주게이트를 50 mM Hepes, 5 mM 염화칼슘, pH 7.5으로 용출했다. 마지막으로 PSA 프롤리아 함유 분획들을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)의 사용으로 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 3을 하기와 같이 수행했다. 10 mg 프롤리아를 8 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20 mM L-히스티딘, 150 mM NaCl)에서 용해시켰다. 그 다음 200 μl의 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM) 및 2 ml의 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 첨가했다. 순차적으로 20 kD의 MW을 갖는 아미노옥시-PSA 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 5 배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 100 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
유리 프롤리아를 양이온 교환 크로마토그래피 (CEC)로 제거했다. 반응 혼합물을 20 ml 완충액 A (50 mM Hepes, pH 6.5)으로 희석하고 완충액 A로 평형을 이룬 20 ml HiPrep SPFF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 로딩했다. 그 다음 칼럼을 완충액 B로 용출했다 (50 mM Hepes, 1 M NaCl, pH 6.5). 유리 프롤리아를 칼럼을 25 % 완충액 B로 및 콘주게이트를 5 0% 완충액 B에서 세정하여 용출했다. 콘주게이트 함유 분획의 전도도는 순차적으로 완충액 C (50 mM Hepes, 5 M NaCl, pH 6.9)으로 ~190 mS/cm로 상승되고 완충액 D (50 mM Hepes, 3 M NaCl, pH 6.9)으로 미리 평형을 이룬 20 ml HiPrep 부틸 FF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 로딩되었다. 유리 PSA-시약을 5 CV 완충액 D로 세정했다. 순차적으로 콘주게이트를 100% 완충액 E (50 mM Hepes, pH 6.9)로 용출했다. 콘주게이트 함유 분획들을, 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD/밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 150 mM NaCl를 함유하는 히스티딘 완충액 (pH 6.9)에 대항하여 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다. PSA-프롤리아 콘주게이트에 대해 천연 프롤리아와 비교한 > 50 %의 비활성이 측정된다. 콘주게이트를 앞서 기재된 조건 하에서 Shodex KW 803 칼럼이 구비된 Agilent 1200 HPLC 시스템을 사용하는 크기 배제 HPLC로 추가로 분석적으로 특성화했다 (Kolarich et al, Transfusion 2006;46:1959-77). 이 제제는 유리 프롤리아를 함유하지 않는다는 것을 보여준다.
방법 4:
프롤리아를 용해시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)로 이동시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다.
순차적으로 아미노옥시-폴리시알산 (PSA-ONH2) 시약을 이 프롤리아 -용액에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 마지막으로 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 첨가하여 400 μM의 농도를 얻었다.
반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
얻은 프롤리아 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 PSA- 프롤리아 함유 분획을 수집하고 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용으로 제조된 콘주케이트를 PSA 함량 (레조르시놀 검정)을 측정하여 총 단백질, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 생물학적 활성, 및 폴리시알화도의 측정을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
실시예 31
다른 치료 단백질의 폴리시알릴화
본원에서 기재된 바와 같은 대안적인 친핵성 촉매 유사 m-톨루이딘 또는 o-아미노벤조산의 존재에서 수행된 폴리시알릴화 반응은 다른 치료 단백질. 예를 들면, 본 발명의 다양한 측면들에서, PSA 아미노옥시 또는 PEG 아미노옥시 시약과의 본원에서 기재된 상기 폴리시알릴화 또는 페길화 반응은 치료 단백질 예컨대 본원에서 기재된 단백질과 함께 반복된다.
실시예 32
아미노옥시 -PEG 시약 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 EPO의 페길화
방법 1:
에리트로포이에틴 (EPO)을 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). EPO를 7.0 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20　mM L-히스티딘, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2)에서 용해시켰다. 그 다음 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 7.5 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 순차적으로 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
그 다음 산화된 EPO를 함유하는 체류물을 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음, 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
마지막으로, PEG-EPO 콘주게이트를 (예들 들면 Q 세파로오스 FF상) 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 예를 들면, 1.5 mg 단백질/ml 겔을 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)으로 평형을 이룬 칼럼 상에 로딩했다. 콘주게이트를 5 mM CaCl2 및 500 mM 나트륨 클로라이드를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 용출하고, 그 다음 적절한 MW 분획 막을 사용하는 UF/DF을 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 1을 하기와 같이 수행했다. EPO를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 10 mg EPO를 5 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20 mM L-히스티딘, 150 mM NaCl)에서 용해시켰다. 그 다음 100 μl의 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 50 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 Vivaspin 15R 10 kD 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 순차적으로 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
산화된 EPO을 함유하는 체류물 (대략 7 ml)를 2 ml의 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
마지막으로, PEG-EPO 콘주게이트를 Q 세파로오스 FF상 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 반응 혼합물을 20 ml 완충액 A (50 mM Hepes, pH 7.5)으로 희석하고 완충액 A로 평형을 이룬 20 ml HiPrep QFF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 로딩했다. 그 다음 칼럼을 완충액 B (50 mM Hepes, 1 M NaCl, pH 7.5)로 용출했다. 유리 EPO를 칼럼을 25 % 완충액 B로 그리고 콘주게이트를 50 % 완충액 B로 칼럼을 세정하여 용출했다. 콘주게이트 함유 분획들을, 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD/밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 150 mM NaCl을 함유하는 히스티딘 완충액 (pH 7.2)에 대항하여 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다. PEG-EPO 콘주게이트에 대해 천연 EPO와 비교한 > 50 %의 비활성을 측정했다. 콘주게이트를 앞서 기재된 조건 하에서 Shodex KW 803 칼럼이 구비된 Agilent 1200 HPLC 시스템을 사용하는 크기 배제 HPLC로 추가로 분석적으로 특성화했다 (Kolarich et al, Transfusion 2006;46:1959-77). 이 제제는 유리 EPO를 함유하지 않는다는 것을 보여준다.
방법 2:
EPO를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본).
EPO를 이동시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 200 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/- 5 분 동안 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)을 15 분 내에 T= +22 +/- 2 ℃에서 첨가하여 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 EPO를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 상기 용출물의 산화된 EPO 함유 분획을 수집하고 콘주게이션 반응을 위해 사용한다.
20 kD의 MW 시약을 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 정제된 산화된 EPO를 함유하는 용출물에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다.
얻은 PEG-EPO 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. PEG-EPO 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 적절한 분획 분자량을 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용으로 제조한 콘주게이트를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 3:
EPO를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). EPO를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시키고 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (10 mM), 및 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합했다. 순차적으로, 아미노옥시 시약을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 8 μl의 수성 시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
마지막으로, PEG-EPO 콘주게이트를 Q 세파로오스 FF상 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 1.5 mg 단백질/ml 겔을 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 미리 평형을 이룬 칼섬 상에 로딩했다. 콘주게이트를 5 mM CaCl2 및 500 mM 나트륨 클로라이드를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 용출하고, 그 다음 막을 사용하는 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 3을 하기와 같이 수행했다. EPO를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 10 mg EPO를 ~8 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20 mM L-히스티딘, 150 mM NaCl)에서 용해시켰다. 그 다음 200 μl의 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM) 및 2 ml의 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 첨가했다. 순차적으로, 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 100 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
마지막으로, PEG-EPO 콘주게이트를 Q 세파로오스 FF상 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 반응 혼합물을 20 ml 완충액 A (50 mM Hepes, pH 7.5)으로 희석하고 완충액 A로 평형을 이룬 20 ml HiPrep QFF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 로딩했다. 그 다음 칼럼을 완충액 B (50 mM Hepes, 1 M NaCl, pH 7.5)로 용출했다. 유리 EPO를 칼럼을 25 % 완충액 B로 그리고 콘주게이트를 50 % 완충액 B로 칼럼을 세정하여 용출했다. 콘주게이트 함유 분획들을, 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD/밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 150 mM NaCl을 함유하는 히스티딘 완충액 (pH 7.2)에 대항하여 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다. PEG-EPO 콘주게이트에 대해 천연 EPO와 비교한 > 50 %의 비활성을 측정했다. 콘주게이트를 앞서 기재된 조건 하에서 Shodex KW 803 칼럼이 구비된 Agilent 1200 HPLC 시스템을 사용하는 크기 배제 HPLC로 추가로 분석적으로 특성화했다 (Kolarich et al, Transfusion 2006;46:1959-77). 이 제제는 유리 EPO를 함유하지 않는다는 것을 보여준다.
방법 4:
EPO를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 초기 농도 또는 중량의 EPO를 이동시키거나 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 2 mg EPO/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 순차적으로 5 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 15 분 내에 첨가하여 100 μM의 최종 농도를 얻고, 그 다음 50 mM 수성 m-톨루이딘 용액의 첨가로 10 mM의 최종 농도를 30 분의 지속시간 내에 얻었다. 그 다음 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. pH를 6.0으로 보정한 후 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 1 M 수성 L-시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다.
PEG-EPO 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피 (IEC)로 정제했다. 용출물의 콘주게이트 함유 분획을 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD/밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.5)에 대항하여 수행했다.
제제를, 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford 및 BCA 절차) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
실시예 33
아미노옥시 -PEG 시약 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 Ang -2의 페길화
방법 1:
Ang-2을 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). Ang-2을 7.0 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20mM L-히스티딘, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2)에서 용해시켰다. 그 다음 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 7.5 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 순차적으로 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
그 다음 산화된 Ang-2를 함유하는 체류물을 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음, 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
마지막으로, PEG-Ang-2 콘주게이트를 (예들 들면 Q 세파로오스 FF상) 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 예를 들면, 1.5 mg 단백질/ml 겔을 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)으로 평형을 이룬 칼럼 상에 로딩했다. 콘주게이트를 5 mM CaCl2 및 500 mM 나트륨 클로라이드를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 용출하고, 그 다음 적절한 MW 분획 막을 사용하는 UF/DF을 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 1을 하기와 같이 수행했다. Ang-2을 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). Ang-2을 7.0 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20mM L-히스티딘, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2)에서 용해시켰다. 그 다음 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 7.5 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 순차적으로 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
그 다음 산화된 Ang-2을 함유하는 체류물을 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음, 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
마지막으로, PEG-Ang-2 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 콘주게이트 함유 분획을 수집하고 그 다음 적절한 MW 분획 막을 사용하는 UF/DF을 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 2:
Ang-2을 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본).
Ang-2을 이동시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50mM Hepes, 350mM 나트륨 클로라이드, 5mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 200 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/- 5 분 동안 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)을 15 분 내에 T= +22 +/- 2 ℃에서 첨가하여 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 Ang-2을 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 상기 용출물의 산화된 Ang-2 함유 분획을 수집하고 콘주게이션 반응을 위해 사용한다.
20 kD의 MW 시약을 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 정제된 산화된 Ang-2을 함유하는 용출물에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다.
얻은 PEG-Ang-2 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. PEG-Ang-2 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 적절한 분획 분자량을 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용으로 제조한 콘주게이트를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 3:
Ang-2을 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). Ang-2을 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시키고 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (10 mM), 및 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합했다. 순차적으로 아미노옥시 시약을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 8 μl의 수성 시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
