KR100927135B1

KR100927135B1 - 고농축액 아그로박테리움과 진공 처리를 통한 식물형질전환 효율을 향상시키는 방법

Info

Publication number: KR100927135B1
Application number: KR1020070112451A
Authority: KR
Inventors: 김진석; 최정섭; 정영수; 이재헌; 이기정; 김혜정; 전은희; 김미진
Original assignee: 한국화학연구원; 동아대학교 산학협력단
Priority date: 2007-11-06
Filing date: 2007-11-06
Publication date: 2009-11-18
Also published as: KR20090046355A

Abstract

본 발명은 식물세포 또는 식물조직을 고농축액의 아그로박테리움속 세균에 침지시키는 단계 및 상기 침지된 식물세포 또는 식물조직을 진공 처리하는 단계를 포함하는, 아그로박테리움속 세균을 통해 식물형질전환 효율을 향상시키는 방법 및 상기 방법에 의해 제조되는 식물세포, 식물조직 또는 식물에 관한 것이다. 본 발명의 방법을 이용하면 고효율로 식물, 바람직하게는 콩 형질전환체를 생산할 수 있다.

고농축액, 아그로박테리움속, 진공 처리, 식물세포, 식물조직, 형질전환

Description

고농축액 아그로박테리움과 진공 처리를 통한 식물 형질전환 효율을 향상시키는 방법{Method for improving plant transformation efficiency through high concentrate Agrobacterium treatment and its vacuum treatment}

본 발명은 식물세포 또는 식물조직을 고농축액의 아그로박테리움속 세균에 침지시키는 단계; 및 상기 침지된 식물세포 또는 식물조직을 진공 처리하는 단계를 포함하는, 아그로박테리움속 세균을 통해 식물형질전환 효율을 향상시키는 방법 및 상기 방법에 의해 제조되는 식물세포, 식물조직 또는 식물에 관한 것이다.

콩[Glycine max (L.) Merr.]은 생육 특성면에서 볼 때, 공중질소의 고정능력과 토양미생물의 증가를 가능케 함으로써 토양의 이화학적 성질을 개선시켜 지력을 증대시키는 장점을 가졌고, 여러 환경조건에서 생육 가능함으로 재배 가능 지역이 광범위하다. 그리고 콩은 식물성 단백질과 오일을 다량으로 생산하는 식물로써 쌀을 주식으로 하는 동양인에게 경제적인 단백질원인 동시에 여러 가지 생리적 기능성 물질도 풍부하게 들어 있어서 세계적으로 주목받고 있는 작물이다. 아울러 최근에는 바이오에너지 생산 원료물질을 제공하기 때문에 그 수요가 급증하고 있다. 따라서 많은 연구자들은 콩의 기능을 개선시키고자 형질전환을 포함한 관련 품종개 발 기술을 꾸준히 탐구하고 있다.

형질전환은 1980년대부터 미국을 중심으로 기술개발이 꾸준히 진행되어 오다가 최근에 다양한 처리조건과 실험조건이 개선되면서 형질전환 효율을 올리기 위한 노력이 이루어지고 있고, 유전체 기능연구(functional genomics)를 위한 한 방법으로 고효율의 형질전환 기술개발을 위한 다양한 연구가 진행되고 있다. 이는 다량으로 축적되고 있는 콩 유전체정보의 이용을 위해서도 매우 바람직한 일이다. 그동안 우리나라에서는 조직배양을 통한 콩의 식물체 재분화 기술에 있어서 미흡한 점이 많았고, 다른 작물과 달리 외래 유전자 도입이 어려워 안정적인 형질전환기술 체계가 아직 확립되지 못하였다. 그렇기 때문에 조직배양 효율이 높은 콩 품종의 탐색과 고효율 형질전환 방법의 확립은 매우 시급한 기술 분야에 속해 있었다. 그리하여 연구자들은 콩 형질전환방법, 특히 고효율 형질전환방법의 확립을 위해 많은 노력을 하고 있다.

