KR100762928B1 - 견 피브로인 나노섬유로 이루어진 부직포 형태의 골조직유도 재생용 차폐막 및 그 제조방법 - Google Patents

Abstract

본 발명은 골조직유도 재생용 차폐막 및 그 제조방법에 관한 것으로, 보다 상세하게는 견 섬유에서 세리신을 제거하여 얻어진 견 피브로인의 나노섬유가 부직포 형태로 되어 있는 골조직유도 재생용 차폐막 및 그 제조방법에 대한 것이다.

본 발명에 따른 골조직유도 재생용 차폐막은 일정 강도, 생체적합성 및 생체 분해성을 가지고 있으며, 약물을 첨가하여 제조할 경우에는 약물의 서방출 시스템으로 유지하도록 할 수 있다. 또한, 본 발명에 따른 골조직유도 재생용 차폐막은 나노섬유의 굵기 및 부직포 형성 시에 나노섬유가 축적되는 정도를 조절하여 차폐막의 두께를 조절할 수 있고, 다공성 구조의 공극 크기를 조절할 수도 있어 차폐막을 사용하는 조건에 따라 변화시켜 사용할 수 있다. 또한, 본 발명에 따른 골조직유도 재생용 차폐막을 구성하는 나노섬유가 견 섬유에서 세리신을 제거하여 얻어진 견 피브로인 용액을 급속동결시킨 후 건조하고, 건조된 견 피브로인을 전기방사 용매에 용해시킨 후 전기 방사함으로써 제조될 수 있다. 본 발명의 차폐막은 밀착성 및 공기투과도가 우수하고, 손상된 치아조직의 재생에 유리하다.

차폐막, 견 피브로인, 나노섬유, 부직포

Description

견 피브로인 나노섬유로 이루어진 부직포 형태의 골조직유도 재생용 차폐막 및 그 제조방법{Nonwoven Nanofibrous Membranes of Silk Fibroin for Guided Bone Tissue Regeneration and Their Preparation Method}

도 1은 본 발명에 따른 골조직유도 재생용 차폐막을 제조하는 장치의 개략도이고;

도 2는 본 발명의 실시예 2에 따른 골조직유도 재생용 차폐막 표면의 주사현미경 사진이며;

도 3은 본 발명에 따른 견 피브로인 초극세 섬유사의 직경에 따른 빈도수의 분포를 나타낸 그래프이며;

도 4는 골조직유도 재생용 차폐막에 골모세포의 부착양상을 보여주는 주사전자현미경 사진이며;

도 5는 가토의 두개골 결손부에 골조직유도 재생용 차폐막을 이식하고 4주 후의 조직표본을 저배율(20x)로 관찰한 사진이며; 그리고

도 6은 가토의 두개골 결손부에 골조직유도 재생용 차폐막을 이식하고 4주 후의 조직표본을 고배율(100x)로 관찰한 사진이다.

본 발명은 골조직유도 재생용 차폐막 및 그 제조방법에 관한 것으로, 보다 구체적으로 견 섬유에서 세리신을 제거하여 얻어진 견 피브로인의 나노섬유가 부직포 형태로 되어 있는 구조를 갖는 골조직유도 재생용 차폐막 및 그 제조방법에 대한 것이다.

치주 질환에 의해 손상된 치조골을 재생시키는 방법으로는 자가골이식(autografting)으로 손상된 부위를 채워 고형을 유도하는 방법이 있다. 또 다른 방법으로는 면역원성을 제거한 사람이나 동물의 뼈를 인위적인 골대체 물질로서 이용하거나 상업적으로 시판되는 수산화 아파타이트를 이용하는 방법이 있다.

