KR20010072440A - 외인성 유산균의 구강 미소세균총내 도입 - Google Patents

Abstract

충치, 치태 및 치주감염의 예방 또는 치료용 조성물의 제조를 위한, 구강의 상재 미소세균총의 일부가 아니고, 저산성화성이며 치아의 균막에 직접적으로 점착할 수 있는 유산균의 용도 및 이의 제조방법.

Description

외인성 유산균의 구강 미소세균총내 도입{INCORPORATION OF EXOGENOUS LACTIC BACTERIA INTO THE ORAL MICROFLORA}

본 발명은 충치, 치태 및 치주감염의 예방 또는 치료를 위한 미소세균총(microflora)에 외인성 유산균을 도입시키는 것에 관한 것이다.

구강에는 상재 및 비상재 미소세균총이 존재한다. 전자에는 구강면에 다소 영구적으로 상재할 수 있는 미생물이 포함된다. 이러한 세균은 주로 혀, 협측 점막 및 치아에 주로 존재하는 반면 잇몸, 입술, 뺨, 구개 및 입바닥에는 단지 매우 적은 미소세균총만이 존재한다.

혀 및 협측점막상의, 자연 상재 미소세균총에는 스트렙토콕커스 (Streptococcus), 베일로넬라 (Veillonella), 박테로이데스 (Bacteroides) 및 헤모필러스(Haemophilus)로부터 선택된 미생물이 포함된다. 치아상에는, 스트렙토콕시 (Streptococci), 락토바실리 (Lactobacilli) 및 액티노마이세스 (Actynomyces)가 지배적이나 다양한 그람양성 및 음성 콕시 및 로드가 발견될 수 있다.

예컨대, 프랜드슨 등(Frandsen et al)은 에스.상구이스 (S. sanguis) 가 협측점막상에 지배적이나 이의 주 서식처는 치아표면이고, 에스.고르도니이 (S. gordonii)는 성숙된 잇몸상 플라그에서 성장하며, 에스. 오랄리스 (S. oralis) 및 에스. 미티스 ( S. mitis)는 초기 치태에서 성장함을 밝혔다 (Oral Microbiol.Immunol., 6, 129-133, 1991). 뮤탄스군에 속하는 균주는 치아상에 소재한다 (S. criscetus, S. downei, S. ferus, S. macacae, S. mutans, S. rattus, S. sobrinus). 에스.밀레리(S. milleri)군에 속하는 균주는 치농양에 지배적으로 존재한다 (S. anginosus, S. constellatus, S. intermedius; Bentley et al., Int. J. System. Bacter. 1991, 41, 487-494; Wood et al., The Genera of Lactic Acid Bacteria, Blackie Academic and Professional., Chapman & Hall, W. H. eds., 1995).

많은 이러한 미생물은 무해한 공생생물이나, 이들중 다수는 상당히 꽤 많은 질병의 병인으로 인정되고 있다 (Hill, M. J. and Marsh, P. D. eds. Human Microbial Ecology, 1990, CRC Press, Boca Raton Florida, USA).

치태는 세포외 다당류의 매트릭스내 세균세포와 타액물로 이루어진 치아의 표면에 형성된 막이다. 이가난 직후, 치아는 약 1.3㎛ 두께 및 통상의 칫솔질로는 제거할 수 없는 후천적 에나멜 균막(AEP)인 타액의 비정질층으로 덮인다. AEP 가형성된 직후 치아상에 세균이 침착하고 플라그는 8-12 시간내 다층구조물로서 뚜렷해진다. 제 1 층은 주로 특정 점착-수용체인식을 통해 치아에 부착되는 세균(최초의 콜로니저)으로 구성되고; 이것은 상동의 특정 결합 또는 단순한 병렬을 통해 상호간에 접착하는 이차 콜리니저에 대한 기층을 형성한다. 플라그 점착은 주로 세가지의 메카니즘에 의해서 확실해진다: 외세균층상의 타액 균막의 존재, 상이한 세균종의 특이적 공집합 및 세균에 의해 합성되고 플라그매트릭스내 포획되어 잔존하는 글루칸(Skopek et al., Oral Microbiol. Immunol., 9, 19-24, 1994;Kolenbrander et al., Meth. Enzymol., 253, 385-397, 1995; Hiroi et al., FEMS Microbiol Lett., 96, 193-198, 1992; Gibbons et al., Infect. Immun., 52, 555-561, 1986).

발효공정동안 구강세균에 의해 생성된 유기산은 직접적으로 충치를 유발한다. 이러한 산은 티아의 경조직을 공격하여 칼슘, 포스페이트, 카본에이트, 마그네슘, 플루오라이드, 나트륨과 같은 이온을 방출시킨다. 구강내 pH 가 다시 중성정도로 증가하면, 타액은 칼슘으로 포화되어 치아로부터 이의 방출이 억제된다.

구강에서 발견되는 모든 식품 잔류물들중에서, 탄수화물이 가장 높은 충치 촉진 효과를 보이며 구강 세균발효에 직접적으로 이용할 수 있다.

잠재적으로 모든 당 발효 미소-유기체는 우식원성이나, 코노날 및 루트 카리에스의 주 병인은 강산을 생산하는 뮤탄 스트렙토콕시이며; 고 내산성인 락토바실리가 또한 포함될 수 있다. 인간에서는, 에스. 뮤탄스 (S. mutans) 및 에스. 소브리누스 (S. sobrinus) 가 좀더 우식원성균주이고, 치아상에 생존하나 전치열에서는 전이증식하지 않는다. 어금니에서 앞니쪽으로 갈수록 이들의 수가 감소함이 실제로 실증되었다(Lindquist et al., Dent. Res., 69, 1160-1166, 1990). 더욱이 인간근사 플라그에서, S. mutans 및 S. sobrinus 는 접촉면 정상의 가장 카리에스에 걸리기 쉬운 부위에 우선적으로 서식한다 (Ahmady et al., Caries Res., 27, 135-139, 1993). S. sobrinus 가 또한 S. mutans 와 비교하여 어금니 영역에서 더 우세함이 발견된다 (Lindquist et al., Caries Res., 2 5, 146-152, 199 1).

S. mutans 및 S. sobrinus 는 주로 특이 어드헤진-수용체를 통해 치아의 균막에 부착하는 것이 밝혀졌다. 기본 등 (Gibbons et al) 은 S. mutans 은 균막내 타액성분에 결합하는 어드헤진을 운반하는 반면, S. sobrinus 세포는 균막내 글루칸에 결합하는 어드헤진을 프로세싱하는 것으로 보인다는 것을 밝혔다 (Infect. Immun., 52, 555-561, 1986).

