KR101149607B1 - 인터페론 알파 돌연변이체 및 이의 폴리에틸렌 글리콜 유도체 - Google Patents

인터페론 알파 돌연변이체 및 이의 폴리에틸렌 글리콜 유도체 Download PDF

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Abstract

기존 IFN-알파의 위치 85 또는 86에 있는 Tyr을 Cys으로 치환시켜 IFN-알파 돌연변이체를 수득한다. 또한, 이의 폴리에틸렌 글리콜 유도체도 제공되는데, 이 유도체는 시험관내 항바이러스 활성이 높고 생체내 반감기가 연장된 것이며, IFN-알파 돌연변이체의 유리 Cys 잔기에 폴리에틸렌 글리콜 잔기가 공유결합된 것이다. 또한, IFN-알파 돌연변이체의 PEG 유도체의 제조 방법 및 이 유도체를 포함하는 의약 조성물도 제공된다.
인터페론 알파 돌연변이체, IFN-알파, 폴리에틸렌 글리콜 유도체, 항바이러스 활성, 종양 치료

Description

인터페론 알파 돌연변이체 및 이의 폴리에틸렌 글리콜 유도체{Interferon alpha mutant and its polyethylene glycol derivative}
본 발명은 IFN-알파 돌연변이체 및 이의 폴리에틸렌 글리콜 유도체의 제조 방법 및 용도에 관한 것이다. 구체적으로, 본 발명은 부위-지시된 돌연변이유발 기술을 이용한 α 인터페론의 부위-지시된 돌연변이유발 단계, IFN-알파의 위치 85 또는 86에서 Tyr 대신 Cys으로의 치환 단계, 및 이 부위와 폴리에틸렌 글리콜과의 공유 결합 단계를 포함하는 방법에 관한 것이다. 또한, 본 발명은 Cys을 사용하여 인터페론을 특이적으로 변형시키는 방법, 인터페론 α 돌연변이체의 폴리에틸렌 글리콜 유도체를 추출 및 정제하는 방법, 및 암 및 염증 질환에서의 이의 용도에 관한 것이다.
인터페론은 광범위한 항-바이러스증식, 항-세포증식 및 면역조절을 나타내는 중요한 사이토카인 계열의 일종이다. 포유동물의 인터페론은 인터페론 α, β, γ, ω 등으로 분류될 수 있고, IFN-α는 다시 10종류 이상의 아형(subtype)으로 분류될 수 있다. 상당한 임상 연구에 따르면, α형 인터페론은 중요한 항바이러스 및 항종양 약물이다. 현재, 중국에서 임상적으로 가장 널리 사용되는 것은 주로 rhIFN α1b, α2a 및 α2b이다.
또한, 연구 결과, 사람 IFN-α의 I형 계열은 그 구성원으로서 20개가 넘는 유전자가 있으며, 상기 유전자 대부분은 기능성 단백질을 암호화하고 뉴클레오타이드 수준에서 서로 약 90%의 상동성을 보유한다. 유전공학을 이용하면 상당한 수의 인터페론 유도체 또는 유사체가 생산될 수 있다. 현재, 가장 주목되는 것은 13종의 α형 인터페론의 유전자 서열 상동성을 기반으로 하여 암젠(Amgen)(미국 회사)에 의해 설계되고 1997년에 미국 FDA에 의해 인터페론 α2b보다 5 내지 10배 높은 항바이러스 활성을 보유하여 C형 간염의 치료용으로 승인받은 완전 신규 단백질공학 약물인 인퍼젠(INFERGEN®, IFN-Con 1)이다. CN 1511849A(출원인: BEIJING TRI-PRIME GENETIC ENGINEERING CO., LTD)는 시험관내 상동 재조합 방법에 의해 수득되고 인퍼젠보다 활성 및 안정성이 매우 우수한 다양한 인터페론 α 계열 분자를 개시했다.
하지만, 단백질 약물로서 인터페론 α1b, α2a, α2b 또는 인퍼젠이라 하더라도, 안정성 불량, 높은 혈장 소진율, 짧은 생체내 반감기, 항원-항체 반응의 생산 용이성 등으로 인해 임상 치료에 모두 제한적이다. 유전자조작 기술은 재조합 단백질의 대량 합성을 가능하게 하고 이종 단백질로 인한 면역원성 문제점을 상당히 해소시키지만, 빠른 혈장 소진율 및 낮은 생체이용율과 같은 단점을 극복할 수는 없다. 이러한 단점의 결과는 다음과 같다: 혈장에서 유효한 치료 농도를 달성하기 위해서는 인터페론을 빈번하게 주사해야 한다. 더욱이, 주사 후마다 혈액 농도의 큰 변동성이 약물 농도의 최고 및 최저치의 형성과 함께 일어나, 치료 비용 및 약물 투여의 불편함과 부작용의 위험성을 증가시킬 가능성이 있다. 따라서, 단백질 약물의 효능을 증가시키기 위해 다양한 약물 전달 기술(Drug Delivery Technology)을 채택하는 시도가 이루어졌다. 현재, 약물 전달 기술 중에서 가장 널리 연구되고 있는 기술은 페길화(pegylation) 기술(PEGNOLOGY)이다.
단백질의 페길화 기술은 단백질형 약물의 생체내 약동학적 성질을 향상시키기 위해 지난 십년 동안 새롭게 개발되었다. 이 기술은 단백질 분자의 표면에 활성화된 폴리에틸렌 글리콜 분자[폴리(에틸렌 글리콜), PEG]를 결합시켜, 단백질의 공간 구조에 영향을 미침으로써, 단백질의 다양한 생화학적 성질의 변화, 예컨대 화학적 안정성 증가, 프로테아제 가수분해에 대한 내성력 증가, 면역원성 및 독성의 감소 또는 소실, 생체내 반감기의 연장, 혈장 소진율 감소 등을 유도한다.
PEG 성분은 에틸렌 단량체의 중합에 의해 생성되는 불활성 장쇄 양친매성(amphipathic) 분자이다. 현재 PEG 분자는 다양한 종류가 이용가능하다. 활성화된 PEG의 활성 작용성 기는 치료 분자의 특정 위치(예컨대, 아민, 티올 또는 다른 친핵성 물질)에 결합할 수 있다. 대부분의 경우에 PEG 유도체의 공유 결합은 변형 부위로서 리신의 아미노 기 및 펩타이드 분자의 N-말단을 사용하여 달성할 수 있고, 각 결합 부분에 따라 다른 이소타입(isotype)이 결정된다. 약물 연구 및 개발 과정 동안 PEG 이소타입의 분포는 매우 중요하다. 산물의 생물학적 활성은 특이적인 이소타입 분포 혼합물과 밀접한 관련이 있기 때문에, 산물은 분포 요건에 따라 한정되어야 한다. 따라서, 생산 공정 변화 및 비례적 로프팅(lofting)을 포함한 전체 약물 개발 과정 중에는 PEG 이소타입 분포의 일관성이 입증되어야 한다. 이는 실제 생산에서 공정 조절과 산물의 품질 평가를 매우 어렵게 한다.