식물체의 형질전환 방법 중에서 아그로박테리움을 매개로 하는 방법은 식물유전공학기술의 발달로 인해 다양한 식물형질전환용 운반체가 개발되면서 널리 이용되고 있다. 미생물을 이용한 이러한 방법은 일반적으로 형질전환 효율이 상대적으로 높은 편이고, 도입된 유전자가 안정적이며, 도입되는 유전자의 복제수가 적고, 단시간의 배양에 의해 형질전환체를 얻을 수 있는 장점 등이 있는 반면에 식물종이나 유전자형, 식물 절편체, 사용되는 균주, 플라스미드, 처리방법 등에 의해 식물체 재분화와 형질전환율 그리고 유전자의 발현 등에 큰 차이를 보인다. 따라서 형질전환이 용이한 품종 몇몇을 제외하고는 대체적으로 유전자의 도입이 용이하지 않은 실정이다.

현재 식물형질전환 기술은 식물 병원성균인 아그로박테리움을 식물조직 절편에 감염시키는 과정을 거치게 되는데, 형질전환의 효율을 높이기 위해 식물조직의 배양에 사용되는 배지의 조성을 달리하는 시도와 아그로박테리움 종류, 벡터의 구성, 항생제 마커의 선택, 식물체 절편의 종류, 페놀성 화합물의 첨가, 배양온도의 변화, 공배양의 기간 등을 중심으로 다양한 연구가 시도되고 있다. 또한, 식물세포로의 유전자도입의 효율을 향상시키는 방법으로써 국내 특허 공개번호 특2002-0092915와 특2002-0092916에서 각각 식물세포를 원심분리처리 및 열처리와 원심분리 처리하는 방법과 같은 전처리에 의해 유전자도입 효율을 향상시키는 방법이 특허화되어 있다.

한국 공개특허 제2004-86974호에는 당 및 염 전처리 과정을 통한 아그로박테리움에 의한 식물체 형질전환 효율을 증진시키는 방법이 기재되어 있으나, 본 발명의 식물세포 또는 식물조직을 고농축액의 아그로박테리움 처리 및 이를 진공 처리하는 것에 대한 기재는 없다.

본 발명에서는 고효율의 식물 형질전환 기술개발을 위한 다양한 처리조건 확립을 위하여 형질전환 과정 중, 식물세포 또는 식물조직을 고농축액의 아그로박테리움 처리와 진공 처리시 식물 형질전환 효율이 증대되는지를 확인하고자 한다.

상기 과제를 해결하기 위해, 본 발명은 식물세포 또는 식물조직을 고농축액의 아그로박테리움속 세균에 침지시키는 단계; 및 상기 침지된 식물세포 또는 식물조직을 진공 처리하는 단계를 포함하는, 아그로박테리움속 세균을 통해 식물형질전환 효율을 향상시키는 방법을 제공한다.

또한, 본 발명은 상기 방법에 의해 제조되는 식물세포, 식물조직 또는 식물을 제공한다.

본 발명의 방법을 이용하면 고효율로 식물, 바람직하게는 콩 형질전환체를 생산할 수 있다.

본 발명의 목적을 달성하기 위하여, 본 발명에서는 식물세포 또는 식물조직을 고농축액의 아그로박테리움속 세균에 침지시키는 단계; 및 상기 침지된 식물세포 또는 식물조직을 진공 처리하는 단계를 포함하는, 아그로박테리움속 세균을 통해 식물형질전환 효율을 향상시키는 방법을 제공한다. 식물의 형질전환은 DNA를 식물에 전이시키는 임의의 방법을 의미한다. 그러한 형질전환 방법은 반드시 재생 및(또는) 조직 배양 기간을 가질 필요는 없다. 식물 종의 형질전환은 쌍자엽 식물뿐만 아니라 단자엽 식물 양자를 포함한 식물 종에 대해 일반적이다.