일시적 미소세균총은 구강에 때때로 존재할 수 있으나, 영구히 상재하지는 않는 (비록 이러한 세균을 반복하여 경구투여하더라도) 외인성 세균을 갖는다. 모든 식품세균, 특히 유산균은 이러한 일시적 미소세균총의 일부가 될 수 있다. 이러한 외인성 유산균은 치아의 균막에 직접적으로 점착할 수 있는 것으로 밝혀진 적이 없다. 그러나 외인성 유산균의 반복된 투여는 혀, 협측점막, 잇몸, 입술, 뺨, 구개, 입바닥 및 치아와 같은 구강전표면에서의 전이증식을 가져올 수 있다. 이러한 전이증식은 상재 미소세균총의 세균에 대한 특이적 결합(공집합현상) 또는 상재 세균에 의해 생산되는 다당류의 매트릭스내 포획 또는 타액 단백질(특히 당단백질)에 대한 점착을 통한 부착으로부터 발생할 수 있다.

락토바실러스 카제이 람노수스 (Lactobacillus casei rhamnosus) GG (ATCC53103)는 구강, 필경 협측점막의 상피상에 전이증식하는 것으로 보고되었다. 이 균주는 또한 소장의 상피에도 점착한다 (US5032399, Gorbach et al.; Micr. Ecol. In Health and Dis., 7, 295-298, 1994). 이와 반대로 엘. 람노스 (L. rhamnosus) 는 치아에 점착하지 않는다.

일본특허 제4021633호 (Cyconmedix KK) 에 또한 락토바실러스 액시도필러스(Lactobacillus acidophilus) 에 의한 구강의 전이증식, 필경 협측점막의 상피상의 전이증식이 보고되어 있다. 많은 락토바실러스 액시도필러스가 또한 소장의 상피에 점착하는 것으로 공지되어 있다 (EP577904; EP199535; Perdigon et al., Medicina,46, 751-754, 1986; Perdigon et al., Immunology, 63, 17-23, 1988).

외인성 세균은 또한 구강내 상재 미소세균총의 성장을 억제하는 인자를 생산할 수 있다. 예컨대, EP759469 (Societe des Produits Nestle)에는 구강 병원균 S. sobrinus, S. sanguis, S. mutans 및 A. viscosus 의 발육을 억제하기 위하여 Micrococcus varians 에 의해 생산되는 박테리오신의 사용이 기재되어 있다.

몇몇의 방법, 즉 Streptococcus salivarius 및/또는 Stomatococcus mucilaginosus와 같은 비우식원성 상재 미소세균총의 공생세균의 투여 및/또는 L. casei, L. ferimentum, L. acidophilus, L. crispatus, L. gasseri, L. salivarius, L bulgaricus 및 S. salivailus와 같은 외인성 유산균의 반복투여가 구강의 상재 미소세균총의 발육을 최소화시키기 위하여 사용되어 왔다 (Tanzer et al., Infec. and Immunity, 48, 44-50, 1985; W092/14475).

또한 박테리오신의 적용이 충치를 감소시키기 위하여 제안된 심사된 방법중의 하나이다. 이러한 분자는 장래성이 있는 항충치제 및 구강의 전이증식을 조절하는데 중요한 인자로서 흥미를 끌고있다. 일부 박테리오신의 적용의 항-카리에스 가능성은 치아 플라그와 결합된 세균 및 뮤탄 스트렙토콕시에 대한 이들의 강력하고 광범위한 항균성 및 인간 세이프로 중시되는 세균에서 이들의 자연발생으로부터 발생한다 (US5368845 of Colgate, 및 W094/12150 of Smithkline Beecham).

또한 우유 유도체의 적용이 구강의 건강을 위하여 관심을 끌고 있다. 사실, US5427769 (Nestec S.A.) 에는 치아와 미셀라 카제인을 Streptococcus sobrinus에 의한 전이증식을 억제하기에 충분한 양으로 함유하는 식용 조성물과 접촉시켜 막는 또 다른 대안이 기재되어 있다. EP748591 (Societe des Produits Nestle S.A.) 에는 또한 플루오리데이트화 미셀라 카제인 또는 이의 충치 또는 플라그치료용 미셀라 서브유닛의 사용이 보고되어 있다. US4992420 (Nestec S.A.) 에는 플라그 및 카리에스를 박멸하기 위해 우유로부터 유도된 카파-카제이노-글리코매크로펩티드에 의한 협측구강의 치료가 기재되어 있다.

구강의 상재 미소세균총의 일부가 아닌 유산균은 실제로 치아의 균막에 직접적으로 점착할 수 있음이 밝혀진 적이 없다. 따라서, 치아의 표면을 전이증식시킴으로서, 이러한 유산균은 구강 병원체를 포함한 상재 미소세균총의 성장에 대한 억제활성을 발휘한다.

본 발명의 목적은 충치, 치태 및 치주감염의 예방 또는 치료를 위한 조성물을 제조하기 위한, 저 산성화성이며, 치아의 균막에 직접적으로 점착할 수 있는 구강의 상재 미소세균총의 일부가 아닌, 유산균의 용도를 제공하는 것이다.

다른 목적은 점착인자를 통한 치아 균막에 대한 유산균의 점착성을 증가시키도록 유전공학적으로 개질 및/또는 구강에서 약 5.5-7 의 pH 에 기여하는 한층 낮은 산성화성으로 유전공학적으로 개질된 유산균의 용도이다.

다른 목적은 충치, 치태 및 치주감염의 예방 또는 치료를 위한 조성물의 제조를 위한, 구강의 상재 미소세균총의 일부가 아닌 유산균의 용도이며, 여기에서유산균은 하기로 이루어진 군으로부터 선택한다:

- 치아의 균막에 점착하고 저산성화성이 되도록 유전공학적으로 개질된 산성화성 유산균;

- 저 산성화성이고 치아의 균막에 점착하도록 유전공학적으로 개질된 비점착성 유산균;

- 치아의 균막에 점착하도록 유전공학적으로 개질되고 저 산성화성이되도록 유전공학적으로 개질된 비점착성의 산성화성 유산균.

다른 목적은 상재 미소세균총의 일부가 아니고, 저산성화성이며 치아의 균막에 직접적으로 점착할 수 있는 유산균을 함유하는 구강건강용 조성물을 제공하는 것이다.

다른 목적은 (1) 치아의 균막에 직접적으로 점착할 수 있고, 5.5 이상의 구강내 pH 에 기여할 수 있는 구강의 상재 미소세균총의 일부가 아닌 일종이상의 유산균 및 (2) 임의 형태의 카제이노-글리코매크로펩티드, 미셀라 카제인, 플루오르화 미셀라 카제인, 레니트화유 또는 박테리오신으로 구성된 구강건강용 조성물을 제공하는 것이다.

다른 목적은 균주 CNCM I-1984, CNCM I-1985, CNCM I-1986, CNCM I-1987 및 LMG P- 18997로 구성된 군에서 선택한 일종이상의 유산균 균주를 함유하는 구강건강용 조성물을 제공하는 것이다.

다른 목적은 점착인자를 통해 치아의 균막에 대한 유산균의점착성을 증가시키기 위하여 유전공학적으로 개질된/거나 약 5.5-7 의 구강에서의 pH 에 기여하도록 한층 덜한 산성화성이로 유전공학적으로 개질된 일종이상의 유산균을 함유하는 구강건강용 조성물을 제공하는 것이다.