최근에는 인공 막을 조직에 도입함으로써 손상된 치주조직의 치유를 증진시키고, 완전한 치주 조직으로의 복원을 꾀하는 동시에 골이식 결과를 개선시키고 새로운 치조골의 생성을 유도하려는 시도가 활발하게 이루어지고 있다. 이러한 기술에서 사용되는 차폐막은 손상 부위와 그 주위의 결체 조직을 격리 차단시킴으로써 새로운 치조골 및 치주 인대 조직을 생성시켜 치주 조직의 재생이 원활히 일어날 수 있도록 한다. 즉, 차폐막으로 손상된 부위를 다른 주위 환경과 차단시켜 치은 섬유아세포가 침입하지 못하고 조직 중에 있는 골 및 치주 인대 재생력이 있는 세 포들이 방해를 받지 않고 새로운 치주 조직이 재생되도록 하는 것이다.

초기 차폐막에 대한 연구는 폴리테트라플루오로에틸렌, 셀룰로오스 아세테이트, 실리콘 고무 또는 폴리우레탄과 같은 비분해성 재료를 이용하였다. 그러나, 비분해성 재료로 제조된 차폐막은 치주골이 생성된 후 다시 차폐막을 제거하기 위한 2차 수술이 필요하고, 이러한 과정에서 불필요한 염증이나 조직 괴사가 일어날 수 있으며, 신생 조직에 대한 농양, 상피하방증식(epithelial down growth), 치주낭 형성, 염증이 발생할 수 있다는 문제점이 있다.

최근에는 지방족 폴리에스터나 콜라겐과 같은 생분해성 고분자를 이용한 연구가 보고 되고 있다. 생분해성 차폐막을 이용하면 차폐막을 제거하기 위한 재수술이 필요 없고 비분해성 재료로 제조된 차폐막과 비교하여 조직을 재생하는 데에는 큰 차이가 없는 것으로 보고 되고 있다. 그러나, 생분해성 재료를 이용하여 제조된 차폐막을 임상에 적용하는 경우에도 충분한 강도를 가지지 못하여 일정 형태를 유지하지 못하고, 조직이 자랄 수 있는 공간을 확보하지 못하여 재료에 의한 2차적인 염증을 발생시키는 문제점이 있다.

따라서, 차폐막은 치주골이 자라기 위한 공간을 유지할 수 있는 강도와 구조를 가져야 하며, 치주골 손상 부위에 적용 시에 골세포와 적합성을 가져 골세포의 부착과 증식을 유도할 수 있어야 하고, 영양분과 수분의 공급을 원활히 할 수 있도록 다공성을 가져야 한다.

이러한 연구의 일환으로 약물, 락트산의 단일 중합체, 락트산과 글리콜산의 공중합체 또는 이들의 혼합물 중에서 선택되는 생분해성 고분자를 폴리글리콜산으로 제조된 망사에 도포하여 제조되는 차폐막이 보고 되었다 (대한민국 등록특허 제0180585호). 상기 차폐막은 생분해성 고분자를 함유하는 고분자 용액이 폴리글리콜산 망사에 도포된 후 용매의 증발에 의해 고분자를 석출시키고, 석출된 고분자가 주변에 존재하는 폴리글리콜산 망사에 부착되어 이동이 저지됨으로써 장력을 받게 되어, 망사 사이의 공간에서 미세공이 형성되도록 하여 제조되는 것이다. 그러나, 차폐막 적용 시 치주 조직의 재생을 원활히 하기 위해서는 치주 조직과 결체 조직을 격리시킬 수 있도록 하여야 하므로, 차폐막에서 형성되는 미세공의 공극 크기에 대한 조절이 필요하다.