식물 형질전환은 아그로박테리움속 세균을 통해 수행될 수 있다. 바람직하게는, 상기 아그로박테리움속 세균은 특별히 제한되지 않지만, 아그로박테리움 튜머파시엔스(Agrobacterium tumefaciens)(예를 들면, Agrobacterium tumefaciens LBA4404(Hoekema 등, (1983) Plant Physiol. 83, 529-534) 및 EHA101(Hood 등, (1986) J. Bacteriol., 168, 1291-1301)을 바람직하게 사용할 수 있다.

본 발명의 방법에 의하면, 아그로박테리움속 세균에 있어서 병원성(vir) 영역의 유전자군의 발현에 근거한 유전자 도입계이면, 특별히 한정되지 않고 유의한 효과를 얻을 수 있다. 따라서, 바이너리벡터, 강병원성 바이너리벡터, 슈퍼바이너리벡터 등 어느 벡터 시스템에 대해서도 사용될 수 있고, 본 발명에 의한 효과를 얻을 수 있다. 이들 벡터류를 변형한 다른 벡터 시스템을 사용한 경우에 있어서도 동일하다(예를 들면, 아그로박테리움속 세균의 vir 영역의 일부 또는 전부를 절제하여 부가적으로 플라스미드내에 통합, vir 영역의 일부 또는 전부를 절제하여 새로운 플라스미드의 일부로서 아그로박테리움에 도입하는 등). 또한, 본 발명의 방법에 의하면, 야생형의 아그로박테리움속 세균에 있어서도, 식물로의 야생형 T-DNA 영역의 도입효율을 높여서, 사실상 감염 효율을 향상시킬 수 있다.

식물에 도입하고자 하는 목적 유전자는 플라스미드의 T-DNA 영역 중의 제한효소 부위에 통상의 방법에 의해 통합할 수 있고, 플라스미드에 동시에 또는 별도 로 통합된 카나마이신, 할로모마이신 등의 약제에 대한 내성을 갖는 유전자 등의 적당한 선택마커에 근거하여 선택할 수 있다. 식물에 도입하고자 하는 유전자는 종래의 기술과 동일하게 기본적으로는 T-DNA의 좌우경계서열의 사이에 배치되는 것이다. 그러나, 플라스미드가 환상이므로, 경계서열의 수는 1이어도 좋고, 복수의 유전자를 다른 부위에 배치하도록 하는 경우에는 경계서열이 3개 이상이어도 좋다. 또한, 아그로박테리움속 세균 중에서 Ti 또는 Ri 플라스미드상에 배치되어도 좋으며, 또한 다른 플라스미드상에 배치되어도 좋다. 더욱이 복수 종류의 플라스미드상에 배치되어도 좋다.

유전자도입에 제공되는 세포 또는 조직은 어떠한 것으로 한정되는 것은 아니고, 잎, 뿌리, 줄기, 열매, 그 밖의 어느 부위이어도 좋고, 유합조직(callus)과 같이 탈분화한 것이거나 탈분화하지 않은 배(胚) 등이어도 좋다. 또한, 식물의 종류도 한정되지 않지만, 피자(被子)식물이 바람직하고, 쌍자엽식물 또는 단자엽식물이어도 좋다.

또한, 본 발명의 방법은 상기 형질전환된 식물 세포로부터 형질전환 식물을 재분화하는 단계를 포함할 수 있다. 형질전환 식물 세포로부터 형질전환 식물을 재분화하는 방법은 당업계에 공지된 임의의 방법을 이용할 수 있다.

본 발명의 일 구현 예에 따른 방법에서, 상기 아그로박테리움속 세균의 농도는 OD₆₅₀이 8~10인 것이 바람직하다.

본 발명의 일 구현예에 따른 방법에서, 상기 침지 단계는 외과용 메스를 고 농축액의 아그로박테리움속 세균에 침지시킨 후, 상기 침지된 외과용 메스로 식물세포 또는 식물조직에 상처를 내는 것일 수 있으며, 상기 상처 내기(wounding)는 6~10회 수행할 수 있으며, 바람직하게는 8회 수행할 수 있다.