이러한 어려움은 부위-지시된 페길화에 의해 피할 수 있다. 특정 단백질 부위의 페길화는 특정 페길화된 산물을 다량으로 생산할 수 있고 변형 산물의 순도를 효과적으로 조절할 수 있어, 공정이 더욱 간단해지고 산물의 품질을 더욱 평가하기 쉬워지게 하기 때문에 더욱 더 많은 관심이 집중되고 있다. 단백질의 높은 선택적 페길화는 분자내 시스테인(Cys) 부위를 사용함으로써 수행할 수 있다. 유리 설프하이드릴을 보유한 단백질은 거의 없지만, 설프하이드릴은 단백질의 공간 구조를 유지하는데 중요한 공유 결합이다. 이 부위의 화학적 변형은 종종 분자 구조에 더 큰 손상을 입혀, 단백질 활성을 상실하게 한다. 유전자조작을 이용한 수단은 이러한 목적을 달성할 수 있다. 특히 주목할 점은 다른 단백질 또는 펩타이드가 구조 및 성질이 상이할 뿐만 아니라, 도입될 수 있는 것 및 PEG 변형제가 도입될 수 있는 위치가 상이하다는 점이다. 유전공학 수단을 통해 인위적으로 증가된 Cys은 분자내 미스매치(mismatch) 또는 분자간 조합으로 이어질 수 있고, 이는 분자 불안정성 또는 불규칙적인 중합체의 형성을 일으킨다. 이와 관련하여, 포괄적인 서열 분석 및 분자 구조의 정확한 모의는 일련의 사상을 제공할 것이다.
서열분석 결과, 인터페론 α2a, α2b 및 IFN-con 1을 비롯한 대부분의 IFN-α 분자가 4개의 시스테인을 보유하고, 위치 1과 99, 29와 139에서 Cys 사이에 이황화 결합이 형성되어 있는 것으로 확인되었다. 본 출원인은 시험관내 상동 재조합을 통해, 이러한 특징이 유지되는 새로운 종류의 인터페론(MIFN)을 수득한다. IFN-α1b 및 다른 α 계열의 인터페론은 구조가 분명하게 다르고, 전자는 일반 이황화 결합을 형성하는 상기 4개의 Cys와는 별도로 위치 86에 5번째 Cys을 보유한다. 소규모 실험으로, 이 부위를 사용한 인터페론의 부위-지시된 페길화가 수행될 수 있다는 것을 발견했다. 따라서, 이 특징과 함께, 다른 IFN-α의 페길화는 동일한 결과를 나타낼 것으로 예상된다.
발명의 내용
본 발명의 목적은 인터페론-α 돌연변이체를 제공하는 것이다. 이 아미노산 서열의 위치 85 또는 86은 폴리에틸렌 글리콜과 결합될 수 있는 Cys으로 돌연변이되어, 우수한 안정성, 수용성, 병원체 내성 뿐만 아니라 높은 생물학적 활성과 같은 장점을 보유하는 폴리에틸렌 글리콜 유도체를 형성한다.
IFN-α의 위치 85 또는 86은 비교적 보존적 구역에 위치하는 티로신(Tyr)인 것이 일반적이다. 본 발명은 Tyr을 Cys으로 돌연변이시켜 α 인터페론을 변형시키고 폴리에틸렌 글리콜과 반응하여 일련의 폴리에틸렌 글리콜 유도체를 생성하는 일련의 돌연변이체를 수득한다.
본 발명의 기술적 해결방안은 현재 일반적으로 사용되는 α 인터페론에 대한 다음과 같은 4가지 종류에 의해 더욱 상세하게 설명될 것이다:
MIFNCys86, IFN-Con 1Cys86, IFNα-2aCys85 및 IFNα-2bCys85 (아미노산 서열은 첨부한 서열번호 1 내지 4를 참조한다)는 기존의 4가지 인터페론 MIFN, IFN-Con 1, IFN α-2a 및 IFN α-2b의 부위-지시된 돌연변이유발 및 위치 86(MIFN 및 IFN-Con 1) 또는 85(IFN α-2a 및 IFN α-2b)의 아미노산 대신 Cys으로의 치환에 의해 수득한다. 단백질을 암호화하는 재조합 플라스미드는 표적 유전자를 각각 재조합하고, 수득되는 재조합 유전자를 시험관내 부위-지시된 돌연변이유발 기술로 발현 벡터 pET-23b에 삽입함으로써 수득될 것이다. 이와 별도로, 4가지 작제물은 에스케리키아 콜라이(Escherichia coli) BL21(DE3) 수용자 세포에서 효과적이며 안정적으로 발현시킨다. 발현 산물은 봉입체(inclusion body)의 형태로 존재하고, 발현 양은 총 세균 단백질의 30% 이상이다. 소수성 상호작용 크로마토그래피, DEAE 음이온교환 크로마토그래피 및 S-100 겔 배제 크로마토그래피 순서대로 정제한 후에는 MIFNCys86 및 IFN-Con 1Cys86이 높은 순도로 수득될 것이며; DEAE 음이온교환 크로마토그래피, 모노클로날 항체 친화성 크로마토그래피 및 S-100 겔 배제 크로마토그래피로 정제한 후에는 IFNα-2aCys85 및 IFNα-2bCys85가 높은 순도로 수득될 것이다.
본 발명에 기술된 돌연변이체는 IFN-α의 위치 85 또는 86에 있는 Tyr의 Cys으로의 돌연변이에 의해 수득될지라도, IFN-α의 쇄 길이가 완전하게 일관성이 있는 것이 아니기 때문에 당업자는 Tyr이 돌연변이 위치를 예시한 것 뿐인 것으로 이해해야 한다. 당업자는 IFN-α에 다양한 변형을 만들 수 있으며, 예컨대 일부 부위를 돌연변이시켜 기존 α 인터페론과 다르지만 기능은 동일하거나 유사한 아미노산 서열을 수득할 수 있다. 하지만, 이와 같이 수득된 서열은 본 발명에 기술된 해당 부위에서 돌연변이 및 변형되어 향상된 성능을 수득할 수 있다. 따라서, 본 발명의 IFN-α 돌연변이체도 이러한 서열을 포함한다.
본 발명은 다양한 인터페론-α 돌연변이체 폴리에틸렌 글리콜 유도체를 제공하며, 여기서 폴리에틸렌 글리콜은 직쇄이어도 좋고, 또한 분지 구조를 보유할 수도 있다. IFN-α 돌연변이체는 5000 내지 40000 달톤의 PEG로 페길화되었고, 그 결과 페길화된 단백질의 반감기는 PEG 분자량의 증가에 따라 다양한 정도로 연장되는 것으로 나타났다.