또한, 천연 고분자인 키토산과 합성 고분자인 생분해성 고분자를 이용하여 제조된 조직 재생 유도용 차폐막이 보고 되었다 (대한민국 공개특허 제2003-2224호). 구체적으로, 키토산으로 제조된 부직포에 생분해성 고분자 용액을 도포시켜 고분자 막을 형성하고, 그 위에 키토산으로 제조된 부직포를 적층한 후 압착시켜 차폐막을 제조하는 것이다. 상기 차폐막에서 생분해성 고분자로 제조된 부직포에는 미세공이 형성되어 있어 치주골이 자라기 위한 조건을 제공해 주며, 부직포가 순차적으로 적층되어 있어 기계적 강도를 향상시킬 수 있도록 하였다. 그러나, 상기 차폐막은 키토산으로 제조된 부직포를 제조하는 단계, 생분해성 고분자 용액을 상기 부직포 위에 도포하여 고분자 막을 형성하는 단계 및 키토산으로 제조된 부직 포를 상기 고분자 막에 적층하는 단계에 따라 제조되므로 제조공정이 복잡하다는 문제점이 있다.

천연 견 섬유는 뽕을 먹고 자라는 누에고치 등으로부터 뽑아낸 실로 만든 섬유를 말하며, 고 인장강도, 고유의 광택, 탁월한 염색성 등으로 인해 4,000년 이전부터 고급 섬유소재로 사용되어 왔다. 상기 견 섬유는 두 가닥의 피브로인이 세리신 외막에 싸여있는 구조를 갖고 있다. 이 중에서 피브로인(이를 구체적으로 “견 피브로인“이라 칭함)은 생체친화성이 우수하여 주변의 어떤 조직에도 악영향을 미치지 않으므로 막, 분말, 겔, 수용액 등의 여러 형태로 제조되어 식품, 화장품, 의료용품의 다양한 분야에서 사용되고 있다.

또한, 견 피브로인은 생체에 적합하여 분말형태는 표피세포를 증식 또는 활성화에 사용되는 소재로서 유용하며, 나아가 견 피브로인의 미세분말은 충전재, 코팅재, 화장용 소재로서도 활용되고 있다. 이때, 화장품이나 도료에 사용되는 분말은 천연 견 섬유에서 세리신을 제거하고 알칼리로 분자량을 떨어뜨린 후 분쇄하여 사용하는 것이다. 이러한 분말의 제조방법은 대한민국 공개특허공보 제2001-52075호에 공지되어 있으며, 직경 3 마이크로미터 미만의 견 피브로인 분말이 흡습성, 방습성, 투습성에 우수하다고 보고하고 있다.

또한, 미국 등록특허 제6,110,590호에는 견 섬유를 전처리 없이 헥사플루오로이소프로판올(hexafluoroisoporpanol)에 용해시킨 후 전기방사하여 견 나노섬유의 부직포를 얻는 방법을 제안하였다. 그러나 상기 방법은 견 섬유에서 세리신을 제거하지 않았기 때문에 생체적합성이 떨어지고, 특히 견을 용해시키는데 수개월의 시간이 소요되어 상업성이 어렵다는 단점이 있다.

본 발명의 목적은 상기의 문제점을 해결하기 위하여 고안된 것으로서, 일정 강도와 생체적합성 및 생분해성을 가지고 있으며, 미세공의 공극 크기 조절이 용이하고, 간단한 제조공정으로 제조할 수 있는 견 피브로인을 포함하는 부직포 형태의 골조직유도 재생용 차폐막 및 그 제조방법을 제공하기 위한 것이다.

상기의 목적을 달성하기 위하여 본 발명은 견 섬유에서 세리신을 제거하여 얻어진 견 피브로인의 나노섬유가 부직포 형태로 서로 얽혀 있는 구조를 갖는 견 피브로인 나노섬유로 이루어진 부직포 형태의 골조직유도 재생용 차폐막을 제공한다.

또한, 상기의 다른 목적을 달성하기 위하여 본 발명은 견 섬유에서 세리신을 제거하여 얻어진 견 피브로인 용액을 급속동결시킨 후 건조하고, 건조된 견 피브로인을 전기방사 용매에 용해시킨 후 전기방사하는 단계를 포함한 것을 특징으로 하는 견 피브로인 나노섬유로 이루어진 부직포 형태의 골조직유도 재생용 차폐막의 제조방법을 제공한다.