바람직하게는, 고농축액 침지란, 접종 당일 액체 YEP 배지 200㎖를 50㎖씩 나누어서 펠렛이 생긴 튜브 중 하나에는 액체 공배양 배지를 5㎖만 첨가하여 고농축 상태로 만든 후, 접종 상처 시 측아(axillary bud)와 자엽절(cotyledonary node)를 현미경으로 보면서 외과용 메스(＃11 blade)를 준비된 고농축액에 묻힌 다음 목표 부위에 8번 정도 상처를 내는 것을 말한다.

본 발명의 일 구현 예에 따른 방법에서, 상기 진공 처리 시간은 15-45초일 수 있으며, 더욱 바람직하게는 30초이다. 진공 처리 시간은 30초가 가장 효율이 높았으며, 상기 범위를 벗어난 경우에는 신초 다발의 형성률이 저하될 수 있다. 진공처리란, 접종을 한 후 공배양 (co-cultivation)에 들어가기에 전에 도 1과 같이 Clean bench 안에서 데시게이터 {250㎜(가로)×50㎜(세로)×300㎜(높이)}와 다이어프램펌프(GAST사)를 이용하여 식물체를 예를 들면, 30초 동안 500mm.Hg까지 진공 상태로 두는 것을 말한다.

본 발명의 일 구현예에 따른 방법에서, 상기 식물은

벼, 밀, 보리, 옥수수, 콩, 감자, 밀, 팥, 귀리 및 수수로 이루어진 군에서 선택된 식량작물류;

애기장대, 배추, 무, 고추, 딸기, 토마토, 수박, 오이, 양배추, 참외, 호박, 파, 양파 및 당근으로 이루어진 군에서 선택된 채소작물류;

인삼, 담배, 목화, 참깨, 사탕수수, 사탕무우, 들깨, 땅콩 및 유채로 이루어진 군에서 선택된 특용작물류;

사과나무, 배나무, 대추나무, 복숭아, 양다래, 포도, 감귤, 감, 자두, 살구 및 바나나로 이루어진 군에서 선택된 과수류;

장미, 글라디올러스, 거베라, 카네이션, 국화, 백합 및 튤립으로 이루어진 군에서 선택된 화훼류; 및

라이그라스, 레드클로버, 오차드그라스, 알파알파, 톨페스큐 및 페레니얼라이그라스로 이루어진 군에서 선택된 사료작물류로 이루어진 군에서 선택될 수 있다. 바람직하게는, 상기 식물은 콩이다.

본 발명은 또한, 본 발명의 방법에 의해 제조되는 식물세포, 식물조직 또는 식물을 제공한다. 상기 식물은 전술한 바와 같으며, 바람직하게는 콩이다.

이하, 본 발명을 실시예에 의해 상세히 설명한다. 단, 하기 실시예는 본 발명을 예시하는 것일 뿐, 본 발명의 내용이 하기 실시예에 한정되는 것은 아니다.

실시예

재료 및 방법

실험을 위하여 광안콩과 비교품종으로 미국품종 Bert의 떡잎을 재료로 형질전환을 수행하였다.

가) 파종

종자는 강염산(12N)에 락스를 혼합하여 발생시킨 염산 가스에 소독을 한 후, 1% 나트륨 차아염소산염(sodium hypochlorite)에 30분간 흔들면서 2차 소독을 하였고, 10분 간격으로 멸균수로 3회 수세하였다. GM(germination medium, 발아 배지; B5 salt 3.16g/ℓ, MES 3mM, 수크로스 3%, 한천 0.8%, pH 5.8)에 파종 후 24℃ 배양실에서 16시간 광조건과 8시간 암조건으로 5일간 발아시켰다.