다른 목적은 하기로 구성된 군에서 선택된 유산균을 함유하는 구강건강용 조성물을 제공하는 것이다 :

- 치아의 균막에 점착하고 저산성화성이 되도록 유전공학적으로 개질된 산성화성 유산균;

- 저 산성화성이고 치아의 균막에 점착하도록 유전공학적으로 개질된 비점착성 유산균;

- 치아의 균막에 점착하도록 유전공학적으로 개질되고 저 산성화성이되도록 유전공학적으로 개질된 비점착성의 산성화성 유산균.

마지막 추가의 양태로서, 본 발명은 하기 단계들로 이루어진 치아에 점착할 수 있는 유산균을 스크리닝하는 방법을 제공한다 :

(1) 치아에 점착할 수 있는 유산균 균주의 특이 표면 단백질을 인식할 수 있는 모노클로날 항체 제조단계, (2) 치아에 점착할 수 있는 균주의 모노클로날 항체를 사용하여 임의의 유산균 균주의 스크리닝단계.

- 도 la, lb 및 1c 는 각각 S. sobrinus OMZ 176, L. lactis NCC2211 및 S. thermophilus NCC 1561에 대한 점착 포화 그래프를 나타낸다.

- 도 2 는 결합된 세포의 수대 CGMP의 증가량을 도표화하여 세 균주로부터 얻은 그래프를 나타낸다 .

- 도 3 은 결합된 세포의 수대 As-CGMP 의 증가량을 도표화하여 세 균주로부터 얻은 그래프를 나타낸다.

실시예 1: 균주 및 배양조건

100 개이상의 균주(Nestle culture collection에 속함), 특히 하기의 23 개의 균주를 타액피복 히드록시아파타이트 비드에 부착하는 능력에 대하여 스크리닝하였다: S. thermophilus YS4 (NCC 2284), S. thermophilus Sfi6 (NCC 1971), S. thermophilus Sfil3 (NCC 2008), S. thermophilus Sfi2l (NCC 2038), S. thermophilus Sfi39 (NCC 2130), S. thermophilus Sfi42 (NCC 2145), S. thermophilus Sfi47 (NCC 2172), S. thermophilus S118 (NCC 1529), S. thermophilus S119 (NCC 1536), S. thermophilus S122 (NCC 1554), S. thermophilus S123 (NCC 1561), S. thermophilus S126 (NCC 1587), L. lactis subsp. cremoris 15 (NCC 92), L. lactis subsp. cremoris 25 (NCC 1932), L. lactis subsp. cremoris 136 (NCC 2419). L. lactis subsp. diacetylactis 8 (NCC 1970), L. lactis subsp. diacetylactis 28 (NCC 2057), L. lactis subsp. diacetylactis 69 (NCC 2225), L. lactis subsp. diacetylactis 80 (NCC 2272), L. lactis subsp. lactis 29 (NCC 2211), L. lactis subsp. lactis 50 (NCC 2224), L. lactis subsp. lactis 54 (NCC 2228), S. macedonicus 216 (NCC 2484).

5개 구강 균주, S. sobrinus OMZ 176, S. oralis OMZ 607, A. naeslundii OMZ 7451, V dispar OMZ 493 및 F. nucleatum OMZ 596 를 the Institute fur Orale Mikrobiologie und Aligemeine hnmunologie, University of Zurich 로부터 수득하였고 이것을 37℃ 에서 무산소생활(GasPackSystem,BBL)로 FUM 배지에서 배양하였다.

모든 균주는 -20℃ 의 글리세롤에서 저장하고 이들의 특정 최적온도에서 사용전 14 시간동안 예비배양하였고; S. sobrinus OMZ 176 은 FUM 배지에서 성장하고 (Gmur et al.) lactococci 및 streptococci는 Ml7 에서 성장하였다 (Difco)(단 Belliker (20 g 트립톤, 5 g 이스트 추출물, 2.5 g 젤라틴, 5 g 덱스트로오스, 5 g 수크로오스, 5 g 락토오스, 4 g NaCl, 0.5 g 아스코르브산, 10 g 육추출물을 물 1l 에 용해시켜 제조)에서 성장하는 S. thermophilus NCC 1529, S 119, S 122, NCC 1 561 및 S 126 제외).

플레이트 카운팅을 위해: S sobrinus OMZ 176 를 Mitis-Salivarius agar (Difco)에 배양시키고, S. thermophilus NCC1529, S119, S122, NCC1561, BF 11116 및 S126 를 Belliker agar (15g 의 박토 아가를 액체 Belliker에 첨가하여 제조, Difco)에 배양시키고, 나머지 유산균 균주는 M17 agar (Oxoid)에서 배양시켰다.

실시예 2: 모노클로날항체의 제조

모노클로날항체는 S-HA 디스크상에서 함께 성장하고 치태를 의태하는 생막을 형성하는 5 개의 구강 균주들중에서 L. lactis subsp. lactis NCC2211 를 검출하기의한 도구로서 사용한다. 따라서 모노클로날 항체는 교차반응이 존재하지 않음을 입증하기 위하여 이러한 균주에 대하여 시험하였다.

이를 위해서, 모노크로날항체는 그라나토 등 (Granato et al) 에 의해 기술된 바와 같이 생산한다. 마우스 모노클로날 IgE 항체 항우 우유 락토글로불린으로위장에서 알러지의 연구가 가능하다 (Clin. Exp. Immunol.,63, 703-710, 1986).

실시예 3: 점착성 유산균의 선택

타액피복 히드록시아파타이트 비드 (S-HA)에 부착

유산균 다이어리 균주들중에서 타액피복 히드록시아파타이트 비드(S-HA)에 부착할 수 있는 균주를 선택하기 위하여, Neeser et al. (1994) 에 의해서 앞서 기술된 절차를 약간 변형하여 사용하였다 : 비드 세척은 150 ㎕ 부피로 실시하고 히아민 히드록시드는 벤제토니늄 히드록시드(Sigma)로 대체하였다.

간략히는, 모든 균주는 FUM 에서 대수 단계의 끝까지 성장시켰다 (단 Belliker 에서 배양한 S. thermophilus NCC 1529, S 119, S 122, NCC 1561 및 S 126 은 제외). S. sobrinus OMZ 176, L. lactis subsp. lactis NCC2211, 50 및 54, S. thermophilus NCC1529, S119, S122, NCC1561 및 S126 는 37℃에서 육성시키고, 나머지 lactococci는 30℃에서, 나머지 streptococci는 42℃에서 육성시켰다.

5mg의 히드록시아파타이트 비드 (BDH Chemicals Ltd, Poole, England)를 연구실의 자원자로부터 얻은 70㎕ 정제 타액으로 피복하고 앞서 설명한 바와 같이 제조하였다 (Neeser et al., 1994). 타액 피복 비드를 4℃ 에서 밤새워 보존시킨후, 세척시키고 (처음에는 증류수로 세정하고 이어서 HEPES 버퍼로 세정)최종적으로 물질대사적으로 표식된 세균 현탁액 (세균은 10μCi/ml¹⁴C 아세트산으로 보충된 이들의 배지에 육성시켰다)의 100㎕ 로 접종시켰다. 점착이 37℃ 에서 45 분동안 일어난후, 비결합 세균은 세척하여 제거하고 부착된 세포는 LKB 섬광 카운터 (type1219 Rackbeta)로 직접적으로 계수하였다.