이하, 본 발명을 상세히 설명한다.

본 명세서에서 “나노섬유”라 함은 나노입경을 갖는 섬유를 말하며, 전기방사시의 조건을 적절히 조절함으로써 100 - 1,000 nm의 입경을 갖는 나노섬유가 용이하게 제조될 수 있다. 또한, 본 명세서에서 '전기방사 용매'라 함은 견 피브로인을 용해시킬 수 있어야 한다는 전제하에 전기방사에 적용할 수 있는 용매를 말한다.

본 발명에서 골조직유도 재생용 차폐막을 구성하는 견 피브로인은 생체 조직과의 친화성, 생분해성, 투과성, 항생제 등의 의약품 함침성 및 사용 시의 용이성 등 차폐막으로서의 요구 조건을 만족한다. 또한 나노섬유로 제조 시 기계적 특성을 유지시킬 수 있어 나노섬유의 안정성을 증가시키고, 부직포 형태로 제조될 때에도 공극과 형태를 일정하게 유지시킬 수 있으며, 손상 부위에의 압력을 충분히 견뎌내도록 할 수 있다.

동결건조된 견 피브로인을 용해시킬 수 있는 전기 방사 용매로는 1,1,1,3,3,3-헥사플루오로이소프로판올, 1,1,1,3,3,3-헥사플루오로아세톤 및 그의 수화물, 포름산 및 이들의 혼합물로 구성된 군으로부터 선택되는 것이 바람직하나, 이에 한정되는 것은 아니다. 견 피브로인은 1,1,1,3,3,3-헥사플루오로이소프로판 올, 1,1,1,3,3,3-헥사플루오로아세톤의 수화물에 대해 5 내지 15%로 첨가되는 것이 바람직하고, 포름산에 대해 5 내지 20%로 첨가되는 것이 바람직하다.

본 발명은 또한 상기한 조직재생용 차폐막의 제조방법에 관한 것으로서, 견 섬유에서 세리신을 제거하여 얻어진 견 피브로인 용액을 투석을 거쳐 급속동결 시킨 후 건조하고, 건조된 견 피브로인을 상기 전기방사 용매에 용해시킨 후 전기 방사하는 단계를 포함한다. 본 발명의 방법은 또한 견 피브로인 나노섬유의 재결정화를 수행함으로써 물에 대한 용해성을 감소시키고, 섬유의 기계적 강도를 향상시킬 수 있다. 재결정화에 사용될 수 있는 용매의 예로는 메탄올, 에탄올, 프로판올, 이소프로판올과 같은 C₁ ~ C₃의 알코올 또는 이들의 수용액을 들 수 있다.

누에고치 등으로부터 뽑아낸 천연 견 섬유는 두 가닥의 피브로인이 세리신 외막에 싸여있는 구조를 갖고 있으며, 견 섬유로부터 세리신을 제거하는 단계를 정련이라고 한다. 이러한 정련 공정은 당해 분야에서 통상의 지식을 가진 자에게 널리 공지되어 있다. 예를 들면, 아스퍼질러스 오리제(Asperdillus oryzae) 등의 단백질 분해효소를 사용한 정련 방식, 또는 탄산나트륨, 올레인산나트륨 등의 알칼리성 수용액에서 끓이는 정련방식, 고압반응기(autoclave)를 이용한 고온-고압 정련방식 등을 들 수 있다. 세리신(Sericin)을 제거하지 아니한 채, 추후 공정을 수행할 경우 거품이 다량 발생하고, 따라서, 이후 공정에서 상당히 많은 문제를 야기할 수 있다.