또한, 본 발명은 인터페론-α 돌연변이체 폴리에틸렌 글리콜 유도체의 제조 및 정제 방법을 제공한다.
마지막으로, 본 발명은 인터페론-α 돌연변이체 폴리에틸렌 글리콜 유도체의 시험관내 약력학 및 약동학 시험 방법 및 결과를 제공하며, 이는 종양 질환 또는 감염 질환과 같은 면역조절 장애의 치료 또는 예방에 사용했을 때 우수한 기술적 매개변수임을 시사한다.
도 1은 "MIFNCys86의 유전자 작제 및 증폭"(실시예 1A)에서 2회 PCR 산물의 아가로스 전기영동도를 도시한 것이다. 레인 1은 DNA 마커이고; 레인 2는 PCR 반응 시스템의 1차에서 수득된 반응 시스템 1의 산물이고; 레인 3은 1차 PCR에서 반응 시스템 2의 산물이며; 레인 4는 2차 PCR 산물이다.
도 2는 "MIFNCys86 재조합 플라스미드의 작제, 형질전환 및 동정"(실시예 2A)에서 주형으로서 양성 클론을 이용한 PCR 산물의 아가로서 전기영동도를 나타낸다. 레인 1은 DNA 마커이고; 레인 2 내지 8은 각각 단독 콜로니의 PCR 산물을 나타내며, 여기서 상기 레인 2, 4, 5, 6 및 7은 양성 클론이다.
도 3은 4가지 돌연변이체 재조합 플라스미드(도 2A 내지 도 2D)의 Nde I/EcoR I 이중 분해 전기영동도를 나타낸다. 레인 1은 DNA 마커를 나타내고; 레인 2는 플라스미드 벡터 pET-23b를 나타내며; 레인 3, 7은 Nde I/EcoR I으로 각각 분해하기 전과 후의 MIFNCys86의 재조합 플라스미드를 나타내고; 레인 4, 8은 Nde I/EcoR I로 분해하기 전 및 후의 각각의 IFN-Con1Cys86 재조합 플라스미드를 나타내며; 레인 5, 9는 Nde I/EcoR로 분해하기 전과 후에 각각 IFN α-2aCys85 의 재조합 플라스미드를 나타내고; 레인 6, 10은 Nde I/EcoR I로 분해하기 전과 후에 각각 IFN α-2aCys85 의 재조합 플라스미드를 나타낸다.
도 4는 정제된 MIFNCys86, IFN-Con1Cys86, IFNα-2aCys85 및 IFNα-2bCys85 (실시예 3A 내지 3D)의 SDS-PAGE 다이아그램을 나타낸다. 레인 1은 단백질 마커를 나타내고, 레인 2, 3, 4 및 5는 정제된 MIFNCys86, IFN-Con 1Cys86, IFNα-2aCys85 및 IFNα-2bCys85를 나타낸다.
도 5는 PEG-MAL(20kD)과 MIFNCys86, IFN-Con 1Cys86, IFNα-2aCys85 및 IFNα-2bCys85에 의해 수행된 연결 반응의 SDS-PAGE 다이아그램을 나타낸다(실시예 4). 레인 1은 단백질 마커이고; 레인 2, 3, 4 및 5는 각각 MIFNCys86, IFN-Con 1Cys86, IFNα-2aCys85 및 IFNα-2bCys85 와 PEG-MAL(20KD)에 의해 수행된 연결 반응의 산물을 나타 낸다.
도 6은 PEG-MAL(40kD)과 MIFNCys86, IFN-Con 1Cys86, IFNα-2aCys85 및 IFNα-2bCys85에 의해 수행된 연결 반응의 SDS-PAGE 다이아그램을 나타낸다(실시예 4). 레인 1은 단백질 마커이고; 레인 2, 3, 4 및 5는 각각 MIFNCys86, IFN-Con 1Cys86, IFNα-2aCys85 및 IFNα-2bCys85 와 PEG-MAL(40KD)에 의해 수행된 연결 반응의 산물을 나타낸다.
도 7은 인터페론-α 돌연변이체들의 정제된 PEG-MAL(20kD) 유도체 4종의 SDS-PAGE 다이아그램을 나타낸다(실시예 5). 레인 1은 단백질 마커이고, 레인 2, 3, 4 및 5는 각각 mPEG(20KD)-MIFNCys86, mPEG(20KD)-IFN-Con 1Cys86, mPEG(20KD)-IFNα-2aCys85 및 mPEG(20KD)-IFNα-2bCys85를 나타낸다.
도 8은 인터페론-α 돌연변이체들의 정제된 PEG-MAL(40kD) 유도체 4종의 SDS-PAGE 다이아그램을 나타낸다(실시예 5). 레인 1은 단백질 마커이고, 레인 2, 3, 4 및 5는 각각 mPEG(40KD)-MIFNCys86, mPEG(40KD)-IFN-Con 1Cys86, mPEG(40KD)-IFNα-2aCys85 및 mPEG(40KD)-IFNα-2bCys85를 나타낸다.
이하 특정 예를 들어 본 발명을 더 상세하게 설명할 것이다. 이러한 예들은 본 발명의 보호 범위를 제한하지 않으면서 단지 본 발명을 설명하기 위한 것으로 이해되어야 한다.
특별히 한정되지 않는 한, 본 명세서에 사용된 용어들은 관련 기술 분야에 충분히 알려진 용어들에 해당한다. 표준 화학적 기호와 약어 기호는 명칭 전체와 호환적으로 사용될 수 있다. 예를 들어, "PEG" 및 "폴리에틸렌글리콜"은 동일한 의미이며, "인터페론 α", "IFN-α" 및 "α 인터페론" 역시 동일한 의미이다.
다른 언급이 없는 한, 본 명세서에 사용되지만 분명하게 또는 간단하게 예시된 기술과 방법은 당업계에서 통상적으로 사용되는 기술과 방법을 의미하는 것으로, 당업계에서 사용되는 공지된 기술과 방법에 따라 수행될 수 있다. 키트의 적용은 제조원이나 제공원에서 제공하는 지침에 따라 수행한다.
본 발명에서, MIFN, IFN-Con 1, IFN α-2a 및 IFN α-2b를 포함하는 4가지 단백질의 유사체는 아미노산의 기능적 등가 분자의 치환, 부가 또는 결실에 의해 수득될 수 있다. 예를 들어, 성질이 유사한 하나 이상의 아미노산 잔기를 본래 서열의 대응하는 아미노산 잔기 대신에 치환시켜, 본래 단백질 서열을 사일런트(silent) 변화를 형성하도록 변화시키는 방법은 당업계에 익히 공지되어 있다.