마지막으로, PEG-Ang-2 콘주게이트를 Q 세파로오스 FF상 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 1.5 mg 단백질/ml 겔을 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 미리 평형을 이룬 칼섬 상에 로딩했다. 콘주게이트를 5 mM CaCl2 및 500 mM 나트륨 클로라이드를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 용출하고, 그 다음 막을 사용하는 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 3을 하기와 같이 수행했다. Ang-2을 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). Ang-2을 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시키고 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (10 mM), 및 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합했다. 순차적으로 아미노옥시 시약을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 8 μl의 수성 시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
마지막으로 PEG-Ang-2 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 콘주케이트 함유 분획을 수집하고 그 다음 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 4:
Ang-2을 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 초기 농도 또는 중량의 Ang-2을 이동시키거나 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 2 mg Ang-2/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 순차적으로 5 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 15 분 내에 첨가하여 100 μM의 최종 농도를 얻고, 그 다음 50 mM 수성 m-톨루이딘 용액의 첨가로 10 mM의 최종 농도를 30 분의 지속시간 내에 얻었다. 그 다음 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. pH를 6.0으로 보정한 후 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 1 M 수성 L-시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다.
PEG-Ang-2 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피 (IEC)로 정제했다. 용출물의 콘주게이트 함유 분획을 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD/밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.5)에 대항하여 수행했다.
제제를, 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford 및 BCA 절차) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
순차적으로, 유리 Ang-2을 이온 교환 크로마토그래피 (IEC)로 제거했다. 용출물의 콘주게이트 함유 분획을 UF/DF로 농축했다.
실시예 34
아미노옥시 -PEG 시약 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 VEGF의 페길화
방법 1:
VEGF를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). VEGF를 7.0 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20mM L-히스티딘, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2)에서 용해시켰다. 그 다음 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 7.5 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 순차적으로 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
그 다음 산화된 VEGF를 함유하는 체류물을 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음, 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
마지막으로, PEG-VEGF 콘주게이트를 (예들 들면, Q 세파로오스 FF상) 이온교환 크로마토그래피 정제했다. 예를 들면, 1.5 mg 단백질/ml 겔을 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)으로 평형을 이룬 칼럼 상에 로딩했다. 콘주게이트를 5 mM CaCl2 및 500 mM 나트륨 클로라이드를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 용출하고, 그 다음 적절한 MW 분획 막을 사용하는 UF/DF을 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 1을 하기와 같이 수행했다. VEGF를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). VEGF를 7.0 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20mM L-히스티딘, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2)에서 용해시켰다. 그 다음 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 7.5 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 순차적으로 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
그 다음 산화된 VEGF를 함유하는 체류물을 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음, 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
마지막으로, PEG-VEGF 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 콘주게이트 함유 분획을 수집하고 그 다음 적절한 MW 분획 막을 사용하는 UF/DF을 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 2:
VEGF를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본).VEGF를 이동시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로, 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 200 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/- 5 분 동안 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)을 15 분 내에 T= +22 +/- 2 ℃에서 첨가하여 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 VEGF을 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 상기 용출물의 산화된 VEGF 분획을 수집하고 콘주게이션 반응을 위해 사용한다.
20 kD의 MW 시약을 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 정제된 산화된 VEGF을 함유하는 용출물에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다.
얻은 PEG-VEGF 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. PEG-VEGF 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 적절한 분획 분자량을 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용으로 제조한 콘주게이트를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 3:
VEGF를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). VEGF를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시키고 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (10 mM), 및 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합했다. 순차적으로, 아미노옥시 시약을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 8 μl의 수성 시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
마지막으로, PEG-VEGF 콘주게이트를 Q 세파로오스 FF상 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 1.5 mg 단백질/ml 겔을 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 미리 평형을 이룬 칼섬 상에 로딩했다. 콘주게이트를 5 mM CaCl2 및 500 mM 나트륨 클로라이드를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 용출하고, 그 다음 막을 사용하는 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 3을 하기와 같이 수행했다. VEGF를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). VEGF를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시키고 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (10 mM), 및 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합했다. 순차적으로, 아미노옥시 시약을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 8 μl의 수성 시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
마지막으로, PEG-VEGF 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 콘주게이트 콘주게이트 분획을 수집하고 그 다음 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 4:
VEGF를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 초기 농도 또는 중량의 VEGF를 이동시키거나 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 2 mg VEGF/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 순차적으로, 5 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 15 분 내에 첨가하여 100 μM의 최종 농도를 얻고, 그 다음 50 mM 수성 m-톨루이딘 용액의 첨가로 10 mM의 최종 농도를 30 분의 지속시간 내에 얻었다. 그 다음 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. pH를 6.0으로 보정한 후 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 1 M 수성 L-시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다.
PEG-VEGF 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피 (IEC)로 정제했다. 용출물의 콘주게이트 함유 분획을 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD/밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.5)에 대항하여 수행했다.
제제를, 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford 및 BCA 절차) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
실시예 35
아미노옥시 -PEG 시약 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 EGF의 페길화
방법 1:
EGF를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). EGF를 7.0 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20mM L-히스티딘, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2)에서 용해시켰다. 그 다음 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 7.5 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 순차적으로 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
그 다음 산화된 EGF를 함유하는 체류물을 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음, 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
마지막으로, PEG-EGF 콘주게이트를 (예들 들면, Q 세파로오스 FF상) 이온교환 크로마토그래피 정제했다. 예를 들면, 1.5 mg 단백질/ml 겔을 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)으로 평형을 이룬 칼럼 상에 로딩했다. 콘주게이트를 5 mM CaCl2 및 500 mM 나트륨 클로라이드를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 용출하고, 그 다음 적절한 MW 분획 막을 사용하는 UF/DF을 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 1을 하기와 같이 수행했다. EGF를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). EGF를 7.0 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20mM L-히스티딘, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2)에서 용해시켰다. 그 다음 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 7.5 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 순차적으로 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
그 다음 산화된 EGF를 함유하는 체류물을 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음, 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
마지막으로, PEG-EGF 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 콘주게이트 함유 분획을 수집하고 그 다음 적절한 MW 분획 막을 사용하는 UF/DF을 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 2:
EGF를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). EGF를 이동시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로, 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 200 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/- 5 분 동안 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)을 15 분 내에 T= +22 +/- 2 ℃에서 첨가하여 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 EGF를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 상기 용출물의 산화된 EGF 함유 분획을 수집하고 콘주게이션 반응을 위해 사용한다.
20 kD의 MW 시약을 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 정제된 산화된 NGF 함유 용출물에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다.
얻은 PEG-EGF 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. PEG-EGF 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 적절한 분획 분자량을 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용으로 제조한 콘주게이트를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 3:
EGF를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). EGF를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시키고 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (10 mM), 및 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합했다. 순차적으로 아미노옥시 시약을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 8 μl의 수성 시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
마지막으로, PEG-EGF 콘주게이트를 Q-세파로오스 FF상 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 1.5 mg 단백질/ml 겔을 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 미리 평형을 이룬 칼섬 상에 로딩했다. 콘주게이트를 5 mM CaCl2 및 500 mM 나트륨 클로라이드를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 용출하고, 그 다음 막을 사용하는 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 3을 하기와 같이 수행했다. EGF를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). EGF를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시키고 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (10 mM), 및 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합했다. 순차적으로 아미노옥시 시약을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 8 μl의 수성 시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
마지막으로, PEG-EGF 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 콘주게이트 함유 분획을 수집하고 그 다음 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 4:
EGF를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 초기 농도 또는 중량의 EGF를 이동시키거나 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 2 mg EGF/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 순차적으로 5 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 15 분 내에 첨가하여 100 μM의 최종 농도를 얻고, 그 다음 50 mM 수성 m-톨루이딘 용액의 첨가로 10 mM의 최종 농도를 30 분의 지속시간 내에 얻었다. 그 다음 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. pH를 6.0으로 보정한 후 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 1 M 수성 L-시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다.
PEG-EGF 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피 (IEC)로 정제했다. 용출물의 콘주게이트 함유 분획을 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD/밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.5)에 대항하여 수행했다.
제제를, 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford 및 BCA 절차) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
실시예 36
아미노옥시 -PEG 시약 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 NGF의 페길화
방법 1:
NGF를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). NGF를 7.0 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20mM L-히스티딘, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2)에서 용해시켰다. 그 다음 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 7.5 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 순차적으로 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
그 다음 산화된 NGF를 함유하는 체류물을 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음, 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