세리신이 제거된 견 피브로인은 적당한 용매에 용해되어 견 피브로인 용액으로 제조된다. 견 피브로인 용액을 얻는 방법도 널리 공지되어 있으며, 예를 들면, 염화리튬, 브롬화리튬, 요오드화나트륨, 염화아연, 염화칼슘 등과 같은 중성염을 함유하는 에탄올 수용액에 견 피브로인을 부가하여 용해시킨 후, 이 용액을 셀로판막과 같은 투석막을 사용하여 투석시켜 상기 중성염을 완전히 제거함으로써 성취될 수 있다.

본 발명에 따른 골조직유도 재생용 차폐막을 구성하는 나노섬유는 상기의 투석과정을 거쳐 동결건조된 스폰지 형태의 견 피브로인을 전기방사 용매에 용해시킨 후 전기 방사장치에 넣고 전기방사하여 제조할 수 있다.

전기방사에 통상 사용될 수 있는 전기방사장치는 특별히 제한되지 아니하며, 나노섬유의 직경, 나노섬유의 굵기 등을 고려하여 적절히 선택할 수 있으며, 일반적으로 사용되는 고전압(5 ~ 50kV)을 걸어줄 수 있는 전기방사장치가 널리 사용될 수 있다.

나노섬유의 직경은 견 피브로인 용액의 농도, 사용한 전기방사장치의 종류 및 전기방사시의 조건을 적절히 조절함으로써 100 - 1,000 nm, 바람직하게는 100 - 500 nm, 가장 바람직하게는 100 - 300 nm의 범위 내에서 적절히 조절할 수 있다. 이러한 사항은 당해 분야에서 통상의 지식을 가진 자에게 자명할 것이다. 본 발명의 구체 예에 따르면, 견 피브로인 농도는, 포름산 및 그 수용액의 중량에 대하여, 5 ~ 20%를 사용하는 것이 바람직하고, 8 ~ 10%가 보다 바람직하였다. 또한, 주어진 전압은 5 ~ 35 kV의 범위에서 수행되는 것이 바람직하고, 더욱 바람직하게는 15 ~ 25 kV이였다. 방사구와 집적판 사이의 거리는 5 ~ 30 cm가 바람직하였고, 보다 바람직하게는 5 ~ 15 cm이였다. 다만, 상기한 견피브로인 용액의 농도, 전압 및 방사구와 집적판 사이의 거리는 전기방사장치의 종류, 요구되는 물성, 차폐막의 형상 등을 전체적으로 고려하여 정해져야 한다. 전기방사된 나노섬유는 서로 얽혀 있는 부직포 형태를 형성하였다(도 2 및 도 3).

본 발명에 따른 골조직유도 재생용 차폐막은 나노섬유의 굵기 및 부직포 형성 시에 나노섬유가 축적되는 정도를 조절하여 차폐막의 두께를 조절할 수 있고, 다공성 구조의 공극 크기를 조절할 수도 있어 차폐막을 사용하는 조건에 따라 변화시켜 사용할 수 있다. 차폐막의 두께는 0.1~5 mm으로 하는 것이 바람직하며, 공극의 크기는 2~10 μm로 하는 것이 바람직하나, 이에 한정되는 것은 아니다.

구체적으로, 나노섬유는 견 피브로인 용액이 방사되는 전기방사기의 입구의 지름과 방출되는 속도, 전압 및 전기장, 점가되는 고분자의 성질, 고분자 용액의 농도를 조절함으로써 나노섬유의 굵기를 조절할 수 있다. 나노섬유의 굵기가 0.001~10 μm이 되도록 하는 것이 바람직하나, 이에 한정된 것은 아니다.

또한, 나노섬유가 축적되는 정도는 축적 시간과 전압 거리를 조절하여 축적 정도와 공극을 조절할 수 있다.