본 발명에서, 폴리에틸렌 글리콜 유도체 중의 폴리에틸렌 글리콜 잔기는 직쇄 또는 분지 구조일 수 있다는 것은 당업자에게 공지되어 있다. 상기 폴리에틸렌 글리콜 유도체는 설프하이드릴 반응을 수행할 수 있고 시스테인 잔기의 설프하이드릴과 반응하는 페길화된 시약이며, 그 예로는 말레이미드-PEG, 비닐 설폰-PEG, 요오도-아세트아미드-PEG 및 n-피리딜 디설파이드-PEG 등이 있고, 특히 말레이미드-PEG가 바람직하다. 본 발명에서는 4가지 IFN-α 돌연변이체를 분자량이 약 5000, 10000, 12000, 20000, 30000 및 40,000 달톤인 PEG로 페길화하여, 각각 PEG-인터페론의 유도체를 수득하고자 시도했다. 수득된 데이터는 페길화된 단백질의 반감기가 PEG 분자량이 증가함에 따라 다양한 정도로 증가한 것으로 나타났다. 본 발명의 실시예에서, 페길화된 인터페론 유도체의 생산, 정제 방법 및 약력학 및 약동학 시험은 저분자량 및 고분자량의 대표예로서 분자량이 각각 20000 달톤 및 40000 달톤인 페길화된 시약을 사용하여 구체적으로 예시했다.
바람직한 예에서, PEG 시약은 넥타 테라퓨틱스(Nektar Therapeutics)와 베이징 젠켐 테크놀로지 컴퍼니 리미티드(BEIJING JenKem Technology CO., LTD.)에서 공급된 mPEG-MAL[PEG-MAL(20kD)이라고도 표기함] 또는 mPEG2-MAL[PEG-MAL(40kD)이라고도 표기함]이며, 때로 본 명세서에 사용된 mPEG-MAL 및 mPEG2-MAL은 일반적으로 PEG-MAL 또는 PEG로 약칭되기도 한다.
본 발명에서, MIFN, IFN-Con 1, IFN α-2a 및 IFN α-2b를 포함하는 4가지 α 인터페론의 유전자조작 세균은 베이징 트리-프라임 제네틱 엔지니어링 컴퍼니 리미티드(BEIJING TRI-PRIME GENETIC ENGINEERING CO., LTD.)에서 공급된 것이다. 대응 세균의 명칭은 BL21(DE3)/pET23b-MIFN, BL21(DE3)/ pET23b- IFN-Con 1, BL21(DE3)/ pET23b-IFNα-2a, BL21(DE3)/ pET23b-IFNα-2b 이다.
실시예 1A: MIFN Cys86 을 암호화하는 유전자의 작제 및 증폭
PCR 시험관내 부위-지시된 돌연변이유발 기술(PCR-SDM)을 사용하여, 부위-지시된 돌연변이유발은 중첩부 연장반응(overlap extension)을 이용하여 수행할 수 있다. 부위-지시된 돌연변이유발 기술은 이미 완성되고 절차가 고정된 기술이다. 특정 시험에 따라 조정될 수 있는 것은 프라이머의 위치 길이와 PCR 반응 조건이었다. 실제로, 부위-지시된 돌연변이유발의 목적을 달성할 수 있는 다양한 조합이 있으며, 이는 본 발명의 보호 범위에 포함되는 것이다. 본 실시예는 바람직한 양태를 예시한다(이와 마찬가지로, 실시예 1B 내지 1D도 바람직한 양태를 예시한다).
2쌍의 프라이머를 설계했으며, 상류 프라이머 P1은 T7 프로모터 프라이머(taatacgactcactataggg)이고, P3 서열은 ggaaaaattctgcaccgaactgt이며; 하류 프라이머 P2는 T7 터미네이터 프라이머(gctagttattgctcagcgg)이며, P4 서열은 acagttcggtgcagaatttttcc 였다. 돌연변이 부위는 P3과 P4에 포함되어 있다.
MIFN의 플라스미드는 주형으로서 추출했고, 1차 PCR은 2가지 반응 시스템을 포함했다: 반응 시스템 1은 돌연변이 부위 및 이의 상류 DNA 서열을 증폭시키는 프라이머 P1, P4를 포함했고; 반응 시스템 2는 돌연변이 부위와 이의 하류 DNA 서열을 증폭시킨 프라이머 P2, P3을 포함했다. 반응 조건은 다음과 같다: 94℃ 4분, 94℃ 1분, 그 다음 55℃ 2분, 72℃ 2분, 총 30회 순환. 2차 PCR은 주형으로서 1차 PCR 산물을 사용하고 PCR 증폭용 프라이머로서 P1, P2를 사용하는 중첩부 연장 PCR이다. 반응 조건은 다음과 같다: 94℃ 4분, 94℃ 1분, 그 다음 56℃ 2분, 72℃ 2분, 총 30회 순환. 도 1은 2회 PCR 산물의 아가로스 전기영동도를 나타낸 것이다.
2차 PCR의 산물은 아가로스 전기영동으로 분석했다. 약 720bp를 보유한 선택된 DNA 단편을 Nde I/EcoR I로 이중 분해한 후, 약 500bp의 표적 DNA 단편을 보관하기 위해 전기영동으로 회수했다.
실시예 1B: IFN-Con 1 Cys86 을 암호화하는 유전자의 작제 및 증폭
2쌍의 프라이머를 설계했으며, 상류 프라이머 P1은 T7 프로모터 프라이머(taatacgactcactataggg)이고, P3 서열은 ggaaaaattctgcaccgaactgt이며; 하류 프라이머 P2는 T7 터미네이터 프라이머(gctagttattgctcagcgg)이며, P4 서열은 acagttcggtgcagaatttttcc 였다. 돌연변이 부위는 P3과 P4에 포함되어 있다.
PCR 절차는 1차 PCR의 반응 주형이 IFN-Con1의 플라스미드인 것을 제외하고는 실시예 1A과 유사했다. 2차 PCR의 산물은 아가로스 전기영동으로 분석했다. 약 720bp를 보유한 선택된 DNA 단편을 Nde I/EcoR I로 이중 분해한 후, 약 500bp의 표적 DNA 단편을 보관하기 위해 전기영동으로 회수했다.
실시예 1C: IFNα-2a Cys85 를 암호화하는 유전자의 작제 및 증폭
프라이머의 설계는 실시예 1B과 유사하게 수행했다. PCR 절차는 1차 PCR의 반응 주형이 IFN α-2a의 플라스미드인 것을 제외하고는 실시예 1A와 유사했다. 2차 PCR의 산물은 아가로스 전기영동으로 분석했다. 약 720bp를 보유한 선택된 DNA 단편을 Nde I/EcoR I로 이중 분해한 후, 약 500bp의 표적 DNA 단편을 보관하기 위해 전기영동으로 회수했다.