점착 퍼센티지는 각각의 웰에 첨가된 총 방사능에 대한 비드에 결합된 방사능으로 나타내었다. 모든 측정은 3 중으로 실시하였다. 표 2 는 여러 스크린된 균주 및 S. sobrinus OMZ176 (참조 균주)에 대하여 수득된 타액피복 히드록시아파타이트 비드에 대한 점착의 퍼센티지가 기재되어 있다.

여러 스크리닝된 균주에 대해서 얻어진 타액피복 히드록시아파타이트 비드에 대한 점착의 퍼센티지

균주	%점착(+/-SD)
S. sobrinus OMZ 176	2.23 +/-O.49
S. thermophilus Sfi42 (NCC 2145)	0.08+/-O.02
S. thermophilus Sfi47 (NCC 2172)	0.14 +/-O.04
S. thermophilus NCC1529	2.89 +/-O.60
S. thermophilus SI 19 (NCC 1536)	0.15 +/-O.04
S. thermophilus S 122 (NCC 15 54)	0.93 +/-O.17
S. thermophuus NCC1561	2.19 +/-O.50
S. thermophilus S126 (NCC 1587)	1.19 +/-O.56
L. lactis subsp. diacetylactis 28 (NCC 2057)	1.59 +/-O.17
L lactis subsp. diacetylactis NCC2225	1.96 +1-0.40
L. lactis subsp. diacetylactis 80 (NCC 2272)	1.20 +/-O.35
L. lactis subsp. lactis NCC2211	2.85 +/-O.85

4개의 균주, S. thermophilus NCC1529 (CNCM I-1984), S. thermophilus NCC1561 (CNCM I-1985), L. lactis subsp. lactis NCC2211 (CNCM I-1986) (이후 L. lactis NCC2211로 약칭) 및 L. lactis subsp.diacetylactis NCC2225 (CNCM I-1987) 는 S. sobrinus OMZ 176에 가까운 값을 보였다.

L.lactis NCC2211 및 S. thermophilus NCC1561을 구강의 온도인 37℃에서 매우 잘 생장하기 때문에 좀더 유망한 후보균주로 선택한 반면, L. diacetylactisNCC2225는 30℃의 최적 성장 온도를 갖는다. 특히, L. lactis NCC2211 은 수크로오스상에서는 생장할 수 없으나, 광범위한 당을 발효시킬 수 있으며, 더욱이 다른 구강 균주는 이들의 인버타아제를 통해 글루코오스를 제공할 수 있다.

점착포화그래프

비드포화가 얻어질 수 있는지에 대해 입증하기 위하여, 결합된 CFU 대 웰에 접종된 CFU의 그래프를 구하였다. 50% 포화는 얻어진 그래프의 곡점으로부터 직접적으로 이끌어내었다. S. sobrinus OMZ 176, L. lactis NCC2211 및 S thermophilus NCC 1561 에 대한 점착 포화 그래프를 구하였다. 이것들은 도 1 에 나타내었다.

3 개의 균주에 대한 50% 비드 포화를 수득하기 위해서 웰내에 접종된 CFU 수 및 결합된 CFU 의 대응하는 수를 그래프의 곡점으로부터 직접 유추하여 표 3 에 나타내었다.

50% 비드포화를 얻기위한 웰당 접종시킨 CFU의 수

	cfu/웰	결합된cfu	%점착
S. sobrinus OMZ 176	4.OOE+07	4.OOE+06	10%
L. lactis NCC2211	1.OOE+07	9.OOE+05	9%
S. thermophilusNCC1561	3.OOE+07	2.OOE+06	7%

실시예 4: 카제인노글리코매트로펩티드의 효과

L. lactis NCC2211 및 S. thermophilus NCC1561의 점착에 대한 CGMP 의 영향을 연구하여 병원성 균주 (즉 S. Sobtinus OMZ 176)에 대한 상기 두 균주중의 하나의 우세를 촉진시키기 위한 이의 이용가능성을 입증하였다. 카제이노-글리코펩티드 (CGMP)및 이의 탈시알릴화 유도체(As-CGMP)를 Nestec S. A., Lausanne (이들의 제조는 Neeser et al., 1994참조)로부터 수득하였다.

투여량-반응 효과를 상이한 농도로 CGMP 또는 As-CGMP 를 함유하는 100㎕의 세균 현탁액 (미리 계산된 50% 비드 포화에 해당하는 CFU/ml)을 웰에 접종시킨후 통상적으로 점착분석을 행하여 S-HA 에 대한 점착에 대하여 조사하였다. 범위 0.05-3 mg/ml에서의 농도를 시험하였다. CGMP 또는 AS-CGMP의 존재에서 세균의 예비 인큐베이션은 행하지 않았다.

도 2 에서, 결합된 세포의 수 대 CGMP의 증가량을 도표화하여 세 균주에 대하여 얻어진 그래프가 제공되어 있으며, 접종된 세포의 수는 각 균주에 대하여 앞서 계산된 50% 비드 포화에 해당하는 수이다. S. sobrinus OMZ 176 의 경우에서 관찰되는 강력한 억제는 Neeser et al. (1994) and Schupbach et aL (J. Dent. Res., 75, 1779-1788, 1996)에 의해 수득된 앞선 결과를 확인해준다.

도 2 에서 입증하였듯이, 0.25 mg/ml는 S. sobrinus OMZ 176의 점착의 50% 억제를 가져오는 반면, S. thermophilus NCC1561 로 동일한 효과를 갖기 위해서는 2 mg/ml 이상이 필요하다. CGMP 은 L. lactis NCC2211의 점착을 약간 향상시킨다.

CGMP의 경우에서와 같이, 탈시알리레이트화 유도체는 S. sobrinus OMZ 176의 점착을 억제하고; 단지 0.05 mg/ml 만이 점착 퍼센티지에서 50% 감소시키는데 필요하다. AS-CGMP 는 L. lactis NCC2211 점착에 영향을 미치지 않는 반면, 이것은 S. thermophilus NCC1561 중의 하나를 약간 촉진시킨다 (도. 3).

실시예 5: 치 약

10⁵cfu/ml 의 일종이상의 유산균 균주 CNCM I-1984, CNCM I-1985, CNCM I-1986, CNCM I-1987 또는 LMG P- 18997 를 냉동건조형태로 하기를 함유하는 혼합물에 첨가하여 치약을 제조한다:

세틸 피리디니윰 클로라이드 1.65%

소르비톨 (70% soln) 33.0%

글리세린 25.0%

소듐 카르복시메틸 셀룰로오스 2.0%

소듐 플루오라이드 0.25%

실리카 (RP 93) 26.3%

증점성 실리카(Sident 22) 8.1%

소듐 사카린 0.5%

폴록사머 (Pluronic F108) 3.2%,

이 치약은 충치, 치태 및 치주감염의 예방 또는 치료용이다.