또한, 본 발명에 따른 골조직유도 재생용 차폐막은 생체 분해성 및 생체 적합성이 있는 견 피브로인으로부터 나노섬유를 제조 시 동시에 이를 부직포 형태의 막으로 제조한 것으로, 특히 나노섬유가 제조된 후 별다른 처리 없이 부직포 형태로 제조할 수 있다. 따라서, 차폐막을 구성하는 기본 골격을 형성한 후 생체 고분자로 도포할 필요 없이 간단하게 제조할 수 있다.

본 발명에 따른 골조직유도 재생용 차폐막은 차폐막에 통상 사용되는 첨가제를 추가로 포함할 수 있으며, 첨가제의 예로는 약물, 성장인자, 세라믹, 효소 등을 들 수 있다.

상기 약물은 염증 반응을 줄이기 위한 항생제 또는 치주 질환 치료용 약물을 포함할 수 있다. 상기 치주 질환 치료용 약물은 메페남산, 이부프로펜, 플루비프로펜, 인도메타신, 나프록센, 메트로니다졸, 테트라사이클린, 미노사이클린, 옥시테트라사이클린 및 이들의 혼합물로 이루어진 군으로부터 선택된다. 상기 치주 질환 치료용 약물은 고분자 용액에 분산시키거나 에멀젼 형태로 봉입시켜 전기방사 시 방사되어 차폐막에 포함되도록 할 수도 있고, 또는 차폐막을 먼저 제조한 후 차 폐막을 약물을 함유하는 용액에 침지시켜 차폐막에 포함되도록 할 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.

상기 약물을 추가로 첨가하여 제조된 본 발명에 따른 골조직유도 재생용 차폐막은 약물의 서방출 시스템을 유지하도록 할 수 있다.

상기 성장인자는 혈소판 유래 증식 인자(platelet-derived growth factor), 인슐린 유사 성장인자, 상피 성장인자, 종양 증식 인자 또는 이들의 혼합물로 이루어진 군으로부터 선택된다. 상기 성장인자는 견 피브로인 고분자 중량에 대하여 5 내지 20 중량%의 양으로 첨가한다.

상기 세라믹은 수산화 아파타이트(hydroxyapatite), 트리칼슘포스페이트(tricalcium phosphate)를 사용할 수 있다. 상기 세라믹은 생체 적합성을 향상시키는 생체외 기질 성분 및/또는 기계적 강도와 골조직 재생효과를 향상시키기 위해 첨가한다. 특히, 수산화 아파타이트는 화학적, 결정학적으로 뼈나 치아내의 무기 조직(inorganic component)과 유사한 특성을 가지고 있기 때문에, 인체 내에 이식될 때 주위의 뼈나 조직과의 접합력 및 안정성이 우수하다는 장점이 있다. 따라서, 수산화 아파타이트를 추가로 첨가하여 제조한 차폐막으로부터 수산화 아파타이트가 서서히 방출되도록 함으로써 뼈의 성장에 따라 안정화되도록 하였다.

이하, 실시예를 통하여 본 발명을 보다 상세히 설명하고자 한다.

본 실시예는 본 발명을 보다 구체적으로 설명하기 위한 것이며, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 한정되는 것은 아니다. 본 발명이 속하는 기술분야에서 통상의 지식을 가진 자라면, 본 발명 범위 및 목적을 벗어나지 않는 범위 내에서 본 명세서를 참고하여 변형시키거나 개선시킬 수 있을 것이다.