실시예 1D: IFN α-2b Cys85 를 암호화하는 유전자의 작제 및 증폭
프라이머의 설계는 실시예 1B과 유사하게 수행했다. PCR 절차는 1차 PCR의 반응 주형이 IFN α-2b의 플라스미드인 것을 제외하고는 실시예 1A와 유사하다. 2차 PCR의 산물은 아가로스 전기영동으로 분석했다. 약 720bp를 보유한 선택된 DNA 단편을 Nde I/EcoR I로 이중 분해한 후, 약 500bp의 표적 DNA 단편을 보관하기 위해 전기영동으로 회수했다.
실시예 2A: MIFN Cys86 의 재조합 플라스미드의 작제, 형질전환 및 동정
플라스미드의 작제와 형질전환에서 재조합 플라스미드의 작제는 많은 종류의 제한효소를 사용하고 다양한 연결반응 조건을 채택하여 달성할 수 있으며, 본 실시예에서는 실험실에서 일반적으로 사용하는 JM109 및 DH5α를 숙주 세포로서 선택했고, 다른 형질전환용 숙주는 사용하지 않았다. 과학, 편리성 및 효율성의 원칙에 입각하여, 본 실시예에 제시된 재조합 플라스미드의 작제, 형질전환 및 동정의 양태들은 바람직한 것이었다(실시예 2B 내지 2D에 예시된 양태들도 마찬가지로 바람직하다).
Nde I/EcoR I로 이중 분해한 후, 플라스미드 벡터 pET-23b는 아가로스 겔 전기영동으로 회수하고, 실시예 1A의 마지막 회수물 유래의 표적 DNA 단편과 연결시켰다. 연결 반응 조건은 다음과 같다: 2x 급속 완충액 4 내지 5㎕, T4 DNA 리가제 1㎕, 표적 단편 1 내지 2㎕, 벡터 3㎕, 4℃에서 하룻밤 연결.
JM109 또는 DH5α 적격(competent) 세포를 제조하여 전술한 연결 산물로 형질전환시키고, 벤질 암모니아 플레이트 위에 도포하고 37℃에서 하룻밤 동안 배양했다.
주형으로서 단일 콜로니를 채취했다. 실시예 1에서 설계된 프라이머 P1, P2는 PCR 증폭용으로 사용했고, PCR 산물의 아가로스 전기영동 후(도 2에 제시된 전기영동도)에는 양성 클론에서만 약 720bp에서 특정 밴드가 나타났다. 소량의 양성 클론 배양, 이들로부터 플라스미드의 추출과 Nde I/EcoR I으로의 이중 분해 후, 특정 밴드는 각각 약 3kb 및 500bp에서 나타났고(아가로스 전기영동도는 도 3에 제시됨), 이는 예상과 일치하는 것으로, 재조합 플라스미드의 작제 성공을 예비적으로 예증한다. 서열을 추가 확인하기 위하여, 범용(universal) 프라이머로서 T7을 이용하여 자동서열분석기 ABI377로 서열분석을 수행했고, 그 결과는 수득된 서열이 표적 서열과 일치한다는 것을 보여주었다.
실시예 2B: IFN-Con 1 Cys86 의 재조합 플라스미드의 작제, 형질전환 및 동정
본 실시예에서 연결된 유전자 단편은 실시예 1B에서 회수한 표적 유전자 단편이다. 연결, 형질전환 및 동정 작업에 사용된 기술과 방법은 실시예 2A에서 사용된 것과 동일했다. Nde I/EcoR 분해를 동정하기 위한 전기영동도는 도 3에 제시했다. 이와 마찬가지로, 서열을 추가 확인하기 위하여, 범용 프라이머로서 T7을 이용하여 자동서열분석기 ABI377로 서열분석을 수행했고, 그 결과는 수득된 서열이 표적 서열과 일치한다는 것을 보여주었다.
실시예 2C: IFNα-2a Cys85 의 재조합 플라스미드의 작제, 형질전환 및 동정
본 실시예에서 연결된 유전자 단편은 실시예 1C에서 회수한 표적 유전자 단편이다. 연결, 형질전환 및 동정 작업에 사용된 기술과 방법은 실시예 2A에서 사용된 것과 동일했다. Nde I/EcoR 분해를 동정하기 위한 전기영동도는 도 3에 제시했다. 이와 마찬가지로, 서열을 추가 확인하기 위하여, 범용 프라이머로서 T7을 이용하여 자동서열분석기 ABI377로 서열분석을 수행했고, 그 결과는 수득된 서열이 표적 서열과 일치한다는 것을 보여주었다.
실시예 2D: IFNα-2b Cys85 의 재조합 플라스미드의 작제, 형질전환 및 동정
본 실시예에서 연결된 유전자 단편은 실시예 1D에서 회수한 표적 유전자 단편이다. 연결, 형질전환 및 동정 작업에 사용된 기술과 방법은 실시예 2A에서 사용된 것과 동일했다. Nde I/EcoR 분해를 동정하기 위한 전기영동도는 도 3에 제시했다. 이와 마찬가지로, 서열을 추가 확인하기 위하여, 범용 프라이머로서 T7을 이용하여 자동서열분석기 ABI377로 서열분석을 수행했고, 그 결과는 수득된 서열이 표적 서열과 일치한다는 것을 보여주었다.
실시예 3A: MIFN Cys86 의 발현 및 정제
실시예 2A에서 수득한 재조합 플라스미드로 이.콜라이(E. coli) BL21(DE3) 또는 다른 적당한 숙주를 형질전환한 후, 유도 발현시켰다. 봉입체 형태로 주로 존재하는, 이.콜라이 BL21(DE3) 숙주에 의해 발현된 MIFNCys86은 총 세균 단백질의 30 내지 50%에 해당했다.
조악한 정제: 수집한 세균을 TE로 용해했다. 초음파처리 후, 봉입체를 수집한 후, 6 내지 8mol/L의 Gu·HCl 또는 우레아로 용해하고, 실온에서 교반하거나 4℃에서 하룻밤 동안 방치한 다음, 0.05 내지 0.2mol/L 붕산, pH 8.0-10.5 용액으로 재생(renaturation)시켰다. 재생된 용액은 4℃에서 하룻밤 동안 유지시켰다. 4℃에서 원심분리한 후, 대략 순수한 MIFNCys86인 상청액을 수집했다.