나) 접종 균(Agrobacterium tumefaciens) 준비

콩의 형질전환을 위하여 먼저 bar 유전자를 포함하는 pCAMBIA3301(Center for Application of Molecular Biology to International Agriculture, Australia)의 CaMV 35S 프로모터와 NOS 종결인자 사이에 GUS 유전자를 도입하여 식물체용 발현 벡터를 제작하였다. 이를 안(An)의 방법(An, Meth. Enzymol., 153: 292-305, 1987)에 따라 아그로박테리움 투머파시엔스 EHA105 (Hood, et al., Trans. Res ., 2: 208-218, 1993)에 도입하였다. 이를 고체 YEP 배지 [카나마이신 100㎎/ℓ, 리팜피신 25㎎/ℓ, 펩톤 10g/ℓ, NaCl 5g/ℓ, 효모 추출액 5g/ℓ, 1.5%(w/v) 한천 (pH 7.0)]에 긁은 후 25℃에서 배양하여 생성된 단일 콜로니를 같은 항생제가 들어 있는 액체 YEP 배지 10㎖에 넣고 OD₆₅₀ 0.8이 될 때까지 25℃에서 250rpm으로 배양기에서 교반하였다. 다 자란 배양균에 30% 글리세롤 스톡 10㎖을 넣고 섞은 뒤, 1.5㎖ 튜브에 1㎖씩 분주하여 액체질소로 급속 냉각하여 -70℃에 보관하였다. 접종 하루 전에 항생제가 들어있는 액체 YEP 배지 200㎖에 -70℃에서 보관해 놓은 Agrobacterium tumefaciens 스톡 (competent cell)을 1㎖ 넣고 OD₆₅₀이 0.8~1.0이 될 때까지 25℃에서 250rpm으로 배양기에서 흔들어 주었다.

접종 당일에 액체 YEP 배지 200㎖을 50㎖씩 나눠서 20℃, 3270g에서 10분 동안 원심분리하였다. 각각의 튜브에 있는 A. tumefaciens 펠렛을 액체 CCM(co-cultivation medium, 공배양 배지; B5 salt 0.316g/ℓ, BA 1.67㎎/ℓ, MES 20mM, GA3 0.25㎎/ℓ, 아세토시링곤 0.2mM, L-시스테인 3.3mM, 소듐 티오설페이트 1.0mM, DTT 1.0mM, 수크로스 3%, pH 5.4)에 고농도와 저농도로 나눠 부유시켰다. 접종을 할 때 상처를 내기 위해 액체 공배양 배지를 5㎖을 넣어 고농축액 상태로 만든 것과, 액체 공배양 배지를 15㎖ 넣어 저농도로 만든 것(대조구)을 준비하였다.

다) 접종과 공배양

발아한 식물체의 배축을 떡잎 밑 약 1㎝ 되는 곳에서 자른 후 양 떡잎 사이로 외과용 메스를 넣어 하배축까지 수직으로 자르고 새로 나온 본엽을 제거하였다. 드러난 측아(axillary bud)와 자엽절 (cotyledonary node)를 현미경으로 보면서 외과용 메스(＃11 blade)로 8회 정도 상처를 내었다. 이 때 고농도 침지의 경우, 외과용 메스에 5㎖ 농축액을 묻힌 다음 목표 부위에 상처를 내었으며, 대조구의 경우, 고농도 침지액을 사용하지 않고 저농도 침지액을 사용하여 상처를 내었다. 대략 50개 정도의 절편체를 25㎖ 공배양/A. tumefaciens에 넣고 초음파 분해 처리(sonication)를 10초 하였다. Clean bench 안에서 30분 정도 UV 소독을 한 데시게이터｛250㎜(가로)×250㎜(세로)×300㎜(높이)}와 다이어프램펌프(GAST사)를 이용해서 식물체 반은 진공(vacuum) 30초 처리(500mm.Hg)를 한 뒤 30분 동안 접종시키고, 무처리 대조구는 진공(vacuum) 처리를 하지 않은 채로 30분 동안 접종시켰다 (도 1 참고).

각각의 절편체를 튜브에서 꺼내 멸균한 여과지 위에 놓고 물기를 제거한 뒤, 고체 공배양 배지에도 여과지를 한 장 깔고 15개체 내외로 올려두었다 (향축 (adaxial) 부분이 밑으로 향하도록 둔다). Micropore로 봉한 뒤 25℃에 5일 동안 암배양하였다.