마지막으로, PEG-NGF 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피 (예들 들면, Q-세파로오스 FF 상)로 정제했다. 예를 들면, 1.5 mg 단백질/ml 겔을 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)으로 평형을 이룬 칼럼 상에 로딩했다. 콘주게이트를 5 mM CaCl2 및 500 mM 나트륨 클로라이드를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 용출하고, 그 다음 적절한 MW 분획 막을 사용하는 UF/DF을 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 1을 하기와 같이 수행했다. NGF를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). NGF를 7.0 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20mM L-히스티딘, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2)에서 용해시켰다. 그 다음 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 7.5 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 순차적으로 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
그 다음 산화된 NGF를 함유하는 체류물을 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음, 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
마지막으로, PEG-NGF 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피 정제했다 (용출물의 콘주게이트 함유 분획을 수집하고 그 다음 적절한 MW 분획 막을 사용하는 UF/DF을 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 2:
NGF를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). NGF를 이동시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 200 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/- 5 분 동안 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)을 15 분 내에 T= +22 +/- 2 ℃에서 첨가하여 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 NGF를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 상기 용출물의 산화된 NGF 함유 분획을 수집하고 콘주게이션 반응을 위해 사용한다.
20 kD의 MW 시약을 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 정제된 산화된 NGF 함유 용출물에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다.
얻은 PEG-NGF 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. PEG-NGF 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 적절한 분획 분자량을 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용으로 제조한 콘주게이트를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 3:
NGF를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). NGF를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시키고 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (10 mM), 및 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합했다. 순차적으로 아미노옥시 시약을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 8 μl의 수성 시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
마지막으로, PEG-NGF 콘주게이트를 Q 세파로오스 FF상 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 1.5 mg 단백질/ml 겔을 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 미리 평형을 이룬 칼섬 상에 로딩했다. 콘주게이트를 5 mM CaCl2 및 500 mM 나트륨 클로라이드를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 용출하고, 그 다음 막을 사용하는 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 3을 하기와 같이 수행했다. NGF를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). NGF를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시키고 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (10 mM), 및 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합했다. 순차적으로 아미노옥시 시약을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 8 μl의 수성 시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
마지막으로, PEG-NGF 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 그 다음 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 4:
NGF를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 초기 농도 또는 중량의 NGF를 이동시키거나 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 2 mg NGF/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 순차적으로 5 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 15 분 내에 첨가하여 100 μM의 최종 농도를 얻고, 그 다음 50 mM 수성 m-톨루이딘 용액의 첨가로 10 mM의 최종 농도를 30 분의 지속시간 내에 얻었다. 그 다음 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. pH를 6.0으로 보정한 후 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 1 M 수성 L-시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다.
PEG-NGF 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피 (IEC)로 정제했다. 용출물의 콘주게이트 함유 분획을 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD/밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.5)에 대항하여 수행했다.
제제를, 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford 및 BCA 절차) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
실시예 37
아미노옥시 -PEG 시약 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 HGH의 페길화
방법 1:
본원에서 기재된 바와 같이, 인간 성장호르몬 (HGH)의 아미노산 서열을 먼저 변형시켜 적어도 하나의 글라이코실화 부위에 통합시켰다. 정제 다음에, HGH를 당해분야에 공지된 방법들에 따라 시험관 내에서 글리코실화했다.
HGH를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). HGH를 7.0 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20mM L-히스티딘, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2)에서 용해시켰다. 그 다음 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 7.5 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 순차적으로 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
그 다음 산화된 HGH를 함유하는 체류물을 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음, 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
마지막으로, PEG-HGH 콘주게이트를 (예들 들면, Q 세파로오스 FF상) 이온교환 크로마토그래피 정제했다. 예를 들면, 1.5 mg 단백질/ml 겔을 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)으로 평형을 이룬 칼럼 상에 로딩했다. 콘주게이트를 5 mM CaCl2 및 500 mM 나트륨 클로라이드를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 용출하고, 그 다음 적절한 MW 분획 막을 사용하는 UF/DF을 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 1을 하기와 같이 수행했다. 본원에서 기재된 바와 같이, 인간 성장호르몬 (HGH)의 아미노산 서열을 먼저 변형시켜 적어도 하나의 글라이코실화 부위에 통합시켰다. 정제 다음에, HGH를 당해분야에 공지된 방법들에 따라 시험관 내에서 글리코실화했다.
HGH를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). HGH를 7.0 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20mM L-히스티딘, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2)에서 용해시켰다. 그 다음 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 7.5 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 순차적으로 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
그 다음 산화된 HGH를 함유하는 체류물을 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음, 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
마지막으로, PEG-HGH 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피 정제했다 (용출물의 콘주게이트 함유 분획을 수집하고 그 다음 적절한 MW 분획 막을 사용하는 UF/DF을 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 2:
본원에서 기재된 바와 같이, 인간 성장호르몬 (HGH)의 아미노산 서열을 먼저 변형시켜 적어도 하나의 글라이코실화 부위에 통합시켰다. 정제 다음에, HGH를 당해분야에 공지된 방법들에 따라 시험관 내에서 글리코실화했다.
HGH를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). HGH를 이동시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50mM Hepes, 350mM 나트륨 클로라이드, 5mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로, 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 200 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/- 5 분 동안 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)을 15 분 내에 T= +22 +/- 2 ℃에서 첨가하여 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 HGH를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 상기 용출물의 산화된 HGH 함유 분획을 수집하고 콘주게이션 반응을 위해 사용한다.
20 kD의 MW 시약을 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 정제된 산화된 HGH 함유 용출물에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다.
얻은 PEG-HGH 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. PEG-NGF 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 적절한 분획 분자량을 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용으로 제조한 콘주게이트를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 3:
본원에서 기재된 바와 같이, 인간 성장호르몬 (HGH)의 아미노산 서열을 먼저 변형시켜 적어도 하나의 글라이코실화 부위에 통합시켰다. 정제 다음에, HGH를 당해분야에 공지된 방법들에 따라 시험관 내에서 글리코실화했다.
HGH를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). HGH를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시키고 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (10 mM), 및 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합했다. 순차적으로 아미노옥시 시약을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 8 μl의 수성 시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
마지막으로, PEG-HGH 콘주게이트를 Q-세파로오스 FF상 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 1.5 mg 단백질/ml 겔을 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 미리 평형을 이룬 칼섬 상에 로딩했다. 콘주게이트를 5 mM CaCl2 및 500 mM 나트륨 클로라이드를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 용출하고, 그 다음 막을 사용하는 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 3을 하기와 같이 수행했다. 본원에서 기재된 바와 같이, 인간 성장호르몬 (HGH)의 아미노산 서열을 먼저 변형시켜 적어도 하나의 글라이코실화 부위에 통합시켰다. 정제 다음에, HGH를 당해분야에 공지된 방법들에 따라 시험관 내에서 글리코실화했다. HGH를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). HGH를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시키고 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (10 mM), 및 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합했다. 순차적으로 아미노옥시 시약을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 8 μl의 수성 시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
마지막으로, PEG-HGH 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 그 다음 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 4:
본원에서 기재된 바와 같이, 인간 성장호르몬 (HGH)의 아미노산 서열을 먼저 변형시켜 적어도 하나의 글라이코실화 부위에 통합시켰다. 정제 다음에, HGH를 당해분야에 공지된 방법들에 따라 시험관 내에서 글리코실화했다.
HGH를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 초기 농도 또는 중량의 HGH를 이동시키거나 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 2 mg HGH/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 순차적으로 5 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 15 분 내에 첨가하여 100 μM의 최종 농도를 얻고, 그 다음 50 mM 수성 m-톨루이딘 용액의 첨가로 10 mM의 최종 농도를 30 분의 지속시간 내에 얻었다. 그 다음 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. pH를 6.0으로 보정한 후 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 1 M 수성 L-시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다.
PEG - HGH 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피 (IEC)로 정제했다. 용출물의 콘주게이트 함유 분획을 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD/밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.5)에 대항하여 수행했다.
제제를, 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford 및 BCA 절차) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
실시예 38
아미노옥시 -PEG 시약 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 TNF -알파의 페길화
방법 1:
TNF-알파를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). TNF-알파를 7.0 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20mM L-히스티딘, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2)에서 용해시켰다. 그 다음 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 7.5 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 순차적으로 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
그 다음 산화된 TNF-알파를 함유하는 체류물을 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음, 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
마지막으로, PEG-TNF-알파 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피 (예들 들면, Q-세파로오스 FF 상)로 정제했다. 예를 들면, 1.5 mg 단백질/ml 겔을 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)으로 평형을 이룬 칼럼 상에 로딩했다. 콘주게이트를 5 mM CaCl2 및 500 mM 나트륨 클로라이드를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 용출하고, 그 다음 적절한 MW 분획 막을 사용하는 UF/DF을 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 1을 하기와 같이 수행했다. TNF-알파를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). TNF-알파를 7.0 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20mM L-히스티딘, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2)에서 용해시켰다. 그 다음 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 7.5 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 순차적으로 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
그 다음 산화된 TNF-알파를 함유하는 체류물을 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음, 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
마지막으로, PEG-TNF-알파 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 콘주게이트 함유 분획을 수집하고 그 다음 적절한 MW 분획 막을 사용하는 UF/DF을 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 2:
TNF-알파를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). TNF-알파를 이동시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50mM Hepes, 350mM 나트륨 클로라이드, 5mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 200 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/- 5 분 동안 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)을 15 분 내에 T= +22 +/- 2 ℃에서 첨가하여 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 TNF-알파를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 상기 용출물의 산화된 TNF-알파 함유 분획을 수집하고 콘주게이션 반응을 위해 사용한다.
20 kD의 MW 시약을 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 정제된 산화된 TNF 알파를 함유하는 용출물에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다.