정밀 정제: 소수성 크로마토그래피, DEAE 음이온교환 크로마토그래피 및 S-100 겔 배제 크로마토그래피를 포함하는 3단계 정제 방법을 순서대로 사용했다. 상세한 단계는 다음과 같다:
재생 용액을 10 내지 30% (NH4)2SO4를 함유하는 용액으로 희석하고, 페닐 세파로스 크로마토그래피 컬럼에 로딩한 후, 2배 컬럼 부피의 10 내지 30% (NH4)2SO4로 세척한 뒤, 15% 내지 35% 글리콜 에틸렌으로 용출시킨 뒤, 수집된 용출 피크 성분을 용액 A(10 내지 80mmol/L Tris-HCl pH 7.5 내지 10.5)로 완전하게 투석하고; 투석된 용출액을 용액 A로 완전하게 평형화된 DEAE 세파로스 FF 크로마토그래피 칼럼에 로딩한 뒤, 용액 B(용액 A는 0.2 내지 0.4mol/L NaCl을 함유함)로 용출시키고, 용출 피크를 수집했다; DEAE 세파로스 FF 이온교환 크로마토그래피의 용출 피 크 분획을 용액 C(20 내지 40mmol/L PB + 20 내지 40mmol/L NaCl pH 6.5-7.5)로 완전하게 평형화된 세파크릴 S-100 크로마토그래피 컬럼에 전부 로딩하고, 용액 C로세척한 후, 용출 피크를 수집했다. 상기 정제 절차 후, 수득되는 MIFNCys86은 순도가 95% 이상이었다(SDS-PAGE 다이아그램은 도 4에 제시했다).
실시예 3B: IFN - Con 1 Cys86 의 발현 및 정제
실시예 2B에서 수득한 재조합 플라스미드로 이.콜라이 BL21(DE3) 또는 다른 적당한 숙주를 형질전환시킨 다음, 유도 발현시켰다. 봉입체 형태로 주로 존재하는, 이.콜라이 BL21(DE3) 숙주에 의해 발현된 IFN-Con 1Cys86은 총 세균 단백질의 30 내지 50%에 해당했다.
본 실시예의 정제 방법은 실시예 3A에서 사용된 것과 동일했다. 수득된 IFN-Con 1Cys86의 순도는 95% 이상이었다(SDS-PAGE 다이아그램은 도 4에 제시했다).
실시예 3C: IFN α-2 a Cys85 의 발현 및 정제
실시예 2C에서 수득한 재조합 플라스미드로 이.콜라이 BL21(DE3) 또는 다른 적당한 숙주를 형질전환시킨 다음, 유도 발현시켰다. 봉입체 형태로 주로 존재하는, 이.콜라이 BL21(DE3) 숙주에 의해 발현된 IFN-Con 1Cys86은 총 세균 단백질의 30 내지 50%에 해당했다.
조악한 정제: 본 실시예의 조악한 정제 방법은 실시예 3A에서 사용된 것과 동일했다.
정밀 정제: 소수성 크로마토그래피, DEAE 음이온교환 크로마토그래피 및 S-100 겔 배제 크로마토그래피를 포함하는 3단계 정제 방법을 순서대로 사용했다. 상세한 단계는 다음과 같다:
재생 용액을 30mmol/L Tris-HCl(pH 8.0)으로 10배 희석한 뒤, DEAE 세파로스 FF 이온교환 크로마토그래피 컬럼에 로딩하고, 0.3mol/L NaCl을 함유하는 30mmol/L Tris-HCl(pH 7.0) 용액으로 용출시킨 후 용출 피크를 수집했고; 상기 단계 유래의 용출된 샘플은 PBS(pH 7.0)로 3배 희석한 후, IFNα-2a 모노클로날 항체 친화성 크로마토그래피 컬럼에 로딩하고 100mmol/L NaCl을 함유하는 0.3mol/L Gly 용액(pH 2.5)으로 용출시킨 다음, 용출 피크를 수집했다; 그 다음 앞의 단계에서 용출된 샘플은 세파크릴 S-100 크로마토그래피 컬럼에 로딩하고 PBS(pH 7.0)로 용출시켰다. 수득된 IFN α-2aCys85는 순도가 95% 이상이었다(SDS-PAGE 다이아그램은 도 4에 제시했다).
실시예 3D: IFN α-2 b Cys85 의 발현 및 정제
실시예 2D에서 수득한 재조합 플라스미드로 이.콜라이 BL21(DE3) 또는 다른 적당한 숙주를 형질전환시킨 다음, 유도 발현시켰다. 봉입체 형태로 주로 존재하는, 이.콜라이 BL21(DE3) 숙주에 의해 발현된 IFNα-2bCys85는 총 세균 단백질의 30 내지 50%에 해당했다.
조악한 정제: 본 실시예의 조악한 정제 방법은 실시예 3A에서 사용된 것과 동일했다.
정밀 정제: 소수성 크로마토그래피, DEAE 음이온교환 크로마토그래피 및 S-100 겔 배제 크로마토그래피를 포함하는 3단계 정제 방법을 순서대로 사용했다. 상세한 단계는 다음과 같다:
재생 용액을 30mmol/L Tris-HCl(pH 8.0)으로 10배 희석한 뒤, DEAE 세파로스 FF 이온교환 크로마토그래피 컬럼에 로딩하고, 0.3mol/L NaCl을 함유하는 30mmol/L Tris-HCl(pH 7.0) 용액으로 용출시킨 후 용출 피크를 수집했고; 상기 단계 유래의 용출된 샘플은 PBS(pH 7.0)로 3배 희석한 후, IFNα-2b 모노클로날 항체 친화성 크로마토그래피 컬럼에 로딩하고 100mmol/L NaCl을 함유하는 0.3mol/L Gly 용액으로 용출시킨 다음, 용출 피크를 수집했다; 그 다음 앞의 단계에서 용출된 샘플은 세파크릴 S-100 크로마토그래피 컬럼에 로딩하고 PBS(pH 7.0)로 용출시켰다. 수득된 IFN α-2bCys85는 순도가 95% 이상이었다(SDS-PAGE 다이아그램은 도 4에 제시했다).
실시예 4: MIFN Cys86 , IFN-Con 1 Cys86 , IFNα-2a Cys85 및 IFNα-2b Cys85 의 PEG 커플링
본 발명에서, 인터페론 α의 4가지 돌연변이체는 분자량이 다양한 PEG와 커플링시킬 수 있다. 바람직한 예에서, PEG는 분자량이 각각 약 20KD 및 40KD인 mPEG-MAL 및 mPEG2-MAL을 포함했다.
1) MIFNCys86, IFN-Con 1Cys86, IFNα-2aCys85 및 IFNα-2bCys85의 농도
상기 4가지 인터페론α 돌연변이체는 각각 DEAE 세파로스 FF 크로마토그래피 칼럼으로 농축시킬 수 있다. 구체적인 방법은 다음과 같다: 실시예 3A 내지 3D 중어느 한 실시예에서 수득된 정제된 단백질 샘플을 10 내지 80mmol/L Tris-HCl 용액, pH 7.5 내지 8.5로 2배 이상 희석하고, DEAE 크로마토그래피 컬럼에 로딩한 후, 20mmol/L PB 완충액(pH 7.6) + 300mmol/L NaCl로 용출시켜 표적 단백질의 농축 용액을 수득했다.