실시예 6: 아이스크림

10.8% 유산 지방, 13.5% 우유고형물 (비지방), 0.3% Emulstab(등록상표) SE30 et 0.3% Emulstab(등록상표) 포옴 (Grindsted, DK)를 함유하는 크림을 제조하고, 이어서 이것을 105℃ 에서 20s 간 살균하고, 75℃ 및 300 bar에서 균질화시킨후 38℃ 로 냉각시키고, 일종이상의 유산균 균주 CNCM I- 1 984, CNCM I- 1985,CNCM I- 1986, CNCM I- 1 987 또는 LMG P-18997을 10⁷-10⁸cfu/ml 율로 지수 성장 단계에서 취한 MRS 배지중 예비배양물을 접종시킨다. 이어서 크림을 약 4.5의 pH 까지 38℃ 에서 10 시간동안 발효시킨다. 발효의 말미에서, 수크로오스 및 글루코오스시럽을 여기에 첨가한다. 크림의 조성은 하기 표 4 에 나타내었다.

이어서 이 혼합물에 타격을 가해 4℃로 냉각시켜 4℃에서 저장한후 냉각시켜 95부피% 정도로 팽창시킨다.

성분	조성(kg)	지방(%)	비지방고형물(%)	수크로오스(%)	고형물함량(%)
크림(35%)	30.83	10.79	1.54		12.33
분말탈지유	12.45		11.95		11.95
Emulstab(등록상표)SE30	0.41				0.37
Emulstab(등록상표)포옴	0.41				0.36
물	55.91
총:크림베이스	100.00	10.79	13.49	-	25.01
크림베이스	74.14	8.00	10.00	-	18.54
수크로오스	22.06			15.00	15.00
글루코오스시럽	3.80				3.00
발효아이스크림	100.00	8.00	10.00	15.00	36.54

실시예 7: 요구르트

51 MRS 배양 배지를 121℃에서 15 분간 살균한후 대략 10⁹cfu/ml 함유하는 S.Thermophilus 균주 CNCM I-1984, CNCM I-1985 또는 LMG P-18997중 일종이상의 활성 배양물의 5부피%로 접종시킨다. 41℃에서 8 시간동안 인큐베이션시킨후,4.5. 10⁸cfu/ml 함유하는 스타터를 수득하였다.

0.1% 이스트 추출물이 첨가된 10% 의 건조물함량을 갖는 5 l 재구성 탈지유 을 121℃ 에서 15 분간 살균시키고 대략 10⁹세포/ml 함유하는 시판용 증점성 Streptococcus thermophilus의 활성 배양물의 2%로 접종시켰다. 41℃ 에서 4 시간동안 인큐베이션시킨후 4.5.10⁸세포/ml 를 함유하는 스타터가 수득되었다.

2.5% 탈지유 분말로 강화된후 90℃에서 30분간 살균된 3.7% 지방을 함유하는 전유의 1 배치에 균주 CNCM I-1984, CNCM I-1985 또는 LMG P-18997중 하나이상의 2부피% 스타터 및 증점성 Streptococcus thermophilus 의 스타터 3부피% 를 접종시켰다. 접종된 우유를 교반시키고, 포트에 붓고 41℃ 에서 4 시간동안 인큐베이션시켰다.

수득된 요구르트는 양호한 탄탄하고 부드러운 조직을 가지며 구강의 건강을 위한 것이다

실시예 8: 추잉검

충치, 치태 또는 치주감염의 예방 또는 치료용 추잉검은 S.Thermophilus 균주 CNCM I-1984, CNCM I-1985 또는 LMG P-18997 중 일종이상의 활성 배양물을 대략적으로 10⁴- 10⁹cfu/g 을 함유하도록 하기의 전형적인 성분들에 첨가하여 제조할 수 있다:

크실리톨 67.5%

검 베이스 20.%

탄산칼슘 5.%

글리세린 3.%

Pluronic F127 2.%

셀룰로오스 검 1.%

발라스트 화합물 0.5%

향미료 1%

실시예 9: 애완동물사료

구강 건강용 애완동물 사료는 옥수수, 옥수수 글루텐 치킨 및 어류 밀, 염, 비타민 및 미네랄로 이루어진 사료혼합물을 제조하여 수득한다. 사료 혼합물은 예비컨디셔너에 공급하여 습윤시킨다. 이어서 예비컨디셔너에서 방출되는 습윤된 사료를 압출기-쿠거로 공급시켜 젤라틴화시킨다. 압출기로부터 방출되는 이 젤라틴화된 매트릭스를 다이스를 통해 압출시킨다. 이 압출물을 개가 먹기에 적당한 조각으로 절단하여 약 110℃ 에서 약 20분간 건조시킨후 냉각시켜 약 0.6 수활성을 갖는 펠렛으로 형성시킨다.

이 펠렛에 3 개의 코팅 혼합물을 분무한다. 각 코팅 혼합물은 일종이상의 S. Thermophilus 균주 CNCM I- 1984, CNCM I-1985 또는 LMG P-18997 의 활성 배양물을 함유하나 하나의 코팅 혼합물은 코팅 기재로서 수소화 대두지방을 이용하고, 다른 하나의 코팅 혼합물은 코팅 기재로서 물을 사용하며 마지막 하나의 코팅 혼합물은 코팅 기재로서 단백질 다이제스트를 사용한다. 이 펠릿은 대략 10⁴내지 10⁹cfu/g 의 상기 균주를 함유한다.

하기의 기술내용에서, 구강은 구강점막 (잇몸, 입술, 뺨, 구개 및 입바닥), 혀 및 치아(인공구조물포함)로 구성된, 인간 또는 애완동물과 같은 동물의 구강을의미한다.

구강의 상재 미소세균총에는 구강내 자연적으로 생존하는 모든 미생물이 포함되며 이는 구강 표면상에 영구히 상재할 수 있기 때문이다. 또한 구강의 상재 미소세균총에는 비록 잇몸틈 및 치주 포켓이 건강한 구강에 존재하지 않더라도 치아경질부와 연질 조직사이의 계면영역(치아-잇몸연결부)에 생존하는 세균이 포함된다. 이러한 미소세균총에는 Streptococcus, Staphylococcus, Enterococcus, Micrococcus, Peptostreptococcus, Peptococcus, Lactobacillus, Corynebacterium, Actinomyces, Arachnia, Rothia, Alcaligenes, Eubacterium, Propionibacterium, Bifidobacterium, Bacillus, Clostridium, Neisseria/Branhamella, Veillonella, Enterobacteriaceae, Campylobacter, Eikenella, Actinobacillus, Capnocytophga, Haemophilus, Simonsiella, Bacteroides, Fusobacterium, Porphyromonas, Prevotella, Leptotrichia, Wolinella/Selenomonas, Mycoplasma, Candida, Spirochaetes, Protozoa 로부터 선택된 미생물이 포함된다.