라) 세척 및 신초의 유도

5일간 공배양을 한 후에 제균을 위해서 액체 1/2 SIM(shoot induction medium, 신초 유도 배지)에 간단히 세척하였다. 각각의 절편체를 여과지 위에 놓고 물기를 제거한 뒤 선발항생제가 없는 SI-①(shoot induction; B5 salt 3.16g/ℓ, BA 1.67㎎/ℓ, MES 3mM, 수크로스 3%, 한천 0.8%, 세포탁심 500㎎/ℓ, pH 5.6)에 한 플레이트당 7 개체씩 배지와 수평이 되도록 치상하였다.

2주 후 신초가 나온 절편체를 선발항생제가 들어있는 SI-②(shoot induction; B5 salt 3.16g/ℓ, MES 3mM, BA 1.67㎎/ℓ, 수크로스 3%, 한천 0.8%, 세포탁심 500㎎/ℓ, 하이그로마이신 B 5㎎/ℓ 또는 DL-포스피노트리신 10㎎/ℓ, pH 5.6)에 치상하였는데, 이 때 신초를 제외한 나머지 부분은 잘라 버리고 향축 (adaxial) 부분이 밑으로 향하도록 치상하였다.

2주 후 갈변한 신초/신초 pad는 외과용 메스(＃15 blade)로 깎아내고 선발 항생제가 들어있는 SEM(shoot elongation medium, 신초 신장 배지; MS salt 4.4g/ℓ, MES 3mM, GA3 0.5㎎/ℓ, 아스파라긴 50㎎/ℓ, 피로글루탐산 100㎎/ℓ, IAA 0.1㎎/ℓ, 제아틴-리보시드 1㎎/ℓ, 실버 니트레이트 10㎎/ℓ, 수크로스 3%, 한천 0.8%, 세포탁심 500㎎/ℓ, 하이그로마이신 B 10㎎/ℓ 또는 DL-포스피노트리신 5㎎/ℓ, (pH 5.6)에 치상하였다.

마) GUS 발현 분석

형질전환의 효율을 검정하기 위하여 GUS 발색반응을 수행하였다. GUS 발색반응은 [Jefferson, R. A. (1987), Plant Mol. Biol. Rep., 5, 387-405]의 방법을 사용하였다. 1㎖의 GUS 발색용액을 만들기 위하여 3㎎의 5-브로모-4-클로로-인돌릴 글루쿠론산 (X-Gluc)을 150㎕ 디메틸 포름아미드에 녹인 후, 850㎕의 용액 B (1% Triton X-100, 0.1M 인산염 버퍼, pH 7.0, 5mM 포타슘 페로시아니드)를 첨가하였다. SI 배지 치상 후 0.5㎝ 크기로 자란 신초 및 캘러스를 절단하여 GUS 발색 용액을 첨가한 후, 37℃ 배양기에서 하룻밤 동안 처리하였다. 처리 후 탈색 용액 (에탄올 2.5㎖, 10% 포름알데히드 5㎖, 5% 빙초산 2.5㎖)을 첨가하여 4℃에 보관하며 GUS 발현 여부와 정도를 관찰하였다.

실시예 1: 콩 형질전환 효율에 대한 접종 상처 시 고농축액 침지의 효과

접종 상처 시 외과용 메스(＃11 blade)를 고농축액 (5㎖)에 담근 식물체와 고농축액을 사용하지 않고 상처만 낸 식물체간의 GUS 발현 정도를 비교하였다. 그 결과, 고농축액을 사용한 식물체의 목표 부위에서 trasient GUS의 정도가 더 높게 나타났다 (도 2). 접종 상처 시 고농축액 처리를 한 후 접종시킨 절편체와 대조구 절편체의 형질전환 빈도를 측정한 결과, 광안콩과 Bert 모두 처리하지 않은 것보다 13-14% 정도 높게 나타났다. 고농축액의 농도는 5㎖이 가장 이상적이었으며 8번 정 도의 상처가 높은 효율을 나타냈다. 잠정적인 형질전환체 분석이긴 하지만 표 1에서도 나타났듯이 80%에 가까운 높은 빈도를 나타내었다. 그리고 강한 GUS 유전자 발현을 신초에서도 관찰할 수 있었다. 이는 고농축액을 따로 만들어 상처를 내는 방법이 측아(axillary bud)와 자엽절 (cotyledonary node)에 Agrobacterium 접근을 좀더 용이하게 만들어 형질전환 효율을 높이는 것으로 보인다.