2) mPEG-MAL과 MIFNCys86, IFN-Con 1Cys86, IFNα-2aCys85 및 IFNα-2bCys85의 커플링
MIFNCys86, IFN-Con 1Cys86, IFNα-2aCys85 및 IFNα-2bCys85는 모노페길화된 유도체인 mPEG(20KD)-MAL과 각각 커플링시켜, mPEG(20KD)-MIFNCys86, mPEG(20KD)-IFN-Con 1Cys86, mPEG(20KD)-IFNα-2aCys85 및 mPEG(20KD)-IFNα-2bCys85로 표시했다.
또한, MIFNCys86, IFN-Con 1Cys86, IFNα-2aCys85 및 IFNα-2bCys85는 모노페길화된 유도체 mPEG(40KD)-MAL과 각각 커플링시켜, mPEG(40KD)-MIFNCys86, mPEG(40KD)-IFN-Con 1Cys86, mPEG(40KD)-IFNα-2aCys85 및 mPEG(40KD)-IFNα-2bCys85로 표시했다.
커플링 반응은 다음과 같은 특정 단계를 거쳤다:
중간 부피의 농축 용액을 본 발명의 단계 1)로부터 분취해서, 단백질 농도가 8 내지 12mg/ml가 되게 조정했다. PEG 분말을 1:1의 몰비로 첨가하고, 서서히 진탕하여 용해시킨 후 4℃에서 하룻밤 반응시켰고, 이 때 반응 시간은 10시간 이상이어야 한다. SDS-PAGE는 커플링 반응 정도를 검출했다(도 5 및 도 6에 제시됨).
실시예 5: 인터페론-α 돌연변이체 유도체의 정제
페길화된 산물은 DEAE 세파로스 패스트 플로우 이온교환 크로마토그래피로 정제했고, 구체적인 조건은 다음과 같다: 반응 용액은 25mmol pH 8.0 트리스 완충액 시스템을 사용하여 20 내지 30배 희석한 후, 평형화된 DEAE 컬럼에 3 내지 4ml/분의 유속으로 로딩했고, 기준선이 평형화되면 25mM pH 8.0 Tris 중의 80mM NaCl 용액으로 용출시켜 표적 단백질의 용출 피크를 수득했다. 수득된 재조합 단백질의 최종 순도는 95% 이상이었다(SDS-PAGE 다이아그램은 도 7 및 8에 제시했다).
실시예 6: 4 종류의 인터페론 α 돌연변이체 및 이 돌연변이체의 폴리에틸렌 글리콜 유도체의 시험관내 항바이러스 활성 측정
시험관내 인터페론 항바이러스 활성의 측정을 위해, 종래 기술에서 공개적으로 널리 알려진 방법인 WISH-VSV 시스템을 이용한 세포변성 효과 억제 분석을 채택했다. 구체적인 언급은 "People's Republic of China Pharmacopoeia"의 2005년판의 부록 3 XC "Determination of biological activity of interferon"에 제시되어 있다.
본 실시예에서는 16가지 인터페론(또는 유도체)의 시험관내 항바이러스 활성 을 측정했고, 구체적으로 다음을 포함했다:
4 종류의 인터페론 α: MIFN, IFN-Con1, IFNα-2a 및 IFNα-2b；
4 종류의 IFN-α 돌연변이체: MIFNCys86, IFN-Con 1Cys86 , IFNα-2aCys85 및 IFNα-2bCys85(본 발명에서 실시예 3A 내지 3D에 의해 제조된 것)；
8 종류의 폴리에틸렌 글리콜 유도체: mPEG(20KD)-MIFNCys86, mPEG(20KD)-IFN-Con 1Cys86, mPEG(20KD)-IFNα-2aCys85, mPEG(20KD)-IFNα-2bCys85, mPEG(40KD)-MIFNCys86, mPEG(40KD)-IFN-Con 1Cys86, mPEG(40KD)-IFNα-2aCys85 및 mPEG(40KD)-IFNα-2bCys85(본 발명의 실시예 5에 의해 제조된 것).
이들의 시험관내 항바이러스 활성 분석 결과는 다음 표 1 내지 4에 제시했다.
MIFN, MIFNCys86, mPEG(20KD)-MIFNCys86 및 mPEG(40KD)-MIFNCys86의 시험관내 항바이러스 활성
명칭 비활성 (specific activity) (IU/mg) 보유 활성 (retention activity) (%)
MIFN 5.57±0.38×108 -
MIFNCys86 5.68±0.29×108 100
mPEG(20KD)-MIFNCys86 5.84±0.35×106 1.03
mPEG(40KD)-MIFNCys86 4.12±0.31×106 0.73
IFN-Con 1, IFN-Con 1Cys86, mPEG(20KD)-IFN-Con 1Cys86 및 mPEG(40KD)-IFN-Con 1Cys86의 시험관내 항바이러스 활성
명칭 비활성 (IU/mg) 보유 활성 (%)
IFN-Con 1 5.18±0.24×108 -
IFN-Con 1Cys86 5.13±0.30×108 100
mPEG(20KD)-IFN-Con 1Cys86 5.24±0.27×106 1.02
mPEG(40KD)-IFN-Con 1Cys86 4.05±0.25×106 0.79
IFNα-2a, IFNα-2aCys85, mPEG(20KD)-IFNα-2aCys85 및 mPEG(40KD)-IFNα-2aCys85의 시험관내 항바이러스 활성
명칭 비활성 (IU/mg) 보유 활성 (%)
IFN α-2a 1.09±0.20×108 -
IFN α-2aCys85 1.06±0.23×108 100
mPEG(20KD)-IFN α-2aCys85 1.79±0.30×106 1.69
mPEG(40KD)-IFN α-2aCys85 1.28±0.21×106 1.21
IFNα-2b, IFNα-2bCys85, mPEG(20KD)-IFNα-2bCys85 및 mPEG(40KD)-IFNα-2bCys85의 시험관내 항바이러스 활성
명칭 비활성 (IU/mg) 보유 활성 (%)
IFN α-2b 1.10±0.20×108 -
IFN α-2bCys85 1.12±0.27×108 100
mPEG(20KD)-IFN α-2bCys85 1.64±0.33×106 1.46
mPEG(40KD)-IFN α-2bCys85 1.20±0.26×106 1.07
실시예 7: 래트의 약동학 연구
표 5에 제시된 약동학 계획을 통해 12종의 인터페론(또는 유도체)의 시험관내 항바이러스 활성을 측정했고, 구체적으로 다음을 포함한다:
4 종류의 IFN-α 돌연변이체: MIFNCys86, IFN-Con 1Cys86, IFNα-2aCys85 및 IFNα-2bCys85(본 발명에서 실시예 3A 내지 3D에 의해 제조된 것)；
8 종류의 폴리에틸렌 글리콜 유도체: mPEG(20KD)-MIFNCys86, mPEG(20KD)-IFN-Con 1Cys86, mPEG(20KD)-IFNα-2aCys85, mPEG(20KD)-IFNα-2bCys85, mPEG(40KD)-MIFNCys86, mPEG(40KD)-IFN-Con 1Cys86, mPEG(40KD)-IFNα-2aCys85 및 mPEG(40KD)-IFNα-2bCys85(본 발명의 실시예 5에 의해 제조된 것).