일시적 미소세균총에는 구강에 때때로 존재할 수 있으나, 영구히 상재하지 않는 외인성 세균이 포함된다. 이러한 일시적 미소세균총에는 모든 식품 미생물, 예컨대 bifidobacteria (B. infantis, B. adolescentis, B. brave 및 B. longum); lactococci (Lactococcus lactis subsp. lactis, Lactococcus lactis subsp. cremoris, 및 Lactococcus lactis subsp. lactic biovar diacetylactis); streptococci (Streptococcus thermophilus, S. lactis, S. lactis cremoris 및 S. lactis diacetylactis); lactobacilli (Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus, Lactobacillus helveticus, Lactobacillus farciminis, Lactobacillus alimentarius, Lactobacillus casei subsp. casei, Lactobacillus delbruckiisubsp. lactis, Lactobacillus sake, Lactobacillus curvatus, Lactobacillus fermentum 및 comprising L. johnsonii로 이루어진 액시도필(acidophile)군; 참조 Fujisawa et al., Int. J. Syst. Bact., 42, 487-491, 1992); pediococci (Pediococcus pentosaceus, Pediococcus acidilactici 및 Pediococcus halophilus); enterococci; staphilococci (Staphylococcus xylosus 및 Staphylococcus carnosus); micrococci (Micrococcus varians); Debaromyces, Candida, Pichia, Torulopsis 및 Saccharomyces속 이스트; 및 Aspergillus, Rhizopus, Mucor 및 Penicillium 속 곰팡이가 포함될 수 있다.

본 발명의 첫번째 목적은, 충치, 치태 및 치주감염의 예방 또는 치료용 조성물의 제조를 위한, 구강의 상재 미소세균총의 일부가 아니고, 저산성화성이며 치아의 균막에 직접적으로 점착할 수 있는 유산균의 용도에 관한 것이다.

본 발명에 따른 유산균은 저 산성화성이고 치아의 균막에 직접적으로 점참할 수 있어, 이러한 유산균으로 제조된 조성물은 치아의 병원체를 제거하거나 이들의 부착을 방지시킨다. 본 발명에 따른 유산균은 "저산성화성"이며, 이는 상기 유산균이 병원성 균주보다 산성화성이 덜하다는 것을 의미한다. 따라서, 이것은 약 5.5-7 의 구강내 pH 에 기여한다. 이것은 바람직하게는 다이어리 오리지널로부터 유래한다.

본 발명에 따른 유산균은 특이적 또는 비특이적 상호작용 및/또는 점착 인자를 통해 치아의 균막에 점착한다. 특이적 점착 인자는 단백질 또는 다당류이다.

일종이상의 유산균은 Streptococcus thermophilus, Lactococcus lactis subsp. lactis, 및 Lactococcus lactis subsp. lactis biovar diacetylactis로 이루어진 군 및 특히 균주 CNCM I-1984, CNCM I-1985, CNCM I-1986, CNCM I-1987 및 LMG P- 18997로 이루어진 군에서 선택된다.

이러한 균주는 치아의 균막에 대한 이들의 첨착력때문에 유산균들중에서 선택되었으며, 이들의 최적 성장온도는 약 37℃이고, 이것은 구강내 온도이다. 더욱이 이것은 글루코오스 및 수크로오스를 발효시킬 수 있고, 우식원성 균주의 병원성의 인자인 글루칸을 합성하지 않는다.

본 발명의 다른 목적에 따라, 유산균을 유전공학적으로 개질시켜 이것이 점착인자를 통해 치아의 균막에 점착하도록하는 것이 고려중이다. 치아의 균막에 이미 점착되어 있는 유산균에 있어서, 이러한 개질은 상기 균주가 치아의 표면에 좀더 점착성이 되도록 만들고자 하는 것이다. 마찬가지로, 임의의 비점착성 유산균 (Lactobacilli는 아님)은 유전공학적으로 개질시켜 치아의 균막에 점착시킬 수 있다.

유산균의 이러한 개질은 예컨대 유전자 X17390, X14490 또는 X53657 (GenBank accession numbers)을 삽입시켜 달성할 수 있다. 이러한 유전자는 에스.뮤탄스에서 타액 당단백질에 대한 점착을 매개하는 Antigen I/II 의 발현에 관련이 있다.

본 발명에 따라, 유산균을 유전공학적으로 개질시켜 저산성화성로 하는 것이 또한 가능하다. 이미 낮은 산성화성인 유산균에 있어서는 상기 개질은 이의 유산생산을 감소시켜 상기 효과를 증가시키고자 하는 것이다.

이러한 개질은 많은 방법, 바람직하게는 하기 문헌에 기재된 프로토콜중의 하나에 따라 달성될 수 있다 : Boumerdassi et al., Appl. Environ. Microbiol.,63, 2293-2299, 1997; Platteeuw et al., Appi. Environ. Microbiol, 61, 3967-3971, 1995; Ito et al., Biosci. Biotechnol. Biochem., 58, 1569-1573, 1994.

본 발명에 따라, 유전공학적으로 개질된 또는 개질되지않은 일종이상의 유산균은 인간 또는 애완동물과 같은 동물에서 충치, 치태 또는 치주감염의 예방 또는 치료를 위한 조성물의 제조를 위해 "유효량" 으로 사용한다. 이러한 양은 바람직하게는 10⁴내지 10⁹cfu/g 이다.

또한 우유유도체, 예컨대 우유 또는 발효유 또는 임의 형태의 카제이노-글리코매크로펩티드, 미셀라 카제인, 플루오르화 미셀라 카제인, 레니트화유 또는 박테리오신으로부터 선택한 우유유도체와 배합하여 일종이상의 유산균을 사용하는 것이 가능하다.

선택된 균주의 생물학적 특징

발효패턴 : 49 개의 단순당을 api 50 CH bioMerieux 스트립 테스트 (bioMerieux SA, 69280 Marcy-I'Etoile, France) 으로 시험하였고 그 결과는 표 1 에 나타내었다.

산성화 그래프 : 산성화 그래프를 하기조건하 37℃ 에서 구하였다:

- S. sobrinus OMZ 176: FUM 수크로오스 1% 및 FUM 글루코오스 1%

- S. thermophilus CNCM I- 1 985: Belliker 수크로오스 1 % 및 Belliker 글루코오스 1 %

접종은 항상 5%이고; pH 는 매 20 분마다 기록하였다.

수크로오스 발효유래의 S.thermophilus CNCM I-1985은 pH를 4.5로 낮추는 반면, S. sobrinus OMZ 176 은 4로 낮춘다.

L./actisCNCMI-1987,L./actisCNCMI-1986, S. thermophilus CNCM I-1984, S. thermophilus CNCM I-1985 및, S.thermophilus LMG P- 18997의 당발효.