<실시예 1>

뜨거운 물로 미리 세척한 견 섬유를 상기 섬유 중량의 100배에 해당하는 물에 침지하였다. 상기 견 섬유의 양에 대하여, 중량비 0.3%의 올레인산나트륨을 추가 투입하고 95℃에서 120 분간 처리하고 수세한 다음, 다시 0.1%의 올레인산나트륨으로 95℃에서 60 분간 처리하였다. 상기 용액을 탄산나트륨 수용액으로 중화하고 끓는 물로 수차례 수세함으로써, 견 섬유의 세리신을 제거하였다. 상기 세리신이 제거된 견 섬유를 염화칼슘, 증류수, 무수에탄올의 몰비가 각각 1:2:8 인 혼합용매에 넣고 70℃에서 4 시간 교반하여 용해시켰다. 상기 세리신이 제거된 견 섬유를 셀룰로오스 투석막에 넣어 증류수 조건에서 3 일간 투석하여 염 및 에탄올을 완전히 제거된 순수한 견 피브로인 용액을 제조하였다. 상기 염 및 에탄올이 제거된 견 피브로인 용액을 -80℃에서 순간 동결시키고 -4℃로 유지되는 동결건조기에서 2 일간 동결건조하여 수분이 제거된 스폰지 상태의 견 피브로인을 얻었다. 상기 견 피브로인을 포름산에 녹여 9%의 용액으로 제조하였고, 도 1의 전기방사 장치를 이용하여 방사구 선단부에서 집적판까지의 거리는 5 cm, 전압 15 kV로 고정한 후 전기방사하여 견 피브로인 나노섬유의 섬유집합체를 제조하였다. 제조된 부직포 형태의 초극세 섬유사의 집합체를 메탄올 수용액에 10 분간 침지한 후 결정화시켰으며, 상기 결정화가 완료된 후, 메탄올 및 물을 제거하여 수불용성 섬유집합체를 제조하였다. 섬유 집합체를 구성하는 초극세 섬유의 직경을 분석하기 위하여 형상분석기(image analyzer)(Scope Eye, 한국)를 이용하였다. 도 2는 그 결과를 도시한 것으로서, 150 ~ 300 nm의 직경에 해당되는 섬유수가 밀집된 결과를 확인할 수 있었다. 상기에서 제조된 섬유집합체를 주사전자현미경(Hidachi S-2350, 일본)을 이용하여 5,000 배의 배율로 확대하여 관찰하였으며, 그 결과를 도 2에 도시하였다. 상기 결과에서 볼 수 있듯이, 섬유집합체는 150 ~ 300 nm의 균일한 굵기를 갖는 나노섬유가 부직포 형태로 서로 얽혀 있는 구조를 갖고 있었다.

<실시예 2>

견 피브로인을 포름산에 녹여 9%의 용액의 동일한 농도 및 방사구 선단부에서 집적판까지의 거리가 7 cm로 동일하고, 전압을 20 kV로 변경하여 전기방사하는 것을 제외하고는 상기 실시예 1과 동일한 방법으로 수행하였다. 상기 수행한 결과, 굵기가 비교적 균일한 (210± 140 nm) 초극세 섬유사의 집합체를 제조하였다.

<실시예 3>

견 피브로인을 1,1,1,3,3,3-헥사플루오로이소프로판올에 녹여 7%의 용액의 동일한 농도로 제조하고, 방사구 선단부에서 집적판까지의 거리를 7 cm 및 전압을 15 kV로 변경하여 전기방사하는 것을 제외하고는 상기 실시예 1과 동일한 방법으로 수행하였다. 수행한 결과, 굵기가 비교적 균일한 (230± 150nm) 초극세 섬유사의 집합체를 제조하였다.

<실시예 4>

골모세포를 배양하여 초극세사 섬유사 집합체로 구성된 직경 8mm의 원형 차폐막에 부착시킨 후 1일, 7일 후에 그 부착정도 및 부착양상을 주사전자 현미경으로 관찰하였다. 1일 후에는 차폐막에 세포들은 방추형의 원래의 형태를 유지하면서 골고루 잘 부착되어 있으며, 7일 후에는 차폐막의 대부분이 골모세포로 덮여 있었다 (도 4).

<실시예 5>

극세사 섬유사 집합제로 구성된 차폐막을 가토 두개골 천공부위 상부에 고정이식 후 4주에 희생시켜 차폐막 하부의 골가교형성(bone bridge formation)을 관찰하였다.