약동학 계획
IFN-α 돌연변이체 IFN-α돌연변이체의 페길화된 유도체
래트 6마리 6마리
투여 경로 피하 피하
투여 방식 단독 단독
투여 용량 3.3MIU 5.4MIU
채혈 시점 0, 0.2, 0.5, 0.75, 1, 2, 4, 8, 12, 16, 24 0, 0.5, 2, 4, 8, 12, 16, 24, 48, 72, 96, 168
측정 방법 WISH/VSV WISH/VSV
상기 시험 계획에서, 혈액 샘플은 래트의 안저로부터 채취해, 원심분리하여 혈청을 수집했다. 혈청 샘플에 존재하는 인터페론의 함량은 CPE법(WISH/VSV 시스템)으로 측정했다.
MIFNCys86 및 이의 PEG 유도체의 약동학 매개변수 표
PK 매개변수 MIFNCys86 mPEG(20KD)-MIFNCys86 mPEG(40KD)-MIFNCys86
t1/2Ka (h) 0.25 15.0 17.1
t1/2Ke (h) 1.57 18.0 24.8
Tpeak (h) 0.78 24.3 26.5
Cpeak (IU/ml) 23823.7 26941.7 30628.6
AUC (IU·h/ml) 76230.8 1744758.0 2815579.3
3P87 소프트웨어 피팅(fitting) 후 MIFNCys86 및 이의 PEG 유도체의 대사는 SD 래트에서 1차 흡수 구획 모델과 일치한다는 것을 발견했다. 페길화는 MIFNCys86의 약동학적 성질을 유의적으로 향상시킬 수 있었다. MIFNCys86과 비교할 때, mPEG-MIFNCys86은 흡수 반감기, 피크 시간 및 제거 반감기가 유의적으로 연장되었고, 약물-시간 곡선 하의 면적이 크게 증가했으며, 소진율이 크게 감소했다. 페길화는 체내에서 MIFNCys86의 평균 수명을 연장시키고 소진율을 감소시킬 수 있음을 관찰할 수 있었다.
이와 동일한 결과로서, IFN-Con 1Cys86 및 이의 PEG 유도체, IFNα-2aCys85 및 이의 PEG 유도체, IFNα-2bCys85 및 이의 PEG 유도체의 약동학 시험에서도 미변형 인터페론과 비교할 때, 페길화된 인터페론의 흡수 반감기, 피크 시간 및 제거 반감기가 유의적으로 연장되었고, 약물-시간 곡선 하의 면적이 크게 증가했으며, 소진율이 크게 감소한 것으로 관찰되었다.
이와 같이, 페길화는 체내의 인터페론의 평균 수명을 연장시키고 소진율을 감소시킬 수 있다는 것이 입증되었다.
이러한 점에서, 본 발명의 대부분이 설명되었다.
바람직한 실시예는 본 발명을 제한하는 것이 아니라 예시하는 것뿐이며, 당업자는 본 발명의 보호 범위 안에서, 여기에 기술된 본 발명에 특정 변형 및 개선을 수행할 수 있을 것이다.
동물 실험은 본 발명의 인터페론 돌연변이체의 폴리에틸렌 글리콜 유도체가 체내에서 인터페론의 평균 수명을 연장시키고 소진율을 감소시키며 상당히 높은 항바이러스 활성을 보유할 수 있음을 밝혀냈다. 따라서, 본 발명에 기술된 방법 또는 당업자에게 공지된 방법에 따르면, 본 발명의 인터페론 돌연변이체를 제조할 수 있고, 그 다음 폴리에틸렌 글리콜에 추가로 공유결합시킨 후, 종양 질환이나 감염 질환과 같은 면역조절 장애의 예방 및 치료용 약물로 개발할 수 있다.
서열목록이 첨부된다.
첨부된 아미노산 및 뉴클레오타이드의 서열목록에서, IFN-Con 1, IFNα-2a 및 IFNα-2b의 뉴클레오타이드 서열은 일반에게 공개되어 있고, 특정 예에서, 대응 부위의 코돈만이 tgc로 돌연변이되어 있다. 따라서, IFN-Con 1, IFNα-2a 및 IFNα-2b의 DNA 서열은 본 명세서에 첨부하지 않았다.
서열번호 1은 MIFNCys86의 아미노산 서열이고;
서열번호 2는 IFN-Con 1Cys86의 아미노산 서열이며;
서열번호 3은 IFNα-2aCys85의 아미노산 서열이고;
서열번호 4는 IFNα-2bCys85의 아미노산 서열이며;
서열번호 5는 MIFNCys86의 DNA 서열이고;
서열번호 6 내지 9는 각각 프라이머 P1 내지 P4의 뉴클레오타이드 서열이다.
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Claims (10)

  1. 서열번호 1 내지 4로부터 선택된 아미노산 서열을 가짐을 특징으로 하는 인터페론(IFN)-α 돌연변이체.
  2. 삭제
  3. 제1항에 따른 인터페론-α 돌연변이체를 암호화하는 뉴클레오타이드 서열.
  4. 삭제
  5. 폴리에틸렌 글리콜(PEG) 시약이 아미노산 서열 서열번호 1 또는 2의 위치 86 또는 아미노산 서열 서열번호 3 또는 4의 위치 85에 있는 Cys 부위를 변형시키는 것을 특징으로 하는, 인터페론-α 돌연변이체의 폴리에틸렌 글리콜 유도체.
  6. 제5항에 있어서, 아미노산 서열 서열번호 1 또는 2의 위치 86 또는 아미노산 서열 서열번호 3 또는 4의 위치 85에 있는 Cys 부위와 폴리에틸렌 글리콜 설프하이드릴 변형제를 반응시켜 수득되고, 여기서 상기 폴리에틸렌 글리콜 설프하이드릴 변형제가 말레이미드-PEG, 비닐 설폰-PEG, 요오도아세트아미드-PEG 및 n-피리딜 디설파이드-PEG 중에서 선택되는, 인터페론-α 돌연변이체의 폴리에틸렌 글리콜 유도체.
  7. 제5항에 있어서, PEG 시약의 평균 분자량이 5,000 내지 60,000 달톤인 것을 특징으로 하는, 인터페론-α 돌연변이체의 폴리에틸렌 글리콜 유도체.
  8. 삭제
  9. 제5항 내지 제7항중 어느 한 항에 따른 인터페론-α 돌연변이체의 폴리에틸렌 글리콜 유도체를 포함하는 약물 조성물.
  10. 삭제
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