당아도니톨아에스쿨린아미그달린D-아라비노스L-아라비노스D-아라비톨L-아라비톨아르부틴셀로비오스둘시톨에리트리톨D-프룩토오스D-프코스L-프코스갈락토오스베타-겐티오비오스글루코네이트2-케토-글루코네이트5-케토-글루코네이트글릭낙D-글루코오스글리세롤이노시톨이눌린락토오스D-릭소오스말토오스만니톨D-만노오스멜레지토오스멜리비오스알파-메틸-D-글루코시드알파메틸-D-만노시드D-라피노오스람노오스리보오스살리신소르비톨L-소르보오스전분수크로오스D-타가토오스트레할로오스D-투라노오스크실리톨D-크실로오스L-크실로오스베타-메틸-크실로시드

L.lactisCNCMI-1987+++++++++++++++++++++++++++++++++++++++++

L.lactisCNCMI-1986++++++++++++++++++++++++++++++++++++++++++++

S.th.CNCMI-1984+++++++

S.th.CNCMI-1985++++++++++

S.th.LMG P-18997+++++++++

+, ++, +++, ++++ 는 발효가 3, 6, 24 또는 48시간후 개시되었는지 보여준다.

본 발명의 두번째 주 목적은 구강의 상재 미소세균총의 일부가 아니고 저산성화성이며 치아의 균막에 직접적으로 점착할 수 있는 유산균을 함유하는 구강의 건강을 위한 조성물에 관한 것이다.

이러한 조성물은 특히 충치, 치태 및 치주감염의 예방 또는 치료를 위한 것이다.

상기 유산균 균주는 Streptococcus thermophilus, Lactococcus lactis subsp. lactis, 및 Lactococcus lactis subsp. lactis biovar diacetylactis 로 구성된 군, 바람직하게는 균주 CNCM I-1984, CNCM I-1985, LMG P-18997, CNCM I-1986 및 CNCM I-1987로 구성된 군에서 선택한다.

구강의 건강을 위한 이러한 조성물에서 유산균 균주는 전술한 바와 같이 유전공학적으로 개질될 수 있다.

상기 유산균 균주는 식품, 애완동물 식품, 화장품 또는 약학 조성물에 포함될 수 있다.

따라서, 이러한 조성물은 바람직하게는 치약, 마우스린스, 검, 스프레이, 음료, 캔디, 유아포뮬라, 아이스크림, 냉동디저트, 스위트 샐러드 드레싱, 유제제, 치즈, 쿠아르크, 요구르트, 산성화우유, 커피크림 또는 생우유이다.

이러한 조성물에서 유산균 균주는 단독으로 또는 우유유도체와 배합하여 시너지효과의 제품을 수득할 수 있다. 따라서, 이러한 구강 건강용 조성물에는 하기의 것들이 함유된다 :

-구강의 상재 미소세균총의 일부가 아니고 저산성화성이며 치아의 균막에 직접적으로 점착할 수 있는 유산균;

-임의 형태의 유산 당단백질, 레네트화 우유 또는 박테리오신.

유산 글리코펩티드는 바람직하게는 카제이노-글리코매크로펩티드(CGMP)이고, 플루오르화 또는 비플루오르화 미셀라 카제인 (특허 EP 0 604 802 및 EP 0 748 591에 기재된 바와 같이 수득할 수 있다) 이거나 리네트화유가 또한 첨가될 수 있다. 카제이노-글리코매크로펩티드는 바람직하게는 약 0.1%의 최소량으로 첨가된다. 또한 카제이오-글리코매트로펩티드는 치아 균막에 상기 유산균이 점착하는 것을 막지 못함이 밝혀졌다 (도 2 및 3).

시너지성 조성물이 또한 그람양성 구강 세균에 대해 활성인 일종이상의 박테리오신을 첨가하여 제조할 수 있다. 이런 경우에서, 구강 위생 조성물은 조성물의 중량으로 정제된 박테리오신을 0.00001 내지 50%, 바람직하게는 0.00001 내지 15% 함유할 수 있다. 박테리오신은 바람직하게는 바리아신이다 (EP 0 759 469).

조성물이 분해되는 것을 보호하기 위해서, 유가용성 산화방지제를 또한 포함시킬 수 있다. 적합한 산화방지제에는 "토코페놀", 부틸-히드록시아니솔 (BHA), 부틸-히드록시톨루엔 (BHT), 및 아스코르빌 팔미테이트가 포함된다. 유가용성 산화방지제는 조성물의 중량의 0.005% 내지 0.5%, 바람직하게는 0.005% 내지 0.01% 의 양으로 존재한다.

본 발명의 치약 조성물에서 사용하기에 적합한 연마제에는 탄산칼슘, 알루미노규산칼슘, 알루미나, 수화물, 알루미나, 아연 오르토포스페이트, 플라스틱 입자 및 실리카가 포함되나 이중 실리카가 바람직한 연마제이다.

본 발명에 따른 조성물은 구강적으로 허용가능한 pH 를 가지며 이범위내에서 상기 유산균의 활성은 절충되지 않는다. pH는 3.0-9.5 범위일 수 있으며, 바람직하게는 3.5 내지 6.5 일 수 있다.

이러한 조성물은 적절한 상대량으로 성분들을 함께 혼합하고 최종적으로 필요에 따라 pH 를 원하는 값으로 조정하는 것으로 이루어진 통상의 방법으로 제조할 수 있다.

본 발명의 최종의 양태는, 치아에 점착할 수 있는 유산균을 스크리닝하는 방법에 관한 것이다. 이 방법은 하기의 단계들로 구성된다 :

(1)치아에 점착할 수 있는 유산균 균주의 특이 표면 단백질을 인식하는 모노클로날 항체를 제조하는 단계, 및

(2) 치아에 점착할 수 있는 균주의 모노클로날 항체를 사용하여 임의의 유산균 균주를 스크리닝하는 단계.

상기 모노클로날 항체는 주변에서 성장하는 다른 균주들중에서 유산균 균주를 검출하기 위한 도구로 사용된다.

본 발명은 여기에 기술된 특정 구현예에 의해 그 범위가 한정되는 것으 아니다. 사실, 여기에 기재된 것외에 발명의 다양한 변경이 전술한 기술내용 및 첨부한 도면으로부터 당업자에게는 명확할 것이다. 다양한 간행물이 여기에서 인용되었고, 이의 개시가 본 발명을 이해하는데 필요한 정도로 본 발명에 참고로 포함되어있다. 세균 세포의 DNA 조작, 클로닝 및 형질전환은 다른언급이 없는한 샘브록등 (Sambrook et al., Molecular-Cloning, A Laboratory Manual., Cold Spring Harbor Laboratory Press, U.S.A., 1989)의 교재에 따라 실행하였다. 플라스미드, 균주 및 사용하는 다양한 매질의 간단한 설명 및 모노클로날 항체의 제조방법이 상기 실시예들에 선행된다.

균주 S. thermophilus S118 (NCC 1529), S123 (NCC 1561), L. lactis subsp. lactis 29 (NCC 221 1), L. lactis subsp. lactis biovar dioacetylactis 69 (NCC 2225)는 부다페스트조약하 Collection Nationale de Culture de Microorganismes(25 rue du docteur Roux, 75724 Paris, France) (각각 CNCM I-1984, CNCM I-1985, CNCM I-1986 및 CNCM I-1987)에 1998.3.3일자로 기탁되었다 균주 S. thermophilus BF11116 (CNBLI177) 는 부다페스트조약하 Belgian Coordinated Collections of Microorganisms LMG P-18997, (K.L. Ledeganckstraat 35, B-9000 Gent, Belgium) 에 1999.7.5 일자로 기탁되었다. 이러한 기탁의 이용성과 관련된 모든 제약은 본 출원 또는 본출원에 대한 우선권의 수혜를 청구하는 다른 출원의 최초의 공표시 철회될 것이다.