얻은 PEG-TNF-알파 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. PEG-TNF-알파 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 적절한 분획 분자량을 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용으로 제조한 콘주게이트를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 3:
TNF-알파를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). TNF-알파를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시키고 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (10 mM), 및 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합했다. 순차적으로 아미노옥시 시약을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 8 μl의 수성 시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
마지막으로, PEG-TNF-알파 콘주게이트를 Q-세파로오스 FF상 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 1.5 mg 단백질/ml 겔을 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 미리 평형을 이룬 칼섬 상에 로딩했다. 콘주게이트를 5 mM CaCl2 및 500 mM 나트륨 클로라이드를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 용출하고, 그 다음 막을 사용하는 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 3을 하기와 같이 수행했다. TNF-알파를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). TNF-알파를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시키고 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (10 mM), 및 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합했다. 순차적으로, 아미노옥시 시약을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 8 μl의 수성 시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
마지막으로, PEG-TNF-알파 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 그 다음 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 4:
TNF-알파를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 초기 농도 또는 중량의 TNF-알파를 이동시키거나 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 2 mg TNF-알파/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 순차적으로, 5 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 15 분 내에 첨가하여 100 μM의 최종 농도를 얻고, 그 다음 50 mM 수성 m-톨루이딘 용액의 첨가로 10 mM의 최종 농도를 30 분의 지속시간 내에 얻었다. 그 다음 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. pH를 6.0으로 보정한 후 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 1 M 수성 L-시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다.
PEG-TNF-알파 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피 (IEC)로 정제했다. 용출물의 콘주게이트 함유 분획을 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD/밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.5)에 대항하여 수행했다.
제제를, 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford 및 BCA 절차) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
실시예 39
아미노옥시 -PEG 시약 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 인슐린의 페길화
방법 1:
본원에서 기재된 바와 같이, 인슐린의 아미노산 서열을 먼저 변형시켜 적어도 하나의 글라이코실화 부위에 통합시켰다. 정제 다음에, 인슐린을 시험관 내에서 당해분야에 공지된 방법들에 따라 글리코실화했다. 인슐린을 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 인슐린을 7.0 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20mM L-히스티딘, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2)에서 용해시켰다. 그 다음 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 7.5 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 순차적으로 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
그 다음 산화된 인슐린을 함유하는 체류물을 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음, 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
마지막으로, PEG-인슐린 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피 (예들 들면, Q-세파로오스 FF 상)로 정제했다. 예를 들면, 1.5 mg 단백질/ml 겔을 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)으로 평형을 이룬 칼럼 상에 로딩했다. 콘주게이트를 5 mM CaCl2 및 500 mM 나트륨 클로라이드를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 용출하고, 그 다음 적절한 MW 분획 막을 사용하는 UF/DF을 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 1을 하기와 같이 수행했다. 본원에서 기재된 바와 같이, 인슐린의 아미노산 서열을 먼저 변형시켜 적어도 하나의 글라이코실화 부위에 통합시켰다. 정제 다음에, 인슐린을 시험관 내에서 당해분야에 공지된 방법들에 따라 글리코실화했다. 인슐린을 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 인슐린을 7.0 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20mM L-히스티딘, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2)에서 용해시켰다. 그 다음 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 7.5 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 순차적으로 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
그 다음 산화된 인슐린을 함유하는 체류물을 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음, 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
마지막으로, PEG-인슐린 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 콘주게이트 함유 분획을 수집하고 그 다음 적절한 MW 분획 막을 사용하는 UF/DF을 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 2:
본원에서 기재된 바와 같이, 인슐린의 아미노산 서열을 먼저 변형시켜 적어도 하나의 글라이코실화 부위에 통합시켰다. 정제 다음에, 인슐린을 시험관 내에서 당해분야에 공지된 방법들에 따라 글리코실화했다.
인슐린을 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 인슐린을 이동시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50mM Hepes, 350mM 나트륨 클로라이드, 5mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로, 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 200 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/- 5 분 동안 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)을 15 분 내에 T= +22 +/- 2 ℃에서 첨가하여 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 인슐린을 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 상기 용출물의 산화된 인슐린 함유 분획을 수집하고 콘주게이션 반응을 위해 사용한다.
20 kD의 MW 시약을 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 정제된 산화된 인슐린 함유 용출물에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다.
얻은 PEG - 인슐린 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. PEG - 인슐린 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 적절한 분획 분자량을 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용으로 제조한 콘주게이트를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 3:
본원에서 기재된 바와 같이, 인슐린의 아미노산 서열을 먼저 변형시켜 적어도 하나의 글라이코실화 부위에 통합시켰다. 정제 다음에, 인슐린을 시험관 내에서 당해분야에 공지된 방법들에 따라 글리코실화했다.
인슐린을 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 인슐린을 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시키고 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (10 mM), 및 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합했다. 순차적으로, 아미노옥시 시약을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 8 μl의 수성 시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
마지막으로, PEG-인슐린 콘주게이트를 Q 세파로오스 FF상 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 1.5 mg 단백질/ml 겔을 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 미리 평형을 이룬 칼섬 상에 로딩했다. 콘주게이트를 5 mM CaCl2 및 500 mM 나트륨 클로라이드를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 용출하고, 그 다음 막을 사용하는 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 3을 하기와 같이 수행했다. 본원에서 기재된 바와 같이, 인슐린의 아미노산 서열을 먼저 변형시켜 적어도 하나의 글라이코실화 부위에 통합시켰다. 정제 다음에, 인슐린을 시험관 내에서 당해분야에 공지된 방법들에 따라 글리코실화했다. 인슐린을 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 인슐린을 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시키고 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (10 mM), 및 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합했다. 순차적으로 아미노옥시 시약을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 8 μl의 수성 시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
마지막으로, 인슐린-콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 그 다음 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 4:
본원에서 기재된 바와 같이, 인슐린의 아미노산 서열을 먼저 변형시켜 적어도 하나의 글라이코실화 부위에 통합시켰다. 정제 다음에, 인슐린을 시험관 내에서 당해분야에 공지된 방법들에 따라 글리코실화했다.
인슐린을 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 인슐린의 초기 농도 또는 중량을 이동시키거나 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 2 mg 인슐린/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 순차적으로 5 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 15 분 내에 첨가하여 100 μM의 최종 농도를 얻고, 그 다음 50 mM 수성 m-톨루이딘 용액의 첨가로 10 mM의 최종 농도를 30 분의 지속시간 내에 얻었다. 그 다음 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. pH를 6.0으로 보정한 후 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 1 M 수성 L-시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다.
PEG - 인슐린 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피 (IEC)로 정제했다. 용출물의 콘주게이트 함유 분획을 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD/밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.5)에 대항하여 수행했다.
제제를, 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford 및 BCA 절차) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
실시예 40
아미노옥시 -PEG 시약 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 인터페론-알파의 페길화
방법 1:
인터페론-알파를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 인터페론-알파를 7.0 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20mM L-히스티딘, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2)에서 용해시켰다. 그 다음 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 7.5 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 순차적으로 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
그 다음 산화된 인터페론-알파를 함유하는 체류물을 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음, 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
마지막으로, PEG-인터페론-알파 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피 (예들 들면, Q-세파로오스 FF 상)로 정제했다. 예를 들면, 1.5 mg 단백질/ml 겔을 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)으로 평형을 이룬 칼럼 상에 로딩했다. 콘주게이트를 5 mM CaCl2 및 500 mM 나트륨 클로라이드를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 용출하고, 그 다음 적절한 MW 분획 막을 사용하는 UF/DF을 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 1을 하기와 같이 수행했다. 인터페론-알파를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 인터페론-알파를 7.0 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20mM L-히스티딘, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2)에서 용해시켰다. 그 다음 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 7.5 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 순차적으로 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
그 다음 산화된 인터페론-알파를 함유하는 체류물을 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음, 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
마지막으로, PEG-인터페론-알파 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 콘주게이트 함유 분획을 수집하고 그 다음 적절한 MW 분획 막을 사용하는 UF/DF을 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 2:
인터페론-알파를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 인터페론-알파를 이동시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50 mM Hepes, 350 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로, 40　mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 200 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/- 5 분 동안 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)을 15 분 내에 T= +22 +/- 2 ℃에서 첨가하여 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 인터페론-알파를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 상기 용출물의 산화된 인터페론-알파 함유 분획을 수집하고 콘주게이션 반응을 위해 사용한다.
20 kD의 MW 시약을 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 정제된 산화된 인터페론-알파 함유 용출물에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다.
얻은 PEG-인터페론-알파 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. PEG-인터페론 알파 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 적절한 분획 분자량을 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용으로 제조한 콘주게이트를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 3:
인터페론-알파를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 인터페론-알파를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시키고 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (10 mM), 및 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합했다. 순차적으로 아미노옥시 시약을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 8 μl의 수성 시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
마지막으로, PEG-인터페론-알파 콘주게이트를 Q-세파로오스 FF상 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 1.5 mg 단백질/ml 겔을 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 미리 평형을 이룬 칼섬 상에 로딩했다. 콘주게이트를 5 mM CaCl2 및 500 mM 나트륨 클로라이드를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 용출하고, 그 다음 막을 사용하는 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 3을 하기와 같이 수행했다. 인터페론-알파를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 인터페론-알파를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시키고 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (10 mM), 및 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합했다. 순차적으로 아미노옥시 시약을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 8 μl의 수성 시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
마지막으로, PEG-인터페론-알파 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 그 다음 막을 사용하는 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 4:
인터페론-알파를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 초기 농도 또는 중량의 인터페론-알파를 이동시키거나 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 2 mg 인터페론 -알파/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 순차적으로, 5 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 15 분 내에 첨가하여 100 μM의 최종 농도를 얻고, 그 다음 50 mM 수성 m-톨루이딘 용액의 첨가로 10 mM의 최종 농도를 30 분의 지속시간 내에 얻었다. 그 다음 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. pH를 6.0으로 보정한 후 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 1 M 수성 L-시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다.
PEG-인터페론 -알파 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피 (IEC)로 정제했다. 용출물의 콘주게이트 함유 분획을 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD/밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.5)에 대항하여 수행했다.
제제를, 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford 및 BCA 절차) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
실시예 41
아미노옥시 -PEG 시약 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 인터페론-감마의 페길화
방법 1:
인터페론-감마를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 10 mg 인터페론-감마를 5 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20 mM L-히스티딘, 150 mM NaCl)에서 용해시켰다. 그 다음 100 μl의 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 50 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 Vivaspin 15R 10 kD 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 순차적으로 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
산화된 인터페론-감마를 함유하는 체류물 (대략 7 ml)을 2 ml의 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
마지막으로, PEG-인터페론-감마 콘주게이트를 SP 세파로오스 FF상 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 반응 혼합물을 20 ml 완충액 A (50 mM Hepes, pH 6.5)으로 희석하고 완충액 A로 평형을 이룬 20 ml HiPrep SPFF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 로딩했다. 그 다음 칼럼을 완충액 B로 용출했다 (50 mM Hepes, 1 M NaCl, pH 6.5). 유리 인터페론-감마를 칼럼을 25 % 완충액 B로 그리고 콘주게이트를 50 % 완충액 B로 칼럼을 세정하여 용출했다. 콘주게이트 함유 분획들을, 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD/밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 150 mM NaCl를 함유하는 히스티딘 완충액 (pH 6.9)에 대항하여 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다. PEG-인터페론-감마 콘주게이트에 대해 천연 인터페론 감마와 비교된 > 50 %의 비활성을 측정했다. 콘주게이트를 앞서 기재된 조건 하에서 Shodex KW 803 칼럼이 구비된 Agilent 1200 HPLC 시스템을 사용하는 크기 배제 HPLC로 추가로 분석적으로 특성화했다 (Kolarich et al, Transfusion 2006;46:1959-77). 이 제제는 유리 인터페론-감마를 함유하지 않는다는 것을 보여준다.
방법 2:
인터페론-감마를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 인터페론-감마를 이동시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50mM Hepes, 350mM 나트륨 클로라이드, 5mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5 N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 200 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/- 5 분 동안 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)을 15 분 내에 T= +22 +/- 2 ℃에서 첨가하여 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 인터페론-감마를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 상기 용출물의 산화된 인터페론-감마 함유 분획을 수집하고 콘주게이션 반응을 위해 사용한다.
20 kD의 MW 시약을 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 정제된 산화된 인터페론-감마를 함유하는 용출물에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다.
얻은 PEG-인터페론-감마 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. PEG-인터페론-감마 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 적절한 분획 분자량을 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
이 절차의 사용으로 제조한 콘주게이트를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 3:
인터페론-감마를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 10 mg 인터페론-감마를 ~8 ml 히스티딘 - 완충액(pH 6.0) (20 mM L-히스티딘, 150 mM NaCl)에서 용해시켰다. 그 다음 200 μl의 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM) 및 2 ml의 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 첨가했다. 순차적으로 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 100 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
마지막으로 PEG-인터페론-감마 콘주게이트를 SP-세파로오스 FF상 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 반응 혼합물을 20 ml 완충액 A (50 mM Hepes, pH 6.5)으로 희석하고 완충액 A로 평형을 이룬 20 ml HiPrep SP FF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 로딩했다. 그 다음 칼럼을 완충액 B로 용출했다 (50 mM Hepes, 1 M NaCl, pH 6.5). 유리 인터페론-감마를 칼럼을 25 % 완충액 B로 그리고 콘주게이트를 50 % 완충액 B로 칼럼을 세정하여 용출했다. 콘주게이트 함유 분획들을, 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD/밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 150 mM NaCl를 함유하는 히스티딘 완충액 (pH 6.9)에 대항하여 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다. PEG-인터페론-감마 콘주게이트에 대해 천연 인터페론-감마와 비교된 > 50 %의 비활성을 측정했다. 콘주게이트를 앞서 기재된 조건 하에서 Shodex KW 803 칼럼이 구비된 Agilent 1200 HPLC 시스템을 사용하는 크기 배제 HPLC로 추가로 분석적으로 특성화했다 (Kolarich et al, Transfusion 2006;46:1959-77). 이 제제는 유리 인터페론-감마를 함유하지 않는다는 것을 보여준다.
방법 4:
인터페론-감마를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 초기 농도 또는 중량의 인터페론-감마를 이동시키거나 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 2 mg 인터페론-감마/ml의 최종 단백질 농도를 얻었더. 순차적으로 5 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 15 분 내에 첨가하여 100 μM의 최종 농도를 얻고, 그 다음 50 mM 수성 m-톨루이딘 용액의 첨가로 10 mM의 최종 농도를 30 분의 지속시간 내에 얻었다. 그 다음 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. pH를 6.0으로 보정한 후 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 1 M 수성 L-시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다.
PEG-인터페론-감마 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피 (IEC)로 정제했다. 용출물의 콘주게이트 함유 분획을 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD/밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.5)에 대항하여 수행했다.
제제를, 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford 및 BCA 절차) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
실시예 42
아미노옥시 -PEG 시약 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 G- CSF의 페길화
방법 1:
G-CSF를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). G-CSF를 7.0 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20mM L-히스티딘, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2)에서 용해시켰다. 그 다음 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 7.5 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 순차적으로 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
그 다음 산화된 G-CSF를 함유하는 체류물을 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음, 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
마지막으로, PEG-G-CSF 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피 (예들 들면, Q-세파로오스 FF 상)로 정제했다. 예를 들면, 1.5 mg 단백질/ml 겔을 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)으로 평형을 이룬 칼럼 상에 로딩했다. 콘주게이트를 5 mM CaCl2 및 500 mM 나트륨 클로라이드를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 용출하고, 그 다음 적절한 MW 분획 막을 사용하는 UF/DF을 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 1을 하기와 같이 수행했다. G-CSF를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). G-CSF를 7.0 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20mM L-히스티딘, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2)에서 용해시켰다. 그 다음 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 7.5 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 순차적으로 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
그 다음 산화된 G-CSF를 함유하는 체류물을 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음, 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
마지막으로, PEG-G-CSF 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피 정제했다 (용출물의 콘주게이트 함유 분획을 수집하고 그 다음 적절한 MW 분획 막을 사용하는 UF/DF을 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 2:
G-CSF를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). G-CSF를 이동시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50mM Hepes, 350mM 나트륨 클로라이드, 5mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 200 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/- 5 분 동안 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)을 15 분 내에 T= +22 +/- 2 ℃에서 첨가하여 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 G-CSF를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 용출물의 상기 산화된 G-CSF 분획을 수집하고 콘주게이션 반응을 위해 사용한다.
20 kD의 MW 시약을 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 50-배 몰 과잉으로 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 정제된 산화된 G-CSF을 함유하는 용출물에 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다.
얻은 PEG-G-CSF 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. PEG-G-CSF 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 적절한 분획 분자량을 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
방법 3:
G-CSF를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). G-CSF를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시키고 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (10 mM), 및 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합했다. 순차적으로, 아미노옥시 시약을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 8 μl의 수성 시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
마지막으로, PEG-G-CSF 콘주게이트를 Q-세파로오스 FF상 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 1.5 mg 단백질/ml 겔을 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 미리 평형을 이룬 칼섬 상에 로딩했다. 콘주게이트를 5 mM CaCl2 및 500 mM 나트륨 클로라이드를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 용출하고, 그 다음 막을 사용하는 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 3을 하기와 같이 수행했다. G-CSF를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). G-CSF를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시키고 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (10 mM), 및 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합했다. 순차적으로, 아미노옥시 시약을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 8 μl의 수성 시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
마지막으로, PEG-G-CSF 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 콘주게이트 함유 분획을 수집하고 그 다음 막을 사용하는 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 4:
G-CSF를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 초기 농도 또는 중량의 G-CSF를 이동시키거나 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 2 mg G-CSF/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 순차적으로, 5 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 15 분 내에 첨가하여 100 μM의 최종 농도를 얻고, 그 다음 50 mM 수성 m-톨루이딘 용액의 첨가로 10 mM의 최종 농도를 30 분의 지속시간 내에 얻었다. 그 다음 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. pH를 6.0으로 보정한 후 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 1 M 수성 L-시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다.
G-CSF 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피 (IEC)로 정제했다. 용출물의 콘주게이트 함유 분획을 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD/밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.5)에 대항하여 수행했다.
제제를, 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford 및 BCA 절차) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
실시예 43
아미노옥시 -PEG 시약 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 휴미라의 페길화
방법 1:
휴미라를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 휴미라를 7.0 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20mM L-히스티딘, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2)에서 용해시켰다. 그 다음 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 7.5 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 순차적으로 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
그 다음, 산화된 휴미라를 함유하는 보전물을 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음, 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
마지막으로, PEG-휴미라 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피 (예들 들면, Q-세파로오스 FF 상)로 정제했다. 예를 들면, 1.5 mg 단백질/ml 겔을 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)으로 평형을 이룬 칼럼 상에 로딩했다. 콘주게이트를 5 mM CaCl2 및 500 mM 나트륨 클로라이드를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 용출하고, 그 다음 적절한 MW 분획 막을 사용하는 UF/DF을 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 1을 하기와 같이 수행했다. 휴미라를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 휴미라를 7.0 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20mM L-히스티딘, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2)에서 용해시켰다. 그 다음 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 7.5 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 순차적으로 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
그 다음, 산화된 휴미라를 함유하는 보전물을 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음, 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
마지막으로, PEG-휴미라 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 용출물의 콘주게이트 함유 분획을 수집하고 그 다음 적절한 MW 분획 막을 사용하는 UF/DF을 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 2:
휴미라를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 휴미라를 이동시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50mM Hepes, 350mM 나트륨 클로라이드, 5mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 200 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/- 5 분 동안 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)을 15 분 내에 T= +22 +/- 2 ℃에서 첨가하여 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 휴미라를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 상기 산화된 휴미라 함유 용출물의 분획을 수집하고 콘주게이션 반응을 위해 사용한다.
20 kD의 MW 시약을 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 50-배 몰 과잉으로 정제된 산화된 휴미라를 함유하는 용출물에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다.
얻은 PEG-휴미라 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. PEG-휴미라 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 적절한 분획 분자량을 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
방법 3:
휴미라를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 휴미라를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시키고 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (10 mM), 및 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합했다. 순차적으로, 아미노옥시 시약을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 8 μl의 수성 시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
마지막으로, PEG-휴미라 콘주게이트를 Q-세파로오스 FF상 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 1.5 mg 단백질/ml 겔을 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 미리 평형을 이룬 칼섬 상에 로딩했다. 콘주게이트를 5 mM CaCl2 및 500 mM 나트륨 클로라이드를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 용출하고, 그 다음 막을 사용하는 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 3을 하기와 같이 수행했다. 휴미라를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 휴미라를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시키고 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (10 mM), 및 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합했다. 순차적으로 아미노옥시 시약을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 8 μl의 수성 시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
마지막으로, PEG-휴미라 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 그 다음 막을 사용하는 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
방법 4:
휴미라를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 초기 농도 또는 중량의 HJumira를 이동시키거나 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 2 mg 휴미라/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 순차적으로 5 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 15 분 내에 첨가하여 100 μM의 최종 농도를 얻고, 그 다음 50 mM 수성 m-톨루이딘 용액의 첨가로 10 mM의 최종 농도를 30 분의 지속시간 내에 얻었다. 그 다음 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. pH를 6.0으로 보정한 후 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 1 M 수성 L-시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다.
The 휴미라 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피 (IEC)로 정제했다. 용출물의 콘주게이트 함유 분획을 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD/밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.5)에 대항하여 수행했다.
제제를, 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford 및 BCA 절차) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
실시예 44
아미노옥시 -PEG 시약 및 친핵성 촉매로서 m-톨루이딘을 사용하는 프롤리아의 페길화
방법 1:
프롤리아를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 프롤리아를 7.0 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20mM L-히스티딘, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2)에서 용해시켰다. 그 다음 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 7.5 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 순차적으로 Vivaspin 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
그 다음 산화된 프롤리아를 함유하는 체류물을 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음, 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
마지막으로, PEG-프롤리아 콘주게이트를 이온교환 크로마토그래피 (예들 들면, Q-세파로오스 FF 상)로 정제했다. 예를 들면, 1.5 mg 단백질/ml 겔을 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)으로 평형을 이룬 칼럼 상에 로딩했다. 콘주게이트를 5 mM CaCl2 및 500 mM 나트륨 클로라이드를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 용출하고, 그 다음 적절한 MW 분획 막을 사용하는 UF/DF을 수행했다. 그 다음 제제를 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Coomassie, Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 1을 하기와 같이 수행했다. 프롤리아를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 10 mg rFIX을 5 ml 히스티딘 - 완충액(pH 6.0) (20 mM L-히스티딘, 150 mM NaCl)에서 용해시켰다. 그 다음 100 μl의 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM)을 첨가하고 반응 혼합물을 1시간 동안 암흑에서 4 ℃에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 50 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다. 혼합물에 대해 Vivaspin 15R 10 kD 원심 여과기를 이용하는 UF/DF를 순차적으로 수행하여 과잉 페리오데이트, 켄쳐 및 그의 부산물을 제거했다.
산화된 프롤리아를 함유하는 체류물 (대략 7 ml)을 2 ml의 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합하고 30 분 동안 실온에서 인큐베이트했다. 그 다음 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 이 혼합물을 2.5 시간 동안 실온에서 암흑에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트했다.
마지막으로 PEG-프롤리아 콘주게이트를 SP 세파로오스 FF상 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 반응 혼합물을 20 ml 완충액 A (50 mM Hepes, pH 6.5)으로 희석하고 완충액 A로 평형을 이룬 20 ml HiPrep SP FF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 로딩했다. 그 다음 칼럼을 완충액 B로 용출했다 (50 mM Hepes, 1 M NaCl, pH 6.5). 유리 프롤리아를 칼럼을 25 % 완충액 B로 그리고 콘주게이트를 50 % 완충액 B로 칼럼을 세정하여 용출했다. 콘주게이트 함유 분획들을, 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD/밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 150 mM NaCl를 함유하는 히스티딘 완충액 (pH 6.9)에 대항하여 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다. PEG-프롤리아 콘주게이트에 대해 천연 프롤리아와 비교한 > 50 %의 비활성이 측정된다. 콘주게이트를 앞서 기재된 조건 하에서 Shodex KW 803 칼럼이 구비된 Agilent 1200 HPLC 시스템을 사용하는 크기 배제 HPLC로 추가로 분석적으로 특성화했다 (Kolarich et al, Transfusion 2006;46:1959-77). 이 제제는 유리 프롤리아를 함유하지 않는다는 것을 보여준다.
방법 2:
프롤리아를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 프롤리아를 이동시키거나 반응 완충액 (예들 들면 50mM Hepes, 350mM 나트륨 클로라이드, 5mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 1.0 +/- 0.25 mg/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 그 다음 용액의 pH를 6.0으로 0.5N 수성 HCl 용액의 적가로 보정했다. 순차적으로, 40 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 10 분 내에 첨가하여 200 μM의 농도를 얻었다. 산화 반응을 30 +/- 5 분 동안 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 수행했다. 그 다음 반응을 수성 L-시스테인 용액 (1 M)을 15 분 내에 T= +22 +/- 2 ℃에서 첨가하여 멈추어서 반응 혼합물 중 10 mM의 최종 농도를 얻고 60 +/- 5 분 동안 인큐베이션했다.
상기 산화된 프롤리아를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. 상기 산화된 휴미라 함유 용출물의 분획을 수집하고 콘주게이션 반응을 위해 사용한다.
20 kD의 MW 시약을 갖는 아미노옥시-PEG 시약을 정제된 산화된 프롤리아를 함유하는 용출물에 15 분의 최대 지속시간 (t) 내에 완만한 교반 하에서 50-배 몰 과잉으로 첨가했다. 그 다음 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 15 분 내에 첨가하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다. 반응 혼합물을 120 +/- 10 분 동안 암흑에서 T= +22 +/- 2 ℃의 온도 (T)에서 완만한 진탕 하에서 인큐베이트했다.
얻은 PEG-프롤리아 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피로 추가 정제했다. PEG-프롤리아 콘주게이트 함유 분획들을 수집하고 적절한 분획 분자량을 갖는 재생된 셀롤로오스로 만들어진 막 (밀리포어)를 사용하는 한외-/정용여과 (UF/DF)로 농축했다.
방법 3:
프롤리아를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). EPO를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시키고 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (10 mM), 및 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)와 혼합했다. 순차적으로 아미노옥시 시약을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 8 μl의 수성 시스테인 용액 (1 M)의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
마지막으로, PEG-프롤리아 콘주게이트를 Q-세파로오스 FF상 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 1.5 mg 단백질/ml 겔을 5 mM CaCl2를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 미리 평형을 이룬 칼섬 상에 로딩했다. 콘주게이트를 5 mM CaCl2 및 500 mM 나트륨 클로라이드를 함유하는 50 mM Hepes 완충액 (pH 7.4)로 용출하고, 그 다음 막을 사용하는 UF/DF를 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
대안적인 구현예에서, 방법 3을 하기와 같이 수행했다.
프롤리아를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 10 mg 프롤리아를 ~8 ml 히스티딘 완충액(pH 6.0) (20 mM L-히스티딘, 150 mM NaCl)에서 용해시켰다. 그 다음 200 μl의 수성 나트륨 페리오데이트 용액 (5 mM) 및 2 ml의 수성 m-톨루이딘 용액 (50 mM)을 첨가했다. 순차적으로, 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 5-배 몰 시약 과잉을 얻었다. 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 100 μl의 1 M 수성 시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭했다.
마지막으로 PEG-프롤리아 콘주게이트를 SP-세파로오스 FF상 이온교환 크로마토그래피로 정제했다. 반응 혼합물을 20 ml 완충액 A (50 mM Hepes, pH 6.5)으로 희석하고 완충액 A로 평형을 이룬 20 ml HiPrep SPFF 16/10 칼럼 (GE Healthcare, Fairfield, CT) 상에 로딩했다. 그 다음 칼럼을 완충액 B로 용출했다 (50 mM Hepes, 1 M NaCl, pH 6.5). 유리 프롤리아를 칼럼을 25% 완충액 B로 그리고 콘주게이트를 50% 완충액 B에서 세정하여 용출했다. 콘주게이트 함유 분획들을, 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD/밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 150 mM NaCl를 함유하는 히스티딘 완충액 (pH 6.9)에 대항하여 수행했다. 제제를, 당해분야에 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다. PEG-프롤리아 콘주게이트에 대해 천연 프롤리아와 비교한 > 50 %의 비활성이 측정된다. 콘주게이트를 앞서 기재된 조건 하에서 Shodex KW 803 칼럼이 구비된 Agilent 1200 HPLC 시스템을 사용하는 크기 배제 HPLC로 추가로 분석적으로 특성화했다 (Kolarich et al, Transfusion 2006;46:1959-77). 이 제제는 유리 프롤리아를 함유하지 않는다는 것을 보여준다.
방법 4:
프롤리아를 아미노옥시 그룹을 함유하는 선형 20 kD 페길화 시약의 사용으로 페길화했다. 이러한 유형의 시약의 예는 NOF로부터의 Sunbright® CA 시리즈이다 (NOF Corp, 도쿄, 일본). 초기 농도 또는 중량의 HJumira를 이동시키거나 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 150 mM 나트륨 클로라이드, 5 mM 염화칼슘, pH 6.0)에서 용해시켜서 2 mg 프롤리아/ml의 최종 단백질 농도를 얻었다. 순차적으로 5 mM 수성 나트륨 페리오데이트 용액을 15 분 내에 첨가하여 100 μM의 최종 농도를 얻고, 그 다음 50 mM 수성 m-톨루이딘 용액의 첨가로 10 mM의 최종 농도를 30 분의 지속시간 내에 얻었다. 그 다음 20 kD의 MW를 갖는 아미노옥시-PEG 시약 (상기에 기재됨)을 첨가하여 20-배 몰 시약 과잉을 얻었다. pH를 6.0으로 보정한 후 혼합물을 2시간 동안 암흑에서 실온에서 완만한 교반 하에서 인큐베이트하고 1 M 수성 L-시스테인 용액의 첨가로 15분 동안 실온에서 켄칭하여 10 mM의 최종 농도를 얻었다.
프롤리아 콘주게이트를 이온 교환 크로마토그래피 (IEC)로 정제했다. 용출물의 콘주게이트 함유 분획을 재생된 셀롤로오스로 만들어진 10 kD 막 (88 cm2, 분획 10 kD/밀리포어)을 사용하여 UF/DF로 농축했다. 최종 정용여과 단계를 Hepes 완충액 (50 mM Hepes, 5 mM CaCl2, pH 7.5)에 대항하여 수행했다.
제제를, 공지된 방법들에 따른 총 단백질 (Bradford 및 BCA 절차) 및 생물학적 활성을 측정하여 분석적으로 특성화했다.
실시예 45
분지형 PEG를 사용하는 치료 단백질의 페길화
본 발명의 치료 단백질이 페길화는 분지형 또는 선형 페길화 시약으로 연장될 수 있고, 이 시약은, 알데하이드 및 활성 아미노옥시 그룹 함유 적당한 링커로 만들어 진다.
SEQUENCE LISTING <110> Siekmann, et al. <120> Nucleophilic Catalysts for Oxime Linkage <130> 31315/46394 <160> 1 <170> PatentIn version 3.5 <210> 1 <211> 422 <212> PRT <213> Homo sapiens <400> 1 Leu Asn Arg Pro Lys Arg Tyr Asn Ser Gly Lys Leu Glu Glu Phe Val 1 5 10 15 Gln Gly Asn Leu Glu Arg Glu Cys Met Glu Glu Lys Cys Ser Phe Glu 20 25 30 Glu Pro Arg Glu Val Phe Glu Asn Thr Glu Lys Thr Thr Glu Phe Trp 35 40 45 Lys Gln Tyr Val Asp Gly Asp Gln Cys Glu Ser Asn Pro Cys Leu Asn 50 55 60 Gly Gly Ser Cys Lys Asp Asp Ile Asn Ser Tyr Glu Cys Trp Cys Pro 65 70 75 80 Phe Gly Phe Glu Gly Lys Asn Cys Glu Leu Asp Val Thr Cys Asn Ile 85 90 95 Lys Asn Gly Arg Cys Glu Gln Phe Cys Lys Asn Ser Ala Asp Asn Lys 100 105 110 Val Val Cys Ser Cys Thr Glu Gly Tyr Arg Leu Ala Glu Asn Gln Lys 115 120 125 Ser Cys Glu Pro Ala Val Pro Phe Pro Cys Gly Arg Val Ser Val Ser 130 135 140 Gln Thr Ser Lys Leu Thr Arg Ala Glu Ala Val Phe Pro Asp Val Asp 145 150 155 160 Tyr Val Asn Pro Thr Glu Ala Glu Thr Ile Leu Asp Asn Ile Thr Gln 165 170 175 Gly Thr Gln Ser Phe Asn Asp Phe Thr Arg Val Val Gly Gly Glu Asp 180 185 190 Ala Lys Pro Gly Gln Phe Pro Trp Gln Val Val Leu Asn Gly Lys Val 195 200 205 Asp Ala Phe Cys Gly Gly Ser Ile Val Asn Glu Lys Trp Ile Val Thr 210 215 220 Ala Ala His Cys Val Glu Thr Gly Val Lys Ile Thr Val Val Ala Gly 225 230 235 240 Glu His Asn Ile Glu Glu Thr Glu His Thr Glu Gln Lys Arg Asn Val 245 250 255 Ile Arg Ala Ile Ile Pro His His Asn Tyr Asn Ala Ala Ile Asn Lys 260 265 270 Tyr Asn His Asp Ile Ala Leu Leu Glu Leu Asp Glu Pro Leu Val Leu 275 280 285 Asn Ser Tyr Val Thr Pro Ile Cys Ile Ala Asp Lys Glu Tyr Thr Asn 290 295 300 Ile Phe Leu Lys Phe Gly Ser Gly Tyr Val Ser Gly Trp Ala Arg Val 305 310 315 320 Phe His Lys Gly Arg Ser Ala Leu Val Leu Gln Tyr Leu Arg Val Pro 325 330 335 Leu Val Asp Arg Ala Thr Cys Leu Arg Ser Thr Lys Phe Thr Ile Tyr 340 345 350 Asn Asn Met Phe Cys Ala Gly Phe His Glu Gly Gly Arg Asp Ser Cys 355 360 365 Gln Gly Asp Ser Gly Gly Pro His Val Thr Glu Val Glu Gly Thr Ser 370 375 380 Phe Leu Thr Gly Ile Ile Ser Trp Gly Glu Glu Cys Ala Met Lys Gly 385 390 395 400 Lys Tyr Gly Ile Tyr Thr Lys Val Ser Arg Tyr Val Asn Trp Ile Lys 405 410 415 Glu Lys Thr Lys Leu Thr 420