4주후의 조직학적 관찰결과 차폐막의 하부의 골결손부 전체에서 신생골 형성과 골가교 형성이 이루어져 있으며 결손부 말단에서도 일부의 신생골이 자라나오면서 원래의 두개골과의 골융합이 잘 이루어져 있음을 관찰 할 수 있었다 (도 5). 고배율 관찰시 차폐막 하부 골결손부 말단 부위의 주위에는 신생골이 골양형태를 벗어나 신생골화 형태가 뚜렷이 나타나면서 두꺼운 골이 형성되고 있는 것을 확인 할 수 있었으며, 결손부 중앙의 골형성 양태는 둥근골양 형태로써 서로가 연결되면서 커다란 신생골 형성이 일어난다 (도 6). 또한 4주 후의 이식된 차폐막의 일부에서 약간의 분해가 관찰되기도 하나 거의 이식 시와 동일하게 원형을 유지하고 있었다.

상기 기술한 바와 같이, 본 발명에 따른 골조직유도 재생용 차폐막은 일정 강도, 생체 적합성 및 생체 분해성을 가지고 있으며, 약물을 첨가하여 제조할 경우에는 약물의 서방출 시스템으로 유지하도록 할 수 있다. 또한, 본 발명에 따른 골조직유도 재생용 차폐막은 나노섬유의 굵기 및 부직포 형성 시에 나노섬유가 축적되는 정도를 조절하여 차폐막의 두께를 조절할 수 있고, 다공성 구조의 공극 크기를 조절할 수도 있어 차폐막을 사용하는 조건에 따라 변화시켜 사용할 수 있다. 또한 본 발명에 따른 골조직유도 재생용 차폐막을 구성하는 나노섬유가 견 피브로인으로부터 한번에 제조될 수 있으므로, 적층과정 없이 간단하게 제조할 수 있다.

Claims (10)

1. 견 피브로인의 나노섬유가 부직포 형태로 되어 있어 다공성 구조를 포함하고 있는 골모 세포의 골조직유도 재생용 차폐막에 있어서,

   견 섬유에서 세리신을 제거하여 얻어진 견 피브로인 용액을 투석을 거쳐 급속동결시킨 후 건조하고, 건조된 견 피브로인을 전기방사 용매에 용해시킨 후 전기방사하는 단계에 의해 얻어지며, 상기 전기방사 용매는 1,1,1,3,3,3-헥사플루오로이소프로판올, 1,1,1,3,3,3-헥사플루오로아세톤 및 그의 수화물, 포름산 및 이들의 혼합물로 이루어진 군으로부터 선택되고, 견 피브로인의 농도는 상기 전기방사 용매를 포함하는 수용액 중량에 대하여 5-20%이고, 상기 전기방사는 방사구와 집적판의 거리가 5-15 cm이고, 전압은 5-35 kV에서 수행되고, 방사 후 얻어진 견 피브로인 나노섬유를 알코올 또는 이들의 수용액에서 재결정화시키고, 얻어지는 나노섬유의 직경이 100-1000 nm인 것을 특징으로 하는 골모세포의 골조직유도 재생용 차폐막.
2. 제 1 항에 있어서, 상기 차폐막이 첨가제를 추가로 포함하는 것을 특징으로 하는 골모 세포의 골조직유도 재생용 차폐막.
3. 제 2 항에 있어서, 상기 첨가제가 약물, 성장인자, 세라믹 및 효소로 이루어진 군으로부터 선택되는 하나 이상의 첨가제인 것을 특징으로 하는 골모 세포의 골조직유도 재생용 차폐막.
4. 제 1 항에 있어서, 상기 다공성 구조의 공극 크기가 2~10 μm인 것을 특징으로 하는 골모 세포의 골조직유도 재생용 차폐막.
5. 제 1 항에 있어서, 상기 차폐막의 두께가 0.1~5 mm인 것을 특징으로 하는 골모 세포의 골조직유도 재생용 차폐막.
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