Claims (24)

1. 충치, 치태 및 치주감염의 예방 또는 치료용 조성물의 제조를 위한, 구강의 상재 미소세균총의 일부가 아니고, 저산성화성이며 치아의 균막에 직접적으로 점착할 수 있는 유산균의 용도.
2. 제 1 항에 있어서, 조성물은 치아의 병원체의 제거 또는 이의 부착의 방지용인 용도.
3. 제 1 항 또는 제 2 항에 있어서, 유산균은 병원성 균주보다 덜 산성화성이고, 약 5.5-7 의 구강내 pH 에 기여하는 용도.
4. 제 1 항 내지 제 3 항중 어느 한 항에 있어서, 유산균은 다이어리(dairy) 기원으로부터 유래하는 용도.
5. 제 1 항 내지 제 4 항중 어느 한 항에 있어서, 일종이상의 유산균은 Streptococcus thermophilus, Lactococcus lactis subsp. lactis, 및 Lactococcus lactis subsp. lactis biovar diacetylactis로 이루어진 군으로 선택되는 용도.
6. 제 1 항 내지 제 5 항중 어느 한 항에 있어서, 일종이상의 유산균은 균주CNCM I-1984, CNCM I-1985, CNCM I-1986, CNCM I-1987 및 LMG P- 18997로 이루어진 군에서 선택되는 용도.
7. 제 1 항 내지 제 6 항중 어느 한 항에 있어서, 유산균은 점착 인자를 통해 치아의 균막에 점착하는 용도.
8. 제 1 항 내지 제 7 항중 어느 한 항에 있어서, 유산균은 치아의 균막에 대한 이의 점착성을 증가시키기 위하여 유전공학적으로 조작되고/거나 한층 덜 산성화성이되도록 유전공학적으로 개질된 용도.
9. 충치, 치태 및 치주감염의 예방 또는 치료를 위한 조성물의 제조를 위한, 구강의 상재 미소세균총의 일부가 아닌 유산균의 용도로서, 여기에서 유산균은 하기로 이루어진 군으로부터 선택하는 용도:

   - 치아의 균막에 점착하고 저산성화성이 되도록 유전공학적으로 개질된 산성화성 유산균;

   - 저 산성화성이고 치아의 균막에 점착하도록 유전공학적으로 개질된 비점착성 유산균;

   - 치아의 균막에 점착하도록 유전공학적으로 개질되고 저 산성화성이되도록 유전공학적으로 개질된 비점착성의 산성화성 유산균.
10. 제 8 항 또는 제 9 항에 있어서, 유산균은 점착인자를 통해 치아의 균막에 점착하고 약 5.5-7 의 구강내 pH 에 기여하도록 유전공학적으로 개질된 용도.
11. 제 1 내지 10 항중 어느 한 항에 있어서, 조성물이 충치, 치태 및 치주감염의 예방 또는 치료를 위하여 유효량의 유산균을 함유하는 식이성 조성물인 용도.
12. 제 1 내지 11 항중 어느 한 항에 있어서, 조성물은 유산균을 적어도 10⁴-10⁹cfu/g 함유하는 용도.
13. 제 1 내지 12 항중 어느 한 항에 있어서, 유산균은 우유, 발효유, 우유 유도체 또는 박테리오신과 배합하는 용도.
14. 제 13 항에 있어서, 우유 유도체는 임의 형태의 카제이노-글리코매크로펩티드, 미셀라 카제인, 플루오르화 미셀라 카제인 또는 리네트화 우유로부터 선택하는 용도.
15. 구강의 상재 미소세균총의 일부가 아니고, 저산성화성이며 치아의 균막에 직접적으로 점착할 수 있는 유산균을 함유하는 구강 건강용 조성물.
16. 제 15 항에 있어서, 유산균은 치아의 균막에 대한 이의 점착성을 증가시키기 위하여 유전공학적으로 조작되고/거나 한층 덜 산성화성이되도록 유전공학적으로 개질된 조성물.
17. 제 15 항 또는 제 16 항에 있어서, 유산균은 하기로 이루어진 군으로부터 선택되는 구강건강용 조성물:

    - 치아의 균막에 점착하고 저산성화성이 되도록 유전공학적으로 개질된 산성화성 유산균;

    - 저 산성화성이고 치아의 균막에 점착하도록 유전공학적으로 개질된 비점착성 유산균;

    - 치아의 균막에 점착하도록 유전공학적으로 개질되고 저 산성화성이되도록 유전공학적으로 개질된 비점착성의 산성화성 유산균.
18. 제 15 항 내지 제 17 항중 어느 한 항에 있어서, 유산균은 점착인자를 통해 치아의 균막에 점착하고 약 5.5-7 의 구강내 pH 에 기여하도록 유전공학적으로 개질된 조성물.
19. 제 15 항 내지 제 18 항중 어느 한 항에 있어서, 충치, 치태 및 치주감염의 예방 또는 치료를 위하여 유효량의 유산균을 함유하는 조성물.
20. 제 15 항 내지 제 19 항중 어느 한 항에 있어서, 유산균을 적어도 10⁴-10⁹cfu/g 함유하는 조성물.
21. 하기의 것으로 구성된 구강건강용 조성물 :

    (1) 치아의 균막에 직접적으로 점착할 수 있고 약 5.5-7 의 구강내 pH 에 기여할 수 있는 구강의 상재 미소세균총의 일부가 아닌 유산균;

    (2) 임의 형태의 카제이노-글리코매크로펩티드, 미셀라 카제인, 플루오르화 미셀라 카제인 또는 리네트화 우유 또는 박테리오신
22. 제 15 항 내지 제 21 항중 어느 한 항에 있어서, Streptococcus thermophilus, Lactococcus lactis subsp. lactis, 및 Lactococcus lactis subsp. lactis biovar diacetylactis로 이루어진 군으로 선택된 일종이상의 유산균 균주를 함유하는 조성물.
23. 제 15 항 내지 제 22 항중 어느 한 항에 있어서, 균주 CNCM I-1984, CNCM I-1985, CNCM I-1986, CNCM I-1987 및 LMG P- 18997로 이루어진 군에서 선택되는 일종이상의 유산균을 함유하는 조성물.
24. 하기의 단계들로 이루어진 치아에 점착할 수 있는 유산균의 스크리닝 방법 :

    (1) 치아에 점착할 수 있는 유산균 균주의 특이 표면 단백질을 인식하는 모노클로날 항체를 제조하는 단계, 및

    (2) 치아에 점착할 수 있는 균주의 모노클로날 항체를 사용하여 임의의 유산균 균주를 스크리닝하는 단계.