Claims (1)

  1. 수용성 폴리머를 치료 단백질의 산화된 탄수화물 모이어티에 콘주게이션시키기 위한 m-톨루이딘의 용도.
KR1020197010071A 2010-07-30 2011-07-29 옥심 결합용 친핵성 촉매 KR102088852B1 (ko)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US36918610P 2010-07-30 2010-07-30
US61/369,186 2010-07-30
PCT/US2011/045873 WO2012016131A1 (en) 2010-07-30 2011-07-29 Nucleophilic catalysts for oxime linkage

Related Parent Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
KR1020137004971A Division KR101969601B1 (ko) 2010-07-30 2011-07-29 옥심 결합용 친핵성 촉매

Related Child Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
KR1020207006813A Division KR102172133B1 (ko) 2010-07-30 2011-07-29 옥심 결합용 친핵성 촉매

Publications (2)

Publication Number Publication Date
KR20190040364A true KR20190040364A (ko) 2019-04-17
KR102088852B1 KR102088852B1 (ko) 2020-03-16

Family

ID=44629987

Family Applications (6)

Application Number Title Priority Date Filing Date
KR1020217018874A KR102325780B1 (ko) 2010-07-30 2011-07-29 옥심 결합용 친핵성 촉매
KR1020217007514A KR102269494B1 (ko) 2010-07-30 2011-07-29 옥심 결합용 친핵성 촉매
KR1020207006813A KR102172133B1 (ko) 2010-07-30 2011-07-29 옥심 결합용 친핵성 촉매
KR1020207030594A KR102229967B1 (ko) 2010-07-30 2011-07-29 옥심 결합용 친핵성 촉매
KR1020137004971A KR101969601B1 (ko) 2010-07-30 2011-07-29 옥심 결합용 친핵성 촉매
KR1020197010071A KR102088852B1 (ko) 2010-07-30 2011-07-29 옥심 결합용 친핵성 촉매

Family Applications Before (5)

Application Number Title Priority Date Filing Date
KR1020217018874A KR102325780B1 (ko) 2010-07-30 2011-07-29 옥심 결합용 친핵성 촉매
KR1020217007514A KR102269494B1 (ko) 2010-07-30 2011-07-29 옥심 결합용 친핵성 촉매
KR1020207006813A KR102172133B1 (ko) 2010-07-30 2011-07-29 옥심 결합용 친핵성 촉매
KR1020207030594A KR102229967B1 (ko) 2010-07-30 2011-07-29 옥심 결합용 친핵성 촉매
KR1020137004971A KR101969601B1 (ko) 2010-07-30 2011-07-29 옥심 결합용 친핵성 촉매

Country Status (25)

Country Link
EP (3) EP4023247A1 (ko)
JP (7) JP6325818B2 (ko)
KR (6) KR102325780B1 (ko)
CN (3) CN103370082A (ko)
AR (1) AR082941A1 (ko)
AU (1) AU2011282571C1 (ko)
BR (1) BR112013001611B1 (ko)
CA (1) CA2806684C (ko)
CY (1) CY1121943T1 (ko)
DK (1) DK2598172T3 (ko)
EA (2) EA025738B9 (ko)
ES (1) ES2731626T3 (ko)
HR (1) HRP20190990T1 (ko)
HU (1) HUE043790T2 (ko)
LT (1) LT2598172T (ko)
MX (1) MX346271B (ko)
NZ (1) NZ605972A (ko)
PL (1) PL2598172T3 (ko)
PT (1) PT2598172T (ko)
RS (1) RS58900B1 (ko)
SG (2) SG187171A1 (ko)
SI (1) SI2598172T1 (ko)
TR (1) TR201908836T4 (ko)
TW (1) TWI534152B (ko)
WO (1) WO2012016131A1 (ko)

Families Citing this family (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US8642737B2 (en) 2010-07-26 2014-02-04 Baxter International Inc. Nucleophilic catalysts for oxime linkage
US8809501B2 (en) 2009-07-27 2014-08-19 Baxter International Inc. Nucleophilic catalysts for oxime linkage
CN103370082A (zh) * 2010-07-30 2013-10-23 巴克斯特国际公司 用于肟键联的亲核性催化剂
EA032056B1 (ru) 2010-12-22 2019-04-30 Баксалта Инкорпорейтид Конъюгат терапевтического белка и производного жирной кислоты, способы получения конъюгата терапевтического белка и производного жирной кислоты (варианты)
IL235129B (en) * 2012-04-16 2022-06-01 Cantab Biopharmaceuticals Patents Ltd Therapeutic compounds for subcutaneous administration
AU2013204754C1 (en) * 2012-05-16 2018-10-11 Takeda Pharmaceutical Company Limited Nucleophilic Catalysts for Oxime Linkage
MA39711A (fr) * 2014-04-03 2015-10-08 Nektar Therapeutics Conjugués d'une fraction d'il-15 et d'un polymère
CN108884146A (zh) * 2015-12-03 2018-11-23 百深公司 具有延长的半衰期及降低的配体结合性质的因子viii
WO2018017923A1 (en) * 2016-07-22 2018-01-25 Nektar Therapeutics Conjugates of a factor viii moiety having an oxime-containing linkage
CN111093688A (zh) 2017-05-15 2020-05-01 尼克塔治疗公司 长效白细胞介素-15受体激动剂以及相关免疫治疗组合物和方法
US11845989B2 (en) 2019-01-23 2023-12-19 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Treatment of ophthalmic conditions with angiopoietin-like 7 (ANGPTL7) inhibitors
SG11202107497XA (en) 2019-01-23 2021-08-30 Regeneron Pharma Treatment of ophthalmic conditions with angiopoietin-like 7 (angptl7) inhibitors
CA3210480A1 (en) 2021-02-26 2022-09-01 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Treatment of inflammation with glucocorticoids and angiopoietin-like 7 (angptl7) inhibitors

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2005014024A2 (en) * 2003-08-08 2005-02-17 Fresenius Kabi Deutschland Gmbh Conjugates of a polymer and a protein linked by an oxime linking group
WO2008025856A2 (en) * 2006-09-01 2008-03-06 Novo Nordisk Health Care Ag Modified glycoproteins