하기 표 1은 접종 상처 시 고농축액 침지 방법에 따른 콩 형질전환 빈도를 나타낸 것이다.

	광안콩		Bert
	대조구	고농축액 침지처리	대조구	고농축액 침지처리
transient GUS	61%	74%	62%	76%

광안콩과 Bert를 접종 상처 시 외과용 메스(＃11 blade)를 고농축액(5㎖)에 담구어 상처를 낸 것과 고농축액을 사용하지 않고 상처만 낸 것(대조구)을 비교해 본 결과, 상처 시 고농축액을 사용한 것이 transient GUS의 효율이 높게 나타났다.

실시예 2: 콩 형질전환 효율에 대한 접종 상처 시 고농축액 침지 및 진공처리의 동시처리 효과

콩 형질전환 효율에 대해, 현미경을 사용하는 조건 하에 접종 상처 시 고농축액 침지 및 진공의 양자를 동시처리한 후, 식물체간의 GUS 발현 정도를 비교하였다. 접종 상처 시 고농축액 처리 및 진공 처리를 한 절편체와 대조구 절편체의 형질전환 빈도 측정 결과, 광안콩과 Bert 모두 처리하지 않은 것보다 17-26% 정도 높게 나타났다. SI-② 이후 시작되는 선발과정에도 신초 생존율이 높은 것으로 나타 났다. 진공 처리 시간은 예비실험에서 30초가 가장 효율이 높았다. 공배양 초기에 하는 진공 처리가 형질전환 효율을 증대시킬 수 있는 새로운 방법이 될 수 있을 것으로 본다.

하기 표 2는 접종 상처 시 고농축액 침지 및 진공의 동시처리에 따른 콩 형질전환 빈도를 나타낸 것이다.

	광안콩		Bert
	대조구	고농축액 침지 및 진공의 동시처리	대조구	고농축액 침지 및 진공의 동시처리
transient GUS	66%	83%	65%	91%

광안콩과 Bert를 접종 상처 시 외과용 메스(＃11 blade)를 고농축액(5㎖)에 담구어 상처를 낸 후 진공처리한 것과 고농축액을 사용하지 않고 상처만 낸 것(대조구)을 비교해 본 결과, 동시처리한 것이 transient GUS의 효율이 매우 높게 나타났다.

도 1은 형질전환 효율을 높이기 위한 진공처리를 나타내는 사진이다.

도 2는 고농축액 침지 처리에 따른 목표 부위의 GUS 발현 정도를 나타낸 그림이다.

Claims

식물세포 또는 식물조직을 OD₆₅₀이 8~10인 고농축액의 아그로박테리움속 세균에 침지시키는 단계; 및

상기 침지된 식물세포 또는 식물조직을 공배양 (co-cultivation)에 들어가기 전에 10~45초 진공 처리하는 단계를 포함하는, 아그로박테리움속 세균을 통해 식물형질전환 효율을 향상시키는 방법.
삭제
제1항에 있어서, 상기 침지 단계는 외과용 메스를 고농축액의 아그로박테리움속 세균에 침지시킨 후, 상기 침지된 외과용 메스로 식물세포 또는 식물조직에 상처를 내는 것을 특징으로 하는 방법.
삭제
제1항에 있어서, 상기 아그로박테리움속은 아그로박테리움 튜머파시엔스 (Agrobacterium tumefaciens)인 것을 특징으로 하는 방법.
제1항에 있어서, 상기 식물은 콩인 것을 특징으로 하는 방법.
삭제