Family Cites Families (41)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS54113492A (en) 1978-02-24 1979-09-05 Sanyo Chem Ind Ltd Preparation of glucoprotein derivative
US4356170A (en) 1981-05-27 1982-10-26 Canadian Patents & Development Ltd. Immunogenic polysaccharide-protein conjugates
US4757006A (en) 1983-10-28 1988-07-12 Genetics Institute, Inc. Human factor VIII:C gene and recombinant methods for production
US5198349A (en) 1986-01-03 1993-03-30 Genetics Institute, Inc. Method for producing factor VIII:C and analogs
US5250421A (en) 1986-01-03 1993-10-05 Genetics Institute, Inc. Method for producing factor VIII:C-type proteins
JPH0387173A (ja) 1987-09-10 1991-04-11 Teijin Ltd ヒト活性化天然型ファクター８ｃの製造方法及びそれに用いる形質転換体
US5846951A (en) 1991-06-06 1998-12-08 The School Of Pharmacy, University Of London Pharmaceutical compositions
WO1994007510A1 (en) 1992-10-02 1994-04-14 Kabi Pharmacia Ab Composition comprising coagulation factor viii formulation, process for its preparation and use of a surfactant as stabilizer
WO1994028024A1 (en) * 1993-06-01 1994-12-08 Enzon, Inc. Carbohydrate-modified polymer conjugates with erythropoietic activity
US5621039A (en) 1993-06-08 1997-04-15 Hallahan; Terrence W. Factor IX- polymeric conjugates
US5574187A (en) * 1994-10-06 1996-11-12 Uniroyal Chemical Company, Inc. Process of preparing para substituted phenylamines
WO1996040662A2 (en) 1995-06-07 1996-12-19 Cellpro, Incorporated Aminooxy-containing linker compounds and their application in conjugates
US6531298B2 (en) 1997-07-21 2003-03-11 The University Of North Carolina At Chapel Hill Factor IX antihemophilic factor with increased clotting activity
US7074878B1 (en) 1999-12-10 2006-07-11 Harris J Milton Hydrolytically degradable polymers and hydrogels made therefrom
US6413507B1 (en) 1999-12-23 2002-07-02 Shearwater Corporation Hydrolytically degradable carbamate derivatives of poly (ethylene glycol)
EP1335931B1 (en) 2000-05-16 2005-12-21 Lipoxen Technologies Limited Derivatisation of proteins in aqueous solution
AU2004236174B2 (en) 2001-10-10 2011-06-02 Novo Nordisk A/S Glycopegylation methods and proteins/peptides produced by the methods
US7265084B2 (en) 2001-10-10 2007-09-04 Neose Technologies, Inc. Glycopegylation methods and proteins/peptides produced by the methods
MXPA04004336A (es) 2001-11-07 2005-05-16 Nektar Therapeutics Al Corp Polimeros ramificados y sus conjugados.
EP1681303B1 (en) 2002-09-11 2013-09-04 Fresenius Kabi Deutschland GmbH HASylated polypeptides, especially HASylated erythropoietin
BR0314107A (pt) 2002-09-11 2005-07-19 Fresenius Kabi De Gmbh Método de produção de derivados de hidroxialquil amido
CA2521784C (en) 2003-04-08 2012-03-27 Yeda Research And Development Co. Ltd. Reversible pegylated drugs
CN1832762B (zh) * 2003-08-08 2012-09-05 弗雷泽纽斯卡比德国有限公司 羟烷基淀粉与g-csf的偶联物
WO2005014655A2 (en) * 2003-08-08 2005-02-17 Fresenius Kabi Deutschland Gmbh Conjugates of hydroxyalkyl starch and a protein
RU2333223C2 (ru) 2003-08-12 2008-09-10 Лайпоксен Текнолоджиз Лимитед Альдегидные производные сиаловой кислоты, способы их получения, конъюгаты альдегидных производных сиаловой кислоты и фармацевтическая композиция на их основе
US8633157B2 (en) 2003-11-24 2014-01-21 Novo Nordisk A/S Glycopegylated erythropoietin
US20060040856A1 (en) 2003-12-03 2006-02-23 Neose Technologies, Inc. Glycopegylated factor IX
KR101237884B1 (ko) 2003-12-03 2013-02-27 바이오제너릭스 에이지 글리코 peg화 과립구 콜로니 자극인자
ES2593318T3 (es) 2004-08-12 2016-12-07 Lipoxen Technologies Limited Derivados de ácido siálico
EP1799249A2 (en) 2004-09-10 2007-06-27 Neose Technologies, Inc. Glycopegylated interferon alpha
US7884075B2 (en) 2004-12-27 2011-02-08 Baxter International Inc. Polymer-factor VIII-von Willebrand factor-conjugates
AU2006259225B2 (en) 2005-06-16 2012-05-31 Nektar Therapeutics Conjugates having a degradable linkage and polymeric reagents useful in preparing such conjugates
US7645860B2 (en) 2006-03-31 2010-01-12 Baxter Healthcare S.A. Factor VIII polymer conjugates
CN101535339B (zh) * 2006-09-01 2014-11-12 诺沃-诺迪斯克保健股份有限公司 改性糖蛋白
ES2521490T3 (es) 2006-12-15 2014-11-12 Baxter International Inc. Conjugado de factor VIIa - ácido (poli)siálico con una vida media in vivo prolongada.
EP2201953A4 (en) * 2007-08-27 2011-08-03 Univ Nagoya Nat Univ Corp USE OF RIBAVIRIN IN BLOOD COAGULATION DISORDER
GB0908393D0 (en) * 2009-05-15 2009-06-24 Almac Sciences Scotland Ltd Labelling method
ES2590679T3 (es) * 2009-07-27 2016-11-23 Lipoxen Technologies Limited Glicopolisialilación de proteínas diferentes a proteínas de coagulación de la sangre
KR101832937B1 (ko) * 2009-07-27 2018-02-28 박스알타 인코퍼레이티드 혈액 응고 단백질 복합체
PE20121643A1 (es) * 2009-07-31 2012-11-25 Bayer Healthcare Llc Polipeptidos del factor ix modificados y usos de los mismos
CN103370082A (zh) * 2010-07-30 2013-10-23 巴克斯特国际公司 用于肟键联的亲核性催化剂

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2005014024A2 (en) * 2003-08-08 2005-02-17 Fresenius Kabi Deutschland Gmbh Conjugates of a polymer and a protein linked by an oxime linking group
WO2008025856A2 (en) * 2006-09-01 2008-03-06 Novo Nordisk Health Care Ag Modified glycoproteins

Also Published As

Publication number Publication date
AR082941A1 (es) 2013-01-23
CA2806684A1 (en) 2012-02-02
SG10201913078SA (en) 2020-02-27
KR102325780B1 (ko) 2021-11-12
ES2731626T3 (es) 2019-11-18
KR102088852B1 (ko) 2020-03-16
JP2015164958A (ja) 2015-09-17
WO2012016131A1 (en) 2012-02-02
PL2598172T3 (pl) 2019-09-30
AU2011282571A1 (en) 2013-02-07
EP2598172A1 (en) 2013-06-05
BR112013001611B1 (pt) 2022-05-10
LT2598172T (lt) 2019-08-26
KR20130043211A (ko) 2013-04-29
KR20200126008A (ko) 2020-11-05
JP2019116501A (ja) 2019-07-18
HUE043790T2 (hu) 2019-09-30
PT2598172T (pt) 2019-06-25
JP2017137358A (ja) 2017-08-10
JP2019116500A (ja) 2019-07-18
SG187171A1 (en) 2013-02-28
JP6325818B2 (ja) 2018-05-16
EA201300190A1 (ru) 2013-07-30
JP7258999B2 (ja) 2023-04-17
CN103370082A (zh) 2013-10-23
DK2598172T3 (da) 2019-07-01
AU2011282571C1 (en) 2018-04-05
CN108079311A (zh) 2018-05-29
BR112013001611A8 (pt) 2020-10-27
EA025738B9 (ru) 2018-05-31
KR102229967B1 (ko) 2021-03-19
HRP20190990T1 (hr) 2019-10-04
KR101969601B1 (ko) 2019-04-17
JP2021038256A (ja) 2021-03-11
MX2013001261A (es) 2013-03-22
KR20200029059A (ko) 2020-03-17
TWI534152B (zh) 2016-05-21
EP2598172B1 (en) 2019-03-27
EA025738B1 (ru) 2017-01-30
KR20210079392A (ko) 2021-06-29
EP3505186B1 (en) 2022-01-12
NZ605972A (en) 2015-04-24
KR102269494B1 (ko) 2021-06-25
CA2806684C (en) 2020-11-17
JP6757823B2 (ja) 2020-09-23
KR20210032542A (ko) 2021-03-24
MX346271B (es) 2016-07-08
JP2022046676A (ja) 2022-03-23
TW201217393A (en) 2012-05-01
EA201691292A1 (ru) 2017-08-31
CN108079312A (zh) 2018-05-29
BR112013001611A2 (pt) 2016-05-17
JP7054407B2 (ja) 2022-04-13
RS58900B1 (sr) 2019-08-30
EP4023247A1 (en) 2022-07-06
AU2011282571B2 (en) 2015-09-24
KR102172133B1 (ko) 2020-11-02
TR201908836T4 (tr) 2019-07-22
CY1121943T1 (el) 2020-10-14
SI2598172T1 (sl) 2019-08-30
JP2013536180A (ja) 2013-09-19
EP3505186A1 (en) 2019-07-03

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP7258999B2 (ja) オキシム連結のための求核触媒
JP7304402B2 (ja) オキシム連結のための求核触媒
AU2015275284B2 (en) Nucleophilic Catalysts for Oxime Linkage

Legal Events

Date Code Title Description
A107 Divisional application of patent
A201 Request for examination
AMND Amendment
E902 Notification of reason for refusal
AMND Amendment
E601 Decision to refuse application
X091 Application refused [patent]
AMND Amendment
X701 Decision to grant (after re-examination)
GRNT Written decision to grant